JPH06327473A - New modified t-pa substance - Google Patents
New modified t-pa substanceInfo
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- JPH06327473A JPH06327473A JP5141351A JP14135193A JPH06327473A JP H06327473 A JPH06327473 A JP H06327473A JP 5141351 A JP5141351 A JP 5141351A JP 14135193 A JP14135193 A JP 14135193A JP H06327473 A JPH06327473 A JP H06327473A
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Abstract
Description
【0001】[0001]
【産業上の利用分野】本発明は、新規な組織プラスミノ
ーゲン活性化因子(以下、t−PAと略す)の改変体に
関する。更に詳しくは、t−PAのアミノ酸配列中、天
然型のt−PAの266位から321位に相当するアミ
ノ酸配列の少なくとも一部が尿プラスミノーゲン活性化
因子(以下、UKと略す)の対応するアミノ酸配列に置
き換えられることにより、フィブリン特異性が向上した
新規なt−PA改変体に関するものである。TECHNICAL FIELD The present invention relates to a novel tissue plasminogen activator (hereinafter abbreviated as t-PA) variant. More specifically, in the amino acid sequence of t-PA, at least part of the amino acid sequence corresponding to positions 266 to 321 of natural t-PA corresponds to urine plasminogen activator (hereinafter abbreviated as UK). The present invention relates to a novel t-PA variant having improved fibrin specificity by being replaced with an amino acid sequence of
【0002】[0002]
【従来の技術】天然型のt−PAは、血漿中に存在する
不活性型酵素前駆体であるプラスミノーゲンを加水分解
することによって活性型酵素であるプラスミンに変換す
る。プラスミンは、血管内に種々の原因によって生じた
フィブリン塊(血栓)を分解する(文献a)。2. Description of the Related Art Natural t-PA is converted to plasmin which is an active enzyme by hydrolyzing plasminogen which is an inactive zymogen present in plasma. Plasmin decomposes fibrin clots (thrombus) in blood vessels caused by various causes (Reference a).
【0003】UKやストレプトキナーゼなどの既存の血
栓溶解剤がフィブリン特異性を全く有していないのに対
し、t−PAは比較的高いフィブリン特異性を有してい
る。このためフィブリン、ひいては血栓を特異的に溶解
する性質を有し、そして出血等の副作用の少ない血栓溶
解剤として注目されてきた。しかしながら、実際t−P
Aを臨床に用いた場合、閉塞冠動脈の再開通には予想さ
れていたよりも遥かに多量の投与量が必要であることが
明らかとなった(文献b)。大量投与の結果、t−PA
はフィブリン特異的であるとはいえ若干は血液中のフィ
ブリノーゲンをも分解してしまうため、結局全身性の出
血傾向が生じてしまうという副作用が無視できない問題
となっている。この様な観点から、より高い血栓特異性
の付与を目的としたt−PA改変体の作製も行われ、多
数の報告(文献c,d)がなされているが、未だ目的を
充分に達成したものは数少ない。成功例としては文献e
において、天然型のt−PA配列中の296位から29
9位までの4個のアミノ酸をすべてアラニンに置換する
ことにより血栓特異性が向上したt−PA改変体を作製
しているが、その効果はフィブリン特異性がせいぜい
4.4倍、血漿塊特異性が3倍程度である。While existing thrombolytic agents such as UK and streptokinase have no fibrin specificity, t-PA has a relatively high fibrin specificity. Therefore, it has been attracting attention as a thrombolytic agent that has the property of specifically dissolving fibrin and eventually thrombus, and has few side effects such as bleeding. However, in reality tp
When A was used clinically, it became clear that recanalization of the occluded coronary artery required a much higher dose than expected (Reference b). As a result of large dose administration, t-PA
Although it is fibrin-specific, it also decomposes some fibrinogen in the blood, so that the side effect that systemic bleeding tendency eventually occurs is a problem that cannot be ignored. From such a viewpoint, t-PA variants for the purpose of imparting higher thrombus specificity have been produced, and many reports (references c and d) have been made, but the objectives were still achieved sufficiently. There are few things. Literature e is a successful example
At position 296 to 29 in the native t-PA sequence.
We have prepared a t-PA variant with improved thrombus specificity by substituting all four amino acids up to the 9th position with alanine. The effect is that the fibrin specificity is 4.4 times at most, and plasma clump specific. The sex is about 3 times.
【0004】[0004]
【発明が解決しようとする課題】本発明は、天然型のt
−PAと比較してフィブリン特異性が向上した新規なt
−PA改変体を提供することを目的とする。さらに詳し
くは、フィブリノーゲン存在下ではプラスミノーゲン活
性化活性が非常に低いが、フィブリン存在下では天然の
t−PAに近いあるいはより高いプラスミノーゲン活性
化活性を発現し、それゆえフィブリン特異性が向上した
新規なt−PA改変体を提供するものである。DISCLOSURE OF THE INVENTION The present invention is a natural type t
-A novel t with improved fibrin specificity compared to PA
-To provide a PA variant. More specifically, in the presence of fibrinogen, the plasminogen activating activity is very low, but in the presence of fibrin, plasminogen activating activity close to or higher than that of natural t-PA is expressed, and therefore the fibrin specificity is increased. An improved novel t-PA variant is provided.
【0005】本発明のt−PA改変体はフィブリン特異
性が向上しているので、血液中を循環している時はプラ
スミノーゲンの活性化およびそれに引き続くフィブリノ
ーゲンの分解を引き起こし難く、フィブリンの存在する
血栓局所に到達して初めて天然型のt−PAに近いプラ
スミノーゲン活性化活性を発現して血栓を溶解するの
で、天然型のt−PAと同等の投与量で使用しても全身
性の出血傾向という副作用を生じ難いことが期待され
る。Since the t-PA variant of the present invention has improved fibrin specificity, it is less likely to cause activation of plasminogen and subsequent degradation of fibrinogen when circulating in blood, and the presence of fibrin is present. Only after reaching the local thrombus, the plasminogen activating activity close to that of natural t-PA is expressed and the thrombus is dissolved. Therefore, even if it is used at a dose equivalent to that of natural t-PA, it is systemic. It is expected that the side effect of bleeding tendency will not occur easily.
【0006】[0006]
【課題を解決するための手段】本発明者らは、最近天然
型のt−PAの276位から306位までのアミノ酸配
列のうち少なくとも一部がUKの対応するアミノ酸配列
に置換されたt−PA改変体が、優れたフィブリン特異
性を示すことを見いだしている。さらに研究を継続した
結果、上記のような置換変異を有し、さらにその置換領
域が天然型のt−PAにおいてN末端側では266位ま
で、C末端側では321位までの範囲で延長されること
により、フィブリン特異性がより向上した新規なt−P
A改変体が得られることを見いだした。DISCLOSURE OF THE INVENTION The present inventors have recently found that t-PA in which at least a part of the amino acid sequence from the 276th position to the 306th position of natural t-PA has been substituted with the corresponding amino acid sequence of UK. We have found that PA variants show excellent fibrin specificity. As a result of further research, the substitution mutation as described above was further extended, and the substitution region was extended to the 266th position on the N-terminal side and the 321st position on the C-terminal side in natural t-PA. The novel t-P with improved fibrin specificity
It was found that the A variant was obtained.
【0007】すなわち、本発明の要旨は、(1)t−P
Aのアミノ酸配列中にUKのアミノ酸配列で置換された
置換領域を有するt−PA改変体において、天然型のt
−PAのアミノ酸配列の276位から306位に相当す
るアミノ酸配列の少なくとも一部が、下記に示すような
対応関係を有するUKのアミノ酸配列に置換されてお
り、さらにその置換領域が天然型のt−PAの266位
から275位及び/または307位から321位に相当
するアミノ酸配列の少なくとも一部にまで及んだ置換領
域を有することを特徴とするt−PA改変体、That is, the gist of the present invention is (1) t-P
In a t-PA variant having a substitution region substituted with the amino acid sequence of UK in the amino acid sequence of A, the natural t
-At least part of the amino acid sequence corresponding to positions 276 to 306 of the amino acid sequence of PA is substituted with the amino acid sequence of UK having the following correspondence, and the substitution region is a natural t-type. -A t-PA variant having a substitution region extending to at least a part of the amino acid sequence corresponding to the 266th position to the 275th position and / or the 307th position to the 321st position of PA,
【0008】[0008]
【化2】 [Chemical 2]
【0009】(2)形質転換された原核性生物細胞また
は真核性生物細胞中において、前記(1)記載のt−P
A改変体をコードしているDNAを発現させ得る組み換
え発現ベクター、(3)前記(2)記載の組み換え発現
ベクターで形質転換された原核性生物細胞または真核性
生物細胞、並びに(4)前記(1)記載のt−PA改変
体を有効成分として含有することを特徴とする血栓症治
療剤に関する。(2) In transformed prokaryotic or eukaryotic cells, the t-P according to the above (1)
A recombinant expression vector capable of expressing a DNA encoding the A variant, (3) a prokaryotic or eukaryotic cell transformed with the recombinant expression vector according to (2) above, and (4) above. (1) A therapeutic agent for thrombosis, which comprises the t-PA variant described in (1) as an active ingredient.
【0010】本発明において、天然型のt−PAのアミ
ノ酸配列とは、Pennicaらにより既に報告された
527個のアミノ酸からなる配列をいう(文献f)。ま
た、尿プラスミノーゲン活性化因子(UK)のアミノ酸
配列とはHolmesらにより既に報告された411個
のアミノ酸からなる配列をいう(文献i)。In the present invention, the amino acid sequence of natural t-PA means a sequence consisting of 527 amino acids already reported by Pennica et al. (Reference f). The amino acid sequence of urinary plasminogen activator (UK) refers to a sequence consisting of 411 amino acids previously reported by Holmes et al. (Reference i).
【0011】本発明のt−PA改変体は、天然型のt−
PAのアミノ酸配列の276位から306位に相当する
アミノ酸配列の少なくとも一部が、下記の対応関係を有
するUKのアミノ酸配列に置換されており、さらにその
置換領域が天然型のt−PAの266位から275位及
び/または307位から321位に相当するアミノ酸配
列の少なくとも一部にまで及んだ置換領域を有すること
を特徴とするが、ここに言う天然型のt−PAの276
位は一本鎖から二本鎖への開裂部位の直後の位置にあっ
て、これに対応するUKのアミノ酸配列領域は、UKの
一本鎖前駆体であるプロUKの二本鎖型(すなわちU
K)への開裂部位直後のアミノ酸残基である159位を
指す。The t-PA variant of the present invention is a natural t-PA.
At least part of the amino acid sequence corresponding to positions 276 to 306 of the amino acid sequence of PA is substituted with the amino acid sequence of UK having the following correspondence, and the substitution region is 266 of natural t-PA. Position 275 and / or 307 to 321 and at least a part of the amino acid sequence corresponding to at least part of the amino acid sequence, which is characterized in that it is 276 of natural t-PA.
The position is located immediately after the cleavage site from single-stranded to double-stranded, and the corresponding amino acid sequence region of UK is the double-stranded form of pro-UK (single-chain precursor) (ie, U
It refers to amino acid residue 159, which is immediately after the cleavage site to K).
【0012】[0012]
【化3】 [Chemical 3]
【0013】なお、アミノ酸配列において対応関係と
は、天然型のt−PAの266位がUKの150位に対
応し、以下順次上段のt−PAのアミノ酸配列が下段の
UKのアミノ酸配列に対応する関係を指す。また、本発
明でいうUKの置換領域におけるアミノ酸配列は、天然
型のt−PAの置換領域におけるアミノ酸配列よりアミ
ノ酸が2個少なく、天然型のt−PAの270位および
295位に対応するUKのアミノ酸(上記の配列表示に
おける−で示される部分)は、UKのアミノ酸配列への
置換においてアミノ酸が欠失した状態で対応するものと
する。従って、本発明において天然型のt−PAの26
6位から321位に対応するUKのアミノ酸配列とは、
UKの150位から203位のアミノ酸配列を指す。The correspondence in the amino acid sequence means that the 266th position of natural t-PA corresponds to the 150th position of UK, and the amino acid sequence of t-PA in the upper row corresponds to the amino acid sequence of UK in the lower row. Refers to the relationship. Further, the amino acid sequence in the substitution region of UK referred to in the present invention has two amino acids less than the amino acid sequence in the substitution region of natural t-PA, and the UK corresponding to positions 270 and 295 of natural t-PA. Amino acid (the portion indicated by-in the above sequence notation) corresponds to the amino acid deleted in the substitution of UK with the amino acid sequence. Therefore, in the present invention, 26 of natural t-PA is used.
The amino acid sequence of UK corresponding to positions 6 to 321 is
Refers to the amino acid sequence of positions 150 to 203 of UK.
【0014】本発明のt−PA改変体の好ましい例とし
ては、例えば、天然型のt−PAのアミノ酸配列の26
6位から306位までがUKの相当する配列、すなわち
UKのアミノ酸配列の150位から188位(配列番
号:1)に置換されているもの、天然型のt−PAのア
ミノ酸配列の276位から321位までがUKの相当す
る配列、すなわちUKのアミノ酸配列の159位から2
03位(配列番号:2)に置換されているもの、あるい
は天然型のt−PAのアミノ酸配列の266位から32
1位までがUKの相当する配列、すなわちUKのアミノ
酸配列の150位から203位(配列番号:3)に置換
されているもの等が挙げられる。本発明のt−PA改変
体は、前記のような置換領域においてUKの対応するア
ミノ酸配列により置換されているが、置換領域以外のア
ミノ酸配列は特に限定されない。即ち、天然型のt−P
Aのアミノ酸配列と同一であってもよく、あるいは本発
明のt−PA改変体の特性に影響を与えない範囲で変異
体のアミノ酸であってもよい。Preferred examples of the t-PA variant of the present invention include, for example, 26 amino acid sequences of natural t-PA.
From position 6 to position 306, the corresponding sequence of UK, that is, the amino acid sequence of UK substituted from position 150 to position 188 (SEQ ID NO: 1), from the position 276 of the amino acid sequence of natural t-PA Up to position 321 corresponds to the sequence of UK, that is, from position 159 to 2 of the amino acid sequence of UK.
Those substituted at position 03 (SEQ ID NO: 2), or from the position 266 to 32 of the amino acid sequence of natural t-PA
Examples include a sequence corresponding to the UK up to the 1st position, that is, a sequence in which the amino acid sequence of the UK is substituted from the 150th position to the 203rd position (SEQ ID NO: 3). The t-PA variant of the present invention is substituted with the corresponding amino acid sequence of UK in the substitution region as described above, but the amino acid sequence other than the substitution region is not particularly limited. That is, the natural t-P
It may be the same as the amino acid sequence of A, or may be a variant amino acid as long as it does not affect the properties of the t-PA variant of the present invention.
【0015】本発明のt−PA改変体の調製は、例えば
天然型のt−PAの266位から321位に相当するア
ミノ酸配列の少なくとも一部のアミノ酸残基を、UKの
対応する部分のアミノ酸配列からなるペプチドと置換す
ることによって行うことができる。具体的には、例えば
t−PAの当該領域のアミノ酸配列をコードするcDN
Aを、UKの相当アミノ酸配列をコードするcDNAあ
るいは合成オリゴヌクレオチドと置換し、適当な発現ベ
クターと連結してこれを宿主内に導入し、本発明の最終
目的であるt−PA改変体タンパクを発現・生産させる
ことにより行うことができる。以下、その詳細について
述べる。The t-PA variant of the present invention can be prepared, for example, by replacing at least a part of the amino acid sequence of the amino acid sequence corresponding to positions 266 to 321 of natural t-PA with the amino acid of the corresponding part of UK. This can be done by substituting a peptide consisting of the sequence. Specifically, for example, cDNA encoding the amino acid sequence of the region of t-PA
A is substituted with cDNA or synthetic oligonucleotide encoding the corresponding amino acid sequence of UK, ligated with an appropriate expression vector and introduced into a host, and the t-PA modified protein which is the final object of the present invention is obtained. It can be performed by expressing and producing. The details will be described below.
【0016】本発明のt−PA改変体の製造には、通常
天然型のt−PAをコードするcDNAを用いることが
できる。天然型のt−PAをコードするcDNAは、た
とえばボーズメラノーマ細胞からのクローニングによっ
て、たとえば文献fに記載されているように既に取得さ
れており、従ってそのcDNA配列、アミノ酸配列も知
られている。また、天然型のt−PAを改変すべく例え
ば半減期を長くしたt−PA改変体(文献g,h等)の
cDNA配列、アミノ酸配列も知られており、これらも
用いることができる。For the production of the modified t-PA of the present invention, a cDNA encoding naturally occurring t-PA can be used. The cDNA encoding native t-PA has already been obtained, for example, by cloning from Bose melanoma cells, as described in, for example, document f, and thus its cDNA sequence and amino acid sequence are also known. In addition, cDNA sequences and amino acid sequences of t-PA variants (for example, documents g and h) having a long half-life for altering natural t-PA are also known, and these can also be used.
【0017】プラスミド中にクローニングしたt−PA
cDNAの特定の配列を置換する方法は、既に自由に行
える状況になっており、本発明においても常法によりt
−PAのアミノ酸配列を置換することができる。置換の
方法としては、置換を有するcDNA配列を増幅し、得
られたcDNAフラグメントを天然型のt−PAの相当
配列と置き換える方法が便利である。具体的には、置換
を有するcDNA配列からなるオリゴヌクレオチドと、
増幅に必要な別のオリゴヌクレオチドとをプライマーに
用い、天然型のt−PAのcDNAを鋳型にして上記2
種のプライマーで挟まれた領域を増幅し、得られた増幅
フラグメントを天然型のt−PAの相当配列と置き換え
る方法が便利である。2種のプライマーで挟まれた領域
の増幅方法としては、例えばポリメラーゼ・チェイン・
リアクション(PCR)法が有効に用いられる(文献
j)。即ち、2種の合成オリゴヌクレオチドをプライマ
ーに用い、cDNAを鋳型にしてTaqポリメラーゼに
よるDNAの増幅を行うもので、この操作を行うために
は市販のDNA自動増幅装置が有効に用いられる。な
お、1種類の増幅フラグメントのみで天然型のt−PA
の相当配列との置き換えに都合の良い制限酵素フラグメ
ントとならない場合は、2種類の増幅フラグメントを作
製し、これらをつなぎ合わせることもできる。そのため
には、たとえばヨン及びフリード(Yon及びFrie
d)による遺伝子融合の方法(文献k)を利用すればよ
い。即ち、置換を有する2種の増幅フラグメントを上記
方法により作製した後に、両者を混合して再度PCR反
応を行うと、置換が導入され、かつ天然型のt−PAの
相当配列との置き換えに都合の良い制限酵素サイトを有
するフラグメントを得ることができる。T-PA cloned in a plasmid
The method for substituting a specific sequence of cDNA is already in a freely available state, and in the present invention, t
-The amino acid sequence of PA can be replaced. As a method of substitution, it is convenient to amplify the cDNA sequence having the substitution and replace the obtained cDNA fragment with the corresponding sequence of natural t-PA. Specifically, an oligonucleotide consisting of a cDNA sequence having a substitution,
Another oligonucleotide necessary for amplification is used as a primer, and the natural t-PA cDNA is used as a template to prepare the above-mentioned 2
A convenient method is to amplify the region flanked by seed primers and replace the resulting amplified fragment with the corresponding sequence of native t-PA. As a method for amplifying a region sandwiched by two kinds of primers, for example, polymerase chain
The reaction (PCR) method is effectively used (reference j). That is, two types of synthetic oligonucleotides are used as primers, and cDNA is used as a template to amplify DNA by Taq polymerase. To perform this operation, a commercially available automatic DNA amplification device is effectively used. It should be noted that only one type of amplified fragment is used to produce natural t-PA.
When it is not a restriction enzyme fragment that is convenient for replacement with the corresponding sequence of, the two types of amplification fragments can be prepared and ligated together. To do so, for example, Yon and Fried
The method of gene fusion according to d) (reference k) may be used. That is, when two kinds of amplified fragments having substitutions are prepared by the above method, the two are mixed and the PCR reaction is carried out again, the substitutions are introduced and it is convenient to replace with the corresponding sequence of natural t-PA. A fragment having a good restriction enzyme site can be obtained.
【0018】オリゴヌクレオチドのホスホアミダイト法
による合成は、例えば文献lに示される原理によるアプ
ライドバイオシステムズ社製の381A型DNAシンセ
サイザーを用いて行えばよい。さらに精製は、同社のオ
リゴヌクレオチド精製用OPCカートリッジを用いて行
えばよい。また、目的とする置換、あるいは挿入された
DNA配列を確認するためには、ジデオキシ法(文献
m)の原理を用い、例えばTaqポリメラーゼを利用し
たサイクルシークエンスの手法により行うことができ
る。そのためには、例えばアプライドバイオシステムズ
社製の373A型DNAシークエンサーが有効に用いら
れる。その他、実施例に記載されているような制限酵素
によるDNAの切断、欠失、それらにより生ずるDNA
断片のポリアクリルアミドゲル電気泳動による分離、回
収、あるいは連結等の遺伝子操作は全て公知であり、主
として文献nが参照される。The synthesis of the oligonucleotide by the phosphoamidite method may be carried out using, for example, a 381A type DNA synthesizer manufactured by Applied Biosystems Co., Ltd. according to the principle shown in Reference 1. Further purification may be performed using the OPC cartridge for purifying oligonucleotides manufactured by the same company. In addition, in order to confirm the desired substituted or inserted DNA sequence, the principle of the dideoxy method (Reference m) can be used, for example, a method of cycle sequencing using Taq polymerase. For that purpose, for example, 373A type DNA sequencer manufactured by Applied Biosystems is effectively used. In addition, cleavage and deletion of DNA by restriction enzymes as described in Examples, and DNA generated by them
Genetic manipulations such as separation, collection, and ligation of fragments by polyacrylamide gel electrophoresis are all known, and the literature n is mainly referred to.
【0019】上記の様にして得られたt−PA改変体を
コードするcDNAは、CDM8(ori- )等、周知
の発現ベクターに連結された後、適当な宿主に導入され
ることにより、本発明の最終目的物質であるt−PA改
変体タンパクを発現・生産することができる。宿主とし
ての大腸菌株や動物細胞株は、とくに記載のない限り既
に広く普及しており入手は容易であり、例えば動物細胞
宿主としては、COS−1,CHO細胞が挙げられる。
発現プラスミドを用い適当な宿主を形質転換するには、
電気パルス法(文献o)を用いればよい。形質転換され
た細胞の培養上清は、適当な希釈によりそのまま種々の
活性測定に使用され得る程度のt−PA改変体を含んで
いる。The cDNA encoding the modified t-PA obtained as described above is ligated to a well-known expression vector such as CDM8 (ori − ), and then introduced into an appropriate host to give the cDNA. It is possible to express and produce the t-PA variant protein which is the final target substance of the invention. Escherichia coli strains and animal cell strains as hosts are already widespread and easily available unless otherwise specified, and examples of animal cell hosts include COS-1 and CHO cells.
To transform a suitable host with the expression plasmid,
The electric pulse method (reference o) may be used. The culture supernatant of the transformed cells contains the t-PA variant in such an amount that it can be used as it is for various activity measurements by appropriate dilution.
【0020】この様にして得られた本発明のt−PA改
変体は、高いフィブリン特異性を有するので、血栓溶解
剤として生体内に投与された場合、天然型のt−PAと
比較して全身性の出血傾向という副作用が減少した医薬
組成物の有効成分とすることができる。本発明のt−P
A改変体は、常法により容器に必要量分注し、凍結乾燥
を行うことにより製剤として極めて容易に得ることがで
きる。この凍結乾燥品は、製剤学的に容認されるキャリ
アー物質、例えば生理食塩水に溶解し、静脈内または動
脈または心臓内への注射によって投与される。投与量に
ついては、現在臨床で用いられている天然型のt−PA
の投与量程度でも良いが、本発明のt−PA改変体は副
作用が少ないので該投与量よりも多く使用することもで
きる。投与方法は、持続静注あるいは投与予定量の一部
を最初に静注し残りを持続静注するなどの方法で行われ
る。The thus-obtained t-PA variant of the present invention has a high fibrin specificity, and therefore, when administered in vivo as a thrombolytic agent, it has a higher fibrin specificity than natural t-PA. It can be used as an active ingredient of a pharmaceutical composition having a reduced side effect of systemic bleeding tendency. T-P of the present invention
The modified A can be extremely easily obtained as a preparation by dispensing a required amount in a container by a conventional method and lyophilizing it. This lyophilizate is dissolved in a pharmaceutically acceptable carrier substance, for example saline, and administered by intravenous or intraarterial or intracardiac injection. Regarding the dosage, the natural type of t-PA currently used clinically
However, since the t-PA variant of the present invention has few side effects, it can be used in a larger dose than the above dose. The administration method is continuous infusion, or a part of the planned dose is intravenously first and the rest is continuous intravenous infusion.
【0021】[0021]
【実施例】以下に、本発明の一例として実施例を示す
が、本発明はこれによりなんら限定されるものではな
い。また、以下の実施例1〜3における天然型のt−P
Aの置換領域を図1に示した。 実施例1.pUC−CS6の構築 pCDM8−CS1を用いて、天然型のt−PAの26
6位から306位のアミノ酸配列がUKの150位から
188位の配列(配列番号:1)に置換された配列をコ
ードする約480塩基対のEcoRI断片を保持するサ
ブクローン、pUC−CS6を構築した。pUC−CS
6の構築の概略図を図2に、またその詳細を以下に示
す。なお、pCDM8−CS1は特開平4−14468
2号公報に記載のpCDM8−CSTUと同一のもの
で、天然型のt−PAの276位から306位までのア
ミノ酸配列がUKの159位から188位の配列に置換
された公知のプラスミドである。本発明においてpCD
M8−CSTUをpCDM8−CS1と称して以下のプ
ラスミドの構築に用いた。EXAMPLES Examples will be shown below as examples of the present invention, but the present invention is not limited thereto. In addition, the natural t-P in Examples 1 to 3 below.
The substitution region of A is shown in FIG. Example 1. Construction of pUC-CS6 Using pCDM8-CS1, 26 of native t-PA was constructed.
Construction of pUC-CS6, a subclone having an EcoRI fragment of about 480 base pairs, which encodes a sequence in which the amino acid sequence from 6th position to 306th position is replaced with the sequence from 150th position to 188th position (SEQ ID NO: 1) of UK did. pUC-CS
A schematic diagram of the construction of 6 is shown in FIG. 2, and the details are shown below. Note that pCDM8-CS1 is disclosed in JP-A-4-14468.
This is a known plasmid which is the same as pCDM8-CSTU described in Japanese Patent Publication No. 2) and in which the amino acid sequence from position 276 to position 306 of natural t-PA is replaced with the sequence from position 159 to position 188 of UK. . In the present invention pCD
M8-CSTU was designated as pCDM8-CS1 and used in the construction of the following plasmids.
【0022】まず、天然型のt−PAの266位から2
75位のアミノ酸配列に相当する部分が対応するUKの
アミノ酸配列に置換され、その前後がCS1の塩基配列
と一致するような、2種の相補的なオリゴヌクレオチド
(PCS6M,配列番号:4およびPCS6R,配列番
号:5)を合成した。なお、PCS6MとPCS6Rは
遺伝子の全く相補的な部分には相当しないが、それぞれ
の5’末端側の29塩基で相補的にアニールできるよう
にデザインされている。さらに、PCR反応を用いて目
的の部分を増幅させるために必要なオリゴヌクレオチド
プライマーFR124(配列番号:6)およびFR53
(配列番号:7)も合成した。すべてのオリゴヌクレオ
チドの合成にはアプライドバイオシステムズ社製381
A型DNA合成装置を用い、その精製は同社のOPCカ
ートリッジを用いて行った。図2に模式的に示されるよ
うに、合成されたFR53とPCS6Rをプライマーに
用い、pCDM8−CS1を鋳型として第一段階目のP
CR反応を行い、置換を有するDNAフラグメントFC
S6Aを増幅した。一方、PCS6MとFR124をプ
ライマーに用いて同様にして置換を有するDNAフラグ
メントFCS6Bを増幅した。First, 2 from the 266th position of natural t-PA.
Two complementary oligonucleotides (PCS6M, SEQ ID NO: 4 and PCS6R) in which a portion corresponding to the amino acid sequence at position 75 is replaced with the corresponding amino acid sequence of UK, and the front and rear sides thereof match the base sequence of CS1. , SEQ ID NO: 5) was synthesized. Although PCS6M and PCS6R do not correspond to completely complementary parts of the gene, they are designed so that they can be annealed complementarily at 29 bases on the 5'end side of each. Furthermore, the oligonucleotide primers FR124 (SEQ ID NO: 6) and FR53, which are necessary for amplifying the target portion using the PCR reaction,
(SEQ ID NO: 7) was also synthesized. Applied Biosystems 381 for the synthesis of all oligonucleotides
A type A DNA synthesizer was used, and the purification was performed using the OPC cartridge of the same company. As schematically shown in FIG. 2, the synthesized FR53 and PCS6R were used as primers, and pCDM8-CS1 was used as a template for the first-stage P.
DNA fragment FC having a substitution and having a CR reaction
S6A was amplified. On the other hand, PCS6M and FR124 were used as primers to similarly amplify a DNA fragment FCS6B having a substitution.
【0023】第一段階目のPCR反応の条件は、pCD
M8−CS1を1μg、各プライマーを上記の組み合わ
せでそれぞれ50pmol、dNTPを600μM、P
CR反応緩衝液〔KCl150mM、Tris・HCl
(pH8.5)10mM、MgCl2 2.5mM、ゼラ
チン0.2mg/ml〕、Taqポリメラーゼ2uni
ts(宝酒造株式会社製)を100μlになるように混
合し、95℃1分、57℃1分、70℃1分の反応を1
サイクル行い、続いて94℃30秒、57℃1分、70
℃1分の反応を9サイクル行った。上述の増幅フラグメ
ントFCS6AおよびFCS6Bはそれぞれポリアクリ
ルアミドゲル電気泳動を用いる標準的な手法で分離・精
製したのち、下記の条件で第二段階目のPCR反応に供
した。The conditions for the PCR reaction in the first step are pCD
1 μg of M8-CS1, 50 pmol of each primer in the above combination, 600 μM of dNTP, P
CR reaction buffer [KCl 150 mM, Tris ・ HCl
(PH 8.5) 10 mM, MgCl 2 2.5 mM, gelatin 0.2 mg / ml], Taq polymerase 2 uni
ts (manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.) was mixed so as to have a volume of 100 μl, and 1 reaction at 95 ° C. for 1 minute, 57 ° C. for 1 minute and 70 ° C.
Cycle, followed by 94 ° C for 30 seconds, 57 ° C for 1 minute, 70
The reaction at 1 ° C for 1 minute was performed for 9 cycles. The above-mentioned amplified fragments FCS6A and FCS6B were separated and purified by a standard method using polyacrylamide gel electrophoresis, and then subjected to the second-stage PCR reaction under the following conditions.
【0024】第二段階目のPCR反応の条件は、フラグ
メントFCS6AおよびFCS6Bをそれぞれ300n
g、プライマーFR124およびプライマーFR53を
各々10pmol、dNTPを600μM、先述のPC
R反応緩衝液、Taqポリメラーゼ2unitsを10
0μlになるように混合し、95℃1分、57℃1分、
70℃1分の反応を1サイクル行い、続いて94℃30
秒、57℃1分、70℃1分の反応を9サイクル行っ
た。その結果、約1100塩基対の連結フラグメントF
CS6が生成した。The conditions for the PCR reaction in the second step were as follows: Fragments FCS6A and FCS6B were 300 n each.
g, primer FR124 and primer FR53 at 10 pmol each, dNTP at 600 μM, PC as described above.
R reaction buffer, Taq polymerase 2 units 10
Mix to give 0 μl, 95 ° C for 1 minute, 57 ° C for 1 minute,
One cycle of reaction at 70 ° C for 1 minute followed by 94 ° C for 30 minutes
Second reaction, 57 ° C. for 1 minute, 70 ° C. for 1 minute was performed for 9 cycles. As a result, a ligation fragment F of about 1100 base pairs was obtained.
Generated by CS6.
【0025】このようにして得られた連結フラグメント
FCS6をEcoRIで消化し、これと市販のプラスミ
ドpUC118(宝酒造株式会社製)をEcoRIで消
化したものとをライゲートさせ、この反応液を用いて大
腸菌JM109株のコンピテントセル(東洋紡績株式会
社製)を形質転換させた。得られた形質転換株より既知
の方法によって組み換えプラスミドを抽出した。組み換
えプラスミド中に挿入されたフラグメントの塩基配列の
確認は、ジデオキシ法を用いた塩基配列決定の手法を用
いて行い、これらが天然型のt−PAの266位から3
06位までのアミノ酸配列に相当する部分がUKの対応
するアミノ酸配列(150位〜188位)に置換された
配列をコードしていることを確認した。これらのうちの
1つを選び、pUC−CS6と命名した。The ligated fragment FCS6 thus obtained was digested with EcoRI, and this and the commercially available plasmid pUC118 (Takara Shuzo Co., Ltd.) digested with EcoRI were ligated, and E. coli JM109 was prepared using this reaction solution. The strain competent cells (manufactured by Toyobo Co., Ltd.) were transformed. A recombinant plasmid was extracted from the obtained transformant by a known method. The nucleotide sequence of the fragment inserted into the recombinant plasmid was confirmed by the nucleotide sequence determination method using the dideoxy method, and these were determined from positions 266 to 3 of natural t-PA.
It was confirmed that the portion corresponding to the amino acid sequence up to position 06 encoded a sequence in which the corresponding amino acid sequence of UK (positions 150 to 188) was substituted. One of these was chosen and named pUC-CS6.
【0026】実施例2.pUC−CS7の構築 実施例1と同様の方法で、pCDM8−CS1を利用し
て、天然型のt−PAの276位から321位のアミノ
酸配列がUKの159位から203位の配列(配列番
号:2)に置換された配列をコードする約480塩基対
のEcoRI断片を保持するサブクローン、pUC−C
S7を構築した。pUC−CS7の構築の概略図を図3
に、またその詳細を以下に示す。Example 2. Construction of pUC-CS7 In the same manner as in Example 1, using pCDM8-CS1, the amino acid sequence of natural t-PA at positions 276 to 321 was a sequence from UK at positions 159 to 203 (SEQ ID NO: : PUC-C, a subclone carrying an approximately 480 base pair EcoRI fragment encoding the sequence replaced by
S7 was constructed. Figure 3 shows a schematic diagram of the construction of pUC-CS7.
The details are shown below.
【0027】pUC−CS7構築のために、目的のUK
型への置換を有しているオリゴヌクレオチドを新たに2
種類(PCS7M,配列番号:8およびPCS7R,配
列番号:9)合成した。PCS7MとプライマーFR1
24、PCS7RとプライマーFR53の組み合わせと
する以外は実施例1と同じ条件で第一段階目のPCR反
応に供することで、フラグメントFCS7AおよびFC
S7Bを増幅し、これらをそれぞれポリアクリルアミド
ゲル電気泳動を用いる手法により分離・精製した。この
ようにして得たFCS7AおよびFCS7Bを、FCS
6AおよびFCS6Bに換えて用いることを除いては実
施例1と同条件で第二段階目のPCR反応を行った。そ
の結果、連結フラグメントFCS7が生成された。To construct pUC-CS7, the desired UK
2 new oligonucleotides with substitutions
Kinds (PCS7M, SEQ ID NO: 8 and PCS7R, SEQ ID NO: 9) were synthesized. PCS7M and FR1 primer
24, PCS7R and primer FR53 were used, and the fragments FCS7A and FC were subjected to the first-stage PCR reaction under the same conditions as in Example 1.
S7B was amplified, and they were separated and purified by a method using polyacrylamide gel electrophoresis. The FCS7A and FCS7B thus obtained were
A second-step PCR reaction was performed under the same conditions as in Example 1 except that 6A and FCS6B were used instead. As a result, the ligated fragment FCS7 was generated.
【0028】このようにして得られた連結フラグメント
FCS7をEcoRIで穏やかに部分消化した(この連
結フラグメントがサブクローニング予定領域内部にEc
oRI部位を持つため)。これを実施例1と同様にpU
C118のEcoRI部位に挿入した。プラスミド中に
挿入されたフラグメントの塩基配列の確認は、ジデオキ
シ法を用いた塩基配列決定の手法を用いて行い、これら
のうちの一つが天然型のt−PAの276位から321
位のアミノ酸配列に相当する部分がUKの159位から
203位のアミノ酸配列に置換された配列をコードして
いることを確認した。これをpUC−CS7と命名し
た。The ligation fragment FCS7 thus obtained was gently partially digested with EcoRI (this ligation fragment was inserted into the region intended for subcloning, Ec.
Because it has an oRI site). This is pU as in Example 1.
It was inserted into the EcoRI site of C118. The nucleotide sequence of the fragment inserted into the plasmid was confirmed by the nucleotide sequence determination method using the dideoxy method, and one of these was determined from position 276 to 321 of natural t-PA.
It was confirmed that the part corresponding to the amino acid sequence at position encoded the sequence in which the amino acid sequence at positions 159 to 203 of UK was substituted. This was named pUC-CS7.
【0029】実施例3.pUC−CS8の構築 実施例1に記載のpUC−CS6と、実施例2に記載の
オリゴヌクレオチドPCS7MとPCS7Rを利用し
て、実施例2と同様の方法で、天然型のt−PAの26
6位から321位のアミノ酸配列がUKの150位から
203位の配列(配列番号:3)に置換された配列をコ
ードする約480塩基対のEcoRI断片を保持するサ
ブクローン、pUC−CS8を構築した。pUC−CS
8の構築の概略図を図4に、またその詳細を以下に示
す。Example 3. Construction of pUC-CS8 Using pUC-CS6 described in Example 1 and the oligonucleotides PCS7M and PCS7R described in Example 2 in the same manner as in Example 2, 26 of native t-PA was prepared.
Construction of pUC-CS8, a subclone retaining an EcoRI fragment of about 480 base pairs, which encodes a sequence in which the amino acid sequence from 6th position to 321st position is replaced with the sequence from 150th position to 203rd position (SEQ ID NO: 3) of UK did. pUC-CS
A schematic diagram of the construction of 8 is shown in FIG. 4, and details thereof are shown below.
【0030】第一段階目のPCR反応の際、鋳型となる
DNAとしてpUC−CS6を用い、また使用するプラ
イマーをPCS7RとユニバーサルプライマーM4(配
列番号10:宝酒造株式会社製)、PCS7Mとユニバ
ーサルプライマーRV(配列番号11:宝酒造株式会社
製)の組み合わせとする以外は実施例1と同じ条件でP
CR反応に供することで、フラグメントFCS8Aおよ
びFCS8Bを増幅し、これらをそれぞれポリアクリル
アミドゲル電気泳動を用いる手法により分離・精製し
た。このようにして得たFCS8AおよびFCS8B
を、FCS6AおよびFCS6Bに換えて用い、さらに
プライマーにはM4およびRVを用いることを除いては
実施例1と同条件で第二段階目のPCR反応を行った。
その結果、連結フラグメントFCS8が生成した。In the PCR reaction in the first step, pUC-CS6 was used as the template DNA, and the primers used were PCS7R and universal primer M4 (SEQ ID NO: 10; manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.), PCS7M and universal primer RV. (Sequence No. 11: manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.)
The fragments FCS8A and FCS8B were amplified by being subjected to a CR reaction, and these were separated and purified by a method using polyacrylamide gel electrophoresis. FCS8A and FCS8B thus obtained
Was used in place of FCS6A and FCS6B, and the second-stage PCR reaction was carried out under the same conditions as in Example 1 except that M4 and RV were used as primers.
As a result, the ligated fragment FCS8 was generated.
【0031】このようにして得られた連結フラグメント
FCS8をEcoRIで消化した。これを実施例1と同
様にpUC118のEcoRI部位に挿入した。プラス
ミド中に挿入されたフラグメントの塩基配列の確認は、
ジデオキシ法を用いた塩基配列決定の手法を用いて行
い、これらが天然型のt−PAの266位から321位
のアミノ酸配列に相当する部分がUKの150位から2
03位のアミノ酸配列に置換された配列をコードしてい
ることを確認した。これらのうちの1つを選び、pUC
−CS8と命名した。The ligated fragment FCS8 thus obtained was digested with EcoRI. This was inserted into the EcoRI site of pUC118 as in Example 1. Confirmation of the nucleotide sequence of the fragment inserted into the plasmid is
The nucleotide sequence determination method using the dideoxy method was used, and the portion corresponding to the amino acid sequence from the 266th position to the 321st position of natural t-PA was from the 150th position to the 2nd position of UK.
It was confirmed that it encodes a sequence substituted with the amino acid sequence at position 03. Choose one of these and select pUC
-Named CS8.
【0032】実施例4.UK型置換領域を含むt−PA
をコードする発現プラスミドpCDM8−CS6、pC
DM8−CS7、およびpCDM8−CS8の構築 各発現プラスミドpCDM8−CS6、pCDM8−C
S7、およびpCDM8−CS8の構築の概念を代表す
るものとしてpCDM8−CS8の構築の概念図を図5
に示す。まず、t−PA遺伝子中のEcoRIフラグメ
ントを欠くプラスミドpCDM8−ΔEE(文献p)を
EcoRIで消化し、5’末端を脱リン酸化した。一
方、前記プラスミドpUC−CS6あるいはpUC−C
S8をそれぞれEcoRIで消化し、またはpUC−C
S7をEcoRIで部分消化し、その後置換領域をコー
ドする遺伝子を含む約480塩基対のEcoRI断片を
ポリアクリルアミドゲル電気泳動にて精製・分離した。
プラスミドpCDM8−ΔEEのEcoRI消化・脱リ
ン酸化物と、pUC−CS6、pUC−CS7、あるい
はpUC−CS8より得られたEcoRI断片とをライ
ゲートさせ、この反応液を用いて大腸菌MC1061/
p3株を形質転換させた。得られた形質転換株より既知
の方法によって組み換えプラスミドを抽出した。組み換
えプラスミド中に挿入されたEcoRI断片の方向性を
制限酵素消化により検討することによって、UK型置換
領域を含むt−PAをコードする発現プラスミドpCD
M8−CS6、pCDM8−CS7、およびpCDM8
−CS8を各々選択した。Example 4. T-PA containing UK type substitution region
Expression plasmids pCDM8-CS6, pC
Construction of DM8-CS7 and pCDM8-CS8 Expression plasmids pCDM8-CS6, pCDM8-C
FIG. 5 shows a conceptual diagram of the construction of pCDM8-CS8 as a representative of the concept of the construction of S7 and pCDM8-CS8.
Shown in. First, the plasmid pCDM8-ΔEE (Reference p) lacking the EcoRI fragment in the t-PA gene was digested with EcoRI and the 5'end was dephosphorylated. On the other hand, the plasmid pUC-CS6 or pUC-C
S8 was digested with EcoRI or pUC-C, respectively.
S7 was partially digested with EcoRI, and then an EcoRI fragment of about 480 base pairs containing the gene encoding the substitution region was purified and separated by polyacrylamide gel electrophoresis.
The EcoRI digestion and dephosphorylation of the plasmid pCDM8-ΔEE was ligated with the EcoRI fragment obtained from pUC-CS6, pUC-CS7, or pUC-CS8, and E. coli MC1061 /
The p3 strain was transformed. A recombinant plasmid was extracted from the obtained transformant by a known method. An expression plasmid pCD encoding t-PA containing a UK type substitution region was obtained by examining the orientation of the EcoRI fragment inserted in the recombinant plasmid by restriction enzyme digestion.
M8-CS6, pCDM8-CS7, and pCDM8
-CS8 was selected for each.
【0033】これら3種のプラスミドは、pCDM8−
CS6においては天然型のt−PAの266位〜306
位のアミノ酸が、pCDM8−CS7においては276
位〜321位のアミノ酸が、pCDM8−CS8におい
ては266位〜321位のアミノ酸がそれぞれ対応する
UKのアミノ酸配列(UKの150位〜188位、15
9位〜203位、150位〜203位)と実質的に置換
されている以外はt−PA構造遺伝子の全領域を含んで
いる。These three plasmids are pCDM8-
In CS6, natural t-PA positions 266 to 306
The amino acid at position 276 in pCDM8-CS7
Amino acids at positions 321 to 321 correspond to the amino acids at positions 266 to 321 in pCDM8-CS8, respectively (UK positions 150 to 188, 15
It contains the entire region of the t-PA structural gene except that it is substantially replaced with the 9th to 203rd positions and the 150th to 203rd positions).
【0034】実施例5.本発明のt−PA改変体のCO
S−1細胞内での発現及び分泌 pCDM8−CS6、pCDM8−CS7、及びpCD
M8−CS8を用いて既述の電気パルス法によりCOS
−1細胞を形質転換した。リジンセファロースクロマト
処理した牛胎児血清10%およびアプロチニン10μg
/mlを含有するDMEM培地で24時間培養後、培地
を無血清かつアプロチニン無含有DMEM培地に交換
し、さらに96時間培養を継続した。培養液を遠心後そ
の上清を回収し、これに1%牛血漿アルブミン(BS
A)含有DMEM培地を1/9量添加し、凍結保存し
た。この凍結保存上清を改変体試料(CS6、CS7、
CS8)と称し、以後の評価に用いた。尚、コントロー
ルとして天然型のt−PAを発現するpCDM8−00
0(文献q)を用いて、前記と同様の方法により得られ
た凍結保存上清を以後の評価に用いた(天然型)。Example 5. CO of the t-PA variant of the present invention
Expression and secretion in S-1 cells pCDM8-CS6, pCDM8-CS7, and pCD
COS by the above-mentioned electric pulse method using M8-CS8
-1 cells were transformed. 10% fetal bovine serum and 10 μg aprotinin after lysine sepharose chromatography
After culturing in DMEM medium containing 1 / ml for 24 hours, the medium was replaced with serum-free and aprotinin-free DMEM medium, and the culture was continued for further 96 hours. After centrifuging the culture solution, the supernatant was collected, and 1% bovine plasma albumin (BS
The AMEM-containing DMEM medium was added in an amount of 1/9 and stored frozen. This cryopreserved supernatant was used as a modified sample (CS6, CS7,
CS8) and used for the subsequent evaluation. As a control, pCDM8-00 expressing natural t-PA
The cryopreserved supernatant obtained by the same method as described above using 0 (Reference q) was used for the subsequent evaluation (natural type).
【0035】実施例6.蛋白量の定量 前記の各培養上清中のt−PA試料の蛋白量は、市販の
キット(バイオプール社製)を用いた酵素免疫測定法
(ELISA)により測定された。Example 6. Quantification of protein amount The protein amount of the t-PA sample in each culture supernatant was measured by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) using a commercially available kit (manufactured by Biopool).
【0036】実施例7.フィブリン特異性の評価 発色性合成基質S−2251を用いるt−PAのプラス
ミノーゲン活性化活性測定系に種々のフィブリンコファ
クターを添加し、フィブリン特異性の評価を行った。方
法は文献eに示される方法に準じて行った。 1)フィブリン系 まず、96穴プレートのウェル中に60国際単位/mlの
トロンビン(0.01% Tween 80 含有PBS)10μl を
添加した。次に0.01% Tween 80 含有PBSで200ng
/mlに希釈された各改変体試料(天然型、CS6、CS
7、CS8)20μl を添加し、さらに反応混合液〔プ
ラスミノーゲン135nM、フィブリノーゲン 0.8μM、
S−2251 378μM(0.09%(v/v) Tween 80及び
4.4mg/mlゼラチン含有0.13Mトリス塩酸 pH
7.8溶液)〕200μl を添加した。37℃でインキ
ュベートを開始後、プレートリーダーを用いて405nm
における吸光度(OD405 )を経時的に測定した。同時
にフィブリンによる濁度の影響を補正するため、490
nmにおける吸光度(OD490 )を測定し、各時間でその
OD490 値をOD405 から差し引いた。スタンダードと
して種々の濃度に希釈した天然型のt−PAを同様の方
法で測定し、濃度に対する一定時間後の吸光度(OD
405 −OD490 )値をプロットした検量線を作製し、こ
の検量線をもとに天然型のt−PAに対する各t−PA
改変体の相対活性を決定した。Example 7. Evaluation of fibrin specificity Various fibrin cofactors were added to the plasminogen activating activity measuring system of t-PA using the chromogenic synthetic substrate S-2251 to evaluate the fibrin specificity. The method was performed according to the method described in Reference e. 1) Fibrin system First, 10 μl of 60 international units / ml thrombin (PBS containing 0.01% Tween 80) was added to the wells of a 96-well plate. Next, 200ng with PBS containing 0.01% Tween 80
Each variant sample (natural type, CS6, CS
7, CS8) 20 μl was added, and the reaction mixture [plasminogen 135 nM, fibrinogen 0.8 μM,
S-2251 378 μM (0.09% (v / v) Tween 80 and 4.4 mg / ml gelatin-containing 0.13 M Tris-HCl pH
7.8 solution)] 200 μl was added. After incubating at 37 ℃, 405nm using a plate reader.
Absorbance (OD 405 ) was measured with time. At the same time, to correct the effect of turbidity due to fibrin, 490
Absorbance at nm (OD 490 ) was measured and at each time the OD 490 value was subtracted from OD 405 . As a standard, natural t-PA diluted to various concentrations was measured by the same method, and the absorbance (OD) after a certain period of time with respect to the concentration was measured.
405 -OD 490) value to produce a plotted calibration curve, the t-PA based on the calibration curve for the t-PA native
The relative activity of the variants was determined.
【0037】2)フィブリノーゲン系 フィブリン系と同様に行った。ただし、トロンビンの代
わりに0.01% Tween 80 含有PBSを用いた。 3)フィブリノーゲン臭化シアン−プラスミン分解物添
加系 フィブリン系と同様に行った。ただし、フィブリノーゲ
ンおよびトロンビンは添加せず、代わりに反応混合液中
に0.8μMのフィブリノーゲン臭化シアン−プラスミ
ン分解物(文献rに従って作成したもの)を添加した。 4)デサフィブ−X添加系 フィブリン系と同様に行った。ただし、フィブリノーゲ
ンおよびトロンビンは添加せず、代わりに反応混合液中
に0.073μMのデサフィブ−X(バイオプール社
製)を添加した。2) Fibrinogen system The same procedure as for the fibrin system was carried out. However, PBS containing 0.01% Tween 80 was used instead of thrombin. 3) Fibrinogen cyanogen bromide-plasmin degradation product addition system The procedure was the same as for the fibrin system. However, fibrinogen and thrombin were not added, and instead 0.8 μM of a fibrinogen cyanogen bromine bromide decomposition product (made according to literature r) was added to the reaction mixture. 4) Desafib-X addition system It carried out like fibrin system. However, fibrinogen and thrombin were not added, and 0.073 μM Desafib-X (manufactured by BioPool) was added to the reaction mixture instead.
【0038】表1に各改変体試料(CS6、CS7、C
S8)の天然型のt−PAに対する相対活性を示す。
尚、フィブリン系およびフィブリノーゲン臭化シアン−
プラスミン分解物添加系においては反応30分後、デサ
フィブ−X添加系においては反応1時間後、フィブリノ
ーゲン系においては反応2時間後の吸光度(OD405 −
OD490 )を評価に用いた。得られた吸光度に対応する
天然型t−PAの濃度を前記検量線より求めた。フィブ
リン特異性は、「フィブリン系における活性」/「フィ
ブリノーゲン系における活性」の比で表した。また、表
中のスティミュレーターの表示においては、Fgはフィ
ブリノーゲン系、FFはフィブリノーゲン臭化シアン−
プラスミン分解物添加系、desaFはデサフィブ−X
添加系、Fnはフィブリン系を指す。また、Fn/Fg
は「フィブリン系における活性」/「フィブリノーゲン
系における活性」の比である。なお、それぞれの添加系
(または系)での数値は、左側が100ng/ml、右
側が200ng/mlに希釈した試料を使用した際の数
値である。Table 1 shows each modified sample (CS6, CS7, C
The relative activity of S8) against natural t-PA is shown.
In addition, fibrin-based and fibrinogen cyanogen bromide-
After 30 minutes the reaction in plasmin degradation product addition system, the reaction after 1 hour at Desafibu -X addition system, absorbance after 2 hours in fibrinogen system (OD 405 -
OD 490 ) was used for evaluation. The concentration of natural t-PA corresponding to the obtained absorbance was determined from the calibration curve. The fibrin specificity was expressed as a ratio of "activity in fibrin system" / "activity in fibrinogen system". Further, in the stimulator display in the table, Fg is a fibrinogen system, FF is a fibrinogen cyanogen bromide-
Plasmin degradation product addition system, desaF is desafib-X
Addition system, Fn refers to fibrin system. Also, Fn / Fg
Is the ratio of "activity in fibrin system" / "activity in fibrinogen system". In addition, the numerical value in each addition system (or system) is a numerical value when a sample diluted to 100 ng / ml on the left side and 200 ng / ml is used on the right side.
【0039】[0039]
【表1】 [Table 1]
【0040】表1より、本発明のt−PA改変体は、天
然型のt−PAと比較してフィブリノーゲン系、フィブ
リノーゲン臭化シアン−プラスミン分解物添加系および
デサフィブ−X添加系ではプラスミノーゲン活性化活性
が非常に低いが、フィブリン系では天然型のt−PAよ
り高い活性を有しており、従って天然型のt−PAより
高いフィブリン特異性を有していることが明らかとなっ
た。From Table 1, the modified t-PA of the present invention shows that the fibrinogen system, the fibrinogen cyanogen bromide-plasmin degradation product-added system and the desafib-X-added system showed plasminogen as compared with the native t-PA. Although the activating activity is very low, it was revealed that the fibrin system has higher activity than the native t-PA, and thus has higher fibrin specificity than the native t-PA. .
【0041】引用文献 a)欧州特許出願公開 No.0041766 A2 b)The TIMI study group : N. Engl. J. Med., 320,
618, 1989. c)特開昭 62-24 号 d)特開昭 62-253380 号 e)国際公開 No.9002798 f)Pennica et al. : Nature, 301, 214, 1983. g)特開昭 63-501335 号 h)S. Yoshitake et al. : Thromb. Haemostasis, 6
2, 542, 1982. i)Holmes et al. :BIO/TECHNOLOGY,3,923,1985 j)H. A. Erlich et al. : PCR technology, 1990. k)J. Yon et al. : Nuc. Acid Res., 17, 4895, 198
9. l)S. L. Beaucage et al. : Tetrahedron Letters, 2
2, 1859, 1981. m)F. Sanger et al. : Proc. Natl. Acad. Sci. USA,
74, 5463, 1977. n)T. Maniatis et al. : Molecular Cloning, A Labo
ratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory. 198
2. o)高山伸一郎、細胞工学 6, 771, 1987. p)特願平 4-125595号 q)特願平 2-87005 号 r)Blombach et al. : Nature, 218, 130, 1968.References a) European Patent Application Publication No. 0041766 A2 b) The TIMI study group: N. Engl. J. Med., 320,
618, 1989. c) JP 62-24 d) JP 62-253380 e) International publication No. 9002798 f) Pennica et al .: Nature, 301, 214, 1983. g) JP 63 -501335 h) S. Yoshitake et al .: Thromb. Haemostasis, 6
2, 542, 1982. i) Holmes et al .: BIO / TECHNOLOGY, 3,923,1985 j) HA Erlich et al .: PCR technology, 1990. k) J. Yon et al .: Nuc. Acid Res., 17, 4895, 198
9. l) SL Beaucage et al .: Tetrahedron Letters, 2
2, 1859, 1981. m) F. Sanger et al .: Proc. Natl. Acad. Sci. USA,
74, 5463, 1977. n) T. Maniatis et al .: Molecular Cloning, A Labo
ratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory. 198
2. o) Shinichiro Takayama, Cell Engineering 6, 771, 1987. p) Japanese Patent Application No. 4-125595 q) Japanese Patent Application No. 2-87005 r) Blombach et al .: Nature, 218, 130, 1968.
【0042】[0042]
【発明の効果】本発明のt−PA改変体は、フィブリン
特異性が上昇した新規なt−PA改変体であり、その結
果として全身性の出血傾向というt−PAの副作用を減
じた血栓症治療剤としての利用が期待される。INDUSTRIAL APPLICABILITY The t-PA variant of the present invention is a novel t-PA variant having an increased fibrin specificity, and as a result, thrombosis which reduces the side effect of t-PA such as systemic bleeding tendency. It is expected to be used as a therapeutic agent.
【0043】[0043]
配列番号:1 配列の長さ:39 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Gln Lys Thr Leu Arg Pro Arg Phe Lys Ile Ile Gly Gly Glu Phe Thr 1 5 10 15 Thr Ile Glu Asn Gln Pro Trp Phe Ala Ala Ile Tyr Arg Arg His Arg 20 25 30 Gly Gly Ser Val Thr Tyr Val 35 SEQ ID NO: 1 Sequence length: 39 Sequence type: Amino acid Topology: Linear Sequence type: Peptide Sequence Gln Lys Thr Leu Arg Pro Arg Phe Lys Ile Ile Gly Gly Glu Phe Thr 1 5 10 15 Thr Ile Glu Asn Gln Pro Trp Phe Ala Ala Ile Tyr Arg Arg His Arg 20 25 30 Gly Gly Ser Val Thr Tyr Val 35
【0044】配列番号:2 配列の長さ:45 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Ile Ile Gly Gly Glu Phe Thr Thr Ile Glu Asn Gln Pro Trp Phe Ala 1 5 10 15 Ala Ile Tyr Arg Arg His Arg Gly Gly Ser Val Thr Tyr Val Cys Gly 20 25 30 Gly Ser Leu Ile Ser Pro Cys Trp Val Ile Ser Ala Thr 35 40 45SEQ ID NO: 2 Sequence length: 45 Sequence type: Amino acid Topology: Linear Sequence type: Peptide sequence Ile Ile Gly Gly Glu Phe Thr Thr Ile Glu Asn Gln Pro Trp Phe Ala 1 5 10 15 Ala Ile Tyr Arg Arg His Arg Gly Gly Ser Val Thr Tyr Val Cys Gly 20 25 30 Gly Ser Leu Ile Ser Pro Cys Trp Val Ile Ser Ala Thr 35 40 45
【0045】配列番号:3 配列の長さ:54 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Gln Lys Thr Leu Arg Pro Arg Phe Lys Ile Ile Gly Gly Glu Phe Thr 1 5 10 15 Thr Ile Glu Asn Gln Pro Trp Phe Ala Ala Ile Tyr Arg Arg His Arg 20 25 30 Gly Gly Ser Val Thr Tyr Val Cys Gly Gly Ser Leu Ile Ser Pro Cys 35 40 45 Trp Val Ile Ser Ala Thr 50SEQ ID NO: 3 Sequence length: 54 Sequence type: Amino acid Topology: Linear Sequence type: Peptide sequence Gln Lys Thr Leu Arg Pro Arg Phe Lys Ile Ile Gly Gly Glu Phe Thr 1 5 10 15 Thr Ile Glu Asn Gln Pro Trp Phe Ala Ala Ile Tyr Arg Arg His Arg 20 25 30 Gly Gly Ser Val Thr Tyr Val Cys Gly Gly Ser Leu Ile Ser Pro Cys 35 40 45 Trp Val Ile Ser Ala Thr 50
【0046】配列番号:4 配列の長さ:65 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA アンチセンス:No 配列 CAG AAA ACC CTG CGG CCT CGG TTT AAA ATT ATT GGG GGA GAG TTC ACC 48 ACC ATC GAG AAC CAG CC 65SEQ ID NO: 4 Sequence length: 65 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear Sequence type: Other nucleic acid Synthetic DNA Antisense: No sequence CAG AAA ACC CTG CGG CCT CGG TTT AAA ATT ATT GGG GGA GAG TTC ACC 48 ACC ATC GAG AAC CAG CC 65
【0047】配列番号:5 配列の長さ:47 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA アンチセンス:Yes 配列 ATTTTAAACC GAGGCCGCAG GGTTTTCTGG CCGCAGGTGG AGCAGGA 47SEQ ID NO: 5 Sequence length: 47 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear Sequence type: Other nucleic acid Synthetic DNA Antisense: Yes sequence ATTTTAAACC GAGGCCGCAG GGTTTTCTGG CCGCAGGTGG AGCAGGA 47
【0048】配列番号:6 配列の長さ:26 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA アンチセンス:Yes 配列 TTGTCACGAA TCCAGTCTAG GTAGTT 26SEQ ID NO: 6 Sequence length: 26 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear Sequence type: Other nucleic acid Synthetic DNA Antisense: Yes sequence TTGTCACGAA TCCAGTCTAG GTAGTT 26
【0049】配列番号:7 配列の長さ:26 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA アンチセンス:No 配列 GC TAC GTC TTT AAG GCG GGG AAG TAC 26SEQ ID NO: 7 Sequence length: 26 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear Sequence type: Other nucleic acid Synthetic DNA Antisense: No sequence GC TAC GTC TTT AAG GCG GGG AAG TAC 26
【0050】配列番号:8 配列の長さ:50 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA アンチセンス:No 配列 CTC ATC AGC CCT TGC TGG GTG ATT TCT GCC ACC CAC TGC TTC CAG GAG 48 AG 50SEQ ID NO: 8 Sequence length: 50 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear Sequence type: Other nucleic acid Synthetic DNA Antisense: No sequence CTC ATC AGC CCT TGC TGG GTG ATT TCT GCC ACC CAC TGC TTC CAG GAG 48 AG 50
【0051】配列番号:9 配列の長さ:50 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA アンチセンス:Yes 配列 GCAGAAATCA CCCAGCAAGG GCTGATGAGA GAGCCTCCAC ACACGTAGGT 50SEQ ID NO: 9 Sequence length: 50 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: Single strand Topology: Linear Sequence type: Other nucleic acid Synthetic DNA Antisense: Yes sequence GCAGAAATCA CCCAGCAAGG GCTGATGAGA GAGCCTCCAC ACACGTAGGT 50
【0052】配列番号:10 配列の長さ:17 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA アンチセンス:Yes 配列 GTTTTCCCAG TCACGAC 17SEQ ID NO: 10 Sequence length: 17 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: 1 strand Topology: Linear Sequence type: Other nucleic acid Synthetic DNA Antisense: Yes sequence GTTTTCCCAG TCACGAC 17
【0053】配列番号:11 配列の長さ:17 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:他の核酸 合成DNA アンチセンス:No 配列 CAG GAA ACA GCT ATG AC 17SEQ ID NO: 11 Sequence length: 17 Sequence type: Nucleic acid Number of strands: 1 Strand Topology: Linear Sequence type: Other nucleic acid Synthetic DNA Antisense: No sequence CAG GAA ACA GCT ATG AC 17
【図1】図1は、本発明の実施例1〜3における天然型
のt−PAの置換領域を示す概略配列である。FIG. 1 is a schematic sequence showing a substitution region of natural t-PA in Examples 1 to 3 of the present invention.
【図2】図2は、プラスミドpUC−CS6の組み立て
模式図を示す。FIG. 2 shows a schematic diagram of the assembly of plasmid pUC-CS6.
【図3】図3は、プラスミドpUC−CS7の組み立て
模式図を示す。FIG. 3 shows a schematic diagram of the assembly of plasmid pUC-CS7.
【図4】図4は、プラスミドpUC−CS8の組み立て
模式図を示す。FIG. 4 shows a schematic diagram of the assembly of plasmid pUC-CS8.
【図5】図5は、UK型置換領域を含むt−PAをコー
ドする発現プラスミドpCDM8−CS8の構築の概念
図を示す。FIG. 5 shows a conceptual diagram of the construction of an expression plasmid pCDM8-CS8 encoding t-PA containing a UK type substitution region.
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12N 15/58 ZNA //(C12N 9/64 C12R 1:91) ─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (51) Int.Cl. 5 Identification code Office reference number FI Technical display location C12N 15/58 ZNA // (C12N 9/64 C12R 1:91)
Claims (8)
下、t−PAと略す)のアミノ酸配列中に尿プラスミノ
ーゲン活性化因子(以下、UKと略す)のアミノ酸配列
で置換された置換領域を有するt−PA改変体におい
て、天然型のt−PAのアミノ酸配列の276位から3
06位に相当するアミノ酸配列の少なくとも一部が、下
記に示すような対応関係を有するUKのアミノ酸配列に
置換されており、さらにその置換領域が天然型のt−P
Aの266位から275位及び/または307位から3
21位に相当するアミノ酸配列の少なくとも一部にまで
及んだ置換領域を有することを特徴とするt−PA改変
体。 【化1】 (なお、アミノ酸配列において対応関係とは、天然型の
t−PAの266位がUKの150位に対応し、以下順
次上段の配列が下段の配列に対応する関係を指す。ま
た、上記の配列表示における−は、UKのアミノ酸配列
への置換においてアミノ酸が欠失した状態で対応するも
のとする。)1. A substitution region obtained by substituting the amino acid sequence of urinary plasminogen activator (hereinafter abbreviated as UK) in the amino acid sequence of tissue plasminogen activator (hereinafter abbreviated as t-PA). In the modified t-PA having 3 to 3 from the 276th position of the amino acid sequence of natural t-PA.
At least a part of the amino acid sequence corresponding to position 06 has been substituted with the amino acid sequence of UK having the following corresponding relationship, and the substitution region is a natural t-P
A from 266th to 275th and / or 307th to 3rd
A modified t-PA having a substitution region extending to at least a part of the amino acid sequence corresponding to position 21. [Chemical 1] (Note that in the amino acid sequence, the correspondence relationship refers to the relationship in which the 266th position of natural t-PA corresponds to the 150th position of UK, and hereinafter the upper sequence corresponds to the lower sequence. The-in the notation corresponds to the state in which the amino acid was deleted in the substitution of UK with the amino acid sequence.)
の276位から306位を含む、請求項1記載のt−P
A改変体。2. A t-PA in which the substitution region is at least a natural type.
2. The t-P according to claim 1, comprising positions 276 to 306.
A variant.
から306位であり、置換後の該置換領域がUKの15
0位から188位までの配列である、請求項1記載のt
−PA改変体。3. The substitution region is from the 266th position to the 306th position of natural t-PA, and the substitution region after substitution is 15 of UK.
The t according to claim 1, which is a sequence from position 0 to position 188.
-PA variants.
から321位であり、置換後の該置換領域がUKの15
9位から203位までの配列である、請求項1記載のt
−PA改変体。4. The substitution region is from the 276th position to the 321st position of natural t-PA, and the substitution region after replacement is 15 of UK.
The t according to claim 1, which is a sequence from the 9th position to the 203rd position.
-PA variants.
から321位であり、置換後の該置換領域がUKの15
0位から203位までの配列である、請求項1記載のt
−PA改変体。5. The substitution region is at positions 266 to 321 of natural t-PA, and the substitution region after substitution is 15 of UK.
The t according to claim 1, which is a sequence from position 0 to position 203.
-PA variants.
核性生物細胞中において、請求項1〜5いずれかに記載
のt−PA改変体をコードしているDNAを発現させ得
る組換え発現ベクター。6. Recombinant expression capable of expressing the DNA encoding the t-PA variant according to claim 1 in transformed prokaryotic cells or eukaryotic cells. vector.
質転換された原核性生物細胞または真核性生物細胞。7. A prokaryotic or eukaryotic cell transformed with the recombinant expression vector according to claim 6.
改変体を有効成分として含有することを特徴とする血栓
症治療剤。8. The t-PA according to claim 1.
A therapeutic agent for thrombosis, which comprises a variant as an active ingredient.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP5141351A JPH06327473A (en) | 1993-05-19 | 1993-05-19 | New modified t-pa substance |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP5141351A JPH06327473A (en) | 1993-05-19 | 1993-05-19 | New modified t-pa substance |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH06327473A true JPH06327473A (en) | 1994-11-29 |
Family
ID=15289956
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP5141351A Pending JPH06327473A (en) | 1993-05-19 | 1993-05-19 | New modified t-pa substance |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH06327473A (en) |
-
1993
- 1993-05-19 JP JP5141351A patent/JPH06327473A/en active Pending
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