JPH06237788A - Production of acetylene alcohol compounds - Google Patents
Production of acetylene alcohol compoundsInfo
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- JPH06237788A JPH06237788A JP2656993A JP2656993A JPH06237788A JP H06237788 A JPH06237788 A JP H06237788A JP 2656993 A JP2656993 A JP 2656993A JP 2656993 A JP2656993 A JP 2656993A JP H06237788 A JPH06237788 A JP H06237788A
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Abstract
Description
【0001】[0001]
【産業上の利用分野】本発明は、医薬、農薬および液晶
の中間体として有用な化合物を得るためのアセチレンア
ルコール類の製造法に関する。TECHNICAL FIELD The present invention relates to a process for producing acetylene alcohols to obtain compounds useful as intermediates for pharmaceuticals, agricultural chemicals and liquid crystals.
【0002】[0002]
【従来の技術】本発明に関わる光学活性アセチレンアル
コール類の合成方法としては、特開平3ー201996
号公報に、以下のような方法が記載されている。 上記従来の方法は、アルコール─有機溶媒で加水分解酵
素を反応させ加アルコール分解するものであるが、得ら
れるエステルに比較的高い光学純度が達成されているも
のの、加水分解されたアルコールに関しては光学純度な
どの記載はまったくない。該方法によれば、比較的光学
純度の高いアルコールを得るために当該エステルをさら
に化学的に加水分解している。一般的に加水分解残であ
るエステル体が高い光学活性純度を持つためには、加水
分解率を高くする必要があり、その結果アルコールの光
学純度は不十分なものになる。2. Description of the Related Art As a method for synthesizing optically active acetylene alcohols according to the present invention, Japanese Patent Laid-Open No. 3-201996
The following method is described in the publication. The above-mentioned conventional method is one in which a hydrolase is reacted with an alcohol-organic solvent to carry out alcoholysis, and although a relatively high optical purity has been achieved in the obtained ester, the hydrolyzed alcohol has an optical purity. There is no description of purity etc. According to this method, the ester is further chemically hydrolyzed to obtain an alcohol having a relatively high optical purity. In general, in order for the ester product which is a hydrolysis residue to have a high optical activity purity, it is necessary to increase the hydrolysis rate, and as a result, the optical purity of the alcohol becomes insufficient.
【0003】[0003]
【発明が解決しようとする課題】このようなことから、
本発明者らはアセチレンアルコール類のいずれの対掌体
も光学純度よく、しかも収率よく得る方法について鋭意
検討の結果、ラセミアセチレンアルコール類をエステラ
ーゼを用い、不飽和アルコールのカルボン酸エステルを
アシル化剤として反応させると上記式で示される光学活
性アセチレンアルコール類の対掌体と、さらに光学活性
アセチレンアルコールエステル誘導体(このエステル誘
導体も対掌体)が得られ、このエステル誘導体はエステ
ラーゼを用いて不斉水解すれば上記式と同じ立体配位で
しかもより光学純度の高いアセチレンアルコール類が収
率よく得られることを見出し本発明を完成した。DISCLOSURE OF THE INVENTION Problems to be Solved by the Invention
The present inventors have earnestly studied how to obtain any enantiomer of acetylene alcohol with good optical purity and high yield, and as a result, racemic acetylene alcohols were esterified with carboxylic acid ester of unsaturated alcohol to be acylated. When reacted as an agent, an enantiomer of the optically active acetylene alcohol represented by the above formula and an optically active acetylene alcohol ester derivative (this ester derivative is also an enantiomer) are obtained. The present invention has been completed by finding that acetylene alcohols having the same configuration as the above formula and higher optical purity can be obtained in good yield if hydrolyzed.
【0004】[0004]
【課題を解決するための手段】即ち、本発明は一般式
〔1〕 (式中、nは0〜6の整数を表す。)で示されるアセチ
レンアルコール類と、アシル化剤として不飽和アルコー
ルのカルボン酸エステルとを、エステラーゼの存在化に
反応させ、一般式〔2〕 (式中、nは前記と同じ意味を表し、*印は不斉炭素で
あることを表す)で示される光学活性アセチレンアルコ
ール類および一般式〔3〕 (式中、nおよび*印は前記と同じ意味を表し、R1 は
炭素数1〜5のハロゲン化されていてもよいアルキル基
を表す。)で示される光学活性アセチレンアルコールエ
ステル誘導体の混合物を得、それらを単離することを特
徴とする一般式〔2〕で示される光学活性アセチレンア
ルコール類および一般式〔3〕で示される光学活性アセ
チレンアルコールエステル誘導体の製造法および該光学
活性アセチレンアルコールエステル誘導体をエステラー
ゼを用いて不斉水解させ前記一般式[2]で示される光
学活性アセチレンアルコール類の対掌体を得る方法に関
するものである。That is, the present invention has the general formula [1] (In the formula, n represents an integer of 0 to 6) and an carboxylic acid ester of an unsaturated alcohol as an acylating agent are reacted in the presence of esterase to give a compound represented by the general formula [2]. (In the formula, n represents the same meaning as described above, and * represents an asymmetric carbon), and an optically active acetylene alcohol represented by the general formula [3] (Wherein n and * have the same meanings as described above, and R 1 represents an optionally halogenated alkyl group having 1 to 5 carbon atoms), and a mixture of the optically active acetylene alcohol ester derivative. And a method for producing the optically active acetylene alcohol represented by the general formula [2] and the optically active acetylene alcohol ester derivative represented by the general formula [3], characterized by isolating them, and the optically active acetylene alcohol ester. The present invention relates to a method for asymmetrically hydrolyzing a derivative using esterase to obtain an enantiomer of the optically active acetylene alcohol represented by the general formula [2].
【0005】以下、本発明を詳細に説明する。本発明に
おいて、原料である一般式〔1〕で示されるアセチレン
アルコール類としては、例えば3−ブチン−2−オー
ル、4−ペンチン−2−オール、5−ヘキシン−2−オ
ール、6−ヘプチン−2−オール、7ーオクチンー2ー
オール、8ーノニンー2ーオール、9ーデシンー2ーオ
ールを例示することができる。The present invention will be described in detail below. In the present invention, examples of the acetylene alcohol represented by the general formula [1] that is a raw material include 3-butyn-2-ol, 4-pentyn-2-ol, 5-hexyn-2-ol, 6-heptin- 2-ol, 7-octin-2-ol, 8-nonin-2-ol, 9-decin-2-ol can be exemplified.
【0006】使用するアシル化剤としては、例えばビニ
ルアセテート、ビニルプロピオネート、、ビニルバレレ
ート、イソプロペニルアセテート、イソプロペニルプロ
ピオネート、イソプロペニルバレレート等の不飽和アル
コールのカルボン酸エステルを挙げることができ、ある
いはそのハロゲン化アシルエステルを挙げることができ
る。Examples of the acylating agent to be used include carboxylate esters of unsaturated alcohols such as vinyl acetate, vinyl propionate, vinyl valerate, isopropenyl acetate, isopropenyl propionate and isopropenyl valerate. Or a halogenated acyl ester thereof.
【0007】その使用量はアセチレンアルコール類
〔1〕に対し、通常0.5 モル倍以上、好ましくは2モル
倍以上である。また、アシル化剤を溶媒として用いるこ
ともできる。The amount used is usually 0.5 mol times or more, preferably 2 mol times or more, with respect to the acetylene alcohol [1]. Also, an acylating agent can be used as a solvent.
【0008】本反応におけるアセチレンアルコール類の
光学異性体の一方のみを選択的にエステル化する能力を
有するエステラーゼとは、リパーゼを含む広義のエステ
ラーゼを意味する。なかでもリパーゼが好ましく、さら
により具体的にはアルスロバクター属やシュードモナス
属に由来するリパーゼが挙げられる。The esterase having the ability to selectively esterify only one of the optical isomers of acetylene alcohols in this reaction means a broadly defined esterase containing lipase. Among them, lipase is preferable, and more specifically, lipase derived from Arthrobacter genus and Pseudomonas genus can be mentioned.
【0009】本反応において、エステラーゼとしては動
物、植物、微生物から得られた酵素が用いられ、その使
用形態としては、精製酵素、粗酵素、酵素含有物、微生
物培養液、培養物、菌体、培養濾液、またはそれらを処
理したものなど種々の形態で必要に応じて用いることが
でき、酵素と微生物を組み合わせて用いることもでき
る。あるいはまた、樹脂等に固定した酵素、固定化菌体
としても用いることができる。In this reaction, an enzyme obtained from an animal, a plant or a microorganism is used as the esterase, and the usage forms thereof include a purified enzyme, a crude enzyme, an enzyme-containing material, a microbial culture solution, a culture, a microbial cell, It can be used in various forms such as a culture filtrate or a treated product thereof, if necessary, and an enzyme and a microorganism can be used in combination. Alternatively, it can also be used as an enzyme immobilized on a resin or the like, or an immobilized cell.
【0010】エステラーゼを生産する微生物としては、
アセチレンアルコール類の光学異性体の一方のみを選択
的にエステル化する能力を有するエステラーゼを生産す
る微生物であればよく特に限定されるものではない。
このような微生物の具体例としては、例えばエンテロバ
クター属、アルスロバクター属、ブレビバクテリウム
属、シュードモナス属、アルカリゲナス属、ミクロコッ
カス属、バシルス属、ラクトバシルス属、トリコデルマ
属、キャンディダ属、サッカロミネス属、ロドトルラ
属、クリプトコッカス属、トルロプシス属、ピヒア属、
ペニシリウム属、アスペルギルス属、リゾプス属、ムコ
ール属、オーレオパシディウム属、アクチノムコール
属、ノカルディア属、ストレトプトミセス属、ハンゼヌ
ラ属、アクロモバクター属に属する微生物が例示され
る。The microorganisms that produce esterase include
There is no particular limitation as long as it is a microorganism that produces an esterase having the ability to selectively esterify only one of the optical isomers of acetylene alcohols.
Specific examples of such microorganisms include, for example, Enterobacter, Arthrobacter, Brevibacterium, Pseudomonas, Alcaligenas, Micrococcus, Bacillus, Lactobacillus, Trichoderma, Candida, Saccharomyces. , Rhodotorula, Cryptococcus, Tollopsis, Pichia,
Examples include microorganisms belonging to the genus Penicillium, Aspergillus, Rhizopus, Mucor, Aureopasidium, Actinomucor, Nocardia, Streptomyces, Hansenula, and Achromobacter.
【0011】上記微生物の培養は、通常、常法に従って
行われ、例えば液体培養を行うことにより培養液を得る
ことができる。 例えば、滅菌した液体培地[かび類、
酵母類用には麦芽エキス・酵母エキス培地(水1Lにペ
プトン5g、グルコース10g、麦芽エキス3g、酵母エ
キス3gを溶解し、pH6.5 とする)、細菌用には加糖
ブイヨン培地(水1Lにペプトン5g、グルコース10
g、肉エキス3g、NaCl3gを溶解し、pH7.2 とす
る)]に微生物を接種し、通常20〜40℃で1〜3日間培
養をすることにより行われ、また必要に応じて固体培養
を行ってもよい。Cultivation of the above-mentioned microorganisms is usually carried out according to a conventional method, and for example, liquid culture can be carried out to obtain a culture solution. For example, sterilized liquid medium [molds,
Malt extract / yeast extract medium for yeasts (dissolve 5 g of peptone, 10 g of glucose, 3 g of malt extract, 3 g of yeast extract to pH 6.5 in 1 L of water), and a sweetened broth medium for bacteria (1 L of water) Peptone 5g, glucose 10
g, meat extract 3 g, and NaCl 3 g to adjust the pH to 7.2)] and inoculate with a microorganism, and usually cultivated at 20 to 40 ° C for 1 to 3 days, and if necessary, solid culture is performed. You can go.
【0012】またこれらの微生物起源のエステラーゼの
中には市販されているものがあり、容易に入手すること
ができる。市販エステラーゼの具体例としては、例えば
シュードモナス属のリパーゼ[リパーゼアマノPS、リ
パーゼアマノP(ともに天野製薬製)]、アスペルギル
ス属のリパーゼ[リパーゼアマノAP、リパーゼアマノA1
2(ともに天野製薬製)]、ムコール属のリパーゼ[リ
パーゼアマノM−AP(天野製薬製)]、キャンディダ・
シリンドラッセのリパーゼ[リパーゼMY(名糖産業
製)]、アルカリゲネス属のリパーゼ[リパーゼPL
(名糖産業製)]、アクロモバクター属のリパーゼ[リ
パーゼAL(名糖産業製)]、アルスロバクター属のリパ
ーゼ[新日本化学製]、クロモバクテリウム属のリパー
ゼ(東洋醸造製)、リゾプス・デレマーのリパーゼ[タ
リパーゼ(田辺製薬製)]、リゾプス属のリパーゼ[リ
パーゼサイケン(大阪細菌研究所)]等が挙げられる。Some of these esterases of microbial origin are commercially available and can be easily obtained. Specific examples of commercially available esterases include, for example, Pseudomonas lipase [Lipase Amano PS, Lipase Amano P (both manufactured by Amano Pharmaceuticals)], Aspergillus lipase [Lipase Amano AP, Lipase Amano A1].
2 (both manufactured by Amano Pharmaceuticals)], lipase of Mucor genus [Lipase Amano M-AP (manufactured by Amano Pharmaceuticals)], Candida
Cylindrace lipase [Lipase MY (manufactured by Meito Sangyo)], Alcaligenes lipase [Lipase PL
(Manufactured by Meito Sangyo)], lipase of Achromobacter genus [Lipase AL (manufactured by Meito Sangyo)], lipase of genus Arthrobacter [manufactured by Shin Nihon Kagaku], lipase of genus Chromobacterium (manufactured by Toyo Brewery) Examples thereof include Rhizopus derema lipase [Taripase (manufactured by Tanabe Seiyaku)], Rhizopus lipase [Lipase Saiken (Osaka Bacterial Research Institute)], and the like.
【0013】また、動物・植物エステラーゼを用いるこ
ともでき、これらの具体的なエステラーゼとしては、ス
テアプシン、パンクレアチン、ブタ肝臓エステラーゼ、
Wheat Germエステラーゼ等を挙げることができる。酵素
の量は、アセチレンアルコール類〔1〕に対し、通常0.
001 〜等量倍、好ましくは0.003 〜0.5 倍である。勿論
この量以上を用いてもよい。Animal / plant esterases can also be used. Specific examples of these esterases include steapsin, pancreatin, pig liver esterase,
Wheat Germ esterase etc. can be mentioned. The amount of enzyme is usually 0. 0 for acetylene alcohols [1].
It is 001 to equivalent times, preferably 0.003 to 0.5 times. Of course, more than this amount may be used.
【0014】本反応においては溶媒を使用することもで
き、その溶媒としては前記したアシル化剤の他、例えば
ヘキサン、ヘプタン、ベンゼン、アセトン、トルエン、
ジクロルメタン、クロロホルム、ジブチルエーテル等の
脂肪族または芳香族炭化水素、ハロゲン化炭化水素、エ
ーテル、ケトン類等の単独または混合物を挙げることが
できる。その使用量は、アセチレンアルコール類〔1〕
に対し、通常0.5 〜10重量倍である。勿論10重量倍を越
える量を用いても反応には差し支えない。A solvent may be used in this reaction, and as the solvent, other than the above-mentioned acylating agent, for example, hexane, heptane, benzene, acetone, toluene,
There may be mentioned aliphatic or aromatic hydrocarbons such as dichloromethane, dibutyl ether, etc., halogenated hydrocarbons, ethers, ketones etc. alone or in a mixture. The amount used is acetylene alcohols [1]
On the other hand, it is usually 0.5 to 10 times by weight. Of course, there is no problem in the reaction even if an amount exceeding 10 times by weight is used.
【0015】反応温度は通常10〜50℃であり、反応時間
は特に制限はないが、通常0.5 〜60時間で充分である。
反応の推移は反応系内の光学活性アセチレンアルコール
類〔1〕の光学純度を、例えば光学活性体化合物分離用
の充填剤を備えた液体クロマトグラフィー等により追跡
することができ、またこれにより反応終点を決めること
もできる。The reaction temperature is usually 10 to 50 ° C., and the reaction time is not particularly limited, but 0.5 to 60 hours is usually sufficient.
The progress of the reaction can be traced by measuring the optical purity of the optically active acetylene alcohol [1] in the reaction system, for example, by liquid chromatography equipped with a filler for separating the optically active compound, and thereby the reaction end point. You can also decide.
【0016】反応終了後、必要により、反応マスにヘキ
サン、ヘプタン、ベンゼン、アセトン、トルエン、ジク
ロルメタン、クロロホルム、クロルベンゼン、ジクロル
エタン、酢酸エチル、エチルエーテル等の脂肪族もしく
は芳香族炭化水素、エーテル、ケトン、エステル、ハロ
ゲン化炭化水素等の溶媒を加え、例えば酵素を濾別した
後、濾液を濃縮することにより、一般式〔2〕で示され
る光学活性アセチレンアルコール類および一般式〔3〕
で示される光学活性アセチレンアルコールエステル誘導
体を得ることができる。また、さらに例えば通常のクロ
マトグラフィー処理を付すことにより、一般式〔2〕で
示される光学活性アセチレンアルコール類と、一般式
〔3〕で示される光学活性アセチレンアルコールエステ
ル誘導体とに分離することもできる。 このようにして
得られた光学活性アセチレンアルコールエステル誘導体
〔3〕は、さらにエステラーゼを用い不斉水解すること
により対掌体である光学活性アセチレンアルコール類と
することができる。 不斉水解反応に用いられるエステ
ラーゼはさきのエステラーゼと同じものを用いることが
できる。After completion of the reaction, if necessary, an aliphatic or aromatic hydrocarbon such as hexane, heptane, benzene, acetone, toluene, dichloromethane, chloroform, chlorobenzene, dichloroethane, ethyl acetate, ethyl ether, ether, or ketone is added to the reaction mass. , An ester, a halogenated hydrocarbon, and the like are added, and the enzyme is filtered off, and the filtrate is concentrated to give an optically active acetylene alcohol represented by the general formula [2] and the general formula [3].
The optically active acetylene alcohol ester derivative represented by can be obtained. Further, it is also possible to separate the optically active acetylene alcohols represented by the general formula [2] and the optically active acetylene alcohol ester derivatives represented by the general formula [3] by subjecting them to a conventional chromatography treatment. . The optically active acetylene alcohol ester derivative [3] thus obtained can be converted into optically active acetylene alcohols which are antipodes by further asymmetric hydrolysis using esterase. As the esterase used in the asymmetric hydrolyzation reaction, the same esterase as the one described above can be used.
【0017】不斉水解反応は、上で得られたアセチレン
アルコールエステル誘導体と上記酵素もしくは微生物の
混合物を、通常緩衝液中で激しく攪拌することによって
行われる。緩衝液としては、通常用いられるリン酸ナト
リウム、りん酸カリウム等の無機酸塩の緩衝液、酢酸ナ
トリウム、クエン酸ナトリウム等の有機酸塩の緩衝液な
どが用いられ、そのpHは、好アルカリ性菌の培養液や
アルカリ性エステラーゼではpH8ー11、好アルカリ
性でない微生物の培養液や耐アルカリ性を有しないエス
テラーゼではpH5−8が好ましい。濃度は通常0.05─
3M、好ましくは0.05─0.5 Mの範囲である。The asymmetric hydrolysis reaction is carried out by vigorously stirring the mixture of the acetylene alcohol ester derivative obtained above and the above enzyme or microorganism in a buffer solution. As the buffer solution, a commonly used buffer solution of an inorganic acid salt such as sodium phosphate and potassium phosphate, a buffer solution of an organic acid salt such as sodium acetate and sodium citrate, and the like can be used. The pH of 8-11 is preferable for the culture broth and alkaline esterase, and the pH of 5-8 is preferable for the culture broth of non-alkalophilic microorganisms and the esterase having no alkali tolerance. Concentration is usually 0.05─
It is in the range of 3M, preferably 0.05-0.5M.
【0018】反応温度は通常10─60℃であり、反応
時間は一般的には10─70時間であるが、これらに限
定されることはない。 なお、この不斉水解反応でリパ
ーゼとしてシュードモナス属またはアルスロバクター属
に属するリパーゼを用いる場合には比較的高い光学純度
で対象体の光学活性なアセチレンアルコール類を得るこ
とができる。 また、この不斉水解反応の際、緩衝液に
加えてトルエン、クロロホルム、メチルイソブチルケト
ン、ジクロルメタン等の反応に不活性な有機溶媒を使用
することもでき、これらを使用することによって不斉水
解を有利に行うことが出来る。The reaction temperature is usually 10 to 60 ° C., and the reaction time is generally 10 to 70 hours, but it is not limited thereto. When a lipase belonging to the genus Pseudomonas or the genus Arthrobacter is used as the lipase in this asymmetric hydrolysis reaction, the optically active acetylene alcohols of the object can be obtained with a relatively high optical purity. In addition, in the case of this asymmetric hydrolysis reaction, in addition to the buffer solution, it is also possible to use an organic solvent inert to the reaction such as toluene, chloroform, methyl isobutyl ketone, dichloromethane, etc. It can be done in an advantageous manner.
【0019】このような加水分解反応終了後、加水分解
反応液を例えばエチルエーテル、ジクロロメタン等の溶
媒により抽出処理し、有機層から溶媒を留去した後濃縮
残査をカラムクロマトグラフィーで処理するなどの方法
により加水分解生成物である光学活性なアセチレンアル
コール類を分離することができる。After completion of such hydrolysis reaction, the hydrolysis reaction solution is subjected to extraction treatment with a solvent such as ethyl ether or dichloromethane, the solvent is distilled off from the organic layer, and the concentrated residue is treated with column chromatography. By the method described above, the optically active acetylene alcohols, which are hydrolysis products, can be separated.
【0020】[0020]
【発明の効果】本発明方法によれば、光学活性なアセチ
レンアルコール類のいずれの対掌体も、短時間でしかも
高い光学収率かつ高収率で得られるので工業的に有利で
ある。Industrial Applicability According to the method of the present invention, any enantiomer of an optically active acetylene alcohol can be obtained in a short time with a high optical yield and a high yield, which is industrially advantageous.
【0021】[0021]
【実施例】以下、実施例により本発明をさらに詳細に説
明するが、本発明は実施例に限定されるものではない。The present invention will be described in more detail with reference to the following examples, but the present invention is not limited to the examples.
【0022】(実施例1)1−ブチン−3−オール〔1
−1〕10g、リパーゼアマノPS(天野製薬)0.2gおよ
びビニルアセテート50mlの混合液を35℃に保ち、攪はん
した。途中、反応液をガスクロマトグラフィーにてチェ
ックした。攪はん開始後10時間で反応を止め、リパーゼ
を濾去し、濾過残さをエチルエーテルにて洗浄濾過し、
先の濾液と併せて減圧にて濃縮した。得られた濃縮物を
カラムクロマト分離精製して、(S)-(-)-1−ブチン−3
−オール〔2-1 〕3.5g (光学純度86%e.e., [α]D
20−51゜(neat)と、R リッチ- 1−ブチン- 3- オ
ールの酢酸エステル〔3-1 〕10.2g をそれぞれ得た。
尚、化合物の光学純度は、ジニトロフェニルイソシアネ
ートで処理したのち光学活性カラムを用いた液体カラム
グラフィーにて測定した。 つぎにここで得た(3-1 )
4.48g 、リパーセアマノPS(天野製薬)0.13g 、0.2
Mリン酸バッファー(pH6.5) 60mlの混合液
を30℃で15時間激しく攪拌する。得られた混合物
は、エチルエーテル40mlで抽出し、有機層は水洗の
後濃縮する。得られた残査はシリカゲルカラムクロマト
グラフィー(溶出液:ジクロロメタンーヘキサン)で分
離し、R(+)−1−ブチン−3−オール(4−1)1.
55g(光学純度94.6%)〔α]D 20+57゜(nea
t)を得る。Example 1 1-butyn-3-ol [1
-1] 10 g, Lipase Amano PS (Amano Pharmaceutical Co., Ltd.) 0.2 g and
Stir the mixture of vinyl acetate and 50 ml of vinyl acetate at 35 ° C and stir.
did. On the way, check the reaction solution by gas chromatography.
I clicked. The reaction was stopped 10 hours after the start of stirring, and the lipase was added.
Was removed by filtration, the filter residue was washed with ethyl ether and filtered,
The solution was concentrated under reduced pressure together with the above filtrate. The obtained concentrate
Column chromatography separation and purification, (S)-(-)-1-butyne-3
-All [2-1] 3.5 g (optical purity 86% e.e., [α]D
20-51 ° (neat) and R rich-1-butyn-3-o
To obtain 10.2 g of the acetic acid ester [3-1] of the alcohol.
The optical purity of the compound is dinitrophenyl isocyanate.
Liquid column using optically active column after treatment
It was measured by graphy. Then I got here (3-1)
4.48g, Lipase Amano PS (Amano Pharmaceutical Co., Ltd.) 0.13g, 0.2
M phosphate buffer (pH 6.5) 60 ml mixed solution
Is stirred vigorously at 30 ° C. for 15 hours. The resulting mixture
Was extracted with 40 ml of ethyl ether, and the organic layer was washed with water.
After that, concentrate. The obtained residue is silica gel column chromatography.
Chromatography (eluent: dichloromethane-hexane)
Release, R (+)-1-butyn-3-ol (4-1) 1.
55 g (optical purity 94.6%) [α]D 20+ 57 ° (nea
get t).
【0023】(実施例2)実施例1と同様の操作を酢酸
ビニルを酪酸ビニルで代替して行った。攪はん開始後18
時間で反応を止め、同様の後処理をした後、(S)-1−ブ
チン−3−オール〔2-2 〕4.1g(光学純度89%e.e. )
と、Rリッチ- 1−ブチン−3−オールの酪酸エステル
11.8g[3-2]をそれぞれ得た。つぎに(3-2)7.0g 、アルス
ロバクター属リパーゼ(新日本化学製)0.14g 、0.2 M
リン酸バッファー40mlの混合液を25℃で10時間
激しく攪拌する。得られた混合物は、エチルエーテル4
0mlで抽出し、有機層は水洗の後濃縮する。得られた
残査はシリカゲルカラムクロマトグラフィー(溶出液:
ジクロロメタン−ヘキサン)で分離し、R(+)−1−
ブチン−3−オール(4−1)2.05g(光学純度96.4
%)〔α〕D 20+59゜(neat) を得る。Example 2 The same operation as in Example 1 was carried out by substituting vinyl butyrate for vinyl acetate. After agitation 18
The reaction was stopped at a certain time, and after the same post-treatment, (S) -1-butyn-3-ol [2-2] 4.1 g (optical purity 89% ee)
And R-rich-1-butyn-3-ol butyrate
11.8 g [3-2] was obtained respectively. Next, (3-2) 7.0 g, Arthrobacter lipase (Nippon Kagaku) 0.14 g, 0.2 M
A mixture of 40 ml of phosphate buffer is vigorously stirred for 10 hours at 25 ° C. The resulting mixture is ethyl ether 4
It is extracted with 0 ml, and the organic layer is washed with water and then concentrated. The obtained residue was subjected to silica gel column chromatography (eluent:
Separated with dichloromethane-hexane) and R (+)-1-
Butin-3-ol (4-1) 2.05 g (optical purity 96.4
%) [Α] D 20 + 59 ° (neat) is obtained.
【0024】(実施例3)4−ペンチン−2−オール
〔1-3 〕10g、リパーゼアマノPS(天野製薬製)0.2 g
およびビニルアセテート50mlの混合液を35℃に保ち、攪
はんした。途中、反応液をガスクロマトグラフィーにて
チェックした。攪はん開始後14時間で反応をとめ、リパ
ーゼを濾去し、濾過残さをエチルエーテルにて洗浄濾過
し、先の濾液と併せて減圧にて濃縮した。得られた濃縮
物をカラムクロマト分離精製して、(S)-(-)-4−ペンチ
ン−2−オール〔2-3 〕3.2g(光学純度84.6%e.e. )
〔α〕D 20−30゜(c=5、ベンゼン)と、(R)-4−
ペンチン−2−オールの酢酸エステル〔3-3 〕9.9g を
それぞれ得た。つぎに(R)-4−ペンチン酢酸エステル
〔3-3 〕3.78g とリパーゼアマノPS(天野製薬製)0.1
gおよび0.3Mりん酸緩衝液(pH7.0 )50mlの混合液を
35℃に保ち、攪はんした。途中、反応液を液体クロマト
グラフィーにてチェックした。攪はん開始後10時間で反
応をとめ、リパーゼを濾去し、濾過残さをエチルエーテ
ルにて、洗浄しエチルエーテルにて抽出し有機層を硫酸
マグネシウムにて乾燥後、減圧にて濃縮した。得られた
濃縮物をカラムクロマト分離精製して(R)-4−ペンチン
−2−オール〔3-4 〕1.43g (光学純度91.2%e.e. )を
得た。〔α〕D 20+33゜(c=5、ベンゼン)Example 3 4-Pentin-2-ol
[1-3] 10 g, Lipase Amano PS (Amano Pharmaceutical Co., Ltd.) 0.2 g
Keep the mixture of 50 ml of vinyl acetate and vinyl acetate at 35 ° C and stir.
I spilled. On the way, the reaction solution was subjected to gas chromatography.
Checked. The reaction was stopped 14 hours after the start of stirring, and the
Filtered off and the filter residue washed with ethyl ether and filtered
Then, it was concentrated under reduced pressure together with the above filtrate. Obtained concentration
The product was separated and purified by column chromatography to obtain (S)-(-)-4-pliers.
N-2-ol [2-3] 3.2 g (optical purity 84.6% e.e.)
[Α]D 20-30 ° (c = 5, benzene) and (R) -4-
Pentin-2-ol acetate ester [3-3] 9.9 g
Got each. Next, (R) -4-pentyne acetate
[3-3] 3.78 g and Lipase Amano PS (Amano Pharmaceutical Co., Ltd.) 0.1
g and 50 ml of 0.3 M phosphate buffer (pH 7.0)
It was kept at 35 ° C and stirred. On the way, the reaction solution was liquid chromatographed.
I checked it with a graph. 10 hours after the start of stirring
Stop the reaction, remove the lipase by filtration, and remove the filter residue with ethyl ether.
Washed with water, extracted with ethyl ether, and the organic layer is sulfuric acid.
After drying over magnesium, it was concentrated under reduced pressure. Got
Column chromatographic separation and purification of the concentrate (R) -4-pentyne
2-ol [3-4] 1.43 g (optical purity 91.2% e.e.)
Obtained. [Α]D 20+ 33 ° (c = 5, benzene)
【0025】(実施例4)6ーヘプチン−2−オール
〔1-4 〕10g、アルスロバクター属リパーゼ(新日本化
学製)0.15g 、およびビニルアセテート40mlの混合液を
30℃に保ち、攪はんした。途中、反応液をガスクロマト
グラフィーにてチェックした。攪はん開始後8時間で反
応をとめ、リパーゼを濾去し、濾過残さをエチルエーテ
ルにて洗浄濾過し、先の濾液と併せて減圧にて濃縮し
た。得られた濃縮物をカラムクロマト分離精製して、
(S)-(+)-6−ヘプチン−2−オール〔2-4 〕4.1g(光学
純度91%e.e) 〔α〕D 20+13.5゜(c=5、ベンゼン)
と、R リッチ−6−ヘプチン−2ーオール酢酸エステル
〔3-4 〕10.2g をそれぞれ得た。 つぎにここで得た[
3-4]7.7g、アルスロバクター属リパーゼ(新日本化学
製)0.15g 、0.2 Mリン酸バッファー(pH6.0 )40
mlの混合液を30℃で15時間激しく攪拌する。 得
られた混合物は、エチルエーテル40mlで抽出し、有
機層は水洗の後濃縮する。 得られた残査はシリカゲル
カラムクロマトグラフィー(溶出液:ジクロロメタンー
ヘキサン)で分離し、R(−)−6−ヘプチン−2−オ
ール(4−4)3.23g (光学純度97.2%)〔α〕D
20−14.8゜( c=5、ベンゼン)を得る。Example 4 A mixed solution of 10 g of 6-heptin-2-ol [1-4], 0.15 g of Arthrobacter lipase (manufactured by Shin Nihon Kagaku), and 40 ml of vinyl acetate was added.
The mixture was kept at 30 ° C and stirred. On the way, the reaction solution was checked by gas chromatography. The reaction was stopped 8 hours after the start of stirring, the lipase was filtered off, the filter residue was washed with ethyl ether and filtered, and the filtrate was concentrated under reduced pressure. The obtained concentrate is separated and purified by column chromatography,
(S)-(+)-6-Heptin-2-ol [2-4] 4.1 g (optical purity 91% ee) [α] D 20 + 13.5 ° (c = 5, benzene)
And R rich-6-heptin-2-ol acetic acid ester [3-4] 10.2 g were obtained. Then got here [
3-4] 7.7 g, Arthrobacter lipase (Nippon Kagaku) 0.15 g, 0.2 M phosphate buffer (pH 6.0) 40
The ml mixture is stirred vigorously at 30 ° C. for 15 hours. The obtained mixture is extracted with 40 ml of ethyl ether, and the organic layer is washed with water and then concentrated. The obtained residue was separated by silica gel column chromatography (eluent: dichloromethane-hexane), and R (-)-6-heptin-2-ol (4-4) 3.23 g (optical purity 97.2%) [ α] D
20 -14.8 ° (c = 5, benzene) is obtained.
【0026】(実施例5)実施例1で得た〔3-1 〕4.48
g 、アルスロバクター属リパーゼ(新日本化学製)0.09
g 、0.2 Mリン酸バッファー(pH6.0 )30mlの混
合液を30℃で11時間激しく攪拌する。得られた混合物
は、エチルエーテル40mlで抽出し、有機層は水洗の
後濃縮する。得られた残査はシリカゲルカラムクロマト
グラフィー(溶出液:ジクロロメタンーヘキサン)で分
離し、R(+)−1−ブチン−3−オール1.64g (光学
純度96.8%)〔α〕D 20+58゜(neat)を得る。(Example 5) [3-1] 4.48 obtained in Example 1
g, Arthrobacter lipase (Nippon Chemical) 0.09
A mixture of g and 30 ml of 0.2 M phosphate buffer (pH 6.0) is vigorously stirred at 30 ° C. for 11 hours. The obtained mixture is extracted with 40 ml of ethyl ether, and the organic layer is washed with water and then concentrated. The obtained residue was separated by silica gel column chromatography (eluent: dichloromethane-hexane), and R (+)-1-butyn-3-ol 1.64 g (optical purity 96.8%) [α] D 20 +58. To get the neat.
【0027】(参考例)4−ペンチン−2−オールの酢
酸エステル10g とリパーゼアマノPS(天野製薬製)0.2
gおよび0.3Mりん酸緩衝液100ml の混合液を35℃に保
ち、攪はんした。途中、反応液を液体クロマトグラフィ
ーにてチェックした。攪はん開始後10時間で反応を止
め、リパーゼを濾去し、濾過残さをエチルエーテルにて
洗浄し、水層をエチルエーテルにて抽出・分液し有機層
を硫酸マグネシウムにて乾燥後、減圧にて濃縮した。得
られた濃縮物をカラムクロマト分離精製して(R)-4−ペ
ンチン−2−オール〔3-4 〕3.8g(光学純度62.5%e.e.
)を得た。Reference Example 10 g of 4-pentyn-2-ol acetate ester and Lipase Amano PS (Amano Pharmaceutical Co., Ltd.) 0.2
A mixture of g and 100 ml of 0.3 M phosphate buffer was kept at 35 ° C. and stirred. On the way, the reaction solution was checked by liquid chromatography. The reaction was stopped 10 hours after the stirring was started, the lipase was filtered off, the filter residue was washed with ethyl ether, the aqueous layer was extracted and separated with ethyl ether, and the organic layer was dried over magnesium sulfate, It was concentrated under reduced pressure. The obtained concentrate was separated and purified by column chromatography to obtain (R) -4-pentyn-2-ol [3-4] 3.8 g (optical purity 62.5% ee
) Got.
Claims (2)
レンアルコール類と、アシル化剤として不飽和アルコー
ルのカルボン酸エステルとを、エステラーゼの存在化に
反応させ、一般式〔2〕 (式中、nは前記と同じ意味を表し、*印は不斉炭素で
あることを表す。)で示される光学活性アセチレンアル
コール類および一般式〔3〕 (式中、nおよび*印は前記と同じ意味を表し、R1 は
炭素数1〜5のハロゲン化されていてもよいアルキル基
を表す。)で示される光学活性アセチレンアルコールエ
ステル誘導体の混合物を得、それらを単離することを特
徴とする一般式〔2〕で示される光学活性アセチレンア
ルコール類および一般式〔3〕で示される光学活性アセ
チレンアルコールエステル誘導体の製造法。1. A general formula [1] (In the formula, n represents an integer of 0 to 6) and an carboxylic acid ester of an unsaturated alcohol as an acylating agent are reacted in the presence of esterase to give a compound represented by the general formula [2]. (In the formula, n represents the same meaning as described above, and * represents an asymmetric carbon.) And an optically active acetylene alcohol represented by the general formula [3]. (Wherein n and * have the same meanings as described above, and R 1 represents an optionally halogenated alkyl group having 1 to 5 carbon atoms), and a mixture of the optically active acetylene alcohol ester derivative. A method for producing an optically active acetylene alcohol represented by the general formula [2] and an optically active acetylene alcohol ester derivative represented by the general formula [3], which comprises isolating them.
ルコール類と、アシル化剤として不飽和アルコールのカ
ルボン酸エステルとを、エステラーゼの存在化に反応さ
せ、前記一般式〔2〕で示される光学活性アセチレンア
ルコール類および前記一般式〔3〕で示される光学活性
アセチレンアルコールエステル誘導体の混合物を得、一
般式〔3〕で示される光学活性アセチレンアルコールエ
ステル誘導体を単離し、ついで該アセチレンアルコール
エステル誘導体〔3〕をエステラーゼを用いて不斉水解
させることを特徴とする前記一般式〔2〕で示される化
合物と対象体である光学活性アセチレンアルコール類の
製造法。2. An acetylene alcohol represented by the general formula [1] and a carboxylic acid ester of an unsaturated alcohol as an acylating agent are allowed to react in the presence of an esterase, and represented by the general formula [2]. A mixture of the optically active acetylene alcohols and the optically active acetylene alcohol ester derivative represented by the general formula [3] is obtained, the optically active acetylene alcohol ester derivative represented by the general formula [3] is isolated, and then the acetylene alcohol ester derivative is isolated. A process for producing an optically active acetylene alcohol which is a target compound, wherein the compound [3] is asymmetrically hydrolyzed using an esterase.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP02656993A JP3218772B2 (en) | 1993-02-16 | 1993-02-16 | Method for producing acetylene alcohols |
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JPH06237788A true JPH06237788A (en) | 1994-08-30 |
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2002057411A3 (en) * | 2000-12-01 | 2004-02-12 | Diversa Corp | Hydrolase enzymes and their use in kinetic resolution |
-
1993
- 1993-02-16 JP JP02656993A patent/JP3218772B2/en not_active Expired - Fee Related
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