JP7560445B2 - 膵炎を処置するための方法 - Google Patents
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Description
膵炎を予防及び処置するための方法が、本明細書で提供される。具体的には、CA19-9に結合する分子を使用して膵炎を処置及び/または予防するための方法が、本明細書で提供される。
本出願には、EFS-Web経由で提出されたASCIIテキストフォーマットの配列表のコンピュータ可読形式(CRF)が、参照により組み込まれる。EFS-Web経由で提出された12967-046-999_Sequence_Listing.txtという名称の配列表テキストファイルは、2018年9月10日に作成され、サイズは22,963バイトである。
膵炎は、米国において毎年275,000件の入院の原因となっている(Forsmark CE,et al.,N Engl J Med.2016;375(20):1972-81)。膵炎には、慢性膵炎及び急性膵炎が含まれ、重度の腹痛を伴う場合がある。慢性膵炎を有する患者の死亡率は一般集団の死亡率よりも高く、診断後の10年生存率は69~80%と推定されている(Seicean A.et al.,J Gastrointestin Liver Dis.2006;15(1):21-6.)。慢性膵炎に伴う合併症及び病的状態の結果として、慢性膵炎の患者の平均余命は、一般集団の平均余命よりもおよそ8年短い(Bang UC.et al.,Gastroenterology.2014;146(4):989-94)。重度の急性膵炎では、死亡率は16.3%もの高さになる可能性があり、死亡の40%超が入院から14日以内に発生する(Fu C.et al.,World J Gastroenterol.2007;13(13):1966-1969)。
膵炎を直接処置、予防、管理もしくは改善するため、または膵炎発症の根底にある機序を標的とするためにこれまでに開発された治療剤は、成果に乏しい。したがって、慢性及び急性膵炎を含む膵炎を処置、予防、管理または改善することができる治療剤の同定が必要とされている。
一態様では、膵炎の予防、処置、改善または管理を必要とする対象において膵炎を予防、処置、改善または管理するための方法であって、シアリルルイスaに結合する治療有効量の抗体またはその機能的断片(抗sLea)を対象に投与することを含む方法が本明細書で提供される。
(1)シアリルルイスaに結合する抗体またはその機能的断片(抗sLea)を第1の用量で対象に投与すること、
(2)前記対象の膵炎の重症度を判定すること、及び
(3)抗sLeaの投与前の対象の膵炎の重症度と比較して対象の膵炎の重症度が低減する場合に、抗sLeaに結合する抗体もしくはその機能的断片の第2の用量を第1の用量と同じかもしくはそれよりもより少量で投与すること、または対象の膵炎の重症度が低減しない場合に、抗sLeaの第2の用量を第1の用量よりもより多量で投与することを含む方法が本明細書で提供される。
(1)CA19-9に結合する治療剤を第1の用量で対象に投与すること、
(2)前記対象の膵炎の重症度を判定すること、及び
(3)薬剤の投与前の対象の膵炎の重症度と比較して対象の膵炎の重症度が低減する場合に、治療剤の第2の用量を第1の用量と同じかもしくはそれよりもより少量で投与すること、または対象の膵炎の重症度が低減しない場合に、治療剤の第2の用量を第1の用量よりもより多量で投与することを含む方法が、本明細書で提供される。
6.1.定義
本明細書で使用する場合、シアリルLea、シアリルルイスA、シアル化ルイスaとも知られているか、または称される「シアリルルイスa」(sLea)という用語は、分子式がC31H52N2O23、モル質量が820.74g/molの四糖類の化合物を意味することを意図している。sLeaの構造には、Neu5Acα2-3Galβ1-3(Fucα1-4)GlcNAcβ及びNeu5Gcα2-3Galβ1-3(Fucα1-4)GlcNAcβが含まれ得る。sLeaは、内皮白血球接着分子(ELAM)としても知られるE-セレクチンの既知のリガンドでもある。シアリルルイスaという用語には、生物活性のある立体構造及び生物活性のない立体構造を含む、考えられるすべての立体構造を持つものが含まれる。
本明細書で提供されるのは、膵炎の予防、処置、改善または管理を必要とする対象において膵炎を予防、処置、改善または管理するための方法であって、シアリルルイスaに結合する治療有効量の抗体またはその機能的断片(抗sLea)を対象に投与することを含む方法である。また、本明細書では、膵炎の予防、処置、改善または管理を必要とする対象において膵炎を予防、処置、改善または管理するための方法であって、(1)シアリルルイスaに結合する抗体またはその機能的断片(抗sLea)を第1の用量で対象に投与すること、(2)前記対象の膵炎の重症度を判定すること、及び(3)抗sLea抗体の投与前の対象の膵炎の重症度と比較して対象の膵炎の重症度が低減する場合に、抗sLeaに結合する抗体もしくはその機能的断片の第2の用量を第1の用量と同じかもしくはそれよりもより少量で投与すること、または対象の膵炎の重症度が低減しない場合に、抗sLeaに結合する抗体もしくはその機能的断片の第2の用量を第1の用量よりもより多量で投与することを含む方法も提供される。本方法で使用することができる抗sLea抗体は、セクション6.2.1.1に記載されている。
記載した特性を有する様々な種類の分子を、本明細書で提供される方法に使用することができる。本開示は、膵臓におけるCA19-9の発現の上昇が、膵炎の惹起、発症及び悪化の根底をなすシグナル伝達及び/または病理学的経路を引き起こすことを示す。したがって、本開示は、CA19-9の発現の上昇、シアリルルイスaのレベルの上昇またはそれらの組み合わせを阻害するか、遮断するか、元に戻すか、低減させるかまたは減弱させることができ、膵炎を予防、処置、改善または管理するために本明細書で提供される方法に使用することができる、治療剤を提供する。本開示はさらに、CA19-9の発現の上昇がEGFRシグナル伝達経路の活性化をもたらすことを示す。いくつかの特定の実施形態では、本明細書で提供される方法に使用することができる治療剤には、膵臓の1つ以上のシグナル伝達マーカーを低減させる活性を有する薬剤が含まれ、このシグナル伝達マーカーは、膵臓内のAktリン酸化、膵臓内のEGFRリン酸化、膵臓内のErk1/2リン酸化、膵臓内のCA19-9レベル、及び膵臓内のシアリルルイスaレベルからなる群から選択される。
いくつかの実施形態では、本明細書で提供される方法に使用することができる治療剤は、膵臓におけるCA19-9の発現の上昇、膵臓におけるシアリルルイスaのレベルの上昇、またはそれらの任意の組み合わせを阻害するか、遮断するか、元に戻すか、低減させるかまたは減弱させる活性を有する抗体である。本方法に適した例示的な抗体には、抗CA19-9抗体及び抗シアリルルイスa抗体が含まれる。一実施形態では、本方法に適した例示的な抗体は、遮断抗体または中和抗体である。
ペプチド及びペプチド模倣物は、標的タンパク質との選択的かつ高親和性の相互作用に必要な構造的多様性を与える。本開示は、本方法における治療剤としてのペプチド及びペプチド模倣物を提供する。いくつかの実施形態では、本明細書で提供される方法に使用することができる治療剤は、膵臓におけるCA19-9の発現の上昇、膵臓におけるEGFRシグナル伝達経路の増加、膵臓におけるシアリルルイスaのレベルの上昇、またはそれらの任意の組み合わせを阻害するか、遮断するか、元に戻すか、低減させるかまたは減弱させる活性を有するペプチドまたはペプチド模倣物である。本方法に適した例示的なペプチドまたはペプチド模倣物には、CA19-9及びシアリルルイスaからなる群から選択される標的に特異的に結合するものが含まれる。一実施形態では、本方法に適した例示的なペプチドは、遮断ペプチドまたは中和ペプチドである。別の実施形態では、本方法に適した例示的なペプチド模倣物は、遮断ペプチド模倣物または中和ペプチド模倣物である。
(Ser(S)及びThr(T)は、任意選択で脂肪族ヒドロキシルとして別個にグループ化される)、(4)芳香族=Phe(F)、Tyr(Y)、Trp(W)、(5)アミド=Asn(N)、Glu(Q)、ならびに(6)硫黄含有=Cys(C)及びMet(M)としてグループ化することができる(例えば、その全体が参照により本明細書に組み込まれる、Biochemistry,4th ed.,Ed.by L.Stryer,WH Freeman and Co.,1995を参照されたい)。
前述の通り、膵炎は慢性膵炎と急性膵炎に分類することができる。いくつかの実施形態では、急性膵炎と慢性膵炎との違いは、膵炎症及び膵損傷の持続期間及び持続性にある。急性膵炎は、しばしば鋭い腹痛を伴う膵炎の単独の(突然または短いこともある)エピソードを指す。慢性膵炎は、膵臓の外分泌及び/または内分泌機能の長期にわたる障害につながる、膵臓における持続性の不可逆的な炎症及び線維化状態を指す。したがって、慢性膵炎は、炎症が膵臓で持続する膵炎を含み得、または、たとえ炎症が消失したとしても、線維化、石灰化及び導管損傷を特徴とするような結果として生じる膵臓への損傷は、膵機能に影響を及ぼし続ける。前述及び後述の考察から明らかなように、急性膵炎及び慢性膵炎を発症する原因及び機序は重複している。したがって、当業者は、急性膵炎が慢性膵炎につながるおそれがあり、慢性膵炎患者が急性膵炎のエピソードを発症するおそれがあることを理解するであろう。さらに、患者は、急性膵炎の1つ以上のエピソードが消失してから、慢性膵炎を発症するおそれがある。
膵炎患者の血中もしくは尿中の1つ以上の特定の物質、血中もしくは尿中のある物質の別の物質に対するレベルの比、血中もしくは尿中のある種類の物質の総合レベル(例えば、特定の酵素の総合レベル)またはそのような総合レベルに関する比を、膵炎のバイオマーカーとして使用することができる。マーカーとして機能する物質は、細胞、組織、タンパク質(酵素など)、DNA、RNA、マイクロRNA、脂質、代謝物、または膵炎の炎症もしくは損傷を反映し得る任意の他の物質であり得る。そのような血清学的膵炎マーカーの例としては、血清リパーゼレベル、血清CA19-9レベル、血清アミラーゼレベル(アミラーゼ、イソアミラーゼ及び総アミラーゼのレベルを含む)、血清C反応性タンパク質レベル、糖鎖欠損トランスフェリン、トリプシノーゲン活性化産物(例えば、トリプシノーゲン活性化ペプチドを含む)、トリプシン-1、トリプシン-2、トリプシン-1またはトリプシン-2のα-アンチトリプシンとの複合体(トリプシン-1-AAT及びトリプシン-2-AATとしても知られる)、エラスターゼ-1、ホスホリパーゼA2、プロカルシトニン(カルシトニンの前駆体)、脂質、炎症性サイトカイン及びケモカイン、マイクロRNA、ペプチド(Walgren JL et al.,Toxicol Sci.2007 Mar;96(1):184-93(その全体が参照により本明細書に組み込まれる)で開示されているRA1609及びRT2864)、アルコール及びアルコール代謝物(脂肪酸エチルエステル)、ならびに毒素または毒素の代謝物が挙げられる。本明細書に開示される血清学的マーカーのいずれかまたは血清学的マーカーの任意の組み合わせのレベルの上昇を、本明細書で提供される方法で使用することができる。
前述の通り、膵組織構造の異常に基づくマーカー(例えば、膵組織試料の組織学的染色またはIHC染色からのもの)もまた、本明細書で提供される方法で使用することができる。そのような組織学的マーカーには、膵臓内の1つ以上のタンパク質の発現の異常、膵臓内の特定のタイプの非膵細胞(例えば、白血球、マクロファージ及び好中球を含む免疫細胞)の存在または異常な数、膵臓内の特定の細胞の存在量または数の異常な変化、ならびに膵細胞または膵組織の構造の異常(例えば、膵実質、膵管、ランゲルハンス島及び腺房細胞/組織の異常)が含まれる。膵臓の構造異常は、特定の膵臓領域または構造、例えば、膵実質、膵管、ランゲルハンス島、腺房細胞/組織、膵臓の外分泌成分、膵臓の内分泌成分または嚢胞に局在し得る。
膵炎の重症度は膵臓の機能性に反映され得るため、膵炎のマーカーには、機能的マーカーも含まれる。機能的マーカーは、膵機能と正相関または逆相関する任意のマーカーを指す。当業者が理解するように、膵臓の2つの主要な機能は、膵外分泌機能及び膵内分泌機能である。したがって、本開示は、膵外分泌機能の欠損、膵内分泌機能の欠損またはその両方を、本明細書で提供される方法において膵炎のマーカーとして使用することができることを示す。同様に当業者に公知のように、膵外分泌物は炭酸水素塩を多く含む。したがって、コレシストキニン(CCK)の投与の有無を問わないセクレチン刺激試験を使用して、セクレチン注射後のこれらの膵分泌物の量及び炭酸水素塩の濃度をモニタリングすることにより、膵機能を直接測定することができる。いくつかの実施形態では、セクレチン刺激試験(CCK投与の有無を問わない)における50mEq/L未満の炭酸水素塩レベルは、膵炎患者のマーカーとなり得、本明細書で提供される方法で使用することができる。他の実施形態では、セクレチン刺激試験(CCK投与の有無を問わない)における5mEq/L未満、10mEq/L未満、15mEq/L未満、20mEq/L未満、25mEq/L未満、30mEq/L未満、35mEq/L未満、40mEq/L未満、45mEq/L未満、50mEq/L未満、55mEq/L未満、60mEq/L未満、65mEq/L未満、70mEq/L未満、75mEq/L未満または80mEq/L未満の炭酸水素塩レベルは、膵炎患者のマーカーとなり得、本明細書で提供される方法で使用することができる。
本開示は、膵炎が膵臓のCA19-9及びシアリルルイスaのレベルと相関し、CA19-9及びシアリルルイスaの上昇が、膵炎を引き起こす根底にある機序における要因であることを示す。
膵炎は生理機能に影響を及ぼし、対象における他の観察可能な症状を引き起こし得るため、膵炎患者の生理学的症状を反映する任意のマーカーを、本明細書で提供される方法に使用することができる。そのような生理学的マーカーには、体重減少、腹痛などの疼痛、食物の吸収不良、膵萎縮、膵腫大、膵炎症及び胆汁逆流が含まれる。そのような生理学的マーカーは、患者の症状の感覚の説明に基づいて直接観察または判定することができる。したがって、本開示は、本方法に適した患者には、これらの生理学的マーカーのいずれか1つ以上を有する患者が含まれること、及び本明細書で提供される方法が、これらの膵炎のシグナル伝達マーカーのいずれか1つ以上を元に戻すかまたは向上させることによって、患者の治療アウトカムを向上させることができることを示す。
一実施形態では、本明細書で提供される方法は、膵炎を予防、処置、改善または管理するために全身投与することができる治療剤を含む医薬組成物を使用する。そのような投与は、非経口的または経粘膜的、例えば、経口、頬側、経鼻、舌下、粘膜下または経皮的であり得る。いくつかの実施形態では、投与は、例えば、静脈内注射または腹腔内注射、動脈内投与、筋肉内投与、皮内投与及び皮下投与を介する非経口である。
様々なアッセイを使用して、本明細書で提供される治療法で使用するためのセクション6.2.1に記載の治療剤の活性及び有効性を判定することができる。様々なマーカーについてのアッセイも、本明細書で提供される。本開示は、セクション6.2.1に記載されている様々な治療剤の活性、有用性及び有効性を、セクション6.2.2に記載されているバイオマーカーまたは患者の治療アウトカムに従ってアッセイすることができることをさらに示す。さらに、当業者は、本明細書で提供される方法における様々な治療剤の適合性を、当該技術分野において公知のまたは本明細書で提供される様々なin vitro及びin vivo膵炎アッセイを通して確認することができることを認識するであろう。
様々な日常的なアッセイを使用して、本明細書で提供される方法において、治療剤とCA19-9もしくはシアリルルイスaとの間、または任意の2つの分子間(例えば、2つのタンパク質間)の結合を容易に判定することができる。例示的な日常的な結合アッセイには、免疫組織化学アッセイ、酵素免疫アッセイ(EIA)またはELISA、FACSアッセイ、免疫ブロッティングアッセイ、表面プラズモン共鳴(SPR)アッセイ、共免疫沈降アッセイ、クロマトグラフィーまたはゲルシフトアッセイ、等温滴定熱量測定、様々な蛍光アッセイ(蛍光相関分光法及び蛍光偏光/異方性など)、競合結合アッセイ、平衡透析、蛍光共鳴エネルギー移動(FRET)、ならびに当業者に公知の2つの分子間の結合を試験するための他の任意のアッセイが含まれる。これらの日常的なアッセイの詳細は、以下及びWu,Ge.Chapter 5,General Protein Binding Assay Formats,in Assay Development:Fundamentals and Practices,Online ISBN:9780470583128;Print ISBN:9780470191156(2010)、Wan H et al.,Journal of Liquid Chromatography & Related Technologies,(2007)30:681-700(これらは両方とも、その全体が参照により本明細書に組み込まれる)に記載されている。
上で開示した通り、膵炎の根本原因は、膵炎症及び膵損傷である。したがって、膵炎を予防、処置、改善または管理するために本明細書で提供される方法の有効性を評価するための有用なアッセイには、本明細書で提供される方法の1つ以上のステップ、例えば、様々な投与レジメンにより本明細書で提供される治療剤をアッセイ系に投与すること、アッセイ系からの1つ以上の読み取り値を判定すること、及び治療剤処置群と対照(プラセボ)処置群(または基準範囲)間で読み取り値を比較することを用いることが含まれ得る。読み取り値の変化を、膵炎を予防、処置、改善または管理するための治療剤の活性を判定するために使用する。
セクション6.2.2に開示されているように、膵炎のマーカーには、膵組織構造の異常(例えば、膵組織試料の組織学的染色またはIHC染色からのもの)が含まれる。そのような組織学的マーカーには、膵臓内の1つ以上のタンパク質の発現の異常、膵臓内の特定のタイプの非膵細胞(例えば、白血球、マクロファージ及び好中球を含む免疫細胞)の存在または異常な数、膵臓内の特定の細胞の存在量または数の異常な変化、ならびに膵細胞または膵組織の構造の異常(例えば、膵実質、膵管、ランゲルハンス島及び腺房細胞/組織の異常)が含まれる。したがって、膵炎を予防、処置、改善または管理するための本明細書で提供される方法の有効性を評価するための有用なアッセイには、膵組織構造におけるそのような異常を検出するための病理組織学的染色及び/またはIHCアッセイが含まれる。
前述の通り、膵炎マーカーはイメージングアッセイによっても検出することができる。膵臓構造の異常は、当業者に周知のように、例えば、超音波(EUSなど)、コンピュータ断層撮影、内視鏡的逆行性胆道膵管造影法(ERCP)及びコントラスト増強を伴うかまたは伴わない磁気共鳴イメージング(MRCPなど)でイメージングすることができる。イメージングにより検出される例示的な膵炎マーカーは、セクション6.2.2.2に前述した。したがって、本明細書で提供される治療剤の活性に関するアッセイのいくつかの実施形態では、本明細書で提供される方法に従って、セクション6.3.3で以下にさらに論じるモデルアッセイ系に治療剤を投与し、膵臓の異常を本セクションに記載するイメージングアッセイにより判定する。イメージングアッセイにより検出された膵炎マーカーの異常(セクション6.2.2及び6.2.1に記載)を、マーカーの正常基準範囲または健常対照対象の範囲の方向に低減させるか、向上させるか、変化させるかまたは元に戻す治療剤を、本明細書で提供される方法に使用することができる。
セクション6.2.2.1で提供された血清学的マーカー、尿中マーカー及び糞便マーカーは、当業者に周知のように、免疫学的アッセイなどの生化学的アッセイによって検出することができる。そのようなアッセイの形式には、ELISAアッセイ、ストリップ試験、ビーズベースのFACSアッセイ、ウエスタンブロッティングアッセイ、クロマトグラフィーアッセイ(例えば、FPLC及びHPLC)、分光アッセイ、比色アッセイ及び質量分析法が含まれ得る。
本明細書で提供される方法におけるアッセイのいくつかの実施形態では、本明細書で提供される方法に従って、セクション6.3.3で以下にさらに論じるモデルアッセイ系に治療剤を投与し、膵臓の機能を本セクションに記載するアッセイにより判定する。膵臓の機能を回復させるか、または膵臓の機能のレベルを正常基準範囲もしくは健常対照対象のレベルに向けて変化させる治療剤を、本明細書で提供される方法で使用することができる。膵機能をアッセイするための様々な詳細なプロトコルは、例えば、John G Lieb II and Peter V Draganov,World J Gastroenterol.2008 May 28;14(20):3149-3158、Clain JE,et al.,Surg Clin North Am 1999;79:829-845、Couper R.Can J Gastroenterol 1997;11:153-156、Layer P,et al.,J Clin Gastroenterol 1999;28:3-10、Toskes PP.Curr Gastroenterol Rep 1999;1:145-153、Chapter 38 on Chronic Pancreatitis,GI/Liver Secrets Plus,4th edition,edited by McNally PR,2010に記載されているように(これらはすべて、その全体が参照により本明細書に組み込まれる)、当業者に周知であり、日常的に実施されている。
本明細書で提供される方法におけるアッセイのいくつかの実施形態では、本明細書で提供される方法に従って、セクション6.3.3で以下にさらに論じるモデルアッセイ系に治療剤を投与し、1つ以上のシグナル伝達マーカーを本セクションに記載するアッセイにより判定する。シグナル伝達マーカーのレベルを低減させるか、またはシグナル伝達マーカーのレベルを正常基準範囲もしくは健常対照対象のレベルに向けて変化させる治療剤を、本明細書で提供される方法で使用することができる。アッセイで使用することができるシグナル伝達マーカーは、セクション6.2.2.4で前述されている。
6.3.3.1.動物モデル
本開示は、動物モデル(例えば、トランスジェニックマウスモデル)を提供し、この動物(例えば、マウス)は、膵臓でCA19-9を発現し、膵炎を発症するように遺伝子操作されている。以下の開示は、例示的な動物モデルとしてマウスを使用して提供されるが、当業者は、本開示が他の動物、例えば、サル、ブタ、イヌ、ラット及び/またはウサギを含み、またそれらに適用可能であることを理解するであろう。本開示はさらに、CA19-9が、1型前駆体鎖への様々な糖部分の段階的付加により生成され、最終的にフコースのGlcNAcへのα1,4結合が生じることを示す。本明細書で使用する場合、Fut3は、α1,4結合を介してフコース部分を付加する能力を有するフコシルトランスフェラーゼを指す。トランスジェニックマウス膵炎モデルの一実施形態では、マウス胚性幹細胞(mESC)を作製することができ、このmESCは、Creの組織特異的発現に依存する誘導性プロモーター、LoxP隣接ストップカセット(LSL)の組換え及びドキシサイクリン(Dox)の投与を介してFut3及びβ3GalT5を発現する。CreをトランスフェクトしたmESC及びCreをトランスフェクトしていないmESCからマウスを作製して、Cre発現依存性または非依存性のいずれかの系統を作製することができる。これらのトランスジェニックマウスでは、Fut3及びβ3GalT5の発現、したがってCA19-9の発現は、Doxの投与により誘導することができる。したがって、本開示は、CA19-9の発現をマウスの膵臓全体で誘導することができるマウス、CA19-9の発現をマウスの膵臓の限局的領域で誘導することができるマウス、及びCA19-9の発現をマウスの全身で誘導することができるマウスを提供する。これらのマウスはCA19-9マウスモデルと称され、それぞれが本明細書で提供される方法に使用することができる。
あるいは、膵炎におけるシグナル伝達経路または機序の一部またはすべてを再現する細胞モデルを、治療剤の同定、前述の通りにシグナル伝達マーカーを低下または上昇させる治療剤の活性の確認、膵炎における治療剤の治療アウトカムの判定、及び膵炎における治療剤の有効性の試験のために本明細書で提供される方法に使用することができる。さらに、前述の通り、本明細書で提供される細胞モデルのいずれも、本明細書で開示されるアッセイと任意の順列または組み合わせで使用することができる。本明細書で提供される方法に適したこれらの細胞モデルには、(例えば、マウス膵管腺癌(PDAC)細胞にFut3及び/またはβ3GalT5の発現を導入することにより)CA19-9を発現するように操作したマウスPDAC細胞株、ならびにヒトPDAC細胞株(Suit2など)が含まれる。本開示は、天然にまたは組換えによりCA19-9を発現するPDAC細胞が、ヒト膵炎の根底をなすシグナル伝達経路及び機序の一部またはすべてを再現し、これら細胞を、本明細書で提供される方法及びアッセイで使用できることを示す。
細胞及び3D細胞構造物を使用するアッセイは、高スループットアッセイであり得る。当業者には公知であるように、セクション6.3.1、6.3.2及び実施例に記載されているアッセイのいずれも、細胞または3D細胞構造物をモデル系として使用する場合、高スループットアッセイに採用することができる。本明細書に記載のシグナル伝達マーカー、組織学的マーカー及び血清学的マーカーのいずれか1つを測定することにより、36ウェル、64ウェル、96ウェル、384ウェル及び1536ウェルプレートスクリーニングを使用するようにアッセイを設計することができる。そのような高スループットアッセイの設定に関して、治療剤及び他のアッセイ試薬を移すための液体取扱システム、例えば、Matrix(Hudson,NH)のPlateMate PlusシステムならびにPerkinElmerシステムのMiniTrak及びMultiprobe II HTEXが、当該技術分野において公知である。本明細書に記載のシグナル伝達マーカー、組織学的マーカー及び血清学的マーカーのいずれか1つの測定に基づくデータを、ViewLux Imaging System(PerkinElmer)などの市販のイメージングシステムを使用して収集することができる。ある特定の実施形態では、野生型細胞、野生型3D細胞構造物、健常対象からの細胞、または健常対象からの3D細胞構造物を、高スループットアッセイにおける対照として使用して、シグナル伝達マーカー、組織学的マーカー及び血清学的マーカーのいずれか1つの測定値の正常範囲または基準範囲を示すことができる。
実施例1
実施例における実施形態で使用される材料を、以下の通り調製し、製造し、入手し、購入し、判定し、評価し、検証し、及び/または得た。
ヒト標本を、ヒト倫理委員会であるEthikkommission an der Technischen Universitat Dresden(Institute of Pathology,University Hospital Dresden,Dresden,Germany)及びCold Spring Harbor LaboratoryのInstitutional Review Board(IRB)の承認を得た後に得た。正常膵組織を、University of Illinois at Chicago及びUniversity of Miami Miller School of Medicineでの膵島移植プログラムより得た。組織マイクロアレイを、Dresden(Institute of Pathology,University Hospital Dresden)における適切なインフォームドコンセントの後に得た慢性膵炎患者の試料から調製した。ヒト倫理委員会:Ethikkommission an der Technischen Universitat Dresden(EK59032007)による審査後に、各患者についてインフォームドコンセントを得た。慢性膵炎の試料を、1993年から2009年に手術を受けた患者から採取した。慢性膵炎の診断は病理医(D.A.)によって確認された。最終診断は組織学的検査に基づいて病理医によって確立され、24ヶ月の中間追跡期間によって、PDACを疾患群において除外した。膵炎患者の場合、すべてのコホートの選択基準には、患者による書面のインフォームドコンセント及び既存の慢性膵炎が含まれた。慢性膵炎の診断は、以下の基準:1年を超える期間にわたるアミラーゼ及びリパーゼ活性の上昇の記録を伴う再発性の膵痛の発作、ならびに診断を裏付ける放射線学的証拠、膵石灰化、慢性膵炎の組織学的証拠、膵管形態の明白な変化、消化不良を伴う重度に異常な膵機能検査、のうちの1つ以上に合致し、より可能性の高い他の診断がない場合になされた(Mayerle,J.et al.,Dtsch Arztebl Int 110,387-393,(2013)。これは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる)。石灰化をCTスキャンで同定し、糖尿病をWHOの定義により提唱されているように診断し、外分泌機能不全を糞便エラスターゼ測定または膵酵素の同時補充のいずれかによって判定した。除外基準は、他の随伴性悪性疾患、募集前の過去2年以内の悪性疾患の治癒的処置、膵臓の随伴性の嚢胞性疾患、妊娠、またはインフォームドコンセントが提供できない患者であった。CA19-9の判定を、認可された臨床検査室にて一元的に実施した。
CD4(100428、クローンGK1.5)、CD8(100714、クローン53.6.7)、TcRベータクローン(109222、クローンH57-597)、TcRガンマデルタ(118106、クローンGL3)、CD19(152406、クローン1D3)、CD45(103138、クローン30-F11)、NKp46(137716、クローン29A1.4)、CD11b(101224、クローンM1/70)、CD11c(117318、クローンN418)、Ly6C(128016、クローンHK1.4)、Ly6G(27606、クローン1A8)、PDGFRa(APA5)、抗ラットBV421(4054)及びストレプトアビジン(405214)をBiolegendから購入した。CA19-9(r5B-1、Mabvax(Sawada,R.et al.Clin Cancer Res 17,1024-1032,(2011)、Viola-Villegas,N.T.et al.Journal of nuclear medicine:official publication,Society of Nuclear Medicine 54,1876-1882,(2013)。これらは両方ともその全体が参照により本明細書に組み込まれる))、CA19-9(ATCCハイブリドーマ 1116-NS-19-9 HB8059)、ホスホ-EGFR(8G6.2、EMD Millipore、IHC)、ホスホ-ERK1/2(4370、Cell Signaling)、ERK1/2(4695、Cell Signaling)、ホスホ-Akt(4060、2965、Cell Signaling)、Akt(4685、Cell Signaling)、ホスホリボソームS6(phosphor-ribosomal S6)(4858、Cell Signaling)、及びS6リボソームタンパク質(2317、Cell Signaling)、ホスホ-EGFR(3777、Cell Signaling)、EGFR(71655、Cell Signaling)、EGFR(4267、Cell Signaling)、組換えマウスEGFR-Fc(RnD)、Ki67(Spring Bioscience M3062)、CK19(TROMA III、DSHB)、eGFP(A-11122、Thermofisher)、FLAG(Sigma、F7425)、ヒトアイソタイプ対照(Synagis)、マウスアイソタイプ対照(MOPC21)。
クローニング:
ヒトFUT3 cDNAをPCR増幅し、pBabe-Neoにサブクローニングし、サンガーシーケンシングを使用して確認した。ヒトFUT3及びβ3GalT5(Dharmacon、CCSB-broadレンチウイルス発現 OHS6085-213580074)をPCR増幅し、T2A融合体(Fut3-T2A-β3GalT5)として、pBabe-Neo及びColA1標的カセットにサブクローニングした(Beard C,et al.,Genesis.2006;44(1):23-8)。
リコンビナーゼ媒介性カセット交換のためにColA1に予め標的化したFRT部位を含有するD34 mES細胞(129/C57Bl/6J F1ハイブリッド)(Beard,C.,Genesis 44,23-28,(2006)。これは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる)、及びCAGS-LSL-rtTA3-IRES-mKate2(Dow LE,et al.,PLoS One.2014;9(4):e95236。これは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる)対立遺伝子を使用して、TRE駆動型Fut3-T2A-β3GalT5-IRES-eGFPコンストラクトを導入した。簡潔に述べると、ゼラチンコートした組織培養プレート中の照射したDR4マウス胚線維芽細胞フィーダー上で、mES細胞株D34を、LIF含有mES細胞培地中で継代3で解凍し、48時間後、2i条件に切り替えた(Ying,Q.L.et al.,Nature 453,519-523(2008)。これは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる)。mES細胞をトリプシン処理し、照射したDR4フィーダーを37℃で45分間再付着させた。エレクトロポレーションを、2.5μgのFlpE及び5μgのTRE-Fut3-T2A-β3GalT5-IRES-eGFP導入遺伝子を含有する標的化カセットを使用して実施した。600,000個のmES細胞をエレクトロポレーション緩衝液(P3、LonzaのAmaxa)に再懸濁させ、DNAと混合し、エレクトロポレーションストリップウェルに移し、mES細胞に最適化したAmaxaエレクトロポレーションプログラムを使用してエレクトロポレーションした。エレクトロポレーション後、照射したDR4フィーダーを含有する6cmプレートにmES細胞を移した。ハイグロマイシンB選択(140μg/ml、Roche)を48時間後に開始し、11日後に、増殖及び評価のために生存コロニーを採取した。mES細胞クローンを別のプレート中でジェネティシンで処置し、正しい組換え364及びネオマイシン感受性の回復を確認した。さらに、追加のプレート中で、mES細胞にCREをトランスフェクトし、ドキシサイクリンで処置して、Cre依存性のmKate蛍光ならびにCre及びDox依存性のeGFP蛍光を確認した。
mES細胞のgDNAを、15個のクローン(Gentra,Puregene)から回収した。簡潔に述べると、細胞をPBSで2回洗浄し、ウェルごとに300μlの細胞溶解液を添加して、セルリフターを使用して細胞を擦り取った。溶解物を新しいチューブに移し、37℃で45分間インキュベートした。100μlのタンパク質沈殿溶液を添加して、チューブを10回反転させた。溶解物を最大速度で2分間遠心分離し、上清を新しいチューブに移した。300μlのイソプロパノールを添加して、チューブを50回反転させた後、最大速度で2分間遠心分離した。上清を慎重にデカントし、吸収紙にブロットして風乾させた。DNAペレットを50μlの水に再懸濁させ、65°Cで1時間、穏やかに振盪しながら室温で4時間インキュベートした後、-20°Cで保存した。
ES細胞のgDNAを、EcoRI(NEB)で37℃で18時間、穏やかに振盪しながら消化させた。消化したgDNAを、0.8%TAEアガロースゲルで22時間、20~35Vで泳動させた。ゲルを10分間回転させながら臭化エチジウムで染色し、水で洗浄する前にイメージングした。ゲルを変性溶液(0.5N NaOH、1.5M NaCl)中で30分間回転させながらインキュベートした後、水で洗浄した。ゲルを中和溶液(1M Tris、3M NaCl、pH7.0)中で30分間回転させながらインキュベートした後、水で洗浄した。ゲルを20×SSCで一晩、室温で毛細管流動によりナイロンメンブレン(Schleicher & Schuell Nytran)に転写した。膜を2×SSCですすぎ、ワットマン紙の上に置き風乾させた後、60秒間UV架橋させた。膜をRobbinsチューブ内の10mlのPre-Hyb溶液に入れ、回転させながら68℃で30分間インキュベートした。Pre-hybの洗浄を42℃で回転させながら繰り返した。次に、適切なプローブを含むハイブリダイゼーション溶液中で、42℃で回転させながら膜を一晩インキュベートした。プローブは、eGFP(482958CPM、Rediprime)及びピューロマイシン(186409CPM、Rediprime)に対して作製した。次に、膜を68℃で30分間、回転させながら3×SSC/0.5%SDSで2回洗浄してから、-80°Cで一晩フィルムに感光させた。検証済みの単一コピー挿入物よりもシグナルが高いクローンを除外するため、gDNAをeGFPの遺伝子型同定のためにTransnetyxにも送った。クローンFB8及びFB12を、四倍体補完(NYU)のために選択し、両方とも生殖細胞系列が伝達したファウンダーを産生した。両方のクローンは同じCA19-9発現パターンを示し、クローンFB12のファウンダーをさらなる評価のために選択した。
KPCマウス(Kras+/LSL-G12D;Trp53+/R172H;Pdx1-Cre)は、以前に説明されており(Hingorani SR,et al.,Cancer Cell.2003;4(6):437-50、Hingorani SR,et al.,Cancer Cell.2005;7(5):469-83)、これを、C57Bl/6Jバックグラウンド(The Jackson Laboratory、000664系統)に戻し交配した。すべての動物実験を、Cold Spring Harbor LaboratoryのIACUCによって承認された手順に従って実施した。マウスを、6~8週齢で実験的試験に組み入れた。マウスに、10mg/mlのスクロースを補充した飲料水(0.5~2mg/ml)を介して、最大1週間の試験期間中にドキシサイクリンを投与した。1週間を超える実験的試験については、ドキシサイクリンを固形飼料により投与し、マウス1匹あたり4~5g/日の消費に基づいて、1日あたり2~3mgのドキシサイクリンを送達するように設計した(Harlan Teklad、dietTD.01306、ドキシサイクリン625mg)。EdU(300μg、Santa Cruz)を3日間連続で1日2回腹腔内投与した。セルレインを200μl(10μg/ml)の8時間ごとの用量で48時間腹腔内投与して、C57Bl/6Jマウスを24時間または72時間回復させた。血糖値を、414外側伏在静脈でACCU-CHECK Nano(Roche)を使用して測定した。
同種指向性のPhoenix細胞(ATCC)を、10cmの組織培養プレートあたり4×106細胞で播種した。24時間後、細胞は70~80%コンフルエントであった。トランスフェクションの1時間前に、培地をDMEM中の10%FBS、クロロキン25μmと交換した。総量438μlの水中の10μgのプラスミドDNAを、62μlのCaCl2に添加した。DNA/CaCl2混合物を500μlの2×HBSに滴加しながら、同時に溶液全体に空気をバブリングした。混合物を室温で30分間インキュベートした。溶液をボルテックスした後、組織培養プレートに滴加した。16時間後、培地を10%FBSを補充したDMEMに交換した。ウイルス上清を24時間及び48時間で回収し、濾過した(0.45μm)。1容量のRetro-Xコンセントレータ(Clontech)を3容量のウイルス上清に添加して、4℃で一晩インキュベートした。1500×gで45分間、4°Cで遠心分離した後、ウイルスペレットを感染に適した培地で再懸濁させた。単層細胞の感染用に、10μg/mlのポリブレンを含有する10%FBSを補充したDMEM中に、ウイルスを再懸濁させた。感染の48時間後に選択を開始した。オルガノイドの感染用に、ウイルスペレットを、10μg/mlのポリブレン及び10.5μMのRhoキナーゼ阻害剤Y-27632(Sigma)を含有するオルガノイド培地に再懸濁させた。オルガノイドの感染を、単一細胞を室温で600RCFで1時間スピノキュレーション(spinoculation)を使用して解離させた後(100,000~250,000細胞)、続いて、マトリゲルに再懸濁させ、最初の72時間、10.5μMのRhoキナーゼ阻害剤Y-27632(Sigma)の存在下でオルガノイドとして増殖させて実施した。感染の2日後、オルガノイドを選択のために1mg/mlのジェネティシン(Life technologies)またはブラストサイジン(10μg/mL、最終濃度)で処置した。
ホルマリン固定しパラフィン包埋したブロックを薄片にし、脱パラフィンした。別途明記しない限り、抗原の回復を、圧力鍋にてクエン酸緩衝液中で6分間実施した。30分間のクエン酸緩衝液の抗原回復に続いて、ホスホ-EGFR IHCを、以前に説明されている通り(Ardito CM,et al.,Cancer Cell.2012;22(3):304-17)に実施した。内因性ペルオキシダーゼを、室温で20分間、TBS中の3%過酸化水素水でクエンチした。次に、スライドを水道水ですすぎ、Cadenzaシステムに移した。スライドを、室温で1時間、TBST中の3%BSAでブロッキングし、一次抗体で一晩インキュベートした。スライドをTBSTで3回洗浄後、西洋ワサビペルオキシダーゼコンジュゲート二次抗体で室温で1時間インキュベートした。スライドをTBSTで3回洗浄し、Cadenzaシステムから取り外した。ImmPACT DAB(Vector)を1~10分間インキュベートし、続いて水で洗浄し、ヘマトキシリン対比染色剤でインキュベートした。次に、スライドを脱水し、cytoseal60でカバースリップした。
スライドをAperio CS2スキャナー(Leica)を使用してスキャンして、総占有ピクセル面積をImagescope(Leica)で算出した。H&E染色したスライド上の影響を受けた膵炎領域に手動で注釈を付し、影響を受けていない領域及び影響を受けた領域を測定した。膵炎領域を、浸潤リンパ球の存在、腺房小葉内の腫脹、腺房から導管への化生、線維化及び脂肪細胞の置換によって定義した。Ki67陽性核の数を、1群あたり少なくとも4匹の動物からの5つの代表的な高倍率視野において手動で計数した。
血漿中のアミラーゼ及びリパーゼレベル(リチウムヘパリン、BD biosciences)を、IDEXXの病理学サービスによって測定した。CA19-9レベルを、MagPIXマルチプレックスELISAプラットフォーム(Luminex)でヒトがんバイオマーカーアッセイ(EMD Millipore)を使用して測定した。血糖値を、外側伏在静脈でAccu-Chek Nanoモニター(Roche)を使用して測定した。CA19-9を対象とする抗体のレベルを、高結合性ポリスチレン平底プレートを275ユニットのCA19-9(MyBioSource、MBS318287)で室温で一晩コーティングすることによって測定した。CA19-9でコーティングしたプレートを、PBS中の0.05%Tween(登録商標)20で洗浄し、洗浄緩衝液中の1%BSAでブロッキングしてから、最終容量100μlのブロッキング緩衝液で10μlのマウス血漿をインキュベートした。
新鮮な糞便試料を採取し、各アッセイ緩衝液のそれぞれにおいて手動による破壊(Biomasher II)を使用して処理した。キモトリプシン(BioVision)及びエラスターゼ(EnzChek,ThermoFisher)の測定を、製造業者の指示に従って実施した。
膵管オルガノイド培養物の単離及び増殖のための詳細な手順は、以前に説明されている(Boj Sylvia F,et al.,Cell.2015;160(1-2):324-38)。簡潔に述べると、膵臓の導管を、1%FBS(GIBCO)含有DMEM中の0.012%コラゲナーゼXI(Sigma)及び0.12%ディスパーゼ(GIBCO)による酵素消化後に回収し、100%成長因子低減(GFR)マトリゲル(BD)に包埋した。オルガノイドを、最終濃度100ng~1μg/mlのドキシサイクリンで処置した。必要な場合(例えば、増殖曲線)、オルガノイドを、2mg/mlのディスパーゼを使用して単一細胞懸濁液に解離させ、続いて37℃で10分間、TrypLEでインキュベーションした。細胞を40μmのセルストレーナーで濾過した。細胞濃度を、Nexcelom Cellometerでアクリジンオレンジ及びヨウ化プロピジウムを使用して判定した。CellTiter-Gloを使用した増殖曲線分析のために、オルガノイド単一細胞を、384ウェルプレートにウェルあたり500細胞で10%マトリゲル中に播種した。抗体ブロッキング実験を、2~4μgの抗体を使用して実施した。
脾臓及びリンパ節を、FACS緩衝液(eBioscience)中で機械的に解離させ、ホモジナイズして、ナイロンセルストレーナー(BD Falcon)に通した。膵臓を機械的に解離させ、10%FCSを補充したDMEM(Gibco)中の0.4mg/mLリベラーゼ、0.05mg/mLコラゲナーゼD及び0.1mg/mL DNase I(Roche)で、37℃で30分間消化して、懸濁液をナイロンセルストレーナーに通した。
染色を、プレートシェーカー上で細胞を4℃で15分間、FACS緩衝液(eBioscience)中の抗体とともにインキュベートすることにより実施した。マルチカラーフローサイトメトリー分析を、LSR Fortessaサイトメーター(BD Biosciences)を使用して実施した。すべてのフローサイトメトリー実験のゲーティング戦略を、以下にさらに記載する。
免疫ブロッティングには標準的な手法を用いた。簡潔に述べると、タンパク質溶解物を4~12%のBis-Tris NuPAGEゲル(Life Technologies)上で分離し、PVDF膜(Millipore)に転写し、TBS中の0.1%Tween(登録商標)20中の3%BSA(Sigma)で1時間ブロッキングした。次に、膜を一次抗体で4℃で振盪しながら一晩インキュベートした後、西洋ワサビペルオキシダーゼにコンジュゲートした適切な二次抗体で1時間インキュベートし、ECL(GE Healthcare)により検出した。指定のタンパク質標的に対して正規化した変化を、ローディング対照であるコフィリン及び未処置の時点と比較して定量化した。
組織培養プレートを氷冷PBSで3回洗浄し、氷上で30分間、1×プロテアーゼ・ホスファターゼ阻害剤カクテルを含む、1%Triton(登録商標) X-100、50mM Tris-HCl(pH7.5)、150mM NaCl、5mM EDTA入りのプレート上で溶解させた。溶解物をマイクロ遠心チューブに移し、16100RCFで4°Cで10分間清澄化して、-20°Cで保存するために新しいチューブに分取した。
液体オーバーレイ培地を、0.5×完全ミニプロテアーゼ阻害剤カクテル(Roche、EDTA不含)と0.5×PhosSTOP(Roche)とを含有するオルガノイド及び氷冷Cell Recovery Solution(Corning)から吸引した。オルガノイドをCRS中で0.5×プロテアーゼ・ホスファターゼ阻害剤とともに氷上で10分間インキュベートし、続いて、4℃で5分間、1500RCFで遠心分離した。上清を廃棄し、オルガノイドを0.5×プロテアーゼ・ホスファターゼ阻害剤を含むCRSで1回洗浄した。オルガノイドペレットを液体窒素中で急速冷凍し、-80℃で保存した。オルガノイドを、氷上で30分間、1×プロテアーゼ・ホスファターゼ阻害剤カクテルを含む、1%Triton(登録商標) X-100、50mM Tris-HCl(pH7.5)、150mM NaCl、5mM EDTA中で溶解させ、16100RCFで4°Cで10分間清澄化して、-20°Cで保存するために新しいチューブに分取した。
CA19-9の免疫沈降を、20mM HEPES、150mM NaClを含有するIP緩衝液中で、0.5×完全ミニプロテアーゼ阻害剤カクテル(Roche、EDTA不含)の存在下で実施した。モノクローナル抗体を、製造業者の指示に従ってM-270 Epoxy Dynabeads(Thermo Fisher)にコンジュゲートさせた。100μlのmAbコンジュゲートDynabeadsをIP緩衝液で3回洗浄し、1.5mlのLoBindマイクロ遠心チューブ(Eppendorf)内の1mlのIP緩衝液中の単層細胞株からの500μgの全細胞溶解物、または5mlのLoBindチューブ(Eppendorf)内の4mlのオルガノイド条件培地とともに、4℃で1時間回転させながらインキュベートした。試料を磁石に1分間結合させた後、上清を除去し、ビーズをIP緩衝液で3回洗浄した。
Trizol及びPureLink RNA単離キットを製造業者(Thermo Fisher)の指示に従って使用して、RNAを細胞及びオルガノイド培養物から抽出した。1μgの全RNA及びTaqMan Reverse Transcription Reagent(Applied Biosystems)を使用して、cDNAを合成した。QuantStudio 6-フレックスリアルタイムPCR装置(Applied Biosystems)で、遺伝子特異的Taqmanプライマー及びプローブセット(Applied Biosystems)を使用して、すべての標的を増幅した(40サイクル)。相対的な遺伝子発現の定量化を、QuantStudioリアルタイムPCRソフトウェアv1.1 (Applied Biosystems)を使用したDDCt法を使用して実施した。発現レベルをHprtに対して正規化した。解析した例示的な遺伝子には、Mm01187858_ml(EGFR)、Mm0065854l_ml(Her2)、Mm01159999_ml(Erbb3)、Mm01256793_ml(Erbb4)、Mm00438696_ml(EGF)、Mm00446232_ml(TGFa)、Mm01354339_ml(Areg)、Mm00514794_ml(Ereg)、Mm00446968_ml(Hprt)が含まれた。
RNAシーケンシングを、Judith Sulzberger Columbia Genome Centerにて、Illumina HiSeq2500装置で60倍のカバレッジ及び100bpのペアエンドリードを使用して実施した。Kallisto 0.44(Bray,N.L.,et al.,Nat Biotechnol 34,525-527(2016)。これは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる)で、Ensembl GRCh38マウストランスクリプトームを、β3GALT5(ENST00000380620.8、ENST00000475838.1、ENST00000380618.5、ENST00000398714.3、ENST00000615480.4、ENST00000615480.4)、FUT3(ENST00000458379.6、ENST00000458379.6、ENST00000303225.10、ENST00000589620.5、ENST00000589620.5、ENST00000587048.1、ENST00000587048.1、ENST00000585715.1、ENST00000587183.1、ENST00000588539.1)、eGFP(pBS31’-RBGpA\TRE)、rtTA3(pRosa-pA-CAGGs-L)及びmKate2(Akama-Garren,E.H.et al.Sci Rep 6,16836,(2016)。これは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる)のcDNAと組み合わせて使用して、転写物の存在量を定量化した。
ビーズを、20μLの50mM炭酸水素トリエチルアンモニウム緩衝液(TEAB)で再構成した。RapiGestを最終濃度が0.1%になるように添加し、トリス(2-カルボキシエチル)ホスフィン(TCEP)を最終濃度が5mMになるように添加した。次に、試料を20分間55°Cまで加熱し、室温まで冷却して、メチルメタンチオスルホン酸(MMTS)を最終濃度が10mMになるように添加した。試料を室温で20分間インキュベートして、遊離スルフヒドリル基のブロッキングを完了した。次に、2μgのシーケンスグレードのトリプシン(Promega)を試料に添加し、試料を37℃で一晩消化させた。消化後、上清をビーズから除去し真空中で乾燥させた。ペプチドを50μLの0.5M TEAB/70%エタノールで再構成し、室温で1時間、8プレックスiTRAQ試薬で標識した(Ross PL,et al.,Mol Cell Proteomics.2004;3(12):1154-69)。次に、標識した試料をギ酸を使用してpH4に酸性化して合わせて、約10μLが残存するまで真空中で濃縮した。
Pierce High pH Reversed-Phase Peptide Fractionation Kit(Thermo Scientific)を製造業者の指示に従いそこにわずかな変更を加えて使用して、ペプチドを分画した。簡潔に述べると、ペプチドを150μLの0.1%TFAで再構成し、スピンカラムにロードし、3000gで2分間遠心分離した。カラムを水で洗浄後、0.1%トリエチルアミン(TEA)中の次のパーセンテージ:5%、7.5%、10%、12.5%、15%、20%、30%及び50%のアセトニトリル(ACN)でペプチドを溶出させた。次に、8つの分画のそれぞれを、低pHでキャピラリー逆相LCを使用して質量分析計に個々に注入した。
ペプチドを、高-低pH逆相分離戦略(その全体が参照により本明細書に組み込まれる、Gilar,M.,et al.,Journal of separation science 28,1694-1703(2005)より適用)を使用して分画した。最初の(高pH)次元では、Gemini 3u C18樹脂(Phenomenex,Ventura,CA)を充填した10cm×1.0mmカラムで、流速100μl/分でペプチドを分画した。移動相Aを20mMギ酸アンモニウム(pH10)で構成し、移動相Bを90%アセトニトリル/20mMギ酸アンモニウム(pH10)で構成した。試料を50μLの移動相Aで再構成し、試料全体をカラムに注入した。Bを5%からBを70%の線形勾配を35分間使用してペプチドを分離し、次いで移動相を10分間、Bを95%まで増加させた。画分を40分間にわたり毎分採取し、次に、Wang,Y.et al.Proteomics 11,2019-2026(2011)(これは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる)により記載されたコンカテネーション(concatenation)戦略を使用して8つの画分に合わせた。次に、8つの分画のそれぞれを、低pHでキャピラリー逆相LCを使用して質量分析計に個々に注入した。
ナノイオンスプレー源を備えたOrbitrap Velos Pro質量分析計(Thermo Scientific)を、EASY-nLCシステム(Thermo Scientific)に連結した。ナノフローLCシステムは、3cmのAqua 5μm C18材料(Phenomenex)を含有する内径180μmの溶融シリカキャピラリートラップカラム、及びAqua 3μm C18材料(Phenomenex)を15cmまで充填した8μmエミッター(New Objective,Woburn,MA)を備えたセルフパックPicoFrit(商標)100μm分析カラムで構成されていた。移動相Aを2%アセトニトリル、0.1%ギ酸で構成し、移動相Bを90%アセトニトリル、0.1%ギ酸で構成した。移動相Aに溶解させた3μLの各試料を、オートサンプラーを介してトラップカラムに注入した。次に、以下の線形勾配段階:Bが5%で1分間、70分間でBを5%からBを35%に、15分間でBを35%からBを75%に、Bを75%で8分間維持し、1分間でBを75%からBを8%に、最後の5分間はBを8%で維持、を400nL/分の流量で使用してペプチドを分離した。
ナノイオンスプレー源を備えたOrbitrap Fusion Lumos質量分析計(Thermo Scientific)を、EASY-nLC1200システム(Thermo Scientific)に連結した。LCシステムは、ReproSil-Pur C18-AQ 1.9uM材料(Dr.Maish GmbH)を25cmまで充填した8μmエミッター(New Objective,Woburn,MA)を備えたセルフパックPicoFrit(商標)75μm分析カラムで構成されていた。移動相Aを2%アセトニトリル、0.1%ギ酸で構成し、移動相Bを90%アセトニトリル、0.1%ギ酸で構成した。次に、以下の段階:200nL/分の流量で、1分間でBを2%からBを6%、84分間でBを6%からBを30%に、9分間でBを30%からBを60%に、1分間でBを60%からBを90%に、Bを90%で5分間維持し、1分間でBを90%からBを50%にして、次にBを50%で9分間維持する際に流量を500nL/分に増加、を使用してペプチドを分離した。
ピークリスト(.MGF)ファイルを、Mascot Distiller 2.6(Matrix Science)によって作成した。タンパク質の同定及び定量化を、UniProtマウスまたはヒト参照プロテオーム(それぞれ60,725配列及び93,799配列)に対して検索する、Mascot2.6(Perkins,D.N.et al.,Electrophoresis 20,3551-3567(1999)。これは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる)を使用して実施した。システインのメチルチオール化ならびにN末端及びリシンのiTRAQ修飾を固定の修飾として設定し、メチオニン酸化及び脱アミド化(NQ)を可変として設定した。トリプシンを切断酵素として使用し、1回の切断ミスを許容した。質量許容差を、インタクトなペプチドの質量については30ppm、断片イオンについては0.3Daに設定した。同じUniprotヒトまたはマウスデータベースのランダム化バージョンを使用して、最終1%または5%のFDRを得るように検索結果を再スコア化した。タンパク質レベルのiTRAQ比を、期待値が<1%または5%FDRであるペプチドのみを使用して強度加重として算出した。これらはタンパク質IP実験であったため、全体的な比率の正規化は適用されなかった。次に、タンパク質エンリッチメントを、1.8の値をエンリッチメントのカットオフとして使用して(2>SD)、真の試料のタンパク質比を対応する対照試料の比で割ることにより算出した。
膵炎は、死亡または著しい病的状態、全身性炎症反応及び多臓器不全症候群を伴う慢性状態を招くおそれがある重篤かつ一般的な病状である。膵炎はまた、膵癌を発症するリスクの16.5倍の上昇と関連しており(Lowenfels,A.B.et al.N Engl J Med 328,1433-1437(1993)。これは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる)、膵炎の病因及び処置に関するさらなる研究が必要であることが明確に示されている。一部の膵炎患者(10~30%)の血清では、CA19-9の上昇を含むグリコシル化の変化が認められているが、疾患の進行におけるこのグリカンエピトープに帰する役割は存在しない(Haglund,C.et al.,Br J Cancer 53,189-195(1986)、Makovitzky,J.Virchows Archiv.B, Cell pathology including molecular pathology 51,535-544(1986)。これらは両方とも、その全体が参照により本明細書に組み込まれる)。我々は、膵炎の切除標本の組織マイクロアレイ(TMA)を評価し、90%を超える患者において、CA19-9は、主に導管に発現しているが腺房上皮細胞には発現していないことを見出し(図1A、図1B)、これは、この疾患におけるその突出した存在を実証している。CA19-9は、1型前駆体鎖への様々な糖部分の段階的付加により生成され、最終的にフコースのN-アセチルグルコサミン(GlcNAc)へのα1,4結合が生じ(図1C)、CA19-9は分泌タンパク質及び細胞表面タンパク質に多価的に付加することができる。マウスにおけるCA19-9の機能的重要性の評価は、げっ歯類の偽遺伝子であるFut3をマウスが欠如していることにより妨げられてきた(Xia,B.et al.,Anal Biochem 387,162-170(2009)、Narimatsu,H.in Handbook of Glycosyltransferases and Related Genes(eds Naoyuki Taniguchi et al.)218-225(Springer Japan,2002)。これらは両方ともその全体が参照により本明細書に組み込まれる)。Fut3は、α1,4結合を介してフコース部分を付加する能力を有する唯一のフコシルトランスフェラーゼである。我々は、I型鎖前駆体の産生に必要なFUT3及びβ3GALT5(Ishijima,N.et al.J Biol Chem 286,25256-25264(2011)。これは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる)の両方の発現が、マウス膵管腺癌(PDAC)細胞の培養物におけるCA19-9(シアリルルイスa、sLea)の産生に必要であることを見出した(図1C~1E)。FUT3及びβ3GALT5の両方の発現は、ヒトがん細胞株(Colo205)で観察されたものと同等レベルでのCA19-9の細胞表面発現をもたらした(図1E)。操作したマウスPDAC細胞中でCA19-9エピトープが適切な方法で発現したことを確認するために、それらをヒトPDAC細胞株と比較したところ、培養物中で予想された膜局在化も示すことが判明した(図1F)。さらに、CA19-9にコンジュゲートしたタンパク質は、同所移植後にin vivoで分泌され、これは、ヒトPDAC細胞株移植レシピエントに匹敵するレベルでのCA19-9の産生を実証している(図1G)。
我々は、LoxP隣接STOPカセット(LSL)及びテトラサイクリン応答性プロモーターエレメント(TRE)によって調節される誘導性及び条件付きプロモーターを介してFUT3、β3GALT5及びeGFPを多遺伝子的に発現するマウス胚性幹(mES)細胞を作製した(図3A~3D)(Beard,C.et al.,Genesis 44,23-28(2006)。これは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる)。CA19-9の全身(R;F)発現、膵臓全体(CPDX;RLSL;F)発現または膵臓限局性(CPDXもしくはp48;RLSL;FLSL)発現のいずれかを保有するいくつかのタイプのマウスモデルを作製した。すべてのCA19-9マウスモデルにおいて、膵臓以外の組織は、Dox処置の時間経過後、遺伝的に陰性の同腹仔対照と比較して正常な組織構造を示した(図4~24)。意外にも、すべてのモデルが膵炎の生理学的、組織学的及び血清学的徴候(腺房萎縮、免疫細胞浸潤、コラーゲン沈着、リパーゼ及びアミラーゼの上昇)を選択的に示したが、他方、Dox処置した遺伝的陰性の対照または未処置マウスでは膵炎は観察されなかった(図25A~25C、図26~27、図28A~28C)。
実施例2に記載の方法及びアッセイは、ここで、本実施例に組み込まれる。
遺伝的マウスモデルにおけるCA19-9の発現は、in vivoのKi67免疫組織化学(IHC)及びEduの取り込みにより評価されるように、特に、導管細胞及び免疫細胞中で膵臓増殖の増加をもたらした(図52A及び図53A~53B)。酵素放出の刺激にもかかわらず、腺房外植片培養物におけるAtf4及びBipのDox依存性誘導の証拠はなく、タンパク質毒性ストレスが、観察された膵炎において役割を果たすという可能性が減少した(図52B~52C)。
実施例2及び3に記載の方法及びアッセイは、ここで、本実施例に組み込まれる。
我々は、遺伝的マウスモデルにおいて、CA19-9媒介性膵炎が、3日間のDoxパルス及び4日間の回復期間後に完全に可逆的であることをさらに見出した(図61A~61B)。これらのデータは、CA19-9の標的化が、膵炎エピソードの重症度及び再発の軽減のために治療的に有用である可能性があることを示唆している。重要なことは、CA19-9を対象とする抗体はまた、急性膵炎(24時間の2g/L Dox、NS19-9クローン)及び重度の急性膵炎(7日間の0.5g/L Dox、5B1クローン)の場合に、膵炎の組織学的及び血清学的徴候も改善し、かつin vivoのEGFRの過剰活性化を低減させ、これが、疾患の病因におけるグリカン及びそれが付着しているコアポリペプチドの役割を示唆していることである(図62A~62D、図63A~63C及び図64A~64C)。しかしながら、逆説的ではあるが、EGFR阻害剤であるエルロチニブは、膵炎誘発の24時間前のエルロチニブによる処置が20%を超える重度の体重減少を生じさせ、試験完了前に人道的エンドポイントに至ったことから、抗CA19-9療法を代替することはできなかった。膵萎縮は剖検時に明らかであり、腺房区画の空胞化は組織学的検査によって明らかであった(図65A~65B)。これらの影響は、正常マウス(C57Bl/6J)におけるエルロチニブに関連する毒性とは無関係であった(図65C~65D)。これらのデータは、EGFRの活性化が、CA19-9による炎症性カスケードの誘発後に腺房区画に対する保護機序として機能することを示唆している。
本発明は、例えば以下の項目を提供する。
(項目1)
膵炎の予防、処置、改善または管理を必要とする対象において前記膵炎を予防、処置、改善または管理するための方法であって、
シアリルルイス a に結合する治療有効量の抗体またはその機能的断片(抗sLe a )を前記対象に投与することを含む、前記方法。
(項目2)
膵炎の予防、処置、改善または管理を必要とする対象において前記膵炎を予防、処置、改善または管理するための方法であって、
(1)シアリルルイス a に結合する抗体またはその機能的断片(抗sLe a )を第1の用量で前記対象に投与すること、
(2)前記対象の膵炎の重症度を判定すること、及び
(3)前記抗sLe a の投与前の前記対象の前記膵炎の重症度と比較して前記対象の前記膵炎の重症度が低減する場合に、抗sLe a に結合する前記抗体もしくはその機能的断片の第2の用量を前記第1の用量と同じかもしくはそれよりもより少量で投与すること、または前記対象の前記膵炎の重症度が低減しない場合に、前記抗sLe a の第2の用量を前記第1の用量よりもより多量で投与すること
を含む、前記方法。
(項目3)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、可変重鎖(VH)ドメインを含み、
前記VHドメインが、配列番号2の残基20~142、配列番号6の残基20~142、配列番号10の残基20~142及び配列番号14の残基20~145からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、項目1~2のいずれか1項に記載の方法。
(項目4)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、可変軽鎖(VL)ドメインを含み、
前記VLドメインが、配列番号4の残基20~130、配列番号8の残基20~129、配列番号12の残基20~130及び配列番号16の残基23~130からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、項目1~2のいずれか1項に記載の方法。
(項目5)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、可変重鎖(VH)ドメイン及び可変軽鎖(VL)ドメインを含み、
前記VHドメイン及び前記VLドメインがそれぞれ、
配列番号2の残基20~142及び配列番号4の残基20~130、
配列番号6の残基20~142及び配列番号8の残基20~129、
配列番号10の残基20~142及び配列番号12の残基20~130、ならびに
配列番号14の残基20~145及び配列番号16の残基23~130
からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、項目1~2のいずれか1項に記載の方法。
(項目6)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、
American Type Culture Collection(ATCC)アクセッション番号HB-8059の下で寄託されたハイブリドーマによって産生された抗体のKabat付番に従う3つの重鎖可変領域の相補性決定領域(CDR)のアミノ酸配列を有する、3つのCDRを含む重鎖可変領域、及び
ATCCアクセッション番号HB-8059の下で寄託されたハイブリドーマによって産生された抗体のKabat付番に従う3つの軽鎖可変領域のCDRのアミノ酸配列を有する、3つのCDRを含む軽鎖可変領域
を含む、項目1~2のいずれか1項に記載の方法。
(項目7)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、
American Type Culture Collection(ATCC)アクセッション番号HB-8059の下で寄託されたハイブリドーマによって産生された抗体の重鎖可変領域のアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び
ATCCアクセッション番号HB-8059の下で寄託されたハイブリドーマによって産生された抗体の軽鎖可変領域のアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域
を含む、項目1~2、及び6のいずれか1項に記載の方法。
(項目8)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、
ATCCアクセッション番号HB-8059の下で寄託されたハイブリドーマによって産生された抗体の重鎖のアミノ酸配列からなる重鎖、及び
ATCCアクセッション番号HB-8059の下で寄託されたハイブリドーマによって産生された抗体の軽鎖のアミノ酸配列からなる軽鎖
を含む、項目1~2及び6~7のいずれか1項に記載の方法。
(項目9)
前記抗sLe a 抗体の機能的断片が、Fab、Fab’、F(ab’) 2 、scFV、ダイアボディ、トリアボディ、ミニボディ及び単一ドメイン抗体(sdAB)からなる群から選択される、項目1~7のいずれか1項に記載の方法。
(項目10)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、ダイアボディである、項目9に記載の方法。
(項目11)
前記ダイアボディが、配列番号18または配列番号20のアミノ酸配列を含む、項目10に記載の方法。
(項目12)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、モノクローナル抗体である、項目1~8のいずれか1項に記載の方法。
(項目13)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、IgGまたはIgMアイソタイプである、項目1~8のいずれか1項に記載の方法。
(項目14)
前記IgG抗体が、IgG1、IgG2、IgG3またはIgG4サブクラスである、項目13に記載の方法。
(項目15)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、薬学的に許容可能な担体を含む医薬組成物として製剤化される、項目1~14のいずれか1項に記載の方法。
(項目16)
前記抗体またはその機能的断片が、非経口的投与経路により投与される、項目1~15のいずれか1項に記載の方法。
(項目17)
前記非経口的投与が、皮下注射、筋肉内注射及び静脈内注射からなる群から選択される、項目16に記載の方法。
(項目18)
前記抗体またはその機能的断片が、約0.1mg/kg/用量~約10mg/kg/用量の用量範囲で投与される、項目1~17のいずれか1項に記載の方法。
(項目19)
前記抗体またはその機能的断片が、毎週、隔週、毎月、または隔月投与される、項目1~18のいずれか1項に記載の方法。
(項目20)
前記抗体またはその機能的断片が、約1ヶ月間、2ヶ月間、3ヶ月間、4ヶ月間、5ヶ月間または6ヶ月間投与される、項目19に記載の方法。
(項目21)
膵炎の予防、処置、改善または管理を必要とする対象において膵炎を予防、処置、改善または管理するための方法であって、CA19-9に結合する治療有効量の治療剤を前記対象に投与することを含む、前記方法。
(項目22)
膵炎の予防、処置、改善または管理を必要とする対象において膵炎を予防、処置、改善または管理するための方法であって、
(1)CA19-9に結合する治療剤を第1の用量で前記対象に投与すること、
(2)前記対象の膵炎の重症度を判定すること、及び
(3)前記薬剤の投与前の前記対象の前記膵炎の重症度と比較して前記対象の前記膵炎の重症度が低減する場合に、前記治療剤の第2の用量を前記第1の用量と同じかもしくはそれよりもより少量で投与すること、または前記対象の前記膵炎の重症度が低減しない場合に、前記治療剤の第2の用量を前記第1の用量よりもより多量で投与することを含む、前記方法。
(項目23)
前記治療剤が、シアリルルイス a に結合する抗体またはその機能的断片(抗sLe a )である、項目21~22のいずれか1項に記載の方法。
(項目24)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、マウスモノクローナル抗体、キメラモノクローナル抗体、ヒト化モノクローナル抗体または完全ヒトモノクローナル抗体である、項目23に記載の方法。
(項目25)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、可変重鎖(VH)ドメインを含み、
前記VHドメインが、配列番号2の残基20~142、配列番号6の残基20~142、配列番号10の残基20~142及び配列番号14の残基20~145からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、項目23~24のいずれか1項に記載の方法。
(項目26)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、可変軽鎖(VL)ドメインを含み、
前記VLドメインが、配列番号4の残基20~130、配列番号8の残基20~129、配列番号12の残基20~130及び配列番号16の残基23~130からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、項目23~24のいずれか1項に記載の方法。
(項目27)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、可変重鎖(VH)ドメイン及び可変軽鎖(VL)ドメインを含み、
前記VHドメイン及び前記VLドメインがそれぞれ、
配列番号2の残基20~142及び配列番号4の残基20~130、
配列番号6の残基20~142及び配列番号8の残基20~129、
配列番号10の残基20~142及び配列番号12の残基20~130、ならびに
配列番号14の残基20~145及び配列番号16の残基23~130
からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、項目23~24のいずれか1項に記載の方法。
(項目28)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、
American Type Culture Collection(ATCC)アクセッション番号HB-8059の下で寄託されたハイブリドーマによって産生された抗体のKabat付番に従う3つの重鎖可変領域の相補性決定領域(CDR)のアミノ酸配列を有する、3つのCDRを含む重鎖可変領域、及び
ATCCアクセッション番号HB-8059の下で寄託されたハイブリドーマによって産生された抗体のKabat付番に従う3つの軽鎖可変領域のCDRのアミノ酸配列を有する、3つのCDRを含む軽鎖可変領域
を含む、項目23~24のいずれか1項に記載の方法。
(項目29)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、
American Type Culture Collection(ATCC)アクセッション番号HB-8059の下で寄託されたハイブリドーマによって産生された抗体の重鎖可変領域のアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び
ATCCアクセッション番号HB-8059の下で寄託されたハイブリドーマによって産生された抗体の軽鎖可変領域のアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域
を含む、項目23~24、及び28のいずれか1項に記載の方法。
(項目30)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、
ATCCアクセッション番号HB-8059の下で寄託されたハイブリドーマによって産生された抗体の重鎖のアミノ酸配列からなる重鎖、及び
ATCCアクセッション番号HB-8059の下で寄託されたハイブリドーマによって産生された抗体の軽鎖のアミノ酸配列からなる軽鎖
を含む、項目23~24及び28~29のいずれか1項に記載の方法。
(項目31)
前記抗sLe a 抗体の機能的断片が、Fab、Fab’、F(ab’) 2 、scFV、ダイアボディ、トリアボディ、ミニボディ及び単一ドメイン抗体(sdAB)からなる群から選択される、項目23~30のいずれか1項に記載の方法。
(項目32)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、ダイアボディである、項目31に記載の方法。
(項目33)
前記ダイアボディが、配列番号18または配列番号20のアミノ酸配列を含む、項目32に記載の方法。
(項目34)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、モノクローナル抗体である、項目23~33のいずれか1項に記載の方法。
(項目35)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、IgGまたはIgMアイソタイプである、項目23~34のいずれか1項に記載の方法。
(項目36)
前記IgG抗体が、IgG1、IgG2、IgG3またはIgG4サブクラスである、項目35に記載の方法。
(項目37)
前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、薬学的に許容可能な担体を含む医薬組成物として製剤化される、項目23~36のいずれか1項に記載の方法。
(項目38)
前記抗体またはその機能的断片が、非経口的投与経路により投与される、項目23~37のいずれか1項に記載の方法。
(項目39)
前記非経口的投与が、皮下注射、筋肉内注射及び静脈内注射からなる群から選択される、項目38に記載の方法。
(項目40)
前記抗体またはその機能的断片が、約0.1mg/kg/用量~約10mg/kg/用量の用量範囲で投与される、項目23~39のいずれか1項に記載の方法。
(項目41)
前記抗体またはその機能的断片が、毎週、隔週、毎月、または隔月投与される、項目23~40のいずれか1項に記載の方法。
(項目42)
前記抗体またはその機能的断片が、約1ヶ月間、2ヶ月間、3ヶ月間、4ヶ月間、5ヶ月間または6ヶ月間投与される、項目41に記載の方法。
(項目43)
前記治療剤が、ペプチドまたはペプチド模倣分子である、項目21~22に記載の方法。
(項目44)
前記ペプチドまたは前記ペプチド模倣分子が、シアリルルイス a に特異的に結合する特性を有する、項目43に記載の方法。
(項目45)
前記膵炎が、1つ以上のマーカーによって特徴付けられる、項目1~44のいずれか1項に記載の方法。
(項目46)
前記膵炎の重症度が、1つ以上のマーカーにより判定される、項目2~20、22~45のいずれか1項に記載の方法。
(項目47)
前記対象が、膵炎の1つ以上のマーカーのレベルが上昇している、項目1~46のいずれか1項に記載の方法。
(項目48)
前記治療剤の前記投与することが、前記対象における膵炎の1つ以上のマーカーのレベルを低減させる、項目1~47のいずれか1項に記載の方法。
(項目49)
前記1つ以上のマーカーが、生理学的マーカー、組織学的マーカー、血清学的マーカー及びシグナル伝達マーカーからなる群から選択される、項目45~48のいずれか1項に記載の方法。
(項目50)
前記組織学的マーカーが、免疫細胞浸潤、コラーゲン沈着、線維性組織、脂肪壊死、間質浮腫、腺房及び血管の破壊、間質出血、導管拡張、腺房細胞の均質化、ならびにCA19-9の発現レベルからなる群から選択される、項目49に記載の方法。
(項目51)
前記1つ以上のマーカーが、CA19-9の発現レベルを含む、項目45~50のいずれか1項に記載の方法。
(項目52)
前記1つ以上のマーカーが、免疫組織化学によって判定される、項目50~52のいずれか1項に記載の方法。
(項目53)
前記血清学的マーカーが、血清リパーゼレベル、血清アミラーゼレベル及び血清C反応性タンパク質レベルからなる群から選択される、項目49に記載の方法。
(項目54)
前記血清リパーゼレベルが、200U/Lを超える、項目53に記載の方法。
(項目55)
前記血清アミラーゼレベルが、200U/Lを超える、項目53に記載の方法。
(項目56)
前記血清アミラーゼレベルが、対照対象の正常血清アミラーゼレベルの上限を3倍上回る、項目53に記載の方法。
(項目57)
前記血清リパーゼレベルが、対照対象の正常血清リパーゼレベルの上限を3倍上回る、項目53に記載の方法。
(項目58)
前記生理学的マーカーが、体重減少、食物の吸収不良、膵萎縮、膵腫大、膵炎症及び胆汁逆流からなる群から選択される、項目49に記載の方法。
(項目59)
膵臓のsLe a が上昇している対象において膵炎を予防、処置、改善または管理するための方法であって、sLe a に特異的に結合する治療有効量の治療剤を前記対象に投与することを含む、前記方法。
(項目60)
前記膵炎が、慢性膵炎及び急性膵炎からなる群から選択される膵炎である、項目1~59のいずれか1項に記載の方法。
(項目61)
前記慢性膵炎が、軽度の慢性膵炎、中等度の慢性膵炎及び重度の慢性膵炎からなる群から選択される、項目60に記載の方法。
(項目62)
前記急性膵炎が、軽度の急性膵炎、中等度の急性膵炎及び重度の急性膵炎からなる群から選択される、項目60に記載の方法。
(項目63)
前記対象が哺乳動物である、項目1~62のいずれか1項に記載の方法。
(項目64)
前記哺乳動物がヒトである、項目63に記載の方法。
Claims (22)
- 膵炎の予防、処置、改善または管理を必要とする対象において膵炎を予防、処置、改善または管理するための医薬の調製のための、シアリルルイスaを含むCA19-9に結合する治療有効量の治療剤の使用であって、前記治療剤が、前記シアリルルイスaに結合する抗体またはその機能的断片(抗sLea)を含む、使用。
- 前記抗sLea抗体またはその機能的断片が、マウスモノクローナル抗体、キメラモノクローナル抗体、ヒト化モノクローナル抗体または完全ヒトモノクローナル抗体である、請求項1に記載の使用。
- 前記抗sLea抗体またはその機能的断片が、可変重鎖(VH)ドメインを含み、
前記VHドメインが、配列番号2の残基20~142、配列番号6の残基20~142、配列番号10の残基20~142及び配列番号14の残基20~145からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項1または2に記載の使用。 - 前記抗sLea抗体またはその機能的断片が、可変軽鎖(VL)ドメインを含み、
前記VLドメインが、配列番号4の残基20~130、配列番号8の残基20~129、配列番号12の残基20~130及び配列番号16の残基23~130からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項1または2に記載の使用。 - 前記抗sLea抗体またはその機能的断片が、可変重鎖(VH)ドメイン及び可変軽鎖(VL)ドメインを含み、
前記VHドメイン及び前記VLドメインがそれぞれ、
配列番号2の残基20~142及び配列番号4の残基20~130、
配列番号6の残基20~142及び配列番号8の残基20~129、
配列番号10の残基20~142及び配列番号12の残基20~130、ならびに
配列番号14の残基20~145及び配列番号16の残基23~130
からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項1または2に記載の使用。 - 前記抗sLea抗体の機能的断片が、Fab、Fab’、F(ab’)2、scFV、ダイアボディ、トリアボディ、ミニボディ及び単一ドメイン抗体(sdAB)からなる群から選択される、請求項1~5のいずれか1項に記載の使用。
- 前記抗sLea抗体の機能的断片が、ダイアボディである、請求項6に記載の使用。
- 前記ダイアボディが、配列番号18または配列番号20のアミノ酸配列を含む、請求項7に記載の使用。
- 前記抗sLea抗体またはその機能的断片が、モノクローナル抗体である、請求項1~5のいずれか1項に記載の使用。
- 前記抗sLea抗体またはその機能的断片が、IgGまたはIgMアイソタイプである、請求項1~5および9のいずれか1項に記載の使用。
- 前記IgG抗体が、IgG1、IgG2、IgG3またはIgG4サブクラスである、請求項10に記載の使用。
- 前記医薬が、薬学的に許容可能な担体と共に製剤化された前記抗sLea抗体またはその機能的断片を含む、請求項1~11のいずれか1項に記載の使用。
- 前記医薬が、非経口的投与経路で投与するためのものである、請求項1~12のいずれか1項に記載の使用。
- 前記非経口的投与が、皮下注射、筋肉内注射及び静脈内注射からなる群から選択される、請求項13に記載の使用。
- シアリルルイスaを含むCA19-9に結合する治療剤を含む組成物であって、前記組成物が、膵炎の予防、処置、改善または管理を必要とする対象において膵炎を予防、処置、改善または管理するためのものであって、前記治療剤が、前記シアリルルイスaに結合する抗体またはその機能的断片(抗sLea)を含む、組成物。
- 前記抗sLea抗体またはその機能的断片が、
可変重鎖(VH)ドメインであって:(i)配列番号2の残基55~62によって表されるCDR1と、(ii)配列番号2の残基70~77によって表されるCDR2と、(iii)配列番号2の残基116~131によって表されるCDR3とを含むCDRを有する前記VHドメイン、および/または
可変軽鎖(VL)ドメインであって:(i)配列番号4の残基45~52によって表されるCDR1と、(ii)配列番号4の残基70~72によって表されるCDR2と、(iii)配列番号4の残基109~120によって表されるCDR3とを含むCDRを有する前記VLドメイン
を含む、請求項1または2に記載の使用。 - 前記抗sLea抗体またはその機能的断片が、
可変重鎖(VH)ドメインであって:(i)配列番号6の残基45~52によって表されるCDR1と、(ii)配列番号6の残基70~77によって表されるCDR2と、(iii)配列番号6の残基116~131によって表されるCDR3とを含むCDRを有する前記VHドメイン、および/または
可変軽鎖(VL)ドメインであって:(i)配列番号8の残基45~52によって表されるCDR1と、(ii)配列番号8の残基70~72によって表されるCDR2と、(iii)配列番号8の残基109~119によって表されるCDR3とを含むCDRを有する前記VLドメイン
を含む、請求項1または2に記載の使用。 - 前記抗sLea抗体またはその機能的断片が、
可変重鎖(VH)ドメインであって:(i)配列番号10の残基45~52によって表されるCDR1と、(ii)配列番号10の残基70~77によって表されるCDR2と、(iii)配列番号10の残基116~131によって表されるCDR3とを含むCDRを有する前記VHドメイン、および/または
可変軽鎖(VL)ドメインであって:(i)配列番号12の残基45~52によって表されるCDR1と、(ii)配列番号12の残基70~72によって表されるCDR2と、(iii)配列番号12の残基109~120によって表されるCDR3とを含むCDRを有する前記VLドメイン
を含む、請求項1または2に記載の使用。 - 前記抗sLea抗体またはその機能的断片が、
可変重鎖(VH)ドメインであって:(i)配列番号13の残基45~52によって表されるCDR1と、(ii)配列番号13の残基70~77によって表されるCDR2と、(iii)配列番号14の残基116~134によって表されるCDR3とを含むCDRを有する前記VHドメイン、および/または
可変軽鎖(VL)ドメインであって:(i)配列番号16の残基49~53によって表されるCDR1と、(ii)配列番号16の残基72~74によって表されるCDR2と、(iii)配列番号16の残基111~129によって表されるCDR3とを含むCDRを有する前記VLドメイン
を含む、請求項1または2に記載の使用。 - 前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、可変重鎖(VH)ドメインであって、配列番号2、配列番号6、配列番号10、または配列番号14のアミノ酸配列に存在する3つのVH相補性決定領域(CDR)を含む前記VHドメインを含む、請求項1または2に記載の使用。
- 前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、可変軽鎖(VL)ドメインであって、配列番号4、配列番号8、配列番号12、または配列番号16のアミノ酸配列に存在する3つのVL相補性決定領域(CDR)を含む前記VLドメインを含む、請求項1または2に記載の使用。
- 前記抗sLe a 抗体またはその機能的断片が、
(i)可変重鎖(VH)ドメインであって、配列番号2、配列番号6、配列番号10、または配列番号14のアミノ酸配列に存在する3つのVH相補性決定領域(CDR)を含む、前記VHドメイン;および
(ii)可変軽鎖(VL)ドメインであって、配列番号4、配列番号8、配列番号12、または配列番号16のアミノ酸配列に存在する3つのVL相補性決定領域(CDR)を含む、前記VLドメイン
を含む、請求項1または2に記載の使用。
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