JP7250519B2 - Pd-1及び4-1bbの融合タンパク質 - Google Patents
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Description
(a)N末端にPD-1又はCD40Lに由来するポリペプチドを含む細胞外ドメイン(ECD)と;
(b)膜貫通ドメイン(TMD)と;
(c)C末端に4-1BB又はCD28に由来するポリペプチドを含む細胞内ドメイン(ICD)と
を含む融合タンパク質に関する。
(1)本明細書に記載及び提供される核酸分子又はベクターを上記宿主細胞に形質導入又は形質転換することと;
(2)工程(1)の形質導入された宿主細胞を好適な培地中で培養して、前記細胞を成長させ、そして、前記核酸分子又は前記ベクターによってコードされている融合タンパク質を発現させることと;
(3)前記宿主細胞を前記培地から回収することと
を含む方法に関する。
(1)
(a)N末端にPD-1に由来するポリペプチドを含む細胞外ドメインと;
(b)膜貫通ドメインと;
(c)C末端に4-1BBに由来するポリペプチドを含む細胞内ドメインと;
を含む融合タンパク質。
(2)前記膜貫通ドメインが、PD-1又は4-1BB、好ましくはPD-1に由来するポリペプチドを含む、項目1記載の融合タンパク質。
(3)CD3ζドメインを更に含む、項目1又は2記載の融合タンパク質。
(4)前記細胞外ドメインが、リンカーもヒンジドメインも含まない、項目1~3のいずれか一項記載の融合タンパク質。
(5)前記細胞外及び/又は前記膜貫通のドメインに含まれる前記PD-1に由来するポリペプチドが、ヒトPD-1に由来するポリペプチドである、項目1~4のいずれか一項記載の融合タンパク質。
(6)前記膜貫通及び/又は前記細胞内のドメインに含まれる前記4-1BBに由来するポリペプチドが、ヒト4-1BBに由来するポリペプチドである、項目1~5のいずれか一項記載の融合タンパク質。
(7)前記PD-1に由来するポリペプチドを含有する細胞外ドメインが、配列番号2のアミノ酸配列と比較して0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、又は10個のアミノ酸の置換、欠失、及び/又は挿入を有するアミノ酸配列を含み、前記融合タンパク質が、PD-L1/2結合親和性を示す、項目1~6のいずれか一項記載の融合タンパク質。
(8)前記4-1BBに由来するポリペプチドを含有する細胞内ドメインが、配列番号4のアミノ酸配列と比較して0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、又は10個のアミノ酸の置換、欠失、及び/又は挿入を有するアミノ酸配列を含み、前記融合タンパク質が、CD8+ T細胞にレトロウイルスによって形質導入されたとき、前記CD8+T細胞をPD-L1/2+標的細胞で刺激した際に前記CD8+ T細胞の増殖速度を増大させることができる、項目1~7のいずれか一項記載の融合タンパク質。
(9)前記PD-1に由来するポリペプチドを含有する膜貫通ドメインが、配列番号8のアミノ酸配列と比較して0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、又は10個のアミノ酸の置換、欠失、及び/又は挿入を有するアミノ酸配列を含み、前記融合タンパク質が、CD8+ T細胞にレトロウイルスによって形質導入されたとき、前記CD8+T細胞をPD-L1/2+標的細胞で刺激した際にIFNγ及び/又はIL-2の分泌を増大させることができる、項目2~8のいずれか一項記載の融合タンパク質。
(10)前記細胞外ドメインが、配列番号2のアミノ酸配列を含む、項目1~9のいずれか一項記載の融合タンパク質。
(11)前記細胞内ドメインが、配列番号4のアミノ酸配列を含む、項目1~10のいずれか一項記載の融合タンパク質。
(12)前記膜貫通ドメインが、配列番号8のアミノ酸配列を含む、項目1~11のいずれか一項記載の融合タンパク質。
(13)項目1~12のいずれか一項記載の融合タンパク質をコードしている核酸分子。
(14)項目13記載の核酸分子を含むベクター。
(15)項目13記載の核酸分子又は項目14記載のベクターを含む宿主細胞。
(16)項目13記載の核酸分子又は項目14記載のベクターが形質導入された項目15記載の宿主細胞。
(17)前記核酸分子又は前記ベクターが、前記宿主細胞のゲノムに安定的に組み込まれている、項目15又は16記載の宿主細胞。
(18)レトロウイルス形質導入を介して形質導入されている項目16又は17記載の宿主細胞。
(19)項目13記載の核酸分子によってコードされている融合タンパク質を安定的に発現している、項目15~18のいずれか一項記載の宿主細胞。
(20)CD8+T細胞である、項目15~19のいずれか一項記載の宿主細胞。
(21)
(1)項目13記載の核酸分子又は項目14記載のベクターを宿主細胞に形質導入することと;
(2)工程(1)の形質導入された宿主細胞を好適な培地中で培養して、前記細胞を成長させ、そして、前記核酸分子又は前記ベクターによってコードされている融合タンパク質を発現させることと;
(3)前記宿主細胞を前記培地から回収することと
を含む、項目15~20のいずれか一項記載の宿主細胞を調製する方法。
(22)項目21記載の方法によって得ることができる宿主細胞。
(23)項目1~12のいずれか一項記載の融合タンパク質、項目13記載の核酸分子、項目14記載のベクター、及び/又は項目15~20若しくは22のいずれか一項記載の宿主細胞を含む医薬組成物。
(24)癌及び慢性ウイルス感染症の処置において使用するための、項目1~12のいずれか一項記載の融合タンパク質、項目13記載の核酸分子、項目14記載のベクター、項目15~20若しくは22のいずれか一項記載の宿主細胞、又は項目23記載の医薬組成物。
(25)項目1~12のいずれか一項記載の融合タンパク質、項目13記載の核酸分子、項目14記載のベクター、及び/又は項目15~20若しくは22のいずれか一項記載の宿主細胞を含むキット又はキットインパーツ。
太字:シグナルペプチド(通常、成熟タンパク質において切断される);下線付き:TMD;イタリック及び太字:ICD;ヌクレオチド配列の大文字:コドン最適化配列
キメラ受容体をコードしているプラスミド
キメラ受容体配列は、Geneart, Life Technologiesに注文した。該配列は、凍結乾燥粉末として納品され、そして、ヌクレアーゼ不含水に0.5μg/μLの濃度で溶解させた。増幅については、標準的なプラスミド調製法に従ってTOP10又はMACH1の大腸菌をGeneartコンストラクトで化学的に形質転換した。
ivtRNAを調製するために、キメラ受容体配列をpGEMにクローニングした。HindIII又はHindII及びEcoRI(New England Biolabs)を使用して、pGEMベクター(S. Milosevic, Medigene GmbH, Martinsried, Germanyによって提供)へのクローニングを行った。製造業者のプロトコールに従って、mMESSAGEmMACHINEキット(Ambion)を使用してpGEMプラスミドからIvtRNAを生成した。Gene Pulser Xcell(Bio-Rad)を使用して、900Vで2.3ms、ヒト一次T細胞にivtRNA 20μgをエレクトロポレーションで導入した。
キメラ受容体配列をpMP71-PREベクターにクローニングした(レトロウイルス形質導入については、Leisegang 2008、引用文中)。T細胞のレトロウイルス形質導入を上記の通り行った(Leisegang 2008、引用文中)。10% ヒト血清、1% L-グルタミン、1% 非必須アミノ酸、1% ピルビン酸ナトリウム、及び1% ペニシリン/ストレプトマイシン(全てInvitrogen)+100U/mL IL-2(Cancernova)を添加したRPMI1640中1ウェル当たり1×106/mLの細胞密度で、健常ドナー由来のヒトPBMCを24ウェルプレートにプレーティングし、そして、5μg/mL OKT3(E. Kremmer, Helmholtz Center Munich, Germanyによって提供)及び1μg/mL 抗CD28(BD Pharmingen)で2日間活性化させた。
HLA-A2+HEK293細胞に形質導入してチロシナーゼ(HEK/Tyr)又はチロシナーゼ及びPD-L1(HEK/Tyr/PD-L1)を発現させることによって、HEK/Tyr及びHEK/Tyr/PD-L1を生成した。形質導入後、HEK293細胞を単一細胞クローニングし、そして、同等のHLA-A2及びチロシナーゼの発現についてクローンを選択した。1% L-グルタミン、1% 非必須アミノ酸、1% ピルビン酸ナトリウム、1% ペニシリン/ストレプトマイシン(RMPI塩基性)+12% FCSを添加したRPMI-1640中で、SK-Mel23(M.C. Panelli, NIH, Bethesda, USAから供与)、HEK/Tyr、及びHEK/Tyr/PD-L1を増殖させた。
LSRII(BD)でフローサイトメトリー分析を実施した。2% ヒト血清、0.1% アジ化ナトリウム、及び2mM EDTA(いずれもSigma-Aldrich)を添加したPBS(Invitrogen)中で細胞を染色した。抗CD3-PE-Cy7、抗マウスTCRβ-定常領域-PB(いずれもBioLegend)、抗CD4-APC-A780、抗PD-1-APC(いずれもeBioscience)、抗CD8-V500(BD)及び7-AAD(Sigma-Aldrich)を使用して、ヒトキメラ受容体及びトランスジェニックTCRの発現を分析した。
TCR-T58又はTCR-D115トランスジェニックヒトT細胞にivtRNAをエレクトロポレーションで導入するか又はレトロウイルスベクターを形質導入して、キメラ受容体を発現させ、次いで、1:2の比でHEK/Tyr又はHEK/Tyr/PD-L1の細胞と共に培養した。共培養上清を16時間後に収集し、そして、製造業者のプロトコールに従ってサンドイッチELISA(BD)又はBio-Plex(Bio-Rad)によって分析した。
形質導入されたTCRであるT58及びD115がCD8+T細胞でしか機能せず、そして、CD8+/CD4+ T細胞比が実験間で変動したので、測定されたサイトカインの量を、細胞懸濁液内のTCR+CD8+ T細胞の百分率(フローサイトメトリーによって決定)に対して正規化した。以下の式を適用した:
NSGマウスはCharles Riverから入手した。NOD/scid IL2Rgnull(NSG)マウスは、自然免疫の低下を特徴とする非肥満糖尿病(NOD)マウスの遺伝的バックグラウンドに対して品種改良したものである。NSGマウスは、PRKDC遺伝子における機能喪失型突然変異であるprkdcscid突然変異を有し、その結果、B細胞及びT細胞の発生におけるV(D)J組み換え中にDNA鎖切断の修復が不完全になる。この重症複合免疫不全(scid)は、T細胞及びB細胞の大きな減少を特徴とする。更に、NSGマウスは、IL-2受容体のガンマ鎖にnull突然変異(IL2Rgnull)を有して、NK細胞の分化をブロックする。自然免疫の欠陥及び適応免疫の不在により、NSGマウスは、ヒト腫瘍異種移植片の養子T細胞療法に適したモデル系となる。
動物実験は地元当局によって承認され、法的規制に従って実施された。7~11週齢の雄マウスに、5×106個のHLA-A2+チロシナーゼ+ヒト黒色腫細胞SK-Mel23(Monica C. Panelli, NIH, Bethesda, USAに供与)をs.c.注入した。PD-L1/L2に加えて、TCR-D115及びTCR-T58のリガンドを形成するために必要なHLA-A2及びチロシナーゼを発現するので(Wilde et al., Blood (2009), 114: 2131-2139)、この黒色腫系統を選択した。マウス実験のためにTCR-D115を発現しているT細胞を選択したが、その理由は、確立された腫瘍を根絶するには不十分な低い結合力でSK-Mel23を認識することができるためである。
細胞追跡色素、すなわち、CFDA-SEを使用して細胞増殖を評価する。該色素は細胞膜を透過し、そして、蛍光カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル(すなわち、CFSE)に変換される。各細胞分裂において、CFSEの蛍光強度を半分にして、T細胞の増殖をモニタリングする。
51Crで標識された黒色腫細胞を、96ウェルV底プレートにおいて2000細胞/ウェルの一定細胞数で標的として使用した。エフェクタ細胞の四段階滴定のデュープリケート測定を用いて実験を実施した。平行ウェルにおいて、T細胞を含まない標的細胞をインキュベートして、[51Cr]の自発的放出を決定した。4時間後に上清を収集し、そして、cpm測定のために計数プレート(PerkinElmer)に移した。標識された標的細胞をcpm測定のための計数に直接移すことによって、最高cpmを決定した。特異的溶解の百分率を以下の通り計算した:特異的溶解%=(実験的cpm-自発的cpm)/(最高cpm-自発的cpm)×100。
図面のレジェンドにおいて指定されている統計検定は、GraphPad Prism 6ソフトウェアを使用して実施した。
結果を図面に示す。
Claims (21)
- (a)配列番号2のアミノ酸配列と比較して0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、又は10アミノ酸の置換、欠失、及び/又は挿入を含むアミノ酸配列をN末端に含むPD-1細胞外ドメインであって、PD-L1/2結合親和性を示すPD-1細胞外ドメインと;
(b)配列番号8のアミノ酸配列を含むPD-1膜貫通ドメインと;
(c)配列番号4のアミノ酸配列と比較して0、1、2、3、又は4アミノ酸の置換、欠失、及び/又は挿入を含むアミノ酸配列をC末端に含む4-1BB細胞内ドメインであって、CD8+ T細胞にレトロウイルスによって形質導入されたとき、又は、前記CD8+ T細胞をPD-L1/L2+標的細胞で刺激した際に前記CD8+ T細胞の増殖速度を増大させる4-1BB細胞内ドメインと;
を含む融合タンパク質。 - CD3ζドメインを更に含む、請求項1記載の融合タンパク質。
- 前記細胞外ドメインが、リンカー又はヒンジドメインを含まない、請求項1又は2記載の融合タンパク質。
- 前記PD-1細胞外及び/又は膜貫通ドメインが、ヒトPD-1である、請求項1~3のいずれか一項記載の融合タンパク質。
- 前記4-1BB細胞内ドメインが、ヒト4-1BBである、請求項1~4のいずれか一項記載の融合タンパク質。
- 前記PD-1細胞外ドメインが、配列番号2のアミノ酸配列を含み、前記融合タンパク質が、PD-L1/2結合親和性を示す、請求項1~5のいずれか一項記載の融合タンパク質。
- 前記4-1BB細胞内ドメインが、配列番号4のアミノ酸配列を含み、前記融合タンパク質が、CD8+ T細胞にレトロウイルスによって形質導入されたとき、前記CD8+ T細胞をPD-L1/L2+標的細胞で刺激した際に前記CD8+ T細胞の増殖速度を増大させることができる、請求項1~6のいずれか一項記載の融合タンパク質。
- 前記PD-1膜貫通ドメインが、配列番号8のアミノ酸配列を含み、前記融合タンパク質が、CD8+ T細胞にレトロウイルスによって形質導入、形質転換又はそうでなければ導入されたとき、前記CD8+ T細胞をPD-L1/L2+標的細胞で刺激した際にIFNγ及び/又はIL-2の分泌を増大させることができる、請求項1~7のいずれか一項記載の融合タンパク質。
- 請求項1~8のいずれか一項記載の融合タンパク質をコードしている核酸分子。
- 請求項9記載の核酸分子を含むベクター。
- 請求項9記載の核酸分子又は請求項10記載のベクターを含む宿主細胞。
- 請求項9記載の核酸分子又は請求項10記載のベクターが形質導入された請求項11記載の宿主細胞。
- 前記核酸分子又は前記ベクターが、前記宿主細胞のゲノムに安定的に組み込まれている、請求項11又は12記載の宿主細胞。
- レトロウイルス形質導入を介して形質導入されている、請求項12又は13記載の宿主細胞。
- 請求項9記載の核酸分子によってコードされている融合タンパク質を安定的に発現している、請求項11~14のいずれか一項記載の宿主細胞。
- CD8+ T細胞である、請求項11~15のいずれか一項記載の宿主細胞。
- (1)請求項9記載の核酸分子又は請求項10記載のベクターを宿主細胞に形質導入することと;
(2)工程(1)の形質導入された宿主細胞を好適な培地中で培養して、前記細胞を成長させ、そして、前記核酸分子又は前記ベクターによってコードされている融合タンパク質を発現させることと;
(3)前記宿主細胞を前記培地から回収することと
を含む、請求項11~16のいずれか一項記載の宿主細胞を調製する方法。 - 請求項17記載の方法によって得ることができる宿主細胞。
- 請求項1~8のいずれか一項記載の融合タンパク質、請求項9記載の核酸分子、請求項10記載のベクター、及び/又は請求項11~16若しくは18のいずれか一項記載の宿主細胞を含む医薬組成物。
- 請求項1~8のいずれか一項記載の融合タンパク質、請求項9記載の核酸分子、請求項10記載のベクター、請求項11~16若しくは18のいずれか一項記載の宿主細胞を含む、癌及び慢性ウイルス感染症の処置において使用するための医薬組成物。
- 請求項1~8のいずれか一項記載の融合タンパク質、請求項9記載の核酸分子、請求項10記載のベクター、及び/又は請求項11~16若しくは18のいずれか一項記載の宿主細胞を含むキット又はキットインパーツ。
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