JP6895455B2 - 薬剤放出デバイス及び使用 - Google Patents
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Description
本出願は、2016年1月4日に出願されたオーストラリア仮特許出願第2016900002号の優先権を主張し、その内容が参照により本明細書に組み込まれる。
本開示は、薬剤放出デバイス、及び、1つ以上の薬剤を動物へと送達する際におけるその使用に関する。
そのような薬剤放出デバイスとしては、例えば、米国特許出願公開第2009/0291119号明細書や、米国特許出願公開第2006/0051391号明細書に開示されるデバイスが挙げられる。これらのデバイス上には、薬剤を放出する薬剤放出成分が設けられている。
熱可塑性エラストマー(TPE)ポリマー(本明細書では、熱可塑性エラストマー又はTPEとも称される)は、本明細書に開示される薬剤放出デバイスに関連して使用される。
本明細書に開示されるデバイスは、1つ以上の薬剤を包含しており、動物の粘膜に接触するように適合され、1つ以上の薬剤を動物へと放出可能である。該デバイスは、動物の体腔内に保持する又は動物内に非経口的にインプラントする等、動物の粘膜部位にて位置決めすることを可能にするサイズ及び幾何学的形状に構成されてもよい。
一実施形態では、該デバイスは、1つ以上の熱可塑性弾性ポリマーのための支持体を含んでいる。
本明細書に開示されるデバイスは、ブタ、ウマを含む後腸発酵動物、ウシ、ヤギ及びアルパカを含む反芻動物、並びに、イヌ、ネコ及びヒトなどのより小さな動物に適している。当業者には、体腔、粘膜又は移植部位の異なる形状及び大きさに適応させるため、デバイスの幾何学的形状を異なるタイプの動物に対して変更する必要が生じることが理解される。
本開示の例示的な実施形態は、以下の項目1〜113に記載される。
前記薬剤放出成分は、1つ以上の熱可塑性エラストマー(TPE)ポリマーを含んでいると共に、1つ以上の薬剤が含浸されており、
前記TPEポリマーの少なくとも1つは、ブタジエン、イソブチレン、プロピレン及びイソプレンからなる群より選択される1つ以上のエラストマーブロックと、スチレン及びα−メチルスチレンからなる群より選択される1つ以上の熱可塑性ブロックとを含むスチレンTPEブロックコポリマー(TPE−S)であり、
前記薬剤放出成分は、前記支持体に対して成型されている、薬剤放出デバイス。
前記薬剤放出成分は、1つ以上の熱可塑性エラストマー(TPE)ポリマーを含んでいると共に、1つ以上の薬剤が含浸されており、
前記TPEポリマーの少なくとも1つは、ブタジエン、イソブチレン、プロピレン及びイソプレンからなる群より選択される1つ以上のエラストマーブロックと、スチレン及びα−メチルスチレンからなる群より選択される1つ以上の熱可塑性ブロックとを含むスチレンTPEブロックコポリマー(TPE−S)であり、
前記薬剤放出成分は、ASTM D2240に従うタイプAデュロメータにより測定される硬度が20〜90ショアAの範囲であり、融点が約80〜250℃の範囲であり、
前記支持体は、融点が約70〜200℃の範囲であり、
前記薬剤放出成分は、前記支持体に対して成型されている、項目1に記載の薬剤放出デバイス。
前記薬剤放出成分は、1つ以上の熱可塑性エラストマー(TPE)ポリマー及び1つ以上のポリオレフィンを含んでいると共に、1つ以上の薬剤が含浸されており、
前記TPEポリマーの少なくとも1つは、ブタジエン、イソブチレン、プロピレン及びイソプレンからなる群より選択される1つ以上のエラストマーブロックと、スチレン及びα−メチルスチレンからなる群より選択される1つ以上の熱可塑性ブロックとを含むスチレンTPEブロックコポリマー(TPE−S)であり、
前記薬剤放出成分は、融点が約80〜250℃の範囲であり、前記支持体は、融点が約70〜200℃の範囲であり、
前記薬剤放出成分は、前記支持体に対して成型されている、項目1に記載の薬剤放出デバイス。
前記薬剤放出成分は、プロゲステロン及び任意には1つ以上の他の薬剤が含浸されており、
前記薬剤放出成分は、ASTM D2240に従うタイプAデュロメータにより測定される硬度が20〜90ショアAの範囲であり、融点が約80〜250℃の範囲であり、
前記薬剤放出成分は、融点が約80〜250℃の範囲であり、前記支持体は、融点が約70〜200℃の範囲であり、
前記薬剤放出成分は、前記薬剤放出成分を前記支持体上に成型することによって、前記支持体に接着されている、項目1〜16のいずれか1項に記載のデバイス。
前記細長本体の前記第1の端部に取り付けられて該端部から延びている2つのアームであって、アーム先端を有していると共に、前記細長本体に対して移動可能である2つのアームと
を備えている、項目1〜44のいずれか1項に記載のデバイス。
項目1〜87のいずれか1項に記載のデバイスを、前記薬剤が該デバイスから動物の粘膜へと放出可能とするのに十分な時間の間、該動物の粘膜と接触させるステップを含んでいる、方法。
項目1〜87のいずれか1項に記載のデバイスを、前記デバイスから前記動物へのプロゲステロンの放出を可能にするのに十分な時間であって、5〜7日を含む時間の間、前記動物の粘膜と接触させるステップを含んでいる、方法。
溶融混合物が冷却固化するのに十分な時間を与えるステップとをさらに含んでいる、項目105に記載の方法。
1つ以上の薬剤及び1つ以上の添加剤の錠剤又はペレットを、前記1つ以上のTPEポリマーを含むポリマーマトリクスの顆粒と混合するステップであって、それによって前記1つ以上の薬剤がポリマーマトリクス中に分散されている薬剤が含浸されたポリマーマトリクスを形成するステップと、
前記薬剤が含浸されたポリマーマトリクスを射出成型機のホッパー内へと装填することによって溶融させるステップであって、それによって薬剤が含浸された溶融ポリマーマトリクスを形成するステップと、
前記薬剤が含浸された溶融ポリマーマトリクスを、前記支持体を含有している金型キャビティ内へと射出するステップと、
前記薬剤放出デバイスを凝固させるために冷却するステップと
を含んでいる、方法。
図1A〜1Cは、TPEが針状体にオーバーモールド成型される前の、第1の態様に係る本開示の一実施形態に係るデバイスの針状体を示す。図1Aの針状体は、実質的に「Y字形状」と記載され得ると共に、図1B及び1Cの針状体/デバイスは、実質的に「T字形状」と記載され得る。図1B及び図1Cでは、細長本体とアームとの間の角度は、約95°である。針状体は、細長本体と、細長本体の一端から延びている2つのアームとからなる。針状体は、0〜40℃の温度において翼部材を手動で広げること及びアームを元の位置まで弾性的に屈曲することが可能となる等級の低密度ポリエチレン(LDPE)で作ることができる。本明細書で開示されるデバイスの針状体は、本明細書に開示される他の適切なプラスチックから作製可能であり、そのようなプラスチックには、ポリプロピレン(PP)及びポリ塩化ビニル(PVC)のうち1つ以上が含まれる。
本開示に係るデバイスのプロゲステロン放出を市販のデバイス(CIDR(登録商標))と比較した、生体外(in vitro)データが得られた。本開示に係る(具体的には、実施例12に係る)デバイスは、生体外にて、CIDR(登録商標)製品よりもゆっくりとプロゲステロンを放出する。CIDR製品は、ダンプ放出特性を示し、実施例12に係る本明細書に開示されるデバイスは、遅い放出特性を示す。
1.Mediprene(登録商標)を、約190℃で溶融するまで加熱する。
2.ステップ1にプロゲステロンを添加して、溶融混合物を2分間ブレンドする。
3.1mm、1.5mm又は2mmの深さの矩形の金型に手動で充填して、ポリマーシートを形成する。
1.Mediprene(登録商標)を、約190℃で溶融するまで加熱する。
2.ステップ1にプロゲステロンを添加して、溶融混合物を2分間ブレンドする。
3.実施例1と同様に成型する。
1.Thermolast(登録商標)を、約190℃で溶融するまで加熱する。
2.ステップ1にプロゲステロンを加えて、溶融混合物をよく混合されるまで1〜5分間ブレンドする。
3.実施例1と同様に成型する。
1.Thermolast(登録商標)を、約190℃で溶融するまで加熱する。
2.ステップ1にプロゲステロンを添加して、溶融混合物を2分間ブレンドする。
3.実施例1と同様に成型する。
1.EVA40%を、約190℃で溶融するまで加熱する。
2.ステップ1にプロゲステロンを添加して、溶融混合物を2分間ブレンドする。
3.実施例1と同様に成型する。
Mediprene(登録商標)500452Mの代わりに酢酸ビニルコモノマー含有量25%w/w(EVA25%)のエチルビニルアセテートを使用して、実施例4の配合物のバリエーションを調製した。
1.EVA25%を、約190℃で溶融するまで加熱する。
2.ステップ1にプロゲステロンを添加して、溶融混合物を2分間ブレンドする。
3.実施例1と同様に成型する。
1.EVA12%を、約190℃で溶融するまで加熱する。
2.ステップ1にプロゲステロンを添加して、溶融混合物を2分間ブレンドする。
3.実施例1と同様に成型する。
1.EVA40%を、約190℃で溶融するまで加熱する。
2.ステップ1にプロゲステロンを添加して、溶融混合物を2分間ブレンドする。
3.実施例1と同様に成型する。
1.EVA40%を、約190℃で溶融するまで加熱する。
2.ステップ1にプロゲステロンを添加して、溶融混合物を2分間ブレンドする。
3.実施例1と同様に成型する。
1.シリコーンとプロゲステロンとを合わせる。
2.実施例1と同様に成型する。
3.通気性の良い場所で一晩硬化させる。
1.Thermolast K(登録商標)を、約190℃で溶融するまで加熱する。
2.ステップ1にプロゲステロン及びソルビトールを添加して、溶融混合物を2分間ブレンドする。
3.実施例1と同様に成型する。
実施例12
低密度ポリエチレン(LDPE)針状体の製造
本明細書に開示されるような適切なプラスチックを使用する針状体の射出成型による製造は、当業者にとって既知の技術(例えば、Douglas M. Bryce, 1996, Plastic Injection Moulding: Manufacturing Process Fundamentals volume 1, Society of Manufacturing Engineersに記載されている。この文献は、参照により本明細書に組み込まれる)を用いて達成され得る。
約1.25kgの95%プロゲステロンのマスターバッチを、ペレット形態にて生産する。ペレット形成を補助するため、ポビドン及び帯電防止剤を0.1〜5%w/wの量で添加してもよい。
1.1.25kgのプロゲステロンマスターバッチを、6.75kgのMediprene(登録商標)500452M顆粒と合わせる。
2.本開示に従って事前に製造された前述のデバイス支持体インサート又は針状体(実施例12参照)を、インサート成型プロセスにとって典型的な方法にて、2つの部分からなるダイ又は金型の中央キャビティ内へと装填する。
3.Mediprene(登録商標)及びプロゲステロン混合物を、バレル温度が少なくとも190℃、好ましくは190〜240℃である射出成型機のホッパー内へと供給する。
4.材料を、十分な均一性が得られる程度まで適切に混合する。
5.溶融混合物10〜20gを、インジェクタ内へと充填する。
6.溶融材料を、針状体が予め装填された2つの部分からなるダイ内へと射出する。
7.該デバイスを、金型内にて5〜60秒間冷却させる。
8.ダイを分離して、成型したデバイスを排出する。
9.余剰の廃棄物を、射出口から取り除く。該射出口は、該プロセスの当業者にはゲートとして知られている。
配合物の間の迅速な比較を可能にするため、エタノール1部と水2部とを混合することにより、加速溶出(AD)媒体を調製した。この溶液を、0.45μMのナイロンフィルターを通して濾過することにより、脱気した。
ポリマーサンプルからのP4放出の比較を、Agilent 8453 UV/vis及びオートサンプラーを備えたSotax社溶出デバイスにてモニターした。7つのウェルのそれぞれに、加速溶出媒体(ADM)(500mL、0.45μMナイロンフィルターを通して濾過することにより脱ガス済)を充填した。この系を、39.5℃に平衡化させた。実用上、Sotax社溶出デバイスタイプ1の構成にてバスケット当たり1つずつ、最大6つの試験ポリマーを同時に配置した。7番目のウェルは、ブランクとして残した。開始時間を記録して、溶出デバイスにおけるオートサンプリングプログラムを開始した。実験が続く間、細胞を50rpmで撹拌すると共に、39.5℃で加熱した。最初の1時間は少なくとも5分毎、その後24時間は1時間毎に、溶液について248nmでの吸光度を読み取った。溶出バスを、少なくとも24時間モニターした。
ポリマーサンプルからのP4放出の比較を、Agilent 8453 UV/vis及びオートサンプラーを備えたSotax社溶出デバイスにて、上述の手順1と同様に、しかし以下の修正を行ってモニターした。7つのウェルのそれぞれに、SVF(500mL、0.45μMナイロンフィルターを通して濾過することにより脱ガス済)を充填した。7番目のウェルをブランクとして残し、細胞を50rpmで撹拌した。最初の1時間は少なくとも5分毎、その後24時間は1時間毎に、溶液について248nmでの吸光度を読み取った。溶出バスを、少なくとも7日モニターした。
ポリマーサンプルからのP4放出の比較を、Agilent 8453 UV/vis及びオートサンプラーを備えたSotax社溶出デバイスにて、上述の手順1と同様に、しかし以下の修正を行ってモニターした。各試験デバイスを、バスケットのないウェル1つあたり1つ配置した。7つのウェルのそれぞれに、SVF(1000mL、0.45μMナイロンフィルターを通して濾過することにより脱ガス済)を充填した。7番目のウェルをブランクとして残した。細胞の撹拌は行わなかった。最初の1時間は少なくとも5分毎、その後24時間は1時間毎に、溶液について248nmでの吸光度を読み取った。溶出バスを、少なくとも7日モニターした。
試験配合物を、ウシでの使用のために標識された市販の現在登録されている薬剤内部放出制御(CIDR(登録商標))デバイスと比較するために、生体外実験を実行した。初期には、AD媒体中で1日かけて実験を行い、それによって迅速な比較を生じさせた。その後、SVF中で1週間かけて、リード配合物をCIDR(登録商標)と比較した。
実験1:
EVA配合物(プロゲステロンをそれぞれ0.6g及び0.8g含む実施例9のバリエーション)中に6%及び8%のP4を含む、横断面積が0.5cm2のサンプルからのプロゲステロンの溶出を、代表的なプロゲステロン放出デバイスであるCIDR(登録商標)の1cm2断面の外表面からのP4の溶出と比較した。
CIDR(登録商標)の翼頂部から2つの1cm2の横断面を切断して、厚さ1.5mmのプロゲステロンが含浸されたシリコンサンプルを得た。CIDR(登録商標)断面の内表面は通常膣環境には曝されないため、比較のために、防水性のシリコーンシーラントを使用して該内表面にアルミニウム箔を接着し、P4がこの表面から溶出できないようにした。サンプルの情報は、以下の表16にまとめられている。
EVAシート中にプロゲステロンを含む厚さ1mmのシートから、横断面積が0.5cm2のサンプルを切断した。両側部を溶出溶媒へと曝した状態とすることにより、有効表面積を1cm2とした。サンプルの情報は、以下の表16にまとめられている。
EVAサンプル(プロゲステロンを1.0g用いた実施例9のバリエーション)中に10%のP4を含む、両面が0.5cm2のサンプルからのプロゲステロンの溶出を、代CIDR(登録商標)デバイスの1cm2断面の外表面からのP4の溶出と比較した。
EVA40%シート(実施例9)中に8%のP4を含む0.5cm2のサンプル、及び、Thermolast K(登録商標)シート(プロゲステロンを1.6g用いた実施例3のバリエーション)中に8%のP4を含む0.5cm2のサンプルからのP4の溶出を比較した。両方の試験配合物のサンプルを、実施例1のEVAシートサンプルに類似する方法にて調製した。サンプルの詳細は、以下の表にまとめられている。溶出手順1を用いて、P4溶出速度を評価した。
SEBSポリマー中にP4を含む調製物に軽度の可溶化剤を添加することの効果を評価した。Mediprene中に12%のP4を含むシート(実施例1のバリエーション)、及び、Mediprene中に12%のP4を含む、PEGを備えたシート(0.1gのPEGを使用し、ソルビトールを使用しない実施例のバリエーション)を調製し、上述のような0.5cm2断面となるように切断した。以下の表に詳述されるサンプルを、溶出手順2を用いて比較した。
1つのCIDRインプラント全体のP4溶出速度と、横断面積が63cm2、総表面積が126cm2の、Mediprene中に10%のP4を含む厚さ2mmのシート(実施例1に従って準備された)からのP4溶出との比較を行った。この後者の調整物は、本明細書に開示される薬剤放出デバイスの適当な代表である。具体的には、本開示の一実施形態に係る適切な薬剤送達デバイスは、Mediprene及びプロゲステロンを含む本明細書に開示される薬剤放出成分の少なくとも1mmのコーティングと、適切な表面積(約124cm2)とを含んでおり、それによって露出した外表面からのP4拡散が可能になる。
各時点にて3つの繰り返しHPLCクロマトグラムを用いてSVF媒体中へのP4のモニターを行いつつ、実験6を繰り返した。プロゲステロンピークの曲線下の領域により、プロゲステロン濃度の変化のみを比較できるようになった。サンプルを実験6と同様にして調製し、以下の表21に詳述する。
概要
本明細書に開示される薬剤放出デバイス(以下、IVD又はJurox IVDと称することがある)のPK性能を、市販の製品であるCIDR(登録商標)と比較して評価した。
IVD(約1540mg用量のプロゲステロン、本明細書にて前述したように調製した)の性能を、ウシの発情同期化用に現在登録されている製品であるCIDR(登録商標)(1340mg用量のプロゲステロン)と比較するために、2期クロスオーバー試験を行った。6頭の健康な卵巣摘出経産ウシ(cow)及び6頭の健康な卵巣摘出未経産ウシ(heifer)を研究対象として選抜し、調査地にて順応させた。試験項目及び参照項目は、処置群A又はBにランダムに割り当てられた。経産ウシには1から6までの番号をランダムに割り当て、未経産ウシには7から12の番号をランダムに割り当てた。以下の表22のスケジュールで割り当てられた番号に基づいて、経産ウシ及び未経産ウシを処置した。
血液サンプルを、以下の時点にて標識リチウムヘパリン管内に収集した。IVD挿入前24時間以内、投与後2、4、6、8時間(全て±5分)及び24時間(±15分)、2日目、3日目、4.5日目、6日目、7日目のIVDを取り除く直前(7日目−前)、7日目のIVDを取り除いた約12時間後(7日目−12時間)、8日目及び9日目。Hettich 32R遠心分離機及び1613ローターを用いて、3000回転/分(rpm)で10分間遠心分離することにより、該血液から血漿を分離した(約103×gに相当する相対遠心力)。血漿を、白紙のラベルを付したポリプロピレンチューブへと30分以内にデカントして回収した。
外観検査又は手動検査の後に、スケジュールされた各採血点にて、デバイスの有無を記録した。
外植(explant)された各デバイスを7〜10個に切断して、これらの断片を丸底フラスコ内に配置した。断片をアセトンにより40℃で抽出し、これらの抽出物を合わせた後、フラスコをマーキングし、各抽出物を合わせた溶液20μLの分取を980μLのアセトニトリルで希釈した。これらの溶液をHPLCによって分析し、それらの濃度を、既知のプロゲステロン濃度標準から調製された較正曲線の回帰によって決定した。S字曲線を、較正曲線に適合させた。
デバイスの保持。
全ての試験群における全てのデバイスは、本研究の第1期及び第2期の両方において、意図された処置期間にわたって保持された。
第1期の全ての時点について算出された血漿プロゲステロン濃度は、表23にまとめられると共に、図11にプロットされている。
JX1302-K001の第2部第2期は、第2部第1期と同様の方法にて実施したが、経産ウシ及び未経産ウシには、以前の研究期間中には受けなかった処置を受けさせた。
この研究の第1期の後にデバイスを収集して、残留プロゲステロンを分析した。この研究にて使用したインプラントについて計算された残留プロゲステロン量を、表27にまとめている。平均して、両方の試験群にて使用されたIVDインプラントには、CIDR(登録商標)インプラントよりもプロゲステロン残量がわずかに多く残存していた。このことは、IVDに組み込まれたプロゲステロン用量がより高いこと(1540mg対1340mg)を考慮して予測された。
CIDR(登録商標)デバイスと実施例12にて本明細書に記載されるIVDデバイスとによって示されるプロゲステロンの薬剤動態のさらなる比較を、研究番号JX1302-L011の下で実施した。この研究は、標準的なLCMS分析技術を用いて血漿プロゲステロン濃度を決定したことを除き、前述のJX1302-K005の第2部第1期及び第2期と同様の方法で実施された2期クロスオーバー試験であった。LCMS法を用いることにより、より高い正確度及び精度が達成された。品質管理(QC)サンプルの計算濃度は、既知の濃度の85〜115%の範囲内であり、繰り返し分析の精度は、試験したサンプルの濃度範囲に対して15%未満であった。JX1302-L011の第1期及び第2期の各時点で記録された個々の経産ウシ及び未経産ウシの血漿プロゲステロン濃度を、処置Aについては表28に、処置Bについては表29に示す。研究の両期間における平均血漿プロゲステロン濃度を、図23に示す。
要約すると、市販のエラストマー及び熱可塑性エラストマー中にP4を含む複数の配合物が調製され、これらの材料のP4放出プロファイルは、CIDR(登録商標)シリコーン系P4放出膣インプラントの断面又はユニット全体と比較された。これらの試験P4放出化合物には、様々なグレードのエラストマーEVAや、Mediprene(登録商標)及びThermolast K(登録商標)のような市販のSEBSブロックコポリマーが含まれていた。
背景
プロゲステロンは、生物薬剤学分類システム(Biopharmaceutical
Classification System)に従うクラスIIの高い膜透過性の低水溶性薬剤である。結果として、任意の薬剤送達デバイスからウシの膣環境へのプロゲステロンの平衡駆動拡散は、主に以下によって制限される。
・プロゲステロンの低い溶解度(水性pH7緩衝液において0.1g/L未満)
・薬剤送達マトリクスに浸透する溶解溶媒の能力
・プロゲステロンと薬剤送達マトリクスとの間の相互作用
・溶媒のプロゲステロン分子を取り囲む能力(溶解)
・プロゲステロンの薬剤送達マトリクスからの拡散能力
有機溶媒中におけるIVDプロトタイプ(n=6)からUK CIDR(登録商標)(n=6)へのプロゲステロン溶出
実験
上述の6つのJurox IVDデバイスと、6つのUK CIDRデバイスとを7つの断片へと切断し、あらかじめ楕円形の磁気攪拌ビーズを備えた個々の試薬瓶内へと配置した。1.38gのプロゲステロン(BP)を秤量して、同様の方法により準備された試薬瓶内へと移した。各試薬瓶と固体内容物とを合わせた質量を記録した後(Mi)、各瓶に250mLのアセトンを充填した。試薬瓶を温度制御された水浴中にて35℃に加熱し、水中多点攪拌プレートを用いて攪拌した。
最終質量(Mf)=サンプリング直前に記録された質量
=m(溶解容器)+m(薬剤生成物)+m(薬剤生成物溶液)
初期質量(Mi)=溶媒添加前の全成分の質量
=m(溶解容器)+m(薬剤生成物)
表30は、これらの時点(2.5時間、5時間及び48時間)におけるJurox IVD及びCIDRデバイスからのプロゲステロンの溶出をまとめたものである。結果は、用量濃度(1.38g)のパーセンテージとして表され、図2にグラフで示されている。
模擬膣液におけるJurox IVDプロトタイプ、UK CIDR(登録商標)及びAustralian CIDRからのプロゲステロン溶解
背景
Jurox IVD薬剤送達成分又は薬剤送達層からのプロゲステロンの抽出速度は、ポリマーマトリクスへの溶媒侵入、プロゲステロンの可溶化及びポリマーマトリクスを通した及び通過するプロゲステロンの拡散に依存する。プロゲステロンのIVDから牛の膣液中への抽出速度の推定値を提供するために、プロゲステロンのSVFへの初期放出速度を調べた。注:水性溶媒中でのプロゲステロンの溶解性は限られているため、SVF中における1.38gプロゲステロンのシンク条件を維持することは困難である。この理由から、プロゲステロン放出の初期速度のみをモニターした。SVF中における初期プロゲステロン放出プロファイルを同定することによって、生体外及び生体内にて薬剤物質が放出されるメカニズムを示唆する情報が得られることになる。Jurox IVD(1.38g用量)からのプロゲステロン溶出の初期速度を、模擬膣液(SVF)中において、UK及びAU登録シリコーン薬剤送達製品CIDR(1.38及び1.9g用量)と比較した。
2つのJurox IVDデバイス(1.38gプロゲステロン用量)、2つのUK
CIDRデバイス(1.38gプロゲステロン用量)及び2つのAUS CIDRデバイス(1.9gプロゲステロン用量)の質量を、温度制御された水浴中にて37℃に平衡化されたSVF1000mL中に配置する前に測定した。抽出液の1mL分取を、各調製物から10、20、30、40、60及び90分後に取得し、その後24、45及び67時間後に再び取得した。分取をさらに調製することなく、HPLCにより分析した。
有機溶液中におけるJurox IVDプロトタイプ、UK CIDR(登録商標)及びAustralian CIDRからのプロゲステロン溶出
Jurox IVD(プロゲステロン用量1.38g)からのプロゲステロン溶解速度を、有機溶媒(アセトン)中において、シリコーンエラストマー薬剤送達マトリクスであるCIDR(1.38g及び1.9gプロゲステロン用量)を備えたUK及びAU登録競合製品と比較した。
2つのJurox IVDデバイス、2つのUK CIDRデバイス(1.38gプロゲステロン用量)及び2つのAUS
CIDRデバイス(1.9gプロゲステロン用量)の質量を、温度制御された水浴中にて37℃に平衡化されたアセトン1000mL中に配置する前に測定した。1mL分取を、2、4、6、8、10、15、20、30、45、60、75及び90分時点にて採取した。分取をさらに調製することなく、HPLCにより分析した。
有機溶媒(アセトン)の高い薬剤溶解性及び該デバイスがプロゲステロンを枯渇させる速度のため、該有機溶媒を、プロゲステロンを抽出するために使用した。これらの条件下では、IVDがCIDRに対してはるかに遅い放出プロファイルを有することは明らかである。CIDRは、これらの条件下において90分で放出される用量の約70〜80%を迅速に放出する(図19)ようなシリコーン系薬剤含有ポリマーである。加えて、1.38g及び1.9gのプロゲステロンを含有するCIDRの初期速度は、同一であった(図20)。IVDは、この90分の期間において用量の約35%を放出し、このことは、プロゲステロンがデバイスから抽出されることの異なる機構を示している。これらの要因には、ポリマーが膨潤する能力(TPE−Sのドメイン及びセグメントの種々異なる組み合わせに起因する)、及び、ポリマーマトリクスから漏出/拡散するプロゲステロンの迂回が含まれる。このことは結果的に、媒体のポリマーの最内部まで浸透する能力を変更し、マトリクス内の変動する空隙サイズを自由体積理論に適合するように変化させる。
Mediprene(登録商標)500452M中にプロゲステロンが0.5g、1g、1.38g及び1.7g装填された自社製造の薬剤送達ポリマーからのプロゲステロン溶出
実験
自社製造の薬物送達ポリマーは、プロゲステロンのMediprene 500452M中における濃度が、最終用量のデバイスあたりプロゲステロン0.5g、1g、1.38g及び1.7gのJuorx IVD製品の濃度と同等となるように調製された。ポリマーは、11.1gのMediprene(登録商標)を溶融するまで加熱(約210℃)してから、溶融Mediprene(登録商標)に95%の量のプロゲステロンマスターバッチ(表31)を添加してよく混合することにより製造した。
種々のプロゲステロン含量にて実験室で製造されたポリマーブレンドを評価することにより、初期では、プロゲステロン放出は主に区画制御されるプロセスであるが、薬剤が拡散した後では、プロゲステロン放出は主にマトリクス制御されることが明らかにされた(時間依存)。Higuchiに従う初期の薬剤装填により、放出された薬剤の累積量の増加が見られた。しかしながら、これは、模擬デバイスあたり1.38g〜1.7gのプロゲステロンの限界までにおいてのみ真であり、ここでは薬剤放出されたフラックスは(2A)1/2に直線的に依存し、これは、マトリクス型送達システムの特徴である。この線形関係は、1ユニットの表面領域から放出された薬剤の累積量を時間平方根で表したものである。
Jurox IVD及び競合製品(CIDR−シリコーンポリマーマトリクス)は、SVF中にてゼロ次放出速度に従うことが見出された。CIDR(登録商標)は、アセトン中ではIVDと比べて大きく増加したプロゲステロン放出速度を示すが、SVF中及び生体内ではより類似したプロゲステロン放出を示すため、プロゲステロン放出はSVF中及び生体内では溶解性に限界がある可能性が高い。このことは、プロゲステロン分布又はマトリクス構造が、CIDR(登録商標)及びIVDでは大きく異なることを示している。
Claims (28)
- 薬剤放出成分及び支持体を備えている薬剤放出デバイスであって、
前記薬剤放出成分は、1つ以上の熱可塑性エラストマー(TPE)ポリマーと、1つ以上のポリオレフィンとを含んでおり、前記TPEポリマーの少なくとも1つは、ポリスチレン−block−ポリ(エチレン−co−ブチレン)−block−ポリスチレン(SEBS)であり、
前記薬剤放出成分は、ASTM D2240に従ってタイプAデュロメータにより測定される硬度が20〜90ショアAの範囲であり、融点が約80〜250℃の範囲であり、
前記薬剤放出成分は、1つ以上の薬剤が含浸されており、
前記支持体は、融点が約70〜200℃の範囲であり、
前記薬剤放出成分の融点は、前記支持体の融点よりも高く、
前記薬剤放出成分は、前記支持体上にオーバーモールドされて成型され、前記支持体の部分的溶融によって前記支持体に接着されている、薬剤放出デバイス。 - 前記薬剤放出成分は、ASTM D2240に従うタイプAデュロメータにより測定される硬度が20〜55ショアAの範囲である、請求項1に記載のデバイス。
- 前記薬剤放出成分は、
ポリエチレン(PE)、ポリプロピレン(PP)、ポリメチルペンテン(PMP)及びポリブテン−1(PB−1)からなる群より選択されるポリオレフィンと、
プロゲステロン、酢酸メゲストロール、プロゲストゲン、プロゲスチン、ノルエタンドロロン、デルマジノン;ペニシリン、スルホンアミド、テトラサイクリン、リンコサミド及びネオマイシンを含む抗菌剤;ピランテル、ピペリジン及びプラジカンタルを含む駆虫剤;メデトミジン、アセプロマジン、クロルプロマジン、ジアゼパム及びチオペントンナトリウムなどの鎮静剤;フェンタニルを含む鎮痛剤;並びに、フルメタゾン、トリアムシノロンアセトニド及びプレドニゾロンを含むコルチコステロイドからなる群より選択される1つ以上の薬剤と、
選択的に、ポリエチレン(PE)、ポリプロピレン(PP)、ポリメチルペンテン(PMP)及びポリブテン−1(PB−1)からなる群より選択される第2のポリオレフィン;ポリスチレン、ポリエステル、ポリ乳酸、ポリ(L−乳酸)、ポリカーボネート、ポリ(エチレン−alt−テレフタレート)、ポリ(ブチレン−alt−テレフタレート)、シリコーンオイル、シリコーン樹脂、ポリジメチルシロキサン、フェニルビニルメチルシリコーン、ポリ[1−(トリメチルシリル)−1−プロピン]、ポリエーテルアリールケトン、ポリ(エーテルエーテルケトン)、ポリ(エーテル−alt−イミド)、ポリ(アミド−alt−イミド)、ポリ(エチレン−co−ビニルアセテート)、ポリカプロラクトン、ポリ(トリメチレンテレフタレート)、ポリヒドロキシアルカノエート、ポリヒドロキシブチレート、ポリ(3−ヒドロキシブチレート−co−3−ヒドロキシバレレート)、ポリ(グリコール酸)、ポリ(乳酸−co−グリコール酸)、ポリ(塩化ビニル)、ポリ(エーテルスルホン)、ポリアクリレート、ポリメチルメタクリレート、ポリスルホン、ポリフェニレンスルフィド、ポリ(ヒドロキシエチルアクリレート)、ポリヒドロキシエチルメタクリレート、ポリ−p−キシレン、ポリテトラフルオロエチレン、フッ素化エチレンプロピレン、ペルフルオロアルコキシ、エチレンクロロトリフルオロエチレン、エチレンテトラフルオロエチレン、ポリフッ化ビニル、ポリ(アクリロニトリル−co−ブタジエン−co−スチレン)、ポリ(スチレン−co−アクリロニトリル)、環状オレフィンコポリマー、ポリ(メタクリレート−co−アクリロニトリル−co−ブタジエン−co−スチレン)、ポリ(スチレン−co−ブタジエン)、アクリル、ポリウレタン、アセタール、ナイロン6、ナイロン66、ナイロン12及びナイロン6/12からなる群より選択される非TPEポリマーと、
選択的に、パラフィン、イソブチレン油及びシリコーン油を含む油;パラフィン油、シリコーン油、イソブチレン油及びフタル酸エステルを含む生体適合性可塑剤;チオジプロピオネート相乗剤を備えたヒンダードフェノールを含む抗酸化剤;ベンゾトリアゾール、二酸化チタン若しくはカーボンブラック及び/又はエチレンビニルアセテート(EVA)及びマイクロクリスタリンワックスを含むオゾン処理防止剤を含むUV安定剤;炭酸カルシウム及び/又はタルクを含む充填剤;並びに、カーボンブラック、カーボンナノチューブ及び炭素繊維を含む静電気散逸剤からなる群より選択される1つ以上の添加剤と
を含んでいる、請求項1又は2に記載のデバイス。 - 前記薬剤放出成分は、プロゲステロンが含浸されている、請求項1〜3のいずれか1項に記載のデバイス。
- 前記薬剤放出成分は、前記支持体に接着されている、請求項1〜4のいずれか1項に記載のデバイス。
- 前記薬剤放出成分は、前記支持体に接着されており、前記支持体の約1nm超が、前記薬剤放出成分に融着している、請求項1〜5のいずれか1項に記載のデバイス。
- 前記薬剤放出成分は、約30〜90%w/wの量のブロックコポリマーSEBS;約3〜40%w/wの量の、ポリエチレン(PE)、ポリプロピレン(PP)、ポリメチルペンテン(PMP)、ポリブテン−1(PB−1)からなる群より選択される1つ以上の熱可塑性ポリマー;約5〜60%w/wの量の、パラフィン油、イソブチレン油及びシリコーン油からなる群より選択される油を含み、前記薬剤放出成分は、プロゲステロンが含浸されている、請求項1〜6のいずれか1項に記載のデバイス。
- 前記支持体は、高い弾性記憶及び実質的に高い曲げ弾性率を備えた非脆性プラスチックを部分的に又は完全に含んでおり、
前記非脆性プラスチックは、ポリプロピレン、ポリエチレン、低密度ポリエチレン(LPDE)、高密度ポリエチレン(HPDE)、ポリ塩化ビニル(PVC)、ポリスチレン、ポリエステル、ポリ乳酸、ポリ(L−乳酸)、ポリカーボネート、ポリ(エチレン−alt−テレフタレート)、ポリ(ブチレン−alt−テレフタレート)、シリコーンオイル、シリコーン樹脂、ポリジメチルシロキサン、フェニルビニルメチルシリコーン、ポリ[1−(トリメチルシリル)−1−プロピン]、ポリエーテルアリールケトン、ポリ(エーテルエーテルケトン)、ポリ(エーテル−alt−イミド)、ポリ(アミド−alt−イミド)、ポリ(エチレン−co−ビニルアセテート)、ポリカプロラクトン、ポリ(トリメチレンテレフタレート)、ポリヒドロキシアルカノエート、ポリヒドロキシブチレート、ポリ(3−ヒドロキシブチレート−co−3−ヒドロキシバレレート)、ポリ(グリコール酸)、ポリ(乳酸−co−グリコール酸)、ポリ(塩化ビニル)、ポリ(エーテルスルホン)、ポリアクリレート、ポリメチルメタクリレート、ポリスルホン、ポリフェニレンスルフィド、ポリ(ヒドロキシエチルアクリレート)、ポリヒドロキシエチルメタクリレート、ポリ−p−キシレン、ポリテトラフルオロエチレン、フッ素化エチレンプロピレン、ペルフルオロアルコキシ、エチレンクロロトリフルオロエチレン、エチレンテトラフルオロエチレン、ポリフッ化ビニル、ポリ(アクリロニトリル−co−ブタジエン−co−スチレン)、ポリ(スチレン−co−アクリロニトリル)、環状オレフィンコポリマー、ポリ(メタクリレート−co−アクリロニトリル−co−ブタジエン−co−スチレン)、ポリ(スチレン−co−ブタジエン)、アクリル、ポリウレタン、アセタール、ナイロン6、ナイロン66、ナイロン12及びナイロン6/12のうち1つを含んでいる、請求項1〜7のいずれか1項に記載のデバイス。 - 前記支持体は、針状体の形状であり、前記針状体は、前記薬剤放出成分と接触する1つ以上の隆起した小節を有している、請求項1〜8のいずれか1項に記載のデバイス。
- 前記薬剤放出成分は、速度制御障壁を含んでいない、請求項1〜9のいずれか1項に記載のデバイス。
- 前記デバイスは、動物の膣腔内に挿入されるように構成されている、請求項1〜10のいずれか1項に記載のデバイス。
- 前記デバイスは、動物の膣腔内に保持されるように構成されている、請求項1〜11のいずれか1項に記載のデバイス。
- 前記デバイスは、動物の膣腔内から除去されるように構成されている、請求項1〜12のいずれか1項に記載のデバイス。
- 第1の端部から第2の端部まで延びている細長本体と、
前記細長本体の前記第1の端部に取り付けられて該端部から延びている2つのアームであって、アーム先端を有していると共に、前記細長本体に対して移動可能である2つのアームと
を備えている、請求項1〜13のいずれか1項に記載のデバイス。 - 以下の特徴のうち1つ以上を有する、請求項14に記載のデバイス:
・前記2つのアームは、前記細長本体の軸に沿って実質的に互いに鏡映する。
・前記2つのアームは、前記細長本体から離れるように又は前記細長本体に向かって動かされ得る。
・前記アームが互いに独立して動く。
・各アームと前記細長本体との間の角度は、前記アームに力を加えることによって変化する。 - 前記細長本体と各アームとの間の角度は、前記細長本体の軸線及び各アームの軸線に沿って測定した際において、約10〜180°、約80〜100°又は約90〜180°の範囲にある、請求項14又は15に記載のデバイス。
- 前記薬剤放出デバイスは、無拘束形態において実質的に「T」字又は「Y」字形状となっており、それによって、前記アームが前記細長本体に対して前記「T」字又は「Y」字形状の平面内にて移動可能となっている、請求項14〜16のいずれか1項に記載のデバイス。
- 前記デバイスは、表面積が約50〜150cm2、約120〜150cm2、約75〜150cm2若しくは約100〜150cm2の範囲である、又は、表面積が約124〜125cm2の範囲若しくは約128cm2である、請求項1〜17のいずれか1項に記載のデバイス。
- 前記デバイスは、1つ以上の薬剤を動物の粘膜へと送達するために使用される、請求項1〜18のいずれか1項に記載のデバイス。
- 膣内インプラントとして使用される、請求項1〜19のいずれか1項に記載のデバイス。
- ブタ、ウマを含む後腸発酵動物、ウシ、ヤギ及びアルパカを含む反芻動物、並びに、イヌ、ネコ及びヒトを含むより小さな動物からなる群より選択される動物へと薬剤を送達する際に使用するための、請求項1〜20のいずれか1項に記載のデバイス。
- 前記デバイスは、約0.6g未満又は約0.4〜0.6gの範囲の量のプロゲステロンを含有している、請求項1〜21のいずれか1項に記載のデバイス。
- 未経産ウシ、低体重のウシ、又は、Brahmanウシ及びBrahman交雑種のようなプロゲステロン感受性品種のウシの発情同期化において使用するための、請求項22に記載のデバイス。
- 前記デバイスは、約0.8gを超える又は約0.8〜2gの範囲の量のプロゲステロンを含有している、請求項1〜21のいずれか1項に記載のデバイス。
- 1つ以上の薬剤をヒト以外の動物へと送達する方法であって、
請求項1〜24のいずれか1項に記載のデバイスを、前記薬剤が該デバイスから動物の粘膜へと放出可能とするのに十分な時間の間、該動物の粘膜と接触させるステップを含んでいる、方法。 - 前記デバイスは、前記動物の血流内において約2ng/mLの最小プロゲステロン血漿濃度を達成するのに有効な量にて粘膜に放出されるプロゲステロンを含有している、請求項25に記載の方法。
- ヒト以外の動物において、少なくとも7日の間、約1.5ng/mm以上又は約2ng/mL以上の血漿プロゲステロン濃度を達成する方法であって、
請求項1〜24のいずれか1項に記載のデバイスを、前記デバイスから前記動物へのプロゲステロンの放出を可能にするのに十分な時間であって、5〜7日を含む時間の間、前記動物の粘膜と接触させるステップを含んでいる、方法。 - 牛群の発情同期化において使用するための、請求項1〜24のいずれか1項に記載のデバイス。
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