JP6876618B2 - 治療目的のための抗体−ウレアーゼコンジュゲート - Google Patents
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Description
本出願は、2015年1月23日出願の米国仮特許出願第62/107,210号の出願日の利益を主張する。該出願は、本明細書に引用により組み込まれている。
本出願は、ASCIIフォーマットで電子的に提出されており、その全体が引用により本明細書に組み込まれている配列表を含んでいる。該ASCIIコピーは、2016年1月14日に作成され、105013-1610_SL.txtという名前であり、サイズが11,000バイトである。
本件開示は、治療的有用性を有する抗体-ウレアーゼコンジュゲートを提供する。より詳細には、本開示は、ウレアーゼにコンジュゲートした1以上の抗体を有する治療用コンジュゲート、その組成物、使用、及び調製物に関する。
ウレアーゼは、尿素の二酸化炭素及びアンモニアへの加水分解を触媒する酵素である。具体的には、ウレアーゼは、尿素の加水分解を触媒して、アンモニア及びカルバメートを生成させ、生成したカルバメートは、それに続き、自発的加水分解により分解され、別のアンモニア及び炭酸を生成する。この点において、ウレアーゼ活性は、ウレアーゼが一般毒性を有する塩基性分子であるアンモニアを生成させる局所的環境のpHを増加させる傾向がある。
本技術は、抗体-ウレアーゼコンジュゲートを対象とする。本技術は、静脈内注射に適した医薬として許容し得る水性液剤と、ウレアーゼを実質的に含まない抗体-ウレアーゼコンジュゲートとを含み、非コンジュゲート抗体を含まず、かつ/又は非水性HPLC溶媒を含まない医薬組成物を提供する。
本開示は、記載された特定の態様や実施態様に限定されないと理解されるべきであり、そのために勿論変化し得る。また、本開示の範囲は、添付の特許請求の範囲によってのみ限定されるものであるので、本明細書で使用される術語は、特定態様や実施態様を説明するのみのためのものであり、限定を意図するものではないことも理解すべきである。
本明細書及び添付の特許請求の範囲で使用される単数形「一つの(a)」、「一つの(an)」、及び「該(the)」は、文脈により、そうでないことが明確に指示されない限り、複数の指示物を含むことに留意しなければならない。従って、例えば、「1つの化合物(a compound)」への言及は、複数の化合物も含む。
本技術は、抗体-ウレアーゼコンジュゲートを対象とする。本技術は、静脈内注射に適した医薬として許容し得る水性液剤と、ウレアーゼを実質的に含まない抗体-ウレアーゼコンジュゲートとを含み、非コンジュゲート抗体を含まず、かつ非水性HPLC溶媒を含まない医薬組成物を提供する。非水性HPLC溶媒としては、メタノール、アセトニトリル、トリフルオロ酢酸などの、分取HPLC又はHPLC精製においてよく使用される有機溶媒が挙げられる。いくつかの態様において、前記抗体-ウレアーゼコンジュゲートは、リン酸緩衝液由来のリン酸塩を実質的に含まない。いくつかの態様において、10mMのリン酸塩、50mMのNaClを含有しpHが7.0のリン酸緩衝液が、SEC精製のために使用される。いくつかの態様において、抗体-ウレアーゼコンジュゲートの工業的生産において、HPLC精製を行うことはない。
いくつかの研究により、進化的に多様な多くの細菌、植物、真菌、及びウイルス由来のウレアーゼの遺伝学に関する詳細な情報が提供されている(各々が引用により本明細書中に組み込まれている、Mobley, H. L. T.らの文献(1995) Microbiol. Rev. 59: 451-480; Eur J. Biochem., 175, 151-165 (1988); Labigne, A. (1990)、国際公報第WO90/04030号; Clayton, C. L.らの文献(1990) Nucleic Acid Res. 18, 362;並びに米国特許第6,248,330号及び第5,298,399号)。特に興味深いものは、植物にみられるウレアーゼである(Sirko, A.及びBrodzik, R.の文献(2000) Acta Biochim Pol 47(4): 1189-95)。例示的な植物ウレアーゼの1つは、タチナタマメウレアーゼである。他の有用なウレアーゼ配列を、公共のデータベース、例えば、Entrez(ncbi.nlm.nih.gov/Entrez)で確認することもできる。
ターゲティング部分は、本技術の化学的実体として想定され、がん細胞などの、規定された、選択された細胞型又は標的細胞集団に結合する。この点において有用であるターゲティング部分は、抗体及び抗体断片、ペプチド、並びにホルモンを含む。公知の細胞表面レセプター(低密度リポタンパク質、トランスフェリン、及びインスリンを含む)、線維素溶解酵素、アネキシンなどの血小板結合タンパク質、並びに生物学的応答調節剤(インターロイキン、インターフェロン、エリスロポエチン、及びコロニー刺激因子を含む)に対応するタンパク質もまた、想定されるターゲティング部分である。オリゴヌクレオチド、例えば、標的細胞核酸の一部に相補的なアンチセンスオリゴヌクレオチドを、本技術におけるターゲティング部分として用いてもよい。ターゲティング部分は、標的細胞表面に結合するオリゴヌクレオチドであってもよい。規定された標的細胞集団に結合する能力を保持している、上で列記したターゲティング部分の類縁体もまた、ターゲティング部分として用い得る。
本技術は、抗体-ウレアーゼコンジュゲートを含み、かつ該抗体-ウレアーゼコンジュゲートの重量基準で約5%、4%、3%、2%、又は1%を超えないウレアーゼなどの、非コンジュゲートウレアーゼを実質的に含まない組成物を調製する方法であって、(1)活性化された該抗体及び該ウレアーゼを、1時間あたり10%、5%、又は1%を超えない反応などの、該活性化された抗体及び該ウレアーゼが実質的に反応しない溶媒中で混ぜ合わせて、反応混合物を形成させることであって、該溶媒中の活性化された該抗体及び該ウレアーゼの分布が一様である、前記形成させること、及び(2)該活性化された抗体が、該ウレアーゼと容易に反応して、該抗体-ウレアーゼコンジュゲートを形成するように、前記(1)の混合物の性質を変化させることを含む、前記方法を提供する。いくつかの態様において、前記(1)の混合物の性質は、前記pH値である。いくつかの態様において、前記(1)の混合物の性質を変化させることは、前記pHを、前記活性化された抗体が、前記ウレアーゼと容易に反応して、前記抗体-ウレアーゼコンジュゲートを形成する値まで上昇させることを含む。いくつかの態様において、活性化された該抗体は、容易に、例えば、少なくとも90%又は少なくとも95%の活性化された抗体は、前記混合物が、前記混合物の性質を変化させてから約6時間、約5時間、約4時間、約3時間、約2時間、又は約1時間後に非コンジュゲートウレアーゼを実質的に含まない速度で、(2)において前記ウレアーゼと反応する。
本技術の組成物は、ウレアーゼを実質的に含まない抗体-ウレアーゼコンジュゲートを含み、かつ任意に非水性HPLC溶媒を含まない。いくつかの態様において、前記組成物は、医薬として許容し得る組成物である。前記組成物は、生体適合性医薬担体、アジュバント、又はビヒクルをさらに含んでいてもよい。いくつかの態様において、前記組成物は、固体形態である。いくつかの態様において、前記組成物は、約0.1〜10mg/mL、約0.5〜5mg/mL、約1〜5mg/mL、又は約1.5〜2.0mg/mLのコンジュゲートを含む水性液剤中のものである。いくつかの態様において、前記水性液剤は、ヒスチジン、スクロース、及びEDTAのうちの1つ以上などの賦形剤をさらに含む。いくつかの態様において、前記水性液剤は、約1〜20mM、例えば、10mMのヒスチジン、約0.1〜5w/v%、例えば、1w/v%のスクロース、約0.1〜0.5mM、例えば、0.2mMのEDTAを含む。いくつかの態様において、前記水性液剤は、約6.5〜7、例えば、約6.8のpHを有する。いくつかの態様において、前記水性液剤は、リン酸塩を含有しない。いくつかの態様において、前記組成物は、前記水性液剤の凍結乾燥によって得られる固体形態である。いくつかの態様において、前記固体形態は、リン酸塩を含有しない。
追加の活性薬剤も、本技術の組成物に含まれていてもよい。該追加の活性薬剤、例えば、抗腫瘍剤(増殖性の細胞に対して活性な薬剤)を、細胞を第1の活性薬剤に接触させる前にか、それと同時にか、又はそれの後に、前記組成物において利用してもよい。例えば、ウレアーゼが、腫瘍細胞に標的化された後に、それは、例えば、pH変化を介して腫瘍外部環境を調節又は調整する能力を有する可能性がある。そうすると、塩基性の環境を好む抗腫瘍剤などの活性薬剤は、より効果的となるであろう。
前記抗体-ウレアーゼコンジュゲート組成物は、当技術分野において公知のいくつかの方法によってがん細胞へ送達されてもよい。治療的応用において、前記組成物は、がん細胞(複数可)の増殖を阻害するのに十分な量で、がん細胞を有する患者に投与される。前記医薬組成物を、非経口的、経腸的、経上皮的、経粘膜的、経皮的、及び/又は外科的なものを含むが、これらに限定されないいくつかの経路による投与によってがん細胞に曝すことができる。
本技術の方法については、各用量のタイミング及び順序を調節する任意の効果的な投与計画を用いてもよい。ヒト対象についての例示的な投薬量レベルは、投与様式、腫瘍の程度(サイズ及び分布)、患者の大きさ、及びがんのウレアーゼ治療に対する応答性次第で決まるものである。
本技術は、対象におけるがんを治療する方法であって、該対象に、治療的有効量の本明細書において提供される組成物を投与することを含み、それにより、該対象におけるがんを治療する、前記方法を提供する。本明細書における方法による治療に適したがんとしては、一般に、癌腫、白血病、リンパ腫、及び肉腫が挙げられる。癌腫は、肛門、胆道、膀胱、乳房、結腸、直腸、肺、中咽頭、下咽頭、食道、胃、膵臓、肝臓、腎臓、胆嚢及び胆管、小腸、尿路、卵巣、結腸、非小細胞性肺癌、生殖器、内分泌腺、甲状腺、並びに皮膚のものであってもよい。他の適したがんとしては、カルチノイド腫瘍、消化管間質腫瘍、頭部及び頚部腫瘍、原発性腫瘍、血管腫、黒色腫、悪性中皮腫、多発性骨髄腫、並びに脳、神経、眼、及び髄膜の腫瘍が挙げられる。
いくつかの態様において、本技術は、本明細書に記載される方法を用いて腫瘍細胞の増殖を阻害するためのキットを提供する。該キットは、1つ以上の活性薬剤を含有する容器を含む。該キットは、本技術の方法の実践のための本明細書に記載される他の成分のうちの任意のものを更に含むことができる。
以下の実施例を、本開示の種々の態様の説明の目的のために記載する。これらは、いかなる形においても本開示を限定することを意味しない。当業者は、本開示が、対象を実施し、言及された目的及び利点を得るようによく適合されていることを認めるであろうし、本明細書に固有のいかなる対象、目的、及び利点についても同様である。本実施例は(本明細書に記載される方法と共に)、好適な態様の現時点での代表的なものである。これらは、例示的なものであり、本開示の範囲に対する制限として意図してはいない。特許請求の範囲により定義される本開示の主旨に包含される変形形態及び他の使用が、当業者の頭に浮かぶであろう。
腫瘍のマイクロ環境は、多くの場合、正常組織と比較して酸性である。異常な血管系に由来する局所的な低酸素症に呼応する嫌気性解糖に由来する乳酸の蓄積が、直接の原因であるようである(1、2)。しかしながら、がん細胞は、酸素の存在下であっても、グルコースを嫌気的に代謝し続ける(3)。このことは、変化した代謝的な表現型及び結果として生じる酸性環境が、がん細胞に増殖優位性を与えることを示唆する(4)。
ウレアーゼ酵素反応によって生成するアンモニアの量を、改良インドフェノールアッセイを用いて決定した(18)。手短にいうと、165mgのフェノール及び132mgのNaOHペレットを10mLの水に溶解させ、それに続き66μLのニトロプルシドナトリウム溶液(10mg/mL)を添加することによって、溶液Aを新たに調製した。40μLの次亜塩素酸ナトリウムを5mLの水に加えることによって、溶液Bを調製した。ホールセル結合アッセイ(下記を参照されたい)からのサンプル溶液(各々30μL)を、50μL/ウェルの5N NaOH:H2O(3.3:46.7)及び20μL/ウェルの水を含有する新たな96ウェルプレートに移した。溶液A(50μL/ウェル)及び溶液B(50μL/ウェル)を加えて、該プレートをその後、37℃で30分間発色用のマイクロプレートリーダーに移した。ODを630nmで測定した。ウェル内で生成されたアンモニアの量を、塩化アンモニア(0〜150μM)を標準として用いた検量線から計算した。
100μL/ウェルの腫瘍細胞(4×104細胞/ウェル)を96-ウェル培養プレート内に播種することによって細胞単層を調製し、37℃で1晩インキュベートした。培地を、プレートから取り除き、細胞単層を、100μL/ウェルの0.05%グルタルアルデヒド(リン酸緩衝生理食塩水PBS中)で、10分間室温で(RT)固定した。プレートをその後、PBSで洗浄し、120μL/ウェルのグリシン溶液(50mM)を加えて、37℃で20分間インキュベートした。インキュベーション後、プレートを、120μL/ウェルの1% BSA/PBSで37℃で30分間ブロックした。その後、プレートをバッファーA(PBS中0.05% BSA)で3回洗浄し、80μL/ウェルの希釈されたL-DOS47又はDOS47溶液を加え、37℃で1.5時間インキュベートした。結合シグナルは、尿素法又は抗体法のいずれかによって発生させた:(1)尿素法では、プレートをバッファーAで4回洗浄し、80μL/ウェルの20mM尿素(0.1Mリン酸緩衝液中に調製、pH7.6)を加え、37℃で30分間インキュベートした。インキュベーション後、40μL/ウェルの1N HClを加えて反応を停止させた。各ウェル内で生成されたアンモニアの量を、インドフェノールアッセイを用いて決定した。(2)抗体法については、先ず、ブロッキング工程前に内在性ペルオキシダーゼを、100μL/ウェルの0.3%過酸化水素で30分間クエンチした。被験物とインキュベーションした後に、プレートをPBSで洗浄し、希釈された抗AFAIKL2-ペルオキシダーゼ抗体コンジュゲート(1:8000)を、0.05%のTween-20及び0.1%の粉乳を含有するバッファーA中に調製した。プレートを、バッファーAで3回洗浄し、100μL/ウェルの抗体-ペルオキシダーゼコンジュゲートをプレートに加えた。37℃で1時間インキュベーション後、プレートをバッファーAで3回洗浄した。ペルオキシダーゼ基質を、0.03%のH2O2を含有するクエン酸ナトリウムバッファー中に、1mMで調製し、100μL/ウェルの前記基質溶液を加え、RTで30分間インキュベートした。プレートを、405nmでのOD測定のためにマイクロプレートリーダーに移した。
100μL/ウェルの腫瘍細胞(4×104細胞/ウェル)を、96-ウェル培養プレート内に播種することによって細胞単層を調製し、37℃で1晩インキュベートした。培地を、各ウェルから取り除き、80μL/ウェルのL-DOS47又はDOS47のいずれかを加え、37℃で2時間更にインキュベートした。インキュベーション後、プレートをバッファーAで3回洗浄した。その後、KRB中100μL/ウェルの尿素(20mM)を、プレートに加え、37℃で1晩インキュベートした。培地を取り除き、100μL/ウェルの単純培地(plain medium)と置き換えた。細胞生存率を、MTS/PES溶液の混合物(20:1 vol/vol; MTS、2mg/mL; PES、1mg/mL)を調製し、20μL/ウェルの該混合物を、プレートに加えるMTS細胞生存率アッセイを用いて決定した。プレートをその後、37℃で1〜2時間インキュベートし、ODを、490nmを参照として630nmで測定した。
L-DOS47、AFAIKL2抗体、及びDOS47を、製造業者の説明書に従いルテニウム-NHS-エステル(スルホタグ(Sulfo-Tag), Meso Scale Discovery MSD; Rockville, MD)で標識した。これらのルテニウムタグ化タンパク質は、L-DOS47及びAFAIKL2の標的抗原への結合の直接的な測定を可能とした。直接的な結合アッセイのために、BxPC-3細胞単層を、96-ウェルSECTOR PR High-Bindプレート(MSD)上に調製した。固定化及びブロッキング後に、種々の量のL-DOS47-タグ又はAFAIKL2-タグを加えた。プレートを、37℃で1.5時間インキュベートした。インキュベーション後、プレートを、2回洗浄し、読み取りバッファー(Read Buffer)(MSD)で満たした。ECLシグナルを、その後SECTOR PR-100リーダー(MSD)を用いて直ちに読み取った。競合的結合アッセイについては、L-DOS47又はAFAIKL2抗体を用いて、L-DOS47-タグのBxPC-3細胞への結合を阻害した。1μg/mLのL-DOS47-タグを用いてBxPC-3細胞に結合させた。種々の濃度の競合剤(L-DOS47又はAFAIKL2)を用いて、タグ化L-DOS47の結合を競争させた。インキュベーション後、プレートを2回洗浄し、読み取りバッファーで満たした。その後、SECTOR PR-100リーダーを用いて、プレートを直ちに読み取った。
CEACAM6がL-DOS47によって認識される特異的抗原であることを確認するために、陽性細胞株BxPC-3のCEACAM6遺伝子を、OriGene (Rockville, MD)からのHuSH-29ヘアピン発現クローンを用いてサイレンシングさせた。これらのプラスミドは、RNA干渉を介して標的遺伝子の転写をブロックする短いヘアピンRNA(shRNA)配列を転写する。BxPC-3細胞を、HuSHプラスミドでトランスフェクトし、安定にトランスフェクトされた細胞を、ピューロマイシンを用いて選択した。異なるクローンを、
G418選択マーカーを含有する哺乳動物の発現ベクターを、PMP-GFP(形質膜タンパク質-緑色蛍光タンパク質)及びCEACAM6遺伝子とクローニングした。セルフェクチン(Cellfectin)試薬(Life Technologies)を用いて、発現ベクターをH23細胞内にトランスフェクトした。手短にいうと、2mLの完全RPMI培地(10%のウシ胎仔血清及び50U/mlのペニシリン及び50μg/mlのストレプトマイシンを含有)中の2×106細胞/ウェルのH23細胞を、6-ウェル培養プレートに播種し、37℃で1晩インキュベートした。セルフェクチン試薬(10μL)及びDNA(1〜2μL)を、それぞれ、100μLの無血清RPMI培地に希釈した。その後、2つの希釈溶液を合わせて、穏やかに混合して、RTで30分間インキュベートした。プレートを、1.5mLの無血清RPMI培地で2回洗浄した。合わせた溶液を、0.8mLの無血清RPMI培地に希釈して、穏やかに混合し、細胞に加えた。細胞を、CO2インキュベーター内で37℃で1晩インキュベートした。翌日、培地を、2mLの完全RPMI培地と置き換えた。トランスフェクトされた細胞は、CEACAM6と同じmRNA由来のGFPを共発現した。トランスフェクトされた細胞を、400μg/mLのG418抗生物質を含有する培地中でのインキュベーションによって選択した。細胞を直接、又はCEACAM6の表面発現を示すcy5.5で標識したL-DOS47とのインキュベーション後に、ソーティングした。
42の癌性及び正常組織を代表する合計で400個の組織サンプルをスクリーニングした(Axel Wellmann, University Hospital Aachen, RWTH Aachen Germany)。初めに、スライドを、乾燥機内で62℃で1時間垂直の向きでインキュベートして、パラフィンを除去した。その後、スライドを、キシレン代替品中で、5×4分間脱ろうした。スライドを、100%、95%、及び75%エタノール中で、各々2×3分間水和して、その後水道水に5分間漬けた。内在性ペルオキシダーゼを、0.3%H2O2で30分間でクエンチした。ベクタステインElite ABCキット(Vector Labs, Burlington, ON)を用いて、スライド上のL-DOS47結合を検出した。手短にいうと、PBS中で3×5分間洗浄した後に、スライドを、ブロッキング血清中で4℃で1晩インキュベートした。その後、スライドを、L-DOS47溶液(バッファーA中20μg/mL)中で37℃で1.5時間インキュベートした。PBSで洗浄した後に、スライドを、マウス抗ウレアーゼ抗体(Sigma, 1:1500)と37℃で1時間インキュベートした。PBSで洗浄した後に、スライドを、ビオチン化された二次抗体溶液(Vector Labs)と30分間インキュベートした。PBSで洗浄した後に、スライドを、ベクタステインElite ABC試薬と30分間インキュベートした。PBSで洗浄した後に、スライドを、新鮮なDAB(3、3’-ジアミノベンジジン)ペルオキシダーゼ基質溶液混合物(Vector Labs)中で、RTで2分間インキュベートした。反応を、水道水中5分間洗浄することにより停止させた。その後、スライドを、マイヤーヘマトキシリン中で10秒間対比染色した。スライドを、75%、80%、95%、及び100%エタノール中で脱水した。キシレン中で透明化した後に、スライドに、Clarion Mounting Mediumを載せた。
A549腫瘍細胞(5×106)を播種し、低結合性(low binding)培養プレート中で成長させた。十分な数が得られたら、細胞を回収して、5×106細胞/mLの濃度で培養培地に再懸濁させた。その後、細胞を、6-ウェルの低結合性組織培養プレートに、1mL/ウェルで入れた。その後、終濃度が10又は15μg/mLのL-DOS47(1mL)を、各ウェルに加えた。アイソタイプ対照を、10μg/mLのV21-DOS47コンジュゲート(血管内皮増殖因子(VEGF)レセプターを標的とする抗体-ウレアーゼコンジュゲート)で処理した。細胞を、37℃で4時間インキュベートした。インキュベーション後、細胞を、遠心分離して、無菌のPBSで3回洗浄し、無菌のPBS中に1×107細胞/mLで再懸濁した。その後、各々のマウスは、1×106の処理された細胞の接種を1回受けた。この研究は、4群の雌性のCrTac:NCr-Foxn1nuマウス(非処理、アイソタイプ、並びにL-DOS47(10及び15μg/mL))からなっていた。合計で40頭のマウス(各群あたり10頭)に、尾静脈を介してA549腫瘍細胞を静脈内接種した。
5つの腫瘍細胞株 - BxPC-3、Capan-1、ZR-75-30、LS174T、及びMDA-MB231の間で、L-DOS47の異なる結合プロファイルが観察された(図1A)。この結果は、L-DOS47が、2つの膵臓(BxPC-3及びCapan-1)及び乳房(ZR-75-30)細胞株によく結合していたことを示しており、CEACAM6抗原が、細胞表面に発現されていたことを示している。中程度の結合が結腸細胞株LS174Tにも観察されたが、乳房細胞株MDA-MB231では結合は見られなかった(陰性対照)。AFAIKL2抗体は、ウレアーゼ酵素にコンジュゲートされた場合、CEACAM6発現細胞に対する特異的なターゲティングを提供した。これは、DOS47で処理された細胞における結合シグナルの非存在によって確認された(データは示していない)。
図1Bにおいて、BxPC-3及びZR-75-30の双方が、L-DOS47細胞傷害性に対して感受性であることが示された。細胞生存時間の急速な低下が、1μg/mL未満のL-DOS47で処理されたこれら2つの細胞株において観察された。中程度の効果が、Capan-1及びLS174T細胞において観察された。陰性対照細胞株MDA-MB231に対しては、L-DOS47は、何ら効果を有しない。より多くの細胞株からの結合及び細胞傷害性の結果の一覧を、表1に示した。L-DOS47細胞傷害性は、対応する細胞株上のL-DOS47の結合活性に直接的に依存する。A549及びCapan-1のより弱い細胞傷害性応答は、これら2つの細胞株がアンモニア毒性に対してより高い耐性があることが原因である(データは示していない)。一方で、H23細胞は、アンモニアに対し高い感受性を有する(データは示していない)。細胞表面にCEACAM6抗原が存在しないにもかかわらず、H23細胞はなお、恐らくウェルにおいて非特異的に結合したL-DOS47の存在が原因の、L-DOS47に対する幾分弱い細胞傷害性応答を示す。
表1. 9つのヒト腫瘍細胞株に対するL-DOS47の種々の結合及び細胞傷害性研究から得られた結果の概要
細胞ベースの電気化学発光結合アッセイは、腫瘍細胞に結合したルテニウムで標識された抗体コンジュゲートの直接的な検出を可能とする。図2Aにおいて、ルテニウムタグ化L-DOS47及びAFAIKL2抗体の双方は、BxPC-3細胞に結合することが分かった。一方、ルテニウムタグ化DOS47は、陰性対照として作用した。L-DOS47は、L-DOS47において呈されたより高い抗体アビディティー(6〜10抗体)に起因して、AFAIKL2抗体よりもかなり高い結合親和性を示した。この結果を、L-DOS47及びAFAIKL2抗体を競合剤として用いて、ルテニウムタグ化L-DOS47のBxPC-3細胞への結合を阻害してさらに確認した(図2B)。L-DOS47及びAFAIKL2抗体の双方は、ルテニウムタグ化L-DOS47のBxPC-3への結合を阻害し、かつ、予想通りに、L-DOS47は、AFAIKL2抗体よりもより良好な結合親和性、従ってそれよりもルテニウムタグ化L-DOS47のBxPC-3への結合のより強力な阻害を実証した。L-DOS47及びAFAIKL2抗体の双方の見かけの結合親和性は、該被験物のIC50(結合の50%の減少を引き起こすのに必要とされる競合剤の量)によって比較可能である。L-DOS47及びAFAIKL2抗体のIC50は、それぞれ2及び20μg/mLと推定され;即ち、L-DOS47については3.22nM(1個のウレアーゼに対して6個の抗体のコンジュゲーション比率でMW=622k)及びAFAIKL2について1.55μM(MW=12.9k)であった。この結果は、L-DOS47の結合親和性が、AFAIKL2抗体のそれの約500倍であることを示唆した。
CEACAM6遺伝子をトランスフェクションした後に、陽性クローンH23-CC6 #7を特定した。A549細胞のCEACAM6レベルに近いCEACAM6レベルを有するクローンを、L-DOS47-cy5.5を用いてH23-CC6 #7クローンを再選別することによって得た。より多い量のG418抗生物質(800μg/mL)との該クローンのさらなるインキュベーションは、より高いレベルのCEACAM6発現を伴うものを選択するのに役立った。H23-CC6 #7は、A549及びBxPC-3細胞よりも少ないCEACAM6を細胞表面に発現していたが、このCEACAM6をトランスフェクトされたクローンは、アンモニア毒性に対するその高い感受性に起因して、L-DOS47細胞傷害性に対してBxPC-3細胞よりもいっそう高い感受性がある(図3B)(データは示していない)。
L-DOS47の2つのCEACAM6ノックダウンクローン(HUSH#6及びHUSH #7)に対する結合は、天然のBxPC-3細胞及び対照クローン(HUSH-TR3)のそれと比べて顕著に減少した(図3C)。この実験は、細胞表面におけるCEACAM6の存在が、L-DOS47結合にとって重要であることを明確に示した。該遺伝子をサイレンシングすると、L-DOS47の結合がまさに実質的に減少した。
正常組織及びがん組織のスクリーニングは、L-DOS47が、腺癌サブタイプをほとんど排他的に認識することを実証した(表2)。種々の癌組織及びマッチさせた正常組織からなる42群を代表するスクリーニングされた400を超える組織サンプルのうち、肺腺癌組織は、かなりの染色を示し、80%を超える細胞が認識された。対応する年齢をマッチさせた正常肺組織は陰性であり、いくつかの活性化肺細胞におけるわずかな局所的染色を伴っていた。いくらか陽性を示したが染色が弱かった他の組織は、結腸及び膵臓腺癌である。図4は、結腸及び肺腺癌のL-DOS47での免疫化学的染色を示す。
表2.L-DOS47結合のヒトの正常組織及びがん組織スクリーニング
10及び15μg/mlのL-DOS47で処理されたA549細胞を受けたマウスは、3週目に、低減した肺腫瘍カウントを示し、非処理対照群と比較して有意な低減(p<0.05)が実証された(表3)。しかしながら、10週目において、腫瘍細胞カウントの平均数に有意な低減は見られなかった。統計的に有意でないが、10μg/mlのL-DOS47による処理は、処理後3週目及び10週目双方で、非処理対照群と比較した場合、平均腫瘍細胞の数の一貫した低減を示した(表3)。興味深いことに、アイソタイプ対照(V21-DOS47)も、肺における腫瘍カウントの数に影響を及ぼし、減少させた。まとめると、A549細胞の10μg/mLのL-DOS47による処理は、処理後3週目で肺腫瘍の平均数を減少させたが、処理後10週までに平均腫瘍数には有意な低減が観察されなかったため、この効果は一過性であった。
表3. A549転移研究においてカウントされた肺腫瘍の平均数
本研究の主要な目的は、ステージIV(TNM M1a及びM1b)再発性又は転移性非扁平上皮非小細胞性肺がんの患者において、ペメトレキセド/カルボプラチンの標準的なダブレット療法と組み合わせたL-DOS47のある範囲の用量が、どの程度安全であるのか、どの程度良好な耐容性を示すのか、及びどの程度効果的であるのかを評価することである。
本研究の主要な目的は、L-DOS47のある範囲の用量が単剤療法として与えられた場合に、非扁平上皮の非小細胞性肺がんの患者において、どの程度安全であるのか、どの程度良好な耐容性を示すのか、及びどの程度効果的であるのかを評価することである。
最もよく使用されるがん化学療法薬の有効性は、それらの狭い治療係数及び腫瘍細胞に対する選択的効果の欠如によって限定される。抗体指示型酵素プロドラッグ療法(ADEPT)は、抗体-酵素コンジュゲートを、それらが腫瘍関連抗原に結合する場である腫瘍部位へと送達することによって選択性を向上する一方で、残りの非結合コンジュゲートは、血流から除去される[20]。ひとたび抗体-酵素コンジュゲートが蓄積されると、プロドラッグが投与され、腫瘍部位で、該抗体-酵素コンジュゲートの酵素部分によってその活性な細胞傷害性形態へと変換され、それによって、選択的な腫瘍細胞死が達成される。ADEPT概念が、Bagshaweによって1987年に導入されて以来[20-22]、研究者らは、この概念の変形を応用してより強力なかつ特異的な抗がん薬を開発してきた[22-24]。異なる世代のガラクトシドプロドラッグ及び抗体-ガラクトシダーゼコンジュゲートが、活性化された薬物の細胞傷害性を増加させつつ全身毒性を減少するために開発された[25]。ヒトプリンヌクレオシドホスホリラーゼの変異型を操作して、基質としてのアデノシンベースのプロドラッグに対する特異性が強化された[26]。加えて、異なる種類の免疫酵素インフュージョンタンパク質が開発され、酵素活性及び抗体アビディティーが向上されている[27-29]。
コンジュゲーションは、2工程で行った(図6)。第1工程では、AFAIKL2上の一級アミン基を、SIABのNHSエステル部分との反応によって活性化した。第2工程では、活性化されたAFAIK2を、SIABのヨードアセトアミド末端を介してウレアーゼ上のチオール基にカップリングさせた。図6に示されるように、L-DOS47コンジュゲート産物の合成は、2工程反応である。工程1は、SIABを用いる抗体の活性化であり、工程2は、活性化された抗体のウレアーゼ酵素とのコンジュゲーションによるバイオコンジュゲートL-DOS47の形成を伴う。
標的抗原であるCEACAM6へ結合するL-DOS47の親和性に対するコンジュゲーション比率の効果を研究するために、異なるコンジュゲーション比率を有するL-DOS47コンジュゲートを、コンジュゲーションの際にAFAIKL2/HPUモル比を調整することによってベンチスケールで製造した。結果として得られたコンジュゲートのコンジュゲーション比率を、SDS-Experionによって決定し、タンパク質濃度を、Total Protein Kit(Sigma, TP0200)を用いるマイクロLowryによって決定した。マイクロタイタープレートを、100μL/ウェルのCEACAM6-A(全CEACAM6抗原のドメイン-A)(PBS中2.5μg/ml)でコートして、室温で6時間インキュベートした。プレートを、バッファーA(PBS中0.05% BSA)で2回洗浄し、150μL/ウェルの3% BSA/PBSで4℃で1晩ブロックし、その後、バッファーAで2回洗浄した。後続の工程は全て、穏やかに振盪しながら室温で行った。L-DOS47(100μL/ウェル)を加え、2時間インキュベートし、プレートをバッファーAで3回洗浄し、その後100μL/ウェルの抗ウレアーゼIgG(1:12000、Rockland)を加え、1時間インキュベートした。バッファーAで3回洗浄した後に、100μL/ウェルのヤギ抗ウサギIgG-AP(1:6000, Sigma)を加えて、1時間インキュベートした。バッファーAで3回洗浄後、100μL/ウェルのAP基質溶液を加え、25分間インキュベートした。吸光度を、405nmで決定した。
フルオレセイン標識システイン(Cys-FL)を調製するために、システインを過剰に、NHS-エステルフルオレセイン(Pierce)と、1Mホウ酸塩、pH8.0中で室温で60分間反応させた。反応溶液を、C8カラムを用いたRP-HPLCによって分離した。Cys-FLピーク画分を、MALDI質量分析によって特定し、その濃度を、493nm及びpH7でのその吸光係数に応じて分光分析によって決定した。ピーク画分分割量を凍結乾燥し、-20℃で暗所に保管した。AFAIKL2抗体は、先ず、ベンチスケールでSIAB架橋剤で活性化され、加水分解されたSIABを、自社で調製したG25脱塩カラムで取り除いた。活性化された抗体を、100mMホウ酸バッファー、pH8.3中で、フルオレセイン標識システイン(Cys-FL)と室温で90分間反応させた。反応溶液を、G25脱塩カラムにより30mM炭酸水素アンモニウムとバッファー交換し、結果として得られたAFAIKL2-Cys-FLを、20%アセトニトリルを含有する30mM炭酸水素アンモニウム中に、0.5〜0.8mg/mLとなるまで希釈した。トリプシン(Promega)を、最終のタンパク質対トリプシン比が20:1となるまで加え、37℃で36時間消化を行った。結果として得られたトリプシン消化物を、0.1M TCEPを2mMの終濃度まで加えることにより減少させ、その後、逆相HPLC(Zobax 300SB-C18カラム、5μm、4.6×150mmを備えたAgilent 1100システム、アセトニトリルが0〜45%のグラジエント、0.025%TFA、55分)で分離し、420nmの吸収を記録した。AFAIKL2上のSIABで活性化されたリジンは、フルオレセイン標識システインに連結されていたため、それにトリプシンが近づくことができる可能性は低く、ペプチド(XnKXm)-Cys-FLが、生じたはずである。フルオレセイン修飾ペプチドを含有するピーク画分を採取し、リフレクトロン(Reflectron)モードのMALDI質量分析(2eのマイクロ質量T)を適用した。対応するペプチドのHPLCピーク面積を用いて、各活性化部位の分布百分率を計算した。
細胞単層を、100μL/ウェルのMCF-7、BxPC-3、及びA549細胞(4×104細胞/ウェル)を、96-ウェル培養プレート内に播種して、37℃で1晩インキュベートすることによって調製した。その後、培地をプレートから除去し、細胞単層を、100μL/ウェルのPBS中の0.05%グルタルアルデヒドで室温で(RT)10分間固定した。その後、プレートを、PBSで洗浄し、120μL/ウェルの50mMグリシンを加えた。37℃で20分間インキュベーション後、プレートを、120μL/ウェルの1%BSA/PBSで37℃で30分間ブロックした。その後、プレートをバッファーA(PBS中0.05%BSA)で3回洗浄し、80μL/ウェルの希釈されたL-DOS47又はDOS47を加え、37℃で1.5時間インキュベートした。プレートをバッファーAで4回洗浄し、80μL/ウェルの0.1M PBS中の20mM尿素、pH7.6を加え、37℃で30分間インキュベートした。インキュベーション後、40μL/ウェルの1N HClを加えて、反応を停止した。各ウェル内で生成されたアンモニアの量を、改良インドフェノールアッセイを用いて決定した。手短にいうと、165mgのフェノール及び132mgのNaOHを、10mLの水に溶解させて、それに続き、66μLのニトロプルシドナトリウム溶液(10mg/mL)を添加することで溶液Aを新たに調製した。溶液Bは、40μLの次亜塩素酸ナトリウムを5mLの水に加えることにより調製した。ホールセル結合アッセイからのサンプル溶液(各30μL)を、50μL/ウェルの5N NaOH:H2O(3.3:46.7)及び20μL/ウェルの水を含有する新たな96ウェルプレートに移した。溶液A(50μL/ウェル)及び溶液B(50μL/ウェル)を加え、その後、プレートを37℃で30分間の発色のためにマイクロプレートリーダーに移した。ODを630nmで測定した。ウェル内に生成したアンモニアの量を、0〜150mMの塩化アンモニウムを標準として用いた検量線から計算した。
CR=6*(PK1*0+PK2*1+PK3*2+PK4*3+PK5*4)/(PK1+PK2+PK3+PK4+PK5)
(式中、
PKi (i=1〜5)は、i-1個の抗体分子と連結されたウレアーゼサブユニットのピーク面積である。
参考文献
(構成1)
静脈内注射に適した医薬として許容し得る水性液剤と、非コンジュゲートウレアーゼを実質的に含まない抗体-ウレアーゼコンジュゲートとを含む医薬組成物。
(構成2)
前記非コンジュゲートウレアーゼが、5%未満である、構成1記載の医薬組成物。
(構成3)
非水性HPLC溶媒を含まない、構成1記載の医薬組成物。
(構成4)
pHが、約6.8である、構成1記載の医薬組成物。
(構成5)
前記コンジュゲートが、ウレアーゼ部分1個あたり、抗体部分が3、4、5、6、7、8、9、10、11、又は12個であるコンジュゲーション比率を有する、構成1記載の医薬組成物。
(構成6)
前記コンジュゲートが、ウレアーゼ部分1個あたり、抗体部分が6、7、8、9、10、11、又は12個であるコンジュゲーション比率を有する、構成5記載の医薬組成物。
(構成7)
前記コンジュゲートが、ウレアーゼ部分1個あたり、抗体部分が8、9、10、11、又は12個であるコンジュゲーション比率を有する、構成6記載の医薬組成物。
(構成8)
前記コンジュゲートが、ウレアーゼ部分1個あたり、抗体部分が約6個以上の平均コンジュゲーション比率を有する、構成1記載の医薬組成物。
(構成9)
前記コンジュゲートが、ウレアーゼ部分1個あたり、抗体部分が約8〜11個である平均コンジュゲーション比率を有する、構成1記載の医薬組成物。
(構成10)
前記ウレアーゼが、タチナタマメウレアーゼである、構成1記載の医薬組成物。
(構成11)
前記抗体が、ヒト化抗体又は非ヒト抗体である、構成1〜10のいずれか1項記載の医薬組成物。
(構成12)
前記抗体が、単一ドメイン抗体である、構成1〜11のいずれか1項記載の医薬組成物。
(構成13)
前記抗体が、非小細胞性肺癌により発現される腫瘍抗原に対する特異性を有する、構成1記載の医薬組成物。
(構成14)
前記抗体が、CEACAM6に対する特異性を有する、構成1〜13のいずれか1項記載の医薬組成物。
(構成15)
前記抗体が、K d 値が約1×10 -6 Mを超えるCEACAM6に対する結合親和性を有する、構成1〜14のいずれか1項記載の医薬組成物。
(構成16)
前記コンジュゲートが、K d 値が約1×10 -8 Mを超えないCEACAM6に対する結合親和性を有する、構成15記載の医薬組成物。
(構成17)
前記コンジュゲートが、K d 値が約1×10 -10 Mを超えないCEACAM6に対する結合親和性を有する、構成16記載の医薬組成物。
(構成18)
前記コンジュゲートが、IC 50 値が約5nMを超えないCEACAM6に対する結合親和性を有する、構成1記載の医薬組成物。
(構成19)
前記IC 50 値が、約3.22nMである、構成18記載の医薬組成物。
(構成20)
前記コンジュゲートが、約20μg/mLのIC 50 値でCEACAM6に結合する、構成1記載の医薬組成物。
(構成21)
前記抗体が、配列番号1のアミノ酸配列を含むポリペプチドを含む、構成1記載の医薬組成物。
(構成22)
前記抗体が、配列番号1のアミノ酸配列に対する少なくとも1つの改変を含むポリペプチドを含む、構成1記載の医薬組成物。
(構成23)
対象におけるがんを治療する方法であって、該対象に、治療的有効量の構成1〜22のいずれか1項記載の組成物を投与することを含み、それにより、該対象におけるがんを治療する、前記方法。
(構成24)
前記がんが、非小細胞性肺癌、乳がん、膵臓がん、卵巣がん、肺がん、結腸がん、又はそれらの組合せのうちの1つ以上である、構成23記載の方法。
(構成25)
前記がんが、非小細胞性肺癌である、構成24記載の方法。
(構成26)
前記対象が、ヒトである、構成24記載の方法。
(構成27)
抗体-ウレアーゼコンジュゲート、及び該抗体-ウレアーゼコンジュゲートの重量基準で約5%を超えないウレアーゼを含む組成物を調製する方法であって、(1)活性化された抗体及びウレアーゼを、該活性化された抗体及び該ウレアーゼが実質的に反応しない溶媒中で混ぜ合わせて、反応混合物を形成させることであって、該溶媒中の活性化された該抗体及び該ウレアーゼの分布が一様である、前記形成させること、及び(2)該活性化された抗体が、該ウレアーゼと容易に反応して、該抗体-ウレアーゼコンジュゲートを形成するように、前記(1)の混合物のpHを上昇させること、及び(3)任意に、精製工程によって該抗体-ウレアーゼコンジュゲートを精製すること、を含み、クロマトグラフィー精製工程を含まない、前記方法。
(構成28)
前記精製工程が、ウルトラダイアフィルトレーションである、構成27記載の方法。
(構成29)
前記抗体-ウレアーゼコンジュゲートが、ウレアーゼ部分1個あたり、抗体部分が8〜11個であるコンジュゲーション比率を有する、構成27記載の方法。
(構成30)
工程(1)における前記溶媒が、酢酸ナトリウムバッファーなどの、約6.0〜7.0のpHを有する酸性の水性バッファーである、構成27記載の方法。
(構成31)
工程(2)において前記pHを上昇させることが、該pHを約8〜9へと調整するホウ酸ナトリウム溶液などの塩基性バッファーの添加を含む、構成27記載の方法。
(構成32)
前記組成物が、前記精製工程の前に、総タンパク質重量で約10〜20%の非コンジュゲート抗体を含む、構成27〜31のいずれか1項記載の方法。
(構成33)
前記組成物が、前記精製工程の後に、総タンパク質重量で約1%未満の非コンジュゲート抗体を含む、構成27〜31のいずれか1項記載の方法。
(構成34)
腫瘍抗原に対する抗体結合親和性を上昇させる方法であって、複数の該抗体分子を、1つのウレアーゼ分子にコンジュゲートさせて、抗体-ウレアーゼコンジュゲートを形成させることを含み、ここで、該コンジュゲートが、非コンジュゲート抗体よりも少なくとも約100倍高い該腫瘍抗原に対する結合親和性を有する、前記方法。
(構成35)
前記コンジュゲートが、ウレアーゼ部分1個あたり、抗体部分が3、4、5、6、7、8、9、10、11、又は12個であるコンジュゲーション比率を有する、構成34記載の方法。
(構成36)
前記コンジュゲートが、ウレアーゼ部分1個あたり、抗体部分が約6個以上であるコンジュゲーション比率を有する、構成34記載の方法。
(構成37)
前記コンジュゲートが、ウレアーゼ部分1個あたり、抗体部分が6、7、8、9、10、11、又は12個であるコンジュゲーション比率を有する、構成36記載の方法。
(構成38)
前記コンジュゲートが、ウレアーゼ部分1個あたり、抗体部分が8、9、10、又は11個であるコンジュゲーション比率を有する、構成36記載の方法。
(構成39)
前記コンジュゲートが、ウレアーゼ部分1個あたり、抗体部分が約8〜11個である平均コンジュゲーション比率を有する、構成34記載の方法。
(構成40)
前記ウレアーゼが、タチナタマメウレアーゼである、構成34記載の方法。
(構成41)
前記抗体が、ヒト化抗体又は非ヒト抗体である、構成34〜40のいずれか1項記載の方法。
(構成42)
前記抗体が、単一ドメイン抗体である、構成34〜41のいずれか1項記載の方法。
(構成43)
前記腫瘍抗原が、非小細胞性肺癌により発現されるものである、構成34記載の方法。
(構成44)
前記抗体が、CEACAM6に対する特異性を有する、構成34〜43のいずれか1項記載の方法。
(構成45)
前記抗体が、K d 値が約1×10 -6 Mを超えるCEACAM6に対する結合親和性を有する、構成34〜44のいずれか1項記載の方法。
(構成46)
前記コンジュゲートが、約1×10 -8 Mを超えないK d 値でCEACAM6に結合する、構成45記載の方法。
(構成47)
前記コンジュゲートが、約1×10 -10 Mを超えないK d 値でCEACAM6に結合する、構成46記載の方法。
(構成48)
前記コンジュゲートが、約5nMを超えないIC 50 値でCEACAM6に結合する、構成34〜47のいずれか1項記載の方法。
(構成49)
前記IC 50 値が、約3.22nMである、構成48記載の方法。
(構成50)
前記コンジュゲートが、約20μg/mLのIC 50 値でCEACAM6に結合する、構成34〜47のいずれか1項記載の方法。
(構成51)
構成1〜22のいずれか1項記載の組成物、及び該組成物の使用のための説明書を含むキット。
Claims (39)
- 静脈内注射に適した医薬として許容し得る水性液剤と、単一ドメイン抗体-ウレアーゼコンジュゲートとを含む医薬組成物であって、該コンジュゲートが、ウレアーゼ部分1個あたり単一ドメイン抗体部分が3、4、5、6、7、8、9、10、11、又は12個であるコンジュゲーション比率を有し、かつ非コンジュゲートウレアーゼを実質的に含まない、前記医薬組成物。
- 前記非コンジュゲートウレアーゼが、5重量%未満である、請求項1記載の医薬組成物。
- 非水性HPLC溶媒を含まない、請求項1記載の医薬組成物。
- pHが、約6.8である、請求項1記載の医薬組成物。
- 前記コンジュゲートが、ウレアーゼ部分1個あたり、単一ドメイン抗体部分が約6個以上のコンジュゲーション比率を有する、請求項1〜4のいずれか1項記載の医薬組成物。
- 前記コンジュゲートが、ウレアーゼ部分1個あたり、単一ドメイン抗体部分が約8〜11個である平均コンジュゲーション比率を有する、請求項1〜4のいずれか1項記載の医薬組成物。
- 前記ウレアーゼが、タチナタマメウレアーゼである、請求項1〜6のいずれか1項記載の医薬組成物。
- 前記単一ドメイン抗体が、ヒト化抗体又は非ヒト抗体である、請求項1〜7のいずれか1項記載の医薬組成物。
- 前記単一ドメイン抗体が、非小細胞性肺癌により発現される腫瘍抗原に対する特異性を有する、請求項1〜8のいずれか1項記載の医薬組成物。
- 前記単一ドメイン抗体が、CEACAM6に対する特異性を有する、請求項1〜9のいずれか1項記載の医薬組成物。
- 前記単一ドメイン抗体が、Kd値が約1×10-6Mを超えるCEACAM6に対する結合親和性を有する、請求項1〜10のいずれか1項記載の医薬組成物。
- 前記コンジュゲートが、Kd値が約1×10-8Mを超えないCEACAM6に対する結合親和性を有する、請求項11記載の医薬組成物。
- 前記コンジュゲートが、Kd値が約1×10-10Mを超えないCEACAM6に対する結合親和性を有する、請求項11記載の医薬組成物。
- 前記コンジュゲートが、IC50値が約5nMを超えないCEACAM6に対する結合親和性を有する、請求項1〜13のいずれか1項記載の医薬組成物。
- 前記IC50値が、約3.22nMである、請求項14記載の医薬組成物。
- 前記コンジュゲートが、約20μg/mLのIC50値でCEACAM6に結合する、請求項1〜15のいずれか1項記載の医薬組成物。
- 前記単一ドメイン抗体が、配列番号1のアミノ酸配列を含むポリペプチドを含む、請求項1〜16のいずれか1項記載の医薬組成物。
- 前記単一ドメイン抗体が、配列番号1のアミノ酸配列に対する少なくとも1つのアミノ酸の改変を含むポリペプチドを含み、該アミノ酸の改変が、前記ポリペプチドの機能的特性を維持するものである、請求項1〜17のいずれか1項記載の医薬組成物。
- 単一ドメイン抗体-ウレアーゼコンジュゲート、及び該単一ドメイン抗体-ウレアーゼコンジュゲートの重量基準で約5重量%を超えない非コンジュゲートウレアーゼを含む組成物を調製する方法であって、
(1)活性化された単一ドメイン抗体とウレアーゼとを、該活性化された単一ドメイン抗体及び該ウレアーゼが実質的に反応しない溶媒中で混ぜ合わせて、反応混合物を形成させる工程であって、ここで、該溶媒中の該活性化された単一ドメイン抗体及び該ウレアーゼの分布が一様である、前記工程、及び
(2)該活性化された単一ドメイン抗体が該ウレアーゼと容易に反応して、該単一ドメイン抗体-ウレアーゼコンジュゲートであって、ウレアーゼ部分1個あたり3、4、5、6、7、8、9、10、11、又は12個の単一ドメイン抗体部分を有する該コンジュゲートを形成するように、工程(1)の混合物のpHを上昇させる工程、及び
(3)任意に、精製工程によって該単一ドメイン抗体-ウレアーゼコンジュゲートを精製する工程を含み、非コンジュゲートウレアーゼを実質的に含まず、クロマトグラフィー精製工程を含まない、前記方法。 - 前記精製工程が、ウルトラダイアフィルトレーションである、請求項19記載の方法。
- 前記単一ドメイン抗体-ウレアーゼコンジュゲートが、ウレアーゼ部分1個あたり、抗体部分が8〜11個であるコンジュゲーション比率を有する、請求項19又は20記載の方法。
- 工程(1)における前記溶媒が、酢酸ナトリウムバッファーなどの、約6.0〜7.0のpHを有する酸性の水性バッファーである、請求項19記載の方法。
- 工程(2)において前記pHを上昇させることが、該pHを約8〜9へと調整するホウ酸ナトリウム溶液などの塩基性バッファーの添加を含む、請求項19〜22のいずれか1項記載の方法。
- 前記組成物が、前記精製工程の前に、総タンパク質重量で約10〜20%の非コンジュゲート抗体を含む、請求項19〜23のいずれか1項記載の方法。
- 前記組成物が、前記精製工程の後に、総タンパク質重量で約1%未満の非コンジュゲート抗体を含む、請求項24項記載の方法。
- 腫瘍抗原に対する抗体結合親和性を上昇させる方法であって、複数の単一ドメイン抗体分子を1つのウレアーゼ分子にコンジュゲートさせて、単一ドメイン抗体-ウレアーゼコンジュゲートであって、ウレアーゼ分子1個あたり単一ドメイン抗体分子が3、4、5、6、7、8、9、10、11、又は12個であるコンジュゲーション比率を有する該コンジュゲートを形成させることを含み、ここで、該単一ドメイン抗体-ウレアーゼコンジュゲートが、非コンジュゲート抗体よりも少なくとも約100倍高い該腫瘍抗原に対する結合親和性を有する、前記方法。
- 前記単一ドメイン抗体-ウレアーゼコンジュゲートが、ウレアーゼ分子1個あたり、単一ドメイン抗体分子が約6個以上であるコンジュゲーション比率を有する、請求項26記載の方法。
- 前記単一ドメイン抗体-ウレアーゼコンジュゲートが、ウレアーゼ分子1個あたり、単一ドメイン抗体分子が約8〜11個である平均コンジュゲーション比率を有する、請求項26記載の方法。
- 前記ウレアーゼが、タチナタマメウレアーゼである、請求項26〜28のいずれか1項記載の方法。
- 前記単一ドメイン抗体が、ヒト化抗体又は非ヒト抗体である、請求項26〜29のいずれか1項記載の方法。
- 前記腫瘍抗原が、非小細胞性肺癌により発現されるものである、請求項26〜30のいずれか1項記載の方法。
- 前記単一ドメイン抗体が、CEACAM6に対する特異性を有する、請求項26〜31のいずれか1項記載の方法。
- 前記単一ドメイン抗体-ウレアーゼコンジュゲートが、Kd値が約1×10-6Mを超えるCEACAM6に対する結合親和性を有する、請求項26〜32のいずれか1項記載の方法。
- 前記単一ドメイン抗体-ウレアーゼコンジュゲートが、約1×10-8Mを超えないKd値でCEACAM6に結合する、請求項33記載の方法。
- 前記単一ドメイン抗体-ウレアーゼコンジュゲートが、約1×10-10Mを超えないKd値でCEACAM6に結合する、請求項34記載の方法。
- 前記単一ドメイン抗体-ウレアーゼコンジュゲートが、約5nMを超えないIC50値でCEACAM6に結合する、請求項26〜35のいずれか1項記載の方法。
- 前記IC50値が、約3.22nMである、請求項36記載の方法。
- 前記単一ドメイン抗体-ウレアーゼコンジュゲートが、約20μg/mLのIC50値でCEACAM6に結合する、請求項26〜37のいずれか1項記載の方法。
- 請求項1〜18のいずれか1項記載の組成物、及び該組成物の使用のための説明書を含むキット。
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