JP6842419B2 - 黄ぐすみ低減用皮膚外用剤 - Google Patents
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Description
還元剤処理品の製造原料であるヘスペリジンとしては、従来のグリコシルヘスペレチンの製造において用いられるヘスペリジンのいずれも用いることができ、高純度のヘスペリジンはもとより、比較的低純度のヘスペリジン含有植物由来の抽出物、搾汁液、又はその部分精製物などの1種又は2種以上を適宜組み合わせて用いることもできる。
本願明細書で言う酵素反応とは、前記製造原料としてのヘスペリジンと澱粉部分分解物に糖転移酵素を作用させてα−グリコシルヘスペリジンを生成させる酵素反応を意味する。
本願明細書で言う還元剤処理とは、所定の還元剤を用いて、グリコシルヘスペレチンの雑味と着色(以下、「雑味・着色」と略記する場合がある。)、更には臭気を有意ないしは顕著に低減させるための処理を意味し、後述する還元剤を、(ア)ヘスペリジン及び澱粉部分分解物を含有する水溶液を調製する工程、(イ)得られた水溶液に糖転移酵素を作用させα−グルコシルヘスペリジンを含むグリコシルヘスペレチン含有組成物を生成させる工程、及び(ウ)生成したグリコシルヘスペレチン含有組成物を採取する工程の1又は2以上の工程で用いるか、前記(ア)乃至(ウ)の1又は2以上の工程の前の始発原料及び/又は前記工程後の結果物に、その所定量を添加することを意味する。
斯くして得られる酵素反応溶液は、これをそのまま、本発明で好適に用いられる改良グリコシルヘスペレチンとすることができる。しかし、通常、酵素反応溶液は、斯界において公知の分別方法、濾過方法、多孔性合成樹脂等を用いる精製方法、濃縮方法、噴霧方法、乾燥方法などの1種又は2種以上の手段を適宜組み合わせて、液状、固状、粉末状などの還元剤処理品とする。
(2)還元剤処理品の製造工程において、還元剤が、雑味の原因物質が生成するのを低減ないしは抑制するか、生成した雑味の原因物質をマスク、分解ないしは修飾し、雑味が有意に低減された改良グリコシルヘスペレチンが得られる。
(3)前記(1)及び(2)に示す雑味の原因物質が還元剤により修飾を受け、多孔性合成吸着剤などによる精製工程でグリコシルヘスペレチンと分離し易くなり、その結果、雑味が有意に低減された還元剤処理品が得られる。
HPLC装置:『LC−20AD』(株式会社島津製作所製)
デガッサー:『DGU−20A3』(株式会社島津製作所製)
カラム:『CAPCELL PAK C18 UG 120』
(株式会社資生堂製)
サンプル注入量:10μ1
溶離液:水/アセトニトリル/酢酸(80/20/0.01
(容積比))
流 速:0.7m1/分
温 度:40℃
検 出:UV検出器『SPD−20A』 (株式会社島津製作所製)
測定波長:280nm
データ処理装置:『クロマトパックC−R7A』 (株式会社島津製作
所製)
(2)α−グルコシルヘスペリジン含量:HPLCにて分析し、そのピーク面積と、所定濃度の標準物質の試薬ヘスペリジン(和光純薬工業株式会社販売)のピーク面積との比と、α−グリコシルヘスペリジンとヘスペリジンの分子量比に基づいて算出する。
(3)7−O−β−グルコシルヘスペレチン含量:HPLCにて分析し、そのピーク面積と、所定濃度の標準物質の試薬ヘスペリジン(和光純薬工業株式会社販売)のピーク面積との比と、7−O−β−グルコシルヘスペレチンとヘスペリジンの分子量比に基づいて算出する。
(4)その他のグリコシルヘスペレチン含量:HPLCにて分析し、そのピーク面積と、所定濃度の標準物質の試薬ヘスペリジン(和光純薬工業株式会社販売)のピーク面積との比と、その他のグリコシルヘスペレチンとヘスペリジンとの分子量比に基づいて算出する。
(1)概要
肌の深部にある真皮の蛋白質が過酸化物質などによって変性(カルボニル化)するとカルボニル化蛋白質が生じ、肌が黄色くくすんで見える、所謂、黄ぐすみが誘発されることが知られている。本実験おいては、後述するカルボニル化蛋白質モデルを用いて、黄ぐすみ低減作用を有する物質をスクリーニングした。
カルボニル化蛋白質モデルとして、ウシ血清アルブミン(以下、「BSA」と言う。)をカルボニル化したカルボニル化蛋白質(以下、「カルボニル化BSA」と言う。)を調製し、試験に用いた。
<カルボニル化BSAの調製>
カルボニル化誘発剤としての次亜塩素酸ナトリウムを100μM含むリン酸緩衝生理食塩水(以下、「PBS(−)」と言う。)に、BSAを最終濃度が40mg/mLとなるように溶解し、37℃で一夜保ち、肌の黄ぐすみの原因物質であるカルボニル化蛋白質モデルとしてのカルボニル化BSAを生成させ、残存する次亜塩素酸ナトリウムを限外濾過膜(商品名『アミコンウルトラ10K』、メルクミリポア株式会社)により除去し、カルボニル化BSAを得た。本実験においては、このカルボニル化BSAをカルボニル化蛋白質モデルとして用いた。
後述する実施例1で得た粉末状グリコシルヘスペレチン含有組成物(以下、単に「グリコシルヘスペレチン含有組成物」と言う。)、グリコシルナリンゲニン含有組成物(特許第3967563号の方法により調製したモノグルコシルナリンジン67.6%及びナリンジン22.4%を含む組成物)、L−アスコルビン酸2−グルコシド(商品名『AA2G』、株式会社林原販売)、ナイアシンアミド(純度98.0%以上、試薬特級、和光純薬工業株式会社販売)、及び還元型グルタチオン(純度99%以上、シグマアルドリッチ社製)を被験試料として用いた。
本発明者等は、カルボニル化蛋白質生成抑制物質をスクリーニングする手法として用いられている公知の抗カルボニル化試験法を応用し、前記表1に示す被験試料について、下記手順により、それら化合物のカルボニル化蛋白質低減作用について調べた。すなわち、前記(2)で調製したカルボニル化BSAを10mg/mL含有する溶液100μLと、黄ぐすみ低減作用を有する候補物質として、前記(3)に示す被験試料のいずれかを0.1w/v%含有するようにPBS(−)に溶解した(全量1ml)。前記(2)で調製したカルボニル化BSAと被験試料を1:1の質量比で含む溶液(以下、「カルボニル化蛋白質低減試験用被験溶液」と言う。)の全量を37℃で16時間保った後、前記限外濾過膜を用いて濾過し、残存する抗酸化物質を除去した。次いで、ウエスタンブロット解析に基づき、蛋白質の酸化レベルを解析できるキット(商品名『OxyBlotTM Protein Oxidation Detection Kit』、メルクミリポア株式会社製)を用いて、カルボニル化BSAの濃度をドットブロット法により測定した。なお、測定値(発光強度)は、アメリカ国立衛生研究所(NIH)で開発された画像処理ソフトである『Image J』にて解析した。一方、被験試料を用いない以外は前記同様にして処理して得られたカルボニル化BSA含有PBS(−)溶液(以下、「対照」と言う。)のカルボニル化BSAの濃度を前記同様にして測定し、これに対する各被験試料を共存させた場合の測定値の割合をそれぞれ求めた。結果は表1及び図1に示す。なお、被験物質無添加の対照のカルボニル化BSAの割合と比べ、カルボニル化BSAの割合が低いものほど、カルボニル化蛋白質低減作用が大であることを意味する。更に、表中の数値は、被験試料無添加の対照におけるカルボニル化BSAの測定値を1とし、これに対する各被験試料単独でのカルボニル化BSAの割合をそれぞれ示す。
前記(4)において、カルボニル化BSA低減作用が最も高かったグリコシルヘスペレチン含有組成物と、このグリコシルヘスペレチン含有組成物には及ばないものの、カルボニル化蛋白質低減作用を認めたグリコシルナリンゲニン含有組成物又はL−アスコルビン酸2−グルコシドとの併用試験を行った。すなわち、前記(4)で用いた、カルボニル化蛋白質低減試験用被験溶液に代えて、グリコシルヘスペレチン含有組成物の濃度が0.1、0.5、又は1.0w/v%、及びグリコシルナリンゲニン含有組成物又はL−アスコルビン酸2−グルコシドの濃度が0.1w/v%である、カルボニル化蛋白質低減試験用被験溶液を用いた以外は、前記(4)と同様にして試験した。結果は下記表2と表3、及び図2と図3にそれぞれ示す。なお、表中、「%」を付していない数字は、グリコシルヘスペレチン含有組成物及びグリコシルナリンゲニン含有組成物のいずれも無添加の対照におけるカルボニル化BSA(以下、「対照」と言う。)の測定値を1とし、これに対する、各被験試料を単用又は併用したときのカルボニル化BSAの割合をそれぞれ示す。
前記(5)において、グリコシルヘスペレチン含有組成物と、グリコシルナリンゲニン含有組成物又はL−アスコルビン酸2−グルコシドとを併用したとき、それらは共同的に作用して、カルボニル化蛋白質低減作用を示した。引き続き、本実験においては、グリコシルヘスペレチン含有組成物と併用したとき、そのカルボニル化蛋白質低減作用を高める化合物として、糖質に着目し、更に検索した。
本実験では、グリコシルヘスペレチン含有組成物と併用する化合物として、有機酸及びアミノ酸に着目し、試験を行った。表6に示す、乳酸、酒石酸、クエン酸、サリチル酸、フェルラ酸、グルクロン酸、グルクロノラクトン、酢酸、ソルビン酸、安息香酸、グリシン、及びグルタミン酸ナトリウムのいずれかを、前記(4)で用いたグリコシルナリンゲニン含有組成物又はL−アスコルビン酸2−グルコシドに代えて、0.05w/v%含有する溶液をカルボニル化蛋白質低減試験用被験溶液として用いた以外は前記(4)と同様にして、グリコシルヘスペレチン含有組成物と前記有機酸又は前記アミノ酸のいずれか1種とを併用したときのカルボニル化蛋白質低減作用について調べた。その結果を表7に示す。
(1)概要
実験1で行った生体外試験において、グリコシルヘスペレチン含有組成物には顕著なカルボニル化蛋白質低減作用を認めたことから、実際にグリコシルヘスペレチン含有組成物をヒトの肌に外用した場合、既に生成したカルボニル化蛋白質に及ぼす作用について調べた。
24乃至38歳の健常な11名(男性7名、女性4名)を被験者とし、各被験者の利き腕と反対の上腕内側の皮膚(3cm×3.5cm)3カ所を被験部位(以下、被験者の頭部側から順に被験部位A、B、及びC」と言う。)とし、各自、表8に示す配合組成からなる試験液(pH5.7)を綿棒にて1日2回[朝と晩(晩は入浴後に)]被験部位Bに7日間塗布させ、試験開始後8日目に被験試料を塗布した各被験部位に角層テープストリッピング用テープ(商品名『角層チェッカー AST−01』、有限会社アサヒバイオメッド販売)を貼付してテープストリッピングを行い、角層蛋白質(以下、「試験終了後の角層蛋白質」と言う。)を採取した。なお、対照として、表8に示す対照液(pH5.7)を被験部位Cに塗布した以外は前記同様にして行い、角層蛋白質(以下、「対照の角層蛋白質」と言う。)を採取した。また、被験部位Aについては、予め試験開始時に角層テープストリッピング用テープを用いテープストリッピングを行い、角層蛋白質(以下、「試験開始時の角層蛋白質」と言う。)を採取した。
カルボニル化蛋白質低減作用の評価は、各被験者毎に、試験液を塗布した被験部位Bの「試験終了後の角層蛋白質」及び被験部位Aの「試験開始時の角層蛋白質」中のカルボニル化蛋白質(肌の黄ぐすみの原因物質)につき、実験1の「(2)カルボニル化蛋白質低減試験(単用試験)」に示すカルボニル化BSA濃度の測定方法と同様にして定量した。また、対照として、対照液を塗布した被験部位Cについても前記同様にしてカルボニル化蛋白質を定量した(以下、「対照の角層蛋白質」と言う。)。
各被験者につき、試験液を塗布した被験部位におけるカルボニル化蛋白質(肌の黄ぐすみの原因物質)量について調べた結果を図4及び図5に示す。図4に示すとおり、対照液を塗布した被験者の場合、試験終了後の角層蛋白質中のカルボニル化蛋白質の量は、試験開始時と比べ増加しており、これは、本試験期間中においても、被験者の肌のカルボニル化蛋白質の量が増加したことを示している。これに対し、試験液を塗布した被験者の場合、試験終了後の角層蛋白質中のカルボニル化蛋白質の量は、試験開始時と比べ低減していた。また、図5から、対照液を塗布した被験者にあっては、試験開始時と比べ約1.1倍カルボニル化蛋白質の量が増加したのに対し、試験液を塗布した被験者の場合には、試験開始時と比べカルボニル化蛋白質の量が減少していたことから、試験液を塗布した被験者にあっては、カルボニル化蛋白質の量が顕著かつ有意に低減したことを意味する。すなわち、グリコシルヘスペレチン含有組成物を皮膚に塗布することにより、既に生成した肌のカルボニル化蛋白質を有意に低減できることが判明した。
(1)概要
実験2の「ヒト外用試験−その1」に引き続き、ヒトの目元の皮膚を被験部位とし、グリコシルヘスペレチンがヒトの皮膚の黄ぐすみに及ぼす影響について調べた。
(2)塗布試験
25乃至49歳の健常ではあるが、日常生活で精神的ストレスを感じている女性16名を被験者とし、無作為に8名ずつ2群(A群、B群と言う。)に分け、両群の各被験者に対し、左右いずれか同じ側の目元を被験部位とし、この被験部位に表9に示す配合組成からなる本発明の化粧水A(A群用)又は対照の化粧水B(B群用)を1日2回[朝と晩(晩に入浴する場合には、入浴後に化粧水A又はBを塗布)]被験部位に1回当たり3mLを手にとって塗布する処置(以下、「使用」と言う。)を計8週間に亘って連日実施するよう指示し、使用開始前、使用4週後、及び使用8週後に下記に示す皮膚色測定を行い、化粧水A及び化粧水Bが黄ぐすみに及ぼす影響を調べた。なお、本試験期間中、被験者全員に対し、(a)被験部位をこするなどの物理的刺激を避けること、(b)過度の日焼けを避けること、(c)過度の運動を避けること、(d)スキンケア剤として、化粧水A、B以外のものは使わないこと、及び(e)使用開始前、使用4週後、及び使用8週後に皮膚色測定を行う前夜には飲酒をしないことを厳守させた。
被験部位の皮膚色を色差計(商品名『コニカミノルタ分光測色計 CM−2600d』、コニカミノルタ社製)を用いて測定した。色差測定における解析対象は、L*a*b*表示系における「L*値」及び「b*値」とした。なお、L*値は明度を表し、b*値は肌の黄みの程度を表わす指標である。
表10に示すとおり、対照の化粧水Bを使用した被験者の目元の皮膚におけるL*値の平均値は、使用開始前が63.37であったものが、使用4週後には63.77、使用8週後の時点では63.70を示し、L*値に実質的な変化は認められなかった。これに対し、グリコシルヘスペレチンを含有する化粧水Aを使用した被験者の目元の皮膚におけるL*値の平均値は、使用開始前63.42であったものが、使用4週後の時点で64.31、使用8週後の時点で64.27を示し、使用開始前と比べ明らかに高いL*値を示した。また、表11に示すとおり、対照の化粧水Bを使用した被験者のL*値の変化量(ΔL*値)は、使用開始前の0を基準に、使用4週後、及び使用8週後の時点においてそれぞれ、0.40及び0.33であった。これに対し、本発明の化粧水Aを使用した被験者のΔL*値は、使用開始前の0を基準に、使用4週後、及び使用8週後の時点においてそれぞれ、0.90及び0.86であった。このように、前記化粧水Aを使用した被験者のΔL*値である0.90及び0.86のいずれも、対照の化粧水BのΔL*値である0.40及び0.33の約2倍以上もの高値を示した。ここで、L*値は肌の明るさの指標であることを勘案すると、本発明のグリコシルヘスペレチン含有組成物を含有する化粧水Aは、ヒトの肌の明るさを効果的に改善する作用を有することが判明した。
グリコシルヘスペレチンとして、後述する実施例2、4、5及び6の方法において、還元剤を用いない以外はそれら実施例に記載された方法と同様にして調製した4種類の粉末状グリコシルヘスペレチン(被験試料1乃至4)と、実施例2の方法において、還元剤としてピロ亜硫酸ナトリウムを0.1、0.09、0.07又は0.04%用いた以外は、実施例2の方法と同様にして調製した4種類の粉末状グリコシルヘスペレチン(被験試料5乃至8)を用いた。なお、被験試料1は、所定の還元剤を用いないで調製されたもので、α−グルコシルヘスペリジン、ヘスペリジン、及びその他の成分含量は実施例1で得た粉末状グリコシルヘスペレチンのそれとほぼ同等であり、実施例1で得た粉末状グリコシルヘスペレチンと同等品である。
被験試料1乃至8のそれぞれにつき、下記手順及び装置を用いてフルフラール含量を求めた。
(ア)50mL容共栓付三角フラスコに被験試料としてのグリコシルヘスペレチンを0.5g採取する。
(イ)次いで、脱イオン水を5.0mL加えグリコシルヘスペレチンを溶解し、サロゲート物質(分析に際し、被験試料の回収率を調べるための指標)として、濃度0.0025%のシクロヘキサノールを20μLを加える。
(ウ)更に、塩化ナトリウムを1.5g加え溶解し、ジエチルエーテルを3mL加え、700rpmで10分間攪拌する。
(エ)全量を分液漏斗に移し取り、10分間静置した後、ジエチルエーテル相を回収し、硫酸ナトリウムにて脱水後、窒素気流下、約200μLとなるまで濃縮する。
(オ)濃縮液1μLを採取し、GC/MS分析装置に供する。
(カ)対照として、グリコシルヘスペレチンに代えて試薬級フルフラールを用いた以外は被験試料と同様、(ア)乃至(オ)の処理を行う。
GC/MS分析装置:『Clarus 680 GC』及び『Claru s SQ8T』(いずれもパーキンエルマー社製)
カラム:VF−WAXms[30m(カラム長)×0.25mm(内径)、膜厚0.25μm](AGILENT J&W社製)
検出器:質量分析器
キャリアー:ヘリウムガス
線速度35cm/秒
昇温条件:40℃で3分間保持し、40℃〜80℃まで5℃/分の割合で昇温し、80℃〜200℃まで10℃/分の割合で昇温し、200℃で7分間保持し、200℃〜220℃まで10℃/分の割合で昇温し、更に、220℃で8分間保持する。
サロゲート物質:シクロヘキサノール
内部標準物質:ヘンエイコサン
抽出溶媒:ジエチルエーテル
GC/MS分析法で得られた、対照の試薬特級フルフラール(和光純薬工業株式会社製)についての測定データを元に検量曲線を作成し、これに基づいて、被験試料のフルフラール含量を求めた。
被験試料1乃至8のそれぞれにつき、下記試薬、手順、及び装置を用いて4−VA含量を測定した。なお、その測定は、平成18年7月28日付、食安基発第0728008号厚生労働省医薬食品局食品安全部基準審査課長通知『清涼飲料水中のベンゼンについて』に準じて行った。
(ア)塩化ナトリウム(水質試験用、和光純薬工業株式会社販売)
(イ)シクロヘキサノール標準原液の調製
シクロヘキサノール(試薬一級、片山化学工業株式会社販売)をメタノール(局方一般試験法用)に溶解して0.01質量%シクロヘキサノール溶液(以下、「シクロヘキサノール標準原液」と言う。)を調製した。
(ウ)内部標準液
前記シクロヘキサノール標準原液とメタノールを用いて、0.0004質量%シクロヘキサノール溶液(以下、「内部標準液1」と言う。)及び0.00004質量%シクロヘキサノール溶液(以下、「内部標準液2」と言う。)を調製した。
(エ)標準原液の調製
4−VA(和光純薬工業株式会社販売)をメタノールに溶解し、0.0005質量%4−VA溶液(以下、「標準液A」と言う。)及び0.00005質量%4−VA溶液(以下、「標準液B」と言う。)をそれぞれ調製した。
(オ)検量線作成用標準原液の調製
前記標準液A、B、前記内部標準液1、及びメタノールを用いて、4−VA濃度が0.05、0.1、0.2、0.5又は1.0μg/mLである5種類の検量線作成用混合標準原液を調製した。
(カ)検量線作成用標準液の調製
20mL容ヘッドスペースバイアル5本にそれぞれ超純水を10mL加え、更に前記5種類の検量線作成用混合標準原液のいずれかを10μL加え、更に塩化ナトリウム3.0gを添加し、直ちに密栓し、撹拌溶解し、5種類の検量線作成用標準液を調製した。
20mL容ヘッドスペースバイアル8本に被験試料1乃至8のいずれかを乾燥固形物換算で0.20g精秤し、これに超純水を加え全量を10.0gとし、撹拌溶解した。得られた水溶液に前記内部標準液2を10μL加え、更に塩化ナトリウムを3.0g添加し、直ちに密栓し、撹拌溶解し、被験試料1乃至8のいずれかを含む8種類の被験試料を調製した。
(ア)測定条件
<GC/MS分析条件>
・GC/MS分析装置:『Clarus SQ8TGC/MS』(パーキンエルマー社製)
・ヘッドスペースサンプラー:『TurboMatrix Trap 40』パーキンエルマー社製)
・カラム:VF-WAXms[カラム長30m×内径0.25mm、膜厚0.25μm)(AGILENT J&W社製)
・検出器:質量分析器
・キャリアー:ヘリウムガス
・線速度:35cm/秒
・カラム注入口温度:200℃
・昇温条件:40℃で3分間保持し、40℃〜80℃まで5℃/分の割合で昇温し、80℃〜200℃まで10℃/分の割合で昇温し、200℃で7分間保持し、200℃〜220℃まで10℃/分の割合で昇温し、更に、220℃で8分間保持する。
・バイアルオーブン温度:60℃
・ニードル温度:140℃
・トランスファーライン温度:205℃
・バイアル加熱時間:30分間
<検出法>
・イオン化[Electron Impact(EI)]法
・SIM選択イオン(Selected Ion Monitoring)
m/z 134, 119 (4−VA)
m/z 82, 57 [シクロヘキサノール(試薬一
級、片山化学工業株式会社販売)]
前記5種類の検量線作成用標準液と前記8種類の被験試料における4−VAと内部標準(シクロヘキサノール)のピーク高さ比と、別途作成しておいた4−VAの検量線とに基づき、前記被験試料における4−VA濃度を求め、それに基づいて被験試料1乃至8における4−VA含量を算出した。
被験試料1乃至8の水溶液それぞれにつき、色調を肉眼観察するとともに、下記手順により、着色度を求めた。すなわち、被験試料1乃至8のそれぞれにつき、1%水溶液とし、その40mLを密閉容器(50mL容)中で100℃で30分間加熱した後、27℃とし、幅1cmのセルに入れ、分光光度計(商品名『UV−2600』、株式会社島津製作所製)により、波長420nm(OD420nm)及び波長720nm(OD720nm)における吸光度を測定し、両波長における吸光度の差(OD420nm−OD720nm)を求め、その値を着色度とした。なお、吸光度差の数値が小さいほど、着色度が低いことを意味する。
次いで、これら被験試料1乃至8のそれぞれにつき、1w/v%水溶液となるように純水に溶解し、密閉容器中で100℃で30分間加熱した後、得られた被験試料1乃至8の水溶液をそれぞれ20℃に冷却し、20℃での電気伝導度を電気伝導度計(商品名『CM−50AT』、東亜ディーケーケー株式会社製)により測定した。
イオン性化合物を定量することは容易ではないので、簡便法として、下記手法により、陽イオン金属元素の含量を求めた。すなわち、被験試料1乃至8のそれぞれにつき、約0.5gを50mL容器(商品名『ファルコンチューブ』、日本ベクトンディッキンソン株式会社製)に精秤し、超純水20mLに加熱溶解し、これに精密分析用の60%硝酸水溶液を0.54mL添加し、70℃で14時間加熱し、室温まで冷却した後、超純水にて全量を50mLとし、下記分析装置と測定条件下で金属元素含量を求めた。なお、対照は超純水のみを用いた。
・誘導結合プラズマ発光分光分析装置:『CIROS−120』(Spectro社製)
・プラズマ電力:1,400W
・プラズマガス(Ar):13.0 L/分
・補助ガス(Ar):1.0 L/分
・ネブライザーガス(Ar):1.0 L/分
・ポンプ動作:1.0 mL/分
・金属元素含量(ppm)の算出方法:{(被験試料の測定値)−(対照の測定値)}×希釈倍率
グリコシルヘスペレチンの雑味及び着色と、フルフラール及び4−VAの含量との関係を調べる目的で下記の試験を行った。
後述する実施例5の方法及び実施例1の方法に準じて、還元剤処理品であるグリコシルヘスペレチン(以下、「試料A」と言う。)と、還元剤非処理品であるグリコシルヘスペレチン(以下、「試料B」と言う。)とをそれぞれ調製した。次いで、便宜上、試料A、Bを適宜割合で配合し、フルフラール含量が段階的に異なる、表16に示す3種類のグリコシルヘスペレチン試料(以下、「被験試料9乃至11」と言う。)を調製した。
実験4の「(1)フルフラールの含量」及び「(2)4−VAの含量」に示す測定方法にしたがって、被験試料9乃至11のフルフラール含量と4−VA含量とをそれぞれ測定した。
28乃至57歳の健常な男女9人(女性2人、男性7人)をパネルとし、被験試料9乃至11及び試料B(以下、「対照」と言う。)を用いて着色についての評価試験を行った。すなわち、被験試料9乃至11及び対照をそれぞれ蒸留水に1%水溶液となるように室温で溶解し、それらを各パネリストに肉眼観察させ、各パネリストが各被験試料につき、対照と比べ、「着色が低減されている」と評価した場合には「判定A1」、「着色が低減されていない」と評価した場合には「判定B1」と判定させ、その結果を表15に示した。
前記男女9人をパネルとし、被験試料9乃至11及び対照の雑味について官能試験を行った。すなわち、被験試料9乃至11及び対照をそれぞれ蒸留水に1%水溶液となるように室温で溶解し、それらを各パネリストに試飲させ、各パネリストが、各被験試料につき対照と比べ、「雑味が改善されている」と評価した場合には「判定A2」と判定させ、「雑味が改善されていない」と評価した場合には「判定B2」と判定させ、その結果を表15に示した。
(1)被験試料の調製
実験4で用いた還元剤処理品である被験試料5乃至8の内、フルフラール含量、着色度、電気伝導度、及び金属元素含量のそれぞれが中間に位置する値を示した被験試料6と、還元剤非処理品である被験試料1乃至4の内、フルフラール含量、着色度、電気伝導度、及び金属元素含量が最も低値を示した被験試料1を用いて、28乃至59歳の健常な男女8名(女性2名、男性6名)をパネルとする下記(2)に示す官能試験を行った。すなわち、還元剤非処理品(被験試料1)と還元剤処理品(被験試料6)をそれぞれ1w/v%水溶液となるように室温でRO水(逆浸透膜を通した水)に溶解し、非加熱被験試料1、6とし、これらを下記試験に供するまで密閉容器中にて保管した。また、非加熱被験試料1、6をそれぞれ、容器に入れ密閉し、沸騰水浴中で30分間加熱し、室温まで冷却したものを加熱被験試料1、6とした。
各パネリストに、室温に調整した、前記(1)で得た非加熱被験試料1、6(各10mL)及び加熱被験試料1、6(各10mL)について、試飲前に、(a)着色と(b)臭気とを各自に評価させた。その後、各パネリストには、各被験試料を試飲する前に白湯で口を漱がせた後、(c)苦味(渋み、えぐみ、収斂味を含む)、(d)後味、及び(e)試飲時の臭気について各自に評価させた。評価基準は下記表17に示すとおりである。なお、非加熱被験試料6に対しては、非加熱被験試料1を対照とし、加熱被験試料6に対しては、加熱被験試料1を対照とし、前記(a)乃至(e)の各評価項目につき、各パネリストに評価させた。結果はそれぞれ、表18及び表19に示す。
原料として、特開平11−346792号公報の実施例A−2に記載された方法と同様にして、ヘスペリジン1質量部に対しデキストリン(DE20)を7質量部用い、バチルス・ステアロサーモフィルス由来のシクロマルトデキストリン・グルカノトランスフェラーゼ(株式会社林原製)をデキストリングラム当り20単位加え、pH6.0、75℃に維持し、24時間反応させ、シラップ状グリコシルヘスペレチン含有組成物を得、これにグルコアミラーゼ(商品名『グルコチーム』、ナガセケムテックス株式会社製)をグリコシルヘスペレチン含有組成物固形物グラム当り100単位加え、50℃、5時間反応させた。次いで、得られたシラップ状グリコシルヘスペレチン含有組成物を減圧濃縮し、粉末化して、粉末状グリコシルヘスペレチン含有組成物を固形物当り、原料のヘスペリジン質量に対し約60%の収率で得た。本品は、α−グルコシルヘスペリジン77.0質量%、ヘスペリジン15.5質量%、その他の成分を7.5質量%含有していた。
1規定水酸化ナトリウム水溶液4質量部を80℃に加温し、この温度を維持しつつ、ヘスペリジン1質量部及びデキストリン(DE20)7質量部を加え、30分間撹拌しつつ溶解させ、pHを9.0とし、これにジオバチルス・ステアロサーモフィラス Tc−91株(独立行政法人産業技術総合研究所、特許生物寄託センター 受託番号FERM BP−11273、寄託日:1973年7月30日)由来のCGTaseをデキストリングラム当り30単位加え、pH6.9、50℃に維持しつつ18時間反応させ、ヘスペリジンの約70%をα−グリコシルヘスペリジンに変換させた。次いで、得られた酵素反応液
に対し、還元剤としてのピロ亜硫酸ナトリウムを0.05質量%添加し、100℃で30分間加熱するともに、残存する酵素を加熱失活させた後、グルコアミラーゼ(商品名『グルコチーム』、ナガセケムテックス株式会社製)を酵素反応液の固形分グラム当り100単位加え、pH5.0、55℃に維持しつつ5時間反応させ、α−グルコシルヘスペリジンを生成させた。得られた酵素反応液を加熱して残存する酵素を失活させ、濾過し、濾液を多孔性合成吸着剤、商品名『ダイヤイオンHP−10』(三菱化学株式会社販売)を充填したカラムに空間速度(SV)2で通液した。その結果、溶液中のα−グルコシルヘスペリジンと未反応ヘスペリジンとが多孔性合成吸着剤に吸着し、D−グルコース、塩類などは吸着することなく流出した。次いで、カラムに精製水を通液し、カラムを洗浄した後、エタノール水溶液濃度を段階的に高めながら更に通液し、α−グルコシルヘスペリジン含有画分を採取し、減圧濃縮し、粉末化して、淡黄色の粉末状グリコシルヘスペレチン含有組成物を固形物当り原料のヘスペリジン質量に対して約70%の収率で得た。なお、本例で得られた粉末状グリコシルヘスペレチン含有組成物は、α−グルコシルヘスペリジンを80.0質量%、ヘスペリジンを12.3質量%、その他の成分を7.7質量%含有していた。
1規定水酸化ナトリウム水溶液4質量部を80℃に加温し、この温度を維持しつつ、これにヘスペリジン1質量部、デキストリン(DE10)4質量部、及び亜硫酸ナトリウム0.06質量部を順次添加し、30分間撹拌しつつ溶解させ、0.01規定塩酸溶液にて中和した後、直ちにジオバチルス・ステアロサーモフィラス Tc−91株(独立行政法人産業技術総合研究所、特許生物寄託センター 受託番号FERM BP−11273)由来のCGTaseをデキストリングラム当り20単位加え、pH6.0、75℃に維持し、攪拌しつつ、24時間反応させた。得られた酵素反応液をサンプリングして、高速液体クロマトグラフィーで分析したところ、ヘスペリジンの約69%が、α−グリコシルヘスペリジンに変換していた。次いで、得られた酵素反応液に還元剤としてピロ亜硫酸ナトリウムを0.03%となるように添加し、90℃で120分間加熱した後、グルコアミラーゼ(商品名『グルコチーム』、ナガセケムテックス株式会社製)を当該中間生成物グラム当り50単位加え、pH5.0、55℃に維持しつつ10時間反応させ、α−グルコシルヘスペリジンを生成させた。得られた酵素反応液を加熱して残存する酵素を失活させ、濾過し、濾液を多孔性合成吸着剤、商品名『ダイヤイオンHP−10』(三菱化学株式会
社販売)を充填したカラムにSV2で通液した。その結果、溶液中のα−グルコシルヘスペリジンと未反応ヘスペリジンとが多孔性合成吸着剤に吸着し、糖類や塩類などは吸着することなく流出した。次いで、カラムに精製水を通液し、カラムを洗浄した後、エタノール水溶液濃度を段階的に高めながら更に通液し、α−グルコシルヘスペリジン含有画分を採取し、減圧濃縮し、粉末化して、淡黄色の粉末状グリコシルヘスペレチン含有組成物を固形物当り原料のヘスペリジン質量に対して約68%の収率で得た。なお、本例で得られた粉末状グリコシルヘスペレチン含有組成物は、α−グルコシルヘスペリジン79.0%、ヘスペリジン14.0%、その他の成分を7.0%含有していた。
1規定水酸化ナトリウム水溶液4質量部を80℃に加温し、この温度を維持しつつ、これに還元剤として亜硫酸ナトリウム0.1質量部、ヘスペリジン1質量部、及びデキストリン(DE10)4質量部を順次添加し、30分間撹拌しつつ溶解し、これに0.01規定塩酸溶液を加えて中和した後、直ちにジオバチルス・ステアロサーモフィラス Tc−91株(独立行政法人産業技術総合研究所、特許生物寄託センター 受託番号FERM BP−11273)由来のCGTaseをデキストリングラム当り20単位加え、pH6.0、75℃に維持し、攪拌しつつ、24時間反応させたところ、ヘスペリジンの約72%がα−グリコシルヘスペリジンに変換していた。得られた酵素反応液を加熱して残存する酵素を失活させ、濾過し、濾液を多孔性合成吸着剤、商品名『ダイヤイオンHP−20』(三菱化学株式会社販売)を充填したカラムにSV2で通液した。その結果、溶液中のα−グリコシルヘスペリジンと未反応ヘスペリジンとが多孔性合成吸着剤に吸着し、D−グルコース、塩類などは吸着することなく流出した。次いで、カラムに精製水を通液し、カラムを洗浄した後、エタノール水溶液濃度を段階的に高めながら更に通液し、α−グリコシルヘスペリジン含有画分を採取し、減圧濃縮し、粉末化して、淡黄色の粉末状α−グリコシルヘスペリジン含有組成物を、固形物当り、原料のヘスペリジン質量に対して約71%の収率で得た。なお、本例で得られた粉末状グリコシルヘスペレチン含有組成物は、α−グリコシルヘスペリジン76.0%、ヘスペリジン18.5%、その他の成分を5.5%含有していた。
ヘスペリジン1質量部、デキストリン(DE8)10質量部、及び還元剤としてピロ亜硫酸ナトリウム0.05質量部を水500質量部に添加し、pH9.5、90℃で70分間加熱し、次いで、ジオバチルス・ステアロサーモフィラス Tc−91株(独立行政法人産業技術総合研究所、特許生物寄託センター 受託番号FERM BP−11273)由来のCGTaseをデキストリングラム当り30単位加え、pH8.2、65℃に維持し、攪拌しつつ、40時間保持しつつ、この酵素反応が終了する直前に、ピロ亜硫酸ナトリウム0.05質量部を添加し、85℃で加熱し、酵素を失活させた後、これにグルコアミラーゼ(商品名『グルコチーム』、ナガセケムテックス株式会社製)を酵素反応液固形物グラム当り100単位加え、pH5.0、55℃に維持しつつ5時間反応させ、α−グルコシルヘスペリジンを生成させた。得られた酵素反応液を加熱して残存する酵素を失活させた。次いで、得られた酵素反応液に、α−L−ラムノシダーゼとしてヘスペリジナーゼ(商名『可溶性ヘスペリジナーゼ<タナベ>2号』、田辺製薬製)を0.5質量部を添加し、pH4に調整し、55℃で24時間反応させ、得られた酵素反応液にピロ亜硫酸ナトリウム0.01質量部を添加し、加熱して酵素を失活させた後、濾過し、濾液を多孔性合成吸着剤、商品名『ダイヤイオンHP−10』(三菱化学株式会社販売)を充填したカラムにSV2で通液した。その結果、溶液中のα−グルコシルヘスペリジン、7−O−β−グルコシルヘスペレチン、及び未反応ヘスペリジンとが多孔性合成吸着剤に吸着し、D−グルコース、塩類などは吸着することなく流出した。次いで、カラムに精製水を通液し、カラムを洗浄した後、エタノール水溶液濃度を段階的に高めながら更に通液し、α−グルコシルヘスペリジン画分を採取し、減圧濃縮し、粉末化して、淡黄色の粉末状グリコシルヘスペレチン含有組成物を固形物当り原料のヘスペリジン質量に対して約70%の収率で得た。なお、本例で得られた粉末状グリコシルヘスペレチン含有組成物は、α−グルコシルヘスペリジン81.9%、ヘスペリジン0.5%、7−O−β−グルコシルヘスペレチン8.9%、及びその他の成分を8.7%含有していた。
ヘスペリジン50質量部と次亜硫酸ナトリウム1質量部とを0.25規定水酸化ナトリウム水溶液0.9質量部に80℃で加熱溶解し、DE8のデキストリン150質量部を添加し溶解し、pH9.0に調整した後、ジオバチルス・ステアロサーモフィラス Tc−91株(独立行政法人産業技術総合研究所、特許生物寄託センター 受託番号FERM BP−11273)由来のCGTaseをデキストリン1質量部当たり15単位加え、60℃まで加温しながらpH8.3に調整し、6時間反応させた。その後、pH7.0に調整し、68℃に加温して40時間反応させた。酵素反応終了後、酵素を加熱失活させた後、濾過して酵素反応液を得た。酵素反応液を高速液体クロマトグラフィー(HPLC)により分析したところ、反応前の溶液中のヘスペリジンの72%がα−グルコシルヘスペリジンに変換しており、残り28%は未反応のままであった。酵素反応液に、α−L−ラムノシダーゼとしてヘスペリジナーゼ(商品名『可溶性ヘスペリジナーゼ<タナベ>2号』、田辺製薬製)を2質量部を添加し、pH4に調整し、55℃で24時間反応させた後、グルコアミラーゼ(商品名『グルコチーム』、ナガセケムテックス株式会社製)を1質量部加え、更に55℃で24時間反応させた。酵素反応終了後、得られた酵素反応液を加熱して酵素を加熱失活させ、中間極性多孔性吸着樹脂(商品名『アンバーライトXAD−7』、Rohm & Haas社製)を充填したカラムにかけ、カラムを水洗し、80v/v%エタノール水溶液にて樹脂吸着成分を溶出した。溶出液中のエタノールを除去した後、凍結乾燥し、α−グルコシルヘスペリジンを82.0%、7−O−β−グルコシルヘスペレチン8.0%、ヘスペリジンを1.0%、及びその他の成分を9.0%含む粉末状グリコシルヘスペレチン含有組成物を得た。
酵素反応液に対し、還元剤としてのメタ亜硫酸カリウムを0.001%添加した以外は実施例1と同様にして、淡黄色の粉末状グリコシルヘスペレチンを固形物当り原料のヘスペリジン質量に対して約69%の収率で得た。なお、本例で得られた粉末状グリコシルヘスペレチン含有組成物は、α−グルコシルヘスペリジン79.5%、ヘスペリジン13.8%、その他の成分を6.7%含有していた。
メタ亜硫酸カリウムを亜硫酸水素ナトリウムに代えた以外は実施例7と同様にして、淡黄色の粉末状グリコシルヘスペレチン含有組成物を、乾燥固形物当り、原料のヘスペリジン質量に対して約65%の収率で得た。なお、本例で得られた粉末状グリコシルヘスペレチン含有組成物は、α−グルコシルヘスペリジン77.2%、ヘスペリジン16.5%、その他の成分を6.3%含有していた。
実施例2乃至8で得た7種類の粉末状の黄ぐすみ低減用皮膚外用剤のいずれかを1質量部、アントシアニン0.001質量部、精製水30質量部、及び適量のpH調製剤を添加し撹拌し、pH7.0に調整し、精密濾過し、無菌容器に無菌的に充填して、7種類の本発明の液状の黄ぐすみ低減用皮膚外用剤を得た。
実施例2乃至8で得た粉末状グリコシルヘスペレチン含有組成物のいずれかを0.01質量部及びヘスペレチン0.0001質量部を精製水50質量部に均一に混合し、加熱滅菌し、無菌容器に充填して、7種類の液状の黄ぐすみ低減用皮膚外用剤を得た。
所定の還元剤を用いないで製造された、実施例1で得た粉末状グリコシルヘスペレチン含有組成物1質量部に対し、亜硫酸ナトリウム、次亜硫酸ナトリウム、ピロ亜硫酸カリウム、ピロ亜硫酸ナトリウム、及び二酸化イオウから選ばれる1種又は2種以上の還元剤を合計で0.0005質量部添加し、精製水50質量部に均一に溶解し、精密濾過し、無菌容器に充填し、複数種類の液状の黄ぐすみ低減用皮膚外用剤を得た。
粧原基又は粧配規を満たす以下の成分を、以下の配合にしたがって常法により混合し、8種類のスプレータイプの黄ぐすみ低減用皮膚外用剤を製造した。
・実施例1乃至8で得た粉末状グリコシルヘスペレチン含有組成物
のいずれか1種 0.1質量部
・ヒアルロン酸ナトリウム液(1%、粧配規) 15質量部
・トレハロース(粧配規) 0.5質量部
・L−シスチン(粧配規) 0.05質量部
・セージエキス(粧配規) 1.0質量部
・モモ葉エキス(粧配規) 0.5質量部
・ポリオキシエチレン(20)ポリオキシポリプロピレン(8)
セチルエーテル(粧配規) 0.3質量部
・精製水(粧配規) 残余
合計 100質量部
Claims (6)
- ヘスペレチン及び/又はグリコシルヘスペレチンと、マルトース、マルトテトラオース、グリコシルトレハロース、乳酸、フェルラ酸、グルクロン酸、グルクロノラクトン、酢酸、ソルビン酸、安息香酸、グリシン及びグルタミン酸ナトリウムから選ばれる1種又は2種以上を有効成分として含んでなる、既に生成した肌の黄ぐすみを低減するための皮膚外用剤。
- グリコシルヘスペレチンが、ヘスペリジン、α−グリコシルヘスペリジン、及び7−O−β−グルコシルヘスペレチンから選ばれる1種又は2種以上である請求項1記載の皮膚外用剤。
- 前記グリコシルヘスペレチンの乾燥固形物当たりのα−グリコシルヘスペリジンの含量が、50質量%以上100質量%未満である請求項2記載の皮膚外用剤。
- α−グリコシルヘスペリジンが、α−グルコシルヘスペリジンである請求項2又は3記載の皮膚外用剤。
- ヘスペレチン及び/又はグリコシルヘスペレチンを合計で0.0001質量%以上100質量%未満含んでなる、請求項1乃至4のいずれかに記載の皮膚外用剤。
- 軟膏、乳液、クリーム剤、粉剤、スプレー材、懸濁剤、ペースト状剤、ゼリー状剤、又は液剤の形態にある請求項1乃至5のいずれかに記載の皮膚外用剤。
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