JP6524222B2 - キレノール又はシーゲスベッキアハーブ抽出物を含む筋機能改善用又は運動能力増強用組成物 - Google Patents
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Description
本発明は、シーゲスベッキアハーブ抽出物又はその分画物、又は下記化学式1で表示される化合物の筋機能改善又は運動能力増強用途;シーゲスベッキアハーブ抽出物又はその分画物、又は下記化学式1で表示される化合物を含む筋機能改善用又は運動能力増強用組成物;又はシーゲスベッキアハーブ抽出物又はその分画物、又は下記化学式1で表示される化合物を個体に投与することを含む筋機能改善又は運動能力増強方法を提供する。
本明細書において、「筋機能改善用組成物」というのは、筋機能改善効果がある物質を有効成分として含む組成物であって、薬学組成物又は食品組成物を含む。
CASNo.:52659−56−0
[実施例1−1]シーゲスベッキア・グラブレセンスエタノール抽出物の製造
乾燥させたシーゲスベッキア・グラブレセンスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・グラブレセンス試料100gをエタノール1Lに入れ、50℃で60分間撹拌しながら抽出した。抽出した試料は、ワトマン(Whatman)2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を真空回転濃縮器で濃縮して溶媒成分を除去することによって、シーゲスベッキア・グラブレセンスエタノール抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・グラブレセンスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・グラブレセンス試料100gを水1Lに入れ、100℃で4時間撹拌しながら抽出した。抽出した試料は、ワトマン2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を真空回転濃縮器で濃縮して溶媒成分を除去することによって、シーゲスベッキア・グラブレセンス熱水抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・グラブレセンスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・グラブレセンス試料100gをヘキサン1Lに入れ、50℃で60分間撹拌しながら抽出した。抽出した試料は、ワトマン2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を真空回転濃縮器で濃縮して溶媒成分を除去することによって、シーゲスベッキア・グラブレセンスヘキサン抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・グラブレセンスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・グラブレセンス試料100gをエチルアセテート1Lに入れ、50℃で60分間撹拌しながら抽出した。抽出した試料は、ワトマン2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を真空回転濃縮器で濃縮して溶媒成分を除去することによって、シーゲスベッキア・グラブレセンスエチルアセテート抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・グラブレセンスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・グラブレセンス試料1gと18%エタノール76mLをポリエチレン(polyethylene)パックに入れ、密封した後、超高圧抽出装置(Frescal MFP−7000;Mitsubishi Heavy Industries、Tokyo、Japan)を利用して抽出した。超高圧抽出条件は、抽出圧力が320MPa、抽出時間が5minであった。抽出した試料は、ワトマン2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を真空回転濃縮器で濃縮して溶媒成分を除去することによって、シーゲスベッキア・グラブレセンス超高圧抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・グラブレセンスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・グラブレセンス試料1gを試料カートリッジに充填し、超臨界流体抽出装置(SFX 3560、Isco Inc.、Lincoln、NE、USA)を利用して抽出した。超臨界流体抽出条件は、抽出圧力が20MPa、抽出温度が60℃、超臨界二酸化炭素の流速が60mL/min、抽出時間が60minであった。超臨界流体抽出が完了すると、抽出装置の圧力を低めて、超臨界流体状態を解除し、シーゲスベッキア・グラブレセンス超臨界流体抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・グラブレセンスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・グラブレセンス試料1gを蒸留水10mLに入れ、亜臨界水抽出装置(DIONEX Accelerated Solvent Extractor 100、DIONEX co.、USA)を利用して抽出した。亜臨界水抽出条件は、抽出圧力0.5MPa、抽出温度240℃、抽出時間20分の条件の下で亜臨界水抽出を行った。抽出した試料は、ワトマン2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を−40℃で凍結乾燥し、シーゲスベッキア・グラブレセンス亜臨界水抽出物を得た。
[実施例2−1]シーゲスベッキア・プベスセンスエタノール抽出物の製造
乾燥させたシーゲスベッキア・プベスセンスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・グラブレセンス試料100gをエタノール1Lに入れ、50℃で60分間撹拌しながら抽出した。抽出した試料は、ワトマン(Whatman)2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を真空回転濃縮器で濃縮して溶媒成分を除去することによって、シーゲスベッキア・プベスセンスエタノール抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・プベスセンスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・プベスセンス試料100gを水1Lに入れ、100℃で4時間撹拌しながら抽出した。抽出した試料は、ワトマン2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を真空回転濃縮器で濃縮して溶媒成分を除去することによって、シーゲスベッキア・プベスセンス熱水抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・プベスセンスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・プベスセンス試料100gをヘキサン1Lに入れ、50℃で60分間撹拌しながら抽出した。抽出した試料は、ワトマン2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を真空回転濃縮器で濃縮して溶媒成分を除去することによって、シーゲスベッキア・プベスセンスヘキサン抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・プベスセンスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・プベスセンス試料100gをエチルアセテート1Lに入れ、50℃で60分間撹拌しながら抽出した。抽出した試料は、ワトマン2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を真空回転濃縮器で濃縮して溶媒成分を除去することによって、シーゲスベッキア・プベスセンスエチルアセテート抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・プベスセンスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・プベスセンス試料1gと18%エタノール76mLをポリエチレン(polyethylene)パックに入れ、密封した後、超高圧抽出装置(Frescal MFP−7000;Mitsubishi Heavy Industries、Tokyo、Japan)を利用して抽出した。超高圧抽出条件は、抽出圧力が320MPa、抽出時間が5minであった。抽出した試料は、ワトマン2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を真空回転濃縮器で濃縮して溶媒成分を除去することによって、シーゲスベッキア・プベスセンス超高圧抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・プベスセンスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・プベスセンス試料1gを試料カートリッジに充填し、超臨界流体抽出装置(SFX 3560、Isco Inc.、Lincoln、NE、USA)を利用して抽出した。超臨界流体抽出条件は、抽出圧力が50MPa、抽出温度が40℃、超臨界二酸化炭素の流速が60mL/min、抽出時間が60minであった。超臨界流体抽出が完了すると、抽出装置の圧力を低めて超臨界流体状態を解除し、シーゲスベッキア・プベスセンス超臨界流体抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・プベスセンスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・プベスセンス試料1gを蒸留水10mLに入れ、亜臨界水抽出装置(DIONEX Accelerated Solvent Extractor 100、DIONEX co.、USA)を利用して抽出した。亜臨界水抽出条件は、抽出圧力5MPa、抽出温度90℃、抽出時間15分の条件の下で亜臨界水抽出を行った。抽出した試料は、ワトマン2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を−40℃で凍結乾燥し、シーゲスベッキア・プベスセンス亜臨界水抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・オリエンタリスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・オリエンタリス試料100gをエタノール1Lに入れ、50℃で60分間撹拌しながら抽出した。抽出した試料はワトマン(Whatman)2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を真空回転濃縮器で濃縮して溶媒成分を除去することによって、シーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・オリエンタリスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・オリエンタリス試料100gを水1Lに入れ、100℃で4時間撹拌しながら抽出した。抽出した試料は、ワトマン2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を真空回転濃縮器で濃縮して溶媒成分を除去することによって、シーゲスベッキア・オリエンタリス熱水抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・オリエンタリスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・オリエンタリス試料100gをヘキサン1Lに入れ、50℃で60分間撹拌しながら抽出した。抽出した試料は、ワトマン2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を真空回転濃縮器で濃縮して溶媒成分を除去することによって、シーゲスベッキア・オリエンタリスヘキサン抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・オリエンタリスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・オリエンタリス試料100gをエチルアセテート1Lに入れ、50℃で60分間撹拌しながら抽出した。抽出した試料は、ワトマン2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を真空回転濃縮器で濃縮して溶媒成分を除去することによって、シーゲスベッキア・オリエンタリスエチルアセテート抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・オリエンタリスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・オリエンタリス試料1gと18%エタノール76mLをポリエチレン(polyethylene)パックに入れて密封した後、超高圧抽出装置(Frescal MFP−7000;Mitsubishi Heavy Industries、Tokyo、Japan)を利用して抽出した。超高圧抽出条件は、抽出圧力が320MPa、抽出時間が5minであった。抽出した試料は、ワトマン2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を真空回転濃縮器で濃縮して溶媒成分を除去することによって、シーゲスベッキア・オリエンタリス超高圧抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・オリエンタリスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・オリエンタリス試料1gを試料カートリッジに充填し、超臨界流体抽出装置(SFX 3560、Isco Inc.、Lincoln、NE、USA)を利用して抽出した。超臨界流体抽出条件は、抽出圧力が40MPa、抽出温度が50℃、超臨界二酸化炭素の流速が60mL/min、抽出時間が60minであった。超臨界流体抽出が完了すると、抽出装置の圧力を低めて超臨界流体状態を解除し、シーゲスベッキア・オリエンタリス超臨界流体抽出物を得た。
乾燥させたシーゲスベッキア・オリエンタリスの葉と幹をミキサーで粉砕した後、粉砕したシーゲスベッキア・オリエンタリス試料1gを蒸留水10mLに入れ、亜臨界水抽出装置(DIONEX Accelerated Solvent Extractor 100、DIONEX co.、USA)を利用して抽出した。亜臨界水抽出条件は、2.5MPa、抽出温度150℃、抽出時間15分の条件の下で亜臨界水抽出を行った。抽出した試料は、ワトマン2番濾過紙で濾過し、濾過した抽出液を−40℃で凍結乾燥し、シーゲスベッキア・オリエンタリス亜臨界水抽出物を得た。
[実施例4−1]キレノールの分離
前記実施例3−1で得た濃縮されたシーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物をシリカゲルが充填されたカラムに積載し、エチルアセテート、メタノールを10:0.5(v/v)の比率で混合した溶媒システムを利用して分取した。前記分取順序によって総7個の分画に分けて、それぞれの分画を濃縮乾燥した。7個の分画のうち6番分画(分画6)をRP−18逆相カラムクロマトグラフィー(Lichroprep RP−18 25〜40um、Merck&Co.、Whitehouse Station、NJ、USA)を利用して展開溶媒10%エチルアセテートで分取した。前記分取順序によって総2個の分画に分けてそれぞれの分画を濃縮乾燥した。前記2個の分画のうち2番分画(分画6−2)を濃縮乾燥し、さらにRP−18逆相カラムクロマトグラフィー利用して展開溶媒20%エチルアセテートで分取した。前記分取順序によって総3個の分画に分けて、それぞれの分画を濃縮乾燥した。最終的に3個の分画のうち2番分画(分画6−2−2)を濃縮乾燥させて純粋な単一活性物質を分離した。
前記実施例4−1で分離した単一活性物質の構造決定のために1H−NMRスペクトルと13C−NMRスペクトルをそれぞれ500MHzと125MHz(溶媒:MeOH)で測定した。收得された1H−NMRスペクトルと13C−NMRスペクトルの結果に基づいて1H1Hの相関関係と1H13Cの相関関係を測定するために、1H1H COSYスペクトルと1H13C HSQCスペクトルを測定し、炭素共鳴を通じて出る波長によりそれぞれの炭素信号を区別し、その結果を測定した。
[実施例5−1]キレノール又はこれを含有するシーゲスベッキア・グラブレセンスエタノール抽出物、シーゲスベッキア・プベスセンスエタノール抽出物、シーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物の筋機能改善効果
筋肉細胞であるL6ミオブラスト(myoblast;American Type Culture Collection、Manassas、VA、USA)を10%fetal bovine serum(FBS;Hyclone、Logan、UT、USA)と100U/mLペニシリン、100μg/mLストレプトマイシン(Gibco、Grand Island、NY、USA)が含有されたDulbecco’s modified Eagle’s media(DMEM;Hyclone)で培養した。L6細胞に前記実施例1−1で製造したシーゲスベッキア・グラブレセンスエタノール抽出物、実施例2−1で製造したシーゲスベッキア・プベスセンスエタノール抽出物、実施例3−1で製造したシーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物を10ppm濃度で処理した。また、L6細胞に前記実施例4で製造したキレノールを10μM濃度で処理した。この際、試料の代わりに、0.01%DMSOを処理した群を対照群とした。24時間経過後、L6細胞をプロテアーゼインヒビターカクテル(proteinase inhibitor cocktail;Sigma−Aldrich、St.Louis、MO、USA)が含まれたRIPA(ELPIS−Biotech、Daejeon、Korea)緩衝溶液で溶解させた。前記試料を5分間沸かした後、同量のタンパク質(20μg)を10%SDS−PAGEで電気泳動して分離した。電気泳動後、分離したタンパク質をニトロセルロース膜に伝達し、ウェスタンブロットを行った。1次抗体に反応させた後、Tris−buffered saline containing 0.1% Tween 20(TBST)を利用して10分間3回洗浄した。この際、本発明で使用された1次抗体の種類と希釈率は、1:1000である。2次抗体反応は、前記1次抗体反応を行った膜に2次抗体(anti−rabbit horseradish)を入れ、常温で2時間反応した。この際、2次抗体の希釈率は、1:5000にした。タンパク質バンドは、ECLウェスタンブロット検出試薬(western blotting detection reagents;Amersham、Tokyo、Japan)を使用して発色し、筋機能に関与する主要遺伝子p−mTORのタンパク質発現を確認し、α−チューブリン(α−tubulin)でタンパク質ローディング量が一定であることを示した。
前記実施例3−5で製造したシーゲスベッキア・オリエンタリス超高圧抽出物を10、20、40ppm濃度で前記実施例5−1と同一の方法で筋肉細胞に処理した。
前記実施例1−4で製造したシーゲスベッキア・グラブレセンスエチルアセテート抽出物、前記実施例2−4で製造したシーゲスベッキア・プベスセンスエチルアセテート抽出物、前記実施例3−4で製造したシーゲスベッキア・オリエンタリスエチルアセテート抽出物を10ppm濃度で前記実施例5−1と同一の方法で筋肉細胞に処理した。
前記実施例1−6と実施例1−7で製造したシーゲスベッキア・グラブレセンス超臨界及び亜臨界水抽出物、前記実施例2−6と実施例2−7で製造したシーゲスベッキア・プベスセンス超臨界及び亜臨界水抽出物、前記実施例3−6と実施例3−7で製造したシーゲスベッキア・オリエンタリス超臨界及び亜臨界水抽出物を20ppm濃度で前記実施例5−1と同一の方法で筋肉細胞に処理した。次に、実施例5−3と同一の方法で対照群タンパク質バンドのdensityを100%にして、試料を処理した実験群の相対的なタンパク質バンドのdensityを百分率(%)で示した。
前記実施例4−1で製造したシーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物のエチルアセテートとメタノールの10:0.5(v/v)混合溶媒に対する分画物6を20ppm濃度で前記実施例5−1と同一の方法で筋肉細胞に処理した。次に、実施例5−3と同一の方法で対照群タンパク質バンドのdensityを100%にして、試料を処理した実験群の相対的なタンパク質バンドのdensityを百分率(%)で示した。
[実施例6−1]筋肉分化及び同和作用増加効果
筋肉細胞であるL6ミオブラスト(American Type Culture Collection、Manassas、VA、USA)をDMEM(10%FBS、100U/mLペニシリン、100g/mLストレプトマイシン)で培養した。細胞密度が約80〜85%となったとき、細胞培地を2%のFBSを添加したDMEM成長培地に交替して、6日間分化した後、実験を進行した。分化したL6細胞に筋減少を誘導させるために、TNF−αを24時間処理した後、前記実施例3−1で製造したシーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物(10、40ppm)と前記実施例4で製造したキレノール(10、40μM)を処理した。筋肉分化調節因子であるミオゲニン(myogenin)とmyoDのmRNA発現量を調べるために、RT−PCRを行った。分化した細胞からTRIzol試薬(Invitrogen、Carlsbad、CA、USA)を使用して全体RNAを収穫して逆転写させた後、RT−PCR分析を次のように行った。まず、cDNA合成のために、前記RNAを逆転写酵素で逆転写させた。RT−PCRは、次の特定プライマーで行い、β−アクチン(β−actin)でmRNAローディング量が一定であることを示した。
配列番号1:5’−TGGGCTGCCACAAGCCAGAC−3’(Forward primer)
配列番号2:5’−CAGCCCAGCCACTGGCATCA−3’(Reverse primer)
MyoD:
配列番号3:5’−GGATGGTGCCCCTGGGTCCT−3’(Forward primer)
配列番号4:5’−TGGCCTTCGCTGTGAGTCGC−3’(Reverse primer)
β−アクチン:
配列番号5:5’−AGCCATGTACGTAGCCATCC−3’(Forward primer)
配列番号6:5’−CTCTCAGCTGTGGTGGTGAA−3’(Reverse primer)
前記実施例3−1と同一の方法で分化した細胞から全体RNAを収穫して逆転写させた後、RT−PCRを行った。この際、前記実施例3−1で製造したシーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物(10、40ppm)と前記実施例4で製造したキレノール(10、40μM)を処理した。RT−PCRは、次の特定プライマーで行った。
配列番号7:5’−CCCTGAGTGGCATCGCCCAA−3’(Forward primer)
配列番号8:5’−AGGTCCCGCCCATCGCTCA−3’(Reverse primer)
MuRF1:
配列番号9:5’−TCTACTCGGCCACAGGCGCT−3’(Forward primer)
配列番号10:5’−CTTGACAGCTCCCGCCGCAA−3’(Reverse primer)
[実施例7−1]実験動物食餌
4週齢のC57BL/6雄性マウスを1週間適応させ、食餌は、正常食餌(Research Diets D12450B、10% kcal from fat、New Brunswick、NJ、USA)を提供し、体重を基礎にして無作為的に群を配置し、それぞれ5匹ずつ総3群に分けて実験に利用した。実験群としては、前記実施例3−1で製造したシーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物を0.25%カルボキシメチルセルロース(carboxymetylcellulose)に懸濁し、シーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物250mg/day/kg体重の投与濃度で1日1回ずつ6週間一定の時間に経口投与し、対照群は、同一量の0.25%カルボキシメチルセルロースのみを経口投与した。試料を投与したマウスの食餌量と個体の重さを1週間ごとに測定した。
実施例7−1の正常食餌マウスから両ふくらはぎ筋肉(calf muscle)を摘出し、マイクロバランス(microbalance;Mettler PE160、USA)で重さを測定した。実験結果は、正常食餌群とシーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物投与群のt検定を実施し、その有意性を検証し、統計学的に有意な差異を示した(**p<0.01)。
実施例7−1の正常食餌マウスからマイクロPET/CT(positron emission tomography/computed tomography、INVEON、Siemens、USA)を利用して最終筋肉体積を測定した。
前記実施例7−1と実施例7−2と同一の方法で前記実施例1−2で製造したシーゲスベッキア・グラブレセンス熱水抽出物、前記実施例2−2で製造したシーゲスベッキア・プベスセンス熱水抽出物、前記実施例3−2で製造したシーゲスベッキア・オリエンタリス熱水抽出物に対する筋肉量の重さをそれぞれ測定した。
[実施例8−1]実験動物食餌
4週齢のC57BL/6雄性マウスを1週間適応させ、肥満を誘導するために、高脂肪食餌(Research Diets D12492、60% kcal from fat)を6週間供給して肥満を誘導させた後、それぞれ5匹ずつ総2群に任意的に分けて、前記実施例7−1と同一の方法で肥満動物モデルに経口投与した。
実施例8−1の高脂肪食餌マウスから両ふくらはぎ筋肉(calf muscle)を摘出し、前記実施例7−2と同一の方法で重さを測定した。実験結果は、高脂肪食餌群と高脂肪食餌シーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物投与群のt検定を実施し、その有意性を検証し、統計学的に有意な差異を示した(**<p0.01)。
これは、本発明のキレノール、これを含有するシーゲスベッキアハーブ抽出物又はその分画物が筋肉量の増大に効率的に作用することを意味する。
実施例8−1の高脂肪食餌マウスから前記実施例7−3と同一の方法で筋肉体積を測定した。
その結果、図10に示されたように、対照群と比べてシーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物を投与した群において筋肉の体積が6%増加した。
[実施例9−1]キレノール又はこれを含有するシーゲスベッキア・グラブレセンスエタノール抽出物、シーゲスベッキア・プベスセンスエタノール抽出物、シーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物の運動能力増強効果
筋肉細胞であるL6ミオブラスト(myoblast;American Type Culture Collection、Manassas、VA、USA)を10% fetalbovine serum(FBS;Hyclone、Logan、UT、USA)と100U/mLペニシリン、100μg/mLストレプトマイシン(Gibco、Grand Island、NY、USA)が含有されたDulbecco’s modified Eagle’s media(DMEM;Hyclone)で培養した。L6細胞に前記実施例1−1で製造したシーゲスベッキア・グラブレセンスエタノール抽出物、実施例2−1で製造したシーゲスベッキア・プベスセンスエタノール抽出物、実施例3−1で製造したシーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物を10ppm濃度で処理した。また、L6細胞に前記実施例4で製造したキレノールを10μM濃度で処理した。この際、試料の代わりに、0.01%DMSOを処理した群を対照群にした。24時間経過後、L6細胞をプロテアーゼインヒビターカクテル(proteinase inhibitor cocktail;Sigma−Aldrich、St.Louis、MO、USA)が含まれたRIPA(ELPIS−Biotech、Daejeon、Korea)緩衝溶液で溶解させた。前記試料を5分間沸かした後、同量のタンパク質(20μg)を10%SDS−PAGEで電気泳動して分離した。電気泳動後、分離したタンパク質をニトロセルロース膜に伝達し、ウェスタンブロットを行った。1次抗体に反応させた後、Tris−buffered saline containing 0.1% Tween 20(TBST)を利用して10分間3回洗浄した。この際、本発明で使用された1次抗体の種類と希釈率は、1:1000である。2次抗体反応は、前記1次抗体反応を行った膜に2次抗体(anti−rabbit horseradish)を入れ、常温で2時間反応した。この際、2次抗体の希釈率は、1:5000にした。タンパク質バンドは、ECLウェスタンブロット検出試薬(western blotting detection reagents;Amersham、Tokyo、Japan)を使用して発色し、運動能力に関与する主要遺伝子PGC−1αのタンパク質発現を確認し、α−チューブリン(α−tubulin)でタンパク質ローディング量が一定であることを示した。
前記実施例3−5で製造したシーゲスベッキア・オリエンタリス超高圧抽出物を10、20、40ppm濃度で前記実施例9−1と同一の方法で筋肉細胞に処理した。
前記実施例1−4で製造したシーゲスベッキア・グラブレセンスエチルアセテート抽出物、前記実施例2−4で製造したシーゲスベッキア・プベスセンスエチルアセテート抽出物、前記実施例3−4で製造したシーゲスベッキア・オリエンタリスエチルアセテート抽出物を10ppm濃度で前記実施例5−1と同一の方法で筋肉細胞に処理した。
前記実施例1−6と実施例1−7で製造したシーゲスベッキア・グラブレセンス超臨界及び亜臨界水抽出物、前記実施例2−6と実施例2−7で製造したシーゲスベッキア・プベスセンス超臨界及び亜臨界水抽出物、前記実施例3−6と実施例3−7で製造したシーゲスベッキア・オリエンタリス超臨界及び亜臨界水抽出物を20ppm濃度で前記実施例5−1と同一の方法で筋肉細胞に処理した。次に、実施例9−3と同一の方法で対照群タンパク質バンドのdensityを100%にして、試料を処理した実験群の相対的なタンパク質バンドのdensityを百分率(%)で示した。
前記実施例4−1で製造したシーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物のエチルアセテートとメタノールの10:0.5(v/v)混合溶媒に対する分画物6を20ppm濃度で前記実施例5−1と同一の方法で筋肉細胞に処理した。次に、実施例5−3と同一の方法で対照群タンパク質バンドのdensityを100%にして、試料を処理した実験群の相対的なタンパク質バンドのdensityを百分率(%)で示した。
[実施例10−1]実験動物食餌
4週齢のC57BL/6雄性マウスを1週間適応させ、食餌は、正常食餌(Research Diets D12450B、10% kcal from fat、New Brunswick、NJ、USA)を提供し、体重を基礎にして無作為的に群を配置し、それぞれ5匹ずつ総3群に分けて実験に利用した。実験群としては、前記実施例4で製造したキレノール、前記実施例3−1で製造したシーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物をそれぞれ0.25%カルボキシメチルセルロース(carboxymetylcellulose)に懸濁し、シーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物250mg/day/kg体重の投与濃度で1日1回ずつ6週間一定の時間に経口投与し、対照群は、同一量の0.25%カルボキシメチルセルロースのみを経口投与した。試料を投与したマウスの食餌量と個体の重さを1週間ごとに測定した。
6週間試料を投与した後、トレッドミル(treadmill)を利用して運動能力を評価した。運動能力の評価は、傾斜度5゜で25cm/秒の速度で20分、30cm/秒の速度で20分、33cm/秒の速度で20分、36cm/秒の速度で20分、36cm/秒の速度で15分、傾斜度10゜で38cm/秒の速度で15分、そして41cm/秒の速度でくたびれるまで走るように構成し、実験動物の最大運動能力を測定した。最大運動能力の決定時点は、運動実行開始後、実験動物がトレッドミル速度を10秒以上追い付かない現象が発生するか、電気衝撃の累積数が5分内に100回を超える時点として定義した。最大運動能力は、実験動物の運動距離(running distance)と運動時間(running time)で測定した。対照群とシーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物投与群のt検定を実施し、実験結果に対する有意性を検証し、統計学的に有意な差異を示した(**p<0.01)。
前記実施例10−1と実施例10−2と同一の方法で前記実施例1−2で製造したシーゲスベッキア・グラブレセンス熱水抽出物、前記実施例2−2で製造したシーゲスベッキア・プベスセンス熱水抽出物、前記実施例3−2で製造したシーゲスベッキア・オリエンタリス熱水抽出物に対する運動時間をそれぞれ測定した。
[実施例11−1]実験動物食餌
4週齢のC57BL/6雄性マウスを1週間適応させ、肥満を誘導するために、高脂肪食餌(Research Diets D12492、60% kcal from fat)を6週間供給して肥満を誘導させた後、それぞれ5匹ずつ総2群に任意的に分けて、前記実施例10−1と同一の方法で肥満動物モデルに経口投与した。
高脂肪食餌で誘導された肥満動物モデルを利用して前記実施例10−2と同一の方法で運動能力を評価した。実験結果は、高脂肪食餌対照群と高脂肪食餌シーゲスベッキア・オリエンタリスエタノール抽出物投与群のt検定を実施し、その有意性を検証し、統計学的に有意な差異を示した(**p<0.01)。
実施例10−1の正常食餌マウスと実施例11−1の高脂肪食餌マウスからふくらはぎ筋肉(calf muscle)を摘出した後、ウェスタンブロット(western blot)を通じてp−AMPK、SIRT1、PGC−1α、PPARδのタンパク質発現を確認し、α−チューブリンでタンパク質ローディング量が一定であることを示した。
実施例10−1の正常食餌マウスと実施例11−1の高脂肪食餌マウスからふくらはぎ筋肉(calf muscle)を摘出した後、RT−PCRを通じてPGC−1α、NRF−1、ERRα、TfamのmRNA発現を確認した。ふくらはぎ筋肉からTRIzol試薬(Invitrogen、Carlsbad、CA、USA)を使用して全体RNAを収穫して逆転写させた後、RT−PCR分析を次のように行った。まず、cDNA合成のために前記RNAを逆転写酵素で逆転写させた。RT−PCRは、次の特定プライマーで行った:
配列番号11:5’−ATGTGTCGCCTTCTTGCTCT−3’(Forward primer)
配列番号12:5’−ATCTACTGCCTGGGGACCTT−3’(Reverse primer)
ERRα:
配列番号13:5’−GCTGGTGGTTGAACCTGAGA−3’(Forward primer)
配列番号14:5’−GGGCTAACACCCTATGCCAG−3’(Reverse primer)
NRF−1:
配列番号15:5’−TGGACCCAAGCATTACGGAC−3’(Forward primer)
配列番号16:5’−GGTCATTTCACCGCCCTGTA−3’(Reverse primer)
Tfam:
配列番号17:5’−TCGCCTGTCAGCCTTATCTG−3’(Forward primer)
配列番号18:5’−CCGGGCTTCCTTCTCTAAC−3’(Reverse primer)
β−アクチン:
配列番号19:5’−TAACCAACTGGGACGATATG−3’(Forward primer)
配列番号20:5’−ATACAGGGACAGCACAGCCT−3’(Reverse primer)
[製造例1−1]健康食品の製造
前記実施例1〜3のシーゲスベッキアハーブ抽出物又はキレノール1000mg、ビタミンAアセテート70ug、ビタミンE1.0mg、ビタミンB10.13mg、ビタミンB20.15mg、ビタミンB60.5mg、ビタミンB120.2ug、ビタミンC10mg、ビオチン10ug、ニコチン酸アミド1.7mg、葉酸50ug、パントテン酸カルシウム0.5mg、硫酸第1鉄1.75mg、酸化亜鉛0.82mg、炭酸マグネシウム25.3mg、第1リン酸カリウム15mg、第2リン酸カルシウム55mg、クエン酸カリウム90mg、炭酸カルシウム100mg、塩化マグネシウム24.8mgを混合して製造でき、その配合比を任意に変形実施してもよく、通常の健康食品の製造方法によって前記の成分を混合した後、顆粒を製造し、通常の方法によって健康食品組成物の製造に使用できる。
前記実施例1〜3のシーゲスベッキアハーブ抽出物又はキレノール1000mg、クエン酸1000mg、オリゴ糖100g、梅濃縮液2g、タウリン1gに合計900mlになるよう精製水を添加し、通常の健康飲料の製造方法によって前記の成分を混合した後、約1時間85℃で撹拌加熱した後、作られた溶液を濾過して滅菌された2L容器に取得し、密封滅菌した後、冷蔵保管した後、健康飲料組成物の製造に使用できる。
ガムベース20重量%、砂糖76.9重量%、香料1重量%及び水2重量%と前記実施例1〜3のシーゲスベッキアハーブ抽出物又はキレノール0.1重量%を配合し、通常の方法でチューインガムを製造した。
砂糖60重量%、水飴39.8重量%及び香料0.1重量%と前記実施例1〜3のシーゲスベッキアハーブ抽出物又はキレノール0.1重量%を配合し、通常の方法でキャンディーを製造した。
薄力1級25.59重量%、中力1級22.22重量%、精白糖4.80重量%、食塩0.73重量%、ブドウ糖0.78重量%、パームショートニング11.78重量%、アンモニウム1.54重量%、重曹0.17重量%、重亜硫酸ナトリウム0.16重量%、米粉1.45重量%、ビタミンB0.0001重量%、ミルクヒャング0.04重量%、水20.6998重量%、全脂粉乳1.16重量%、代用粉乳0.29重量%、第1リン酸カルシウム0.03重量%、散布塩0.29重量%及び噴霧油7.27重量%と前記実施例1〜3のシーゲスベッキアハーブ抽出物又はキレノール重量%を配合し、通常の方法でビスケットを製造した。
[製造例2−1]散剤
前記実施例1〜3のシーゲスベッキアハーブ抽出物又はキレノール50mg、結晶セルロース2gを混合した後、通常の散剤の製造方法によって気密布に充填し、散剤を製造した。
前記実施例1〜3のシーゲスベッキアハーブ抽出物又はキレノール50mg、結晶セルロース400mg、ステアリン酸マグネシウム5mgを混合した後、通常の錠剤の製造方法によって打錠し、錠剤を製造した。
前記実施例1〜3のシーゲスベッキアハーブ抽出物又はキレノール30mg、乳清タンパク質100mg、結晶セルロース400mg、ステアリン酸マグネシウム6mgを混合した後、通常のカプセル剤の製造方法によってゼラチンカプセルに充填し、カプセル剤を製造した。
通常の注射剤の製造方法によって活性成分を注射用蒸留水に溶解し、pHを約7.5に調節した後、前記実施例3−5のキレノール100mg、注射用蒸留水、pH調節剤を混合し、2ml容量のアンプルに充填し、滅菌させて、注射剤を製造した。
Claims (4)
- シーゲスベッキアハーブ(Siegesbeckia herba)抽出物又はその分画物を有効成分として含む運動能力増強用薬学組成物。
- シーゲスベッキアハーブ抽出物は、シーゲスベッキア・グラブレセンス、シーゲスベッキア・プベスセンス及びシーゲスベッキア・オリエンタリスよりなる群から選択される一つ以上の抽出物である、請求項1に記載の運動能力増強用薬学組成物。
- シーゲスベッキアハーブ(Siegesbeckia herba)抽出物又はその分画物を有効成分として含む運動能力増強用食品組成物。
- シーゲスベッキアハーブ抽出物は、シーゲスベッキア・グラブレセンス、シーゲスベッキア・プベスセンス及びシーゲスベッキア・オリエンタリスよりなる群から選択される一つ以上の抽出物である、請求項3に記載の運動能力増強用食品組成物。
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