JP6095368B2 - 機能改変するNav1.7抗体 - Google Patents
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Description
ドメインBにおいて、膜貫通タンパク質S1、S2、S3、S4、S5、及びS6は、それぞれ、アミノ酸739〜763、775〜798、807〜826、833〜852、869〜889、及び943〜968に割り当てられる;
ドメインCにおいて、膜貫通タンパク質S1、S2、S3、S4、S5、及びS6は、それぞれ、アミノ酸1188〜1211、1225〜1250、1257〜1278、1283〜1304、1324〜1351、及び1431〜1457に割り当てられる;
ドメインDにおいて、膜貫通タンパク質S1、S2、S3、S4、S5、及びS6は、それぞれ、アミノ酸1511〜1534、1546〜1569、1576〜1599、1610〜1631、1647〜1669、及び1736〜1760に割り当てられる。
公開データベースで入手可能である、その配列のいくつかの天然のバリエーションがあり、例えば、UniProtKB/Swiss−Prot Q15858を参照されたい。
「ヒトTRPV1の前ポア領域・・に対して産生されたウサギ、マウス、又は完全ヒトのモノクローナル抗体のいずれも、チャネル活性化を遮断するのに効果的ではなかったので、この領域における小さいエピトープに対する高親和性結合作用物質を通してチャネル立体構造をロックすることは不可能であると我々は仮定する(Since no rabbit, mouse or fully human monoclonal antibodies generated against the prepore region of human TRPV1 ..were effective in blocking channel activation we hypothesise that it may not be possible to lock the channel conformation through high-affinity binders to small epitopes in this region)。」
配列番号4 CDR−H1、
配列番号5 CDR−H2及び
配列番号6 CDR−H3、
又は
配列番号10 CDR−H1、
配列番号11 CDR−H2及び
配列番号12 CDR−H3、
又は
配列番号16 CDR−H1、
配列番号17 CDR−H2及び
配列番号18 CDR−H3、
又は、
配列番号22 CDR−H1、
配列番号23 CDR−H2及び
配列番号24 CDR−H3、
又は
配列番号28 CDR−H1、
配列番号29 CDR−H2及び
配列番号30 CDR−H3、
又は
配列番号34 CDR−H1、
配列番号35 CDR−H2及び
配列番号36 CDR−H3、
又は
配列番号40 CDR−H1、
配列番号41 CDR−H2及び
配列番号42 CDR−H3、
又は
配列番号46 CDR−H1、
配列番号47 CDR−H2及び
配列番号48 CDR−H3、
又は
配列番号52 CDR−H1、
配列番号53 CDR−H2及び
配列番号54 CDR−H3、
又は
配列番号58 CDR−H1、
配列番号59 CDR−H2及び
配列番号60 CDR−H3、
又は
配列番号64 CDR−H1、
配列番号65 CDR−H2及び
配列番号66 CDR−H3、
又は
配列番号70 CDR−H1、
配列番号71 CDR−H2及び
配列番号72 CDR−H3、
又は
配列番号76 CDR−H1、
配列番号77 CDR−H2及び
配列番号78 CDR−H3、
又は
配列番号82 CDR−H1、
配列番号83 CDR−H2及び
配列番号84 CDR−H3、
又は
配列番号88 CDR−H1、
配列番号89 CDR−H2及び
配列番号90 CDR−H3、
又は
配列番号94 CDR−H1、
配列番号95 CDR−H2及び
配列番号96 CDR−H3、
又は
配列番号100 CDR−H1、
配列番号101 CDR−H2及び
配列番号102 CDR−H3、
又は
配列番号106 CDR−H1、
配列番号107 CDR−H2及び
配列番号108 CDR−H3、
又は
配列番号112 CDR−H1、
配列番号113 CDR−H2及び
配列番号114 CDR−H3、
又は
配列番号118 CDR−H1、
配列番号119 CDR−H2及び
配列番号120 CDR−H3
又はそれと少なくとも90%、95%、又は98%など、少なくとも60%、70%、80%の同一性又は類似性を有する配列を含む。
−フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファン(芳香族側鎖を有するアミノ酸);
−リシン、アルギニン、及びヒスチジン(塩基性側鎖を有するアミノ酸);
−アスパルテート及びグルタメート(酸性側鎖を有するアミノ酸)
−アスパラギン及びグルタミン(アミド側鎖を有するアミノ酸);並びに
−システイン及びメチオニン(イオウ含有側鎖を有するアミノ酸)。
同一性及び類似性の程度は、容易に計算することができる(Computational Molecular Biology、Lesk,A.M.編、Oxford University Press、New York、1988;Biocomputing.Informatics and Genome Projects、Smith,D.W.編、Academic Press、New York、1993;Computer Analysis of Sequence Data、Part 1、Griffin,A.M.及びGriffin,H.G.編、Humana Press、New Jersey、1994;Sequence Analysis in Molecular Biology、von Heinje、G.、Academic Press、1987;並びにSequence Analysis Primer、Gribskov,M.及びDevereux,J.編、M Stockton Press、New York、1991)。
配列番号1 CDR−L1、
配列番号2 CDR−L2及び
配列番号3 CDR−L3、
又は
配列番号7 CDR−L1、
配列番号8 CDR−L2及び
配列番号9 CDR−L3、
又は
配列番号13 CDR−L1、
配列番号14 CDR−L2及び
配列番号15 CDR−L3、
又は、
配列番号19 CDR−L1、
配列番号20 CDR−L2及び
配列番号21 CDR−L3、
又は
配列番号25 CDR−L1、
配列番号26 CDR−L2及び
配列番号27 CDR−L3、
又は
配列番号31 CDR−L1、
配列番号32 CDR−L2及び
配列番号33 CDR−L3、
又は
配列番号37 CDR−L1、
配列番号38 CDR−L2及び
配列番号39 CDR−L3、
又は
配列番号43 CDR−L1、
配列番号44 CDR−L2及び
配列番号45 CDR−L3、
又は
配列番号49 CDR−L1、
配列番号50 CDR−L2及び
配列番号51 CDR−L3、
又は
配列番号55 CDR−L1、
配列番号56 CDR−L2及び
配列番号57 CDR−L3、
又は
配列番号61 CDR−L1、
配列番号62 CDR−L2及び
配列番号63 CDR−L3、
又は
配列番号67 CDR−L1、
配列番号68 CDR−L2及び
配列番号69 CDR−L3、
又は
配列番号73 CDR−L1、
配列番号74 CDR−L2及び
配列番号75 CDR−L3、
又は
配列番号79 CDR−L1、
配列番号80 CDR−L2及び
配列番号81 CDR−L3、
又は
配列番号85 CDR−L1、
配列番号86 CDR−L2及び
配列番号87 CDR−L3、
又は
配列番号91 CDR−L1、
配列番号92 CDR−L2及び
配列番号93 CDR−L3、
又は
配列番号97 CDR−L1、
配列番号98 CDR−L2及び
配列番号99 CDR−L3、
又は
配列番号103 CDR−L1、
配列番号104 CDR−L2及び
配列番号105 CDR−L3、
又は
配列番号109 CDR−L1、
配列番号110 CDR−L2及び
配列番号111 CDR−L3、
又は
配列番号115 CDR−L1、
配列番号116 CDR−L2及び
配列番号117 CDR−L3
それと少なくとも90%、95%、又は98%など、少なくとも60%、70%、80%の同一性又は類似性を有する配列を含む。
抗体983は、配列番号148に示された重鎖可変領域アミノ酸配列、及び配列番号147に示された軽鎖可変領域アミノ酸配列を含む。
抗体1080は、配列番号176に示された重鎖可変領域アミノ酸配列、及び配列番号175に示された軽鎖可変領域アミノ酸配列を含む。
一実施形態において、抗体932の重鎖可変領域は、配列番号138に示されたDNA配列によってコードされ、軽鎖可変領域は、配列番号137に示されたDNA配列によってコードされる。
一実施形態において、抗体983の重鎖可変領域は、配列番号146に示されたDNA配列によってコードされ、軽鎖可変領域は、配列番号145に示されたDNA配列によってコードされる。
一実施形態において、抗体1080の重鎖可変領域は、配列番号176に示されたDNA配列によってコードされ、軽鎖可変領域は、配列番号175に示されたDNA配列によってコードされる。
また、本発明のCDRグラフト化抗体において、フレームワーク領域は、アクセプター抗体の配列と同じ配列を厳密に有する必要はない。例えば、通常の残基が、そのアクセプター鎖のクラス又は型についてより高い頻度で存在する残基へ変更されてもよい。或いは、アクセプターフレームワーク領域における選択された残基が、それらがドナー抗体において同じ位置に見出される残基に対応するように、変更されてもよい(Reichmannら、1998、Nature、332、323〜324参照)。そのような変化は、ドナー抗体の親和性を回復するための必要最低限に抑えられるべきである。変更される必要があり得る、アクセプターフレームワーク領域における残基を選択するためのプロトコールはWO91/09967に示されている。
一例において、本発明に用いる抗体は、サメなどの軟骨魚由来であってもよい。軟骨魚(サメ、ガンギエイ、エイ、及びキメラ)は、IgNARとして知られた異型免疫グロブリンアイソタイプを有する。IgNARは、軽鎖と会合していないH鎖ホモ二量体である。各H鎖は、1つの可変ドメイン及び5つの定常ドメインを有する。IgNAR Vドメイン(又はV−NARドメイン)は、2つの密接に関係したサブタイプ、I及びIIへの分類を可能にするいくつかの非カノニカルシステインを有する。タイプII V領域は、CDR1及びCDR3に追加のシステインを有し、そのシステインは、ラクダ科の動物のVHHドメインに観察されるものと類似した、ドメイン拘束ジスルフィド結合を形成すると提唱されている。その上、CDR3は、ラクダ科の動物のVHHと類似して、より伸長した立体構造をとり、抗体フレームワークから突出しているであろう。実際、上記のVHHドメインのように、特定のIgNAR CDR3残基もまた、ニワトリ卵白リゾチーム活性部位において結合する能力があることが実証されている(Stanfieldら、2004、Science、305、1770〜1773)。
VHHドメイン及びIgNAR Vドメインを作製する方法の例は、例えば、Lauwereysら、1998、EMBO J.1998、17(13)、3512〜20;Liuら、2007、BMC Biotechnol.、7、78;Saerensら、2004、J.Biol.Chem.、279(5)、51965〜72に記載されている。
の
、それぞれからなる。一実施形態において、本開示による抗体又は断片は機能的ヒンジを含む。
一実施形態において、抗体又は断片はアプタマーにコンジュゲートされている。アプタマーは、二次構造及び三次構造をとり、且つ結合して、タンパク質活性を調節することができる一本鎖オリゴヌクレオチド配列である。そのような構造の抗体へのコンジュゲーションにより、イオンチャネルの標的特異的調節がもたらされる(直接的効果)。
式中、nは0又は1である;
mは0又は1である;
pは0又は1である;
YはCH、N、又はNOである;
Xは酸素又はイオウである;
Wは酸素、H2、又はF2である;
AはN又はC(R2)である;
GはN又はC(R3)である;
DはN又はC(R4)である;
ただし、A、G、及びDのうちの1個以下が窒素であるが、Y、A、G、及びDのうちの少なくとも1つが窒素又はNOである;
R1が水素又はC1〜C4アルキルである;
R2、R3、及びR4が、非依存的に、水素、ハロゲン、C1〜C4アルキル、C2〜C4アルケニル、C2〜C4アルキニル、アリール、ヘテロアリール、OH、OC1〜C4アルキル、CO2R1、−CN、−NO2、−NR5R6、−CF3、−OSO2CF3であり、又はR2とR3、若しくはR3とR4がそれぞれ一緒になって、0個から2個の間の窒素原子を含み、且つ以下の置換基のうちの1〜2つで置換された、AとG、又はGとDをそれぞれ共有する別の6員芳香環又はヘテロ芳香環を形成し得る:非依存的に、水素、ハロゲン、C1〜C4アルキル、C2〜C4アルケニル、C2〜C4アルキニル、アリール、ヘテロアリール、OH、OC1〜C4アルキル、CO2R1、−CN、−NO2、−NR5R6、−CF3、−OSO2CF3;
R5及びR6は、非依存的に、水素、C1〜C4アルキル、C(O)R7、C(O)NHR8、C(O)OR9、SO2R10であり、又は一緒になって、(CH2)jQ(CH2)kであり得る(式中、QはO、S、NR11、又は結合である;jは2〜7である;kは0〜2である;R7、R8、R9、R10、及びR11は非依存的に、C1〜C4アルキル、アリール、若しくはヘテロアリール、又はそれらの鏡像異性体であり、それらの薬学的に許容される塩はニコチン性アセチルコリン受容体の強力なリガンドである)。
EP0996622を参照されたい。
図(15a).Merckによって特許取得された、芳香環及びヘテロ芳香環の組み合わせをもつ化合物
図(16).Atkinsonによって特許取得された、ビアリールカルボキサミド化合物
図(17).Ehringによって特許取得された、芳香環及びヘテロ芳香環の組み合わせをもつ化合物
図(18b).Vertexによって特許取得された、組み合わされた芳香環及びヘテロ芳香環を有する化合物
図(19).Ionixによって特許取得された、組み合わされた芳香環及びヘテロ芳香環を有する化合物
電位開口型ナトリウムチャネルの化学調節剤を記載する他の参考文献:Angerら(2001)J.Med.Chem.44(2):115; Hoytら(2007)、Bioorg.Med.Chem.Lett.17:6172;Yangら(2004)、J.Med.Chem.47:1547;Benesら(1999)J.Med.Chem.42:2582
米国特許第7456187号は、以下の式の特定のカリウムチャネル阻害剤を開示する:
式中、R1は、アリール、ヘテロアリール、シクロアルキル、又はアルキルである;
R2は、H、アルキル、ニトロ、−CO2R7、CONR4R5、又はハロである;
R3はH、NR4R5、NC(O)R8、ハロ、トリフルオロメチル、アルキル、ニトリル、又はアルコキシである;
R4及びR5は、同じでも異なっていてもよく、H、アルキル、アリール、ヘテロアリール、若しくはシクロアルキルであってもよい;又はR4及びR5は一緒になって、飽和、非飽和、若しくは部分的飽和の4〜7員環を形成してもよく、ただし、前記環は任意で、N、O、若しくはSから選択された1つ若しくは複数のさらなるヘテロ原子を含んでもよい;
Xは、O、S、又はNR6である;
R6は、H又はアルキルである;
R7は、水素、メチル、又はエチルである;
R8は、メチル又はエチルである;
Lは、(CH2)n(式中、nは1、2、又は3である)である;及び
Yは、アリール、複素環基、アルキル、アルケニル、若しくはシクロアルキル、又はその薬学的に許容される塩である。
より具体的には:
273〜308、314〜322、326〜336、764〜777、1215〜1227、1354〜1388、1391〜1397、1406〜1413、1416〜1426、1533〜1548、1598〜1604、1670〜1679、及び/又は1708〜1730。
したがって、これらの領域のうちの1つ又は複数の中に含まれる適切なペプチドが設計され得る。一例において、本発明に用いるペプチドは、ヒトタンパク質SCN9A(アクセッション番号Q15858)としてSwiss Protデータベースに寄託されたNav1.7配列の273〜308、314〜322、326〜336、764〜777、1215〜1227、1354〜1388、1391〜1397、1406〜1413、1416〜1426、1533〜1548、1598〜1604、1670〜1679、及び/又は1708〜1730からなる群から選択される配列からなる。一例において、ペプチドは、ヒトタンパク質SCN9A(アクセッション番号Q15858)としてSwiss Protデータベースに寄託されたNav1.7配列の273〜308、314〜322、326〜336、764〜777、1215〜1227、1354〜1388、1391〜1397、1406〜1413、1416〜1426、1533〜1548、1598〜1604、1670〜1679、及び/又は1708〜1730からなる群から選択される配列内の配列からなる。
・KLH−マレイミド
・オボアルブミン−マレイミド、又は
・BSA−マレイミド
又は
である。したがって、配列番号207〜221から選択されるアミノ酸配列を有するペプチドのいずれも、上記で列挙された担体タンパク質のそれぞれとコンジュゲートすることができる。
本開示はまた、本明細書の方法を用いて取得可能な、又は取得された抗体又は適切な抗体断片まで及ぶ。
本発明の薬学的組成物は、いくつの経路によって投与されてもよく、その経路には、経口、静脈内、筋肉内、動脈内、髄内、髄腔内、脳室内、経真皮(transdermal)、経皮(transcutaneous)(例えば、WO98/20734参照)、皮下、腹腔内、鼻腔内、腸内、局所、舌下、腟内、又は直腸内の経路が挙げられるが、それらに限定されない。皮下噴射器もまた、本発明の薬学的組成物を投与するのに用いてもよい。典型的には、治療組成物を、溶液か又は懸濁液かのいずれかの注射剤として調製してもよい。注射前の液体媒体における溶液又は懸濁液に適した固形にもまた調製してもよい。
本開示の抗体及び断片は、疼痛、例えば、有痛性糖尿病性神経障害(PDN)、帯状疱疹後神経障害(PHN)、又は三叉神経痛(TN)を含む神経因性疼痛を処置するのに適し得る。神経因性疼痛の他の原因には、脊髄損傷、多発性硬化症、幻肢痛、脳卒中後痛、及びHIV関連痛が挙げられる。慢性背痛、変形性関節症、及び癌などの状態もまた、神経障害関連性疼痛の発生を生じる場合があり、したがって、本開示による抗体又は断片での処置に適している可能性がある。
ペプチドは、Peptide Protein Research Ltd.、Fareham、U.K.によって供給され、線状ペプチドを、Atherton及びSheppard(1989) Solid Phase peptide synthesis:a practical approach Oxford、England:IRL Pressの方法によるFmoc固相ペプチド化学によって合成した。N末端からC末端への環状ペプチドについては、コンピュータ支援薬物設計、方法、及び適用、T.J.Perun及びC.L.Probst編、461〜484ページ、Marcel Dekker、New−York;Toniolo C.、1990、Int.J.Pept.Protein Res.、35、287〜300;Gurrath M.ら、1992、Eur.J.Biochem.、210、911〜921;Izumiya N.ら、1981、Biopolymers、20、1785〜1791;Brady S.F.ら、1983、Peptides,Structure and Function、Proceedings of the Eighth American Peptide Symposium、V.J.Hruby及びD.H.Rick編、127〜130ページ、Pierce Chemical Company、Rockford、Illinois;He J.X.ら、1994、Lett.Peptide Sci.、1、25〜30において、Barlosら、Int.J.Pept.Protein Res.1991の方法により側鎖保護ペプチドとして合成し、環化を液相中で実施し、続いて、Kessler Hら、1989の方法により側鎖を脱保護した。
溶液及び抗体操作
細胞外溶液は以下を含んだ(mM):130 NaCl、4 KCl、1.5 CaCl2、1 MgCl2、30 グルコース、10 HEPES(Tris−BaseでpH7.4、及び300〜305mモル浸透圧)。細胞内溶液は以下を含み(mM):5 NaCl、115 CsF、20 CsCl、110 HEPES、10 EGTA遊離酸(CsOHでpH7.2、及び290〜295mモル浸透圧)、それを新鮮な状態にするか、又は凍結させるかのいずれかにした。細胞外溶液及び細胞内溶液を使用前に濾過した。抗体を、96ウェルポリプロピレン化合物プレート(Sarsted、#83.1835.500)への移動前に、細胞外溶液中に直接、希釈し、新鮮な状態で(15分以内で)調製した。選択的ペプチドを用いる実験について、等濃度での抗体及びペプチドを、パッチクランプ実験の前に4℃で少なくとも30分間、プレインキュベートした。
ヒトNav1.7チャネル(IX型電位開口型ナトリウムチャネルαサブユニット)を安定に発現するHEK293細胞を、Upstate(Upstate、Millipore、カタログ#CYL3011)から購入した。10%FBS(Lonza、#DE14−802F)、1%ペニシリン+ストレプトマイシン(Lonza、DE17−603E)、1%非必須アミノ酸(Lonza、BE13−114E)、及び400μg/ml G418(GIBCO、#10131−027)を含む、グルタミン含有標準培地DMEM−F12を用いて、コラーゲンI型でコーティングされたT−75(BD BioCoat(商標)Collagen I Cellware、Becton Dickinson Labware、Bedford、MA、#356485)フラスコ内で細胞を培養した。細胞を、15,000細胞/cm2の密度又は8,000細胞/cm2の密度でそれぞれ、PatchXpress(登録商標)7000A(Axon instrument、MDS Analytical Technologiesの新しい一員)で用いる前に2日間又は3日間、プレーティングした。細胞コンフルエンスは90%を超えることはなかった。実験の当日、細胞を、Accumax(Sigma、A7089)を用いて収集した。簡単に述べれば、細胞を、カルシウム及びマグネシウムを含まないPBS(Lonza、#BE12−516F)中で2回、洗浄し、1:4の希釈のAccumax溶液を加え、37℃で1.5〜2分間、インキュベートした。10%FBSを含む、15mM HEPES及びL−グルタミン含有DMEM−F12(Lonza、#BE12−719F)(回復培地)を加えて、Accumax消化を終息させた。続いて、細胞を、50mlのファルコンチューブ内で1,000rpmで5分間、遠心分離し、ペレットを10mlの回復培地中に再懸濁する。細胞を数え(CoulterZ2)、約10万細胞/mlで懸濁し、室温で最低90分間、15mlのスクリューキャップ式チューブへ移した。その後、細胞を1,000rpmで60秒間、遠心分離した。ペレットを1,000μlの細胞外溶液中に穏やかに再懸濁し、1,000rmpで30秒間、2度目の遠心分離を行った。ペレットを150μLの細胞外溶液中に再懸濁し、すぐに、PatchXpress(登録商標)で試験した。
AVIVA Biosciences SealChip16(商標)電極アレイ(Axon Instruments、Union City、CAから購入)を、PatchXpress(登録商標)システムのホルダー内に手で置き、細胞のアプライについては、自動調製された。細胞内溶液を各チャンバーの下部へ注入し、細胞外溶液を、16個のノズルの洗浄装置を通してチャンバーの上部へ灌流した。この時間中、穴に細胞片がない状態を保つために、圧力制御装置で、細胞内側からの陽圧(+10mmHg)を維持した。細胞は、各ウェルに(10K〜30K細胞を含む)4μlが加えられる前に、統合Cavroピペッティングロボットによって粉砕された。
10秒後、圧力を+4mmHgから−30mmHgへ切り換え、16個の穴(電極)のそれぞれに懸濁細胞を引き寄せた。ギガオームシールが得られ、且つ20秒間、検証されるまで、36秒ごとに1.6mmHg/秒の速度で−1mmHgから−35mmHgへの陰圧ランプを繰り返すことによってシール形成が達成された。−80mVのピペット電位で7.5mmHg/秒の速度での−40mmHgから−150mmHgへの陰圧のランプ増加を用いて穴を覆う膜のパッチを破ることによってホールセルアクセスが達成された。ホールセル記録後、細胞を、細胞外溶液で66秒間、洗浄して、ウェルにおける過剰な細胞を除去した。細胞を5分間、透析させておき、その間、アクセス抵抗をモニターした。ホールセル試運転時点から実験の終了まで、電位プロトコール間、細胞を−80mVで保持した。10秒間隔で20ミリ秒間、−80mVから0mVへの脱分極ステップによって誘発されるナトリウム電流への抗体効力を評価するために時間経過プロトコールを適用した。各試行が始まる前にホールセル補償が自動的になされ、電気的アクセス抵抗(Ra)が65%、補正された。−80mVを保持しながら、P/Nリーク減算プロトコール(N=4)を用いて線形リーク減算をオンラインで実施した。
以下の場合には、細胞を分析しなかった:
(1)膜抵抗が最初、200Mオーム未満であった、
(2)電流振幅<200pA、
(3)アクセス抵抗が20Mオーム以下、及び
(4)陰性対照添加後、実質的な安定化電流がない。
電流振幅を、DataXpress2ソフトウェア(Axon instruments)を用いて測定し、ランダウン電流補正を、線形又は指数フィッティング法により、洗浄時間後の最後の10〜15個のデータ点、及び陰性対照添加後の最後の10〜15個のデータ点に関連した測定に実施した。
抗体添加の前の平均電流補正振幅により電流を標準化した。18分間の抗体アプライ後の残留応答によって電流阻害を推定した。データは下記の表3に示されている。
図1は、特定のペプチドの存在下又は非存在下における、HEK細胞に発現したヒトNav1.7電流への選択された抗体(25μg/ml)の機能的効果を示す。Nav1.7電流は、反復刺激プロトコールを用いる自動パッチクランプにより記録され、データは、最後の刺激後の標準化Nav1.7電流として提示される。選択された抗体を、特定のペプチド(25μg/ml)の存在下、4℃で30分間、インキュベートし、その後、Nav1.7電流記録のためにPatchXpressシステムへ移した。ペプチドの存在は、系統的に、抗体の阻害効果を逆転させ、したがって、Nav1.7電流の阻害が、抗体のNav1.7細胞外ループとの特異的な相互作用によって媒介されることを示している。
HEK細胞に発現した組換えヒトNav1.7チャネルの自動パッチクランプ分析。983モノクローナル抗体は、Nav1.7電流の用量依存性阻害を生じる。データ点は、抗体の存在下における反復電位ステッププロトコールの適用後の標準化ピーク電流振幅(エンドポイント)を表す。
HEK細胞に発現した組換えヒトNav1.7チャネルの自動パッチクランプ分析。1080モノクローナル抗体は、Nav1.7電流の用量依存性阻害を生じる。データ点は、抗体の存在下における反復電位ステッププロトコールの適用後の標準化ピーク電流振幅(エンドポイント)を表す。
HEK細胞に発現した組換えラットNav1.7チャネルの自動パッチクランプ分析。983モノクローナル抗体は、Nav1.7電流の用量依存性阻害を生じる。1080モノクローナル抗体は、25μg/mlにおいてNav1.7電流の約26%阻害を生じる。データ点は、抗体の存在下における反復電位ステッププロトコールの適用後の標準化ピーク電流振幅(エンドポイント)を表す。
983モノクローナル抗体によるヒトNav1.7阻害の動態。組換えヒトNav1.7チャネルを発現するHEK細胞を、電位ステッププロトコールを用いて0.1Hzで約20分間、刺激する。データ点は、10秒ごとに記録されたNav1.7チャネルの標準化ピーク電流振幅(ランダウン補正済み)を表す。Nav1.7電流は、抗体(25μg/ml)の存在下で低下するが、0.1Hzでのチャネルの反復活性化が維持される場合だけである。プロトコールの終了時点(及び抗体のインキュベーション後)でのみのNav1.7チャネルの刺激は、Nav1.7電流の阻害を生じない。データは、983モノクローナル抗体による特異的阻害が、Nav1.7チャネルタンパク質の反復活性化(チャネルサイクリング)を必要とすることを示唆している。
初代培養調製
生後1日から3日の間の1〜2匹の野生型ラットの子から後根神経節を単離した。神経節を、切開後、PBS中で洗浄し、すぐに、2mg/mlのコラゲナーゼ(Sigma−Aldrich、#C2674)を含むDMEM(Lonza、#BE12−604F)溶液中へ置き、酵素消化のために37℃で約45分間、インキュベートした。コラゲナーゼ溶液を除去し、10%ウシ胎児血清(Lonza、#DE14802F)、0.5mMのL−グルタミン(Lonza、#BE17−605E)、1%のペニシリン/ストレプトマイシン(Lonza、#BE17−603E)、及び20ng/mlの神経成長因子(NGF、Invitrogen)を追加したDMEMと交換した。その後、神経節を機械的に粉砕し、1000gで5分間、遠心分離し、同じ培地中に再懸濁した。分離された細胞を数え、50μg/mlのポリ−D−リシン(Sigma)及び30μg/mlのラミニン(Invitrogen)でプレコーティングされたカバーガラス上で100,000〜120,000細胞/mlの懸濁液まで希釈し、使える状態になるまで、37℃、5%CO2で、インキュベートした。
調製から2日間以内のインビトロでの培養(DIV)後、分離したDRGを、使用のために採取した。Ikegami ICD−42B CCDカメラを有するOlympus BX50WI正立顕微鏡で細胞を可視化した。5khzデジタルサンプリングを用いて、電気生理学的記録が得られ、Axopatch 1D(Molecular Devices)増幅器において3dB、3khz周波数でフィルターにかけられ、Digidata 1322Aアナログ−デジタルコンバータ(Molecular Devices)を用いてデジタル信号へ変換された。pClamp 10ソフトウェア(Molecular Devices)を用いて、全ての記録が得られ、続いて、Clampfit 10(Molecular Devices)において解析された。Sutter p−97水平ピペットプーラーでホウケイ酸ガラスピペットから記録電極を引き抜いて、4.5〜6MΩの最終抵抗にし、以下を含む(mM)内部溶液で満たした:140K−メタンスルホネート、5 NaCl、1 CaCl2、2 MgCl2、11 EGTA、10 HEPES、2 Mg−ATP、及び1 Li−GTP;pHをTris−baseで7.2に調整し、重量オスモル濃度をスクロースで310mOsmに調整した。バス溶液は以下を含んだ(mM):130 NaCl、25 グルコース、10 HEPES、4 KCl、2 CaCl2、1 MgCl2、1.25 NaPO4;pHをNaOHで7.35に調整し、重量オスモル濃度をスクロースで310mOsmに調整した。液間電位は、14.2mVであると計算され、全ての報告された電位は、補償するように補正されている。
各脱分極ステップについて活動電位(AP)を手作業で数え、誘発APの総数を各時点について合計した。Microsoft Excel 2003において、各時点におけるAPの数を、時間=0における誘発APの数に対して標準化し、Graphpad Prism 5.0ソフトウェアを用いて時間の関数としてプロットした。それぞれのプロットされたデータ点は、特定化された実験条件下での全ての記録された細胞の平均値を表し、誤差バーは計算された標準誤差を表す。
図3A:処理前(時間=0)及び処理後(時間=30分目)の代表的なDRGニューロンからの誘発活動電位の電流クランプトレース。
図3B:抗体932(25μg/ml)は、時間=2分目での抗体投与後、媒体又は対照抗体で処理された対照と比較して、誘発活動電位の数を有意に低下させた。
図3C:抗体983(25μg/ml)は、時間=2分目での抗体投与後、媒体又は対照抗体で処理された対照と比較して、誘発活動電位の数を有意に低下させた。
図3E:培養ラット後根神経節(DRG)ニューロンにおける活動電位誘起に関する電気生理学(電流クランプ記録)研究。25μg/mlの用量での1080モノクローナル抗体は、DRGニューロンの電気的に誘導されるスパイク頻度を低下させる。データ点は、抗体適用前の時間0において観察された最初の頻度と比較した、標準化スパイク頻度を表す。
抗体932を、3匹の雄スプラーグドーリーラットに、10mg/kgでの単回の皮下投与として、与えた。投与後1時間目、3時間目、8時間目、24時間目、48時間目、72時間目、103時間目、及び168時間目において、軽い麻酔下で尾側面から血液試料を採取した。血清を分離し、分析するまで−20℃で保存した。血清試料を、抗体(932)のレベルを定量するために、ELISA(酵素結合免疫吸着アッセイ)によって分析した。ELISAにおいて、マイクロタイタープレートを、AffiniPure F(ab’)2断片ヤギ抗ウサギIgGでコーティングした。試料をインキュベートし、その後、ペルオキシダーゼコンジュゲート型AffiniPure F(ab’)2断片ヤギ抗ウサギIgGを用いて明らかにした。TMBペルオキシダーゼ基質系を用いて試料を発色させ、450nmにおける吸光度を標準曲線と比較した。必要に応じて、標準曲線についての範囲へと試料を希釈した。その後、平均濃度時間プロファイルを±SEM(n=3)でプロットした。
図3D:単回の10mg/kgの皮下投与後の雄スプラーグドーリーラットにおける抗体932についての血清中濃度−時間のプロファイル。
Nunc96ウェルプレートを、カーボネートコーティング緩衝液中5ug/mlストレプトアビジン(Jackson 016−000−114)の100ul/ウェルにおいて4℃で一晩、コーティングした。プレートを、PBS/ツイーン中で4回、洗浄し、室温で1時間、200ul/ウェルのブロッキング溶液(PBS中1%BSA)を加えた。プレートを、PBS/ツイーン中で4回、洗浄し、室温で1時間、100ul/ウェルの5ug/mlビオチン化ペプチドを加えた。プレートを、PBS/ツイーン中で4回、洗浄し、室温で1時間、100ul/ウェルの抗体を加えた(プレートに沿って、10ug/mlから始まり、ブロッキング溶液中3.16倍系列で希釈していく)。プレートを、PBS/ツイーン中で4回、洗浄し、室温で1時間、100ul/mlのヤギ抗ウサギFc HRP(Jackson 111−036−046)を加えた。プレートを、PBS/ツイーン中で4回、洗浄し、100ul/ウェルのTMB(3,3’,5,5’−テトラメチルベンジジン)溶液を加えた。50ul/ウェルのNaFを加えて、反応を停止させ、吸光度を630nmで読み取った。
図3Kは、抗体1080の表4の様々な環状Navイオンチャネルペプチドへの結合についてのELISAデータを示す。
両方の場合における特異的結合は、B11.7ペプチドについてのみ観察され、その他のNavイオンチャネル由来の等価のループへの結合は観察されなかった。
Claims (20)
- 重鎖可変ドメイン及び軽鎖可変ドメインを有し、
Nav1.7イオンチャネルに結合後、その活性を機能的に改変し、
Nav1.7イオンチャネルのドメインA又はCのE3細胞外領域に結合し、かつ
配列番号208及び215からなる群から選択されるNav1.7ペプチドに結合する、
抗Nav1.7抗体又はその抗原結合断片。 - 完全ヒト、又はヒト化抗体である、請求項1に記載の抗Nav1.7抗体又はその抗原結合断片。
- インビトロパッチクランプアッセイにおいてNav1.7の機能を少なくとも5パーセント阻害する、請求項1又は2に記載の抗Nav1.7抗体又はその抗原結合断片。
- 請求項1〜3のいずれか一項に記載の、ヒトNav1.7に特異性を有する抗体又はその抗原結合断片であって;
軽鎖可変ドメインがCDR−L1として配列番号1、CDR−L2として配列番号2、CDR−L3として配列番号3の配列を有するCDRを含み、
重鎖可変ドメインがCDR−H1として配列番号4、CDR−H2として配列番号5、CDR−H3として配列番号6を有するCDRの配列を含む;
抗体又はその抗原結合断片。 - 請求項1〜3のいずれか一項に記載の、ヒトNav1.7に特異性を有する抗体又はその抗原結合断片であって;
軽鎖可変ドメインがCDR−L1として配列番号7、CDR−L2として配列番号8、CDR−L3として配列番号9の配列を有するCDRを含み、
重鎖可変ドメインがCDR−H1として配列番号10、CDR−H2として配列番号11、CDR−H3として配列番号12を有するCDRの配列を含む;
抗体又はその抗原結合断片。 - 請求項1〜3のいずれか一項に記載の、ヒトNav1.7に特異性を有する抗体又はその抗原結合断片であって;
軽鎖可変ドメインがCDR−L1として配列番号19、CDR−L2として配列番号20、CDR−L3として配列番号21の配列を有するCDRを含み、
重鎖可変ドメインがCDR−H1として配列番号22、CDR−H2として配列番号23、CDR−H3として配列番号24を有するCDRの配列を含む;
抗体又はその抗原結合断片。 - 請求項1〜3のいずれか一項に記載の、ヒトNav1.7に特異性を有する抗体又はその抗原結合断片であって;
軽鎖可変ドメインがCDR−L1として配列番号25、CDR−L2として配列番号26、CDR−L3として配列番号27の配列を有するCDRを含み、
重鎖可変ドメインがCDR−H1として配列番号28、CDR−H2として配列番号29、CDR−H3として配列番号30を有するCDRの配列を含む;
抗体又はその抗原結合断片。 - 請求項1〜3のいずれか一項に記載の、ヒトNav1.7に特異性を有する抗体又はその抗原結合断片であって;
軽鎖可変ドメインがCDR−L1として配列番号31、CDR−L2として配列番号32、CDR−L3として配列番号33の配列を有するCDRを含み、
重鎖可変ドメインがCDR−H1として配列番号34、CDR−H2として配列番号35、CDR−H3として配列番号36を有するCDRの配列を含む;
抗体又はその抗原結合断片。 - 請求項1〜3のいずれか一項に記載の、ヒトNav1.7に特異性を有する抗体又はその抗原結合断片であって;
軽鎖可変ドメインがCDR−L1として配列番号61、CDR−L2として配列番号62、CDR−L3として配列番号63の配列を有するCDRを含み、
重鎖可変ドメインがCDR−H1として配列番号64、CDR−H2として配列番号65、CDR−H3として配列番号66を有するCDRの配列を含む;
抗体又はその抗原結合断片。 - 請求項1〜3のいずれか一項に記載の、ヒトNav1.7に特異性を有する抗体又はその抗原結合断片であって;
軽鎖可変ドメインがCDR−L1として配列番号67、CDR−L2として配列番号68、CDR−L3として配列番号69の配列を有するCDRを含み、
重鎖可変ドメインがCDR−H1として配列番号70、CDR−H2として配列番号71、CDR−H3として配列番号72を有するCDRの配列を含む;
抗体又はその抗原結合断片。 - 完全長の重鎖及び軽鎖を有する完全抗体分子;又は
Fab、修飾Fab’、Fab’、F(ab’)2、Fv、Fab−Fv、若しくはscFv断片から選択されるその結合断片である、
請求項1から10までのいずれか一項に記載の抗体又はその抗原結合断片。 - 多特異性である、請求項11に記載の抗体又はその抗原結合断片。
- 請求項1から12までのいずれか一項に記載の抗体又はその抗原結合断片の重鎖(単数又は複数)及び/又は軽鎖(単数又は複数)をコードする単離されたDNA。
- 請求項13に記載の1つ又は複数のDNAの配列を含むクローニングベクター又は発現ベクター。
- 請求項14に記載の1つ又は複数のクローニングベクター又は発現ベクターを含む宿主細胞。
- ヒトNav1.7に対する結合特異性を有する抗体又はその抗原結合断片を生産するための方法であって、請求項15に記載の宿主細胞を培養する段階、及び前記抗体を単離する段階を含む、上記方法。
- 薬学的に許容される賦形剤、希釈剤、又は担体の1つ又は複数と組み合わせた、請求項1から12までのいずれか一項に記載の抗体又はその抗原結合断片を含む薬学的組成物。
- 追加として他の活性成分を含む、請求項17に記載の薬学的組成物。
- Nav1.7によって媒介され、又はNav1.7のレベルの増加に関連している病理学的障害の処置又は予防に用いる、請求項1から12までのいずれか一項に記載の抗体又はその抗原結合断片、又は請求項17若しくは請求項18に記載の薬学的組成物。
- 疼痛の処置又は予防に用いる、請求項1から12までのいずれか一項に記載の抗体、又は請求項17若しくは請求項18に記載の薬学的組成物。
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