JP5953229B2 - マイクロ流体デバイス内でオンボード試薬を脱水保存する組成物および方法 - Google Patents

Description

関連出願への相互参照
本願は、米国特許法第１１９条（ｅ）項の下、２００９年６月１２日に出願された米国仮特許出願第６１／１８６，４４２号の利益を主張し、この米国仮特許出願の全体の内容は、本明細書中に参考として援用される。

背景
分野
本発明は一般に、オンボードの脱水試薬を有し、試薬を、凍結乾燥させることなく、脱水により安定化させる、マイクロ流体カートリッジによる分子診断アッセイの分野、ならびにこのような試薬を有するマイクロ流体カートリッジの製造方法に関する。

先行技術の説明
マイクロ流体カートリッジは、それらが簡便であり、未熟練の作業者でも作動させることができ、廃棄処理が容易であるため、診断分子生物学に極めて適切である。各カートリッジは、試料を添加するだけでよいように、特定のアッセイのためのすべての試薬を含有する。次いで、カートリッジを自動式装置に挿入するだけで、アッセイが実施される。しかし、１９９０年代の初期に初めて構想されて以来、これらのカートリッジを開発するには２０年間を要し、市販化への障害はなおも存在する。意図される使用者の大半は、凍結保存設備へのアクセスを欠くため、カートリッジの保管寿命が特に懸念されている。

水分感受性の試薬を、長期間にわたり室温で保存するのに「凍結乾燥」が用いられて成功しているが、マイクロ流体カートリッジの製造は、工程の一部としての凍結乾燥の使用を、容易には許容しない。部分的に組み立てられたデバイスのウェルまたはチャネル内に試薬を入れた後で、さらなる組立てが要求される。粉末または遊離球体は、適正な位置から取り除かれる場合もあり、適正な位置に据えることができない場合もあり、シートまたはロールから形成されるカートリッジを高速で組み立てることを妨げる。乾燥試薬はまた、接着剤の使用も妨げる場合がある。マイクロ流体カートリッジの最終的な組立ては、商業的規模での凍結乾燥技術に容易には適合しない、マスキング除去、積層化、接着、および／または超音波溶接のための手順を必要とする。また、マイクロ流体カートリッジを組み立てる際に遭遇する多湿環境または高温環境は、製品が完全に組み立てる前に既に、凍結乾燥させた試薬を不活化しうる。

代替的に、ガラス形態における脱水は、凍結温度を超える温度で保存中の酵素または試薬の機能を保存することが公知であるが、この技術は結果の予測が極めて困難であり、具体的な成功を期待できないので、研究される各試薬に応じて方法および組成物を変更させなければならない。

分子生物学アッセイ用の内蔵型マイクロ流体カートリッジを組み立てるのに要求されうるタンパク質試薬には、ＴＡＱポリメラーゼ、ＤＮＡポリメラーゼ、ＲＮＡポリメラーゼ、逆転写酵素、ＲＮアーゼＨ、プロテイナーゼＫ、免疫グロブリン、ルシフェラーゼ、ピロホスファターゼ、クロモペプチダーゼ、リゾチームなどが含まれる。光、水分、または熱に対する感受性を有する可能性がある他の試薬には、ヌクレオチド三リン酸、デオキシヌクレオチド三リン酸、プライマーおよびプローブが含まれる。

ＰＣＲは、分子生物学アッセイ大ファミリーの根幹をなしており、現在のところ、マイクロ流体カートリッジのフォーマットでは使用できない多くの分子診断法のゴールドスタンダードである。ＰＣＲを、マイクロ流体フォーマットへと適応させることは、ＴＡＱポリメラーゼ、逆転写酵素、デオキシリボヌクレオチド三リン酸、プライマーおよびプローブを含めた試薬をオンボードで安定的に保存する方法を開発することを伴う。Ｔｈｅｒｍｕｓ ａｑｕａｔｉｃｕｓにおいて最初に発見されたために、「ＴＡＱポリメラーゼ」と一般的に称される、ＰＣＲで使用される好熱性生物のＤＮＡポリメラーゼは、室温で保存するために安定化させるのが特に困難であることが分かっている。にもかかわらず、室温中のマイクロ流体デバイス内において室温で商業的に有用な保管寿命を有するＰＣＲ製品の開発では、この問題の解決に依存している。

ＴＡＱは、５’−３’ポリメラーゼ活性およびエクソヌクレアーゼ活性を有するが、他のポリメラーゼが有する３’−５’プルーフリーディング能は有さない。しかし、その酵素構造物は、他のＤＮＡポリメラーゼに共有されており、ＤＮＡ鋳型の結合に関連する深い窪み（ｃｌｅｆｔ）により分断された、対向性のサム−パームドメイン（ｏｐｐｏｓａｂｌｅ ｔｈｕｍｂ−ｐａｌｍ ｄｏｍａｉｎ）を含有する。ＴＡＱポリメラーゼの熱安定性と関連特色には、Ｌｙｓに対するＡｒｇ、Ａｓｐに対するＧｌｕ、Ｇｌｙに対するＡｌａ、Ｓｅｒに対するＴｈｒの比が大きいこと、ならびにシステインが見られないことが含まれる。疎水性相互作用、水素結合による相互作用、静電相互作用、ならびにファンデルワールス相互作用により、高温でのフォールディングが確立および維持されている。

酵素は、それらの触媒機能およびフォールディングと関連する協同的運動および可撓性を有する、複雑に折り畳まれたナノ機械である。特定の構造サブドメインは、構造が比較的固定されているが、他の構造サブドメインは、より流動性であり、かつ動的である。保存中には、脱水により天然状態を保存することが理想的であるが、脱水は、あるレベルでフォールディングの不安定化を結果としてもたらすことが極めてよく観察される。酵素のアンフォールディングからは変性および活性の喪失が結果として生じ、脱水（または凍結）後における構造の変化は、再水和後に、活性な「天然状態」の形態へのリフォールディングが生じないほどに重大でありうる。

酵素構造物における水の役割は、堅固に確立されている。タンパク質の水和度は、「Ｄｈ」で表わすことができ、Ｄｈ≒０．４（ｇ Ｈ_２Ｏ／ｇ タンパク質）は、タンパク質を取り巻く水の完全水和殻または単層を示唆する。中間レベルの水和もまた、公知である。Ｄｈ≒０．１５〜０．２のとき、水は、より極性の表面およびよりイオン性の表面と会合するのに十分であるに過ぎず、酵素活性は失われる。大半の凍結乾燥工程は、Ｄｈ≒０．０２を結果としてもたらす。水の誘電遮蔽がなければ、静電相互作用の結果として変性が生じうる。水は、水和殻内の水素結合を絶え間なく切断および再形成することにより（疎水性相互作用および親水性相互作用の両方をもたらす）、ならびにペプチド間相互作用および側鎖間相互作用を介して、αヘリックスモチーフおよびβターンモチーフなどの二次構造および三次構造を誘導することにより、タンパク質構造を支配する。溶媒としての水の液晶能および水素結合能により、酵素の構造ドメインの運動が、潤滑化または「可塑化」される。

アモルファス固体は、再水和が対応する結晶状態の場合より急速に進行するため、試薬の「乾燥」保存には、アモルファス固体が好ましい。タンパク質は、過剰の水により再水和すると、制御された形で脱ガラス化を経る、固体で非吸湿性のガラス状マトリックス内で安定化させることが理想的である。好ましい状態は、液体を過冷却することにより形成されるガラス状態と共通するところが多い。同様に、タンパク質ドメインは、低分子およびポリマーにおいてガラス状態を形成させるＴ_ｇ（ガラス転移温度）に類似する温度Ｔ_ｄ（動的転移温度）以下の、アモルファス「ガラス」状態またはアモルファスゲル様状態で凍結させることもできる。Ｔ_ｄ未満では、タンパク質のアンフォールディングが有効に阻害される。同様に、臨界レベルまで脱水させることは、タンパク質のアンフォールディングの阻害を随伴しうる：Ｄｈ＜０．２では、水和殻が斑状であり、室温で供給可能な熱エネルギーが、タンパク質を変性させるのに十分であっても、タンパク質ドメインのアンフォールディングに関連する水素結合の再編成を遂行するには水分子が不十分である。

乾燥保存中において、タンパク質を変性から保護する分子である、リオプロテクタントからなるガラス内でタンパク質を脱水させることは、特に興味深い。リオプロテクタントの活性は、リオプロテクタントが、水素結合および疎水性結合を介してタンパク質と直接相互作用し、水を除去することの変性効果を何らかの形で補正すると考えられる、「水置換モデル」によりおそらく最もよく説明される。例えば、グリセロールは、タンパク質の水和殻内の水に代えて置き換わり、脱水タンパク質を、水の立体構造の不安定性を伴わないとはいえ、再水和可能な形態へと可塑化するのに有効であると考えられる。

したがって、ガラス形成分子との親密な混合物中でタンパク質を冷却することにより形成されるアモルファスガラス状態と、この混合物を脱水させることにより形成されるアモルファスガラス状態とを、共通の枠組みを用いて考えることができる。いずれの場合にも、固体の生成物は、糖などのアモルファスガラス中で「溶媒和した」および分子分散している、多様な程度の天然状態を有するタンパク質のコンフォーマーからなる。例えば、タンパク質と糖との混合物は、その混合物の組成に比例して、糖のＴ_ｇとタンパク質のＴ_ｄとの間の中間的なバルクＴ_ｇを有することが、熱量測定により判明している。同様に、その機構が完全に理解されているわけではないが、タンパク質を、適切なリオプロテクタントと親密に会合させることにより、タンパク質のＴ_ｄを調節することもできる。したがって、脱水タンパク質の立体構造は、ガラスの分子構造と何らかの形で結合すると考えられる。

候補リオプロテクタントには、一般にポリヒドロキシ化合物（ＰＨＣ）が含まれ、特に、各種の糖（単糖、二糖、三糖、およびオリゴ糖）、糖アルコール、ならびに各種のポリヒドロキシ性低分子およびポリヒドロキシ性ポリマーが含まれる。ラクチトール、マンニトール、マルチトール、キシリトール、エリトリトール、ミオイノシトール、トレイトール、ソルビトール（グルシトール）、およびグリセロールが、糖アルコールの例である。非還元糖には、スクロース、トレハロース、ソルボース、スタキオース、ゲンチアノース、メレチトース、およびラフィノースが含まれる。リオプロテクタントである糖誘導体には、中でも、メチルグリコシドおよび２’デオキシグルコースが含まれる。糖酸には、Ｌ−グルコン酸およびその金属塩が含まれる。大半の適用にはそれほど好ましくない還元糖には、フルクトース、アピオース、マンノース、マルトース、イソマルツロース、ラクトース、ラクツロース、アラビノース、キシロース、リキソース、ジギトキソース、フコース、クエルシトール、アロース、アルトロース、プリメベロース、リボース、ラムノース、ガラクトース、グリセルアルデヒド、アロース、アピオース、アルトロース、タガトース、ツラノース、ソホロース、マルトトリオース、マンニノトリオース、ルチノース、シラビオース、セロビオース、ゲンチオビオース、およびグルコースなどの還元糖が含まれる。ポリビニルピロリドン、ポリアクリルアミド、ポリエチルイミン、ペクチン、セルロース、ヒドロキシメチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、およびヒドロキシプロピルメチルセルロースなどのセルロース誘導体、ヒドロキシエチルデンプン、可溶性デンプン、デキストラン、Ｆｉｃｏｌｌ（登録商標）などの高分岐状、高分子量の親水性多糖もまた有用である。ガラス形成性のアルブミン、ゼラチン、およびアミノ酸もまた使用される。試行錯誤により、各標的タンパク質に応じて異なることが典型的な、上記の有用な混合物もまた発見されている。

ガラス形成の成功はまた、冷却速度、濃度、圧力、および種結晶の存在または不在など、他のプロセスパラメータにも感受性であることが公知である。ガラスとは、準安定状態であることを想起しなければならない。これらの複雑系の困難は、ＷＯ１９９６／０３３７４４から取った以下の例により例示されるが、この例では、２％の残留水を伴う９５％のラクトース中２％のカルシトニンによるアモルファス固体の凍結乾燥組成物の温度を、そのＴ_ｇである４０℃を超えて上昇させたところ、ラクトースの侵入結晶化、ならびにこの結晶相から排除された６０％の水および４０％のタンパク質からなる結晶化水の形成が結果として生じたことが報告された。溶液相のガラス温度は凍結温度未満であったので、結果として、タンパク質は、室温で極めて急速に生物学的活性を喪失した。スクロースの結晶化に伴う酵素の不活化についても同様に言及されている（非特許文献１）。

失効した特許文献１で開示される通り、Ｒｏｓｅｎは、タンパク質を室温で乾燥させ、凍結乾燥および噴霧乾燥の過酷な条件を回避すると、Ｔ_ｇがラクトースまたはスクロースより高温であるトレハロースがリオプロテクティブとなることを発見し、この方式で蛍光マーカーもまた脱水しうることを報告した。Ｒｏｓｅｎは、糖：タンパク質比が、１．４：１〜１０：１であることを示唆した。トレハロースは、水が除去されたとき、高分子の構造的完全性を維持する乾燥した足場として作用することが提案された。これらの知見は、他の文献でさらに拡張され（非特許文献２）、および特許文献２では、製剤がまた、メイラードの褐変反応に対する阻害剤も包含する限りにおいて、ラクトースまたはスクロースを含めた各種の炭水化物を用いうることが報告された。ガラス化させた生物学的物質の活性が失われるときの酸素、光、および化学反応の重要性についての見解と共に、関連する結果が、Ｆｒａｎｋｓ（特許文献３）およびＷｅｔｔｌａｕｆｅｒ（特許文献４）により報告されている。

スクロース、ソルビトール、メレチトース、およびラフィノースもまた、好ましいリオプロテクタントとして示唆されている。しかし、知るところでは、乾燥ＴＡＱを、凍結乾燥させることなく、トレハロースまたは他の任意の糖により長い安定保存期間にわたり安定化させることに成功したという報告はなされていない。これに対して、Ｍａｄｅｊｏｎの主張（図５＝出典：米国特許出願第１０／２９２８４８号のファイルラッパー）するところでは、トレハロースが、４℃で１週間にわたり保存した乾燥試薬形態において、せいぜいのところ、部分的に保護的であるにとどまり、３７℃で１週間後には、リオプロテクタントなしの基準ＰＣＲ混合物が、リオプロテクタントを有する乾燥試薬より大きな残留活性を有することが示された。Ｍａｄｅｊｏｎは、メレチトース自体はまったく保護的でないことをさらに示している。本明細書では図５として再現されているゲルについて言及すると、レーン１〜９（ラダーの間）は、４℃における反応成分の保存後に実行し（ｒｕｎ）、レーン１０〜１８は、３７℃における保存後に実行した（「Ｍ」＝メレチトース、「Ｌ」＝リジン、「Ｇ」＝グリコーゲン、「Ｔ」＝トレハロース、「Ｓ」＝リオプロテクタントなしの基準混合物）。

少量の水を添加しても、他の糖の場合のようにＴ_ｇが低下しないという点で、トレハロースは、通常と異なるか、または並はずれてさえいると報告されてきた（非特許文献３）。それどころか、トレハロースの二水和物結晶が形成され、これにより、残りのガラス状トレハロースを、添加された水の効果から遮蔽している。しかし、米国特許第６０７１４２８号において、Ｆｒａｎｋｓは、この効果が顕著なものではなく、ラフィノース五水和物もまた、酵素を乾燥状態で保存するのに有用であることを示している。この結晶性の五水和物は、これを取り巻く、無水物のガラス状態と共に共存することが報告されている。これらの水和糖は一般に、変性に有利に働く、結晶化水の形成または侵入性の結晶化と関連しない。

特許文献５において、Ａｒｉｅｌｉは、凍結温度を超えた温度で乾燥させることにより、典型的には、５５℃で１〜３時間にわたり乾燥させることにより、ＢＳＡと組み合わせた、スクロース、トレハロース、メレチトース、糖アルコール、および還元糖などの安定化剤によりＴＡＱを安定化させることを提起している。該出願で例示されている質的データは、一晩または短期間にわたる保存後におけるＴＡＱの活性を実証している。しかし、乾燥工程において達成された水和度（Ｄｈ）についてはなにも示唆されていないが、既に公知の通り、ＴＡＱは、水溶液中室温で一晩にわたり完全な活性を維持しており（図６＝出典：Ｍａｒｅｎｃｏ Ａら、２００４年、「Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ−ｂａｓｅｄ ｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙｓｉｓ ｆｏｒ ａ ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃｓ ｄｅｖｉｃｅ」、カナダ防衛研究開発契約第Ｗ７７０２−００−Ｒ８４９／００１／ＥＤＭ号最終報告書）、短期間の保存でもおそらく完全な活性を維持する。したがって、達成された脱水およびガラス状態が、数カ月間または数年間にわたる長期の保存に十分であったかどうかは不明である。Ｒｏｓａｄｏ（特許文献６）は、ＴＡＱが、完全に水和した「ゲル化」形態で最も良好に安定化すると論じたが、開示されたデータは、安定性が達成されたのは限定された期間に過ぎないこと、おそらく、数日間または数週間であることを示唆する。

例えば、特許文献７では、商業的ＴＡＱ凍結製剤の開発について報告されている。しかし、凍結保存は、マイクロ流体カードが使用されるポイントオブケア施設では利用可能でないことが典型的である、特殊な設備を必要とる。また、ＴＡＱ調製物の凍結乾燥に成功したことについて、一群の研究者が報告していることも注意される。これらには、Ｗａｌｋｅｒ（特許文献８）、Ｔｒｅｍｌ（特許文献９）、およびＰａｒｋら（特許文献１０および特許文献１１）が含まれる。Ｐａｒｋは、グルコース、ソルビトール、スクロース、またはＦｉｃｏｌｌ（登録商標）の存在下におけるＴＡＱの凍結乾燥について記載している。Ｋｌａｔｓｅｒ ＰＲらは、凍結保護物質としてのトレハロースと、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００とを使用する凍結乾燥ＰＣＲミックスについて記載している。Ｋｌａｔｓｅｒは、調製の最長で１年後において再水和させたときの、それらの凍結乾燥混合物のＴＡＱ活性を見出した。賦形剤と共にＴＡＱを含有する市販の凍結乾燥ビーズ（Ｒｅａｄｙ−ｔｏ−Ｇｏ ＰＣＲビーズ、Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｎｃｅｓ；Ｓｐｒｉｎｔ（商標）Ａｄｖａｎｔａｇｅ（登録商標）、Ｃｌｏｎｔｅｃｈ、Ｍｔ Ｖｉｅｗ ＣＡ）もまた利用可能である。これらの製品は吸湿性であり、かつ、湿度に対して感受性であるため、凍結乾燥させたら即座に密封しなければならない。これらの製品はまた、超純水による再水和過程において、ならびにその後の使用前において、氷上に保持しなければならず、試薬オンボード（ｒｅａｇｅｎｔｓ−ｏｎ−ｂｏａｒｄ）の次世代型マイクロ流体デバイスにおけるそれらの使用を、不可能ではないにせよ、困難なものとしている。

米国特許第４８９１３１９号明細書 米国特許第５９５５４４８号明細書 米国特許第５０９８８９３号明細書 米国特許第５２００３９９号明細書 国際公開第２００７／１３７２９１号 米国特許出願公開第２００３／０１１９０４２号明細書 米国特許第６１２７１５５号明細書 米国特許第５５６５３１８号明細書 米国特許第５７６３１５７号明細書 米国特許第５８６１２５１号明細書 米国特許第６１５３４１２号明細書

Ｓｃｈｅｂｏｒ Ｃら、２００８年、「Ｇｌａｓｓｙ ｓｔａｔｅ ａｎｄ ｔｈｅｒｍａｌ ｉｎａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｉｎｖｅｒｔａｓｅ ａｎｄ ｌａｃｔａｓｅ ｉｎ ｄｒｉｅｄ ａｍｏｒｐｈｏｕｓ ｍａｔｒｉｃｅｓ」、Ｂｉｏｔｅｃｈ Ｐｒｏｇｒｅｓｓ、１３巻：８５７〜８６３頁 Ｃｏｌａｃｏ Ｃら、１９９２年、「Ｅｘｔｒａｏｒｄｉｎａｒｙ ｓｔａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｅｎｚｙｍｅｓ ｄｒｉｅｄ ｉｎ ｔｒｅｈａｌｏｓｅ： ｓｉｍｐｌｉｆｉｅｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｉｏｌｏｇｙ」、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、１０巻：１００７〜１１頁 Ｃｒｏｗｅ ＪＨら、１９９８年、「Ｔｈｅ ｒｏｌｅ ｏｆ ｖｉｔｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｉｎ ａｎｈｙｄｒｏｂｉｏｓｉｓ」、Ａｎｎ Ｒｅｖ Ｐｈｙｓｉｏｌ、６０巻：７３〜１０３頁

これに対し、次世代型マイクロ流体デバイスは、試薬が再水和する間に氷または純水の使用が可能でないように構成されている。該デバイス試薬は、試料により、または、例えば、Ｂｏｏｍ（米国特許第５２３４８０９号）の方法により試料から調製される溶出物により再水和することが典型的である。したがって、当技術分野では、ＰＣＲ試薬ミックスのの関連において、凍結乾燥を伴わず、マイクロ流体カードによる高感度診断アッセイの実践的な商業化に十分な長期の保存期間にわたり十分な信頼性を保持する、ＤＮＡポリメラーゼの環境（ａｍｂｉｅｎｔ）安定化を達成する方法が、依然として必要とされている。

したがって、最新の開示も、ＴＡＱポリメラーゼを、凍結乾燥することなしにまたは凍結させることなく、長期間にわたり安定的に乾燥保存するのに適する製剤を可能としてはいないようである。マイクロ流体デバイスを診断適用へと商業化することが成就へと近づくにつれ、この問題に対する実現可能な解決策が、より緊急に必要とされている。

簡単な要旨
核酸アッセイのための分子生物学試薬、特に、ＴＡＱポリメラーゼを、マイクロ流体カード上で室温乾燥保存することは、困難であることが分かっている。本明細書で実証される通り、試薬は、リオプロテクタントを含有するマトリックス中に液体形態でプリントされる。自動式プリントデバイスにより、カード型デバイス製作物を破壊する、凍結ステップまたは凍結乾燥ステップなしに、該カードのマイクロ流体チャネル内に、生物学的物質を伴うマトリックスの液滴がマイクロリットル単位でプリントされる。典型的には、制御された室温で約１０分間にわたり乾燥させることにより、液滴マトリックスをゲル化させると、カートリッジの組立てが完了する。適切な場合、この工程により、６カ月以上の安定保存期間が達成されるが、これは、商品化に十分な期間である。

ＴＡＱポリメラーゼに関して、約７５℃における多くのＴＡＱポリメラーゼのＶ_ｍａｘにより証拠立てられている通り、高温環境に活性を適応させた酵素は、高いＴ_ｄを有する可能性があり、その天然状態を最良の形で保存するためには、ガラス化した状態において、比較的高いＴ_ｇを有するガラスと結合させるべきであると、本発明者らは論証した。試薬材料は、ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）など、表面活性の低い表面上にプリントされることが好ましく、乾燥時および再水和の間に、界面吸着および変性を受けるため、特に、マイクロ流体デバイス内で乾燥保存する間に、ＴＡＱの高度に折り畳まれた構造物をを安定化させるには、界面活性剤など、他の賦形剤が必要でありうることもまた、本発明者らは認識した。不動態化（ｐａｓｓｉｖａｔｉｏｎ）の方法もまた、採用した。試薬を所定位置にプリントしたら、積層化または超音波溶接により、マイクロ流体デバイスをさらに加工して、完成したカートリッジ本体を形成する。密封された試薬を含有する、合成物のプラスチックシートまたはロールを凍結および真空加工することは技術的に困難であるため、凍結乾燥ステップには適合しない工程である、ロールツーロール製法およびシートバイシート製法が、試薬を分注した後にゲルをガラス化させる自動式プリンターを使用ことで可能になる。

制御された室温における乾燥期間の後、該方法により、密封された防湿性バッグ内で、ゲル乾燥剤の使用に依拠して、カートリッジ本体内で酵素のガラス化が完了する。試料注入ポートおよび廃棄口により、これを介してＤｈ＜０．２のゆっくりとした脱水過程を継続させる開口部が、カートリッジ本体に提供される。したがって、酵素は、脱水期間の数週間にわたり、部分的な水和状態を経過する。理論により拘束されることなく述べると、糖または他のポリオールが水素結合ドナーとしての水に代えて徐々に置き換わる間、酵素を天然状態で安定化させるには、長期間にわたる漸進的な時間−脱水曲線が不可欠であると、本発明者らは考える。驚くべきことに、この乾燥過程の間、ＴＡＱ活性が実際に急激に上昇することを、本発明者らは見出している。具体的ないかなる理論にも拘束されることなく述べると、体積オスモル濃度が細胞内の細胞質ゾルにより酷似する、部分的水和状態でのリフォールディング過程を介して、凍結ショック下にあるコンフォーマーの潜伏性活性が回復されることとして、本発明者らはこれを説明する。この過程の間、ゲルから複合体ゲル様ガラスへと物質状態が変化すると、糖のＴ_ｇが高いために、室温を超える複合体Ｔ_ｇ（すなわち、混合物中の複数のガラス前駆体から結果として生じる）が発生する。

高分子量ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、セルロースガム、アルブミンまたはゼラチン、増強剤、アミノ酸、ならびに、必要に応じて選択されるフッ素系界面活性剤を含めた共リオプロテクタントがこの過程において有用であり、複合体Ｔ_ｇに寄与することが判明した。理論により拘束されることなく述べると、共リオプロテクタントは、糖により形成されるバルクのゲルガラスを破壊することなく、タンパク質殻と選択的に会合しうると考えられる。記載される方法は、ＴＡＱポリメラーゼについて最適化されているが、必要な場合は、マイクロ流体カートリッジを作製するロールツーロール工程またはシートバイシート工程との不適合性がなしで、要求に応じて、ｄＮＴＰ、ＤＮＡポリメラーゼ一般、ＲＮＡポリメラーゼ一般、逆転写酵素、プロテイナーゼＫ、ＲＮアーゼＨ、プライマーおよびプローブなど、他の生物学的試薬を安定化させるのにも必要な場合適応させることができ、かつ、これに有効である。

凍結乾燥状態および凍結保存状態が要求されないことが有利である。それに限定されず、一般的方法は、診断的核酸アッセイのためのマイクロ流体デバイスおよびキットを製造するのに広く使用される。適切であれば、これらの方法により大量生産されるマイクロ流体カートリッジは、保管寿命が６カ月を超える。

本発明の教示は、付属の図面および特許請求の範囲と共に、以下の詳細な記載を考え合わせることにより、よりよく理解することができる。
本発明はまた、以下の項目を提供する。
（項目１）
分子的診断アッセイを実施するためのオンボード試薬を含有するマイクロ流体カートリッジであって、前記マイクロ流体カートリッジが、少なくとも１つのチャンバーまたはチャネルを有するマイクロ流体工作物を封入したプラスチック製本体を含み、前記チャンバーまたはチャネルが、試料注入ポートへと接続された上流の流体路と、ベントへと接続された下流の流体路を有し、
ａ）第１の試薬を、プリントおよび安定化のための溶液と混合し、前記第１のプリントおよび安定化のための溶液の液滴を前記チャンバーまたはチャネル内にプリントし、前記液滴を乾燥させ、これにより、前記チャンバーまたはチャネル内に第１のゲル状試薬スポットを形成するステップと；
ｂ）必要に応じて、第２の試薬を、第２のプリントおよび安定化のための溶液と混合し、前記第２のプリントおよび安定化のための溶液の液滴を前記チャンバーまたはチャネル内にプリントし、前記液滴を乾燥させ、これにより、その中に第２のゲル状試薬スポットを形成するステップと；
ｃ）必要に応じて、複数のオンボードゲル状試薬スポットが前記チャンバーまたはチャネル内にスポットされるまで、ステップｂの操作を継続するステップと；
ｄ）カバー（複数可）を積層させるか、接着するか、超音波溶接するか、または他の方法で接合することにより、前記チャンバーまたはチャネルを、前記プラスチック製本体内に封入するステップと；
ｅ）次いで、ゲル状試薬スポット（複数可）を封入した前記マイクロ流体カートリッジを、乾燥剤と共に乾燥雰囲気下で気密パウチ内に密封するステップであって、前記乾燥剤が、保存期間中に、前記ゲル状試薬スポット（複数可）をさらにガラス化させ、前記マイクロ流体カートリッジの保管寿命が、凍結乾燥させる必要も凍結保存する必要もなしに延長され、前記マイクロ流体カートリッジが、分子診断アッセイに要求されるすべてのオンボード試薬を含有するステップと
により前記チャンバーまたはチャネル内に作製された、少なくとも１つのガラス化したゲル状試薬スポットが、前記チャンバーまたはチャネル内に封入されている、マイクロ流体カートリッジ。
（項目２）
前記第１のガラス化したゲル状試薬スポットが、ＴＡＱポリメラーゼを含む、項目１に記載のマイクロ流体カートリッジ。
（項目３）
前記第１のガラス化したゲル状試薬スポットが、
ｉ）約１．０％〜１０％ ｗ／ｖの三糖と；
ｉｉ）必要に応じて、約０．００１％〜０．１％ ｗ／ｖの高分子量ポリエチレングリコールまたはポリヒドロキシル化合物と；
ｉｉｉ）必要に応じて、約０．００１％〜０．３％のフッ素系界面活性剤と；
ｉｖ）必要に応じて、アミノ官能基またはアミド官能基を有する非タンパク質の化合物と；
ｖ）約０．１％〜１０％のキャリアタンパク質と；
ｖｉ）適合バッファーと
を含む安定化マトリックス中にＴＡＱポリメラーゼを含む、項目１に記載のマイクロ流体カートリッジ。
（項目４）
前記第２のガラス化したゲル状試薬スポットが、プライマー（複数可）を含む、項目１に記載のマイクロ流体カートリッジ。
（項目５）
前記複数のガラス化したゲル状試薬スポットが、プローブ（複数可）を含有するスポット、逆転写酵素を含有するスポット、ＲＮＡポリメラーゼを含有するスポット、ヌクレオチド三リン酸を含有するスポット、核酸鋳型を含有するスポット、またはバッファーを含有するスポットを含む、項目１に記載のマイクロ流体カートリッジ。
（項目６）
前記マイクロ流体工作物が、前記試料注入ポートと、前記ベントとの間で平行するアッセイ経路のアレイとして流体連絡される複数のチャンバーまたはチャネルを含み、前記各アッセイ経路内に、前記チャンバーまたはチャネル内にプリントされた少なくとも１つのガラス化したゲル状試薬スポットが存在する、項目１に記載のマイクロ流体カートリッジ。
（項目７）
前記各アッセイ経路内に、少なくとも１つの固有のプライマー対を含むガラス化したゲル状試薬スポットが存在する、項目６に記載のマイクロ流体カートリッジ。
（項目８）
前記各アッセイ経路内に、少なくとも１つのプローブを含むガラス化したゲル状試薬スポットが存在する、項目６に記載のマイクロ流体カートリッジ。
（項目９）
前記各アッセイ経路が、安定化マトリックス中にＴＡＱポリメラーゼを有するガラス化したゲル状試薬スポットを含む、項目６に記載のマイクロ流体カートリッジ。
（項目１０）
取外し可能なマイクロ流体カートリッジのモザイク物を含み、前記モザイク物のうちの前記取外し可能なカートリッジの各々が、前記取外し可能なカートリッジの各々の中に作製された、少なくとも１つのガラス化したゲル状試薬スポットと共に形成される、工程中間体としての、項目１または６に記載のマイクロ流体カートリッジのシート。
（項目１１）
前記取外し可能なマイクロ流体カートリッジの各々に、特定の分子診断アッセイまたはアッセイセットのために形成されたガラス化したゲル状試薬スポットのパターンがプリントされている、項目１０に記載のマイクロ流体カートリッジのシート。
（項目１２）
各シートが、複数の診断アッセイまたはアッセイセットのために形成された、取外し可能なマイクロ流体カートリッジを含む、項目１１に記載のマイクロ流体カートリッジのシート。
（項目１３）
前記少なくとも１つのガラス化したゲル状試薬スポットが、室温でガラスを形成するように選択されるＰＣＲ増強剤をさらに含む、項目１または６に記載のマイクロ流体カートリッジ。
（項目１４）
前記ＰＣＲ増強剤が、ベタイン、ｎ−ホルミルモルホリン、δ−バレロラクタム（２−ピペリドン）、ε−カプロラクタム、１，２−シクロペンタンジオール、ＰＶＰ−１０、ＰＶＰ−４０、またはこれらの混合物である、項目１３に記載のマイクロ流体カートリッジ。
（項目１５）
前記少なくとも１つのガラス化したゲル状試薬スポットが、イヌリン、セルロース、誘導体化セルロース、ポリビニルピロリドン、リジン、アルギニン、またはメイラード反応阻害剤をさらに含む、項目１または６に記載のマイクロ流体カートリッジ。
（項目１６）
乾燥剤と共に乾燥雰囲気下で気密パウチ内に個別包装され、表示ならびに使用のための指示書を含む、項目１〜１５のいずれか一項に記載のマイクロ流体カートリッジを含むキット。
（項目１７）
核酸アッセイ試薬を、マイクロ流体デバイスのチャンバーまたはチャネル内で凍結乾燥させることなく、水の凍結温度を超える温度のゲル様ガラス内で安定化させて保存する方
法であって、
ａ）前記核酸アッセイ試薬を、
ｉ）約１．０％〜１０％ ｗ／ｖの二糖または三糖と；
ｉｉ）必要に応じて、約０．００１％〜０．１％ ｗ／ｖの高分子量ポリエチレングリコールと；
ｉｉｉ）必要に応じて、約０．００１％〜０．３％のフッ素系界面活性剤と；
ｉｖ）必要に応じて、約０．００１％〜約１．０％のアミノ酸と；
ｉｖ）必要に応じて、約０．１％〜１０％のキャリアタンパク質と；
ｖ）必要に応じて、適合バッファーと
からなる水溶液と混合して、これにより複合体ガラス前駆体溶液を形成するステップと；
ｂ）前記アッセイに有効な量の前記核酸アッセイ試薬を含有する、前記複合体ガラス前駆体溶液の液滴を、前記マイクロ流体デバイス内に沈着させるステップと；
ｃ）前記液滴を、制御された室温、または約２０℃で乾燥させて、前記表面上にゲル状スポットを形成するステップと；
ｄ）次いで、前記マイクロ流体カートリッジ内の前記ゲル状スポットを、乾燥剤と共に乾燥雰囲気下で気密パウチ内に密閉および密封するステップであって、前記乾燥剤が、保存期間中に、前記ゲル状スポットをさらにガラス化させるステップと
を含む方法。
（項目１８）
前記二糖がトレハロースから選択され、前記三糖がメレチトースまたはラフィノースから選択される、項目１７に記載の方法。
（項目１９）
前記高分子量ポリエチレングリコールが、０．１〜５ＭＤａの分子量を有し、直鎖状のポリオキシエチレングリコールまたは分岐鎖状のポリオキシエチレングリコールである、項目１７に記載の方法。
（項目２０）
前記キャリアタンパク質が、ウシ血清アルブミンまたは魚類ゼラチンである、項目１７に記載の方法。
（項目２１）
前記フッ素系界面活性剤が、非イオン性フルオロアルキル系界面活性剤であり、短鎖のアルキル側鎖を有することが好ましい、項目１７に記載の方法。
（項目２２）
前記フッ素系界面活性剤が、フッ素系界面活性剤ＦＣ−４４３０である、項目１７に記載の方法。
（項目２３）
前記チャンバーまたはチャネルを不動態化してから、前記液滴を沈着させるステップをさらに含む、項目１７に記載の方法。
（項目２４）
本特許請求の範囲で個別にもしくは集合的に開示されるか、または本出願の明細書で個別にもしくは集合的に示されるステップ、特色、整数、組成物、および／または化合物、ならびに前記ステップ、特色、整数、組成物、および／または化合物のうちの２つ以上の任意のおよび全ての組合せ。

図１は、核酸アッセイ用の取外し可能なマイクロ流体カートリッジのシートを示す図である。シートは、個々のマイクロ流体カートリッジの製造における中間体である。この場合のシートは、８つの取外し可能なマイクロ流体カートリッジを含有する。 図２Ａおよび２Ｂは、最終組立ての間において、マイクロ流体カートリッジ上に試薬スポットをプリントするステップを概略的に例示する図である。図２Ａは、４つの液体試薬スポット（黒丸）を有する下層を示す図である；図２Ｂは、ゲル状スポット（白丸）を封入する、組立てが完成したカートリッジを示す図である。 図３Ａ〜３Ｄは、液体の試薬をマイクロ流体チャネルまたはチャンバー内に適用しうる数種の構成を例示する図である。液体の試薬が所定の位置でゲル化してから、最終の組立てを行う。 図４Ａ〜４Ｄは、オンボードの試薬ならびにペルチエ型の熱サイクリング能を有するマイクロ流体カートリッジの代替的な構成を概略的に表わす図である。 図５は、脱水された各種の反応混合物中にＰＣＲ増幅産物が存在することを実証する先行技術のゲルを再現する図である。図は、米国特許出願第１０／２９２８４８号のファイルラッパーに記録されるＡ Ｍａｄｅｊｏｎ（図１、上パネル）による陳述物から複製されている。 図６は、一晩にわたりＴＡＱ試薬溶液を保存した後においてＰＣＲ増幅産物が存在することを実証する先行技術のゲルを再現する図である。 図７は、２カ月間にわたる乾燥保存後におけるＴＡＱ製剤を比較する棒グラフである。 図８は、新たに調製した湿潤反応混合物（未乾燥）のＴＡＱ活性に対して、再水和後における乾燥混合物のＴＡＱ活性を示すｒｔＰＣＲ曲線である。 図９は、室温のメレチトースガラスにおける漸進的なガラス化の間に、ＴＡＱ効力が、商業的に供給された原液を上回って上昇することを示す棒グラフである。 図１０は、選択された賦形剤を伴うメレチトース対トレハロース中おける、ガラス状保存後のＴＡＱ効力を示す棒グラフである。 図１１は、賦形剤であるフッ素系界面活性剤ＦＣ−４４３０（３Ｍ Ｃｏｒｐ）を伴うガラス状保存後におけるＴＡＱ効力を示す図である。

詳細な説明
本明細書で定義される意味のうちのあるものは、本発明者らが意図する通りに定義される、すなわち、それらは内在的な意味を持つ。本明細書で使用される他の語および語句は、当業者に明らかな用法と符合する意味を持つ。引用される業績を参照により組み込む場合、本明細書で使用される意味と齟齬を来すか、またはその意味を狭める、参考文献中の語の任意の意味または定義は、前記参考文献に特異であると考えるものとし、本明細書の開示で使用される語の意味を超えないものとする。

定義
リオプロテクタント：タンパク質、プライマー、またはプローブ、例えば、ＴＡＱポリメラーゼを、乾燥保存中における変性ならびに生物学的活性の喪失から保護する分子である。多くのリオプロテクタントはポリオールであるが、このクラスにはまた、アミノ酸、ペプチド、タンパク質のほか、ＰＨＣ、糖、ポリビニルピロリドン、ＰＥＧなども含み得る。定義にはまた、第１の物質、ならびにこの第１の物質と共に協同的な保護効果を有する第２の物質を混合物中で用いる、共リオプロテクタントも含まれることを理解すべきである。

「Ｔ_ｇ」とは、それを超えるとアモルファスガラス物質の粘稠度が急速に低下し、ゲルから可変性のプラスチックを経て液体へと進行する温度であり、逆にそれを下回るとアモルファス非晶質の固体が形成される温度でもある、ガラス転移温度である。Ｔ_ｇが４０℃以上であると、室温における試薬の安定性が確保されるが、ＴＡＱポリメラーゼについてはこれが未知であると考えられている。一般に、Ｔ_ｇは、示差走査熱量測定（ＤＳＣ）を使用して決定され、転移の始点、中点、または終点として定義されうる。技術的詳細は、「Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ Ｓｃａｎｎｉｎｇ Ｃａｌｏｒｉｍｅｔｒｙ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ Ｇｌａｓｓ Ｔｒａｎｓｉｔｉｏｎｓ」、Ｊａｎ Ｐ． Ｗｏｌａｎｃｚｙｋ、１９８９年、Ｃｒｙｏ−Ｌｅｔｔｅｒｓ、１０巻、７３〜７６頁（１９８９年）ならびにＧｉｂｂｓ ＪＨ およびＥＡ ＤｉＭａｒｚｉｏ、１９５８年、「Ｎａｔｕｒｅ ｏｆ ｔｈｅ Ｇｌａｓｓ Ｔｒａｎｓｉｔｉｏｎ ａｎｄ ｔｈｅ Ｇｌａｓｓｙ Ｓｔａｔｅ」、Ｊ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｐｈｙｓｉｃｓ、２８巻：３７３〜３９３頁において記載されている。本方法で有用なガラスは一般に、純粋のガラス前駆体からは形成されず、かわりにリオプロテクタント、ならびに共リオプロテクタント、共溶媒、共界面活性剤、または混合物として添加された賦形剤から形成され、したがって、「複合体ガラス」と称する。これらの複合体ガラスは、中間体ガラスの特性および「ゲル様」の特性を有する場合があり、水和値が、約０．０１≦Ｄｈ≦０．４、より好ましくは０．０２２≦Ｄｈ≦０．２の範囲にある。複合材料のＴ_ｇは一般に、個々の構成要素のＴ_ｇ値に依存する（Ｆｒａｎｋｓ， Ｆ、１９９４年、「Ｌｏｎｇ ｔｅｒｍ ｓｔａｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ」、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、１２巻：２５３〜５６頁）。保存について意図される温度を２０℃上回るＴ_ｇが好ましい。

プローブ：「プローブ」とは、室温で安定的な二本鎖（ｄｏｕｂｌｅ ５ ｈｅｌｉｘ）を形成するのに十分な相補性を有する相補的塩基対合により標的の核酸に結合することが可能な核酸である。プローブは標識することができる。プローブに結合しうる適切な標識には、放射性同位体、フルオロフォア、発色団、質量標識（ｍａｓｓ ｌａｂｅｌ）、高電子密度粒子、磁性粒子、スピン標識、化学発光を発生させる分子、電気化学的な活性分子、酵素、補因子、および酵素基質が含まれるがこれらに限定されない。蛍光プローブには、Ｓｙｂｅｒ Ｇｒｅｅｎ（登録商標）（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ）、臭化エチジウム、またはチアゾールオレンジ、ＦＲＥＴプローブ、ＴａｑＭａｎ（登録商標）プローブ（Ｒｏｃｈｅ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｓｙｓｔｅｍｓ）、分子ビーコンプローブ、Ｂｌａｃｋ Ｈｏｌｅ Ｑｕｅｎｃｈｅｒ（商標）（Ｂｉｏｓｅａｒｃｈ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）、ＭＧＢ−Ｅｃｌｉｐｓｅ（登録商標）プローブ（Ｎａｎｏｇｅｎ）、Ｓｃｏｒｐｉｏｎｓ（商標）（ＤｘＳ Ｌｔｄ）プローブ、ＬＵＸ（商標）プライマープローブ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、Ｓｕｎｒｉｓｅ（商標）プローブ（Ｏｎｃｏｒ）、ＭＧＢ−Ｐｌｅｉａｄｅｓ（Ｎａｎｏｇｅｎ）などの挿入プローブなどが含まれる。プローブ技術における近年の進歩については、例えば、Ｌｕｋｈｔａｎｏｖ ＥＡら、２００７年、「Ｎｏｖｅｌ ＤＮＡ ｐｒｏｂｅｓ ｗｉｔｈ ｌｏｗ ｂａｃｋｇｒｏｕｎｄ ａｎｄ ｈｉｇｈ ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ−ｔｒｉｇｇｅｒｅｄ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ」、Ｎｕｃｌ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ、３５巻：ｅ３０頁により総説されている。

「安定保存期間」とは、乾燥試薬混合物が、生物学的活性を保持しながら、制御された条件下でマイクロ流体カード内に保存される期間、例えば、「保管寿命」を指す。生物学的活性材料の生物学的活性がＰＣＲ増幅を実施する任意の所与の時間において有効であれば、ＴＡＱポリメラーゼは、試薬組成物中の「その生物学的活性を保持する」。保管寿命が６カ月間を超える組成物が好ましい。

マイクロ流体カートリッジ：慣例では少なくとも一方向の寸法が５００ｕｍ未満である、流体操作のための内部的メソ構造を有する「デバイス」、「カード」、または「チップ」である。これらの流体構造には、例えば、マイクロ流体チャネル、チャンバー、バルブ、ベント、ビア、ポンプ、注入口、ニップル、および検出手段が含まれうる。

マイクロ流体チャネルは、ｚ方向の寸法（高さまたは深さ）が５００ｕｍ未満、より好ましくは約１５０ｕｍ（約４ミル）以下であり、一般に断面領域の幅が深さより大きい、封入型の導管または通路である。チャネルが最も狭い方向の寸法が、流量、レイノルズ数、圧力低下に最も重大な影響を及ぼし、本明細書で記載するデバイスでは、最も狭い方向の寸法は、ｚ方向の寸法または直径であることが典型的である。射出成形により形成される場合、チャネルの天盤および壁面は、放射面（ｒａｄｉｕｓ）により接合されることが典型的である。一部のマイクロ流体チャネルは、円形の断面を有し、直径により特徴づけられる。他の形状もまた可能である。

本明細書で使用される「上部」、「底部」、「上方」、「下方」、「側面」、「天盤」、「床面」、および「基底層（ｂａｓｅ）」という語は相対的な用語であり、そのように明示的に述べられない限り、地表平面に対するデバイスまたはデバイス構成要素の配向性を必ずしも記載するわけではないことが認識されよう。テーブル表面上にフラットなデバイスの使用が好ましいことは、限定的であることを意図するものではなく、ｚ軸が一般にデバイス本体の主平面に対して垂直であるように選択することは、説明および製造の便宜の問題であるに過ぎない。

「従来の」とは、本発明が関する先行技術において公知のものを指示する用語である。

「約」および「一般に」とは、ばらつきが重要でないか、明白であるか、または有用性もしくは機能が同等である「おおむね」の意味における、「多かれ少なかれ〜」、「近似的に〜」、または「ほぼ〜」である状態を説明する、不正確さを含む広がりのある表現であり、基準、規則、または限界に対してわずかの例外が明白に存在することをさらに示す。

文脈が別段に要請しない限り、以下の明細書および特許請求の範囲全体において、「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅ）」という語、ならびに「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ）」および「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」など、その変化形は、すなわち、「〜が含まれるがこれらに限定されない」のような開かれた包含的な意味で理解するものとする。

ＰＣＲ用のマイクロ流体デバイスの工学的作製および操作
マイクロ流体デバイスの表面積対体積比が高いことが典型的であるために、該デバイス内でのＰＣＲは難題である。試料の反応体積が数マイクロリットルであることが典型的であり、チャネルおよびチャンバーの寸法は、幅が５００マイクロメートル未満であり、深さはおそらくその１０〜２０％であることが典型的である。本発明のマイクロ流体デバイスは、好ましくはプラスチックから大量生産される小型の化学反応槽であり、あらかじめプリントされたアッセイ試薬を含有する微細なチャネルおよびチャンバーを有する。

好ましい実施形態では、デバイスが、核酸診断アッセイを実施するための、使い捨ての内蔵型器械であるように、診断アッセイを実施するのに要求されるすべての試薬が、その内部にあらかじめ配置されている。必要に応じて、デバイスはまた、オンボードの希釈剤、洗浄液、およびアッセイにおいて生成されるすべての廃液を含有するのに十分な体積の廃液トラップも含有する。

本発明を実施するのに適するマイクロ流体カードのデザインおよび特色の詳細は、例えば、それらのすべてが本出願者に共譲渡された米国特許出願第１２／２０７６２７号、「Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ａｓｓａｙｓ」；同第１１／５６２６１１号、「Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ Ｍｉｘｉｎｇ ａｎｄ Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ａｐｐａｒａｔｕｓ」；同第１２／２０３７１５号、「Ｓｙｓｔｅｍ ａｎｄ Ｍｅｔｈｏｄ ｆｏｒ Ｄｉａｇｎｏｓｉｓ ｏｆ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ Ｄｉｓｅａｓｅｓ」；および同第１０／８６２８２６号、「Ｓｙｓｔｅｍ ａｎｄ Ｍｅｔｈｏｄ ｆｏｒ Ｈｅａｔｉｎｇ， Ｃｏｏｌｉｎｇ ａｎｄ Ｈｅａｔ Ｃｙｃｌｉｎｇ ｏｎ Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ Ｄｅｖｉｃｅ」において開示されている。この技術は、Ｚｈａｎｇによる近年の総説（２００７年、「Ｍｉｎｉａｔｕｒｉｚｅｄ ＰＣＲ ｃｈｉｐｓ ｆｏｒ ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ ａｎａｌｙｓｉｓ： ｌａｔｅｓｔ ａｄｖａｎｃｅｓ ａｎｄ ｆｕｔｕｒｅ ｔｒｅｎｄｓ」、Ｎｕｃｌ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ、３５巻：４２２３〜３７頁）の主題である。

当技術分野において公知である通り、マイクロ流体ＰＣＲは、の４つの構成のＰＣＲ用熱サイクル反応槽：ａ）蛇行式反応槽、ｂ）循環式反応槽、ｃ）往復式反応槽、ならびにｄ）加熱および冷却を局在化させた単一のチャンバー反応槽において実施することができる。蛇行式反応槽は、２つまたは３つの温度帯間を行き来しながらループする拡張チャネルを含有し、循環式反応槽は、２つまたは３つの温度帯を横断する単一のループであり、往復式反応槽は、各チャンバーが相互連結されて反応混合物を交換する、温度の異なる２つまたは３つのチャンバーを含有し、単一チャンバーベースの反応槽は、ペルチエ型サーモエレクトロニクスなどにより局在化された加熱および冷却が施される反応混合物を含有する。蛇行式反応槽、循環式反応槽、および往復式反応槽はすべて、温度帯を通してまたは温度帯間で反応混合物を循環させるポンプ（複数可）を必要とする。これらの構成を反映するように、マイクロ流体デバイスの構築様式を変化させる。

アッセイには、終点検出または動態（また、「リアルタイム」とも呼ばれる）検出が包含されうる。プローブなどの指示試薬を用いる場合は、増幅中または増幅後においてこれを添加することができる。当技術分野で公知の通り、蛍光プローブ、蛍光消光プローブ、および「アップコンバーティング」蛍光プローブが好ましい。

好ましい実施形態では、核酸を含有する生物学的試料を、マイクロ流体カードのポートへとピペッティングし、次いで、アッセイの残り時間にわたってこれを密封する。空気式制御装置を使用して、アッセイを完了するのに必要とされる通りに、試料および液体試薬を方向づける。第１段階では、試料核酸を、必要に応じて、固相マトリックス上に抽出し、ＰＣＲバッファー中で再水和させてから、プライマーを含有する乾燥ＰＣＲ試薬と接触させる。ＴＡＱポリメラーゼを含有する乾燥試薬を別個に供給する。次いで、カード上で熱サイクリングを実施し、マイクロ流体デバイスに装備されている蛍光プローブの使用を含めた各種の方法により、アンプリコンの陽性検出を実施する。

水とプラスチックとの界面張力のために、時には界面活性剤およびＰＥＧまたはアルブミンなどの共界面活性剤を使用して、生物学的物質が、マイクロ流体デバイスのプラスチック表面へと吸着することを抑制する。吸着による喪失を抑制するのに有用な公知の界面活性剤には、Ｔｗｅｅｎ２０、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００、Ｎｏｎｉｄｅｔ Ｐ４０、ＰＥＧ−８０００、およびウシ血清アルブミンが含まれる。これらの物質はまた、ＴＡＱポリメラーゼの凝集を抑制するとも考えられ、ポリメラーゼ活性を増大させるのにも使用されることが多い。生物学的物質が接触するプラスチック表面を不動態化させる技法もまた、本発明者らの手元にあって有用である。これらの技法は、プラスチックがフリーラジカル開始剤により活性化される、該プラスチックをポリエチレングリコールジアクリレートなどの親水性分子により不動改変および共有結合改変することを含む。併せて接着される表面など、改変されない表面は、不動態化処理の間、遮蔽する。

一般に、ｄＮＴＰ、マグネシウム塩、塩化カリウム、塩化ナトリウム、バッファー、プローブ分子種、必要に応じてプライマー、ならびに非特異的湿潤剤または界面活性剤を、必要に応じて、マイクロ流体デバイスのオンボードに等分されそして乾燥させる「マスターミックス」中で混合する。

プライマーは、ＴＡＱポリメラーゼ試薬とは距離を置いて別個にプリントするのが最良であることを経験は示している。この理由が完全に理解されているわけではないが、本発明者らに得られる収量は、この改変と符合して増大した。プライマーは、乾燥状態で良好に保存され、例えば、密封パウチ内の乾燥剤存在下で、水中で１．６％トレハロース溶液に由来するゲル〜ガラス状のガラス化により安定化させると、室温で長期間保存することができる。

オンボードの試薬を伴うマイクロ流体デバイスを製造する間、各種の自動式液滴分注器具を用いて、ガラス、賦形剤、および生物学的試薬を含有する溶液を、マイクロ流体デバイスのチャネルまたはチャンバー内にプリントすることが典型的である。次いで、カバー層または蓋をデバイスに適用し、デバイスを密封する。組立ておよび検査の後、完成したマイクロ流体デバイスを、ホイルバッグ内に挿入する。各デバイスが入ったバッグ内に乾燥剤を入れる。有用でありうる乾燥剤の例には、指示薬を伴う場合であれ伴わない場合であれ、シリカゲル、ベントナイト、ホウ砂、Ａｎｈｙｄｒｏｎｅ（登録商標）、過塩素酸マグネシウム、酸化バリウム、活性化アルミナ、無水塩化カルシウム、無水硫酸カルシウム、ケイ酸チタン、無水酸化カルシウム、無水酸化マグネシウム、硫酸マグネシウム、およびＤｒｙｒｉｔｅ（登録商標）が含まれる。次いで、好ましくは酸素を伴わない乾燥ガス雰囲気下で熱加圧式密封装置を使用してバッグを密封し、指定の保管寿命にわたり保存する。

カートリッジの製造
ＰＣＲ用のマイクロ流体カートリッジを製造するための詳細について記載するが、記載される方法および製剤は一般に、熱サイクリング手段および等温手段の双方よる核酸増幅にも適用可能であり、オンボードの乾燥試薬の使用を意図する核酸アッセイ一般に適用可能である。

マイクロ流体カートリッジは、層をビルドアップする工程による、プラスチック体により作製される。

各カートリッジは、共に接着もしくは融合された部材もしくは層の対、または共に接着もしくは融合された複数の層から形成することができる。「層」という用語は、１つ以上の一般に平面状の固体基板の部材のうちのいずれか、またはカートリッジを含む接着層を指す；「層」にはまた、個々のシート、ロールストック、ならびに、一般に平面部材として形成される任意の成形体部材も含まれる。層は、感圧性接着剤（ＰＳＡ）または熱接着剤により接合することができる。代替的に、層は、圧力下で、熱、溶媒により、または超音波溶接により融合することもできる。デバイス内の層の数は、要求される機能に依存しそして製作工程が選択される。

層内に形成されるチャネルおよびチャンバーは、連続して積み重ねられた層が接合されることにより封入されると、液体の導管となる。したがって、これらのカートリッジは、シートを積み重ねることにより製造する、または、ロールツーロール工程などにおいて、複数のフィードリールから送られるときに互いの上に重ねられる複数のロールから製造するのに有用である。個々のチャネルおよびチャンバーは、各種の工程のうちの１つにより層内で切除されるか、エンボスされるか、または成形される。製作方法には、レーザーステンシリング、積層化、エンボス、スタンピング、射出成形、マスキング、エッチング、光触媒性ステレオリソグラフィー、ソフトリソグラフィーなど、または上記の任意の組合せが含まれる。

プラスチックは、本発明のマイクロ流体デバイスを作り上げるのに好ましい材料である。使用しうるプラスチックには、オレフィン、環状ポリオレフィン、環状オレフィンコポリマー、ポリエステル、テレフタル酸ポリエチレン、テレフタル酸ポリブチレン、ポリスチレン、ポリカーボネート、ポリプロピレン、ポリエチレン、ポリウレタン、ポリエーテルスルホン、ポリ塩化ビニル、ポリ酢酸ビニル、ポリアミド、ポリイミド、ポリアクリレート、ポリメタクリル酸メチル（ＰＭＭＡ）、ポリテトラフルオロエチレン、ポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）、ポリシラン、三酢酸セルロース、熱プラスチック一般などが含まれる。複合体およびコポリマーもまた使用されることが多い。プラスチックまたは他の固体基板および従来の接着剤を選択するための知識は、関連技術分野において広く公知である。

必要に応じて、弾性のダイアフラムを介して流体ネットワーク（ｈｙｄｒａｕｌｉｃ ｎｅｔｗｏｒｋ）へと作用性に連結される空気力ネットワークを重ね合せることにより制御される、チャネル、チャンバー、バルブ、ポンプ、ならびに他のマイクロ流体特色の流体ネットワークである、カートリッジのマイクロ流体工作物のデザインは、単純な場合もあり、複雑な場合もあるが、試料を試料注入ポートへと注入するための装備、ならびにそれらの工作物を介して液体を移動させるときの出すための装備を包含する。試料注入ポートおよびベントは、試料注入ポートに接合された上流の流体路と、ベントに接合された下流の流体路とを有する、直列式または並列式のチャネルおよびチャンバーのシステムにより流体連絡されている。

下記のステップにより内部のチャンバーまたはチャネル内に作製された、少なくとも１つのガラス化したゲル状試薬スポットが、該チャンバーまたはチャネル内に封入されている：
ａ）第１の試薬を、プリントおよび安定化のための溶液と混合し、該第１のプリントおよび安定化のための溶液の液滴を該チャンバーまたはチャネル内にプリントし、簡潔に、該液滴を水和ゲル状態に乾燥させ、これにより、該チャンバーまたはチャネル内に第１のゲル状試薬スポットを形成するステップと；
ｂ）必要に応じて、第２の試薬を、第２のプリントおよび安定化のための溶液と混合し、該第２のプリントおよび安定化のための溶液の液滴を該チャンバーまたはチャネル内にプリントし、簡潔に、該液滴を水和ゲル状態に乾燥させ、これにより、該チャンバーまたはチャネル内に第２のゲル状試薬スポットを形成するステップと；
ｃ）必要に応じて、複数のオンボードゲル状試薬スポットが該チャンバーまたはチャネル内にスポットされるまで、ステップｂの操作を継続するステップと；
ｄ）カバー（複数可）を積層させるか、接着するか、超音波溶接するか、または他の方法で接合することにより、該チャンバーまたはチャネルを、プラスチック製本体内に封入するステップと；
ｅ）次いで、ゲル状試薬スポット（複数可）を封入した該マイクロ流体カートリッジを、乾燥剤と共に乾燥雰囲気下で気密パウチ内に密封するステップであって、該乾燥剤が、保存期間中に、該ゲル状試薬スポット（複数可）をさらにガラス化させ、これによりガラス化したゲル状スポット（複数可）を形成し、該マイクロ流体カートリッジの室温での保管寿命が、凍結乾燥保存の必要も凍結保存の必要もなしに延長され、該マイクロ流体カートリッジが、分子診断アッセイに要求されるすべてのオンボード試薬を含有するステップ。

この方式で、製造工程中の中間段階で、マイクロ流体カートリッジ内に乾燥試薬スポットを封入することが可能となっている。この方法を使用すると、図１で例示する通り、マイクロ流体カートリッジのシートを、ロールストックからの連続工程または半連続工程で作製することができる。この図では、８つの個別取外し可能なマイクロ流体カートリッジが、単一の作製単位（１）として形成されることが示されている。正確な数は重要でなく、４８個または６０個または２００個のカートリッジを同時に作製することができる。上記で説明した通り、工程の最終段階において、個々のカートリッジ（２）を互いから分離し、乾燥剤と共にホイルパウチ内に包装する。

ＢｉｏＤｏｔ ＡＤ１５００などの自動式試薬プリンターを、ＢｉｏＤｏｔ Ｐｌｕｓ Ｄｉｓｐｅｎｓｅｒ（Ｂｉｏｄｏｔ、Ｉｒｖｉｎｅ、ＣＡ）、ならびにＸ−Ｙ−Ｚ方向のヘッドコントロールと共に用いることにより、液滴をシートの基底層または下層に自動式で迅速に沈着させることが達成される。複数のヘッドを直列で使用することにより、異なる試薬からなる液滴パターンを、シート全体に反復させることができる。必要に応じて、シートの個々のマイクロ流体カートリッジに、異なる試薬をプリントすることもできる。プリントヘッドは、接触型の場合もあり、または非接触型の場合もある。

ここで図２を参照すると、プリント工程がより詳細に説明されている。例として述べると、図２Ａでは、ＰＣＲ増幅用の分岐回路を形成する、チャネルおよびチャンバーの底部ウェルが切り出された、プラスチック製下層（２０）が示されている。この段階におけるチャネルおよびチャンバーのウェルは、後続の層内にビアおよびバルブを配置することが可能となるように不連続であることが多い。この概略表示では、各々が、環境条件下で迅速にゲル化する液体として適用される、４つの試薬スポット（黒丸）を受容するものとして、４つのチャンバーが示されている。スポット１（２１）は、増幅のアンプリコン産物を検出するのに使用される蛍光プローブを含有する。スポット２（２２）は、ゲル状安定化マトリックス中において標的を増幅するのに有効な量のＴＡＱポリメラーゼ、ｄＮＴＰ、バッファー、およびマグネシウム塩を含有する。スポット３（２３）は、液滴中にプライマー対を含有する。スポット４（２４）は任意選択であり、ＲＮＡ鋳型からｃＤＮＡを合成するのに有効な逆転写酵素、ｄＮＴＰ、およびバッファーを製剤中に含有する。各スポットは、スポット後迅速にゲル化し始め、次いで、乾燥して、カートリッジの保管寿命にわたり試薬を安定化させる複合体ゲルまたは複合体ガラスとなる、プリント可能なマトリックス中に調合されている。ある量の乾燥剤が施されているホイルパウチ内で、各スポットから過剰な水和水を除去する最後の乾燥工程が開始される。流体、一般に生物学的試料、または生物学的試料の溶出物、抽出物、もしくは濾過物が、試料注入口（下）に導入されると、各スポットは配合され迅速に再水和する。

図２Ｂでは、４つの試薬スポットすべて（白丸）が、ガラス化したゲル状態にある。スポットがプリントされた下層へと被覆層の積み重ねを付加することにより、カートリッジ本体（２５）が完全に組み立てられる。外部インターフェース（図示しない）へと伸長する空気力制御ラインに沿って、バルブ上ならびに必要に応じアニーリングチャンバー上に、空気力ダイアフラムもまた配置されている。使用時には、カートリッジ底部に流入する核酸抽出物が、第１のバルブ（２６）によって受け入れられ、急速水和マトリックス（スポット２４）内に逆転写酵素およびｄＮＴＰを含有するチャンバーへと流入する。チャネルをベント（２９）する。その後インキュベーションを行い、そこで、任意のＲＮＡ標的を二本鎖の二重鎖体へと転換すると、ＰＣＲに適する二重鎖体となる。増幅の第２段階では、第２のバルブ（２７）を開き、試料流体をアニーリングチャンバー（１５）へと送入する。ここには、標的核酸配列に特異的なプライマー対が、試料中で迅速に溶解するガラス状マトリックス（スポット２３）においてプリントされている。次いで、試料を融解チャンバー（１６）へと送入し、ＴＡＱポリメラーゼおよび、標的配列を有するＤＮＡ二重鎖体の融解温度を超える温度のゲルマトリックス（スポット２２）中でガラス化させた改変「マスターミックス」を接触させる。次いで、融解チャンバーとアニーリングチャンバーとの間の往復作用（アニーリングチャンバーの天盤を形成するダイアフラム１７により推進される）により試料が流動し、各々の熱サイクルの結果として、標的配列が増幅され、アンプリコン産物の量が漸進的に倍増する。次いで、対合増幅チャンバー（１８）における規定回数の熱サイクル後、第３のバルブ（２８）を介して、産物を検出チャンバー（１９）内へと流動させ、ガラス状マトリックスまたはゲル状マトリックス中に蛍光プローブを含有するスポット１（２１）と接触させることによって任意のアンプリコンを検出する。プローブを再水和およびハイブリダイズさせた後、蛍光分光分析により、アンプリコンの存在について試料を探査することができる。この目的で、検出チャンバー上部には、光学ウインドウが施される。アッセイの結果を読み取り、記録したら、マイクロ流体カートリッジを取り外し、廃棄することができる。

上記の説明は概観であり、このように構築されたカートリッジは、示した通りの往復流動を伴うＰＣＲおよび熱サイクリングに限定されないが、上記の例は、カートリッジ製造工程において、最終的な組立て前の中間段階が必要であることについて、明確で簡潔な見取り図を与える。プリントの後、ゲル状スポットは、その後の積層化ステップ、溶接ステップ、または接着ステップにより、プラスチック製本体内に密封され、小径のベント孔（２９）および試料注入口を介する以外は本体の外部と連絡しない。その後、凍結乾燥に要求される通りに、プラスチック製本体を凍結させ、真空を適用すると、積層化構造が破壊されるかまたは熱的に歪む可能性があり、また、光学視ウインドウも閉鎖されうる。さらに、凍結乾燥の間に形成される細粉および微粒子が、真空から解放される間にマイクロ流体工作物を介して再分配される可能性があり、このため、例えば、第２の標的に特異的なプライマーにより、特定の標的に特異的な第１のアッセイ経路が汚染される。同様に、１つのチャネル内の陽性対照鋳型が、試料または陰性対照用に意図されるアッセイチャネル内へと偶発的に導入され、その結果として、品質管理問題が大きな比率で生じる可能性もある。製造工程後に高度の真空を適用してもまた、カートリッジ本体内の所定位置に設置された弾性ダイアフラムが損傷される。したがって、瓶内に船を入れる場合と同様、内部のチャネルおよびチャンバー内にオンボード試薬を封入しているマイクロ流体カードの製造工程に、凍結乾燥をどのようにして適応させうるかを想像することは困難であるか、または不可能でさえある。

本発明の組成物および方法によるゲル状スポットの使用は、Ｂａｒｌａｇ（ＷＯ２００６／０４２８３８）により提起されている、すべての試薬をパラフィンでコーティングし、このパラフィンを融解させて反応を開始させるものより、はるかに洗練されており、信頼できるものである。ゲル状スポットは、他の発明者らにより提起されている、凍結乾燥球体、打錠成形球体、または試薬球体に随伴する細粉および微粒子の問題を、信頼できる形で回避する。カードシート上における標的のチャンバーまたはチャネルの寸法が微小であることを踏まえれば、先行技術による、細粉、錠剤、または凍結乾燥試薬球体を正確に分別処理することは、技術的に困難または不可能であり、その後の処理の間に要求される操作は、これらの内容物を障害するおよび再分配することが確実であり、この場合も品質管理問題を複雑にする。

単純乾燥は、受容可能な代替法ではない。適切なマトリックスの不在下では、多くの生物学的試薬が乾燥に耐えないことを、多くの研究が示している。適切なマトリックスは、試行錯誤の過程により初めて発見されなければならず、そこには、多くの努力が費やされてきたが、成功を伴わないことが多い。ＴＡＱポリメラーゼは、このような例の１つである。ＴＡＱポリメラーゼを単純乾燥させる方法は、乾燥の６、３、２カ月後、または乾燥の１カ月後でさえ、活性を有する再水和可能な固体を結果としてもたらしたことがない。

本発明によれば、ゲル化可能なマトリックス中の液体試薬を、マイクロ流体カートリッジの各種表面へとまず分注し、そこで、その後の組立てステップを妨げないようにそれをゲル化させる。ゲル化可能マトリックスは、ガラス前駆体であり、カートリッジの製造後、さらに数日間または数週間にわたりこれを脱水させる。プリントヘッドにアクセス可能な表面を形成するカートリッジの任意の層は、スポッティングの候補層である。図３Ａ〜Ｄに示す通り、チャンバーまたはチャネルの天盤および床面には、各種の配置で、ガラス固体化ゲル状試薬スポット（３１ａ〜ｅ）をスポットすることができる。必要に応じて、スポットは、チャンバー内の壁面全体に伸展させることもでき、チャンバーの天盤または床面いずれかの上のより離散したスポットに制限することもできる。所望の場合は、層を積み重ねるとき、チャンバーの天盤上の１つのスポットを、そのチャンバーの床面上の他のスポットと対にすることにより、１つの層上に適用したスポットと、別の層上に適用したスポットとを近接させることができる。

認めることができる通り、組立て方法は、所望の目的：商業的に許容可能な保管寿命にわたる保存の安定性、自動式分注装置による正確な操作、最終的な組立ての間、カートリッジ上の試薬の偶発的な移動を防止する迅速なゲル化、マイクロ流体カートリッジを伴う気密パケットまたは気密パウチ内に密封された乾燥剤の影響下における、ｉｎ ｓｉｔｕのゆっくりとしたガラス化、ならびに最後に、生物学的試料またはその誘導体である流体中における迅速な再水和および試薬活性化を達成するための試薬の調合に依拠する。したがって、調合は、本発明のガラス化したゲル状試薬スポットを封入したマイクロ流体カートリッジへと試薬を適応させることにおける重要な考慮点である。

図２で説明したマイクロ流体カートリッジとは対照的な本発明のマイクロ流体カートリッジの別の実施形態では、試薬の構成およびスポットを、ペルチエ型ＰＣＲまたは等温増幅に適応させることができる。ペルチエ型増幅のプロトコールでは、最適な鎖伸長の滞留時間を該変性温度とアニーリング温度の間に有して、チャンバー内の温度が変性温度とアニーリング温度との間で熱サイクリングし得るように、単一のチャンバーを可逆的な加熱および冷却源ならびに熱交換膜（例えば、共譲渡されている米国特許出願第１０／８６２８２６号において記載されている）と接触させる。この配置により、熱サイクリングの間、増幅混合物を移動させる必要がなくなる。

ここで図４Ａを参照すると、オンボードで試薬をプリントしたマイクロ流体カートリッジのペルチエ駆動型ＰＣＲの構成が示されている。逆転写酵素をガラス化したゲル状試薬スポット（４１）として供給すること、および、まず標的ＲＮＡ抽出物を処理してｃＤＮＡコピーを形成することが仮定されている（左端のチャンバー４０）。必要な場合は、ｄＮＴＰおよび必要なプライマーもまた供給される。中央のチャンバーである「ペルチエ型増幅チャンバー」（４２）では、まず試料物質を使用して、２つの試薬スポットである、ＴＡＱポリメラーゼ試薬スポット（４３）ならびにプライマーを含有するスポット（４４）を溶解させる。ＴＡＱポリメラーゼスポットは、添加されたマグネシウム塩、ｄＮＴＰ、ＫＣｌ、および乾燥緩衝剤など、必要な補因子を含有しうる。次いで、試料の静置を保持しながら、単一のチャンバー内で熱サイクリングを実施する。必要なサイクル数の後、増幅反応産物を検出チャンバー（４６）へと移動させ、そこで、試薬スポット（４７）内のガラス化プローブを液体により溶解させる。ハイブリダイゼーション後、例えば、検出チャンバー上に取り付けた光学ウインドウを介する蛍光光度分析により、反応混合物中の任意のアンプリコンを検出する。検出チャンバーは、例えば、ＦＲＥＴ検出複合体の融解曲線を決定する目的で、温度勾配に有用な別個の加熱ブロックを包含しうる。

図４Ｂで例示される第２の例では、逆転写酵素を含有する試薬スポット（５０）を、ここでもまた必要に応じて使用し（逆転写酵素チャンバー５１内で）、任意のＲＮＡを、ＰＣＲに適するＤＮＡ鋳型へと転換する。例えば、各種の微生物学的またはウイルス学的診断アッセイでは、ＲＮＡが対象である。次いで、試料を、３つのガラス化させたゲル状試薬スポットを含有する、ペルチエ型増幅チャンバーと検出チャンバーとの組合せである右端のチャンバー（５２）へと進ませる。スポットはほぼ瞬間的に溶解し、そして該スポットは、補因子と共にＴＡＱポリメラーゼをガラス化させたゲル状試薬スポット（５３）、プライマー試薬スポット（５４）、およびプローブ試薬スポット（５５）からなる。この方式で、アンプリコンの増幅および同時的な検出に要求される完全な試薬の投入が達成される。リアルタイムＰＣＲを実施しようと所望する場合は、増幅チャンバー中にプローブの存在が必要である。これは、既に論じた（図２）増幅のためのペルチエ型加熱帯または別個の加熱帯が、物理的に分離されている場合である。したがって、本明細書で例示される通り、増幅チャンバーおよび検出チャンバーは、二重使用チャンバーであり得、必要に応じて、温度をサイクリングさせる加熱手段、ならびに蛍光をモニタリングする検出手段の双方と適合する。

図４Ｃは、例えば、ＰＣＲならびにＲＮＡ標的を検出するためのすべての試薬を単一のチャンバー内にプリントして、マイクロ流体チャンバー内のガラス化させたゲル状試薬スポットの組立てを圧縮しうることを示すものである。ＰＣＲ検出チャンバー（６０）内の逆転写酵素試薬スポット（６１）、ＴＡＱポリメラーゼ試薬スポット（６２）、プライマー試薬スポット（６３）、およびプローブ試薬スポット（６４）が示されている。逆転写酵素を使用することなく、ＤＮＡ標的を検出しうることは明らかである。

断面図を示す図４Ｄでは、ゲル状スポットの構成をより詳細に示している。この図では、左側の注入口を介して試料を導入する前に活性化させうる酵素であるＴＡＱポリメラーゼおよび逆転写酵素が、加熱ブロック（７１）と直接接触させずに、チャンバー（７０）の天盤上にスポットされている（７２、７３）。プライマー（７４）およびプローブ（７５）は、チャンバーの床面上にスポットされている。最終的な組立て製品が、チャンバー内に試薬を含有するように、組立て前は、天盤および床面の基板層が開放され、プリントにアクセス可能である。スポッティングマトリックス中にガラス化させたアモルファスゲル状複合体を使用することにより、各反応に応じてバッファー濃度および塩濃度を最適な濃度に調整した、典型的には２０μＬ未満の全反応容量中で迅速な溶解を達成する。加熱ブロックは、薄い熱交換膜を介して増幅チャンバーと接触し、適切に作動すれば、試薬の混合を促進する。

示される通り、試薬は、単一のチャンバー内にスポットすることもでき、複数のチャンバー内にスポットすることもできる。各種のスポット構成を用いることができる。変更すべき点は変更するものとして、一部のスポットが、チャンバーに対面する１つの基板層上にあり、他のスポットが、そのチャンバーに対面する別の基板層上にあるように、スポットを隣り合わせで、または隔てて配置することができる。好ましい構成では、別個の検出チャンバーを施し、１以上のプローブを、この検出チャンバー内にスポットすることができる。製造の間、カートリッジの各個別のチャネルに、特定のアッセイ適用にあつらえた、個々の試薬の固有パターンが施されうるように、一部の試薬をカートリッジの１つの層にスポットし、他の試薬を別の層にスポットする調整が容易である。この方式で、一連のアッセイを、単一のカートリッジ上で実施することができる。単発反応を実施することもでき、多重反応を実施することもできる。非対称ＰＣＲで有用であるように、プローブを非対称的な比率で供給する場合もある。順方向プローブおよび逆方向プローブを併せて混合して個別にスポットすることもでき、分離してスポットすることもできる。スポットは迅速にゲル化するため、一部の場合には、スポットが、互いの上に積み重なる場合もあり、接触が可能となる場合もある。システムに固有の柔軟性を使用すると、ネスト型ＰＣＲ用の構成もまた意図される。図３に例示されるスポットされたものの形状、ならびに図２に例示されるチャネルまたはチャンバーの形状のいずれも、適用要件を満たすように変化させることができる。

製剤
ここで、本発明者らは、ゲル試薬スポット内に含有される生物学的試薬を安定化させなければならず、組立ての間に迅速にゲル化しなければならず、組立て後の段階では漸進的なガラス化を可能にし、かつ、直ちに再水和しなければならない、ゲル試薬スポットの製剤を調べる。ここでもまた、本発明のマイクロ流体カートリッジを製造するのに使用される試薬を調合する際に考慮すべき点を例示するための例として、ＴＡＱポリメラーゼを選択する。しかし、これらの一般的な考慮点はまた、ＮＡＳＢＡなどにおいて使用されるＤＮＡポリメラーゼをゲル状に安定化させる際にも適用される。図５および６は、先行技術の代表例であり、「背景技術」（上記）で論じられている。

オンボードの試薬を伴うマイクロ流体デバイスを製造した数カ月後に、ＰＣＲにより標的核酸配列を増幅するためには、保存期間中に、有効レベルのＴＡＱ活性が保存されていなければならない。乾燥剤を伴い、ホイルで裏打ちした、密封式バッグ内にデバイスを包装することにより、室温で保存するための条件を、湿度の変動を防止するように改変することができる。ガラス状リオプロテクタントの前駆体および賦形剤を伴う緩衝混合物中のＴＡＱ試薬をデバイス上にスポットした後、デバイスをバッグ内に密封してから、完全な乾燥を達成する。この段階において、スポットは、ゲル様の粘稠度である。バッグ内に密封した後、結合水を試薬スポットから乾燥剤へと移動させることにより、ガラス化を継続させる。適合するガラス／賦形剤組成を選択することにより、この方法は、試料を添加してアッセイを行うこと以外は要求しない、内臓型マイクロ流体デバイス内に組み込まれた保存安定性のＴＡＱをもたらす。

糖、共リオプロテクタント、賦形剤、界面活性剤、およびキャリアタンパク質の数百の組合せを調べた後、トレハロースおよびメレチトースをさらなる研究用に選択した。約７５℃における多くのＴＡＱポリメラーゼのＶ_ｍａｘにより証拠立てられている通り、高温環境に活性を適応させた酵素は、高いＴ_ｄを有する可能性があり、その天然状態を最良の形で保存するためには、ガラス化した状態において、比較的高いＴ_ｇを有するガラスと結合させるべきであると、本発明者らは論証した。乾燥保存の間にＴＡＱの高度に折り畳まれた構造を安定化させ、界面の変性に起因する活性の喪失を防止するには、界面活性剤など、他の賦形剤が必要でありうることもまた、本発明者らは認識した。

トレハロースは、α，α−１，１結合により結合する２つのグルコース分子からなる二糖である。グルコシル残基の還元末端は互いと連結されているので、トレハロースは、還元力を有さない。トレハロースは、自然界に広く分布し、乾燥、凍結、および浸透圧など、各種のストレスから生物を保護する。乾燥に抵抗する、ブラインシュリンプおよびある種の線虫などの無水性生物は、それらの高トレハロース含量のために、水の喪失を忍容することが可能であり、トレハロースは、極限的な環境条件下で、膜ならびに他の高分子アセンブリーを安定化させるのに重要な役割を果たしている。トレハロースはまた、他の二糖と比較してガラス転移温度が高く、乾燥処理製品における安定剤としての長い歴史を有し（例えば、Ｃｒｏｗｅ ＪＨら、１９８４年、「Ｐｒｅｓｅｒｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅｓ ｉｎ ａｎｈｙｄｒｏｂｉｏｔｉｃ ｏｒｇａｎｉｓｍｓ ｔｈｅ ｒｏｌｅ ｏｆ ｔｒｅｈａｌｏｓｅ」、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２２３巻：７０１〜７０３頁；米国特許第４４５７９１６号、同第４２０６２００号、および同第４７６２８５７号；ならびに英国特許第ＧＢ２００９１９８号を参照されたい）、このために、スクロールより優れていると考えられている。トレハロースは、他のすべてのリオプロテクタントより優れていると広く考えられている（Ｃｏｌａｃｏ Ｃら、１９９２年、「Ｅｘｔｒａｏｒｄｉｎａｒｙ ｓｔａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｅｎｚｙｍｅｓ ｄｒｉｅｄ ｉｎ ｔｒｅｈａｌｏｓｅ： ｓｉｍｐｌｉｆｉｅｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｉｏｌｏｇｙ」、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、１０巻：１００７〜１１頁）。

メレチトース（α−Ｄ−グルコピラノシル−［１→３］−β−Ｄ−フルクトフラノシル−［２→１］−α−Ｄ−グルコピラノシド）水和物は、２つのグルコース分子と１つのフルクトース分子とからなる三糖であり、乾燥状態の分子量が５０４．４４Ｄａである。メレチトースは、アブラムシおよびコナジラミを含め、植物樹液を摂取する多くの昆虫により生成される。メレチトースは、保存炭水化物として、細胞内の水ポテンシャルを低減することにより浸透圧ストレスを軽減するので、これらの昆虫にとって有益である。メレチトースはまた、凍結保護剤としても機能することが広く公知であり、その容量オスモル濃度が低いために、多種多様の哺乳動物細胞を凍結保存するのに使用されている。加水分解すると、グルコースおよびツラノースが放出されるが、この三糖自体は非還元性であり、メイラードの褐変反応に対して比較的抵抗性である。メレチトースのガラス転移温度は、二糖のそれより高温である。

Ｔ_ｇの比較値を、以下の表Ｉに示す。

メレチトースのＴ_ｇ値は、Ｍｏｌｌｍａｎｎ， ＳＨら、２００６年、「Ｔｈｅ ｓｔａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｉｎｓｕｌｉｎ ｉｎ ｓｏｌｉｄ ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎｓ ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ ｍｅｌｅｚｉｔｏｓｅ ａｎｄ ｓｔａｒｃｈ」、Ｄｒｕｇ Ｄｅｖ Ｉｎｄｕｓｔ Ｐｈａｒｍａｃｙ、３２巻：７６５〜７７８頁から得た。他の値は、Ｇｒｅｅｎ ＪＬおよびＣＡ Ａｎｇｅｌｌ、１９８９年、「Ｐｈａｓｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓ ａｎｄ ｖｉｔｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｉｎ ｓａｃｃｈａｒｉｄｅ−ｗａｔｅｒ ｓｏｌｕｔｉｏｎｓ ａｎｄ ｔｈｅ ｔｒｅｈａｌｏｓｅ ａｎｏｍａｌｙ」、Ｊ Ｐｈｙｓ Ｃｈｅｍ、９３巻：２８８０〜８２頁； Ｋａｊｉｗａｒａ ＫおよびＦ Ｆｒａｎｋｓ、１９９７年、「Ｃｒｙｓｔａｌｌｉｎｅ ａｎｄ ａｍｏｒｐｈｏｕｓ ｐｈａｓｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｂｉｎａｒｙ ｓｙｓｔｅｍ ｗａｔｅｒ−ｒａｆｆｉｎｏｓｅ」、Ｊ Ｃｈｅｍ Ｓｏｃ Ｆａｒａｄａｙ Ｔｒａｎｓ、９３巻：１７７９〜１７８３頁； Ｓｌａｄｅ ＬおよびＨ Ｌｅｖｉｎｅ、１９８８年、「Ｎｏｎ−ｅｑｕｉｌｉｂｒｉｕｍ ｂｅｈａｖｉｏｒ ｏｆ ｓｍａｌｌ ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ−ｗａｔｅｒ ｓｙｓｔｅｍｓ」、Ｐｕｒｅ ＆ Ａｐｐｌ Ｃｈｅｍ、６０巻：１８４１〜６４頁；ならびにＨｅｌｄｍａｎ ＤＲおよびＤＢ Ｌｕｎｄ、２００６年、「Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｆｏｏｄ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ」（第２版）、ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ、Ｂｏｃａ Ｒａｔｏｎ ＦＬから得た。すべての出典が完全に一致するわけではないが、Ｔ_ｇが分子量と共に増大し、水和水と共に減少することは一般に認められる。

水和した糖で開始することにより、初期にはＴ_ｇが低値であり、製剤が液体であることが確実となるが、乾燥すると、Ｔ_ｇが上昇し、室温保存がアモルファスガラス形態でなされる場合の値に近づく。この過程の間、無水糖の結晶化が生じないことが望ましい。試行錯誤の過程により決定される通り、望ましくない結晶化を防止し、ＴＡＱポリメラーゼとより選択的に会合させるには、共溶媒賦形剤が有用である。

製剤１は、水溶液中（水中の最終濃度として）１．５％のメレチトース水和物、０．００５％のＰｏｌｙｏｘ ＷＳＲ−３０１（Ａｍｅｒｃｈｏｌ Ｃｏｒｐ、Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ ＮＹ）、０．１ｍｇ／ｍＬのＢＳＡ、および１０単位のＴＡＱポリメラーゼからなる。安定化剤を伴うＴＡＱ原液を調製した後、透明なゲル前駆体溶液を、３μＬのスポットにより、プラスチック製のマイクロ流体デバイスまたはマイクロ流体カードの内部表面へと適用した。プライマーとプローブとは個別に保存した。制御された室温で約１０分間以内にわたりスポットを乾燥させ、次いで、これらのプラスチック製デバイスを、乾燥剤の小袋と共に気密パウチ内に密封し、制御された室温で保存した。Ｐｏｌｙｏｘ ＷＳＲ−３０１は、長鎖のポリオキシエチレングリコールである（分子量４ＭＤａであり、「ＰＥＧ−９０Ｍ」とも称する）。すべての製剤には、分子生物学グレードの水を用いた。ウシ血清アルブミンが好ましいタンパク質キャリアであるが、本方法では、魚類ゼラチンもまた使用することができる。ベタインまたはリジンもまた使用することができる。

以下の製剤を調製して、２カ月間の安定性試験において、並列に比較した：製剤２は、１．５％のトレハロース、０．００５％のＰｏｌｙｏｘ ＷＳＲ−３０１、０．１ｍｇ／ｍＬのＢＳＡ、および１０単位のＴＡＱポリメラーゼとして混合した。製剤３は、１．５％のメレチトース水和物、０．１％のＦｉｃｏｌｌ（登録商標）４００、０．１ｍｇ／ｍＬのＢＳＡを含有した。製剤４は、１．５％のトレハロース、０．１％のフッ素系界面活性剤ＦＣ４４３０（３Ｍ Ｃｏｒｐ）、および０．１ｍｇ／ｍＬのＢＳＡを含有した。製剤５は、１．５％のトレハロース、０．１％のＰＥＧ８０００、および０．１ｍｇ／ｍＬのＢＳＡを含有した。製剤６は、１．５％のトレハロース、０．１％のＣｅｌｌｕｌｏｓｅ Ｇｕｍ ７ＬＦ、および０．１ｍｇ／ｍＬのＢＳＡを含有した。製剤７は、１．５％のラクチトール、０．００５％のＰｏｌｙｏｘ ＷＳＲ−３０１、および０．１ｍｇ／ｍＬのＢＳＡを含有した。これらの実験で使用されたＴＡＱは、１０Ｕ／ｕＬで調合されたＥｃｏｎｏＴａｑ（登録商標）Ｐｌｕｓ（Ｌｕｃｉｇｅｎ Ｃｏｒｐ、Ｍｉｄｄｌｅｔｏｎ ＷＩ）であった。

すべての製剤を、基準量のＴＡＱポリメラーゼと共に混合し、試験用のプラスチック表面上にスポットした。スポットした後、ゲル複合体前駆体スポットを、約１０分間で手早く配置し、次いで、過剰量の乾燥剤と共に防湿性の気密性パウチ内に密閉および密封し、ゲル状スポットを漸進的にガラス化させた。指示薬を伴うシリカゲルまたはベントナイトを使用することが典型的である。パウチは、乾燥した不活性雰囲気下で、熱処理により密封した。

２カ月間にわたる保存安定性試験のデータを、図７で報告する。結果は、新たに混合した「湿潤」を乾燥させることなく実施した増幅についての活性に対して標準化した蛍光比として示す。認めることができる通り、大半の製剤は、完全な効力を維持できなかった。しかし、メレチトース／Ｐｏｌｙｏｘ ＷＳＲ−３０１／ＢＳＡゲルベースの製剤である製剤１は、室温で２カ月間にわたる保存後において、基準湿潤増幅混合物を１．３倍上回る効能を示すことが観察される。これに対し、Ｆｉｃｏｌｌ ４００と共に調製したメレチトース水和物は、２カ月後において十分に安定的ではなく、Ｐｏｌｙｏｘ ＷＳＲ−３０１または各種の代替的賦形剤と共に調合したトレハロースも同様に、適切な安定保存期間をもたらすことができなかった。

これらの研究では、反応１回当たり５０００コピーを有するＳａｌｍｏｎｅｌｌａ ｐａｒａｔｙｐｈｉによるプライマー対を増幅のために使用した。再水和させた完全な増幅混合物を熱サイクリングし、分子ビーコンまたはＦＲＥＴプローブを使用して検出を完了させた。各反応について、Ｃｔおよび蛍光による収量比を測定した。長期乾燥保存後におけるメレチトース製剤１と、新鮮な湿潤反応物とを比較する、試料のリアルタイムＰＣＲ増幅曲線を、図８に示す。実線の曲線（８１）は、乾燥ＴＡＱ試薬の活性であり、点線の曲線（８２）は、基準の湿潤ＴＡＱ反応混合物の活性である。

図９では、安定保存期間の関数としての、製剤１のメレチトース挙動をさらに検討する。処理の初期期間では、ＴＡＱポリメラーゼ活性が、４週間にわたり着実に上昇することを観察できる。蛍光比とは、ここでもまた、リアルタイムＰＣＲで達成される蛍光の比である。本発明者らは、この結果をアーチファクトではないと解釈する；この結果は、製造工程および保存工程中に損傷したＴＡＱポリメラーゼ分子の原液から、天然状態のコンフォーマーが動員されることを表わしうる。理論により拘束されることなく述べると、天然状態の立体構造の場合もあるが、そうでない場合もあり、一部の変異体は他の変異体より活性が低い、コンフォーマーの混合物である凍結変性したＴＡＱ分子を、市販の凍結調製物はある割合で含有し、安定化手順は、損傷した分子のうちの少なくとも一部について、立体構造状態を修復する効果を及ぼすと考えられる。

図１０は、異なるプライマーシステムでの増幅において、３つの製剤を比較する。製剤１０Ａ、１０Ｂ、および１０Ｃを比較するが、１０Ａは上記の製剤３と同等であり、１０Ｂは上記の製剤１と同等であり、１０Ｃは上記の製剤５と同等である。認めることができる通り、１．５％のメレチトース／０．００５％のＰｏｌｙｏｘ ＷＳＲ−３０１／０．１％のＢＳＡを含有する製剤は、乾燥剤を伴う気密性パウチ内にゲル状スポットを密封する方法による乾燥保存後においてもまたすぐれており、段階的で漸進的な酵素の脱水が達成される。

図１１は、０．１％のＰＥＧ８０００と共にトレハロースを含有する製剤１１Ａを、０．１％のフッ素系界面活性剤ＦＣ４４３０と共にトレハロースを含有する製剤１１Ｂと比較する。驚くべきことに、フッ素系界面活性剤は、この２週間にわたる乾燥保存データにおいて、蛍光収量に対して顕著な効果を及ぼした。

マイクロ流体ＰＣＲでは、乾燥ＰＣＲ増強剤が有用であることが、さらに判明した。増強剤は、鋳型としてのＧＣに富むＤＮＡ基質の性能を改善すること、ならびに特異性および収量を増大させることを含め、複数の機能に資する。各種のアミド、スルホキシド、スルホン、およびジオールは、しばしば劇的にベタインを上回って、ＰＣＲの収量および特異性を改善することが公知である。ＤＭＳＯ、テトラメチレンスルホキシド、ホルムアミド、２−ピロリドンが例である。ｎ，ｎ−ジメチルホルムアミド（ｄｉｍｅｔｈｙｆｏｒｍａｍｉｄｅ）およびＤＭＳＯなど、一部の増強剤は、食塩水中で溶液を沸点近くまで加熱することを要求して、圧力およびガス放出の問題を付随させうる、熱サイクリングで要求される温度を低下させるのに使用されている。しかし、ここでは、ゲルまたはガラスなどの複合体としての乾燥形態で保存されうる増強剤が要求されている。

増強剤には、共リオプロテクタントとして有用なガラス形成剤が含まれる。これらの増強剤には、ｎ−ホルミルモルホリン（融点：２３℃）、δ−バレロラクタム（２−ピペリドン；融点：３８〜４０℃）、ε−カプロラクタム（融点：６９〜７０℃）、ならびに１，２−シクロペンタンジオール（融点：５４〜５６℃）が含まれる。ＰＶＰ−１０のガラス転移温度は６６℃であり、ＰＶＰ−４０のＴ_ｇは９９℃であることが報告されている。ＰＣＲを改善する機能を有する他のガラス形成剤には、リジンなどのアミノ酸、低分子量のアミド、グリコーゲンおよびイヌリンなどの炭水化物、アルブミン（ＨＳＡおよびＢＳＡの両方）、ならびに前出で論じた範囲の糖が含まれる。

（実施例１）
ＰＣＲ基準反応
湿潤基準反応として、凍結ＴＡＱポリメラーゼ原液を、表ＩＩに従って新たに調製したＰＣＲ試薬原液ミックスへ添加した。

ｒｔＰＣＲモニタリングを伴うＲｏｔｏｒ Ｇｅｎｅ（登録商標）Ｑ（Ｑｉａｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ ＣＡ）サーモサイクラーを使用して、反応混合物を熱サイクリングした。リアルタイムＰＣＲをモニタリングして、交点閾値（Ｃｔ）；すなわち、蛍光（ならびに、したがって、ＤＮＡ）の増大が指数関数的となるときのサイクル数の測定値と、蛍光収量（Ｆ_ＳＴＤ）とを得た。増幅が成功したときのすべてにおいて融解曲線を描き、標的アンプリコンの増幅が適正であることを検証した。終点検出もまた、使用することができる。必要に応じて、ＦＲＥＴ融解曲線も含めて、アンプリコンの同定を検証することもできる。

（実施例２）
乾燥試薬アッセイ
ＴＡＱポリメラーゼ、リオプロテクタント、共リオプロテクタント、およびタンパク質キャリアまたは賦形剤、ならびにＫＣｌ、Ｍｇ^２＋、およびｄＮＴＰを含有する反応ミックスを、約５倍濃度の原液として調製し、マイクロ流体カード内、またはプラスチック製表面上に、３ｕＬのスポットとしてスポットした。約１０分間以内にわたり室温でスポットをゲル化させ、次いで、Ｖａｐｏｒｆｌｅｘ Ｐｒｅｓｅｒｖａｔｉｏｎ Ｐａｃｋａｇｉｎｇ（ＬＰＳ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ、Ｍｏｏｎａｃｈｉｅ、ＮＪ）により供給されるホイルバッグ内に入れた。復元には、標的ＤＮＡおよびプライマーを含有する容量１５ｕＬを使用した。

次いで、復元した容量を、Ｒｏｔｏｒ Ｇｅｎｅ（登録商標）内のプライマーおよび鋳型の存在下で増幅した。Ｃｔおよび蛍光収量（Ｆ_Ｘ）を測定し、基準である湿潤ミックス（上記）と比較した。蛍光比（Ｆ_Ｘ／Ｆ_ＳＴＤ）を計算した。

メレチトース、トレハロース、ラクツロース、および他の糖は、Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ（Ｓｔ Ｌｏｕｉｓ ＭＯ）から入手した。Ｐｏｌｙｏｘ ＷＲＳ３０１（また、「ＰＥＧ ９０Ｍ」としても公知である、１％、粘度１６５０〜５５０ｃｐｓ、分子量４ＭＤａ）は、Ａｍｅｒｃｈｏｌ Ｃｏｒｐ、Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ ＮＹから供給を受けた。フッ素系界面活性剤ＦＣ−４４３０は、３Ｍ Ｃｏｒｐから入手した。可能な場合、試薬は分子生物学グレードであった。

（実施例３）
製剤１
表ＩＩＩに従い、マイクロ流体デバイス内でＴＡＱポリメラーゼを環境乾燥保存するための製剤を調製した。糖は、メレチトース水和物の２５％水溶液により添加した。本実施例では、賦形剤として０．０１％のＰｏｌｙｏｌ ＷＲＳ３０１を含有する原液を使用した。

結果として得られる透明のゲル複合体前駆体溶液を、ピペットにより、マイクロ流体デバイスの不動態化プラスチック製表面（ＰＥＴ）上にスポットした。約１０分間にわたりスポットを静置し、次いで、乾燥剤を伴うホイルバッグ内に密封した。発色性の指示薬を使用して、保存中の密封バッグの完全性を検証した。パウチを熱処理により密封してから保存した。

上記が、本発明の現時点で好ましい実施形態についての完全な説明であるが、各種の代替法、改変、および同等物を使用することが可能である。本明細書で言及され、優先度の高い文書として主張され、かつ／または任意の情報データシート中で列挙される、米国特許、米国特許出願公開、米国特許出願、外国特許、外国特許出願、ならびに非特許刊行物のすべては、参照によりそれらの全体において本明細書に組み込まれる。一般に、以下の特許請求の範囲において使用される用語は、該特許請求の範囲を、本明細書および該特許請求の範囲において開示される特定の実施形態に限定するものと解釈すべきではなく、このような主張がその権利を与えられる同等物の全範囲と共に可能なすべての実施形態を包含するものと解釈すべきである。したがって、本特許請求の範囲は、本開示により限定されるものではない。

Claims (22)

1. 分子的診断アッセイを実施するためのオンボード試薬を含有するマイクロ流体カートリッジであって、前記マイクロ流体カートリッジが、少なくとも１つのチャンバーまたはチャネルを有するマイクロ流体工作物を封入したプラスチック製本体を含み、前記チャンバーまたはチャネルが、試料注入ポートへと接続された上流の流体路と、ベントへと接続された下流の流体路を有し、
   ａ）第１の試薬を、プリントおよび安定化のための溶液と混合し、前記第１のプリントおよび安定化のための溶液の液滴を前記チャンバーまたはチャネル内にプリントし、前記液滴を乾燥させ、これにより、前記チャンバーまたはチャネル内に第１のゲル状試薬スポットを形成するステップであって、前記プリントおよび安定化のための溶液が、
   ｉ）１．０％〜１０％ ｗ／ｖの三糖と；
   ｉｉ）０．００１％〜０．１％ ｗ／ｖの高分子量ポリエチレングリコールまたはポリヒドロキシル化合物と；
   ｉｉｉ）０．００１％〜０．３％のフッ素系界面活性剤と；
   ｉｖ）０．１ｍｇ／ｍｌ〜１０ｍｇ／ｍｌのキャリアタンパク質と；
   ｖ）適合バッファーと
   を含む、ステップと；
   ｂ）第２の試薬を、第２のプリントおよび安定化のための溶液と混合し、前記第２のプリントおよび安定化のための溶液の液滴を前記チャンバーまたはチャネル内にプリントし、前記液滴を乾燥させ、これにより、その中に第２のゲル状試薬スポットを形成するステップと；
   ｃ）複数のオンボードゲル状試薬スポットが前記チャンバーまたはチャネル内にスポットされるまで、ステップｂの操作を継続するステップと；
   ｄ）カバー（複数可）を積層させるか、接着するか、超音波溶接するか、または他の方法で接合することにより、前記チャンバーまたはチャネルを、前記プラスチック製本体内に封入するステップと；
   ｅ）次いで、ゲル状試薬スポット（複数可）を封入した前記マイクロ流体カートリッジを、乾燥剤と共に乾燥雰囲気下で気密パウチ内に密封するステップであって、前記乾燥剤が、保存期間中に、前記ゲル状試薬スポット（複数可）をさらにガラス化させ、前記マイクロ流体カートリッジが、凍結乾燥させる必要も凍結保存する必要もなしに、６カ月以上の安定保存期間を有し、前記マイクロ流体カートリッジが、分子的診断アッセイに要求されるすべてのオンボード試薬を含有するステップと
   により前記チャンバーまたはチャネル内に作製された、少なくとも１つのガラス化したゲル状試薬スポットが、前記チャンバーまたはチャネル内に封入されている、マイクロ流体カートリッジ。
2. 前記第１のゲル状試薬スポットが、ＴＡＱポリメラーゼを含む、請求項１に記載のマイクロ流体カートリッジ。
3. 前記第２のゲル状試薬スポットが、プライマー（複数可）を含む、請求項１に記載のマイクロ流体カートリッジ。
4. 前記複数のゲル状試薬スポットが、プローブ（複数可）を含有するスポット、逆転写酵素を含有するスポット、ＲＮＡポリメラーゼを含有するスポット、ヌクレオチド三リン酸を含有するスポット、核酸鋳型を含有するスポット、またはバッファーを含有するスポットを含む、請求項１に記載のマイクロ流体カートリッジ。
5. 前記マイクロ流体工作物が、前記試料注入ポートと、前記ベントとの間で平行するアッセイ経路のアレイとして流体連絡される複数のチャンバーまたはチャネルを含み、前記各アッセイ経路内に、前記チャンバーまたはチャネル内にプリントされた少なくとも１つのガラス化したゲル状試薬スポットが存在する、請求項１に記載のマイクロ流体カートリッジ。
6. 前記各アッセイ経路内に、少なくとも１つの固有のプライマー対を含むガラス化したゲル状試薬スポットが存在する、請求項５に記載のマイクロ流体カートリッジ。
7. 前記各アッセイ経路内に、少なくとも１つのプローブを含むガラス化したゲル状試薬スポットが存在する、請求項５に記載のマイクロ流体カートリッジ。
8. 前記各アッセイ経路が、安定化マトリックス中にＴＡＱポリメラーゼを有するガラス化したゲル状試薬スポットを含む、請求項５に記載のマイクロ流体カートリッジ。
9. 取外し可能なマイクロ流体カートリッジのモザイク物を含み、前記モザイク物のうちの前記取外し可能なカートリッジの各々が、前記取外し可能なカートリッジの各々の中に作製された、少なくとも１つのガラス化したゲル状試薬スポットと共に形成される、工程中間体としての、請求項１または５に記載のマイクロ流体カートリッジのシート。
10. 前記取外し可能なマイクロ流体カートリッジの各々に、特定の分子的診断アッセイまたはアッセイセットのために形成されたガラス化したゲル状試薬スポットのパターンがプリントされている、請求項９に記載のマイクロ流体カートリッジのシート。
11. 各シートが、複数の診断アッセイまたはアッセイセットのために形成された、取外し可能なマイクロ流体カートリッジを含む、請求項１０に記載のマイクロ流体カートリッジのシート。
12. 前記少なくとも１つのガラス化したゲル状試薬スポットが、室温でガラスを形成するように選択されるＰＣＲ増強剤をさらに含む、請求項１または５に記載のマイクロ流体カートリッジ。
13. 前記ＰＣＲ増強剤が、ベタイン、ｎ−ホルミルモルホリン、δ−バレロラクタム（２−ピペリドン）、ε−カプロラクタム、１，２−シクロペンタンジオール、ＰＶＰ−１０、ＰＶＰ−４０、またはこれらの混合物である、請求項１２に記載のマイクロ流体カートリッジ。
14. 前記少なくとも１つのガラス化したゲル状試薬スポットが、イヌリン、セルロース、誘導体化セルロース、ポリビニルピロリドン、リジン、アルギニン、またはメイラード反応阻害剤をさらに含む、請求項１または５に記載のマイクロ流体カートリッジ。
15. 乾燥剤と共に乾燥雰囲気下で気密パウチ内に個別包装され、表示ならびに使用のための指示書を含む、請求項１〜１４のいずれか一項に記載のマイクロ流体カートリッジを含むキット。
16. 核酸アッセイ試薬を、マイクロ流体デバイスのチャンバーまたはチャネル内で凍結乾燥させることなく、水の凍結温度を超える温度のゲル様ガラス内で安定化させて保存する方法であって、
    ａ）前記核酸アッセイ試薬を、
    ｉ）１．０％〜１０％ ｗ／ｖの二糖または三糖と；
    ｉｉ）０．００１％〜０．１％ ｗ／ｖの高分子量ポリエチレングリコールと；
    ｉｉｉ）０．００１％〜０．３％のフッ素系界面活性剤と；
    ｉｖ）０．１ｍｇ／ｍｌ〜１０ｍｇ／ｍｌのキャリアタンパク質と；
    ｖ）適合バッファーと
    からなる水溶液と混合して、これにより複合体ガラス前駆体溶液を形成するステップと；
    ｂ）前記アッセイに有効な量の前記核酸アッセイ試薬を含有する、前記複合体ガラス前駆体溶液の液滴を、前記マイクロ流体デバイス内に沈着させるステップと；
    ｃ）前記液滴を、制御された室温、または２０℃で乾燥させて、前記表面上にゲル状スポットを形成するステップと；
    ｄ）次いで、前記マイクロ流体カートリッジ内の前記ゲル状スポットを、乾燥剤と共に乾燥雰囲気下で気密パウチ内に密閉および密封するステップであって、前記乾燥剤が、保存期間中に、前記ゲル状スポットをさらにガラス化させるステップと
    を含む方法。
17. 前記二糖がトレハロースから選択され、前記三糖がメレチトースまたはラフィノースから選択される、請求項１６に記載の方法。
18. 前記高分子量ポリエチレングリコールが、０．１〜５ＭＤａの分子量を有し、直鎖状のポリオキシエチレングリコールまたは分岐鎖状のポリオキシエチレングリコールである、請求項１６に記載の方法。
19. 前記キャリアタンパク質が、ウシ血清アルブミンまたは魚類ゼラチンである、請求項１６に記載の方法。
20. 前記フッ素系界面活性剤が、非イオン性フルオロアルキル系界面活性剤であり、短鎖のアルキル側鎖を有することが好ましい、請求項１６に記載の方法。
21. 前記フッ素系界面活性剤が、フッ素系界面活性剤ＦＣ−４４３０である、請求項１６に記載の方法。
22. 前記チャンバーまたはチャネルを不動態化してから、前記液滴を沈着させるステップをさらに含む、請求項１６に記載の方法。