JP5678045B2 - 高感度バイオマーカーパネル - Google Patents
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- G01N33/6863—Cytokines, i.e. immune system proteins modifying a biological response such as cell growth proliferation or differentiation, e.g. TNF, CNF, GM-CSF, lymphotoxin, MIF or their receptors
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Description
本明細書において言及する全ての出版物、特許および特許出願は、各個別の出版物、特許または特許出願が引用により組み込まれたと具体的かつ個別に示されたのと同程度に、引用することにより本明細書に組み込まれる。
I.緒言
II.本発明の方法および組成物による高感度検出に関する分子
A.総則
B.マーカー
III.ラベル
A.結合パートナー
1.抗体
B.蛍光部分
1.色素
2.量子ドット
C.結合パートナー−蛍光部分組成物
IV.分子の高感度分析
A.試料
B.試料調製
C.件の分子の検出および濃度の測定
V.分子の高感度分析に適した機器およびシステム
A.装置/システム
B.単一粒子分析器
1.電磁放射線源
2.キャピラリーフローセル
3.駆動力
4.検出器
C.サンプリングシステム
D.試料調製システム
E.試料の回収
VI.分子の高感度分析を用いる方法
A.方法
B.例示的マーカー
1.心臓障害
2.感染症
3.サイトカイン
a.インターロイキン1
b.インターロイキン4
c.インターロイキン6
4.炎症マーカー
a.ロイコトリエンE4
b.TGFβ
5.Akt1
6.Fasリガンド
7.VEGF
8.アミロイドベータタンパク質
C.多重マーカーパネル
1.多重バイオマーカーパネル
2.混合マーカーパネル
D.検出およびモニタリング
E.心血管バイオマーカーパネル
F.臨床的方法
VII.キット
VIII.実施例
本発明は、単一分子の高感度検出のための、および試料中の分子濃度の測定のための機器、キット、組成物および方法を提供する。いくつかの態様において、本発明の機器、組成物、方法およびキットの感度および精度は、以下のものから選択される要素の組み合わせによって達成され得るが、これらの要素に限定されない。適切な波長および出力を有する電磁波源、適切なインタロゲーション・スペース寸法、高開口数のレンズ、単一光子を検出できる検出器、ならびに単一分子をカウントするためのデータ分析システム。本発明の機器は、「単一分子検出器」または「単一粒子検出器」と呼ばれ、用語「単一分子分析器」および「単一粒子分析器」によっても包含される。いくつかの態様において、本発明のキットおよび方法の感度および精度は、本発明の機器を、以下のものから選択される要素の組み合わせと一緒に用いることによって達成されるが、これらの要素に限定されない。単一分子のレベルでの分子の検出を可能にする特性を示す、分子に対するラベル、および本明細書に記載の機器においてラベルを分析する方法。
本発明の機器、キットおよび方法は、複数の異なる種類の単一分子の濃度の高感度検出および決定に使用可能である。特に、機器、キットおよび方法は、生物学的状態のマーカー濃度の高感度検出および決定において有用である。「単一分子の検出」は、本明細書においてその用語を用いる場合、直接的検出および間接的検出の両方を指す。例えば、単一分子を蛍光ラベルでラベリングしてよく、分子−ラベル複合体を本明細書に記載の機器において検出してよい。別法として、単一分子を蛍光ラベルでラベリングしてよく、その後、蛍光ラベルを単一分子から分離し、ラベルを本明細書に記載の機器において検出する。用語「単一分子の検出」は、両方の検出形態を包含する。
本発明の分析器および関連する方法を用いて検出され得る分子の例として以下のものが挙げられる:タンパク質、核酸、炭水化物等の生体高分子および有機および無機の小分子。本明細書に記載の機器、キットおよび方法は特に、生物学的試料中のタンパク質および小分子の単一分子の検出、ならびに試料中のそのような分子の濃度の決定において有用である。
いくつかの態様において、本発明は、生物学的マーカーの高感度検出、ならびに診断、予後診断および/または治療方法の決定におけるそのようなマーカーの使用のための組成物および方法を提供する。
研究および診断の両方に対して、サイトカインは、多数の状態、疾患、病理等のマーカーとして有用であり、本発明の組成物および方法は、サイトカインを検出および定量するためのラベル、ならびにサイトカインの正常レベルおよび異常レベルを決定するためにそのようなラベルを用いる方法、ならびにそのようなレベルに基づく診断、予後診断および/または治療の決定の方法を含む。
成長因子には以下のものが含まれる。アンフィレグリン、LRIG3、ベータセルリン、ニューレグリン−1/NRG1、EGF、ニューレグリン−3/NRG3、エピゲン、TGF−α、エピレグリン、TMEFF1/トモレグリン−1、HB−EGF、TMEFF2、LRIG1等のEGFリガンド;EGF R、ErbB3、ErbB2、ErbB4等のEGF R/ErbB受容体ファミリー;FGFリガンドである酸性FGF、FGF−12、塩基性FGF、FGF−13、FGF−3、FGF−16、FGF−4、FGF−17、FGF−5、FGF−19、FGF−6、FGF−20、FGF−8、FGF−21、FGF−9、FGF−22、FGF−10、FGF−23、FGF−11、KGF/FGF−7、FGF受容体であるFGF R1−4、FGF R3、FGF R1、FGF R4、FGF R2、FGF R5、FGF調節因子であるFGF−BP等のFGFファミリー;ヘッジホッグファミリーであるデザートヘッジホッグ、ソニックヘッジホッグ、インディアンヘッジホッグ;ヘッジホッグ関連分子および調節因子であるBOC、GLI−3、CDO、GSK−3α/β、DISP1、GSK−3α、Gas1、GSK−3β、GLI−1、Hip、GLI−2;IGFファミリーであるIGFリガンドのIGF−I、IGF−II、IGF−I受容体(CD221)IGF−I R、およびIGF結合タンパク質(IGFBP)ファミリーであるALS、IGFBP−5、CTGF/CCN2、IGFBP−6、Cyr61/CCN1、IGFBP−L1、エンドカン、IGFBP−rp1/IGFBP−7、IGFBP−1、IGFBP−rP10、IGFBP−2、NOV/CCN3、IGFBP−3、WISP−1/CCN4、IGFBP−4;受容体型チロシンキナーゼであるAxl、FGF R4、C1q R1/CD93、FGF R5、DDR1、Flt−3、DDR2、HGF R、Dtk、IGF−I R、EGF、R IGF−II R、Eph、INSRR、EphA1、インスリンR/CD220、EphA2、M−CSF R、EphA3、Mer、EphA4、MSP R/Ron、EphA5、MuSK、EphA6、PDGF Rα、EphA7、PDGF Rβ、EphA8、Ret、EphB1、RTK様オーファン受容体1/ROR1、EphB2、RTK様オーファン受容体2/ROR2、EphB3、SCF R/c−kit、EphB4、Tie−1、EphB6、Tie−2、ErbB2、TrkA、ErbB3、TrkB、ErbB4、TrkC、FGF、R1−4 VEGF R、FGF R1、VEGF R1/Flt−1、FGF R2、VEGF R2/KDR/Flk−1、FGF R3、VEGF R3/Flt−4;プロテオグリカンおよびプロテオグリカン調節因子であるアグリカン、ミメカン、アグリン、NG2/MCSP、バイグリカン、オステオアドヘリン(Osteoadherin)、デコリン、ポドカン、DSPG3、δ−サルコグリカン、エンドカン、シンデカン−1/CD138、エンドグリカン、シンデカン−2、エンドレペリン/パールカン、シンデカン−3、グリピカン2、シンデカン−4、グリピカン3、テスチカン(Testican)1/SPOCK1、グリピカン5、テスチカン2/SPOCK2、グリピカン6、テスチカン3/SPOCK3、ルミカン、バーシカン、プロテオグリカン調節因子、アリールスルファターゼA/ARSA、グルコサミン(N−アセチル)−6−スルファターゼ/GNS、エキソストシン−ライク2/EXTL2、HS6ST2、エキソストシン−ライク3/EXTL3、イズロン酸2−スルファターゼ/IDS、GalNAc4S−6ST;SCF、Flt−3リガンドおよびM−CSF Flt−3、M−CSF R、Flt−3リガンド、SCF、M−CSF、SCF R/c−kit;TGF−βスーパーファミリー(炎症マーカーに関して列挙されるものと同様);VEGF/PDGFファミリーであるニューロピリン−1、PlGF、ニューロピリン−2、PlGF−2、PDGF、VEGF、PDGF Rα、VEGF−B、PDGF Rβ、VEGF−C、PDGF−A、VEGF−D、PDGF−AB、VEGF R、PDGF−B、VEGF R1/Flt−1、PDGF−C、VEGF R2/KDR/Flk−1、PDGF−D、VEGF R3/Flt−4;Wnt関連分子、ディックコップ(Dickkopf)タンパク質およびWnt阻害因子であるDkk−1、Dkk−4、Dkk−2、Soggy−1、Dkk−3、WIF−1、Frizzledおよび関連タンパク質であるFrizzled−1、Frizzled−8、Frizzled−2、Frizzled−9、Frizzled−3、sFRP−1、Frizzled−4、sFRP−2、Frizzled−5、sFRP−3、Frizzled−6、sFRP−4、Frizzled−7、MFRP;WntリガンドであるWnt−1、Wnt−8a、Wnt−2b、Wnt−8b、Wnt−3a、Wnt−9a、Wnt−4、Wnt−9b、Wnt−5a、Wnt−10a、Wnt−5b、Wnt−10b、Wnt−7a、Wnt−11、Wnt−7b;他のWnt関連分子であるAPC、クレメン−2、アキシン−1、LRP−1、β−カテニン、LRP−6、ディシブルド(Dishevelled)−1、ノリン(Norrin)、ディシブルド−3、PKCβ1、グリピカン3、ピゴパス(Pygopus)−1、グリピカン5、ピゴパス−2、GSK−3α/β、R−スポンジン(Spondin)1、GSK−3α、R−スポンジン2、GSK−3β、R−スポンジン3、ICAT、RTK様オーファン受容体1/ROR1、クレメン−1、RTK様オーファン受容体2/ROR、および他の成長因子であるCTGF/CCN2、β−NGF、Cyr61/CCN1、ノリン、DANCE、NOV/CCN3、EG−VEGF/PK1、オステオクリン、ヘパソシン、PD−ECGF、HGF、プログラヌリン、LECT2、トロンボポエチン、LEDGF、WISP−1/CCN4。
炎症マーカーにはICAM−1、RANTES、MIP−2、MIP−1−β、MIP−1−αおよびMMP−3が含まれる。更なる炎症マーカーには、インテグリンであるα1β1、α2β1、α3β1、α4β1、α5β1、α6β1、α7β1、α8β1、α9β1、αVβ1、α4β7、α6β4、αDβ2、αLβ2、αMβ2、αVβ3、αVβ5、αVβ6、αVβ8、αXβ2、αIIbβ3、αIELbβ7、β−2インテグリン、β−3インテグリン、β−2インテグリン、β−4インテグリン、β−5インテグリン、β−6インテグリン、β−7インテグリン、β−8インテグリン、α−1インテグリン、α−2インテグリン、α−3インテグリン、α−4インテグリン、α−5インテグリン、α−6インテグリン、α−7インテグリン、α−8インテグリン、α−9インテグリン、α−Dインテグリン、α−Lインテグリン、α−Mインテグリン、α−Vインテグリン、α−Xインテグリン、α−IIbインテグリン、αIELbインテグリン等の接着分子;βIG−H3、メルシン(Melusin)、CD47、MEPE、CD151、オステオポンチン、IBSP/シアロタンパク質II、RAGE、IGSF8等のインテグリン関連分子;E−セレクチン、P−セレクチン、L−セレクチン等のセレクチン;CD34、GlyCAM−1、MadCAM−1、PSGL−1、ビトロネクチック、ビトロネクチン受容体、フィブロネクチン、ビトロネクチン、コラーゲン、ラミニン、ICAM−1、ICAM−3、BL−CAM、LFA−2、VCAM−1、NCAM、PECAM等のリガンドが含まれる。更なる炎症マーカーには、IFN−α、IFN−β、IFN−ε、−κ、−τ、−ζ、IFN−ω、IFN−γ、IL29、IL28AおよびIL28B、IL−1、IL−1αおよびβ、IL−2、IL−3、IL−4、IL−5、IL−6、IL−7、IL−8、IL−9、IL−10、IL−11、IL−12、IL−13、IL−14、IL−15、IL−16、IL−17、IL−18、IL−19、IL−20、IL−21、IL−22、IL−23、IL−24、IL−25、IL−26、IL−27、IL−28、IL−29、IL−30、TCCR/WSX−1等のサイトカインが含まれる。更なる炎症マーカーには、共通β鎖、IL−3Rα、IL−3Rβ、GM−CSF R、IL−5Rα、共通γ鎖/IL−2Rγ、IL−2Rα、IL−9R、IL−2Rβ、IL−4R、IL−21R、IL−15Rα、IL−7Rα/CD127、IL−1ra/IL−1F3、IL−1R8、IL−1RI、IL−1R9、IL−1RII、IL−18Rα/IL−1R5、IL−1R3/IL−1R AcP、IL−18Rβ/IL−1R7、IL−1R4/ST2 SIGIRR、IL−1R6/IL−1R rp2、IL−11Rα、IL−31RA、CNTF Rα、レプチンR、G−CSF R、LIF Rα、IL−6R、OSM Rβ、IFN−α/βR1、IFN−α/βR2、IFN−γR1、IFN−γR2、IL−10Rα、IL−10Rβ、IL−20Rα、IL−20Rβ、IL−22R、IL−17R、IL−17RD、IL−17RC、IL−17B R、IL−13Rα2、IL−23R、IL−12Rβ1、IL−12Rβ2、TCCR/WSX−1、IL−13Rα1等のサイトカイン受容体が含まれる。更なる炎症マーカーには、CCL−1、CCL−2、CCL−3、CCL−4、CCL−5、CCL−6、CCL−7、CCL−8、CCL−9、CCL−10、CCL−11、CCL−12、CCL−13、CCL−14、CCL−15、CCL−16、CCL−17、CCL−18、CCL−19、CCL−20、CCL−21、CCL−22、CCL−23、CCL−24、CCL−25、CCL−26、CCL−27、CCL−28、MCK−2、MIP−2、CINC−1、CINC−2、KC、CINC−3、LIX、GRO、胸腺ケモカイン−1、CXCL−1、CXCL−2、CXCL−3、CXCL−4、CXCL−5、CXCL−6、CXCL−7、CXCL−8、CXCL−9、CXCL−10、CXCL−11、CXCL−12、CXCL−13、CXCL−14、CXCL−15、CXCL−16、CXCL−17、XCL1、XCL2、ケメリン(Chemerin)等のケモカインが含まれる。更なる炎症マーカーには、CCR−1、CCR−2、CCR−3、CCR−4、CCR−5、CCR−6、CCR−7、CCR−8、CCR−9、CCR−10、CXCR3、CXCR6、CXCR4、CXCR1、CXCR5、CXCR2、Chem R23等のケモカイン受容体が含まれる。更なる炎症マーカーには、TNF−α、4−1BBリガンド/TNFSF9、LIGHT/TNFSF14、APRIL/TNFSF13、リンホトキシン、BAFF/TNFSF13B、リンホトキシンβ/TNFSF3、CD27リガンド/TNFSF7、OX40リガンド/TNFSF4、CD30リガンド/TNFSF8、TL1A/TNFSF15、CD40リガンド/TNFSF5、TNF−α/TNFSF1A、EDA、TNF−β/TNFSF1B、EDA−A2、TRAIL/TNFSF10、Fasリガンド/TNFSF6、TRANCE/TNFSF11、GITRリガンド/TNFSF18、TWEAK/TNFSF12等の腫瘍壊死因子(TNF)が含まれる。更なる炎症マーカーには、4−1BB/TNFRSF9、NGF R/TNFRSF16、BAFF R/TNFRSF13C、オステオプロテジェリン/TNFRSF11B、BCMA/TNFRSF17、OX40/TNFRSF4、CD27/TNFRSF7、RANK/TNFRSF11A、CD30/TNFRSF8、RELT/TNFRSF19L、CD40/TNFRSF5、TACI/TNFRSF13B、DcR3/TNFRSF6B、TNF RI/TNFRSF1A、DcTRAIL R1/TNFRSF23、TNF RII/TNFRSF1B、DcTRAIL R2/TNFRSF22、TRAIL R1/TNFRSF10A、DR3/TNFRSF25、TRAIL R2/TNFRSF10B、DR6/TNFRSF21、TRAIL R3/TNFRSF10C、EDAR、TRAIL R4/TNFRSF10D、Fas/TNFRSF6、TROY/TNFRSF19、GITR/TNFRSF18、TWEAK R/TNFRSF12、HVEM/TNFRSF14、XEDAR等のTNFスーパーファミリー受容体が含まれる。更なる炎症マーカーには、FADD、TRAF−2、RIP1、TRAF−3、TRADD、TRAF−4、TRAF−1、TRAF−6等のTNFスーパーファミリー修飾因子が含まれる。更なる炎症マーカーには急性期反応物質および急性期タンパク質が含まれる。更なる炎症マーカーには、アクチビン、アクチビンA、アクチビンB、アクチビンAB、アクチビンC、BMP(骨形成タンパク質)、BMP−2、BMP−7、BMP−3、BMP−8、BMP−3b/GDF−10、BMP−9、BMP−4、BMP−10、BMP−5、BMP−15/GDF−9B、BMP−6、デカペンタプレジック、成長/分化因子(GDF)、GDF−1、GDF−8、GDF−3、GDF−9 GDF−5、GDF−11、GDF−6、GDF−15、GDF−7、GDNFファミリーリガンド、アルテミン、ニュールツリン、GDNF、ペルセフィン(Persephin)、TGF−β、TGF−β、TGF−β3、TGF−β1、TGF−β5、LAP(TGF−β1)、潜在型TGF−β bp1、潜在型TGF−β1、潜在型TGF−β bp2、TGF−β1.2、潜在型TGF−β bp4、TGF−β2、レフティ(Lefty)、MIS/AMH、レフティ−1、ノーダル(Nodal)、レフティ−A、アクチビンRIA/ALK−2、GFRα−1/GDNF Rα−1、アクチビンRIB/ALK−4、GFRα−2/GDNF Rα−2、アクチビンRIIA、GFRα−3/GDNF Rα−3、アクチビンRIIB、GFRα−4/GDNF Rα−4、ALK−1、MIS RII、ALK−7、Ret、BMPR−IA/ALK−3、TGF−βRI/ALK−5、BMPR−IB/ALK−6、TGF−β RII、BMPR−II、TGF−β RIIb、エンドグリン/CD105、TGF−β RIII等のTGF−βスーパーファミリーリガンドが含まれる。更なる炎症マーカーには、アムニオンレス(Amnionless)、NCAM−1/CD56、BAMBI/NMA、ノギン(Noggin)、BMP−1/PCP、NOMO、カロンテ(Caronte)、PRDC、ケルベロス(Cerberus)1、SKI、コーディン、Smad1、コーディン−ライク1、Smad2、コーディン−ライク2、Smad3、COCO、Smad4、CRIM1、Smad5、クリプト、Smad7、クロスベインレス(Crossveinless)−2、Smad8、クリプティック(Cryptic)、SOST、DAN、潜在型TGF−β bp1、デコリン、潜在型TGF−β bp2、FLRG、潜在型TGF−β bp4、フォリスタチン、TMEFF1/トモレグリン−1、フォリスタチン−ライク1、TMEFF2、GASP−1/WFIKKNRP、TSG、GASP−2/WFIKKN、TSK、グレムリン、バソリン(Vasorin)等のTGF−βスーパーファミリー調節因子が含まれる。更なる炎症マーカーには、アンフィレグリン、LRIG3、ベータセルリン、ニューレグリン−1/NRG1、EGF、ニューレグリン−3/NRG3、エピゲン、TGF−α、エピレグリン、TMEFF1/トモレグリン−1、HB−EGF、TMEFF2、LRIG1等のEGFリガンドが含まれる。更なる炎症マーカーには、EGF R、ErbB3、ErbB2、ErbB4等のEGF R/ErbB受容体ファミリーが含まれる。更なる炎症マーカーにはフィブリノゲンが含まれる。更なる炎症マーカーにはSAAが含まれる。更なる炎症マーカーには、α.1−抗トリプシン、C反応性タンパク質(CRP)、α.2−マクログロブリン、グリア線維酸性タンパク質(GFAP)、Mac−1、F4/80等のグリアマーカーが含まれる。更なる炎症マーカーにはミエロペルオキシダーゼが含まれる。更なる炎症マーカーには、C3d、C1q、C5、C4d、C4bpおよびC5a−C9等の補体マーカーが含まれる。更なる炎症マーカーには、HLA−DRおよびHLA−A、D、C等の主要組織適合遺伝子複合体(MHC)糖タンパク質が含まれる。更なる炎症マーカーには、CR3受容体、MHC I、MHC II、CD31、CD11a、CD11b、CD11c、CD68、CD45RO、CD45RD、CD18、CD59、CR4、CD45、CD64およびCD44等のミクログリアマーカーが含まれる。更なる炎症マーカーには、α.2マクログロブリン受容体、線維芽細胞成長因子、Fc γ RI、Fc γ RII、CD8、LCA(CD45)、CD18、CD59、Apo J、クラスタリン、2型プラスミノーゲン活性化因子阻害剤、CD44、マクロファージコロニー刺激因子受容体、MRP14、27E10、4−ヒドロキシノネナール−タンパク質共役(または複合体)、I.κ.B、NF.κ.B、cPLA.sub.2、COX−2、マトリクス・メタロプロテイナーゼ、膜脂質過酸化およびATPアーゼ活性が含まれる。HSPC228、EMP1、CDC42、TLE3、SPRY2、p40BBP、HSPC060もしくはNAB2、またはHSPA1A、HSPA1B、MAPRE2およびOAS1発現のダウンレギュレーション、TACE/ADAM17、α−1−酸性糖タンパク質、アンジオポエチン−1、MIF、アンジオポエチン−2、CD14、β−ディフェンシン2、MMP−2、ECF−L/CHI3L3、MMP−7、EGF、MMP−9、EMAP−II、MSP、EN−RAGE、酸化窒素、エンドセリン−1、オステオ
アクチビン/GPNMB、FPR1、PDGF、FPRL1、ペントラキシン3/TSG−14、FPRL2、Gas6、PLUNC、GM−CSF、RAGE、S100A10、S100A8、S100A9、HIF−1α、P物質、TFPI、TGF−β1、TIMP−1、TIMP−2、TIMP−3、TIMP−4、TLR4、LBP、TREM−1、ロイコトリエンA4、加水分解酵素TSG−6、リポカリン−1、uPA、M−CSF、ならびにVEGF。
腫瘍マーカーには、EGF、TNF−α、PSA、VEGF、TGF−β1、FGFb、TRAILおよびTNF−RI(p55)が含まれる。
マーカーは、件の特定の表現型の状態の存在を示し得る。表現型の状態の例として以下のものが挙げられる。環境の変化、薬物治療、遺伝子操作もしくは遺伝子変異、傷害、食物の変化、加齢、または1つの生物もしくは生物の網もしくは亜網の他の何らかの(1つまたは複数の)特性に起因する表現型。
いくつかの態様において、本発明は、分子(例えばマーカー)の高感度検出および定量のためのラベルを含む方法および組成物を提供する。
検出すべき分子、例えばマーカーの形態に対して必要な特異性(または選択性)を有する任意の適切な結合パートナーを用いてよい。分子、例えばマーカーがいくつかの異なる形態を有する場合、様々な特異性の結合パートナーが可能である。適切な結合パートナーは当該技術分野において公知であり、それには抗体、アプタマー、レクチンおよび受容体が含まれる。有用かつ多用途な結合パートナーの種類は抗体である。
いくつかの態様において、結合パートナーは、検出すべき分子に対して特異的な抗体である。用語「抗体」は、本明細書において用いられる場合、幅広い意味を有する用語であり、その通常の意味で用いられ、その用語は、天然抗体および非天然抗体を意味することが含まれるがこれらに限定されず、例えば、一本鎖抗体、キメラ抗体、二機能性抗体およびヒト化抗体、ならびにそれらの抗原結合性フラグメントが含まれる。エピトープまたは抗体が取り上げられる分子領域の選択が、例えば分子(存在する場合)または全体(例えば、全て又は実質的に全ての分子)の様々な形態に対するその特異性を決定するであろうことが理解されるであろう。
本発明において用いられるラベルのいくつかの態様において、結合パートナー、例えば抗体を、蛍光部分に結合させる。蛍光部分の蛍光は、本明細書に記載の単一分子検出器等の単一分子検出器における検出を可能にするのに十分であろう。
いくつかの態様において、本発明は蛍光色素分子を含む蛍光部分を使用する。いくつかの態様において、本発明は、蛍光色素分子であって、その分子の励起波長で光を放射するレーザーによって刺激すると、平均で少なくとも約50個の光子を放出することができる蛍光色素分子を使用し、レーザーは、その分子を含む直径が約5ミクロン以上のスポットに焦点が合わせられ、レーザーによってスポットに向けられる全エネルギーは、約3マイクロジュール以下である。いくつかの態様において、本発明は、蛍光色素分子であって、その分子の励起波長で光を放射するレーザーによって刺激すると、平均で少なくとも約75個の光子を放出することができる蛍光色素分子を使用し、レーザーは、その分子を含む直径が約5ミクロン以上のスポットに焦点が合わせられ、レーザーによってスポットに向けられる全エネルギーは、約3マイクロジュール以下である。いくつかの態様において、本発明は、蛍光色素分子であって、その分子の励起波長で光を放射するレーザーによって刺激すると、平均で少なくとも約100個の光子を放出することができる蛍光色素分子を使用し、レーザーは、その分子を含む直径が約5ミクロン以上のスポットに焦点が合わせられ、レーザーによってスポットに向けられる全エネルギーは、約3マイクロジュール以下である。いくつかの態様において、本発明は、蛍光色素分子であって、その分子の励起波長で光を放射するレーザーによって刺激すると、平均で少なくとも約150個の光子を放出することができる蛍光色素分子を使用し、レーザーは、その分子を含む直径が約5ミクロン以上のスポットに焦点が合わせられ、レーザーによってスポットに向けられる全エネルギーは、約3マイクロジュール以下である。いくつかの態様において、本発明は、蛍光色素分子であって、その分子の励起波長で光を放射するレーザーによって刺激すると、平均で少なくとも約200個の光子を放出することができる蛍光色素分子を使用し、レーザーは、その分子を含む直径が約5ミクロン以上のスポットに焦点が合わせられ、レーザーによってスポットに向けられる全エネルギーは、約3マイクロジュール以下である。
いくつかの態様において、本発明の分析器システムを用いて試料中の分子を検出するのに用いられる蛍光ラベル部分は量子ドットである。量子ドット(QD)は、半導体ナノ結晶または人工原子としても知られており、いずれの場所においても100〜1000の電子および2〜10nmの範囲を有する半導体結晶である。QDの中には、直径が10〜20nmであり得るものもある。QDは高い量子収率を有し、それにより、それらのQDは光学的用途に対して特に有用である。QDは、励起子の形成によって蛍光を発するフルオロフォアであり、これは、従来のフルオロフォアの励起状態に類似しているが、最大で200ナノ秒のより長い寿命を有する。この特性は、QDに低い光退色性を与える。QDのエネルギーレベルは、QDの寸法および形状、ならびにQDのポテンシャルの深さを変化させることによって制御可能である。小さい励起子QDの光学的特徴の1つは着色であり、これは、ドット寸法によって決定される。ドットが大きいほど、蛍光はより赤くなり、またはより一層スペクトルの赤色端に向かう。ドットが小さいほど、スペクトルはより青くなり、またはより一層青色端に向かう。エネルギー、従って蛍光の色を規定するバンドギャップエネルギーは、QD寸法の2乗に反比例する。QDが大きいほど、より狭い間隔の、より高いエネルギーレベルを有し、従って、QDが、より小さいエネルギーを有する光子、即ちスペクトルの赤色端により近い光子を吸収することが可能となる。ドットの放射振動数がバンドギャップに依存するので、ドットの出力波長を非常に高精度に制御することが可能である。いくつかの態様において、単一分子分析器システムで検出されるタンパク質は、QDでラベリングされる。いくつかの態様において、単一分子分析器は、1つのQDでラベリングされたタンパク質を検出するのに用いられ、フィルターを用いることにより、異なる波長で異なるタンパク質を検出することが可能となる。
一般に、本発明のラベルは、蛍光部分に結合された結合パートナー、例えば抗体を含有し、それによって、本明細書に記載の機器における検出および定量に必要な蛍光を提供する。本明細書に記載の単一分子検出器における検出に適した、結合パートナーと蛍光部分とのいずれの組み合わせも、本発明におけるラベルとして用いてよい。いくつかの態様において、本発明は、生物学的状態のマーカーに対するラベルを提供し、ラベルは、マーカーに対する抗体および蛍光部分を有する。マーカーは、上述のマーカーのいずれであってもよい。抗体は、上述のいずれの抗体であってもよい。蛍光部分は、当該部分の励起波長で光を放射するレーザーによって刺激すると、ラベルが平均で少なくとも約50、75、100、125、150、175、200、225、250、275、300、350、400、500、600、700、800、900または1000個の光子を放出し得るように結合されてよく、レーザーは、ラベルを含む直径が約5ミクロン以上のスポットに焦点が合わせられ、レーザーによってスポットに向けられる全エネルギーは、約3マイクロジュール以下である。いくつかの態様において、蛍光部分は、当該部分の励起波長で光を放射するレーザーによって刺激すると、平均で少なくとも約50、100、150または200個の光子を放出し得る蛍光部分であってよく、レーザーは、当該部分を含む直径が約5ミクロン以上のスポットに焦点が合わせられ、レーザーによってスポットに向けられる全エネルギーは、約3マイクロジュール以下である。蛍光部分は、置換インドリウム環系を含む構造を有する1つ又はそれより多くの色素分子であって、インドリウム環の3位の炭素における置換基が化学反応性基または共役物質基を含む色素分子を有する蛍光部分であってよい。ラベル組成物は、Alexa Fluor 488、Alexa Fluor 532、Alexa Fluor 647、Alexa Fluor 700またはAlexa Fluor 750からなる群から選択される1つまたはそれより多くの色素分子を有する蛍光部分を含んでよい。ラベル組成物には、Alexa Fluor 488、Alexa Fluor 532、Alexa Fluor 700またはAlexa Fluor 750からなる群から選択される1つまたはそれより多くの色素分子を有する蛍光部分を含んでよい。ラベル組成物は、Alexa Fluor 488である1つまたはそれより多くの色素分子を有する蛍光部分を含んでよい。ラベル組成物は、Alexa Fluor 555である1つまたはそれより多くの色素分子を有する蛍光部分を含んでよい。ラベル組成物は、Alexa Fluor 610である1つまたはそれより多くの色素分子を有する蛍光部分を含んでよい。ラベル組成物は、Alexa Fluor 647である1つまたはそれより多くの色素分子を有する蛍光部分を含んでよい。ラベル組成物は、Alexa Fluor 680である1つまたはそれより多くの色素分子を有する蛍光部分を含んでよい。ラベル組成物は、Alexa Fluor 700である1つまたはそれより多くの色素分子を有する蛍光部分を含んでよい。ラベル組成物は、Alexa Fluor 750である1つまたはそれより多くの色素分子を有する蛍光部分を含んでよい。
一の要旨において、本発明は、試料中の単一分子、例えば生物学的状態のマーカー分子の存在または不存在を、i)分子が存在する場合、その分子をラベルでラベリングすること;およびii)ラベルの存在または不存在を検出することによって決定する方法を提供し、ラベルの存在の検出は、試料中に単一分子が存在していることを示す。いくつかの態様において、本方法は、約100、80、60、50、40、30、20、15、12、10、9、8、7、6、5、4、3、2、1、0.9、0.8、0.7、0.6、0.5、0.4、0.3、0.2、0.1、0.05、0.01、0.005または0.001フェムトモル濃度より小さい検出限界で分子を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約100フェムトモル濃度より小さい検出限界で分子を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約10フェムトモル濃度より小さい検出限界で分子を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約1フェムトモル濃度より小さい検出限界で分子を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約0.1フェムトモル濃度より小さい検出限界で分子を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約0.01フェムトモル濃度より小さい検出限界で分子を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約0.001フェムトモル濃度より小さい検出限界で分子を検出することができる。検出限界は、適切な標準物質、例えば米国国立標準技術研究所の参照標準物質を用いることによって規定してよい。
試料は任意の適切な試料であってよい。通常、試料は生物学的試料、例えば生物学的液体(または流体)である。そのような液体には、気管支肺胞洗浄液(BAL)、血液、血清、血漿、尿、鼻腔スワブ、脳脊髄液、胸膜液、滑液、腹水、羊水、胃液、リンパ液、間質液、組織ホモジネート、細胞抽出物、唾液、痰、便、生理学的分泌物、涙液、粘液、汗、母乳、精液、精漿、膣分泌物、潰瘍ならびに他の表面皮疹、水疱および膿瘍からの液体、ならびに生体の正常組織、悪性組織および疑わしい組織、または目標とする件の粒子を含み得る他の何らかの身体構成要素の生検を含む組織抽出物が含まれるが、これらに限定されない。細胞もしくは組織培養物または培養ブロス等の他の同様の検体も対象となる。
一般に、件の分子、例えば測定すべき生物学的状態のマーカーに対応するラベルを製造するいずれの試料調製方法を用いてもよく、この方法において、ラベルは、本明細書に記載の機器において検出可能である。当該技術分野において知られているように、1つ又はそれより多くの分子にラベルを加える試料調製は、均一または不均一形式で行ってよい。いくつかの態様において、試料調製は均一形式で構成される。均一形式を採用する分析器システムにおいて、結合していないラベルは試料から除去されない。例えば米国特許出願第11/048,660号を参照のこと。いくつかの態様において、件の1つの粒子または複数の粒子は、件の1つの粒子または複数の粒子に結合する、ラベリングされた1つの抗体または複数の抗体を加えることによってラベリングされる。
溶出の後に、ラベルは、例えば溶出緩衝液中で、単一分子検出器を通って流れる。処理試料は、ラベルを含まなくてよく、単一のラベルを含んでよく、または複数のラベルを含んでよい。ラベルの数は、捕捉工程の間に捕捉された件の分子、例えば生物学的状態のマーカーの分子数に一致または比例(試料の希釈またはフラクションが用いられる場合)する。
閾値を選択する方法には、ノイズレベルより大きい固定値を決定すること、およびノイズ信号の分布に基づいて閾値を計算することが含まれる。一の態様において、閾値は、バックグラウンドレベルよりも固定された数の標準偏差分大きい値に設定される。ノイズのポアソン分布を仮定すると、この方法を用いて、実験の時間経過と共に偽陽性信号の数を見積もることができる。いくつかの態様において、閾値レベルは、バックグラウンド・ノイズより4σ大きい値として計算される。例えば、平均バックグラウンド・ノイズレベルが200個の光子であると仮定すると、分析器システムによって、200個の光子である平均バックグラウンド・ノイズレベルより4√200大きい閾値レベルは256個の光子であると定められる。従って、いくつかの態様において、試料中のラベルの濃度の決定には閾値レベルの規定が含まれ、その閾値レベルより大きい光子信号がラベルの存在を示す。反対に、閾値レベルのエネルギーより大きくないエネルギーレベルを有する光子信号は、ラベルが存在しないことを意味する。
本発明の方法は、高感度分析機器、例えば単一分子検出器を利用する。そのような単一分子検出器には以下に記載する態様が含まれる。
一の要旨において、本明細書に記載の方法は、試料中の単一分子を検出し得る分析器システムを使用する。一の態様において、分析器システムは、蛍光ラベリングされた粒子の単一分子検出が可能であり、分析器システムは、分析器システムのサンプリングシステムに流体接続されるキャピラリーフローセルの内部に規定されたインタロゲーション・スペースに単一粒子が存在する場合に、電磁放射線源による曝露に応答して励起された蛍光ラベルによって放射されるエネルギーを検出する。分析器システムの更なる態様において、単一粒子は、駆動力によってキャピラリーフローセルのインタロゲーション・スペースを通って移動する。分析器システムのもう1つの態様において、自動サンプリングシステムは、試料を分析器システムに導入するために分析器システムに含まれてよい。分析器システムのもう1つの態様において、試料調製システムは、試料を調製するために分析器システムに含まれてよい。別の態様において、分析器システムは、分析が完了した後に試料の少なくとも一部を回収するための試料回収システムを有してよい。
図1Aに示すように、分析器システム300の一の態様をここで説明する。分析器システム300は、電磁放射線源301、鏡302、レンズ303、キャピラリーフローセル313、顕微鏡対物レンズ305、開口部306、検出器レンズ307、検出器フィルター308、単一光子検出器309、および場合により検出器に接続されるプロセッサ310を有する。
分析器システムのいくつかの態様において、化学発光ラベルを使用してよい。そのような態様において、粒子を検出するためのEM源を使用することが必要でないことがある。もう1つの態様において、外的なラベルまたは粒子に固有の特性は、蛍光ラベルまたは光散乱ラベル等の、光相互作用ラベルまたは特性である。そのような態様において、EM放射源は、ラベルおよび/または粒子を照射するのに用いられる。蛍光ラベルを励起するためのEM放射源が好ましい。
キャピラリーフローセルは、試料システムに流体接続される。一の態様において、分析器システムのインタロゲーション・スペース314は、対応するビーム311の断面積によって、および検出器309の視野内のビームのセグメントによって規定される。分析器システムの一の態様において、インタロゲーション・スペース314は、ここで規定するように、約0.01〜500pL、または約0.01pL〜100pL、または約0.01pL〜10pL、または約0.01pL〜1pL、または約0.01pL〜0.5pL、または約0.02pL〜約300pL、または約0.02pL〜約50pL、または約0.02pL〜約5pL、または約0.02pL〜約0.5pL、または約0.02pL〜約2pL、または約0.05pL〜約50pL、または約0.05pL〜約5pL、または約0.05pL〜約0.5pL、または約0.05pL〜約0.2pL、または約0.1pL〜約25pLの体積を有する。いくつかの態様において、インタロゲーション・スペースは約0.01pL〜10pLの体積を有する。いくつかの態様において、インタロゲーション・スペース314は約0.01pL〜1pLの体積を有する。いくつかの態様において、インタロゲーション・スペース314は約0.02pL〜約5pLの体積を有する。いくつかの態様において、インタロゲーション・スペース314は約0.02pL〜約0.5pLの体積を有する。いくつかの態様において、インタロゲーション・スペース314は約0.05pL〜約0.2pLの体積を有する。いくつかの態様において、インタロゲーション・スペース314は約0.1pLの体積を有する。他の有用なインタロゲーション・スペース体積は、本明細書に記載されているようなものである。分析器の最大性能に対してインタロゲーション・スペース314を選択し得ることを、当業者は理解するべきである。非常に小さいインタロゲーション・スペースがバックグラウンド・ノイズを最小にすることが示されてきたが、大きいインタロゲーション・スペースは、低濃度試料を妥当な長さの時間で分析し得るという利点を有する。2つのインタロゲーション・スペース370および371を用いる態様において、1つのインタロゲーション・スペース314に関して本明細書に記載した体積等の体積を用いてよい。
分析器システムの一の態様において、粒子は、駆動力によってインタロゲーション・スペースを通って移動する。いくつかの態様において、粒子を移動させるための駆動力は圧力である。いくつかの態様において、圧力は、ポンプ、および空気圧源、真空源、遠心分離器、またはそれらの組み合わせによって供給される。いくつかの態様において、粒子を移動させるための駆動力は導電学的力である。駆動力として導電学的力を使用することは先の出願において既に開示されており、米国特許出願第11/048,660号から引用することによって組み込まれる。
一の態様において、電磁放射線に曝された後に蛍光ラベルによって放射される光(例えば、紫外、可視または赤外領域における光)が検出される。検出器309(図1A)または検出器(364、365、図1B)は、蛍光部分からの光子バーストの振幅および継続時間を捕らえることができ、更に、光子バーストの振幅および継続時間を電気信号に変換することができる。CCDカメラ、ビデオ入力モジュールカメラおよびストリークカメラ等の検出装置を、連続信号で像を形成するために使用し得る。もう1つの態様において、逐次的な信号を形成する、ボロメータ、フォトダイオード、フォトダイオードアレイ、アバランシェフォトダイオードおよび光電子増倍管等の装置を使用してよい。上述の検出器のいずれの組み合わせを用いてもよい。一の態様において、アバランシェフォトダイオードが、光子を検出するために用いられる。
別の態様において、分析器システムは、分析器システムに導入する試料を調製するためのサンプリングシステムを含んでよい。含まれるサンプリングシステムは、複数の試料を自動的にサンプリングし、試料容器と第1のインタロゲーション・スペースとの間の流体連結を提供することができる。
試料の調製には、分析のための原試料を調製するのに必要な工程が含まれる。これらの工程は、例として、以下の1つまたはそれより多くの工程を含み得る:遠心分離、濾過、蒸留、クロマトグラフィー等の分離工程;濃縮、細胞溶解、pHの変化、緩衝液の追加、希釈剤の追加、試薬の追加、加熱または冷却、ラベルの追加、ラベルの結合、照射による架橋、結合していないラベルの分離、妨害化合物の不活性化および/または除去、ならびに単一粒子分析器による分析のために試料を調製するのに必要とされる他の何らかの工程。いくつかの態様において、血液を処理して血漿または血清に分離する。追加のラベリング、結合していないラベルの除去および/または希釈工程もまた、血清または血漿試料において実施してよい。
本発明の分析器および分析システムの態様の一の非常に有用な特徴は、試料を消費することなくその試料を分析し得ることである。このことは、試料材料が制限される場合に特に重要であり得る。試料の回収は、試料の他の分析を行うこと、または試料を再分析することも可能にする。試料サイズが制限され、かつ/または試料を再分析する能力が望まれる用途、例えば法医学、薬物のスクリーニング、および臨床的診断用途に対するこの特徴の利点は、当業者に明らかだろう。
本発明のシステム、システムキットおよび方法により、従来測定されていた濃度よりずっと低い濃度で試料中の分子を測定することが可能となる。本発明の機器、キットおよび方法の高感度によって、検出感度の欠如により従来は不可能であったマーカー、例えば生物学的マーカーの設定が可能となる。本発明は、新たなマーカーを発見するために、本明細書に記載の組成物および方法を使用することも含む。
従って、本発明は、マーカーの高感度検出のための方法および組成物、ならびにマーカーの正常および異常レベルに対する値を確立する更なる方法を提供する。更なる態様において、本発明は、マーカーに対して確立された値に基づく診断、予後診断および/または治療の選択の方法を提供する。本発明は、そのような方法において用いるための組成物、例えばマーカーの超高感度検出のための検出試薬も提供する。
[B.例示的マーカー]
心筋トロポニンは、従来においては異常に多い量でのみ検出可能であるマーカーの一例である。心筋トロポニンは、多数の疾患および病態、例えば急性心筋梗塞(AMI)における診断、予後診断および治療方法の決定において有用な心臓障害のマーカーである。更に、心筋トロポニンは、治療、例えば薬物治療による心毒性の有用なマーカーである。
最近の報告によって、細菌性または真菌性感染症のバイオマーカーとしてTREM−1が確立された。例えば、Bouchonら(2000年)、J.Immunol.164:4991−95;Colonna(2003年)、Nat.Rev.Immunol.3:445−53;Gibotら(2004年)、N.Engl.J.Med.350:451−58;Gibotら(2004年)、Ann.Intern.Med.141:9−15を参照のこと。本発明の分析は、100fMまたはそれより低い濃度でTREM−1を定期的に測定してよいことを示唆している。実施例9を参照のこと。
現行の技術が、病気の患者からの試料において発見されるレベルより下のレベルを検出できないので、多数のサイトカイン、ケモカインおよび成長因子の正常レベルは主として知られていない。例えば、他のサイトカイン(IL−10、TNF−α、IL−4、IL−1β、IL−2、IL−12およびIFN−γ等)の基礎レベルが、臨床状況において実施されるルーチン分析によって検出することができないのに対し、本発明の分析器システムは、これらのサイトカインおよび他のサイトカインのレベルを直ちに決定することができる。サイトカインおよび成長因子のレベルを知ることは、癌ならびに呼吸器疾患、感染性疾患および循環器疾患を含む種々の疾患の診断、予後診断および処置を行う臨床医を助ける。臨床標本における正常状態および病態をモニタリングするための早期のサイトカイン検出は、血漿、血清および尿、ならびにより優れた展開医療(translational medicine)を提供するための他の流体試料等の試料を分析するために本発明の分析器システムを用いることによって達成され得る。例えば、正常範囲の濃度が知られていないサイトカインのレベルを決定することは、以下の状態および疾患の診断および治療を行う臨床医を補助するであろう。骨形成タンパク質は、骨折、脊椎固定、整形外科および口腔外科に関する治療をモニタリングするのに有用であろう;インターロイキン−10(IL−10)は、非ホジキンリンパ腫、多発性骨髄腫、黒色腫および卵巣癌を含む癌の存在に関する検出およびモニタリングに対して、ならびに抗炎症療法、臓器移植、免疫不全、および寄生虫感染症の影響の検出およびモニタリングに対して有用であろう;インターロイキン−11(IL−11)は、乳癌等の癌の存在に関する検出およびモニタリングに対して有用である;インターロイキン−12(IL−12)は癌およびHIV感染症に関する検出およびモニタリングに対して有用である;TNF−α、炎症性サイトカインは、単独で又はIL−6と組み合わせて、敗血症、急性膵炎、結核、ならびに関節リウマチおよび狼瘡等の自己免疫疾患の良好な予測因子として使用可能である。
IL−1αおよび−βは、感染症に対する免疫防御に関与する炎症促進性サイトカインであり、サイトカインのIL−1スーパーファミリーの一部である。IL−1αおよびIL−1βの両方は、マクロファージ、単球および樹状細胞によって形成される。IL−1は、炎症において主要な役割を有する種々の免疫応答に関与し、それにより、IL−1は関節リウマチ(RA)に関するターゲットとなる。IL−1αおよびIL−1βは前駆体ペプチドとして形成され、これは、細胞傷害に応答してタンパク質分解的に処理されて放出され、従ってアポトーシスを誘発する。末梢組織におけるIL−1β生成は、熱に関連する痛覚過敏(痛みに対する感度の増大)とも関連する。
ヒトの疾患において炎症が幅広く関与することにより、このタンパク質が興味深い診断対象であり続けるであろうことが確実となる。IL−1αレベルの増加は、関節リウマチ等の炎症性疾患に対する診断対象であり続ける。従って、疾患を示すIL−1αの低いレベルと高いレベルとを区別するために、IL−1αの低い正常レベルを定量するための高感度分析を開発する必要がある。また、IL−1α関連疾患に対する治療としてIL−1αレベル増加を減少させるために、治療薬物ターゲットとしてのIL−1αの可能性を評価する必要がある。このことは、治療の有効性および投与量を評価するためにIL−1αレベルの減少速度を検出する必要性を示すであろう。このことは、炎症性サイトカイン経路をターゲットとする薬物(キネレット(IL−1Ra拮抗薬)およびエンテラセプト(enteracept)(TNF−α拮抗薬)等)の同時投与(または併用)の後に進行する、好中球減少症のような有害事象を防止し得る。これらの目標を達成するために、ヒト血漿において正常レベルより下でIL−1αを検出し得る分析を有することが重要である。
IL−1αと同様に、ヒトの疾患において炎症が幅広く関与することにより、IL−1βが興味深い診断対象であり続けるであろうことが確実である。IL−1βレベルの増加は、関節リウマチ等の炎症性疾患に対する診断対象であり続ける。従って、疾患を示すIL−1βの低いレベルと高いレベルとを区別するために、IL−1βの低い正常レベルを定量するための高感度分析を開発する必要がある。また、IL−1β関連疾患に対する治療としてIL−1βレベル増加を減少させるために、治療薬物ターゲットとしてのIL−1βの可能性を評価する必要がある。このことは、治療の有効性および投与量を評価するためにIL−1βレベルが減少する速度を検出する必要性を示すであろう。このことは、炎症性サイトカイン経路をターゲットとする薬物(キネレット(IL−1Ra拮抗薬)およびエンテラセプト(TNF−α拮抗薬)等)の同時投与(または併用)の後に進行する、好中球減少症のような有害事象を防止し得る。これらの目標を達成するために、ヒト血漿において正常レベルより下でIL−1βを検出し得る分析を有することが重要である。
インターロイキン−4(IL−4)は、液性免疫および適応免疫において重要な調節因子であるサイトカインである。IL−4は、ナイーブヘルパーT細胞(Th0細胞)のTh2細胞への分化を引き起こす。それは多数の生物学的役割を有し、それには、活性化されたB細胞およびT細胞の増殖の刺激、ならびにCD4+T細胞のTh2細胞への分化が含まれる。IL−4は、アレルギー性炎症反応の進行において重要な役割を果たす。IL−4は、IgEの製造を制御し、IL−4によるT細胞サブセットの製造を拡大させ、エフェクター細胞の機能を安定化させる。
インターロイキン−6(IL−6)は、外傷(特に、火傷または炎症をもたらす他の組織損傷)に対する免疫応答を刺激するために、T細胞およびマクロファージによって分泌される炎症促進性サイトカインである。IL−6はまた、病原体関連分子パターン(PAMPs)と呼ばれる特定の微生物分子に応答して、マクロファージによって分泌され、これは先天性免疫応答を誘発し、炎症性サイトカインの生成を開始させる。IL−6は、熱および急性相反応の最も重要なメディエーターの1つである。IL−6は「ミオカイン(myokine)」とも呼ばれ、筋肉から生成するサイトカインであり、筋収縮に反応して増加する。更に、骨芽細胞はIL−6を分泌して破骨細胞の形成を促進する。
IL−6と同様に、本発明は、非常に低いレベルの血漿IL−8の定量を可能にし、かつ疾患過程または治療的介入に起因するIL−8レベルの小さな変化の正確な測定を可能にするインターロイキン8(IL−8)分析を提供する。図17を参照のこと。いくつかの態様において、本発明は、約100、80、60、50、30、20、10、5、1、0.5、0.01、0.005、0.001、0.0005または0.0001pg/mlより小さい検出限界、例えば約100pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる方法を提供する。いくつかの態様において、本方法は、約100pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約80pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約60pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約50pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約30pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約25pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約10pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約5pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約1pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約0.5pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約0.1pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約0.05pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約0.01pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約0.005pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約0.001pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約0.0005pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる。いくつかの態様において、本方法は、約0.0001pg/mlより小さい検出限界でIL−8を検出することができる。
炎症性疾患の早期発症を検出するのに有用であり得る他のサイトカインには、本明細書に記載の炎症マーカー、および炎症マーカーのパネルが含まれる。炎症性疾患を検出するのに使用され得るサイトカインの例として、喘息の早期マーカーであり得るロイコトリエン4(LTE4)、および線維症、硬化症を含む炎症性疾患の状態を検出およびモニタリングするのに使用され得るTGFβが挙げられる。いくつかのマーカーは、1つより多くの疾患を検出するのに使用することができ、例えばTGFβは癌の存在を検出するのにも使用可能である。
システイニルロイコトリエン(LTC4、LTD4、LTE4)は、喘息の発症において重要な役割を果たす。ロイコトリエンは、肥満細胞、好酸球および他の気道炎症性細胞によって製造され、血管透過性を増加させ、気管支平滑筋を収縮させ、気管支過敏性を仲介する。LTC4およびLTD4の安定な代謝物である尿中LTE4のレベルは、抗原の気管支投与の後、アスピリンに敏感な喘息患者におけるアスピリンの経口投与の後、および運動によって引き起こされた気管支けいれんの間に、健康な対照と比較して喘息の子供および大人において、ならびに喘息患者において増加する。喘息の病理におけるロイコトリエンの重要性は、ロイコトリエンの作用を阻害する試薬による大規模臨床試験において更に実証された。例えば、モンテルカスト(一日1回経口摂取される強力なロイコトリエン受容体拮抗薬)は、子供(2〜14歳)および大人の両方において喘息のコントロールをかなり改善し、運動によって引き起こされる気管支収縮を弱める。
本発明の方法は、TGFβがマーカーである疾患の早期発症を検出するためにも実施可能である。TGFβ関連疾患の例として線維症が挙げられる。線維症は、瘢痕組織の過剰かつ持続的な形成を意味し、これは、肺、腎臓、眼、心臓、肝臓および皮膚に影響を及ぼす種々の慢性疾患における臓器不全に関係する罹患率および死亡者数に関与する。TGFβは、慢性線維化作用のメディエーターとしてのその役割でよく知られている。例えば、TGFβは、線維性肺疾患における線維芽細胞増殖およびマトリクスの蓄積の促進に関与する。TGFβの抑制は、肺線維症を扱うための潜在的な治療手段として提案されてきた。TGFβは、フィブロネクチンおよびI型コラーゲンならびにそれらの受容体を含む多数の細胞外マトリクス分子の合成を促進するだけでなく、プロテアーゼおよびそれらの阻害物質の発現における分化効果(differectial effect)によってマトリクス分解を減少させ、細胞外マトリクスの発生を強固に促進する。従って、本発明の分析器システムは、例えば線維症に関連するTGFβの異常レベルを検出し得、線維症には、特発性肺線維症、糖尿病性腎症、糸球体硬化症およびIgA腎症を含む進行性腎症(腎臓障害の原因であり、透析および再移植の必要性);糖尿病性網膜症および進行性黄斑変性症(眼の線維症であり、失明の主な原因);肝硬変および胆道閉鎖症(肝線維症および障害の主な原因);鬱血性心不全;シャーガス病における進行性線維症に関連する心筋症;肺線維症;ならびに強皮症が含まれるがこれらに限定されない。
Akt1はv−aktマウス胸腺腫ウイルス性癌遺伝子ホモログ1であり、AKT1遺伝子によってエンコードされたセリン−トレオニンタンパク質キナーゼである。Aktキナーゼは、アポトーシスの抑制ならびに細胞増殖、血管形成および腫瘍細胞侵潤性の促進を含む異種細胞の反応に関与してきた。
Fasリガンド(FasL)は、CD95Lとしても知られており、TNFファミリーの一員であり、Fas(CD95)との結合によってアポトーシスを引き起こす。タンパク質は2つの形態で存在する;膜FasLまたは可溶性FasLのいずれかであり、これらは各々、45kDaおよび26kDaの分子量で移動する。FasLは、活性化リンパ球、ナチュラルキラー細胞および単球を含む種々の細胞において発現する。FasLとFasとの相互作用は、生理的アポトーシスプロセスにおいて重要な役割を果たす。Fas−FasL系の機能不全は、末梢リンパ器官における過形成を引き起こし、自己免疫疾患の進行および腫瘍形成を促進する。一般に、可溶性アポトーシス因子のレベルに関して、より具体的には治療計画による可溶性アポトーシス因子の修飾に関して限られたデータしか存在しない。
VEGFとして一般に知られている血管内皮成長因子−A(VEGF−A)は、内皮細胞増殖、生存、移動および血管透過性を促進する分泌性糖タンパク質ファミリーの一員であり、それらの全ては血管形成に寄与する。VEGFの、その受容体への結合は、既存の血管系からの血管の成長のために重要である細胞シグナル伝達経路の活性化を引き起こす。VEGFは、癌、加齢性黄斑変性症、糖尿病性網膜症および関節リウマチを含む種々の疾患に関与する。このように、VEGFは、これらの疾患、特に癌に対する治療の開発のための興味を引く候補である。
アミロイドベータタンパク質(40および42アミノ酸)は、アルツハイマー病(AD)患者の脳におけるアミロイド斑の主な構成要素である。健康な状態および病気の状態において、脳脊髄液(CSF)および血漿の両方において、2つの内Aβ−40がより一般的な形態である(Aβ−42より10〜20倍高い)。ADの患者において、Aβ−42がまず凝集し、そして脳に堆積して斑を形成する。従って、多数のAD患者のCSFにおいてAβ−42濃度が減少する。最近の研究は、CSFおよび血漿におけるAβ−42濃度の低下(Aβ−40/Aβ−42比における並行する変化を伴う)がADの発症の前兆となることを示唆している。
医療診断は、伝統的に単一の分子マーカー(例えば、遺伝子突然変異、PSAレベルの増加)の検出に依存していた。残念ながら、単一マーカーのアプローチは、多数の生物学的状態または疾患、例えば癌を検出または区別するのに次善のものである。従って、いくつかの場合において、ただ1つのマーカーを認識する分析は、限定された予測値を有する。本発明の方法によれば、複数のマーカーを用いたそのような生物学的状態、例えば疾患のスクリーニング、診断および治療のモニタリングが、単一マーカー分析を用いる方法に関するかなりの改良を提供し得る。癌は非常に複雑な疾患であるので、この多重アプローチは癌の診断に特に良く適しており、この多機能「パネル」アプローチは、癌の細胞学的および臨床的不均一性に整合する。
バイオマーカー(例えばcTnI、サイトカインまたはVEGF)の定量的測定に関して記載された本発明の方法は、同じ技術を用いて定量された他のバイオマーカーの測定と組み合わせることができる。図4を参照のこと。これらの多重マーカー分析は、被験体における状態の検出およびモニタリングの感度および選択性を改良し得る。そのような分析は高感度のままであり、正常で健康な参照範囲にわたって各被分析物を正確に定量する能力を有する。本明細書において開示されているように、本発明のマーカーは、例えば、生物の生物学的状態(例えば、病態または非疾患状態等の病態)に関連する任意の組成物および/もしくは分子、または組成物および/もしくは分子の複合体を含む。
本発明の方法は、所望の生物学的状態、例えば疾患の状態の測定基準としてはたらく他の種類のマーカーと組み合わせることも可能である。図4を参照のこと。例として、生理学的マーカー(ストレス試験、インスリン耐性、BMI、血圧、睡眠時無呼吸)、分子マーカー(コレステロール、LDL/HDL、ビタミン−D)、多量のタンパク質(アポリポタンパク質、IMA、フィブロネクチン)、および疾患に関する遺伝子マーカーが挙げられる。いくつかの態様において、第2マーカーは生理学的マーカーである。いくつかの態様において、第2マーカーは分子マーカーである。いくつかの態様において、第2マーカーは遺伝子マーカーである。
HDL:「正常」示数は、男性に関して40〜50mg/dLの間で変化し、女性に関して50〜60mg/dLの間で変化する;60mg/dLより大きい測定値が「保護的(protective)」であると考えられる。
LDL:130mg/dLより小さいと良いと考えられる;100より小さいと「最適」であると考えられる。
トリグリセリド:150mg/dLより小さいと「正常」であると考えられる。
総コレステロール(トリグリセリド測定値の1/5にLDLおよびHDLの数を加える):200mg/dLより小さいことが「望ましい」と考えられる。
一般に、0.3〜0.4またはそれより大きいHDL/LDL比が望ましいものとして示される。
長期的な(longitudinal)試料が定められた期間にわたって個体から収集される場合、本発明の方法は、バイオマーカー、例えばVEGFのレベルにおける微細な変化を時間と共に定量し得る。目立たない変化を定量する能力は、本明細書に記載の方法を用いる場合に行われる測定の感度と精度とを組み合わせることによって可能となる。
循環器系疾患に対する多数のリスク因子が同定されてきた。これらのリスク因子は2つの大きなカテゴリーに分類することができる:変更不可能な(unmodifiable)因子(性別が男性であること、および若年性心臓疾患の家族歴等)および変更可能な因子。変更可能な因子は、生活様式因子および根底にある障害/疾患因子へと更に細かく分けることができる。多くの場合、生活様式および根底にある疾患は結び付いている(肥満および糖尿病等)。組み合わされたこれらの因子の全てを、一般集団における、循環器系疾患になる特に高いリスクを有する者を同定するのに使用することができる。
喫煙、肥満および運動不足。
高血圧症、高コレステロール値、メタボリックシンドローム、糖尿病、リウマチ性関節炎、全身性エリテマトーデス(SLE)および閉塞型睡眠時無呼吸。
高血圧症は、脳血管疾患および冠動脈性心疾患に対して強力なリスク因子である。およそ5000万人が高血圧症である。
血中コレステロール値とその後の冠動脈性心疾患との間の明確かつ肯定的な関係が繰り返し実証されている。低密度リポタンパク質(LDL)フラクションと関連付けられるコレステロール値は、冠動脈性心疾患と正の相関があり、一方、高密度リポタンパク質(HDL)と関連付けられるコレステロールは負の相関がある(レベルが高くなるほどリスクが低くなる)。
メタボリックシンドロームの主な特徴として、インスリン抵抗性、高血圧症(hypertension(high blood pressure))、コレステロール異常および凝固の危険性の増加が挙げられる。患者はほとんどの場合、体重超過または肥満である。このクラスタリングによって、あるいはいくつかのリスク因子が同時に進行すると、CVDのリスクが非常に高くなる。
糖尿病は循環器系疾患に対する強力かつ独立したリスク因子であり、糖尿病患者の主な死因である。血糖値に加えて他の要因によってリスクが高まる。
リウマチ性関節炎の患者は早期死亡の高いリスクを有し、これは循環器系疾患に起因する可能性が高い。
自己免疫疾患である全身性エリテマトーデス(SLE)に罹っている女性は、その疾患にかかっていない女性と比較して2倍以上高い循環器系疾患のリスクを有する。
OSAは、咽頭の気道の虚脱(collapse)に起因して睡眠中に呼吸が繰り返し中断されることを特徴とする。OSA患者の集団ベースの疫学的研究および観察は一貫して、OSAに罹っている人々において高血圧症、2型糖尿病、循環器系疾患および脳卒中の罹患率がより高いことを示してきた。
いくつかの態様において、EKGによる標準的なトレッドミルストレス試験の性能は、血漿心筋トロポニン−I(cTnI)バイオマーカー測定を加えることによって改良される。本発明に従って測定されるcTnIは、心臓負荷(ストレス)の間の心筋生理学に関する洞察を提供する。血漿cTnI濃度は、ストレス試験により誘発される虚血を呈する個体において増加し、その血漿cTnI濃度は核潅流イメージング(nuclear perfusion imaging)および他の技術を用いて測定することができる。軽度の虚血でさえ、cTnI濃度の増加を誘発し得る。cTnIの増加の大きさは、虚血の程度と正の相関を示す。高度の虚血は、心筋ミオサイトから血中へのcTnIの最大の放出を誘発する。cTnIの増加を他の全てのストレスEKG出力変数と比較する多変数分析を用いると、cTnI増加のみが虚血と相関していた。cTnIを検出する他の方法、例えばSiemens超高感度cTnIおよびRoche cTnTは、トロポニンの変化を虚血と関連付けるための感度および確度を提供しない。
閉塞型睡眠障害(OSD)は高度に蔓延しているが、強力なCVDリスク因子としては未だ正しく評価されていない。米国心臓協会は最近、エキスパート・コンセンサス・ドキュメント(Expert Consensus Document)を発行し、それはCVDに対するリスクを有する個体または既にCVDに罹っている個体に対するOSDの関連性を強調している。Somers VKらの『Sleep apnea and cardiovascular disease:an American Heart Association/American College of Cardiology Foundation Scientific Statement from the American Heart Association Council for High Blood Pressure Research Professional Education Committee,Council on Clinical Cardiology,Stroke Council,and Council on Cardiovascular Nursing』(J Am Coll Cardiol.52:686−717.(2008年))を参照のこと。OSDの特質として、低酸素症、血管収縮、かなり上昇した血圧が挙げられる。そのような攪乱(perturbation)は、TNF−α、IL−6およびIL−17a等の血漿バイオマーカーサイトカイン並びにhsCRPの増加を伴う血管炎症をもたらし得る。これらのバイオマーカーの上昇は治療的介入の成功によって減少し得る。
頸動脈内膜中膜厚(CIMT)は冠動脈を含む全ての動脈におけるアテローム性動脈硬化の評価基準である。CIMTは動脈壁のイメージを提供し、それにより、潜在性(または無症状)アテローム性動脈硬化の場合であっても狭窄症の程度の評価が可能となる。本発明は、超音波診断に基づく改良されたCIMT試験を提供する。アテローム性動脈硬化は、血管炎症の最終結果である。いくつかの態様において、血中のバイオマーカー、例えば、血漿中の炎症誘発性サイトカインの測定は、潜在性(または無症状)疾患を含む動脈疾患のリスクおよび状態の物理的および生化学的評価を提供することによって、CIMTを改良することができる。血漿バイオマーカー、例えばhsCRP、IL−6、TNF−αおよびIL−1は、血管炎症とともに増加し得、CIMT試験によって測定される狭窄症と相関し得る。これらのバイオマーカーは、炎症性リスクの大きさに関する洞察を提供する。更に、それらは動的であるので、それらの血漿濃度の変化は、患者をモニタリングする間に治療の有効性を評価するのに使用可能である。
本発明は、生物学的状態または生物における状態を診断するために使用可能なマーカーを確立するため、そのようなマーカーに基づく診断を整備するため、ならびに診断およびそのような診断を用いたサービスを商業化/市販するためのシステムおよび方法(臨床的方法を含む)に関する。
本発明はキットを更に提供する。いくつかの態様において、キットは、上述のように、分析器システムおよびラベルを含む。本発明のキットは、適切なパッケージングにおいて、本明細書に記載の分子(マーカー等)の高感度検出に有用な1つ又はそれより多くの組成物を含む。いくつかの態様において、本明細書に記載されているように、本発明のキットは、他の要素(取扱説明書、試薬または他の要素等)と一緒にラベルを提供する。いくつかの態様において、キットは、使用前に消費者によって結合させるために、個別の容器における、個別の要素(抗体および蛍光部分等)としてラベルを提供する。本明細書において記載されているように、いくつかの態様において、本発明のキットは、結合パートナーのペア、例えば抗体ペアを提供し、これらは分子、例えばマーカーに対して特異的であり、結合パートナーの少なくとも1つは、マーカーに対するラベルである。いくつかの態様において、結合パートナー、例えば抗体は、別々の容器で提供される。いくつかの態様において、結合パートナー、例えば抗体は、同じ容器で提供される。いくつかの態様において、結合パートナー、例えば抗体の内の1つは、固体支持体、例えばマイクロタイタープレートまたは常磁性ビーズに固定化される。これらの態様のいくつかにおいて、もう一方の結合パートナー、例えば抗体が、本明細書に記載されているように、蛍光部分でラベリングされる。
本願発明は以下の態様を含む。
(態様1)
被験体からの試料における2つまたはそれより多くのバイオマーカーを検出することを含む、被験体における心血管の状態を検出またはモニタリングする方法であって、
バイオマーカーは、トロポニン−I(cTnI)、B型ナトリウム利尿ペプチド(BNP)、proBNPおよびNT−proBNPからなる群から選択される心臓病理学的バイオマーカー、並びにインターロイキン6(IL−6)、腫瘍壊死因子α(TNF−α)またはインターロイキン17a(IL−17a)からなる群から選択される血管炎症バイオマーカーであり、
少なくとも1つのバイオマーカーの検出限界は約20pg/mlより小さい、方法。
(態様2)
約20pg/mlより小さい検出限界を有する少なくとも1つのバイオマーカーの検出が、試料をマーカーに対するラベルに接触させること、およびラベルの存在または不存在を検出することを含み、ラベルの存在の検出は対応するマーカーの存在を意味する、態様1に記載の方法。
(態様3)
ラベルが蛍光部分を含み、約20pg/mlより小さい検出限界を有する少なくとも1つのバイオマーカーが、バイオマーカーの単一分子に対応するラベルを含むインタロゲーション・スペースにおいて検出される、態様2に記載の方法。
(態様4)
ラベルが蛍光部分を含み、検出が、単一分子検出器にラベルを通すことを含み、単一分子検出器が
(a)蛍光部分を刺激するための電磁放射線源;
(b)電磁波源から放射される電磁放射線を受け取るためのインタロゲーション・スペース;および
(c)刺激された蛍光部分の電磁気学的特性を決定するための、インタロゲーション・スペースに操作可能に接続された電磁放射線検出器
を含む、態様2に記載の方法。
(態様5)
少なくとも1つのマーカーの検出限界が約10pg/ml〜約0.01pg/mlの範囲である、態様1に記載の方法。
(態様6)
前記状態が鬱血性心不全を含み、2つまたはそれより多くのバイオマーカーがcTnI、BNP、IL−6、TNF−αおよびIL−17aを含む、態様1に記載の方法。
(態様7)
被験体における心血管の状態を検出する方法であって、その方法は、生理学的バイオマーカーを測定すること、および被験体からの血液試料中の1つまたはそれより多くのバイオマーカーを検出することを含み、バイオマーカーは、トロポニン−I(cTnI)、B型ナトリウム利尿ペプチド(BNP)、proBNP、NT−proBNP、インターロイキン6(IL−6)、腫瘍壊死因子α(TNF−α)またはインターロイキン17a(IL−17a)からなる群から選択され、
少なくとも1つのバイオマーカーの検出限界は約20pg/mlより小さい、方法。
(態様8)
生理学的バイオマーカーがストレス試験である、態様7に記載の方法。
(態様9)
1つまたはそれより多くのバイオマーカーがcTnIを含む、態様8に記載の方法。
(態様10)
生理学的バイオマーカーが睡眠試験である、態様7に記載の方法。
(態様11)
1つまたはそれより多くのバイオマーカーが1つまたはそれより多くのサイトカインを含む、態様10に記載の方法。
(態様12)
1つまたはそれより多くのサイトカインがTNF−α、IL−1、IL−6、IL−17aおよび/またはhsCRPを含む、態様11に記載の方法。
(態様13)
生理学的バイオマーカーが頸動脈内膜中膜厚(CIMT)である、態様7に記載の方法。
(態様14)
1つまたはそれより多くのバイオマーカーが1つまたはそれより多くの血管炎症マーカーを含む、態様13に記載の方法。
(態様15)
1つまたはそれより多くの血管炎症マーカーがhsCRP、IL−6、TNF−αおよび/またはIL−1を含む、態様14に記載の方法。
(態様16)
被験体における鬱血性心不全を検出する方法であって、その方法は、2つまたはそれより多くのバイオマーカーを含むバイオマーカーパネルの1つまたはそれより多くの要素が、正常集団における1つまたはそれより多くのバイオマーカーのレベルと比較して増加しているか否かを検出することを含み、バイオマーカーは、トロポニン−I(cTnI)、B型ナトリウム利尿ペプチド(BNP)、proBNP、NT−proBNP、インターロイキン6(IL−6)、腫瘍壊死因子α(TNF−α)またはインターロイキン17a(IL−17a)からなる群から選択され、パネルの少なくとも1つの要素の検出限界は約20pg/mlより小さい、方法。
(態様17)
パネルの約20pg/mlより小さい検出限界を有する少なくとも1つの要素がcTnIである、態様16に記載の方法。
(態様18)
約20pg/mlより小さい検出限界を有する少なくとも1つのバイオマーカーの検出が、試料をマーカーに対するラベルに接触させること、およびラベルの存在または不存在を検出することを含み、ラベルの存在の検出は、対応するマーカーの存在を意味する、態様16に記載の方法。
(態様19)
ラベルが蛍光部分を含み、約20pg/mlより小さい検出限界を有する少なくとも1つのバイオマーカーが、バイオマーカーの単一分子に対応するラベルを含むインタロゲーション・スペースにおいて検出される、態様16に記載の方法。
(態様20)
ラベルが蛍光部分を含み、検出が、単一分子検出器にラベルを通すことを含み、単一分子検出器が
(a)蛍光部分を刺激するための電磁放射線源;
(b)電磁波源から放射される電磁放射線を受け取るためのインタロゲーション・スペース;および
(c)刺激された蛍光部分の電磁気学的特性を決定するための、インタロゲーション・スペースに操作可能に接続された電磁放射線検出器
を含む、態様16に記載の方法。
(態様21)
少なくとも1つのマーカーの検出限界が約10pg/ml〜約0.01pg/mlの範囲である、態様20に記載の方法。
分析:この分析の目的は、ヒト血清中の心筋トロポニンI(cTNI)の存在を検出することであった。分析形式は、マウスモノクローナル捕捉抗体およびヤギポリクローナル検出抗体をベースとする2段階サンドウィッチ免疫測定であった。10マイクロリットルの試料が必要であった。分析の動作範囲は、0〜900pg/mlであり、通常の分析検出限界は1〜3pg/mlである。分析は、完了に約4時間のベンチタイムを必要とした。
上述の分析は、目標とする分子を固定化するのにプラスチック面を使用する、同一のマイクロタイタープレート形式を用いる。単一粒子分析器システムは、結合していない成分からの結合された成分の分離を達成するために微粒子またはビーズを用いて溶液中で行われる分析にも適合する。
ヒト血清中のcTnI濃度に関する参照範囲または正常範囲を、88の現在のところ健康な(病気でない)被験体からの血清試料を用いて確定した。実施例1に記載のサンドウィッチ免疫測定を行い、本発明の単一粒子分析器システムを用いて上述の信号またはイベントの数をカウントした。血清トロポニンI濃度は、分析器によって検出される信号を上述の検量線と関連付けることによって決定した。全ての分析は4回行った。
調査1:救急科(ED)において胸痛を示した18人の患者から47の試料を連続的に得た。これらの患者の全ては非STのECG増加を有し、AMIと診断された。18人の患者全てからの初期試料中のcTnI濃度は、緊急治療室に入る際に、市販の分析によって、350pg/ml(10%カットポイント)より低いと測定され、12人は100pg/ml(99パーセンタイル)より低かった。その後、同じ市販の分析を用いてこれらの試料を検査し、cTnIに対して陽性反応を示すことが測定された。同じ血清試料を、TnIに対して実施例1および3に記載の本発明の分析によっても分析し、その結果を、市販の分析を用いて得られた結果と比較した。
例えば尿標本を用いる分析に対する予備分析として、緩衝液中のロイコトリエンE4(LTE4)を定量するために分析手法を開発した。分析形式は、1段階の単一抗体競合免疫測定であった。50マイクロリットルの試料が必要であった。この分析手法の通常の実施範囲は0〜300pg/mlであり、通常の検出限界は2〜3pg/ml(0.1〜0.15pg/試料)であった。分析は、完了に約4時間のベンチタイムを必要とした。
血清試料中の低レベルのAkt1を定量するために、サンドウィッチ免疫測定を開発した。検量線は、高濃度標準物質を緩衝タンパク質溶液中で希釈することによって作成した。分析緩衝液10マイクロリットル(μl)、および試料または標準物質10μlを、Akt1に特異的な抗体で被覆された384−ウェルプレートの各ウェルに加え、2時間培養した。より具体的には、抗体841660(R&D Systems)をNunc Maxisorpプレート上に2.5マイクログラム/mlで被覆させた。プレートを洗浄し、Akt1に対して特異的な、ラベリングされた検出抗体AF1775(R&D Systems)(Alexa Fluor 647でラベリング、2〜4のfluor/IgG)を20μl、各ウェルに加えた。1時間の培養の後、プレートを洗浄して結合していない検出抗体を除去した。結合した検出抗体を溶出させ、分析機器において測定した。
(提供された試薬)
捕捉抗体:Nunc Maxisorpプレート上に、2.5マイクログラム/mlで被覆された841660(R&D Systems)(384ウェルプレート)
分析緩衝液
再懸濁緩衝液
希釈緩衝液
標準希釈剤
Akt 1標準物質
Alexa Fluor 647でラベリングされた(2〜4のfluor/IgG)、Akt1に対する検出抗体試薬、AF1775(R&D Systems)
(必要とされる他の試薬)
TritonX−100洗浄緩衝液(10mMホウ酸、150mM NaCl、0.1% TritonX−100、pH8.3)
溶出緩衝液(0.02%Triton X−100および0.001%BSAを含有する4M尿素)
「7」に設定されたマイクロプレート振盪機
マイクロプレート洗浄器
プレート遠心分離器
Axyseal封止フィルム、Axygen製品321−31−051
Nunc穿孔可能封止テープ、Nunc製品235306
Akt1標準物質調製
標準物質を0.5mlの再懸濁緩衝液において再懸濁させる。最終濃度=170ng/ml
標準物質を希釈緩衝液において1:3に希釈する(=57ng/ml)。
標準物質を標準希釈剤において1:19に希釈する(=3ng/ml)。
標準希釈剤において3倍希釈を連続して行って4.1pg/mlへと低下させる。
ウェルごとに10μlの分析緩衝液を加える。
ウェルごとに10μlの標準物質または試料を加える。
Axyseal封止フィルムでプレートを封止する。
3000RPMで1分間回転させる。
振動させながら25℃で2時間培養する。
プレートを5回洗浄する。
ペーパータオルの上で逆さにしたプレートを3000RPMで1分間回転させる。
ウェルごとに20μlの検出抗体試薬を加える。
Axyseal封止フィルムでプレートを封止する。
ペーパータオルの上で逆さにしたプレートを3000RPMで1分間回転させる。
振動させながら25℃で1時間培養する。
プレートを5回洗浄する。
ペーパータオルの上で逆さにしたプレートを3000RPMで1分間回転させる。
ウェルごとに30μlの溶出緩衝液を加える。
3000RPMで1分間回転させる。
Nunc穿孔可能封止テープで封止し、ローラーを用いて堅固な封止を確保する。
振動させながら、25℃で1/2時間培養する。
プレートを、分析の前に、4℃にて最大で48時間保存してよい。
ZeptX機器において分析する。
血清中の低レベルのTGFβを定量するために、サンドウィッチ免疫測定を開発した。高濃度標準物質を緩衝タンパク質溶液中で希釈することによって検量線を作成した。10マイクロリットル(μl)の分析緩衝液および10μlの試料または標準物質を、TGFβに対して特異的な抗体で被覆された384−ウェルプレートの各ウェルに加え、2時間培養した。プレートを洗浄し、TGFβに対して特異的な、ラベリングされた検出抗体20μlを各ウェルに加えた。1時間培養した後、プレートを洗浄して結合していない検出抗体を除去した。結合された検出抗体を溶出させ、分析機器において測定した。
[血清中の低レベルのFasリガンドを定量するためのサンドウィッチ免疫測定]
高濃度標準物質を緩衝タンパク質溶液中で希釈することによって、検量線を作成した。10マイクロリットル(μl)の分析緩衝液および10μlの試料または標準物質を、Fasリガンドに対して特異的な抗体で被覆した384−ウェルプレートの各ウェルに加え、2時間培養した。プレートを洗浄し、Fasリガンドに特異的な、ラベリングされた検出抗体20μlを各ウェルに加えた。1時間培養した後、プレートを洗浄して、結合していない検出抗体を除去した。結合された検出抗体を溶出し、ZeptX(商標)装置において測定した。
TREM−1に関する分析は、サンドウィッチ・アッセイフォーマットを用いて開発された(「Sandwich Assay for Detection of Individual Molecules」、米国特許仮出願第60/624,785号)。TREM−1検出のための分析試薬は商業的に入手可能である(R&D Systems、ミネソタ州ミネアポリス)。96−ウェルプレートにおいて分析を行った。モノクローナル抗体を捕捉試薬として使用し、検出のために別のモノクローナルまたはポリクローナル抗体を用いた。検出抗体を、Alexa Fluor 647(登録商標)でラベリングした。
1.プレートを捕捉抗体で被覆し、5回洗浄する。
2.PBS中の1%BSA、5%スクロースにおいて阻害(またはブロック)する。
3.血清で希釈されたターゲットを加え、培養し、5回洗浄する。
4.検出抗体を加え、培養し、5回洗浄する。
5.0.1Mグリシン(pH2.8)を加えて、結合分析要素をプレートから放出する。
6.試料を処理プレートから検出プレートに移し、試料のpHを中性にし、単一粒子分析器システムにおいて測定する。
分析:このプロトコルは、本発明の単一粒子分析器システムを用いて血清中の低レベルのIL−6を定量するためのサンドウィッチ免疫測定を説明する。高濃度標準物質を緩衝タンパク質溶液で希釈することによって、検量線を作成した。10マイクロリットル(μl)の分析緩衝液および10μlの試料または標準物質を、IL−6に対して特異的な抗体で被覆された384−ウェルプレートの各ウェルに加え、2時間培養した。プレートを洗浄し、IL−6に対して特異的な、ラベリングされた検出抗体20μlを各ウェルに加えた。1時間培養した後、プレートを洗浄して結合していない検出抗体を除去した。結合した検出抗体を溶出させ、単一粒子分析器において測定した。
ヒトVEGFおよびマウスVEGFの両方に対して、VEGFを検出するための分析を開発した。いくつかの態様において、ヒトVEGF分析は、約0.1pg/mlのLODおよび0.3pg/mlのLLOQを有し、このことにより、このヒトVEGF分析は一般に用いられるELISA分析より90倍高い感度になる。マウスVEGFとの公差反応性は、検査した全ての試料種に関して最小限であった。分析は、検査した100%の血漿、細胞溶解物および使用済み媒体試料中のVEGF濃度を測定することができた。対照的に、ELISAは通常、6%の健康な血漿試料および10%の健康な細胞溶解物試料におけるヒトVEGFしか正確に検出することができなかった。両方の分析が試料中のVEGF濃度を測定した場合、ELISAがかなり多くのVEGFを検出した使用済み媒体を除いて、決定されたレベルを2つの分析に対して比較した。この不一致は、ELISAが全VEGFを測定するのに対し、本発明の分析は遊離VEGFを測定するという事実に起因するものであろう。可溶性VEGF受容体が使用済み媒体中に放出されることにより、遊離VEGF濃度はかなり低下するだろう。同一アッセイ内(Intra−Assay)の変動性は、大部分の血漿試料に対して10%より小さく、高VEGF濃度の血漿試料に対して15%より小さかった。血漿試料の分析に対するアッセイ間(Inter−assay)のCVは10%より小さかった。
抗体および抗原試薬の調製:
マウスVEGFバイオアッセイの開発に要する必要な抗体および抗原試薬の生成。マウスVEGF分析に最適な試薬を同定するために、組み替え型マウスVEGFタンパク質(R&D SystemsおよびSigma)および抗マウスVEGF抗体(R&D Systems、AbcamおよびSigma)を、適合性に関して検査した。ヒトVEGF分析のために、組み替え型VEGFタンパク質(R&D SystemsおよびAbcam)、および抗ヒトVEGF抗体(R&D SystemsおよびAbcam)を入手して検査した。サンドウィッチ−免疫測定フォーマットの捕捉工程において使用するために、磁性粒子を抗VEGF抗体で被覆した。潜在的な検出抗体を、Alexa Fluor(登録商標)色素と接合(または共役)させた。両方の分析に関する抗体ペアは、初期分析条件の基本的なセットを用いて、分析最適化プロセスの一部としてスクリーニングした。
抗体および抗原試薬の調製において調製された最適な抗体ペアを用いて、分析を行って、捕捉抗体、検出抗体および磁性粒子の濃度を最適化した。更に、種々の分析成分を試験して、各分析に対する最適な分析緩衝液を設計した。これは、最良の阻害試薬および洗剤を同定し、次いで各成分の濃度を最適化することを含む。
濃度1ng/mlの組み替え型ヒトVEGFタンパク質の標準物質溶液を連続希釈した。試料を3回調製した。VEGF分析を用いてこれらの試料の濃度を測定した。この分析を用いて測定された濃度を、予測されたVEGF濃度に対してプロットした。
分析の性能が実証され、投入される標準物質として用いられる組み替え型VEGF濃度との線形性の高い相関を提供することがわかった。ヒトVEGF分析は、0.1pg/mlのLODおよび0.3pg/mlのLLOQを有する(表12および図19A〜B)。表12は、ヒトVEGF分析の性能データを示し、分析は10%より小さいCVおよび84〜107%の回収率を示す。
ヒト血漿分析の比較:
24の個別のマウスからの血漿試料を、本発明の分析を用いて分析した;12のこれらの試料は、R&D Systems ELISAを用いた試験も行った(主張された感度のLoD=31.2pg/ml(血清/血漿))。本発明の分析は、12の試料の全てのVEGF濃度を決定し、一方、ELISA分析は、検査した試料の1/12(8.3%)のみを定量した(表16および図21)。表16は、血漿分析に関する、本発明の分析とELISAヒトVEGF分析との比較を示す。
2種類の異なるヒト細胞株を培養して採取した。より低濃度のSDSが用いられること、および試料が煮沸されないことを除いて、NCI SOP#340506に従って細胞を溶解させた。用いられる細胞株は、ヒト細胞株MDA−MB−231胸腺癌およびHT−29結腸腺癌であった。
各マウスからの8つのマウス血漿試料を、本発明の分析およびR&D Systems ELISAを用いて分析した。同程度の値が両方の分析において観察された(図23)。
異なる3つのマウス細胞株を培養し、採取した。細胞を上述のように溶解させた。用いられる細胞株は、マウス細胞株:B16黒色腫、4T1乳癌およびCT26結腸癌であった。
ヒトVEGF(hVEGF)の同一アッセイ内(Intra−Assay)の再現性:
試料の調製:
2つの異なる正常なヒト血漿試料を、1つのマイクロアッセイプレートを用いて複数回分析した。P1血漿試料をそのまま分析し、かつ1:8希釈して分析した。希釈された血漿は、低hVEGF濃度における同一アッセイ内(intra−assay)を決定するために試料源を提供した。試料は、18、21および18の反復試験において試験した。
ヒト血漿試料に関する同一アッセイ内(Intra−Assay)再現性の概略を表17に示す。表17におけるデータの概略は、試料の反復試験に対するCVが7、12および9%であることを示している。表17の最終列は、ELISA分析において用いられる標準物質と比較した分析標準物質濃度の評価に基づいて補正された測定VEGF濃度を示す。2pg/mlより低いVEGF濃度が10%より小さいCVで測定された。
試料の調製:
ヒト血漿試料に対する検量線および値のアッセイ間(inter−assay)再現性を試験するために、3日間にわたって異なる人により試料当たり3回の反復試験と共に独立して7回分析を行った。
ヒト血漿試料の間のアッセイ間(inter−assay)の変動性を表18に示す。血漿アッセイに対する変動係数(CV)は10%より小さかった(表18)。血漿分析に対するCVは同様に、分析実施番号6に関する血漿P2の結果を除いて10%より小さかった(表18)。この分析において、3つの値の内2つはほぼ一致しており、値の1つは実質的に低かった。この1回の反復試験をシリーズから除いた場合、VEGF血漿試料分析に対する全体的なCVは10%より小さくなるであろう。
試料の調製:
3つの異なるEDTAマウス血漿からの反復試験試料を、本発明の1つのマイクロタイタープレートにおいて分析した。
マウス血漿試料に対する同一アッセイ内(Intra−Assay)再現性を表19に示す。各血漿試料からの18〜21の各反復試験に対するデータを表19に示す。3つの血漿試料の反復試験に対するCVは、14%〜16%の範囲であった(表19)。
試料の調製:
4つの異なるマウスEDTA血漿試料を、10分間13,000Xgで遠心分離することによって澄ませた。その後、異なる6日間において試料を3回ずつ検査した。
マウス血漿VEGF分析のアッセイ間(inter−assay)再現性の概略を表20および21に示す。マウス血漿試料のCVは、6つのアッセイにわたって25%より小さかった(表20および21)。
マウス乳癌異種移植片からの試料は、ワシントン大学のDr.Matthew Ellisの研究室から入手した。血漿および乳癌組織は、5つの異なる異種移植片株から得た。対照として、SCIDマウスからの血漿およびマウス胸部組織を使用した。全ての試料を、マウスVEGFおよびヒトVEGFの存在に関して試験した。マウスVEGFは、正常なマウス血漿において86〜109pg/mlの範囲であった。3つの異種移植片マウスは、正常なものの2倍の大きさのVEGFレベルを有し、他の2つの異種移植片試料は、現在の正常範囲の下方におけるVEGFレベルを有する(80〜86pg/ml)。データを表22に示す。
Erenna(商標)ヒトVEGF免疫測定は、ヒト血漿および細胞溶解物中の血管内皮増殖因子(VEGF)を測定するために、定量的蛍光サンドウィッチ免疫測定技術を用いる。ヒトVEGFに対して特異的な捕捉抗体を常磁性微粒子(MP)の上にプレコートした。使用者は、MP、標準物質および試料を、被覆されていないマイクロプレートウェルにピペットで移す。培養の間、試料中に存在する遊離VEGFは、被覆されたMP上の捕捉抗体に結合する。結合していないVEGF分子を、その後の緩衝液の交換および洗浄工程の間に洗い流す。VEGFに特異的な、蛍光ラベルされた色素検出抗体を各ウェルに加え、培養する。この検出抗体は、MPの上に捕捉されたVEGFを認識してそのVEGFと結合するだろう。その後の洗浄工程の間にMPを清潔なプレートに移す。その後、溶出緩衝液を加えて培養する。溶出緩衝液は、結合したタンパク質サンドウィッチをMP表面から解離させる。蛍光抗体はこの時、ウェル内で浮遊している。最終のマイクロプレートに移す間にこれらの抗体は微粒子から分離され、プレートは、蛍光分子をカウントするErennaシステムの中に取り付けられる。蛍光ラベルされた検出抗体のカウントされた数は、捕捉された際に試料中に存在する遊離VEGFの量に直接比例する。未知の試料中の遊離VEGFの量は検量線から内挿する。
Erenna VEGF試薬キットは2〜8℃で保存するべきである。標準物質は、別の容器においてドライアイス上で輸送し、−70℃以下で保存するべきである。キット到着時に標準物質が凍ったままであることが重要である。キット要素の有効期限は、要素が適切に保存された場合および各要素が1回使用された場合にのみ保証される。成分を適切な有効期限によってラベリングする。
・脱イオン水または蒸留水
・20μl、100μlおよび250μlを移す又は加えることができるマルチチャンネルピペット
・マイクロ遠心分離器チューブ
・小型遠心分離器
・250mL容器
・250mLメスシリンダー
・生物学的試料を扱う際には、防護服およびグローブを着用することによって、常に注意すること。
・この試薬キットの成分は、約0.1%のアジ化ナトリウムを保存料として含有する。アジ化ナトリウムは、酸または金属と混合した場合に有毒かつ危険な化合物である。アジ化ナトリウムを含有する溶液は適切に廃棄するべきである。
・実験台およびピペットを、使用前に70%イソプロパノールでしっかりと拭く。
・バイアルをあける前に、高濃度標準物質および初期の標準希釈物を高速回転させる。
・交差汚染の回避を助けるために、滅菌ピペットチップおよび試薬トレイを用いる。
・高濃度の標準物質を移す際にフィルターチップを用いる。
・標準物質および試料を調製するために96−ウェル1mLポリプロピレン希釈プレートを用いることが推奨される。
・各標準点の3回の反復試験試料を希釈プレートから移し、その後96−ウェルVEGF分析プレートの中に移すことが推奨される。
・各移し替え(または移動)の前に、チップを2回予め湿らせる(ウェル内で吸引および排出する)。
1.使用前に全ての試薬を室温に温める。
2.1X洗浄緩衝液を(10X洗浄緩衝液から)以下のように調製する:
a.10X洗浄緩衝液の25mL瓶を250mL容器に注ぎ入れる。
b.225mLの脱イオン水を加える。
c.ゆっくりと反転させることによって十分に混合する。
3.使用する直前に、回転器を用いて30分間バイアルを反転させることによってMPを再懸濁させ、それによって、バイアルにおいてMPを確実に均等に分布させるのに役立てる。
(標準物質 − 初期標準物質希釈の説明)
1.バイアルを開ける前に、小型遠心分離器において標準物質バイアルを渦動および高速回転させる。材料の減損、または標本もしくはプレートのエアロゾル汚染を防ぐために、この高濃度標準物質バイアルを開ける際に注意する。
2.VEGF標準物質濃度に関して標準物質分析の証明書を参照する。標準希釈剤でストックを10ng/mLに希釈する。
検量線を作成して、96−ウェル1mlディープ希釈プレートにおける列にする。1:2の連続希釈を行って、200pg/ml〜0.05pg/mlの曲線を得る。標準物質を3回検査する。
検量線を作成して、96−ウェル1mlディープ希釈プレートにおける列にする。1:2の連続希釈を行って、4000pg/ml〜0.24pg/mlの曲線を得る。標準物質を3回検査する。
血漿試料を、使用する直前に15,800xgより大きい遠心力で10分間遠心分離することが重要である。微粒子を避けながら注意深くピペットで採取する;脂質層の下をゆっくりと吸引する。凍結−解凍サイクルの繰り返しを避ける。移動を容易にするために、試料を96−ウェルプレートに加える。
(分析の設定)
キットに含まれる取扱説明書による試薬調製、およびバルク試薬パッケージの挿入を行う。上述のように検量線を作成し、試料を調製する。
微粒子(MP)を再懸濁させた後に、100μlのVEGF捕捉試薬を96−ウェルポリプロピレンプレート(PPP)に加える。ウェル毎に、100μlの標準物質/試料を96−ウェルPPPにピペットで採取する。プレートを、仮のプレートシール(AxySeal、PCRSPプレート封止フィルム)または同等物で封止する。室温(RT)で2時間、培地環境で培養する/振動させる。仮のプレートシールを注意深く除去して跳ね返りを避ける。プレートを磁石(Dynal MPC(登録商標)−96S)上に設置し、MPを安定させる(全てのMPをペレットとして磁石に確実に寄せ集める)ために2分待ち、その後、上澄みを吸引する(MPは目に見えるままである)。MPを固定したままで、250μlの洗浄緩衝液を各ウェルに加える。2分待ち(MPは寄せ集められたままである)、緩衝液を吸引する。
プレートを磁石から取り外し、20μlのVEGF検出試薬を各ウェルに加える。プレートを仮のシールで封止する。遠心分離器において最大100Xgで脈動(pulse)させる。遠心分離器からプレートを取り出し、室温で1時間培養する/振動させる。プレートシールを除去し、プレートを磁石上に設置する。2分待ち、上澄みを吸引する。250μlの洗浄緩衝液を3回(3X)加えて除去し、その間MPを磁化する/寄せ集める。各緩衝液を加えた後に2分間脈動させる。MPを磁石から浮遊させない又は取り除かない。プレートを磁石から取り外し、250μlの洗浄緩衝液を各ウェルに加える。プレートを10秒間振動させてMPを再懸濁させる。各ウェルの内容物を新しい96−ウェルPPPに移す。新たな96−ウェルプレートを磁石上に設置し、MPを寄せ集める/安定させるために2分間待つ。洗浄緩衝液を除去する。プレートを磁石から取り外し、250μlの洗浄緩衝液を加えて10秒間振動させる。プレートを磁石上に取り付け、2分待ち、その後緩衝液を吸引する。サイクルを繰り返すと、磁化されたMPは目に見えるはずである。
プレートを磁石から取り外し、ウェル毎に20μlの溶出緩衝液を加える。プレートを仮のシールで封止し、遠心分離器において最大100xgで脈動させる。室温で30分間培養する/振動させる。別々に、384−ウェルポリプロピレンプレートの上に384−ウェルフィルタープレートを設置し、遠心分離アダプターカラムを用いてフィルター−ボトムプレートを作製する。96−ウェルプレートからシールを取り除き、標本を384−ウェルフィルター−ボトムプレートに移す前に、磁石上で2分間MPを集合させる。フィルター−ボトムプレートの上部を仮のプレートシールで覆い、プレートを遠心分離器の中に設置する。室温にて1分間、850xgでプレートを回転させる。フィルタープレートを取り外して廃棄し、穴開け可能な(耐久性のある)プレートシール(Nunc、235306)を用いて分析プレートを覆う。良好な封止を確保するために、プレートシールローラー(VWR # 60941−118)を用いる。完成した分析プレートをErenna免疫測定システムに取り付ける。
1. 全ての試薬、検量線および試料を指示通りに準備する。
2. 96−ウェルポリプロピレンプレートの各ウェルに100μlの捕捉試薬を加え、次いで100μlの標準物質/試料を加える。
3. 覆いをし、室温で2時間培養する/振動させる。
4. カバーを取り除き、プレートを磁石の上に設置し、MPを2分間安定させ/寄せ集め、上澄みを取り除く。
5. プレートを磁石上に置いた状態で、250μlの洗浄緩衝液を加える。2分間待ち、緩衝液を取り除く。
6. 磁石から取り外し、20μlのVEGF検出試薬を各ウェルに加える。100xgでパルス(pulse)遠心分離する。
7. 覆いをし、室温で1時間培養する/振動させる。
8. プレートを磁石の上に設置し、MPを寄せ集めるために2分間待つ。上澄みを除去する。
9. 磁石の近くでMPを磁気的に寄せ集めながら、250μlの洗浄緩衝液を3回加えて除去する。各サイクルの間に、緩衝液を吸引する前に2分間待つ。
10.磁石から取り外し、250μlの洗浄緩衝液を加え、10秒間プレートを振動させて、MPを再懸濁させる。全内容物を新しい96−ウェルプレートに移す。
11.プレートを磁石の上に設置し、2分間待つ。上澄みを除去する。
12.磁石から取り外し、250μlの洗浄緩衝液を加え、10秒間プレートを振動させる。
13.工程11および12を各々繰り返す。
14.磁石から取り外し、各ウェルに20μlの溶出緩衝液を加える。100xgでパルス遠心分離する。
15.覆いをし、室温で30分間培養する/振動させる。
16.フィルタープレートを384−ウェルプレート(分析プレート)の上に設置する。
17.96−ウェルプレートの内容物を、384−ウェルフィルタープレート/分析プレートの組み合わせに移す。
18.フィルタープレートの組み合わせを覆い、1分間850xgで遠心分離する。
19.上部のフィルタープレートを取り外して廃棄する。384−ウェルプレートを穴開け可能なプレートシールカバーで覆う。
20.プレートをErennaシステムに取り付ける。
この分析は、様々な種類の血漿および血清を検査するのに用いてよい。
(通常の検量線)
図26に示す検量線を、情報を提供する目的のために提供する。検量線は、分析する試料の各セットに対して作成するべきである。
Erenna(商標)マウスVEGF免疫測定は、マウス血漿および細胞溶解物中の血管内皮増殖因子(VEGF)を測定するために、定量的蛍光サンドウィッチ免疫測定技術を使用する。マウスVEGFに対して特異的な捕捉抗体を常磁性微粒子(MP)の上にプレコートした。使用者は、MP、標準物質および試料を、被覆されていないマイクロプレートウェルにピペットで移す。培養の間、試料中に存在するVEGFは、被覆されたMP上の捕捉抗体に結合する。結合していないVEGF分子を、その後の緩衝液の交換および洗浄工程の間に洗い流す。蛍光ラベルされた色素検出抗体を各ウェルに加え、培養する。この検出抗体は、MPの上に捕捉されたVEGFを認識してそのVEGFと結合するだろう。その後の洗浄工程の間にMPを清潔なプレートに移す。その後、溶出緩衝液を加えて培養する。溶出緩衝液は、結合したタンパク質サンドウィッチをMP表面から解離させる。蛍光抗体はこの時、ウェル内で浮遊している。最終のマイクロプレートに移す間にこれらの抗体は分離され、プレートは、蛍光分子をカウントするErennaシステムの中に取り付けられる。蛍光ラベルされた検出抗体のカウントされた数は、捕捉された際に試料中に存在するVEGFの量に直接比例する。未知の試料中のVEGFの量は検量線から内挿する。
Erenna VEGF試薬キットは2〜8℃で保存するべきである。標準物質は、別の容器においてドライアイス上で輸送し、−70℃以下で保存するべきである。キット到着時に標準物質が凍ったままであることが重要である。キット成分の有効期限は、成分が適切に保存された場合、および各成分が1回使用された場合にのみ保証される。成分を適切な有効期限によってラベリングする。
・脱イオン水または蒸留水
・20μl、100μlおよび250μlを移す又は加えることができるマルチチャンネルピペット
・マイクロ遠心分離器チューブ
・小型遠心分離器
・250mL容器
・250mLメスシリンダー
生物学的試料を扱う際には、防護服およびグローブを着用することによって、常に注意すること。この試薬キットの成分は、約0.1%のアジ化ナトリウムを保存料として含有する。アジ化ナトリウムは、酸または金属と混合した場合に有毒かつ危険な化合物である。アジ化ナトリウムを含有する溶液は適切に廃棄するべきである。
・実験台およびピペットを、使用前に70%イソプロパノールでしっかりと拭く。
・バイアルをあける前に、高濃度標準物質および初期の標準希釈物を高速回転させる。
・交差汚染の回避を助けるために、滅菌ピペットチップおよび試薬トレイを用いる。
・高濃度の標準物質を移す際にフィルターチップを用いる。
・標準物質および試料を調製するために96−ウェル1mLポリプロピレン希釈プレートを用いることが推奨される。
・各標準点の3回の反復試験試料を希釈プレートから移し、その後96−ウェルVEGF分析プレートの中に移すことが推奨される。
・各移し替え(または移動)の前に、チップを2回予め湿らせる(ウェル内で吸引および排出する)。
使用前に全ての試薬を室温に温める。1X洗浄緩衝液を(10X洗浄緩衝液から)下記のように調製する:10X洗浄緩衝液の25mL瓶を250mL容器に注ぎ入れる;225mLの脱イオン水を加える;ゆっくりと反転させることによって十分に混合する。使用前に、回転器を用いて30分間バイアルを反転させることによってMPを再懸濁させ、それによって、バイアルにおいてMPを確実に均等に分布させる。
(標準物質−初期標準物質希釈の説明)
バイアルを開ける前に、小型遠心分離器において標準物質バイアルを渦動および高速回転させる。材料の減損、または標本もしくはプレートのエアロゾル汚染を防ぐために、この高濃度標準物質バイアルを開ける際に注意する。VEGF標準物質濃度に関して標準物質分析の証明書を参照する。標準希釈剤でストックを10ng/mLに希釈する。
検量線を作成して、96−ウェル1mlディープ希釈プレートにおける列にする。1:2の連続希釈を行って、4000pg/ml〜3.9pg/mlの曲線を得る。標準物質を3回検査する。
使用する直前に、血漿試料を15,800xgより大きい遠心力で10分間遠心分離する。(微)粒子を避けながら注意深くピペットで採取する;脂質層の下をゆっくり吸引する。凍結−解凍サイクルの繰り返しを避ける。移動を容易にするために、試料を96−ウェルプレートに加える。使用する直前に、溶解物を4℃、4,600xgで5分間遠心分離するべきである。注意深く上澄みをピペットで取り除く。凍結−解凍サイクルを回避する。溶解物は、分析にかける前に、少なくとも10倍希釈するべきである。
(分析の準備)
キットに含まれる指示毎の試薬調製、およびバルク試薬パッケージの挿入を行う。上述のように検量線を作成し、試料を調製する。
微粒子(MP)を再懸濁させた後に、ウェルごとに50μlのVEGF捕捉試薬を96−ウェルポリプロピレンプレート(PPP)に加える。ウェルごとに10μlの標準物質/試料を96−ウェルPPPにピペットで加える。プレートを最大100xgでパルス回転(Pulse spin)させて、全ての試料が確実にMP混合物内にあるようにする。プレートを、仮のプレートシール(AxySeal、PCRSPプレート封止フィルム)または同等物で封止する。室温(RT)で2時間、培地環境で培養する/振動させる。仮のプレートシールを注意深く除去して跳ね返りを避ける。プレートを磁石(Dynal MPC(登録商標)−96S)上に設置し、MPを安定させる(全てのMPをペレットとして磁石に確実に寄せ集める)ために2分待ち、その後、上澄みを吸引する(MPは目に見えるままである)。MPを固定したままで、250μlの洗浄緩衝液を加える。2分間待ち(MPは寄せ集められたままである)、緩衝液を吸引する。
プレートを磁石から取り外し、20μlのVEGF検出試薬を各ウェルに加える。プレートを仮のシールで封止する。遠心分離器において最大100Xgで脈動させる。遠心分離器からプレートを取り出し、室温で2時間培養する/振動させる。プレートシールを除去し、プレートを磁石上に設置する。2分待ち、上澄みを吸引する。250μlの洗浄緩衝液を3回(3X)加えて除去し、その間MPは磁化/収集される。各緩衝液を加えた後に2分間脈動させる。MPを磁石から浮遊させない又は取り除かない。プレートを磁石から取り外し、250μlの洗浄緩衝液を各ウェルに加える。プレートを10秒間振動させてMPを再懸濁させる。各ウェルの内容物を新しい96−ウェルPPPに移す。新たな96−ウェルプレートを磁石上に設置し、MPを寄せ集める/安定させるために2分間待つ。洗浄緩衝液を除去する。プレートを磁石から取り外し、250μlの洗浄緩衝液を加えて10秒間振動させる。プレートを磁石上に取り付け、2分待ち、その後緩衝液を吸引する。サイクルを繰り返すと、磁化されたMPが目に見えるはずである。
プレートを磁石から取り外し、ウェル毎に20μlの溶出緩衝液を加える。プレートを仮のシールで封止し、遠心分離器において最大100xgで脈動させる。室温で30分間培養する/振動させる。別々に、384−ウェルPPP分析プレートの上に384−ウェルフィルター−プレートを設置し、フィルター−ボトムプレートを作製する。96−ウェルプレートからシールを取り除き、標本を384−ウェルフィルター−ボトムプレートに移す。フィルター−ボトムプレートの上部を仮のプレートシールで覆い、プレートを遠心分離器の中に設置する。室温にて1分間、850xgでプレートを回転させる。フィルタープレートを取り外して廃棄し、穴開け可能な(耐久性のある)プレートシール(Nunc、235306)を用いて分析プレートを覆う。良好な封止を確保するために、プレートシールローラー(VWR # 60941−118)を用いる。完成した分析プレートをErenna免疫測定システムに取り付ける。
1. 全ての試薬、検量線および試料を指示通りに準備する。
2. 96−ウェルポリプロピレンプレートの各セルに50μlの捕捉試薬を加え、次いで10μlの標準物質/試料を加える。
3. 最大100xgでプレートをパルス回転させて、試料が確実にMP溶液中に存在するようにする。
4. 覆いをし、室温で2時間培養する/振動させる。
5. 覆いを取り除き、プレートを磁石の上に設置し、MPを2分間安定させ/寄せ集め、上澄みを取り除く。
6. プレートを磁石上に置いた状態で、250μlの洗浄緩衝液を加える。2分間待ち、緩衝液を取り除く。
7. 磁石から取り外し、20μlのVEGF検出試薬を各ウェルに加える。1000RPMでパルス遠心分離する。
8. 覆いをし、室温で2時間培養する/振動させる。
9. プレートを磁石の上に設置し、MPを寄せ集めるために2分間待つ。上澄みを除去する。
10.磁石の近くでMPを磁気的に寄せ集めながら、250μlの洗浄緩衝液を3回加えて除去する。各サイクルの間に、緩衝液を吸引する前に2分間待つ。
11.磁石から取り外し、250μlの洗浄緩衝液を加え、10秒間プレートを振動させて、MPを再懸濁させる。全内容物を新しい96−ウェルプレートに移す。
12.プレートを磁石の上に設置し、2分間待つ。上澄みを除去する。
13.磁石から取り外し、250μlの洗浄緩衝液を加え、10秒間プレートを振動させる。
14.工程11、12および13を各々繰り返す。
15.磁石から取り外し、各ウェルに20μlの溶出緩衝液を加える。100xgでパルス遠心分離する。
16.覆いをし、室温で30分間培養する/振動させる。
17.フィルタープレートを384−ウェルプレート(分析プレート)の上に設置する。
18.96−ウェルプレートの内容物を、384−ウェルフィルタープレート/分析プレートの組み合わせに移す。
19.フィルタープレートの組み合わせを覆い、1分間850xgで遠心分離する。
20.上部のフィルタープレートを取り外して廃棄する。384−ウェルプレートを穴開け可能なプレートシールカバーで覆う。
21.プレートをErennaシステムに取り付ける。
この分析は、様々な種類の血漿および細胞溶解物を検査するのに用いてよい。
(通常の検量線)
表30に示す検量線は、情報を与える目的で提供する。検量線は、分析する試料の各セットに対して作成するべきである。
血漿中の異なる濃度のVEGFに関するシステムの感度を表31に示す。データを図25Aにおいて図示する。
図26は、VEGFに関して予測値に対する測定値を3つの異なる分析形式で示す。異なる固相免疫測定形式を用いた3つのヒトVEGF分析に対する標準的な検量線(または較正曲線)を、連続的に希釈した較正試料の共通の組において作成した。hVEGF MPをベースとする分析は、固相捕捉形式としての検出抗体、および蛍光ラベリングされた検出抗体で被覆された常磁性微粒子を使用する。hVEGFプレートをベースとする分析は、384−ウェルプレートを使用し、ウェルは、固相捕捉形式としての検出抗体、および蛍光ラベリングされた検出抗体で被覆した。hVEGF HRP−ELISA分析は、R&D Systemsから商業的に利用可能なELISA分析(LoD=31.2pg/ml)であり、これは、96−ウェル固相捕捉フォーマットからなり、酵素的に共役した検出抗体を使用する。
健康な患者および乳癌患者からの10μlの試料において検出されたヒトVEGFのレベルを比較した。標準的なELISA形式(LOD=31.2pg/ml)に対する、本発明の方法を用いた検出限界(LOD)(Errena;LOD=3.5pg/ml)を示す。ヒト血漿(図27A)および組織(図27B)試料を、Erenna hVEGF−A免疫測定で試験した。(図27A)hVEGF−Aの血中濃度を、健康な血液ドナー(n=24)および乳癌の被験体(n=15)からの血漿試料において測定した。血漿VEGFレベルのメジアンおよび4分位範囲を計算し、健康な血液ドナーと乳癌の被験体との間で比較した。(図27B)乳癌の被験体(n=10)からの適合された悪性組織生検標本と非悪性(または良性)組織生検標本との、メジアンおよび4分位範囲の比較。組織試料を、手術後に正常または悪性のいずれかとして指定し、結果を、試料当たりの全タンパク質1mg当たりのVEGFタンパク質(pg)で示す。標準的なELISA分析を用いた定量は、健康な試料の質の悪い定量を示したが、本発明による血漿試料の定量には、健康な被験体および癌の被験体から試験された全ての試料が含まれた。標準的なELISA分析を用いた定量は、健康な試料の質の悪い定量を示すが、血漿における場合と同様に、本発明による組織試料の定量には健康な被験体および癌の被験体から試験された全ての試料が含まれる。
図28は、本発明に関する読み出し方法の相関を示す。hVEGF被分析物に対して検量線を作成し、Erennaシステムを用いて測定した。3つの異なる読み出し方法の各々に対して結果を示す:(a)全光子(TP)、これは標準的なELISAプレート・リーダー技術に類似している;(b)検出されたイベント(DE)、これはインタロゲーション・ゾーンを通過する単一分子を別々のイベントとしてカウントする;ならびに(c)全光子および検出されたイベントを組み合わせる処理アルゴリズムの使用。(図28A)および(図28B)平均の2標準偏差を傾きで除したものを用いた各方法(DEおよびTP)の結果を用いて、LoDを計算した。図28Aおよび図28Bにおけるデータを、4つのパラメータの曲線を用いて分析した。線形回帰を用いて図28Cにおけるデータを分析し、得られた方程式および相関統計を示す。
本発明は、Aβ−40およびAβ−42に関する分析を提供する。試料中のAβ−40およびAβ−42に関するシステムの詳細を表33に示す。
IL−1α検出における、本発明によって提供される分析の感度を表34に示す。LoDは通常、約0.1pg/mlまたはそれより小さい。図30Aは、表34で表されるデータに対応するグラフを示す。
IL−1βの異なる濃度に関する一の態様の感度を、下記の表36に示す。LoDは通常、0.02pg/mlまたはそれより少ない。測定された又は計算されたIL−1β濃度に対する、予測された濃度を図31Aにおいて図示する。
本発明によって提供されるIL−4分析の感度を表38に示す。計算または測定されたIL−4レベルに対する、予測されたIL−4濃度レベルを図32Aに示す。
本発明によって提供されるIL−6分析の一の態様の感度および確度を表40に示す。分析によって計算または測定された濃度に対する、予測されたIL−6濃度を、図33Aにグラフで示す。
ここで開示される種々のマーカーの検出限界(LOD)を本発明によって分析した。分析の結果を表42および43に示す。種々のマーカーに対する用途を図42、43、44に示す。
材料および方法:CHFに罹患している被験体(N=32、40%女性、76±11歳、56%NYHA I/II、44%NYHA III)ならびに現在のところ健康な被験体の年齢および性別が適合した対照群(N=32、40%女性、平均年齢75±10歳)からEDTA−血漿を収集した。収集したEDTA血漿パネルはProMedDxから購入した。
Claims (23)
- 被験体からの試料におけるバイオマーカーを検出することを含む、被験体における心血管の状態を検出またはモニタリングする方法であって、
バイオマーカーは、トロポニン−I(cTnI)およびインターロイキン17a(IL−17a)を含み、
少なくとも1つのバイオマーカーの検出限界は20pg/mlより小さい、方法。 - B型ナトリウム利尿ペプチド(BNP)、proBNP、NT−proBNP、インターロイキン6(IL−6)および腫瘍壊死因子α(TNF−α)からなる群から選択される少なくとも1つの追加のバイオマーカーの検出を更に含む、請求項1に記載の方法。
- 20pg/mlより小さい検出限界を有する少なくとも1つのバイオマーカーの検出が、試料をマーカーに対するラベルに接触させること、およびラベルの存在または不存在を検出することを含み、ラベルの存在の検出は対応するマーカーの存在を意味する、請求項1に記載の方法。
- ラベルが蛍光部分を含み、20pg/mlより小さい検出限界を有する少なくとも1つのバイオマーカーが、バイオマーカーの単一分子に対応するラベルを含むインタロゲーション・スペースにおいて検出される、請求項3に記載の方法。
- ラベルが蛍光部分を含み、検出が、単一分子検出器にラベルを通すことを含み、単一分子検出器が
(a)蛍光部分を刺激するための電磁放射線源;
(b)電磁波源から放射される電磁放射線を受け取るためのインタロゲーション・スペース;および
(c)刺激された蛍光部分の電磁気学的特性を決定するための、インタロゲーション・スペースに操作可能に接続された電磁放射線検出器
を含む、請求項3に記載の方法。 - 少なくとも1つのマーカーの検出限界が10pg/ml〜0.01pg/mlの範囲である、請求項1に記載の方法。
- 前記状態が鬱血性心不全を含み、バイオマーカーがcTnI、BNP、IL−6、TNF−αおよびIL−17aを含む、請求項2に記載の方法。
- 被験体における心血管の状態を検出する方法であって、その方法は、心疾患の生理学的バイオマーカーを測定すること、および被験体からの血液試料中のバイオマーカーを検出することを含み、バイオマーカーは、トロポニン−I(cTnI)およびインターロイキン17a(IL−17a)を含み、
少なくとも1つのバイオマーカーの検出限界は20pg/mlより小さい、方法。 - B型ナトリウム利尿ペプチド(BNP)、proBNP、NT−proBNP、インターロイキン6(IL−6)および腫瘍壊死因子α(TNF−α)からなる群から選択される少なくとも1つの追加のバイオマーカーの検出を更に含む、請求項8に記載の方法。
- 生理学的バイオマーカーの測定がストレス試験にて行われる、請求項8に記載の方法。
- 生理学的バイオマーカーの測定が睡眠試験にて行われる、請求項8に記載の方法。
- バイオマーカーが1つまたはそれより多くのサイトカインを含む、請求項11に記載の方法。
- 1つまたはそれより多くのサイトカインがTNF−α、IL−1、IL−6および/またはhsCRPを含む、請求項12に記載の方法。
- 生理学的バイオマーカーが頸動脈内膜中膜厚(CIMT)である、請求項8に記載の方法。
- バイオマーカーが1つまたはそれより多くの血管炎症マーカーを含む、請求項14に記載の方法。
- 1つまたはそれより多くの血管炎症マーカーがhsCRP、IL−6、TNF−αおよび/またはIL−1を含む、請求項15に記載の方法。
- 被験体における鬱血性心不全を検出する方法であって、その方法は、バイオマーカーのパネルの1つまたはそれより多くの要素が、正常集団における1つまたはそれより多くのバイオマーカーのレベルと比較して増加しているか否かを検出することを含み、バイオマーカーは、トロポニン−I(cTnI)およびインターロイキン17a(IL−17a)を含み、パネルの少なくとも1つの要素の検出限界は20pg/mlより小さい、方法。
- パネルの要素が、B型ナトリウム利尿ペプチド(BNP)、proBNP、NT−proBNP、インターロイキン6(IL−6)および腫瘍壊死因子α(TNF−α)の少なくとも1つを更に含む、請求項17に記載の方法。
- パネルの20pg/mlより小さい検出限界を有する少なくとも1つの要素がcTnIである、請求項17に記載の方法。
- 20pg/mlより小さい検出限界を有する少なくとも1つのバイオマーカーの検出が、試料をマーカーに対するラベルに接触させること、およびラベルの存在または不存在を検出することを含み、ラベルの存在の検出は、対応するマーカーの存在を意味する、請求項17に記載の方法。
- ラベルが蛍光部分を含み、20pg/mlより小さい検出限界を有する少なくとも1つのバイオマーカーが、バイオマーカーの単一分子に対応するラベルを含むインタロゲーション・スペースにおいて検出される、請求項17に記載の方法。
- ラベルが蛍光部分を含み、検出が、単一分子検出器にラベルを通すことを含み、単一分子検出器が
(a)蛍光部分を刺激するための電磁放射線源;
(b)電磁波源から放射される電磁放射線を受け取るためのインタロゲーション・スペース;および
(c)刺激された蛍光部分の電磁気学的特性を決定するための、インタロゲーション・スペースに操作可能に接続された電磁放射線検出器
を含む、請求項17に記載の方法。 - 少なくとも1つのマーカーの検出限界が10pg/ml〜0.01pg/mlの範囲である、請求項22に記載の方法。
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