JP5432923B2 - Aβ除去材、Aβ除去器及びAβ除去システム - Google Patents
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Description
(1)副作用が少ない。例えば、T細胞の活性化など、免疫療法のような副作用はほとんどない。
(2)迅速な効果が得られる。数時間で血中Aβ濃度を低下させることが可能である。それに伴う脳内Aβ濃度の低下が期待できる。
(3)免疫療法などに比較して安価に実施できる。
本発明は主として以上の知見及び成果に基づく。本発明は以下の通りである。
[1] セルロース、シリカ、ポリビニルアルコール及び活性炭からなる群より選択されるいずれかの材質の担体であって、その表面にアルキル鎖を有しないか、又はその表面に炭素数1〜18のアルキル鎖を有する担体からなる、アミロイドβタンパク質除去材。
[2] 前記材質がセルロース又は活性炭である、[1]に記載のアミロイドβタンパク質除去材。
[3] 前記材質がシリカであり、且つ前記アルキル鎖がシラノール基(SiOH)を介して前記担体に結合している、[1]に記載のアミロイドβタンパク質除去材。
[4] 前記炭素数が1〜5である、[1]〜[3]のいずれか一項に記載のアミロイドβタンパク質除去材。
[5] 前記炭素数が1〜2である、[1]〜[3]のいずれか一項に記載のアミロイドβタンパク質除去材。
[6] 前記材質がシリカであり、且つ担体の表面にアルキル鎖を有しない、[1]に記載のアミロイドβタンパク質除去材。
[7] 前記材質が活性炭であり、且つ担体の表面が親水性ポリマーで被覆されている、[1]に記載のアミロイドβタンパク質除去材。
[8] 前記親水性ポリマーがメタクリル酸2−ヒドロキシエチルエステル(pHEMA)のポリマーである、[7]に記載のアミロイドβタンパク質除去材。
[9] 注入口と排出口を備えた容器内に、[1]〜[8]のいずれか一項に記載のアミロイドβタンパク質除去材を収容してなる、アミロイドβタンパク質除去器。
[10] 前記容器がカラム状であり、その中に前記アミロイドβタンパク質除去材が充填されている、[9]に記載のアミロイドβタンパク質除去器。
[11] [9]又は[10]に記載のアミロイドβタンパク質除去器と、該アミロイドβタンパク質除去器に液体を供給するためのポンプとを備えてなる、アミロイドβタンパク質除去システム。
[12] 前記アミロイドβタンパク質除去器と直列的に接続される透析器を更に備えてなる、[11]に記載のアミロイドβタンパク質除去システム。
実際の患者血液からのAβ除去に際しては、抗血栓性、補体活性化が低いこと、などの血液適合性の評価も踏まえて、Aβ除去材を選択することが好ましい。
表面にデキストラン硫酸を結合したセルロースゲル(試料名を「SLS」とする。カネカ社製、製品名:セレソーブ(商品名))750μL、石油ピッチ系ビーズ状活性炭(試料名を「Hm」とする。血液適合性を向上させるため表面にpolyHEMA=hydroxy ethyl metacrylate polymerがコートされている。旭化成クラレメディカル社製、製品名:ヘモソーバ(商品名))4.38ml、表面にトリプトファンを結合したポリビニルアルコールゲル(試料名を「Im」とする。旭化成クラレメディカル社製、製品名:イムソーバ(商品名))4.38ml、表面にヘキサデシル基を結合したセルロースビーズ(試料名を「Lx」とする。カネカ社製、製品名:リクセル(商品名))4.38ml、酢酸セルロースビーズ(試料名を「Ad」とする。JIMRO社製、製品名:アダカラム(商品名))2.75g、ポリエステル不織布(試料名を「CS」とする。旭化成クラレメディカル社製、製品名:セルソーバ(商品名))1cm幅輪切りにしたものの6分の1(360度中の64度分)を、滅菌済みの容器から各々取り出し、ポリプロプレン(以下「PP」)製15ml遠心管に入れ、10mlのリン酸塩化ナトリウム緩衝液(以下PBS(-))で3回洗浄の後、12ng/mlのAβ1-40(和光純薬社製)のPBS(-)溶液を10ml加えた。各試料の量は臨床で成人に用いられているカラムでの使用量の80分の1を目安とした。また、10mlのAβ溶液は、臨床で処理する血液量の400分の1程度に相当し、また、Aβ濃度は、抗Aβ抗体投与時に上昇する血中Aβ濃度を参考に設定しており、通常の血中濃度の100倍程度となる。全体として、各試料への負荷が大きくなるように実験をデザインした。Aβ溶液には10mg/mlのウシ血清アルブミン(和光純薬、脂肪酸/グロブリンフリー。以下「BSA」)を添加し模擬血漿とした。対照としては、同じPP製の15ml遠心管に10mlの10mg/mlのBSA/PBS(-)溶液を入れたものを用いた。室温、暗所でこれらのサンプル入り遠心管を16時間浸透したのち、Aβ1-40測定用のELISAキット(和光純薬社製)を用いて、Aβ1-40濃度を測定した(検量線範囲に入るよう、各サンプルは希釈して測定した)。対照を100%としたときのAβ1-40の減少率(吸着率)は、試料名SLS:28.7%、試料名Hm:98.1%、試料名Im:97.9%、試料名Lx:99.1%、試料名Ad:21.3%、試料名CS:30.0%、であった(図2)。このように、Hm、Im及びLxが高い吸着能を示した。
Aβ溶液として16.7ng/mlのAβ1-42を用い、Aβ1-42測定用のELISAキット(和光純薬社製)を用いたこと以外は実施例1と同様の条件で実験を行い、6種の医用材料のAβ1-42吸着能を評価した。16時間振盪後の対照を100%としたAβ1-42の減少率(吸着率)は、試料名SLS:0.0%、試料名Hm:99.0%、試料名Im:39.1%、試料名Lx:97.7%、試料名Ad:14.9%、試料名CS:33.9%、であった(図3)。このように、Aβ1-42に対してもHm及びLxが高い吸着能を示した。一方、Imについては中程度の吸着能を示した。
Hm、Im及びLxの3材料についてAβ1-40の吸着能を室温下、振盪時間1時間、4時間、16時間の各点で測定した。実験条件は実施例1に準じた。各時間の対照を100%としたAβ1-40の減少率(吸着率)は、1時間の時点で試料名Hm:92.8%、試料名Im:63.4%、試料名Lx:93.0%、4時間の時点で試料名Hm:93.5%、試料名Im:58.6%、試料名Lx:93.9%、16時間の時点で試料名Hm:93.0%、試料名Im:66.8%、試料名Lx:90.2%であった(図4)。Hm及びLxがAβ1-40を速やかに且つ効率的に吸着することが分かる。また、吸着後のAβ1-40の脱離は認められない。
Hm、Im及びLxの3材料についてAβ1-42の吸着能を室温下、振盪時間1時間、4時間、16時間の各点で測定した。実験条件は実施例2に準じた。各時間の対照を100%としたAβ1-42の減少率(吸着率)は、1時間の時点で試料名Hm:91.6%、試料名Im:41.5%、試料名Lx:88.7%、4時間の時点で試料名Hm:98.4%、試料名Im:60.1%、試料名Lx:98.5%、16時間の時点で試料名Hm:98.6%、試料名Im:16.0%、試料名Lx:95.3%であった(図5)。Hm及びLxがAβ1-42を速やかに且つ効率的に吸着することが分かる。また、吸着後のAβ1-42の脱離は認められない。
血漿交換に使用したバッグにわずかに残留したヒト新鮮凍結血漿(以下FFP)を回収する作業を繰り返し、FFPを集めた。10mg/mlのBSA/PBS(-)溶液の代わりに、こうして集めたFFPを用いて、Hm、Im及びLxの3材料についてAβ1-40の吸着能を室温下、振盪時間4時間、16時間の各点で測定した。吸着実験を行う際には、このFFPにAβ1-40ペプチドを添加し、最終濃度はおよそ100倍の22.0ng/mlとした。実験条件は実施例1に準じた。各時間の対照を100%としたAβ1-40の減少率(吸着率)は、1時間の時点で試料名Hm:98.3%、試料名Im:98.5%、試料名Lx:98.5%、4時間の時点で試料名Hm:99.0%、試料名Im:52.5%、試料名Lx:99.1%、16時間の時点で試料名Hm:99.2%、試料名Im:67.3%、試料名Lx:99.2%であった(図6)。このように、ヒト血漿を用いた場合においても、Hm及びLxがAβ1-40を速やかに且つ効率的に吸着することが示された。吸着後のAβ1-40の脱離は認められない。
10mg/mlのBSA/PBS(-)溶液の代わりに、実施例5と同様にして集めたFFPを用いてHm、Im及びLxの3材料についてAβ1-42の吸着能を室温下、振盪時間0.5時間、1時間、16時間の各点で測定した。吸着材に接触させたAβ1-42/FFPの濃度は、23.8ng/mlであり、FFPそのもののAβ1-42濃度23.4pg/mlのおよそ1000倍の高濃度であった。実験条件は実施例2に準じた。各時間の対照を100%としたAβ1-42の減少率(吸着率)は、0.5時間の時点で試料名Hm:94.8%、試料名Im:56.8%、試料名Lx:97.2%、1時間の時点で試料名Hm:96.9%、試料名Im:60.5%、試料名Lx:98.9%、4時間の時点で試料名Hm:98.5%、試料名Im:21.8%、試料名Lx:99.7%、16時間の時点で試料名Hm:99.9%、試料名Im:49.1%、試料名Lx:98.4%であった(図7)。このように、ヒト血漿を用いた場合においても、Hm及びLxがAβ1-42を速やかに且つ効率的に吸着することが示された。吸着後のAβ1-42の脱離は認められない。
評価する材料を2.5mLの円筒形ミニカラム(試料名Lxの場合の吸着材部分のカラムサイズは直径9mm、長さ30mm)に充填し、ペリスタポンプで流速10ml/hrにて、10mg/mLのBSA/PBS(-)溶液を90分間プライミングした。次いで、材料へ流す液を、実施例1と同様の30ng/ml程度のAβ1-40を含む10mg/mlBSA/PBS(-)溶液に切り替え、同じ流速で120分間(試料名Hmおよび試料名Im)または300分間(試料名Lx)材料を通過させた。材料通過後の液中のAβ1-40濃度を実施例1と同様に測定した。この系は、ヒトの臨床応用の200分の1を想定し、4Lの血漿を2時間で処理することを模したものである。測定結果を図8に示す。Aβ1-40に対する吸着能はIm<Hm<Lxであった。LxおよびHmは、実際の血中Aβ濃度の100倍程度の高濃度のAβでも十分な吸着能を示した。
評価する材料を2.5mLの円筒形ミニカラム(試料名Lxの場合の吸着材部分のカラムサイズは直径9mm、長さ30mm)に充填し、ペリスタポンプで流速10ml/hrにて、10mg/mLのBSA/PBS(-)溶液を90分間プライミングした。次いで、材料へ流す液を、実施例2と同様の30ng/ml程度のAβ1-42を含む10mg/mlBSA/PBS(-)溶液に切り替え、同じ流速で120分間(試料名Hm)または300分間(試料名Lx)材料を通過させた。材料通過後の液中のAβ1-42濃度を実施例2と同様に測定した。この系は、ヒトの臨床応用の200分の1を想定し、4Lの血漿を2時間で処理することを模したものである。試料名Lxについての2回の実験(Lx-G, Lx-H)の測定結果を図9に、試料名Hmについての2回の実験(Hm-B, Hm-C)の測定結果を図10に示す。LxおよびHmは、実際の血中Aβ濃度の100倍程度の高濃度のAβでも十分な吸着能を示した。
表面に存在する直鎖アルキル基の炭素数が異なる複数のシリカゲル担体を用意し、Aβ1-40吸着能を比較検討した。吸着能の測定は、実施例1及び実施例3と同様とした。材料としては、GLサイエンス社のインターセップFF(ビーズ径120μm、細孔径6nm、比表面積450m2/g、細孔容積0.7ml/g)の担体のみ(試料名C0)、エチル基をもつもの(試料名C2)、オクチル基を持つもの(試料名C8)、オクタデシル基をもつもの(試料名C18)を用いた。尚、各々の炭素含量は、C0:炭素量0%、C2:炭素量5.5%、C8:炭素量12%、C18:炭素量19%であった。室温下、振盪時間0.5時間、1時間、4時間の各点で、各時間の対照を100%としたAβ1-40の減少率(吸着率)を求めた。表面アルキル鎖の長さが短い程(即ち疎水性が弱くなる)、Aβ1-40の吸着能が高い(図11)。また、表面アルキル鎖が存在しない場合に最大の吸着能を示した。
表面に直鎖アルキル基を有しないセルロース担体のAβ1-40吸着能を、実施例1および実施例3に準じて測定した。材料としてはレンゴー社、ビスコパールミニPD4002(ビーズ径400μm、比表面積1〜10m2/g)を用いた。室温下、振盪時間0.5時間、1時間、4時間、16時間の各点で、各時間の対照を100%としたAβ1-40の減少率(吸着率)は、各々93.7%、95.3%、100.0%、101.1%であった(図12)。このように、親水性担体であるセルロースビーズも極めて優れたAβ吸着能を示した。
Lxの血液浄化用カラム(リクセルS-15。カネカ株式会社)とダイアライザー(PMMA製。東レメディカル株式会社)をこの順に脱血側から直列に連結し(図13(a))、腎不全患者の体外循環による血液浄化(試料名Lxによる浄化と人工透析)を4時間行った。透析開始前の患者血、透析開始後1時間の試料名Lxカラムの入口と出口、および、同時刻のダイアライザー出口の患者血、透析終了時点での患者血液を採取し、血中Aβ1-40濃度を実施例1と同様にして測定した。結果は、透析開始前の患者血液中のAβ1-40が約596pg/ml、透析開始1時間後の試料名Lxカラムの入口(これは患者の体内を流れる血液と同じ濃度とみなせる)で約334pg/ml、試料名Lxカラムの出口(ダイアライザーの入口でもある)で約170pg/ml、ダイアライザーの出口で約90pg/mlとなり、透析終了後の患者血液は約350pg/mlであった(図14)。透析前後の患者循環血液のAβ濃度低下率は41.3%、試料名Lxカラム前後のAβ除去率は49.0%、透析開始1時間後の患者循環血のAβ濃度低下率は44%となる(図15の上段)。このように、Lxによって効率的にAβを除去することができた。また、透析器を併用することによってAβ除去率が向上した。
Lxの血液浄化用カラム(リクセルS-15。カネカ株式会社)を使わないこと以外は、実施例10と同様にダイアライザー(PMMA製。東レメディカル株式会社)で人工透析を行った(実施例10とは別の患者)。透析開始前、透析開始後1時間、透析終了時点での患者血液を採取し、血中Aβ1-40濃度を実施例1と同様にして測定した。結果は、透析開始前が約527pg/ml、透析開始1時間後で約435pg/ml、透析終了時で約396pg/mlとなった(図16)。透析前後の患者循環血液のAβ濃度低下率は25.0%、透析開始1時間後の患者循環血のAβ濃度低下率は17.5%であり(図15の下段)、Lxカラムと透析器を併用した場合(実施例11)より大幅にAβ減少率が低下した。
腎不全患者2人(患者A、患者Bとする)に対し、実施例11と同様の方法で4時間の血液浄化を行った(ただし、透析器はPS製(旭化成クラレメディカル株式会社製)を使用)。透析開始前の患者血、透析開始後1時間および4時間の試料名Lxカラムの入口と出口での患者血液を採取し、血中Aβ1-40およびAβ1-42濃度を実施例1及び実施例2と同様にして測定した。結果を図17に示す。透析前後の患者循環血液のAβ1-40濃度低下率は、患者A;51.8%、患者B;43.9%で、Aβ1-42濃度低下率は、患者A;43.3%、患者B;34.4%であった。このように、実施例11と同様、別の患者2人においても、Lxによって効率的にAβ1-40及びAβ1-42を除去することができた。
本明細書の中で明示した論文、公開特許公報、及び特許公報などの内容は、その全ての内容を援用によって引用することとする。
Claims (12)
- セルロース、シリカ、ポリビニルアルコール及び活性炭からなる群より選択されるいずれかの材質の担体であって、その表面にアルキル鎖を有しないか、又はその表面に炭素数1〜18のアルキル鎖を有する担体からなる、アミロイドβタンパク質除去材。
- 前記材質がセルロース又は活性炭である、請求項1に記載のアミロイドβタンパク質除去材。
- 前記材質がシリカであり、且つ前記アルキル鎖がシラノール基(SiOH)を介して前記担体に結合している、請求項1に記載のアミロイドβタンパク質除去材。
- 前記炭素数が1〜5である、請求項1〜3のいずれか一項に記載のアミロイドβタンパク質除去材。
- 前記炭素数が1〜2である、請求項1〜3のいずれか一項に記載のアミロイドβタンパク質除去材。
- 前記材質がシリカであり、且つ担体の表面にアルキル鎖を有しない、請求項1に記載のアミロイドβタンパク質除去材。
- 前記材質が活性炭であり、且つ担体の表面が親水性ポリマーで被覆されている、請求項1に記載のアミロイドβタンパク質除去材。
- 前記親水性ポリマーがメタクリル酸2−ヒドロキシエチルエステル(pHEMA)のポリマーである、請求項7に記載のアミロイドβタンパク質除去材。
- 注入口と排出口を備えた容器内に、請求項1〜8のいずれか一項に記載のアミロイドβタンパク質除去材を収容してなる、アミロイドβタンパク質除去器。
- 前記容器がカラム状であり、その中に前記アミロイドβタンパク質除去材が充填されている、請求項9に記載のアミロイドβタンパク質除去器。
- 請求項9又は10に記載のアミロイドβタンパク質除去器と、該アミロイドβタンパク質除去器に液体を供給するためのポンプとを備えてなる、アミロイドβタンパク質除去システム。
- 前記アミロイドβタンパク質除去器と直列的に接続される透析器を更に備えてなる、請求項11に記載のアミロイドβタンパク質除去システム。
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