JP4953824B2 - 宿主に対して抗病性を付与する新規な菌株および菌体組成物 - Google Patents
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Description
(1)独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに、寄託番号FERM BP−10463として寄託されたブチリビブリオ・フィブリソルベンスMDT−1株。
(2)上記(1)に記載のブチリビブリオ・フィブリソルベンスMDT−1株の菌体、その培養物または抽出物を含むことを特徴とする菌体組成物。
(3)上記(2)に記載の菌体組成物を有効成分として含有する医薬品。
(4)上記(2)に記載の菌体組成物を有効成分として含有する飼料添加物。
(5)上記(2)に記載の菌体組成物を有効成分として含有する発がんを抑制する治療剤。
(6)上記(2)に記載の菌体組成物を脊椎動物(ヒトを除く)に有効量投与することを含む発がんを抑制する方法。
(7)上記(2)に記載の菌体組成物を有効成分として含有する免疫賦活化剤。
(8)上記(2)に記載の菌体組成物を脊椎動物(ヒトを除く)に有効量投与することを含む免疫賦活化の方法。
(9)上記(2)に記載の菌体組成物を有効成分として含有する病原菌の感染予防及び/又は治療剤。
(10)上記(2)に記載の菌体組成物を脊椎動物(ヒトを除く)に有効量投与することを含む病原菌の感染を予防及び/又は治療する方法。
(11)上記(2)に記載の菌体組成物を有効成分として含有する炎症性腸疾患に対する予防及び/又は治療剤。
(12)上記(2)に記載の菌体組成物を脊椎動物(ヒトを除く)に有効量投与することを含む炎症性腸疾患を予防及び/又は治療する方法。
(13)上記(2)に記載の菌体組成物を有効成分として含有するアレルギー性疾患に対する予防及び/又は治療剤。
(14)上記(2)に記載の菌体組成物を脊椎動物(ヒトを除く)に有効量投与することを含むアレルギー性疾患に対する予防及び/又は治療する方法。
本明細書において、ブチリビブリオ・フィブリソルベンスの「タイプI」とは、当該細菌の発酵能の違いによる分類の1種である(Shane BS et al.,J.Gen.Microbiol.,1969,55,445−457,″Cellulolytic bacteria occurring in the rumen of sheep contained to low−protein teff hay″)。タイプIは酪酸生成に発酵経路が偏っており、細菌の発酵によって生成される乳酸の割合はタイプIIbと比較して少なく、酪酸を多く生成する。
表に示したように、本発明のMDT−1株は酪酸生成量の多いタイプIの菌株の中で、細胞外pHの低下に対する耐性が最も高いため、酸性の腸管内においても有利に増殖することが期待される。
ブチリビブリオ・フィブリソルベンスMDT−1株は、グラム陰性の桿菌である。本菌は偏性嫌気性菌であり、増殖には高い嫌気度を必要とする。本菌の糖利用性を下記の表に示した。
本発明において、ブチリビブリオ・フィブリソルベンスを培養するには、中性pH付近において緩衝能を示す成分を有していれば通常の栄養培地を使用でき、炭素源、窒素源、金属類、短鎖脂肪酸、ビタミン類、アミノ酸類を十分に含有するものであれば、天然培地、合成培地いずれも用いることができる。
本発明の菌体組成物においては、上記ブチリビブリオ属に属する微生物の菌体、その培養物あるいは抽出物を含む。その培養物としては、上記のように当該菌を培養して得られた培養上澄等が挙げられ、抽出物としては当該菌体を溶菌させて得られる溶菌液から有効成分を抽出して得られる抽出物が挙げられる。本発明の菌体組成物においては、本発明の効果をより有効に発現できることから、上記ブチリビブリオ属に属する微生物の菌体を含むことが好ましい。
以下に、本発明の菌体組成物が上記ブチリビブリオ属に属する微生物の菌体を含む場合を例として、本発明の菌体組成物について説明する。
本発明における対象生物としては、本発明の効果を有効に発現できる生物であれば特に限定されるものではなく、例えばヒトあるいは動物が挙げられる。その動物としては、愛玩動物及び家畜動物が挙げられ、特に魚類、両性類、爬虫類、鳥類、哺乳類等の脊椎動物が挙げられる。それらの具体例としては、養殖あるいは愛玩されている魚類、両生類及び爬虫類、愛玩されている鳥類、イヌ、猫、げっ歯類等の愛玩哺乳類、牛、豚等の家畜哺乳類、及び家禽が挙げられる。
本発明の医薬品、飼料添加物、発がん抑制治療剤、免疫賦活化剤、病原菌感染予防・治療剤、炎症性腸疾患予防・治療剤およびアレルギー性疾患予防・治療剤における、有効成分としての上記菌体組成物の含有量としては、本発明の効果が得られる限り、特に限定されるものではないが、菌体の量で表すと、103〜1014cfu/gが好ましく、より好ましくは105〜1013cfu/gがより好ましく、特に好ましくは106〜1012cfu/gである。
その投与量としては、本発明の効果が得られる限り、特に限定されるものではないが、例えば、1回の投与あたりの菌体の量で表すと、対象動物1kgあたり、103〜1015cfuが好ましく、より好ましくは106〜1014cfuがより好ましく、特に好ましくは108〜1012cfuである。
継続して投与する場合、その投与頻度としては、例えば、1ヶ月に1回以上の投与が好ましく、より好ましくは2週間に1回以上の投与であり、特に好ましくは1週間に1回〜毎日の投与である。
投与方法としては、1日の投与量を上記範囲として、1日1回全量を投与してもよいし、1日2回から3回に分割して投与してもよい。あるいは、1日の投与量を上記範囲となるように、飼料などに混合して投与してもよい。
本発明の菌体組成物を得るために、リン酸水素2カリウム(和光純薬工業社製)0.9g、リン酸2水素カリウム(和光純薬工業社製)0.9g、塩化ナトリウム(和光純薬工業社製)1.8g、硫酸アンモニウム(和光純薬工業社製)1.8g、塩化カルシウム2水和物(和光純薬工業社製)0.24g、硫酸マグネシウム7水和物(和光純薬工業社製)0.375g、酢酸カリウム(和光純薬工業社製)1g、プロピオン酸ナトリウム(和光純薬工業社製)0.5g、n−酪酸ナトリウム(和光純薬工業社製)0.3g、吉草酸(和光純薬工業社製)0.1g、イソ酪酸(和光純薬工業社製)0.1g、イソ吉草酸(和光純薬工業社製)0.1g、2−メチル酪酸(和光純薬工業社製)0.1g、クエン酸鉄アンモニウム(和光純薬工業社製)10mg、塩化マンガン(和光純薬工業社製)6mg、硫酸コバルト(和光純薬工業社製)2mg、塩化ニッケル(和光純薬工業社製)0.4mg、モリブデン酸アンモニウム(和光純薬工業社製)0.4mg、15%硫酸銅(和光純薬工業社製)1mg、硫酸カリウムアルミニウム(和光純薬工業社製)0.3mg、ホウ酸(和光純薬工業社製)0.3mg、硫酸亜鉛(和光純薬工業社製)2mg、リン酸ピリドキサール(和光純薬工業社製)2mg、p−アミノ安息香酸(和光純薬工業社製)0.5mg、ビオチン(和光純薬工業社製)0.2mg、フェニルプロピオン酸(関東化学社製)2mg、L−アルギニン(和光純薬工業社製)2mg、パンビタン(武田薬品工業社製)100mg、ビタミンK1(SIGMA社製)0.03μl、グルコース(和光純薬工業社製)3g、イーストエクストラクト(ディフコ社製)3g、トリプトンペプトン(Becton dickinson社製)1.5g、トリプチケース(Bectondickinson社製)1.5g、システイン塩酸塩(和光純薬工業社製)1g(pH7.0)からなる培地(以下、培地Aと称する)をCO2置換した後密栓し、加熱滅菌した後、培地A(40mL)に、ブチリビブリオ・フィブリソルベンスMDT−1菌株(FERM BP−10463)を接種し、37℃で攪拌しながら5時間培養した。得られた培養液を遠心分離器にて遠心分離(3000G,30分間)し、菌体を含む沈殿物を得た。次に、菌体を0.8%NaCl溶液に菌体数が1010cfu/mLとなるように浮遊し、菌体組成物を得た。
マウスDMH(ジメチルヒドラジン;Aldrich製)誘発異常腺窩巣(ACF)の形成を抑制能について、本発明の菌体組成物を用いて評価を行った。また、酪酸菌として既に市販されているクロストリジウム・ブチリカムについても同様の試験を行い、その抑制効果を比較した。
供試動物として、4週齢のオスJcl:ICRマウス(日本クレア)を用い、試験は1区10頭で、下記の表の通りの試験区を設定した。
実施例1に記載した方法で得た菌体組成物を胃ゾンデを用いマウスに強制経口投与した。対照区には0.8%NaCl溶液を、投与区には菌体組成物をそれぞれ、0.1mL(109cfu)ずつ投与した。菌体組成物およびジメチルヒドラジン(DMH;Aldrich製)の投与スケジュールは図1の通りとした。
試験開始から31日後に大腸管粘膜の前癌病変である異常陰窩病巣(ACF:Aberrant Crypt Foci)を測定した。マウスを安楽死させた後、マウスの腸管の盲腸の下から肛門までを取り出し、中央を切り開き10%ホルマリン(純正化学社製)で固定した。その後、メチレンブルー(関東化学社製)で染色し、光学顕微鏡を用いてACFを数えた。
DMH投与によって体重増加量が減少するが、本発明の菌体組成物を経口投与することによって改善された(表5)。C. butyricumの経口投与には、そのような効果は見られなかった。試験終了時の肝臓の質量に有意差は見られなかったが(表6)、体重あたりの肝臓の質量はDMH投与によって減少し、本発明の菌体組成物によってDMH非投与区と同程度まで改善された。脾臓の質量はDMH投与によって増加し、本発明の菌体組成物によってある程度改善された。これらについても、C.butyricumには、効果は見られなかった。
結腸から直腸までの長さは、DMH投与によって短くなり、本発明の菌体組成物によってある程度改善された。また、盲腸の質量および結腸直腸の質量は、DMH投与によって減少し、本発明の菌体組成物によってある程度改善された。盲腸内容物および結腸内容物のpHには、違いは見られなかった。また、本発明の菌体組成物を経口投与することによって、ACFの形成数が約半分に抑制された。これらについても、C.butyricumには、効果は見られなかった。
体内に侵入した病原菌やウイルスなどの異物に対して、先ず最初に攻撃を行うとされているNK細胞を測定することにより、どの程度宿主の免疫力が賦活化されているかを検討した。
供試動物として8週齢のオスJcl:ICRマウス(日本クレア)を用い、試験は1区3頭で行った。
実施例1に記載した方法で得た菌体組成物を胃ゾンデを用いマウスに強制経口投与した。対照区には0.8%NaCl溶液を、投与区には菌体組成物をそれぞれ、0.1mL(109cfu)ずつ投与した。投与は3日間連続で行い、最初の投与から一週間後に、マウスを屠殺した。
頚椎脱臼により屠殺したマウスから脾臓を摘出し、脾細胞を取り出した。赤血球を溶解した後に、細胞を2回洗浄し、107cells/mLとなるようにPBBS(緩衝液;表参照)に懸濁した。調製した脾臓リンパ球懸濁液100μLに、それぞれ後述する抗体を10μL添加し、氷上で30分間放置した。その後、PBBSで2回洗浄し、測定に用いた。細胞の測定には、FACSCalibur(BectonDickinson)を用いた。細胞の標識にはFITC標識抗CD3抗体(BECKMAN COULTER社製)、PE標識抗CD19抗体(BECKMANCOULTER社製)、およびPE標識抗NK1.1抗体(BECKMAN COULTER社製)を用いた。
菌体組成物の経口投与により、リンパ球中のT細胞とB細胞の割合が減少し、NK細胞とNKT(ナチュラルキラーT)細胞の割合が増加した(表10)。細胞数に換算した場合には、T細胞とB細胞の数には、菌体組成物の経口投与による影響は見られなかった(表11)。しかし、NK細胞数は3.5倍に、NKT細胞数は3.8倍に増加した。それ故、マウスへの菌体組成物の経口投与は免疫作用を昂進させる。
キャンピロバクター(Campylobacter)は食中毒の原因菌であり、糞や汚染された食物から経口的に摂取され、腸管に定着する。そこでブチリビブリオ・フィブリソルベンスMDT−1株に感染予防効果があるか否かを検討した。
供試動物として5週齢のオスJcl:ICRマウス(日本クレア)を用い、試験は1区10匹で行った。
実施例1に記載した方法で得た菌体組成物を胃ゾンデを用いてマウスに強制経口投与した。対照区には0.8%NaCl溶液を、投与区には菌体組成物をそれぞれ、0.2mL(109CFU/mL)ずつ投与した。投与は感染の4日前から3日間連続し、その2日後にキャンピロバクター・コリ(Campylobactercoli)11580−3株(鶏由来)を0.2mL(107CFU/mL)ずつ経口接種した。感染の翌日から4日間連続、感染前と同様に菌体組成物を投与した。感染後5日目に屠殺、解剖し、盲腸便を採取した。これを0.8%NaClにて10倍系列で希釈し、キャンピロバクター10%ヒツジ血液寒天培地(日本ベクトン・ディッキンソン)に塗布した。嫌気培養器にて、42℃、48時間培養の後に生菌数(コロニー)を測定し、盲腸便1gあたりのキャンピロバクター数(logCFU/g)を算出した。
対照区および菌体組成物区とも死亡例は認められなかった。
表12に示したように、盲腸便中のキャンピロバクター数は対照区で平均8.27logCFU/g(7.88〜8.82logCFU/g)、菌体組成物区は平均6.96logCFU/g(4.79〜8.69logCFU/g)であった。対照区に比べ、菌体組成物区の方が1.31logCFU/g有意に減少した。
以上の結果から菌体組成物を投与するとキャンピロバクターの感染が軽減した。即ち、本菌体組成物を摂取し続けることにより、感染の予防または軽減が出来ることが明らかとなった。
潰瘍性大腸炎およびクローン病などの炎症性腸疾患(IBD)は治療の難しい疾病である。そこでブチリビブリオ・フィブリソルベンスMDT−1株にも同様な効果があるが否かを検討した。
供試動物として4週齢のオスJcl:ICRマウス(日本クレア)を用い、試験は1区6頭で行った。
実施例1に記載した方法で得た菌体組成物を胃ゾンデを用いマウスに強制経口投与した。対照区には0.8%NaCl溶液を、投与区には菌体組成物をそれぞれ、0.1mL(109cfu)ずつ投与した。投与は3日間連続で行った。
IBDを誘発するため、デキストラン硫酸ナトリウム(DSS;MP Biomedicals製)を3%(w/v)となるように飲用水に溶解し、マウスに自由摂取させた。DSSは菌体組成物の3日間連続投与の翌日から7日間投与した。8日目に屠殺、解剖し、腸管の長さおよび質量を測定した。
Disease Activity Index(DAI)の算出は以下のように実施した。すなわち、体重の減少、糞の形状(下痢便の度合)、および潜血のそれぞれを0から4までの5段階で評価した。この場合、症状が重いものほど高い数値で評価した。これら3つの測定項目の合計数を3で割った値をDAIとした。
ミエロペルオキシダーゼ(MPO)活性の測定法は以下のように実施した。すなわち、大腸の末端の6cmの部位を5ml/L(v/v)のヘキサデシルトリメチルアンモニウムブロミド(HTAB;界面活性剤)(和光純薬工業社製)を含む20mmol/Lリン酸緩衝液(pH=6.0)で懸濁し、超音波破砕した。遠沈後(15,000rpm,15min)の上清0.1mLを、20mMグアヤコール(SIGMA製)(guaiacol)と5ml/L過酸化水素(関東化学社製)を含む20mMリン酸緩衝液(pH=6.0)2.9mL混合し、波長460nmにおける吸光度の変化を測定し、MPO活性とした。
表6に示したように、DSS投与により体重は減少したが、菌体組成物を経口投与していたマウスでは、減少の程度が軽減した。
マウスへのブチリビブリオ・フィブリソルベンスの経口投与により、脾臓におけるNK(ナチュラルキラー)細胞数が増加した。NK細胞はサイトカインIFN−γを生成する。IFN−γはヘルパーT細胞のTh1/Th2バランスをTh1優位にする能力を持つ。Th1/Th2バランスはアレルギーに影響を及ぼす指標である。そこで、ブチリビブリオ・フィブリソルベンスがアレルギー性疾患にも効果があるが否がをサイトカインを測定することにより検討した。
ブチリビブリオ・フィブリソルベンスMDT−1株を20mlの合成培地で対数増殖期中期まで培養した。菌体をPBS(緩衝液)で1度洗浄した後で遠沈により回収し、菌体数が2×107cfu/mlとなるように10%ウシ血清(JRH Bioscience社製)を含むRPMI−1640培地(コージンバイオ社製)で懸濁した。
マウスから脾臓を摘出し、脾細胞を取り出した。赤血球を溶解した後に、細胞を2回洗浄し、4×107cells/mlとなるように10%ウシ血清(JRH Bioscience社製)を含むRPMI−1640培地(コージンバイオ社製)に懸濁した。脾細胞懸濁液0.5mlをシャーレに添加し、さらに菌液もしくは培地0.5mlを添加し、5%CO2インキュベーター内で72時間インキュベートした。
サイトカインの定量は、以下のように実施した。すなわち、細胞培養液を遠沈し、その上清をサンプルとし、IFN−γとIL−4の定量は、ELISAキット(Amersham Biosciences)を用いて添付の説明書に従い測定した。
その結果、ブチリビブリオ・フィブリソルベンスMDT−1株を添加することにより、IFN−γの産生量は増加した。一方、Th1/Th2バランスをTh2優位にする能力を持つIL−4の産生量は低下した(表16)。ブチリビブリオ・フィブリソルベンスMDT−1株の存在により、Th1/Th2バランスはTh1側に傾くと考えられる。従って、ブチリビブリオ・フィブリソルベンスMDT−1株の経口投与は、アレルギー性疾患にも効果がある。
大腸以外の部位に形成される癌に対する抑制効果があるかどうかを確認するために、3−Methylcholanthrene(3−MC)の皮下投与によって誘発したマウスの繊維肉腫形成に対する影響を調べた。
実施例1に記載した方法で得た菌体組成物をそれぞれ、0.1mL(109cfu)ずつ、4週齢のJcl:ICRマウス(日本クレア)に週3回の頻度で強制経口投与した。最初の投与から1週間後に20mgの3−MC(SIGMA)を2.0mLのオリーブオイルに溶解し、マウスの右脇腹に0.1mL(3−MC、1mg)を皮下投与した。対照区には同量のオリーブオイルを投与した。皮下投与の1週間後に一度触診し、直径3mm以上のしこりを腫瘍とした。触診は15週間行った。また、各区3頭ずつを投与5週間後に屠殺し、リンパ球組成(NK細胞)を測定した。
図3に示したように、オリーブオイルを皮下投与したマウスでは、腫瘍の形成はみられなかった。3−MCのみを投与した試験区では、3−MC投与後5週目から腫瘍が現れ始め、この時点での腫瘍形成率は20%であった。その後も形成率は増加し続け、3−MC投与後9週目で全てのマウスに腫瘍が形成された。一方、菌体組成物投与区においては5週目では0%、9週目において、50%の腫瘍形成率であった。そして、15週後でさえも形成率は75%であった。この結果から、菌体組成物の経口投与は、3−MCで誘発したマウスの腫瘍形成を遅延・抑制する効果が確認された。なお、3−MC処理および菌体組成物の投与はマウスの体重増加には影響を与えなかった(図4)。
菌体組成物による腫瘍形成の遅延・抑制効果にNK細胞が関与しているか否かを調べるために、脾臓中のリンパ球組成を測定した。菌体組成物の影響が大きく出るためにはある程度の時間が必要であると考えられたため、腫瘍が形成され始める直前、すなわち3−MC投与4週間後にリンパ球の測定を行った。4週間後の体重、肝臓、脾臓の重量および食餌の摂取量に試験区間で有意差は見られなかった(表17)。しかし、NK細胞とNKT細胞の割合は菌体組成物の投与により有意に増加した(表18)。
以上の結果から、本菌体組成物を経口投与することにより、大腸以外の部位における癌も抑制することができることが確認された。
本出願は、2004年12月28日出願の日本特許出願(特願2004−379693)に基づくものであり、その内容はここに参照として取り込まれる。
Claims (14)
- 独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに、寄託番号FERM BP−10463として寄託されたブチリビブリオ・フィブリソルベンスMDT−1株。
- 請求項1に記載のブチリビブリオ・フィブリソルベンスMDT−1株の菌体、その培養物または抽出物を含むことを特徴とする菌体組成物。
- 請求項2に記載の菌体組成物を有効成分として含有する医薬品。
- 請求項2に記載の菌体組成物を有効成分として含有する飼料添加物。
- 請求項2に記載の菌体組成物を有効成分として含有する発がんを抑制する治療剤。
- 請求項2に記載の菌体組成物を脊椎動物(ヒトを除く)に有効量投与することを含む発がんを抑制する方法。
- 請求項2に記載の菌体組成物を有効成分として含有する免疫賦活化剤。
- 請求項2に記載の菌体組成物を脊椎動物(ヒトを除く)に有効量投与することを含む免疫賦活化の方法。
- 請求項2に記載の菌体組成物を有効成分として含有する病原菌の感染予防及び/又は治療剤。
- 請求項2に記載の菌体組成物を脊椎動物(ヒトを除く)に有効量投与することを含む病原菌の感染を予防及び/又は治療する方法。
- 請求項2に記載の菌体組成物を有効成分として含有する炎症性腸疾患に対する予防及び/又は治療剤。
- 請求項2に記載の菌体組成物を脊椎動物(ヒトを除く)に有効量投与することを含む炎症性腸疾患を予防及び/又は治療する方法。
- 請求項2に記載の菌体組成物を有効成分として含有するアレルギー性疾患に対する予防及び/又は治療剤。
- 請求項2に記載の菌体組成物を脊椎動物(ヒトを除く)に有効量投与することを含むアレルギー性疾患に対する予防及び/又は治療する方法。
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