JP4045403B2

JP4045403B2 - Method for producing hydroxy fatty acid and γ-lactone

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Publication number: JP4045403B2
Application number: JP2001350686A
Authority: JP
Inventors: 久志田中; 健一市榮
Original assignee: San Ei Gen FFI Inc
Current assignee: San Ei Gen FFI Inc
Priority date: 2001-11-15
Filing date: 2001-11-15
Publication date: 2008-02-13
Anticipated expiration: 2021-11-15
Also published as: JP2003144186A

Description

【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、微生物を利用して不飽和脂肪酸からヒドロキシ脂肪酸を製造する方法、並びにかかる方法で得られたヒドロキシ脂肪酸を原料としてγ−ラクトンを製造する方法に関する。さらに本発明は、不飽和脂肪酸をヒドロキシ脂肪酸に変換する能力を有する新規微生物に関する。
【０００２】
【従来の技術】
従来より、微生物を利用して不飽和脂肪酸からヒドロキシ脂肪酸を産生する方法が種々試みられている。例えば、ヨーロッパ特許公開公報（No.0 578388 A2）には、シュードモナス属の亜種(Pseudomonas sp. NRRL B-2994)を利用して、オレイン酸、リノール酸、α−リノレン酸などといった不飽和脂肪酸から各々10−ヒドロキシ脂肪酸を産生すること；特開平5-140544号公報には、同じくシュードモナス属の亜種（Pseudomonas sp.）NRRL B-3266, B-2994、並びにノカルディアアウランティア(Nocardia aurantia)NRRL B3287、及びロードコッカスロードクラウス（Rhodococcus rhodochrous）ATCC12674を利用して不飽和脂肪酸および／またはそのグリセリドからヒドロキシ脂肪酸および／またはケト脂肪酸を産生すること；Advances in Applied Microbiology,41巻,1〜23頁には、シュードモナスアエルギノサ(Pseudomonas aeruginosa) PR3株を利用してオレイン酸から7,10-ジヒドロキシ-8-オクタデセン酸（7,10-dihydoxy-8-octadecenoic acid）を産生すること、並びにフラボバクテリウム属の亜種（Flavobacterium sp.）DS5を利用して不飽和脂肪酸から10-ヒドロキシ脂肪酸を産生することが、記載されている。
【０００３】
ヒドロキシ脂肪酸は、例えばリシノール酸(12−ヒドロキシ−9−オクタデセン酸)のように各種有機化学合成品の原料や潤滑油、乳化剤または廃油処理剤としてさまざまな分野で広く利用される他、ラクトン等の製造原料として有用である。特にγ-ラクトンは、天然界、特に果物などの植物中に広く存在する芳香性の化合物であり、香料原料として大変重要な物質である。
【０００４】
例えば、上記のヨーロッパ特許公開公報（No.0 578388 A2）には、上記の方法で得られたヒドロキシ脂肪酸を原料として更にキャンディダ(Candida)属やヤロウィア(Yarrowia)属の微生物を利用してγ-ラクトンを産生すること；特開昭59−82090号公報には、ひまし油（カスターオイル）を含む培地でアスペルギルス・オリゼー（Aspergillus orizae）等の微生物を培養してγ−ヒドロキシデカン酸を産生し、さらにこれを酸性条件下で加熱してγ−デカラクトンを製造すること；特開昭63−56295号公報、特開平2−174685号公報にはスポロボロミセス・オドラス（Sporobolomyces odorus）、ロドトルラ・グルチニス（Rhodotoula glutinis）、アスペルギルス・ニガー（Aspergillus niger）等の微生物を用いて、リシノール酸やひまし油等のリシノール酸源からγ−ヒドロキシデカン酸を産生し、さらにこれを酸性条件下で加熱することによりγ−デカラクトンを産生する方法が開示されている。
【０００５】
また、微生物を利用して脂肪酸（飽和脂肪酸、不飽和脂肪酸）からラクトンを産生する方法として、ひまし油からサッカロミセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）等の酵母を利用してγ−デカラクトンを産生する方法（特開昭60−66991号公報、特開昭60-100508号公報、特開昭61-238708号公報）、10−オキシステアリン酸を、β−酸化能を有する微生物で酸化してγ−ドデカラクトンを製造する方法（特開平3−198787号公報）、ヒドロキシ脂肪酸存在下でγ−またはδ−ラクトンを代謝しない微生物を培養することによりγ−またはδ−ラクトンを製造する方法（特開平3−117494号公報、特開平3−219886号公報）、及びリノール酸、リノレン酸、オレイン酸の水酸化物またはヒドロペルオキシドを、β−酸化能を有する微生物で酸化してγ−、δ−ラクトンを製造する方法（特開平3−187387号公報）が知られている。しかし、これらの方法によるヒドロキシ脂肪酸やラクトンの生産性は概して低く、工業的な見地から未だ満足できるものではなかった。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の目的は、かかる従来の問題点を解決することであり、工業的な生産が可能な、微生物を利用したヒドロキシ脂肪酸の製造方法を提供することである。さらに本発明の目的は、かかる方法によって得られたヒドロキシ脂肪酸を原料としてラクトンを製造する方法を提供するものである。
【０００７】
また本発明の目的は、不飽和脂肪酸をヒドロキシ脂肪酸に効率よく変換する能力を有する新規な微生物を提供することである。
【０００８】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、上記課題の解決を目指して鋭意努力したところ、エンペドバクター(Empedobacter)に属する微生物に不飽和脂肪酸をヒドロキシ脂肪酸に変換する能力があることを見出し、この微生物を用いることによって香料成分として有用なγ−ラクトンの前駆体となるヒドロキシ脂肪酸を効率よく生産することができることを見出した。本発明はかかる知見に基づいて完成したものである。
【０００９】
すなわち、本発明は下記項１〜４に掲げるヒドロキシ脂肪酸の製造方法である。
項１．不飽和脂肪酸をヒドロキシ脂肪酸に変換する能力を有するエンペドバクター（Empedobacter）属に属する微生物を用いて不飽和脂肪酸をヒドロキシ脂肪酸に変換することを特徴とする、ヒドロキシ脂肪酸の製造方法。
項２．エンペドバクター（Empedobacter）属に属する微生物として、エンペドバクター・ブレビス(Empedobacter brevis)、エンペドバクター（Empedobacter）ＲＤ-294菌株およびその変異株よりなる群から選択される少なくとも１種を用いることを特徴とする項１記載のヒドロキシ脂肪酸の製造方法。
項３．不飽和脂肪酸をヒドロキシ脂肪酸に変換する能力を有するエンペドバクター（Empedobacter）属に属する微生物を不飽和脂肪酸またはその誘導体を含有する培地中で培養し、培養物中に生成したヒドロキシ脂肪酸を回収することを特徴とする、項１記載のヒドロキシ脂肪酸の製造方法。
項４．エンペドバクター（Empedobacter）属に属する微生物として、エンペドバクター・ブレビス(Empedobacter brevis)、エンペドバクター（Empedobacter）ＲＤ-294菌株およびその変異株よりなる群から選択される少なくとも１種を用いることを特徴とする項３記載のヒドロキシ脂肪酸の製造方法。
【００１０】
また、本発明は上記項１〜４のいずれかの製造方法により得られるヒドロキシ脂肪酸をβ酸化して環化する工程を有する、γ-ラクトンの製造方法である。
【００１１】
さらに、本発明は上記ヒドロキシ脂肪酸の製造に有用な新規微生物、すなわち、不飽和脂肪酸をヒドロキシ脂肪酸に変換する能力を有するエンペドバクター（Empedobacter）ＲＤ-294菌株（受託番号「ＦＥＲＭＰ−１８５５９」）またはその変異株である。
【００１２】
【発明の実施の形態】
（１）ヒドロキシ脂肪酸の製造方法
本発明は、不飽和脂肪酸をヒドロキシ脂肪酸に変換する能力を有する微生物（ヒドロキシ脂肪酸変換微生物）を利用して、不飽和脂肪酸からヒドロキシ脂肪酸を製造する方法に関する。
【００１３】
本発明で用いられる微生物としては、具体的にはエンペドバクター（Empedobacter）属に属する微生物を挙げることができる。当該微生物は上記能力を有するエンペドバクター（Empedobacter）属に属する菌であれば特に制限されないが、好ましくはエンペドバクター・ブレビス（Empedobacter brevis）、エンペドバクター（Empedobacter）ＲＤ-294菌株またはその変異株を例示することができる。
【００１４】
ここで、エンペドバクター・ブレビスは、財団法人発酵研究所にIFO14943として保存されている商業的に入手可能な微生物である。
【００１５】
一方、エンペドバクター（Empedobacter）ＲＤ-294菌株は、本発明者らが大阪府豊中市の土壌より新たに分離したエンペドバクター属に属する新規菌株であり、茨城県つくば市東１−１−１中央第６に住所を有する独立行政法人産業技術総合研究所内、特許生物寄託センターに、2001年10月10日付けで微生物の表示、（寄託者が付した識別のための表示）「Empedobacter RD-294」、受託番号「FERM P-18559」として寄託されている。
【００１６】
エンペドバクターＲＤ-294菌株について、バージーズ・マニュアル・オブ・システマチック・バクテリオロジー（Bergey's Manual of Systematic Bacteriology）およびインターナショナル・ジャーナル・オブ・システマティック・バクテリオロジー（International Journal of Systematic Bacteriology）第44巻827-831頁に記載の方法に準じて検討した菌学的性質は次の通りである。
【００１７】
＜エンペドバクターＲＤ-294菌株の菌学的性質＞
(a)形態学的性質
トリプトソイ寒天培地（ペプトン1.5％、大豆ペプトン0.5％、塩化ナトリウム0.5％、寒天1.5％）にて25℃で２日間培養し、観察した結果を以下に示す。
【００１８】
形状桿菌
大きさ 0.6×2.0-2.5μｍ、伸長型あり
胞子形成しない
グラム染色陰性
運動性なし
コロニー円形、全縁滑らか、低い凸状、光沢ある黄色。
【００１９】
(b)生理学的性質
カタラーゼ＋
オキシダーゼ＋
硝酸塩還元 −
インドール産生＋
アルギニンジヒドロラーゼ −
ウレアーゼ −
ゼラチン分解＋
エスクリン分解 −
β-ガラクトシダーゼ −
リジンデカルボキシラーゼ −
オルニチンデカルボキシダーゼ −
硫化水素産生 −。
【００２０】
(c)基質資化能
ブドウ糖＋（30℃）
ショ糖 −
マルトース＋（30℃）
D−マンニトール −
イノシット −
D−ソルビトール −
L−ラムノース −
D−メリビオース −
D−アミグダリン −
D−アラビノース −
N−アセチル−D−グルコサミン −
グルコン酸カリウム −
n−カプリン酸 −
アジピン酸 −
dl−リンゴ酸 −
酢酸フェニル −
本菌株は30℃培養においてブドウ糖とマルトースを分解し、マッコンキー寒天培地ではやや遅い傾向があるが、発育が認められた。
【００２１】
以上の菌学的性質から、Bergey's Manual of Systematic BacteriologyおよびInternational Journal of Systematic Bacteriology第44巻827-831頁を参考にして、本菌株をエンペドバクター(Empedobacter)属に属する菌株、より具体的にはエンペドバクター・ブレビス(Empedobacter brevis)に属する菌株であると同定した。さらに、本菌株について、後述するように、そのヒドロキシ脂肪酸生産能をエンペドバクターブレビスのタイプカルチャー菌（IFO14943）と比較したところ、本菌株のヒドロキシ脂肪酸生産能はタイプカルチャー菌のそれをはるかに上回っていた。このことから本菌株を新規なものと考え、エンペドバクターＲＤ-294（Empedobacter RD-294）菌株と名付けた。
【００２２】
本発明の製造方法は、上記の微生物（ヒドロキシ脂肪酸変換微生物）を利用して不飽和脂肪酸からヒドロキシ脂肪酸を製造するものである。なお、ここで微生物には、上記のものに加えて、不飽和脂肪酸をヒドロキシ脂肪酸に変換する能力を有することを限度として、エンペドバクターＲＤ-294菌株の変異株も含まれる。
【００２３】
ここで微生物の利用とは、不飽和脂肪酸を原料としたヒドロキシ脂肪酸の製造に微生物を直接または間接的に使用することを広く意味するものであり、例えばその具体的態様には、不飽和脂肪酸を含む反応系に、単離された微生物、粗精製の微生物（例えば微生物を培養し増殖させた培養物やその粗精製物）、微生物処理物（微生物の培養物を除菌処理したもの，微生物破砕物，培養物や微生物破砕物から不飽和脂肪酸をヒドロキシ脂肪酸に変換する酵素を抽出したもの）などを配合して、該反応系内にヒドロキシ脂肪酸を生成する方法、並びに微生物や微生物処理物をアクリルアミド、グルタルアルデヒド、イオン交換樹脂、光硬化性樹脂、アルギン酸や寒天等のゲル化剤、その他のものを担体として固定化し、固定化微生物や固定化酵素として使用して不飽和脂肪酸をヒドロキシ脂肪酸に変換する方法が包含される。
【００２４】
本発明のヒドロキシ脂肪酸の製造方法は、より好ましくは不飽和脂肪酸をヒドロキシ脂肪酸に変換する能力を有するエンペドバクター属に属する微生物を不飽和脂肪酸またはその誘導体を含有する培地中で培養し、培養物中に生成したヒドロキシ脂肪酸を回収することによって実施することができる。ここでエンペドバクター属に属する微生物としては、好適にはエンペドバクター・ブレビス、エンペドバクターＲＤ-294菌株若しくはその変異株を例示することができる。なお、この際、不飽和脂肪酸またはその誘導体を添加する時期や方法については特に制限されるものではないが、不飽和脂肪酸またはその誘導体が微生物の増殖を抑制する場合があるので、上記微生物は予め好気的条件下で前培養して増殖させておき、増殖後、不飽和脂肪酸またはその誘導体を添加するほうが、効率的にヒドロキシ脂肪酸を生成する上で望ましい。また不飽和脂肪酸またはその誘導体を添加する方法についても特に制限されず、全量を一気に添加してもよいし、培養中徐々に連続的もしくは間欠的に添加することによって行っても良い。
【００２５】
本発明で用いられる不飽和脂肪酸は、分子中にカルボキシル基を１個、炭素の二重結合を１個以上、具体的には通常１〜６個、好ましくは１〜３個有する、炭素数４〜30までの鎖式化合物である。例えばデセン酸（Ｃ₁₀）、ウンデセン酸（Ｃ₁₁）、ドデセン酸（Ｃ₁₂）、テトラデセン酸（ミリストレイン酸等）（Ｃ₁₄）、ヘキサデセン酸（パルミトレイン酸等）（Ｃ₁₆）、オクタデセン酸（オレイン酸、エライジン酸、リシノール酸等）（Ｃ₁₈）、エイコセン酸（Ｃ₂₀）、ドコセン酸（エルカ酸等）（Ｃ₂₂）、テトラコセン酸（Ｃ₂₄）、ヘキサコセン酸（Ｃ₂₆）、トリアコンテン酸（Ｃ₃₀）、及びその他のモノエン不飽和脂肪酸；デカジエン酸（Ｃ₁₀）、オクタデカジエン酸（リノール酸、共役リノール酸等）（Ｃ₁₈）、エイコサジエン酸（Ｃ₂₀）、及びその他のジエン不飽和脂肪酸；ヘキサデカトリエン酸（ヒラゴ酸等）（Ｃ₁₆）、オクタデカトリエン酸（エレオステアリン酸、プニカ酸、リノレン酸、γ−リノレン酸等）（Ｃ₁₈）、エイコサトリエン酸（Ｃ₂₀）、ドコサトリエン酸（Ｃ₂₂）、及びその他のトリエン不飽和脂肪酸；ヘキサデカテトラエン酸（Ｃ₁₆）、オクタデカテトラエン酸（Ｃ₁₈）、エイコサテトラエン酸（アラキドン酸等）（Ｃ₂₀）、ドコサテトラエン酸（Ｃ₂₂）、及びその他のテトラエン不飽和脂肪酸；エイコサペンタエン酸（EPA）（Ｃ₂₀）、ドコサペンタエン酸（イワシ酸等）（Ｃ₂₂）、及びその他のペンタエン不飽和脂肪酸；ドコサヘキサエン酸（DHA）（Ｃ₂₂）、テトラコヘキサエン酸（ニシン酸等）（Ｃ₂₄）、及びその他のヘキサエン不飽和脂肪酸；並びにその他のポリエン不飽和脂肪酸等を挙げることができる。
【００２６】
これらの不飽和脂肪酸は、遊離の形態であってもまたその塩の形態であってもよい。また、本発明の方法は上記不飽和脂肪酸に代えて（若しくは上記不飽和脂肪酸とともに）、その誘導体を用いることもできる。かかる誘導体は、エンペドバクター属に属する微生物、好ましくはエンペドバクターＲＤ-294もしくはその変異株、またはエンペドバクター・ブレビスを介してヒドロキシ脂肪酸を生成するものであれば、その構造には特に制限されないが、例えば脂肪酸アミド等のような含窒素誘導体や、油脂のようにグリセリン等のアルコールと上記脂肪酸とのエステルが包含される。かかる油脂としては、例えば大豆油、菜種油、綿実油、ひまわり油、ごま油、コーン油、米油、落花生油、紅花油、椿油、オリーブ油、亜麻仁油、桐油、ひまし油、パーム油、パーム核油、やし油、シソ油、ブドウ種子油、ホホバ油、及びその他の植物性油脂；及び鯨油、魚油、豚脂、牛脂、チキンオイル、乳脂、及びその他の動物性油脂が含まれるが、さらにこれらの油脂を例えばリパーゼ等の酵素を用いて加水分解し、遊離の脂肪酸給源として用いることもできる。
【００２７】
前述するヒドロキシ脂肪酸変換微生物の培養は、上記不飽和脂肪酸またはその誘導体を含む培地を用いて実施される。培養に使用される培地並びに培養条件は、特に制限されず、使用する微生物の種類やその性質に応じて適宜選択することができる。具体的には、培地は、上記不飽和脂肪酸またはその誘導体以外に、エンペドバクター属に属する微生物、好ましくはエンペドバクターＲＤ-294若しくはその変異株、またはエンペドバクター・ブレビスが利用できる栄養源を含有する培地であればよく、各種の合成培地、天然培地のいずれも用いることができる。通常、一般に使用される炭素源、窒素源又は／及び無機塩類、ビタミン類を適宜に組み合わせたものを用いることができ、例えば炭素源としてはグルコース、シュクロース、フラクトース、マルトース、グリセリン、デキストリン、オリゴ糖、デンプン、糖蜜、コーンスティープリカー、麦芽エキス、有機酸等の単独または二種以上の組合せ；窒素源としてはファーマメディア、ペプトン、大豆粉、酵母エキス、肉エキス、ふすまエキス、コーンスティープリカー、カゼイン、アミノ酸、尿素等の有機窒素源、硝酸塩、アンモニウム塩などの無機窒素源等の単独または二種以上の組合せ；また無機塩類としてはリン酸塩、マグネシウム塩、カルシウム塩、カリウム塩、その他の金属塩類の単独または二種以上の組合せ；またビタミン類としてはリボフラビン、ニコチンアミド、塩酸ピリドキシン、塩酸チアミン,ビオチン等の単独または二種以上の組合せを挙げることができる。
【００２８】
培養は、固体培養または液体培養のいずれでもよく、一般の微生物の培養に準じて行うことができる。通常液体培養を用いることが好ましい。この場合、振盪培養、通気攪拌培養、若しくは好気的表面培養などの好気条件下での培養、または深部静置培養などの嫌気条件下での培養のいずれでもよいが、菌数増殖期には好気的な条件での培養が好ましく、また不飽和脂肪酸からヒドロキシ脂肪酸への変換時には微生物や微生物処理物と不飽和脂肪酸をよく接触させるよう攪拌等を行うことが必要であるが、嫌気的な条件での培養が望ましい。また培養方式としては回分培養、半回分培養（流加培養）、連続培養のいずれの方式でも行うことができる。培養温度は、エンペドバクター属に属する微生物、好ましくはエンペドバクターＲＤ-294若しくはその変異株、またはエンペドバクター・ブレビスが良好に生育または増殖する温度であれば特に制限されないが、通常２０〜４５℃、好ましくは２５〜３５℃付近の温度で培養するのが望ましい。培地の液性も上記限度において特に制限されないが、通常中性から弱アルカリ性、具体的にはｐＨ５〜１０、好ましくはｐＨ６〜９の範囲を例示することができる。また、培養時間も制限されないが、通常２日〜１５日の範囲を挙げることができる。なお、これらの培養条件は、使用する微生物の種類や特性及び外部条件などに応じて適宜変更することができ、これにより最適条件を選択調節して採用することができる。
【００２９】
培養後、生成したヒドロキシ脂肪酸を培養物から抽出、分離、精製する方法としても特別な方法に限定されるものではなく、発酵生産物を採取回収する一般的な方法に準じて行うことができる。具体的には、例えば、得られた培養物をデカンテーション、遠心分離またはろ過することによってヒドロキシ脂肪酸含有培養液を回収し、該培養液を溶媒抽出、各種の樹脂（例えば、イオン交換、吸着、分子篩等）処理や、膜（例えばメンブレンフィルター、限外ろ過、精密ろ過、逆浸透等）処理、活性炭処理、超臨界流体抽出処理、蒸留処理、晶析、またはその他の処理を単独または二種以上任意の順序で適宜組み合わせて行う方法を例示することができる。より具体的には、得られた培養液は一旦ｐＨを２前後まで下げ、静置後浮遊してくる油層部を分液ロートや遠心分離等を用いて回収することによって、ヒドロキシ脂肪酸を含む粗精製物を得ることができる。
【００３０】
さらにこの粗精製物は必要に応じて精製されてもよい。具体的には該粗精製物をアセトニトリル、アセトン、エタノール、メタノール、酢酸エチル、ジエチルエーテル、テトラヒドロフラン、ヘキサン等の有機溶媒を単独または二種以上組合せて使用して抽出、精製、分画を行なったり、合成吸着剤（三菱化学株式会社製商品名ダイアイオンＨＰ２０等）に吸着させ、アルコール等によりヒドロキシ脂肪酸含有画分を溶離させて精製することもでき、さらにシリカゲルクロマトグラフィーを利用することによりヒドロキシ脂肪酸をより高純度まで精製することもできる。
【００３１】
なお、精製工程中並びに最終的に得られたヒドロキシ脂肪酸の確認（定性、定量）は、薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）、ガスクロマトグラフィー（ＧＣ）、質量分析計（ＭＳ）、核磁気共鳴スペクトル（ＮＭＲ）等を用いて、例えば既知のヒドロキシ脂肪酸（標準品）と対比することによって行うことができる。
【００３２】
斯くして得られるヒドロキシ脂肪酸は、それ自体界面活性剤や油脂固化剤等として有用であるだけでなく、ヒドロキシ脂肪酸が保有するヒドロキシル基、カルボキシル基、二重結合を利用して多くの化学反応を行わせることができるため、各種化成品原料としても有用である。またラクトンの製造原料として有効に用いることができる。特に１０位にヒドロキシル基をもち、不飽和結合を１０位よりω側（例えば12位や15位等）にもつヒドロキシ脂肪酸は、不飽和のラクトン製造の良い前駆体となり工業的に大変有用である。
【００３３】
（２）γ−ラクトンの製造方法
本発明はまた、上記方法で得られたヒドロキシ脂肪酸を用いてγ−ラクトンを製造する方法を提供する。
【００３４】
本発明のγ−ラクトンの製造方法は、上記方法で得られたヒドロキシ脂肪酸を原料として用いることを特徴とするものであり、その限りにおいて、ヒドロキシ脂肪酸からγ−ラクトンを生成する従来公知または将来開発される化学合成法や生物学的合成法のいずれをも採用することができる。好ましくは生物学的合成法である。
【００３５】
ヒドロキシ脂肪酸からγ−ラクトンを合成する従来公知の生物学的合成法としては、ヒドロキシ脂肪酸をγ−ラクトンに変換する能力を有する微生物（ラクトン変換微生物）を用いた発酵法または微生物変換法を例示することができる。
【００３６】
ここで用いられるラクトン変換微生物は、１種単独でヒドロキシ脂肪酸をβ酸化、環化してγ−ラクトンに変換する能力を有するものであっても、また２種以上を組み合わせることによってヒドロキシ脂肪酸をβ酸化、環化してγ−ラクトンに変換することのできる微生物群であってもよい。
【００３７】
具体的には、キャンディダ（Candida）属やヤロウィア・リポリティカ（Yarrowia lipolytica）等の微生物を用いる方法（ヨーロッパ特許公開公報No.0 578388 A2）、スポロボロミセス・オドラス（Sporobolomyces odorus）やロドトルラ・グルチニス（Rhodotoula glutinis）等の微生物を用いる方法（特開昭63−56295号公報）、アスペルギルス・ニガー（Aspergillus niger）等の微生物を用いる方法（特開平2−174685号公報）、10−オキシステアリン酸をサッカロミセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae ）等のβ−酸化能を有する微生物で酸化してγ−ドデカラクトンを製造する方法（特開平3−198787号公報）、ひまし油（カスターオイル）を含む培地でアスペルギルス・オリゼー（Aspergillus or izae）等の微生物を培養してγ−ヒドロキシデカン酸を産生し、さらにこれを酸性条件下で加熱してγ−デカラクトンを製造する方法（特開昭59−82090号公報）、ヒドロキシ脂肪酸存在下でγ−またはδ−ラクトンを代謝しない微生物を培養することによりγ−またはδ−ラクトンを製造する方法（特開平3−117494号公報、特開平3−219886号公報）、及びリノール酸、リノレン酸、オレイン酸の水酸化物またはヒドロペルオキシドを、β−酸化能を有する微生物で酸化してγ−、δ−ラクトンを製造する方法（特開平3−187387号公報）等を例示することができる。
【００３８】
これらの方法によれば、ヒドロキシ脂肪酸をβ酸化し環化することによってγ−ラクトンを生成することができる。この場合、原料として用いるヒドロキシ脂肪酸は、精製・粗精製の別を問わず、前述する方法で得られたヒドロキシ脂肪酸を含む培養液またはその抽出物をそのまま使用することもできる。
【００３９】
また、γ−ラクトン変換能を有する微生物の生育、増殖またはそのγ−ラクトン変換能が妨げられないことを限度として、前述のヒドロキシ脂肪酸の製造に用いられる微生物の培養系（培地や培養条件など）がそのまま使用できる。この場合、ヒドロキシ脂肪酸を生成した培養物に上記γ−ラクトン変換能を有する微生物（ラクトン変換微生物）を添加し、必要に応じて培地に栄養源を補充して、培養を継続してもよいし、また前記ヒドロキシ脂肪酸の製造に際して、培地にヒドロキシ脂肪酸変換微生物であるエンペドバクター属に属する微生物（例えば、エンペドバクターＲＤ-294若しくはその変異株、エンペドバクター・ブレビス）に加えて、予め上記ラクトン変換微生物を配合しておいてもよい。
【００４０】
ラクトン変換能を有する微生物を用いたγ−ラクトンの製造は、前述するヒドロキシ脂肪酸の製造と同様に、基本的には一般の微生物の培養方法に準じて行うことができるが、使用する微生物の種類やその特性に応じて、当業者の日常的な設計変更の下で調節設定されるγ−ラクトン生成の最適条件を用いることができる。また、培養後、生成したγ−ラクトンを培養物から抽出、分離、精製する方法としても特別な方法に限定されるものではなく、発酵生産物を採取回収する一般的な方法に準じて行うことができる。なお、精製工程中並びに最終的に得られたγ−ラクトンの確認（定性、定量）は、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）、ガスクロマトグラフィー質量分析計（ＧＣ−ＭＳ）、核磁気共鳴スペクトル（ＮＭＲ）等を用いて、例えば既知のγ−ラクトンと対比することによって、好適に行うことができる。
【００４１】
斯くして得られるγ−ラクトンは、例えば香料原料として有用である。
【００４２】
（３）新規微生物
本発明はまた、新規微生物、エンペドバクターＲＤ-294菌株を提供する。かかる微生物はエンペドバクター属に属する新規菌株であり、不飽和脂肪酸をヒドロキシ脂肪酸に変換する能力を有することを特徴とするものである。より詳細には、当該微生物は、分子中にカルボキシル基を１個、炭素の二重結合を１個以上、具体的には通常１〜６個、好ましくは１〜３個有する、炭素数４〜30の不飽和脂肪酸をヒドロキシ脂肪酸に変換する能力を有するものである。また、本発明の微生物は、オレイン酸、リノール酸、リノレン酸等の、炭素数10〜30の不飽和脂肪酸の10位に選択的にヒドロキシル基を導入する特性を備えており、かかる特性は、工業的に、10位以外に不飽和結合を有する不飽和脂肪酸から該不飽和結合をそのまま温存した状態でヒドロキシ脂肪酸を製造するのに有利に用いることができ、またこのヒドロキシ脂肪酸を原料とすることによってγ-ラクトンの製造を工業的に実施することが可能である。
【００４３】
なお、当該微生物の取得方法、その菌学的性質、並びに入手方法については前述の通りである。
【００４４】
【実施例】
以下に、実施例を挙げて本発明及びその効果を説明するが、本発明はこれらの実施例によって何等制限されるものではない。なお、下記の実施例において、特に言及しないかぎり、％は重量％を意味するものとする。
【００４５】
実施例１微生物を用いたヒドロキシ脂肪酸の製造
（１）微生物の前培養
1000ｍｌ容坂口フラスコに下記処方からなる液体培地を400ｍｌ入れ、121℃で15分間殺菌し、冷却後、エンペドバクターＲＤ-294（受託番号：FERM P-18559）を植菌し、25℃にて120rpmで往復振盪培養を48時間行った。
【００４６】

【００４７】
（２）ヒドロキシ脂肪酸の製造
培養48時間後、微生物がよく増殖した培養物中（菌数４×10⁶/ｍｌ）に、無菌的に混合不飽和脂肪酸（オレイン酸とリノール酸の等量混合物：いずれも和光純薬工業製）４ｇを添加して、さらに往復振盪培養を７日間つづけた。培養終了後、培養物を遠心分離して菌体を除去し、得られた培養液を等量のエチルエーテルにて抽出処理し、エーテル層を無水硫酸ナトリウムにて脱水した後、減圧下エバポレーターにてエーテルを除去し、ヒドロキシ脂肪酸含有画分３.５ｇを得た。
【００４８】
（３）ヒドロキシ脂肪酸含有画分の分析
上記で得られたヒドロキシ脂肪酸含有画分をジアゾメタンにて定法に従ってメチルエステル化し、ガスクロマトグラフィー・質量分析計（GC/MS）を用いて、下記の条件で定性・定量分析を行った。
＜GC/MS分析条件＞
装置GC :HP 5890 MSD: HP5973
カラム：J&W DB-WAX(60m×0.25mm)
温度条件：50(2分)-220℃(3℃/分)。
【００４９】
（４）結果
ガスクロマトグラフィー・質量（GC/MS）分析の結果、培養物に添加した不飽和脂肪酸（オレイン酸、リノール酸）のメチルエステル化物（オレイン酸メチル、リノール酸メチル）のピークより、保持時間の長いピークが２つ検出され、その他の夾雑物の混在はほとんどなかった。この保持時間の長い成分はそのマススペクトルにおいて169と201に大きなピークを持つことから、それぞれの不飽和脂肪酸（オレイン酸、リノール酸）の10位がヒドロキシル化された10-ヒドロキシ脂肪酸と同定された。すなわち、オレイン酸を基質とした場合の主要変換物は10−ヒドロキシステアリン酸（10-hydroxy stearic acid）〔10-ヒドロキシオクタデカン酸（10-hydoroxy octadecanoic acid）〕であり、リノール酸を基質とした主要変換物は、10−ヒドロキシ−12−オクタデセン酸（10-hydroxy-12-octadecenoic acid）であった。
【００５０】
このときの各不飽和脂肪酸からヒドロキシ脂肪酸への変換率を、ガスクロマトグラフィー（GC）のピーク面積より下式（１）及び（２）に従って求めた。
【００５１】
【数１】

【００５２】
【数２】

【００５３】
その結果、オレイン酸からヒドロキシ脂肪酸（10−ヒドロキシステアリン酸）への変換率は４３.５％、リノール酸からヒドロキシ脂肪酸（10−ヒドロキシ−12−オクタデセン酸）への変換率は３９.０％であった。
【００５４】
実施例２ヒドロキシ脂肪酸からのγ−ラクトンの製造
実施例１で調製されたヒドロキシ脂肪酸を利用して、生物学的合成法によりγ−ラクトンを製造した。
【００５５】
具体的には、下記の処方からなる液体培地150ｍｌを500ｍｌ容の坂口フラスコに入れ、121℃で15分間殺菌し冷却した後、実施例１で得られたヒドロキシ脂肪酸含有画分1.5ｇを無菌的に添加し、次いでこれに予め前培養して調製しておいたスポリディオボラス・サーモニカラー（Sporidiobolus salmonicolor）（IFO 1035）菌株の培養液（菌数5.2×10⁸/ｍｌ）を接種した。なお、スポリディオボラス・サーモニカラー（旧名スポロボロミセス・オドラス：Sporobolomyces odorus）は、ヒドロキシ脂肪酸からγ−ラクトンに変換する能力を有する公知の菌である。当該菌は、特に本発明の製造系において、γ−ラクトン変換能力が高く、不要な副生成物をほとんど生産しないため、ラクトン変換微生物として好適に使用することができる。
【００５６】

【００５７】
これを25℃で往復振盪にて７日間培養し、培養終了後、希硫酸にてｐＨを２にした後、菌体を遠心分離にて除去して培養液を回収した。これを等量のエチルエーテルにて抽出処理して、得られたエーテル層を無水硫酸ナトリウムにて脱水後、減圧下エバポレーターにてエーテルを除去して、γ−ラクトン含有画分を１.２ｇ得た。
【００５８】
このγ−ラクトン含有画分についてガスクロマトグラフィー・質量分析計（GC-MS）にて定性・定量分析を行ったところ、10−ヒドロキシステアリン酸のγ-ラクトン変換物であるγ-Dodecalactoneが6.3％、10−ヒドロキシ−12−オクタデセン酸のγ-ラクトン変換物である6-Dodecen-4-olide（4-Hydroxy-6-dodecenoic acid lactone）が4.9％の割合で生成されていることが確認された。
【００５９】
実施例３微生物を用いたヒドロキシ脂肪酸の製造
実施例１と同じ組成からなる培地を100ｍｌ入れた500ｍｌ容の三角フラスコを20本用意し、これを121℃で15分間殺菌し、冷却した後、エンペドバクターＲＤ-294（受託番号：FERM P-18559）またはエンペドバクター・ブレビス（IFO 14943）の前培養冷凍保存種菌液の解凍物を10本ずつ植菌し、往復振盪培養（180rpm、25℃）を行った。24時間後、予め滅菌済みの1000ｍl容の三角フラスコ２本にそれぞれの微生物の培養液を無菌的に集め、さらに各フラスコに不飽和脂肪酸（商品名：エクストラリノレイック 90（日本油脂株式会社製）、成分：リノール酸92.2％、オレイン酸7.7％）を無菌的に30ｍｌずつ添加し、密栓し、マグネティックスターラにて７日間攪拌した。７日後、得られた培養液を実施例１と同様にしてエチルエーテルで抽出処理を行って、ヒドロキシ脂肪酸含有画分を取得した。
【００６０】
このヒドロキシ脂肪酸含有画分を、実施例１と同様にメチルエステル化し、ガスクロマトグラフィー・質量分析計（GC/MS）にかけ、その結果に基づいて上記式（１）及び（２）からそれぞれオレイン酸から10−ヒドロキシステアリン酸への変換率（％）およびリノール酸からの10−ヒドロキシ−12−オクタデセン酸への変換率（％）を求めると、表１に示す結果が得られた。
【００６１】
【表１】

【００６２】
また、エンペドバクターＲＤ-294菌株の培養で得られたヒドロキシ脂肪酸含有画分を３ｇとり、シリカゲルクロマトグラフィーに供し、ジクロロメタン：メタノールの９７：３の溶媒により展開し分画した。得られた各分画液について10−ヒドロキシ−12−オクタデセン酸の含有量を調べるために、該分画液を示差屈折率検出器を装着した高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）にかけた。ＨＰＬＣの結果から10−ヒドロキシ−12−オクタデセン酸を高い割合で含む画分を混合して、再度シリカゲルクロマトグラフィーを行って、純度95％以上の10−ヒドロキシ−12−オクタデセン酸を１.５ｇ得た。
【００６３】
実施例４ファーメンターを用いたヒドロキシ脂肪酸の製造
１０Ｌ容ジャーファーメンターに、実施例１と同じ組成からなる培地を７Ｌ用意し、これを121℃で15分間殺菌し、冷却した後、これにエンペドバクターＲＤ-294（受託番号：FERM P-18559）の前培養菌液を２％量の割合となるように植菌し、350rpm、３Ｌ/分の通気条件下、27℃にて培養を行った。24時間後、予め滅菌した不飽和脂肪酸（商品名：エクストラリノレイック 90（日本油脂株式会社製）、成分：リノール酸92.2％、オレイン酸7.7％）を無菌的に210ｍｌ添加し、通気をストップして４日間攪拌した。４日後、得られた培養液を実施例１と同様にしてエチルエーテル抽出処理して、ヒドロキシ脂肪酸含有画分を172ｇ得た。このヒドロキシ脂肪酸含有画分を、実施例１と同様にメチルエステル化し、ガスクロマトグラフィー・質量分析計（GC/MS）にかけ、その結果に基づいて上記式（１）及び（２）からそれぞれオレイン酸から10−ヒドロキシステアリン酸への変換率（％）およびリノール酸からの10−ヒドロキシ−12−オクタデセン酸への変換率（％）を求めると、オレイン酸からの変換率は67.5％、リノール酸からの変換率は82.7％であった。
【００６４】
実施例５ファーメンターを用いたヒドロキシ脂肪酸の製造
実施例４と同様にしてエンペドバクターＲＤ-294（受託番号：FERM P-18559）を１０Ｌ容ジャーファーメンターにて培養した後、該培養物に不飽和脂肪酸含有物（商品名：エクストラ・リノレニック・70（日本油脂株式会社製）、成分：α-リノレン酸73.9％、リノール酸20.3％、オレイン酸5.7％）を無菌的に210ｍｌ添加し、通気をストップして４日間攪拌した。次いで培地のｐＨを２に下げて静置し、浮遊してきた油層画分300ｍｌを集めた。この油層画分のうち30ｍｌを実施例１と同様にエチルエーテルで抽出処理しヒドロキシ脂肪酸含有画分16.3ｇを得た。
【００６５】
このヒドロキシ脂肪酸含有画分を、実施例１と同様にメチルエステル化し、ガスクロマトグラフィー・質量分析計（GC/MS）にかけ、その結果に基づいて上記式（１）及び（２）からそれぞれオレイン酸から10−ヒドロキシステアリン酸への変換率（％）およびリノール酸からの10−ヒドロキシ−12−オクタデセン酸への変換率（％）を求めると、オレイン酸からの変換率は55.2％、リノール酸からの変換率は81.1％であった。また、α-リノレン酸から変換される10−ヒドロキシ−12,15−オクタデカジエン酸についても同様にして変換率を求めたところ、48.4％であった。
【００６６】
実施例６ファーメンターを用いたラクトンの製造
１０Ｌ容ジャーファーメンター中で、ポテトデキストロ−スブロス(Difco)培地168ｇを７Ｌの水に溶解し、121℃で15分間殺菌し冷却した後、実施例４で得られたヒドロキシ脂肪酸含有画分70ｇを無菌的に添加し、これに予め前培養して調製しておいたラクトン変換微生物であるスポリディオボラス・サーモニカラー（Sporidiobolus salmonicolor）（IFO 1035）菌株の前培養菌液を２％量の割合で植菌し、250rpm、1.5Ｌ/分の通気条件下、２7℃にて７日間培養を行った。この培養液50ｍｌをサンプリングし、エーテル抽出し、γ−ドデカラクトン（東京化成製）を標準品として、培養液中に生成したラクトンを定量したところ、培養液１Ｌあたり、γ-Dodecalactoneを0.15ｇ、6-Dodecen-4-olideを1.79ｇの割合で含んでいることがわかった。
【００６７】
該培養液を実施例２と同様の操作でエチルエーテル抽出処理して、ラクトン含有画分51ｇを得た。このラクトン含有画分を減圧蒸留し、真空度67Paで沸点120〜130℃の留分を集め純度97.0%（ＧＣによる）のラクトン精製物10.1ｇを得た。当該ラクトン精製物のラクトン組成及びその割合は以下の通りであった：
γ-Dodecalactone ： 7.6％
6-Dodecen-4-olide： 89.4％。
【００６８】
実施例７ファーメンターを用いたラクトンの製造
１０Ｌ容ジャーファーメンターに実施例２と同じ組成からなる培地６Ｌと実施例５で得られた油層画分160ｍｌ（ヒドロキシ脂肪酸含有画分87ｇ相当）を入れ、121℃で15分間殺菌し、冷却した後、予め前培養して調製しておいたラクトン変換微生物：スポリディオボラス・サーモニカラー（Sporidiobolus salmonicolor）（IFO 1035）菌株の前培養菌液を２％量の割合で植菌し、350rpm、２Ｌ/分の通気条件下、２7℃にて７日間培養を行った。この培養液50ｍｌを用い、ラクトン含量を実施例６と同様にして測定したところ、培養液１Ｌあたり、γ-Dodecalactone 0.02ｇ、6-Dodecen-4-olide 0.22ｇ、及び6,9-Dodecadien-4-olide 0.67ｇの割合で含んでいることがわかった。
【００６９】
次いで、該培養液を実施例２と同様の操作でエチルエーテル抽出処理してラクトン含有画分65ｇを得た。このラクトン含有画分を減圧蒸留し、真空度67Paで沸点120〜130℃の留分を集め、純度81.8 ％（ＧＣによる）のラクトン精製物4.2ｇを得た。当該ラクトン精製物のラクトン組成及びその割合は以下の通りであった：
γ-Dodecalactone ： 1.7％
6-Dodecen-4-olide ：19.7％
6,9-Dodecadien-4-olide ：60.4％。
【００７０】
【発明の効果】
本発明によれば、ヒドロキシ脂肪酸及びγ-ラクトンの工業的生産に有用な、微生物、特にエンペドバクター（Empedobacter）属に属する微生物を用いることによるヒドロキシ脂肪酸の製造方法を提供することができる。さらに本発明によれば不飽和脂肪酸をヒドロキシ脂肪酸に変換する能力を持つ新規微生物、具体的にはエンペドバクター（Empedobacter）属に属する新規微生物を提供することができる。[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to a method for producing a hydroxy fatty acid from an unsaturated fatty acid using a microorganism, and a method for producing γ-lactone using a hydroxy fatty acid obtained by such a method as a raw material. Furthermore, the present invention relates to a novel microorganism having the ability to convert unsaturated fatty acids into hydroxy fatty acids.
[0002]
[Prior art]
Conventionally, various methods for producing hydroxy fatty acids from unsaturated fatty acids using microorganisms have been tried. For example, European Patent Publication (No.0 578388 A2) includes a subspecies of Pseudomonas (Pseudomonas sp. NRRL B-2994) to produce 10-hydroxy fatty acids from unsaturated fatty acids such as oleic acid, linoleic acid, α-linolenic acid, etc .; JP-A-5-140544 also discloses Pseudomonas Genus subspecies (Pseudomonas sp.) NRRL B-3266, B-2994, and Nocardia Aurantia (Nocardia aurantia) NRRL B3287, and Road Coccus Road Claus (Rhodococcus rhodochrous) Using ATCC12674 to produce hydroxy fatty acids and / or keto fatty acids from unsaturated fatty acids and / or their glycerides; Advances in Applied Microbiology, 41, 1-23,Pseudomonas aeruginosa) Producing 7,10-dihydroxy-8-octadecenoic acid from oleic acid using PR3 strain, and subspecies of genus Flavobacterium (Flavobacterium sp.) DS5 is described to produce 10-hydroxy fatty acids from unsaturated fatty acids.
[0003]
Hydroxy fatty acids are widely used in various fields as raw materials for various organic chemical synthetic products such as ricinoleic acid (12-hydroxy-9-octadecenoic acid), lubricating oils, emulsifiers or waste oil treatment agents, as well as lactones, etc. Useful as a raw material for production. In particular, γ-lactone is an aromatic compound that exists widely in nature, particularly in plants such as fruits, and is a very important substance as a perfume raw material.
[0004]
For example, in the above-mentioned European Patent Publication (No. 0 578388 A2), the hydroxy fatty acid obtained by the above method is used as a raw material and candida (Candida) Genus and Yarrowia (Yarrowia) To produce γ-lactone using microorganisms of the genus; Japanese Patent Application Laid-Open No. 59-82090 discloses Aspergillus oryzae in a medium containing castor oil.Aspergillus orizae) And other microorganisms are cultured to produce γ-hydroxydecanoic acid, which is further heated under acidic conditions to produce γ-decalactone; Japanese Patent Laid-Open Nos. 63-56295 and 2-174685 The publication includes Sporoboromyces Odras (Sporobolomyces odorus), Rhodotorula Glutinis (Rhodotoula glutinis), Aspergillus niger (Aspergillus niger) And the like, and γ-hydroxydecanoic acid is produced from a ricinoleic acid source such as ricinoleic acid and castor oil, and further heated under acidic conditions to produce γ-decalactone. .
[0005]
As a method for producing lactones from fatty acids (saturated fatty acids and unsaturated fatty acids) using microorganisms, saccharomyces cerevisiae (from castor oil)Saccharomyces cerevisiae) And other methods for producing γ-decalactone (JP 60-66991, JP 60-100508, JP 61-238708), 10-oxystearic acid , A method for producing γ-dodecalactone by oxidation with a microorganism having β-oxidation ability (JP-A-3-198787), and by culturing a microorganism that does not metabolize γ- or δ-lactone in the presence of hydroxy fatty acid. A method for producing γ- or δ-lactone (JP-A-3-117494, JP-A-3-219886) and a hydroxide or hydroperoxide of linoleic acid, linolenic acid, oleic acid, and β-oxidizing ability There is known a method for producing γ-, δ-lactone by oxidation with a microorganism having the above (JP-A-3-187387). However, the productivity of hydroxy fatty acids and lactones by these methods is generally low, and it has not been satisfactory from an industrial point of view.
[0006]
[Problems to be solved by the invention]
An object of the present invention is to solve such a conventional problem, and to provide a method for producing a hydroxy fatty acid using a microorganism, which can be industrially produced. A further object of the present invention is to provide a method for producing a lactone using a hydroxy fatty acid obtained by such a method as a raw material.
[0007]
Another object of the present invention is to provide a novel microorganism having the ability to efficiently convert unsaturated fatty acids into hydroxy fatty acids.
[0008]
[Means for Solving the Problems]
The inventors of the present invention made an eager effort to solve the above-mentioned problems.Empedobacter) That the ability to convert unsaturated fatty acids into hydroxy fatty acids can be found in microorganisms belonging to), and by using these microorganisms, hydroxy fatty acids that are precursors of γ-lactone useful as a perfume ingredient can be efficiently produced. I found. The present invention has been completed based on such findings.
[0009]
That is, this invention is a manufacturing method of the hydroxy fatty acid hung up to the following items 1-4.
Item 1. Empedobacter with the ability to convert unsaturated fatty acids to hydroxy fatty acids (EmpedobacterA method for producing a hydroxy fatty acid, which comprises converting an unsaturated fatty acid into a hydroxy fatty acid using a microorganism belonging to the genus.
Item 2. Empedobacter (Empedobacter) As a microorganism belonging to the genus, Empedobacter brevis (Empedobacter brevis), Empedobacter (EmpedobacterThe method for producing a hydroxy fatty acid according to item 1, wherein at least one selected from the group consisting of RD-294 strain and mutants thereof is used.
Item 3. Empedobacter with the ability to convert unsaturated fatty acids to hydroxy fatty acids (EmpedobacterThe method for producing a hydroxy fatty acid according to Item 1, wherein a microorganism belonging to the genus is cultured in a medium containing an unsaturated fatty acid or a derivative thereof, and the hydroxy fatty acid produced in the culture is recovered.
Item 4. Empedobacter (Empedobacter) As a microorganism belonging to the genus, Empedobacter brevis (Empedobacter brevis), Empedobacter (EmpedobacterThe method for producing a hydroxy fatty acid according to Item 3, wherein at least one selected from the group consisting of RD-294 strain and mutants thereof is used.
[0010]
Moreover, this invention is a manufacturing method of (gamma) -lactone which has the process of carrying out the beta oxidation of the hydroxy fatty acid obtained by the manufacturing method in any one of said items 1-4, and cyclizing.
[0011]
Furthermore, the present invention provides a novel microorganism useful for the production of the above hydroxy fatty acid, that is, an Empedobacter having the ability to convert unsaturated fatty acid into hydroxy fatty acid (Empedobacter) RD-294 strain (Accession number “FERM P-18559”) or a mutant thereof.
[0012]
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
(1) Method for producing hydroxy fatty acid
The present invention relates to a method for producing a hydroxy fatty acid from an unsaturated fatty acid using a microorganism (hydroxy fatty acid converting microorganism) having an ability to convert the unsaturated fatty acid into a hydroxy fatty acid.
[0013]
As the microorganism used in the present invention, specifically, Empedobacter (EmpedobacterAnd) microorganisms belonging to the genus. The microorganism is an Empedobacter (Empedobacter) If it is a bacterium belonging to the genus, it is not particularly limited.Empedobacter brevis), Empedobacter (Empedobacter) RD-294 strain or a mutant thereof can be exemplified.
[0014]
Here, Empedobacter brevis is a commercially available microorganism stored as IFO14943 in the Institute for Fermentation.
[0015]
Meanwhile, Empedobacter (Empedobacter) RD-294 strain is a new strain belonging to the genus Empedobacter newly isolated from the soil of Toyonaka City, Osaka Prefecture by the present inventors, and has an address in the center of 1-1-1 Higashi 1-1-1 Tsukuba City, Ibaraki Prefecture Microbiological labeling dated October 10, 2001 at the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (Empedobacter RD-294), accession number “FERM” P-18559 "has been deposited.
[0016]
About Empedobacter RD-294, Bergey's Manual of Systematic Bacteriology and International Journal of Systematic Bacteriology Vol. 44, 827- The mycological properties examined according to the method described on page 831 are as follows.
[0017]
<Mycological properties of Empedobacter RD-294>
(a) Morphological properties
Culturing was carried out at 25 ° C. for 2 days in tryptic soy agar medium (peptone 1.5%, soybean peptone 0.5%, sodium chloride 0.5%, agar 1.5%).
[0018]
Shape Aspergillus
Size 0.6 × 2.0-2.5μm, extension type available
Spores do not form
Gram staining negative
No mobility
Colony Round, smooth all edges, low convex, glossy yellow.
[0019]
(b) Physiological properties
Catalase +
Oxidase +
Nitrate reduction −
Indole production ＋
Arginine dihydrolase −
Urease −
Gelatin degradation +
Esculin degradation-
β-galactosidase −
Lysine decarboxylase −
Ornithine decarboxylase −
Hydrogen sulfide production-.
[0020]
(c) Substrate utilization ability
Glucose + (30 ° C)
Sucrose −
Maltose + (30 ℃)
D-mannitol −
Inosit −
D-sorbitol-
L-Rhamnose −
D-melibiose-
D-Amygdalin −
D-arabinose-
N-acetyl-D-glucosamine −
Potassium gluconate −
n-Capric acid-
Adipic acid −
dl-malic acid-
Phenyl acetate −
This strain decomposed glucose and maltose at 30 ° C., and was slightly slower on the MacConkey agar medium.
[0021]
Based on the above bacteriological properties, this strain was referred to Empedobacter (see Bergey's Manual of Systematic Bacteriology and International Journal of Systematic Bacteriology vol. 44, pages 827-831).Empedobacter) Strains belonging to the genus, more specifically Empedobacter brevis (Empedobacter brevis). Furthermore, as described later, when this strain was compared with that of Empedobacter brevis type culture fungus (IFO14943), its ability to produce hydroxy fatty acid far exceeded that of type culture fungi. It was. Based on this, this strain is considered to be novel and Empedobacter RD-294 (Empedobacter RD-294) strain.
[0022]
The production method of the present invention produces hydroxy fatty acid from unsaturated fatty acid using the above microorganism (hydroxy fatty acid converting microorganism). Here, in addition to the above, the microorganism includes a mutant of Empedobacter RD-294 strain as long as it has the ability to convert unsaturated fatty acid into hydroxy fatty acid.
[0023]
Here, the use of microorganisms broadly means the use of microorganisms directly or indirectly for the production of hydroxy fatty acids using unsaturated fatty acids as a raw material. The reaction system includes isolated microorganisms, crudely purified microorganisms (for example, cultures obtained by cultivating and growing microorganisms and coarsely purified products thereof), processed microorganisms (disinfected microorganism cultures, microorganism disruption) And the like, and a method for producing hydroxy fatty acids in the reaction system, and the microorganisms and microorganism treated products with acrylamide. , Glutaraldehyde, ion exchange resin, photo-curing resin, gelling agents such as alginic acid and agar, and others are immobilized as carriers, immobilized microorganisms and immobilized enzymes How to convert unsaturated fatty acids to hydroxy fatty acids using are included in.
[0024]
More preferably, the method for producing a hydroxy fatty acid of the present invention comprises culturing a microorganism belonging to the genus Empedobacter having an ability to convert an unsaturated fatty acid into a hydroxy fatty acid in a medium containing the unsaturated fatty acid or a derivative thereof, It can be carried out by recovering the hydroxy fatty acid produced therein. Preferred examples of the microorganism belonging to the genus Empedobacter include Empedobacter brevis, Empedobacter RD-294 strain and mutants thereof. At this time, the timing and method of adding the unsaturated fatty acid or derivative thereof are not particularly limited. However, since the unsaturated fatty acid or derivative thereof may inhibit the growth of the microorganism, In order to efficiently produce hydroxy fatty acids, it is preferable to pre-culture and grow under aerobic conditions and then add unsaturated fatty acids or derivatives thereof after growth. The method for adding the unsaturated fatty acid or derivative thereof is not particularly limited, and the whole amount may be added all at once, or may be performed by gradually or intermittently adding during the culture.
[0025]
The unsaturated fatty acid used in the present invention has one carboxyl group and one or more carbon double bonds in the molecule, specifically usually 1 to 6, preferably 1 to 3 carbon atoms. It is a chain type compound from ˜30. For example, decenoic acid (C_Ten), Undecenoic acid (C₁₁), Dodecenoic acid (C₁₂), Tetradecenoic acid (such as myristoleic acid) (C₁₄), Hexadecenoic acid (such as palmitoleic acid) (C₁₆), Octadecenoic acid (oleic acid, elaidic acid, ricinoleic acid, etc.) (C₁₈), Eicosenoic acid (C₂₀), Docosenoic acid (erucic acid, etc.) (C_{twenty two}), Tetracosenoic acid (C_{twenty four}), Hexacosenoic acid (C₂₆), Triacontenoic acid (C₃₀), And other monoene unsaturated fatty acids; decadienoic acid (C_Ten), Octadecadienoic acid (linoleic acid, conjugated linoleic acid, etc.) (C₁₈), Eicosadienoic acid (C₂₀), And other diene unsaturated fatty acids; hexadecatrienoic acid (eg, hiragoic acid) (C₁₆), Octadecatrienoic acid (eleostearic acid, punicic acid, linolenic acid, γ-linolenic acid, etc.) (C₁₈), Eicosatrienoic acid (C₂₀), Docosatrienoic acid (C_{twenty two}), And other triene unsaturated fatty acids; hexadecatetraenoic acid (C₁₆), Octadecatetraenoic acid (C₁₈), Eicosatetraenoic acid (such as arachidonic acid) (C₂₀), Docosatetraenoic acid (C_{twenty two}), And other tetraene unsaturated fatty acids; eicosapentaenoic acid (EPA) (C₂₀), Docosapentaenoic acid (such as sardine acid) (C_{twenty two}), And other pentaene unsaturated fatty acids; docosahexaenoic acid (DHA) (C_{twenty two}), Tetracohexanoic acid (such as nisic acid) (C_{twenty four}), And other hexaene unsaturated fatty acids; and other polyene unsaturated fatty acids.
[0026]
These unsaturated fatty acids may be in a free form or a salt form thereof. In addition, the method of the present invention can use derivatives thereof instead of the unsaturated fatty acids (or together with the unsaturated fatty acids). Such a derivative is particularly limited in its structure as long as it produces a hydroxy fatty acid via a microorganism belonging to the genus Empedobacter, preferably Empedobacter RD-294 or a mutant thereof, or Empedobacter brevis. Although not included, for example, nitrogen-containing derivatives such as fatty acid amides and esters of alcohols such as glycerin and the above fatty acids such as fats and oils are included. Such fats and oils include, for example, soybean oil, rapeseed oil, cottonseed oil, sunflower oil, sesame oil, corn oil, rice oil, peanut oil, safflower oil, coconut oil, olive oil, linseed oil, tung oil, castor oil, palm oil, palm kernel oil, palm Oil, perilla oil, grape seed oil, jojoba oil, and other vegetable oils; and whale oil, fish oil, pork fat, beef tallow, chicken oil, milk fat, and other animal fats. For example, it can be hydrolyzed with an enzyme such as lipase and used as a free fatty acid source.
[0027]
The above-mentioned culture of hydroxy fatty acid-converting microorganism is carried out using a medium containing the unsaturated fatty acid or derivative thereof. The medium and culture conditions used for the culture are not particularly limited, and can be appropriately selected according to the type and properties of the microorganism to be used. Specifically, in addition to the unsaturated fatty acid or derivative thereof, the medium is a nutrient source that can be used by microorganisms belonging to the genus Empedobacter, preferably Empedobacter RD-294 or a mutant thereof, or Empedobacter brevis. Any of various synthetic media and natural media can be used. Usually, commonly used carbon sources, nitrogen sources or / and inorganic salts, and vitamins can be appropriately combined. For example, carbon sources include glucose, sucrose, fructose, maltose, glycerin, dextrin, oligos. Sugar, starch, molasses, corn steep liquor, malt extract, organic acid, etc. alone or in combination of two or more; as nitrogen sources, pharma media, peptone, soy flour, yeast extract, meat extract, bran extract, corn steep liquor, Cases, amino acids, organic nitrogen sources such as urea, inorganic nitrogen sources such as nitrates and ammonium salts, etc., alone or in combination of two or more; inorganic salts include phosphates, magnesium salts, calcium salts, potassium salts, etc. Metal salts alone or in combination of two or more; also as vitamins Riboflavin, nicotinamide, pyridoxine hydrochloride, may be mentioned hydrochloric acid thiamine, alone or two or more combinations such as biotin.
[0028]
The culture may be either solid culture or liquid culture, and can be performed according to the culture of general microorganisms. It is usually preferable to use liquid culture. In this case, any of culture under aerobic conditions such as shaking culture, aeration and agitation culture, aerobic surface culture, or anaerobic conditions such as deep static culture may be used. Is preferably cultured under aerobic conditions, and when converting from unsaturated fatty acids to hydroxy fatty acids, it is necessary to stir the microorganisms or processed microbial products with the unsaturated fatty acids, but anaerobic It is desirable to culture under various conditions. As the culture method, any of batch culture, semi-batch culture (fed-batch culture), and continuous culture can be performed. The culture temperature is not particularly limited as long as it is a temperature at which a microorganism belonging to the genus Empedobacter, preferably Empedobacter RD-294 or a mutant thereof, or Empedobacter brevis grows or proliferates normally, but usually 20 to It is desirable to culture at a temperature of 45 ° C, preferably around 25-35 ° C. The liquid property of the medium is not particularly limited within the above-mentioned limits, but can be exemplified by a range of usually neutral to weakly alkaline, specifically pH 5-10, preferably pH 6-9. Moreover, although culture | cultivation time is not restrict | limited, Usually, the range of 2 days-15 days can be mentioned. These culture conditions can be appropriately changed according to the type and characteristics of microorganisms to be used, external conditions, and the like, and thus optimum conditions can be selected and adjusted.
[0029]
The method for extracting, separating and purifying the produced hydroxy fatty acid from the culture after the cultivation is not limited to a special method, and can be carried out according to a general method for collecting and recovering the fermentation product. Specifically, for example, the obtained culture is decanted, centrifuged or filtered to recover a hydroxy fatty acid-containing culture, and the culture is extracted with a solvent, various resins (for example, ion exchange, adsorption, Molecular sieve etc.) treatment, membrane (eg membrane filter, ultrafiltration, microfiltration, reverse osmosis etc.) treatment, activated carbon treatment, supercritical fluid extraction treatment, distillation treatment, crystallization, or other treatment alone or in combination Examples of methods that are appropriately combined in an arbitrary order can be exemplified. More specifically, the obtained culture solution is once reduced in pH to around 2, and the crude oil layer containing hydroxy fatty acid is recovered by recovering the floating oil layer using a separatory funnel or centrifugal separator. A purified product can be obtained.
[0030]
Furthermore, this crude product may be purified as necessary. Specifically, the crude product can be extracted, purified, or fractionated using an organic solvent such as acetonitrile, acetone, ethanol, methanol, ethyl acetate, diethyl ether, tetrahydrofuran, hexane or the like alone or in combination of two or more. It can be adsorbed on a synthetic adsorbent (trade name Diaion HP20, etc., manufactured by Mitsubishi Chemical Corporation) and purified by eluting a hydroxy fatty acid-containing fraction with alcohol or the like, and further by using silica gel chromatography Can also be purified to a higher purity.
[0031]
In addition, the confirmation (qualitative and quantitative) of the hydroxy fatty acid obtained during the purification process and finally was performed by thin layer chromatography (TLC), high performance liquid chromatography (HPLC), gas chromatography (GC), mass spectrometer ( MS), nuclear magnetic resonance spectrum (NMR) and the like, for example, by comparing with a known hydroxy fatty acid (standard product).
[0032]
The hydroxy fatty acids thus obtained are not only useful as surfactants and oil solidifying agents themselves, but also perform many chemical reactions using hydroxyl groups, carboxyl groups and double bonds possessed by hydroxy fatty acids. Since it can be performed, it is also useful as a raw material for various chemical products. It can also be used effectively as a raw material for producing lactones. In particular, a hydroxy fatty acid having a hydroxyl group at the 10-position and an unsaturated bond at the ω side (for example, the 12- and 15-positions) from the 10-position is a good precursor for the production of unsaturated lactones and is very useful industrially. .
[0033]
(2) Method for producing γ-lactone
The present invention also provides a method for producing γ-lactone using the hydroxy fatty acid obtained by the above method.
[0034]
The production method of γ-lactone of the present invention is characterized in that the hydroxy fatty acid obtained by the above method is used as a raw material, and as far as it is known, a conventionally known or future development that produces γ-lactone from a hydroxy fatty acid. Any of the chemical synthesis methods and biological synthesis methods to be used can be employed. A biological synthesis method is preferred.
[0035]
Examples of conventionally known biological synthesis methods for synthesizing γ-lactone from hydroxy fatty acids include fermentation methods or microbial conversion methods using microorganisms (lactone-converting microorganisms) having the ability to convert hydroxy fatty acids into γ-lactones. be able to.
[0036]
Lactone-converting microorganisms used here are those that have the ability to convert hydroxy fatty acids into β-oxidation and cyclization to convert them into γ-lactone alone, or combine two or more types to convert β-hydroxy fatty acids into β-oxidation. Or a group of microorganisms that can be cyclized and converted to γ-lactone.
[0037]
Specifically, Candida (Candida) Genus and Yarrowia lipolytica (Yarrowia lipolytica) Using microorganisms (European Patent Publication No. 0 578388 A2), Sporoboromyces odorus (Sporobolomyces odorus) And Rhodotorula Glutinis (Rhodotoula glutinis) And other microorganisms (JP-A 63-56295), Aspergillus niger (Aspergillus niger) And the like (JP-A-2-74685), 10-oxystearic acid is converted to Saccharomyces cerevisiae (Saccharomyces cerevisiae )A method for producing γ-dodecalactone by oxidation with a microorganism having β-oxidation ability such as JP-A-3-198787, Aspergillus oryzae (in a medium containing castor oil)Aspergillus or izae) And other microorganisms are cultured to produce γ-hydroxydecanoic acid, which is further heated under acidic conditions to produce γ-decalactone (JP 59-82090 A), in the presence of hydroxy fatty acid. a method for producing γ- or δ-lactone by culturing a microorganism that does not metabolize γ- or δ-lactone (JP-A-3-117494, JP-A-3-219886), linoleic acid, linolenic acid, Examples thereof include a method for producing γ-, δ-lactone by oxidizing a hydroxide or hydroperoxide of oleic acid with a microorganism having β-oxidation ability (JP-A-3-187387).
[0038]
According to these methods, γ-lactone can be produced by β-oxidizing and cyclizing a hydroxy fatty acid. In this case, as the hydroxy fatty acid used as a raw material, a culture solution containing hydroxy fatty acid obtained by the above-described method or an extract thereof can be used as it is, regardless of whether it is purified or roughly purified.
[0039]
Moreover, the culture system (medium, culture conditions, etc.) of the microorganism used for the production of the above-mentioned hydroxy fatty acid, as long as the growth and proliferation of the microorganism having the γ-lactone conversion ability or the γ-lactone conversion ability is not hindered. Can be used as is. In this case, the above-mentioned microorganism having γ-lactone conversion ability (lactone-converting microorganism) may be added to the culture in which the hydroxy fatty acid is produced, and the culture medium may be supplemented with a nutrient source as necessary to continue the culture. In addition, in the production of the hydroxy fatty acid, in addition to the microorganism belonging to the genus Empedobacter (for example, Empedobacter RD-294 or its mutant, Empedobacter brevis) which is a hydroxy fatty acid converting microorganism in the medium, A lactone-converting microorganism may be added.
[0040]
The production of γ-lactone using a microorganism having lactone conversion ability can be basically carried out in accordance with a general microorganism culturing method, similar to the production of hydroxy fatty acid described above. Depending on the characteristics of the γ-lactone, the optimum conditions for the production of γ-lactone, which are adjusted and set under routine design changes by those skilled in the art, can be used. In addition, the method for extracting, separating and purifying the produced γ-lactone from the culture after the cultivation is not limited to a special method, and it should be performed according to a general method for collecting and recovering the fermentation product. Can do. In addition, confirmation (qualitative, quantitative) of γ-lactone finally obtained during the purification process was performed by high performance liquid chromatography (HPLC), gas chromatography mass spectrometer (GC-MS), nuclear magnetic resonance spectrum (NMR). ) And the like, for example, by comparing with known γ-lactone.
[0041]
The γ-lactone thus obtained is useful as a perfume raw material, for example.
[0042]
(3) New microorganism
The present invention also provides a novel microorganism, Empedobacter RD-294 strain. Such a microorganism is a novel strain belonging to the genus Empedobacter and is characterized by having the ability to convert unsaturated fatty acids into hydroxy fatty acids. More specifically, the microorganism has one carboxyl group and one or more carbon double bonds in the molecule, specifically usually 1 to 6, preferably 1 to 3 carbon atoms having 4 to 4 carbon atoms. It has the ability to convert 30 unsaturated fatty acids into hydroxy fatty acids. In addition, the microorganism of the present invention has a characteristic of selectively introducing a hydroxyl group into the 10-position of an unsaturated fatty acid having 10 to 30 carbon atoms such as oleic acid, linoleic acid, linolenic acid, and the like. Industrially, it can be advantageously used to produce a hydroxy fatty acid from an unsaturated fatty acid having an unsaturated bond other than the 10-position while the unsaturated bond is preserved as it is, and the hydroxy fatty acid is used as a raw material. Thus, the production of γ-lactone can be carried out industrially.
[0043]
In addition, about the acquisition method of the said microorganisms, the bacteriological property, and the acquisition method are as above-mentioned.
[0044]
【Example】
Hereinafter, the present invention and the effects thereof will be described with reference to examples, but the present invention is not limited to these examples. In the following examples, “%” means “% by weight” unless otherwise specified.
[0045]
Example 1 Production of hydroxy fatty acids using microorganisms
(1) Pre-culture of microorganisms
Place 400 ml of liquid medium consisting of the following formulation in a 1000 ml Sakaguchi flask, sterilize at 121 ° C for 15 minutes, cool and inoculate Empedobacter RD-294 (accession number: FERM P-18559) at 25 ° C. Reciprocal shaking culture was performed at 120 rpm for 48 hours.
[0046]

[0047]
(2) Production of hydroxy fatty acids
After 48 hours in culture, in a culture in which microorganisms grew well (4 × 10 bacteria)⁶4 ml of aseptic mixed unsaturated fatty acid (equal mixture of oleic acid and linoleic acid: both manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) was added aseptically, and reciprocal shaking culture was continued for 7 days. After completion of the culture, the culture is centrifuged to remove the cells, the resulting culture is extracted with an equal amount of ethyl ether, the ether layer is dehydrated with anhydrous sodium sulfate, and then the evaporator is placed under reduced pressure. The ether was removed to obtain 3.5 g of a hydroxy fatty acid-containing fraction.
[0048]
(3) Analysis of fractions containing hydroxy fatty acids
The hydroxy fatty acid-containing fraction obtained above was methyl esterified with diazomethane according to a conventional method, and qualitative and quantitative analysis was performed under the following conditions using a gas chromatography / mass spectrometer (GC / MS).
<GC / MS analysis conditions>
Equipment GC: HP 5890 MSD: HP5973
Column: J & W DB-WAX (60m x 0.25mm)
Temperature condition: 50 (2 minutes) -220 ° C. (3 ° C./minute).
[0049]
(4) Results
As a result of gas chromatography / mass (GC / MS) analysis, retention time is longer than the peak of methyl esterified product (methyl oleate, methyl linoleate) of unsaturated fatty acid (oleic acid, linoleic acid) added to the culture Two peaks were detected, and other impurities were hardly mixed. This long-retention component has large peaks at 169 and 201 in its mass spectrum, so it was identified as a 10-hydroxy fatty acid in which the 10th position of each unsaturated fatty acid (oleic acid, linoleic acid) was hydroxylated. . That is, the main conversion product when oleic acid is used as a substrate is 10-hydroxy stearic acid (10-hydroxyoctadecanoic acid). The conversion product was 10-hydroxy-12-octadecenoic acid.
[0050]
The conversion rate from each unsaturated fatty acid at this time to the hydroxy fatty acid was determined according to the following formulas (1) and (2) from the peak area of gas chromatography (GC).
[0051]
[Expression 1]

[0052]
[Expression 2]

[0053]
As a result, the conversion rate from oleic acid to hydroxy fatty acid (10-hydroxystearic acid) was 43.5%, and the conversion rate from linoleic acid to hydroxy fatty acid (10-hydroxy-12-octadecenoic acid) was 39.0%. there were.
[0054]
Example 2 Production of γ-lactone from hydroxy fatty acid
Using the hydroxy fatty acid prepared in Example 1, γ-lactone was produced by biological synthesis.
[0055]
Specifically, 150 ml of a liquid medium having the following formulation was placed in a 500 ml Sakaguchi flask, sterilized at 121 ° C. for 15 minutes and cooled, and then 1.5 g of the hydroxy fatty acid-containing fraction obtained in Example 1 was aseptically obtained. Sporidioborus thermonicolor (prepared by pre-cultured in advance)Sporidiobolus salmonicolor) (IFO 1035) strain culture (number of bacteria 5.2 × 10⁸/ ml). Sporidioborus thermonicolor (former name Sporoboromyces odorus:Sporobolomyces odorus) Is a known bacterium having an ability to convert hydroxy fatty acid to γ-lactone. In particular, in the production system of the present invention, the bacterium has a high γ-lactone conversion ability and hardly produces unnecessary by-products, and therefore can be suitably used as a lactone-converting microorganism.
[0056]

[0057]
This was cultured at 25 ° C. by reciprocal shaking for 7 days. After completion of the culture, the pH was adjusted to 2 with dilute sulfuric acid, and the cells were removed by centrifugation to recover the culture solution. This was extracted with an equal amount of ethyl ether, and the obtained ether layer was dehydrated with anhydrous sodium sulfate, and then the ether was removed with an evaporator under reduced pressure to obtain 1.2 g of a γ-lactone-containing fraction. It was.
[0058]
When this γ-lactone-containing fraction was subjected to qualitative and quantitative analysis using a gas chromatography / mass spectrometer (GC-MS), γ-Dodecalactone, a γ-lactone conversion product of 10-hydroxystearic acid, was 6.3%. , 6-Dodecen-4-olide (4-Hydroxy-6-dodecenoic acid lactone), a γ-lactone conversion product of 10-hydroxy-12-octadecenoic acid, was confirmed to be produced at a rate of 4.9%. .
[0059]
Example 3 Production of hydroxy fatty acids using microorganisms
Twenty 500 ml Erlenmeyer flasks containing 100 ml of a medium having the same composition as in Example 1 were prepared, sterilized at 121 ° C. for 15 minutes, cooled, and then Empedobacter RD-294 (accession number: FERM P -18559) or Empedobacter brevis (IFO 14943) pre-cultured frozen stock solution of 10 thawed cells were inoculated, and reciprocal shaking culture (180 rpm, 25 ° C.) was performed. After 24 hours, the culture solution of each microorganism was aseptically collected in two sterilized 1000 ml Erlenmeyer flasks, and unsaturated fatty acids (trade name: Extra Linoleic 90 (manufactured by NOF Corporation), (Ingredients: linoleic acid 92.2%, oleic acid 7.7%) were added aseptically in 30 ml portions, sealed, and stirred with a magnetic stirrer for 7 days. Seven days later, the obtained culture solution was extracted with ethyl ether in the same manner as in Example 1 to obtain a hydroxy fatty acid-containing fraction.
[0060]
This hydroxy fatty acid-containing fraction was methyl esterified in the same manner as in Example 1, and subjected to gas chromatography / mass spectrometry (GC / MS). Based on the results, oleic acid was obtained from the above formulas (1) and (2), respectively. When the conversion rate (%) from 10 to hydroxystearic acid and the conversion rate (%) from linoleic acid to 10-hydroxy-12-octadecenoic acid were determined, the results shown in Table 1 were obtained.
[0061]
[Table 1]

[0062]
Further, 3 g of a hydroxy fatty acid-containing fraction obtained by culturing Empedobacter RD-294 strain was taken, subjected to silica gel chromatography, developed with a 97: 3 solvent of dichloromethane: methanol and fractionated. In order to examine the content of 10-hydroxy-12-octadecenoic acid for each obtained fraction, the fraction was subjected to high performance liquid chromatography (HPLC) equipped with a differential refractive index detector. From the results of HPLC, a fraction containing a high proportion of 10-hydroxy-12-octadecenoic acid was mixed and subjected to silica gel chromatography again to obtain 1.5 g of 10-hydroxy-12-octadecenoic acid having a purity of 95% or more. It was.
[0063]
Example 4    Production of hydroxy fatty acids using fermenters
In a 10 L jar fermenter, 7 L of a medium having the same composition as in Example 1 was prepared, sterilized at 121 ° C. for 15 minutes, cooled, and then added to Empedobacter RD-294 (accession number: FERM P- 18559) was inoculated at a rate of 2% and cultured at 27 ° C. under aeration conditions of 350 rpm and 3 L / min. After 24 hours, add aseptically 210 ml of pre-sterilized unsaturated fatty acid (trade name: Extra Linoleic 90 (manufactured by NOF Corporation), ingredients: linoleic acid 92.2%, oleic acid 7.7%), stop aeration Stir for 4 days. Four days later, the obtained culture broth was extracted with ethyl ether in the same manner as in Example 1 to obtain 172 g of a hydroxy fatty acid-containing fraction. This hydroxy fatty acid-containing fraction was methyl esterified in the same manner as in Example 1, and subjected to gas chromatography / mass spectrometry (GC / MS). Based on the results, oleic acid was obtained from the above formulas (1) and (2), respectively. When the conversion rate from oleic acid to 10-hydroxystearic acid (%) and the conversion rate from linoleic acid to 10-hydroxy-12-octadecenoic acid (%) were determined, the conversion rate from oleic acid was 67.5%, from linoleic acid The conversion rate of was 82.7%.
[0064]
Example 5  Production of hydroxy fatty acids using fermenters
Empedobacter RD-294 (Accession Number: FERM P-18559) was cultured in a 10 L jar fermenter in the same manner as in Example 4, and then the unsaturated fatty acid-containing product (trade name: Extra Linolenic) 70 (manufactured by Nippon Oil & Fats Co., Ltd.), components: α-linolenic acid 73.9%, linoleic acid 20.3%, oleic acid 5.7% were aseptically added, and aeration was stopped, followed by stirring for 4 days. Next, the pH of the medium was lowered to 2 and allowed to stand, and 300 ml of the floating oil layer fraction was collected. 30 ml of this oil layer fraction was extracted with ethyl ether in the same manner as in Example 1 to obtain 16.3 g of a hydroxy fatty acid-containing fraction.
[0065]
This hydroxy fatty acid-containing fraction was methyl esterified in the same manner as in Example 1, and subjected to gas chromatography / mass spectrometry (GC / MS). Based on the results, oleic acid was obtained from the above formulas (1) and (2), respectively. When the conversion rate from 10 to hydroxystearic acid (%) and the conversion rate from linoleic acid to 10-hydroxy-12-octadecenoic acid (%) were determined, the conversion rate from oleic acid was 55.2%, from linoleic acid The conversion rate of was 81.1%. Further, the conversion rate of 10-hydroxy-12,15-octadecadienoic acid converted from α-linolenic acid was similarly determined to be 48.4%.
[0066]
Example 6    Production of lactones using fermenters
In a 10 L jar fermenter, 168 g of potato dextro-broth (Difco) medium was dissolved in 7 L of water, sterilized at 121 ° C. for 15 minutes and cooled, and then the hydroxy fatty acid-containing fraction obtained in Example 4 was 70 g. Is added aseptically, and pre-cultured and prepared in advance, the lactone-converting microorganism Sporidioborus thermonicolor (Sporidiobolus salmonicolor) (IFO 1035) The precultured bacterial solution of the strain was inoculated at a rate of 2% and cultured at 27 ° C. for 7 days under aeration conditions of 250 rpm and 1.5 L / min. 50 ml of this culture broth was sampled, extracted with ether, and lactone produced in the culture broth was quantified using γ-dodecalactone (manufactured by Tokyo Chemical Industry) as a standard product. 0.15 g of γ-Dodecalactone per liter of broth It was found to contain 1.79 g of 6-Dodecen-4-olide.
[0067]
The culture solution was extracted with ethyl ether in the same manner as in Example 2 to obtain 51 g of a lactone-containing fraction. This lactone-containing fraction was distilled under reduced pressure, and fractions with a vacuum of 67 Pa and a boiling point of 120 to 130 ° C. were collected to obtain 10.1 g of purified lactone having a purity of 97.0% (by GC). The lactone composition and the ratio of the purified lactone were as follows:
γ-Dodecalactone: 7.6%
6-Dodecen-4-olide: 89.4%.
[0068]
Example 7    Production of lactones using fermenters
A 10 L jar fermenter was charged with 6 L of medium having the same composition as in Example 2 and 160 ml of the oil layer fraction obtained in Example 5 (equivalent to 87 g of a hydroxy fatty acid-containing fraction), sterilized at 121 ° C. for 15 minutes, and cooled. Later, pre-cultured lactone-converting microorganism: Sporidioborus thermonicolor (Sporidiobolus salmonicolor) (IFO 1035) The precultured bacterial solution of the strain was inoculated at a rate of 2%, and cultured at 27 ° C. for 7 days under aeration conditions of 350 rpm and 2 L / min. Using 50 ml of this culture solution, the lactone content was measured in the same manner as in Example 6. As a result, 0.02 g of γ-Dodecalactone, 0.22 g of 6-Dodecen-4-olide, and 6,9-Dodecadien-4 per liter of the culture solution were measured. -olide It was found to contain 0.67g.
[0069]
Subsequently, the culture solution was extracted with ethyl ether in the same manner as in Example 2 to obtain 65 g of a lactone-containing fraction. This lactone-containing fraction was distilled under reduced pressure, and fractions having a vacuum of 67 Pa and a boiling point of 120 to 130 ° C. were collected to obtain 4.2 g of a purified lactone having a purity of 81.8% (by GC). The lactone composition and the ratio of the purified lactone were as follows:
γ-Dodecalactone: 1.7%
6-Dodecen-4-olide: 19.7%
6,9-Dodecadien-4-olide: 60.4%.
[0070]
【The invention's effect】
According to the present invention, microorganisms, particularly Empedobacter (especially useful for the industrial production of hydroxy fatty acids and γ-lactones,Empedobacter) A method for producing a hydroxy fatty acid by using a microorganism belonging to the genus can be provided. Furthermore, according to the present invention, a novel microorganism having the ability to convert unsaturated fatty acid to hydroxy fatty acid, specifically Empedobacter (Empedobacter) A novel microorganism belonging to the genus can be provided.

Claims

Empedobacter RD- 294 strain (accession number "FERM" ) having the ability to convert unsaturated fatty acids to hydroxy fatty acids A method for producing a hydroxy fatty acid, which comprises converting an unsaturated fatty acid into a hydroxy fatty acid using P-18559 ") or a mutant thereof .

Empedobacter RD- 294 strain (accession number "FERM" ) having the ability to convert unsaturated fatty acids to hydroxy fatty acids P-18559 ") or a mutant strain was cultured in medium containing unsaturated fatty acids, and recovering the hydroxy fatty acid produced in the culture method for producing a hydroxy fatty acid of claim 1, wherein .

Empedobacter RD- 294 strain (accession number "FERM" ) having the ability to convert unsaturated fatty acids to hydroxy fatty acids A method for producing γ-lactone , comprising converting an unsaturated fatty acid into a hydroxy fatty acid using P-18559 ”) or a mutant thereof, and then β-oxidizing and cyclizing the hydroxy fatty acid.

Empedobacter RD-294 strain (Accession No. “FERM P-18559”) or a mutant thereof having the ability to convert unsaturated fatty acids into hydroxy fatty acids.