JP3609102B2

JP3609102B2 - Novel protease, process for producing the same and novel microorganism of the genus Alteromonas

Info

Publication number: JP3609102B2
Application number: JP7500093A
Authority: JP
Inventors: 信彦堂本; ヴェンカットスワランカストゥーリ; 博己田中; 渉幹
Original assignee: 株式会社海洋バイオテクノロジー研究所
Priority date: 1992-04-03
Filing date: 1993-03-10
Publication date: 2005-01-12
Anticipated expiration: 2020-01-12
Also published as: JPH0638749A

Description

【０００１】
【産業上の利用分野】
本発明は、海洋汚損生物の一種であるムラサキイガイを除去することを目的とした、ムラサキイガイ足糸分解能を有するプロテアーゼ、その製造法及び該プロテアーゼ生産能を有する新規細菌、Ａｌｔｅｒｏｍｏｎａｓｐｅｐｔｉｄｙｓｉｎに関する。
【０００２】
【従来の技術】
ムラサキイガイ等の海洋付着生物は、船底や養殖施設、発電所の取水路等に付着し、様々な被害を与えている。そのため、これらの汚損生物の除去は、従来、水圧や人力等による物理的手段、あるいは亜硫化銅や有機錫化合物等を使った化学的除去法が行われてきた。しかし、これらの方法は、人的危険を伴う多大な労力と出費を必要とし、更には、環境を汚染するという欠点を有していた。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、ムラサキイガイ足糸の分解除去が目的であり、それを達成すべく鋭意研究を行い本発明を完成するに至った。
【０００４】
【課題を解決するための手段】
海洋付着生物は色々な様式で付着しているが、その中でムラサキイガイは、Ｌ−ドーパ、４−ヒドロキシプロリンを含むフェノール性タンパクとコラーゲン等からなる足糸で付着している。
本発明者らは、ムラサキイガイ足糸を基質として海洋より細菌を採取し、その中からムラサキイガイ足糸だけを栄養源として生育できる細菌、即ちムラサキイガイ足糸分解能を有する新規な細菌を分離した。更に、本新規細菌の産生するムラサキイガイ足糸を分解できる３種のプロテアーゼを単離した。
１．本細菌のスクリーニングは以下の通り行った。
（１）一次スクリーニング
一次スクリーニング培地は洗浄前処理した足糸を濾過海水に０．５％（Ｗ／Ｖ）入れ、加熱殺菌したもので、試験管に入れた本培地１０ｍｌに１００μｌの採取した海水を添加し、２０℃で１０日間振とう培養した。濁度を測定し、ＯＤ６６０＞０．３まで増殖した分解活性の高いものを選択した。この増殖した培養液をマリンアガー２２１６培地に１００ μｌ塗布し菌株を単離した。
（２）二次スクリーニング
二次スクリーニングにより得られた海洋細菌をマリンブロス２２１６培地でＯＤ６６０＝１．０まで培養した。培養液を１０，０００回転／分で１５分遠心し、その上清を得た。この上清２００ μｌと０．２ μ以下の大きさに粉末篩分した足糸１０ｍｇを５０ｍＭのトリスバッファー（ｐＨ７．５）中で３０℃、１時間反応させ、しかる後、１００ ℃、１０分の加熱により反応を停止させた。反応液を１０，０００回転／分で５分遠心し、遠心上清中の遊離したペプチドをニンヒドリン法により定量した。なお、１酵素単位（Ｕ）は上記実験条件下で１分間に足糸から遊離されるヒドロキシプロリンの１μｍｏｌに相当する４４０ｎｍにおける吸光度を与える場合の活性度として表した。また、一次スクリーニング培地に、マリンブロス２２１６培地でＯＤ６６０＝１．０に培養した一次スクリーニングで得られた海洋細菌を１００ μｌ接種し、２０℃、１５日間培養後、基質乾燥重量を測定した。これら２つの結果を併せて２次スクリーニングとし、最も分解活性の高い菌を選択した。
２．二次スクリーニングにより選択した本発明の細菌の性状は以下の通りである。
（１）形態的性状
ａ．全長１μｍ、全幅３００〜４００ｎｍの桿菌で、走査型電子顕微鏡下で図１に示されるもの。
【０００５】
ｂ．長さ約２μｍの鞭毛を一本持ち、それは極毛である。
ｃ．運動性：あり
（２）生理学的性状
ａ．グラム染色：グラム陰性である。
ｂ．糖発酵：発酵しない。
【０００６】
ｃ．菌体色素：茶色の色素を産生する。
ｄ．好塩性：１〜１０％のＮａＣｌ濃度で生育する。
ｅ．ゼラチン分解：分解する。
ｆ．ＤＮＡ分解：分解する。
ｇ．ＧＣ含量：４２．４％
３．本発明の新規細菌の分類上の位置の決定は、次の通り行った。
（１）属の決定
細菌は上記の形態学的及び生理学的性状よりアルテロモナス（Ａｌｔｅｒｏｍｏｎａｓ）属と同定した。
（２）種の決定
アルテロモナス属にはバージェイ式分類法により１１種が知られている。バージェイ式分類法により本細菌の分類を試みたところ、公知種とは一致しなかった。公知１１種の中でバージェイ式分類法で一番近縁であったＡ．ｌｕｔｅｏｖｉｏｌａｃｅａと本種の性状を表１及び表２に示す。
【０００７】
表１及び表２において、記号「＋」は９０〜１００％の菌株で陽性であること、記号「ｄ」は１０〜８９％の菌株で陽性であること、記号「−」は１０％未満の菌株で陽性であるか、全く認められないこと、記号「Ｓｔ」は桿菌を表す。
【０００８】
【表１】

【０００９】
【表２】

ａ．本細菌は４０℃で生育するが、Ａ．ｌｕｔｅｏｖｉｏｌａｃｅａは生育しない。
ｂ．本細菌はコハク酸、フマル酸、ペラルゴン酸、カプリン酸、Ｌ−ロイシン、Ｌ−イソロイシン、Ｌ−バリンを利用できるが、Ａ．ｌｕｔｅｏｖｉｏｌａｃｅａは利用できない。
【００１０】
また、本種とＡ．ｌｕｔｅｏｖｉｏｌａｃｅａ及び対照としてＡ．ｈａｌｏｐｌａｎｋｔｉｓ、Ｅ．ｃｏｌｉ、Ｂ．ｓｕｂｔｉｌｉｓとのＤＮＡの相同性を検討した結果を表３に示す。
【００１１】
【表３】

ａ．本細菌とＡ．ｌｕｔｅｏｖｉｏｌａｃｅａとのＤＮＡの相同性は５〜１０％である。
ｂ．本細菌とＥ．ｃｏｌｉ及びＢ．ｓｕｂｔｉｌｉｓとのＤＮＡの相同性は１％以下である。
以上の性状の相違から、本細菌はアルテロモナス属の新種であると結論し、Ａｌｔｅｒｏｍｏｎａｓｐｅｐｔｉｄｙｓｉｎと命名した。
【００１２】
本細菌は、工業技術院微生物工業技術研究所に微工研菌寄第１２８７５号として寄託されている。
本発明は、また、下記の理化学的性質を有する３種のプロテアーゼをも提供するものである。
Ａ．下記の理化学的性質を有するプロテアーゼ（以下「Ｅｎｚ−Ｆ２０」という。）
（１）作用：ムラサキイガイ足糸分解能を有する。
（２）基質特異性：
（ａ）配列表の配列番号１で示される過ギ酸酸化ウシインシュリンＢ鎖における３番目のＡｓｎと４番目のＧｌｎの間の結合、４番目のＧｌｎと５番目のＨｉｓの間の結合、９番目のＳｅｒと１０番目のＨｉｓの間の結合、１４番目のＡｌａと１５番目のＬｅｕの間の結合、１５番目のＬｅｕと１６番目のＴｙｒの間の結合、２０番目のＧｌｙと２１番目のＧｌｕの間の結合、２４番目のＰｈｅと２５番目のＰｈｅの間の結合及び２９番目のＬｙｓと３０番目のＡｌａの間の結合を切断する（図２参照）。
【００１３】
（ｂ）配列表の配列番号２で示されるデカペプチドにおける８番目のＴｈｒと９番目のＬ−ドーパ（Ｄｏｐａ）の間の結合、９番目のＬ−ドーパ（Ｄｏｐａ）と１０番目のＬｙｓの間の結合を切断する（図３参照）。
（３）至適ｐＨ：９．５〜１０
（４）至適温度：５０〜５５℃
（５）至適ＮａＣｌ濃度：５％
（６）分子量：４４，０００
（７）阻害剤：フェニルメタンスルホニルフルオリドにより阻害される。
Ｂ．下記の理化学的性質を有するプロテアーゼ（以下「Ｅｎｚ−Ｆ３０」という。）
（１）作用：ムラサキイガイ足糸分解能を有する。
（２）基質特異性：配列表の配列番号２で示されるデカペプチドにおける９番目のＬ−ドーパ（Ｄｏｐａ）と１０番目のＬｙｓの間の結合を切断する（図３参照）。
（３）至適ｐＨ：８．５〜９
（４）至適温度：６０〜６５℃
（５）分子量：４０，０００
（６）阻害剤：ｐ−クロロメルクリ安息香酸により阻害される。
Ｃ．下記の理化学的性質を有するプロテアーゼ（以下「Ｅｎｚ−Ｆ１５」という。）
（１）作用：ムラサキイガイ足糸分解能を有する。
（２）基質特異性：配列表の配列番号２で示されるデカペプチドにおける８番目のＴｈｒと９番目のＬ−ドーパ（Ｄｏｐａ）の間の結合を切断する（図３参照）。
（３）至適ｐＨ：８〜８．５
（４）至適温度：４５〜５０℃
（５）分子量：２２，０００
（６）阻害剤：エチレンジアミン四酢酸により阻害される。
【００１４】
本発明のプロテアーゼは、例えば、該プロテアーゼ生産能を有するアルテロモナス属細菌を培地に培養して、培養物中に該プロテアーゼを生成蓄積させ、該培養物からこれを採取することにより製造することができる。
ここで用いられるアルテロモナス属細菌としては、例えば前述したＡｌｔｅｒｏｍｏｎａｓｐｅｐｔｉｄｙｓｉｎが挙げられる。
【００１５】
前記製造法における好ましい条件を以下に示す。
（１）培地：マリンブロス２２１６（ＤＩＦＣＯ）又はこれに類するもの
（２）培養温度：１０〜４０℃（至適温度、３０℃）
（３）培養ｐＨ：６〜１１（至適ｐＨ、ｐＨ７）
（４）培養ＮａＣｌ濃度：１〜１０％（至適ＮａＣｌ濃度、５％）
（５）培養時間：６時間以上（至適培養時間、４８時間）
（６）培養回転数：６０〜１２０回転／分（至適回転数、１００回転／分）
【００１６】
【実施例】
以下、実施例により本発明を更に具体的に説明するが、本発明の範囲はこれらの実施例に限定されるものではない。
（実施例１）Ａ．ｐｅｐｔｉｄｙｓｉｎの産生するムラサキイガイ足糸分解能を有する新規プロテアーゼの製造例
１００ｍｌの一次スクリーニング培地（滅菌海水に０．５％（Ｗ／Ｖ）の殺菌済の足糸を入れた培地）に、マリンブロス２２１６培地でＯＤ６６０＝１．０まで培養したＡ．ｐｅｐｔｉｄｙｓｉｎを１００ μｌ添加し、２５℃で一週間振とう培養した。培養液を１０，０００回転／分で１５分遠心分離し、その上清を得た。足糸分解活性を測定したところ、乾燥重量で基質残存率が３６．４％、足糸分解比活性が１，６００Ｕ／ｍｇを示した。足糸分解比活性の値は、市販、既存のプロテアーゼの値を大きく上回るものであった（図４に示す）。
【００１７】
（実施例２）Ａ．ｐｅｐｔｉｄｙｓｉｎの産生するムラサキイガイ足糸分解能を有する新規プロテアーゼの製造例
２Ｌの三角フラスコ内の４００ｍｌのマリンブロス２２１６培地でＡ．ｐｅｐｔｉｄｙｓｉｎを２日間培養した。１０，０００回転／分、１５分の遠心分離でその上清を得た。これに硫酸アンモニウムを添加し、その４０〜６０％画分を得た。この沈澱を０．０２Ｍのトリスバッファー（ｐＨ７．２）に溶解し、超純水で十分透析した。凍結乾燥後、セファクリルＳ−１００ＨＲでのゲルクロマトグラフィー、ＤＥＡＥクロマトグラフィー、ＣＭクロマトグラフィー、ＨＰＬＣ（ゲルクロマトグラフィー）により足糸分解能を有するプロテアーゼの精製を行った。
【００１８】
その結果、３種の新規プロテアーゼ、Ｅｎｚ−Ｆ１５、Ｅｎｚ−Ｆ２０及びＥｎｚ−Ｆ３０を得た。
【００１９】
【発明の効果】
本発明によれば、ムラサキイガイ足糸分解能を有し、海洋汚損生物であるムラサキイガイの除去に有用な新規プロテアーゼを提供することができる。
【００２０】
【配列表】

【００２１】

【００２２】

【図面の簡単な説明】
【図１】Ａｌｔｅｒｏｍｏｎａｓｐｅｐｔｉｄｙｓｉｎの生物形態を示す電子顕微鏡写真である。
【図２】本発明のプロテアーゼの過ギ酸酸化ウシインシュリンＢ鎖に対する特異性を示す図である。
【図３】本発明のプロテアーゼのデカペプチドに対する特異性を示す図である。
【図４】ムラサキイガイ足糸分解活性の比較を示す図である。[0001]
[Industrial application fields]
The present invention relates to a protease having the ability to remove blue mussel foot thread, a method for producing the same, and a novel bacterium having the ability to produce the protease, Alteromonas peptidysin, for the purpose of removing blue mussels, a kind of marine fouling organisms.
[0002]
[Prior art]
Marine-adherent organisms such as blue mussels adhere to the bottom of the ship, aquaculture facilities, intakes of power plants, etc. and cause various damages. Therefore, removal of these fouling organisms has conventionally been carried out by physical means such as water pressure or human power, or chemical removal methods using copper sulfite, organic tin compounds, or the like. However, these methods require a great deal of labor and expense with human danger and have the disadvantage of polluting the environment.
[0003]
[Problems to be solved by the invention]
The object of the present invention is to disassemble and remove the mussel gait, and to accomplish this, the present invention has been completed through extensive research.
[0004]
[Means for Solving the Problems]
Marine adhering organisms are attached in various ways, and among them, mussels are attached with a foot thread composed of L-dopa, a phenolic protein containing 4-hydroxyproline, collagen, and the like.
The present inventors collected bacteria from the ocean using the mussel gait as a substrate, and isolated a bacterium that can grow using only the mussel gait as a nutrient source, that is, a novel bacterium having a mussel gait resolution. Furthermore, three types of protease capable of degrading mussel foot thread produced by the novel bacterium were isolated.
1. The bacteria were screened as follows.
(1) Primary screening The primary screening medium is prepared by adding pre-washed foot threads to filtered seawater at 0.5% (W / V) and sterilizing by heating. 100 μl of seawater collected in 10 ml of the main medium in a test tube And cultured with shaking at 20 ° C. for 10 days. The turbidity was measured, and the one with high degradation activity grown to OD660> 0.3 was selected. 100 μl of this grown culture was applied to Marine Agar 2216 medium to isolate the strain.
(2) Secondary screening Marine bacteria obtained by secondary screening were cultured in Marine Broth 2216 medium until OD660 = 1.0. The culture solution was centrifuged at 10,000 rpm for 15 minutes to obtain the supernatant. 200 μl of this supernatant and 10 mg of foot thread sieved to a size of 0.2 μm or less were reacted in 50 mM Tris buffer (pH 7.5) at 30 ° C. for 1 hour, and then at 100 ° C. for 10 minutes. The reaction was stopped by heating. The reaction solution was centrifuged at 10,000 rpm for 5 minutes, and the released peptide in the centrifuged supernatant was quantified by the ninhydrin method. One enzyme unit (U) was expressed as the activity when giving absorbance at 440 nm corresponding to 1 μmol of hydroxyproline released from the foot thread per minute under the above experimental conditions. In addition, 100 μl of the marine bacteria obtained by the primary screening cultured in the marine broth 2216 medium at OD660 = 1.0 was inoculated into the primary screening medium, cultured at 20 ° C. for 15 days, and then the substrate dry weight was measured. These two results were combined for the secondary screening, and the bacteria with the highest degradation activity were selected.
2. The properties of the bacterium of the present invention selected by the secondary screening are as follows.
(1) Morphological properties a. Aspergillus having a total length of 1 μm and a total width of 300 to 400 nm, shown in FIG. 1 under a scanning electron microscope.
[0005]
b. It has one flagellum about 2 μm in length and it is polar hair.
c. Motility: Yes (2) Physiological properties a. Gram staining: Gram negative.
b. Sugar fermentation: No fermentation.
[0006]
c. Bacterial pigment: Produces brown pigment.
d. Salty: grows at a NaCl concentration of 1-10%.
e. Gelatin degradation: Decomposes.
f. DNA degradation: Degraded.
g. GC content: 42.4%
3. The classification position of the novel bacteria of the present invention was determined as follows.
(1) Determination of genus Bacteria were identified as the genus Alteromonas from the above morphological and physiological characteristics.
(2) Determination of species Eleven species of Alteromonas are known by the Barjay method. Attempts to classify the bacteria using the Barjay method did not match the known species. Among the 11 known types, A. was the closest related to the Barjay classification. Table 1 and Table 2 show the properties of luteoviolacea and this species.
[0007]
In Tables 1 and 2, the symbol “+” is positive in 90-100% strains, the symbol “d” is positive in 10-89% strains, and the symbol “−” is less than 10%. It is positive in the strain or not recognized at all, and the symbol “St” represents Neisseria gonorrhoeae.
[0008]
[Table 1]

[0009]
[Table 2]

a. The bacterium grows at 40 ° C. luteobiolacea does not grow.
b. The bacterium can use succinic acid, fumaric acid, pelargonic acid, capric acid, L-leucine, L-isoleucine, and L-valine. luteviolacea is not available.
[0010]
In addition, this species and A. luteviolacea and A. as a control. halloplantis, E.H. coli, B.I. Table 3 shows the results of examining the DNA homology with subtilis.
[0011]
[Table 3]

a. The bacteria and A. The DNA homology with luteobiolacea is 5-10%.
b. This bacterium and E. coli E. coli and B.I. DNA homology with subtilis is 1% or less.
From the above differences in properties, it was concluded that this bacterium is a new species of the genus Alteromonas and was named Alteromonas peptidinsin.
[0012]
This bacterium has been deposited at the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology as No. 12875
The present invention also provides three proteases having the following physicochemical properties.
A. Protease having the following physicochemical properties (hereinafter referred to as “Enz-F20”)
(1) Action: It has mussel gait resolution.
(2) Substrate specificity:
(A) a bond between the third Asn and the fourth Gln in the formic acid oxidized bovine insulin B chain represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listing, a bond between the fourth Gln and the fifth His, the ninth Bond between Ser and 10th His, bond between 14th Ala and 15th Leu, bond between 15th Leu and 16th Tyr, 20th Gly and 21st Glu And the bond between the 24th Phe and the 25th Phe and the bond between the 29th Lys and the 30th Ala (see FIG. 2).
[0013]
(B) Binding between the 8th Thr and the 9th L-dopa (Dopa) in the decapeptide represented by SEQ ID NO: 2 in the sequence listing, between the 9th L-dopa (Dopa) and the 10th Lys Is cut (see FIG. 3).
(3) Optimum pH: 9.5-10
(4) Optimal temperature: 50-55 ° C
(5) Optimal NaCl concentration: 5%
(6) Molecular weight: 44,000
(7) Inhibitor: Inhibited by phenylmethanesulfonyl fluoride.
B. Protease having the following physicochemical properties (hereinafter referred to as “Enz-F30”)
(1) Action: It has mussel gait resolution.
(2) Substrate specificity: cleaving the bond between the 9th L-dopa (Dopa) and the 10th Lys in the decapeptide represented by SEQ ID NO: 2 in the sequence listing (see FIG. 3).
(3) Optimum pH: 8.5-9
(4) Optimal temperature: 60-65 ° C
(5) Molecular weight: 40,000
(6) Inhibitor: Inhibited by p-chloromercuribenzoic acid.
C. Protease having the following physicochemical properties (hereinafter referred to as “Enz-F15”)
(1) Action: It has mussel gait resolution.
(2) Substrate specificity: cleaving the bond between the 8th Thr and the 9th L-dopa (Dopa) in the decapeptide shown in SEQ ID NO: 2 in the sequence listing (see FIG. 3).
(3) Optimal pH: 8 to 8.5
(4) Optimal temperature: 45-50 ° C
(5) Molecular weight: 22,000
(6) Inhibitor: Inhibited by ethylenediaminetetraacetic acid.
[0014]
The protease of the present invention can be produced, for example, by culturing an Alteromonas bacterium having the ability to produce the protease in a medium, producing and accumulating the protease in the culture, and collecting the protease from the culture. .
Examples of the bacteria belonging to the genus Alteromonas used here include the aforementioned Alteromonas peptidysin.
[0015]
Preferred conditions in the production method are shown below.
(1) Medium: Marine Broth 2216 (DIFCO) or similar (2) Culture temperature: 10-40 ° C (optimum temperature, 30 ° C)
(3) Culture pH: 6-11 (optimum pH, pH 7)
(4) Cultured NaCl concentration: 1 to 10% (optimal NaCl concentration, 5%)
(5) Culture time: 6 hours or more (optimum culture time, 48 hours)
(6) Culture rotation speed: 60-120 rotations / minute (optimum rotation speed, 100 rotations / minute)
[0016]
【Example】
EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples. However, the scope of the present invention is not limited to these examples.
Example 1 Example of production of a novel protease having the resolution of mussel mussel produced by peptidysin 100 ml of primary screening medium (medium containing 0.5% (W / V) sterilized foot thread in sterilized seawater) and marine broth 2216 medium Cultured to OD660 = 1.0 in A. 100 μl of peptidin was added and cultured with shaking at 25 ° C. for one week. The culture solution was centrifuged at 10,000 rpm for 15 minutes to obtain the supernatant. As a result of measuring the foot fissure degradation activity, the substrate residual rate was 36.4% and the foot fissure degradation specific activity was 1,600 U / mg by dry weight. The value of the specific activity of foot fissure was significantly higher than that of commercially available and existing proteases (shown in FIG. 4).
[0017]
Example 2 Example 1 Production of a novel protease having the resolution of mussel pods produced by peptidysin In a 2 L Erlenmeyer flask with 400 ml of marine broth 2216 medium Peptidysin was cultured for 2 days. The supernatant was obtained by centrifugation at 10,000 rpm for 15 minutes. Ammonium sulfate was added thereto to obtain a 40-60% fraction thereof. This precipitate was dissolved in 0.02 M Tris buffer (pH 7.2) and sufficiently dialyzed against ultrapure water. After lyophilization, a protease having a foot resolution was purified by gel chromatography using Sephacryl S-100HR, DEAE chromatography, CM chromatography, and HPLC (gel chromatography).
[0018]
As a result, three novel proteases, Enz-F15, Enz-F20 and Enz-F30 were obtained.
[0019]
【The invention's effect】
ADVANTAGE OF THE INVENTION According to this invention, the novel protease which has a blue mussel leg string resolution | decomposability and is useful for removal of the blue mussel which is a marine fouling organism can be provided.
[0020]
[Sequence Listing]

[0021]

[0022]

[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is an electron micrograph showing the biological form of Alteromonas peptidysin.
FIG. 2 shows the specificity of the protease of the present invention for the formic acid oxidized bovine insulin B chain.
FIG. 3 shows the specificity of the protease of the present invention for decapeptide.
FIG. 4 is a diagram showing a comparison of mussel octopus legolytic activity.

Claims

A protease having the following physicochemical properties.
(1) Action: Has mussel gait resolution.
(2) Substrate specificity:
(A) a bond between the third Asn and the fourth Gln in the formic acid oxidized bovine insulin B chain represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listing, a bond between the fourth Gln and the fifth His, the ninth Bond between Ser and 10th His, bond between 14th Ala and 15th Leu, bond between 15th Leu and 16th Tyr, 20th Gly and 21st Glu The bond between the 24th Phe and the 25th Phe and the bond between the 29th Lys and the 30th Ala.
(B) The bond between the 8th Thr and the 9th L-dopa and the bond between the 9th L-dopa and the 10th Lys in the decapeptide represented by SEQ ID NO: 2 in the sequence listing are cleaved.
(3) Optimum pH: 9.5-10
(4) Optimal temperature: 50-55 ° C
(5) Optimal NaCl concentration: 5%
(6) Molecular weight: 44,000
(7) Inhibitor: Inhibited by phenylmethanesulfonyl fluoride.

A protease having the following physicochemical properties.
(1) Action: It has mussel gait resolution.
(2) Substrate specificity: cleaving the bond between the 9th L-dopa and the 10th Lys in the decapeptide represented by SEQ ID NO: 2 in the sequence listing.
(3) Optimum pH: 8.5-9
(4) Optimal temperature: 60-65 ° C
(5) Molecular weight: 40,000
(6) Inhibitor: Inhibited by p-chloromercuribenzoic acid.

A protease having the following physicochemical properties.
(1) Action: Has mussel gait resolution.
(2) Substrate specificity: cleaving the bond between the 8th Thr and the 9th L-dopa in the decapeptide represented by SEQ ID NO: 2 in the sequence listing.
(3) Optimal pH: 8 to 8.5
(4) Optimal temperature: 45-50 ° C
(5) Molecular weight: 22,000
(6) Inhibitor: Inhibited by ethylenediaminetetraacetic acid.

A culture method comprising culturing an Alteromonas bacterium having the ability to produce a protease according to at least one of claims 1 to 3 in a medium, producing and accumulating the protease in the culture, and collecting the protease from the culture. Protease production method.

Alteromonas peptidysin Microtechnical Laboratories No. 12875 having mussel gait resolution.