JP3530526B2 - HSV糖蛋白質gDおよび3脱アシル化モノホスホリルリピッドAからなる単純ヘルペスワクチン - Google Patents
HSV糖蛋白質gDおよび3脱アシル化モノホスホリルリピッドAからなる単純ヘルペスワクチンInfo
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Description
おけるその使用に関する。特に、本発明は、単純ヘルペ
スウイルス感染症、より詳細には、単純ヘルペス2型ウ
イルス(HSV−2)感染症の治療のための新規処方物に
関する。
(口唇ヘルペスの原因物質)と共にその両方の急性疾患
を誘発し、主に神経節細胞において潜伏感染を確立する
能力を特徴とする。
かかっていると推定されており、毎年50万の臨床例が記
録されている(一次および再感染)。一次感染は典型的
には思春期以降に起こり、痛みを伴う皮膚病巣が局所的
に見られることを特徴とし、これは2から3週間続く。
一次感染の後6ヵ月以内で50%の患者が病気が再発する
であろう。患者の約25%で毎年10から15回再発するかも
しれない。免疫抵抗性減弱の患者においては、通常の患
者におけるより統計的に高頻度の再発の発生率が高い。
面に位置する多くの糖蛋白質成分を有する。これらはg
A、gB、gC、gDおよびgEなどである。
の細胞質にも見られる(アイゼンバーグ・アール・ジェ
イ(Eisenberg R.J.)ら、ジャーナル・オブ・ウイロロ
ジー(J of Virol)1980 35 428−435)。これはシグナ
ルペプチドを含む393個のアミノ酸からなり、分子量が
約60kDである。全HSVエンベロープ糖蛋白質のうち、こ
れはおそらく最もよく形質化されているものである(コ
ーエン(Cohen)ら、ジャーナル・オブ・ウイロロジー
(J.virology)60 157−166)。in vivoではウイルスの
細胞膜への付着において中心的役割を果たすことが知ら
れている。さらには、糖蛋白質Dはin vivoで中和抗体
を惹起しうると示されている(アイング(Eing)ら、ジ
ャーナル・オブ・メディカル・ウイロロジー(J.Med.Vi
rology)127:59−65)。しかし、患者血清中において中
和抗体価が高くても、潜在的HSV−2ウイルスはなお再
活性化され得、病気の再発を誘発しうる。中和抗体のみ
を誘起する能力ではこの病気を適切に制御するには不十
分である。病気の再発を予防するためには中和抗体だけ
でなくT細胞により媒介される細胞性免疫もまた刺激す
るためのワクチンが必要である。本発明はこれらの目的
を達成するものである。
A(3D−MPL)(モノホスホリルリピッドAの脱アシル
化誘導体)と結合したHSV糖蛋白質Dまたはその免疫学
的成分、および適切な担体を含むワクチンを提供する。
典型的には、糖蛋白質DはHSV−2由来のものである。
担体は水中油型エマルジョン、またはミュウバン(Alu
m)であってもよく、3D−MPLが用量当たり10マイクログ
ラムから100マイクログラム、好ましくは25から50マイ
クログラムの範囲で存在し、抗原は単位用量典型的には
2から50マイクログラムの範囲で存在する。
れた方法にしたがって得ることができる。
ンカー領域を欠く截形蛋白質のC末端にアスパラギンお
よびグルタミンを添加したアミノ酸を含む308個のアミ
ノ酸の截形HSV−2糖蛋白質Dである。蛋白質のこの形
態はシグナルペプチドを含み、これは開裂して283個の
成熟アミノ酸蛋白質が得られる。チャイニーズハムスタ
ー卵巣細胞におけるこのような蛋白質の産出はジェネン
ティック(Genetech)のヨーロッパ特許EP−B−139417
号に記載されている。
剤において用いられ、rgD2tで示される。
結合していてもよい。特に好ましい方法はB型肝炎表面
抗原の表面に位置する遊離スルフィドリル基を介して粒
状B型肝炎表面抗原に化学的に結合するものである。係
属しているイギリス特許出願第9027623.9号参照。
rgD2t 5マイクログラムのように低くても)、防御免
疫を誘起するのに非常に有効である。
異的体液性(中和抗体)およびエフェクター細胞性(DT
H)免疫応答の両方が有利に刺激される。
体中、例えばスクアランまたはスクアレンなどの非毒性
油、ツィーン80(Tween 80)などの乳化剤を含有する。
水性担体は、例えば、リン酸緩衝生理食塩水であっても
よい。
するような医学的治療、特に単純ヘルペスウイルス感染
症の治療または予防に用いるワクチン製剤を提供する。
免疫学的フラグメントを含有し、これは常套手段により
調製される。
発(New Trends and Developments in Vaccines)」、
ボラー(Voller)ら編、ユニバーシティー・パーク・プ
レス(University Park Press),ボルチモア,メリー
ランド州,U.S.A.1978に記載されている。リポソーム中
への封入は、例えば、フラートン(Fullerton)、アメ
リカ合衆国特許第4,235,877号に記載されている。蛋白
質の巨大分子との結合は、例えば、リックハイト(Likh
ite)、アメリカ合衆国特許第4,372,945号およびアーマ
ー(Armor)ら、アメリカ合衆国特許第4,474,757号に記
載されている。
おいて著しい副作用を起こすことなく免疫防御応答を誘
起する量として選択される。このような量は、用いる特
異免疫原に依存する。一般に、各用量は、1〜1000マイ
クログラム、好ましくは2〜100マイクログラム、最も
好ましくは4〜40マイクログラムの蛋白質を含むと考え
られる。特定のワクチンに対する最適量は抗体価および
対象における他の応答の観察を含めた標準的研究により
確かめることができる。初回接種の後、約4週間内に対
象は追加免疫を受けてもよい。
発明の医薬組成物はHSV感染症にかかっている患者の免
疫療法に用いることができる。
うな製造法が提供され、この方法は、HSV−2糖蛋白質
Dまたは免疫学的フラグメントを担体、例えば水中油型
エマルジョンまたはミョウバン、および3D−MPLと混合
することからなる。
ワクチンのアジュバント効力の比較 この研究において、単純ヘルペスウイルス(HSV)2
型由来の組み換え糖蛋白質D(rgD2t)の防御免疫を向
上させる数種のアジュバントの能力をモルモットモデル
において評価した。試験したアジュバントは水酸化アル
ミニウム、3デアシル−モノホスホリルリピッドAと結
合した水酸化アルミニウム、および水中油型エマルジョ
ン中にデリバーされた3デアシル−モノホスホリルリピ
ッドAである。
ズハムスター卵巣(CHO)細胞中で産生した遺伝子操作
した組み換え体截形蛋白質である(ヨーロッパ特許第01
39417号)。
免疫を評価するために2種の別の実験を行った。第一の
実験において、モルモットの群を以下に記載するように
して調製した4種のアジュバント処方物中少量の抗原
(rgD2t 5マイクログラム)で3回免疫化した。最後
の免疫化の2週間後、HSV2型を用いて膣内に抗原投与し
て一次および再発性HSV2症の発生をモニターした。第二
の実験においては、これらの処方物をもっと大きな動物
群においてさらに評価した。抗原量およびアジュバント
組成物などのこれらの処方物の効力に影響する因子も試
験した。
いてモルモットを免疫化した。各投与量(5マイクログ
ラム)を0.25mlの用量で投与した。
erfos、Denmark)から入手した。5マイクログラムの精
製rgD2tを4℃にて0.25mlの150mM NaCl 10mMリン酸緩衝
液(pH6.8)中0.25mg当量のAl3+に対応する水酸化アル
ミニウム(ミョウバン)上に一夜吸着させた。
た。2.1.1に記載したように5マイクログラムのgD2tを
ミョウバン上に一夜吸着させた後、アジュバント調製物
を遠心分離して、その上清を除去した。ついで100マイ
クログラムの3D−MPLを含有する等容量の吸着緩衝液を
ミョウバン結合のrgD2tに添加した。
が水酸化アルミニウムアジュバント中に取り込まれてい
るのが判明した。
レシチンを用いて水中油型エマルジョンを調製した。3D
−MPLを最終の望ましい濃度より100倍高い濃度で添加し
た。ついで、1%のこの調製物を、水性相中、5マイク
ログラムのrgD2tと0.25ml容量中で混合して100マイクロ
グラムの3D−MPLを含有する1%水中油型エマルジョン
を得た。
で異なる量のrgD2tおよび/または免疫促進物質を含有
するものを第二の実験において用いた。これを合計量0.
5ml投与した。これらの処方物を以下に記載する。
ラムのrgD2t;0.5mg当量のAl3+ rgD2t/Alum+3D−MPL:投与量0.5ml当たり5または20
マイクログラムのrgD2t;0.5mg当量のAl3+;50マイクログ
ラムの3D−MPL rgD2t/o/w型エマルジョン(R)中の3D−MPL:5または
20マイクログラムのrgD2tを前記(2.1.3)のようにして
1%o/w型エマルジョン中で配合する。投与量0.5mlは1
%/o/w型乳剤中、5マイクログラムまたは20マイクログ
ラムのrgD2t、50マイクログラムの3D−MPLを含有する。
ようにしてビヒクルを調製する:0.4%(v/v)Tween80を
含有するリン酸緩衝生理食塩水(PBS)に5%(v/v)Pl
uronic L121および10%スクアランを添加し、得られた
混合物をマイクロフルイダイザー(M/110型、Microflui
dics Corp.)で10回流動化して、得られた混合物がミク
ロン以下の粒子のみを含むようにする。50マイクログラ
ムの3D−MPLを次にエマルジョンに添加する。3D−MPLを
含有する1容量のこのエマルジョンを当容積の2倍に濃
縮した抗原と混合し、簡単に撹拌して成分が完全に混合
されるようにする。最終調製物は投与量0.5ml当たり0.2
% Tween80、2.5%Pluronic L121、5%スクアラン、50
マイクログラムの3D−MPLおよび5マイクログラムまた
は20マイクログラムのrgD2tを含有する。
種の異なるアジュバント処方物中に配合した5マイクロ
グラムのrgD2tを用いて0、28および95日目の3回免疫
化した。
た。対照動物は同様の方法でアジュバントのみを用いて
注射するかまたは処理しなかった。
ルジョン(R)中の3D−MPL(100マイクログラム) 第2群(4匹):5マイクログラムのrgD2t/Alum+3D−
MPL(100マイクログラム) 第3群(4匹):5マイクログラムのrgD2t/Alum 第4群(5匹):Alumのみ 第5群(5匹):3D−MPL(100マイクログラム)のみ 第6群(8匹):処理せず 以下に記載するようなELISAおよび中和検定による抗
体決定のために被験動物を2週間ごとに採血した。
れるT細胞性免疫を誘起する能力に関して試験した。異
なるrgD2t処方物により誘起される体液性および細胞性
免疫応答の評価に用いたリードアウトを以下に記載す
る。
めに、全てのモルモットを105プラーク形成単位(pfu)
のHSV2、MS株を最終免疫化の2週間後に膣内投与した。
被験動物を毎日急性感染症の徴候および再発性ヘルペス
の形跡に関して観察した。膣スワブサンプルをウイルス
投与の5日後に回収し、感染性ウイルスに関して滴定し
た。
を、もっと大きな動物群で評価した。2種の抗原量を比
較し(5および20マイクログラム)、異なったアジュバ
ント組成物を試験した。50マイクログラムの3DMPLを用
いて、その効果を予め用いた100マイクログラムの用量
と比較した。
28および84日目で3回免疫化した: 第I群(8匹):20マイクログラムのrgD2t/3D−MPL
(50マイクログラム)o/w型エマルジョン(R) 第II群(8匹):5マイクログラムのrgD2t/3D−MPL(5
0マイクログラム)o/w型エマルジョン(R) 第III群(10匹):20マイクログラムのrgD2t/3D−MPL
(50マイクログラム)o/w型エマルジョン(S) 第IV群(10匹):5マイクログラムのrgD2t/3D−MPL(5
0マイクログラム)o/w型エマルジョン(S) 第V群(10匹):20マイクログラムのrgD2t/Alum+3DM
PL(50マイクログラム) 第VI群(10匹):5マイクログラムのrgD2t/Alum+3DMP
L(50マイクログラム) 第VII群(4匹):Alum+3D−MPL(50マイクログラ
ム)のみ 第VIII群(4匹):3D−MPL(50マイクログラム)o/w
型エマルジョン(R)のみ 第IX群(8匹):処理せず 0.5mlの用量で免疫化した。対照群は同様の方法で、
アジュバントのみを用いて免疫化するか(第VII群およ
び第VIII群)または処理しなかった(第IX群)。
ムの3D−MPLを含有するrgD2t Alum+3D−MPL処方物を用
いて最初の予防実験において記載した方法にしたがって
免疫化した。
L(100mg) 以下に記載するようなELISAおよび中和検定による抗
体決定のために被験動物を2週間ごとに採血した。2回
目の免疫化の後、膣内洗浄物を集め、gD2t特異性全体的
抗体(IgGクラスの抗gD2t抗体)の存在に関して検定し
た。モルモットに105pfuのHSV2(MS株)を最終免疫化の
2週間後に膣内投与した。抗原投与後、被験動物を毎日
急性感染症の徴候(抗原投与の4〜12日後)および再発
性ヘルペス症の形跡(抗原投与の13〜39日後)に関して
モニターした。
細胞性応答を評価するために数種のリードアウトを設定
した。これらの処方物の防御値をモルモット膣内モデル
において評価した。
ーティング抗体としてrgD2tを用いてgD−特異性抗体を
検出し、定量することを目的とする。
トル用いた。抗原をPBS中最終濃度1マイクログラム/ml
に希釈し、96ウェルマイクロタイタープレート(Maxiso
rp Immuno−Plate、Nunc、Denmark)のウェルに4℃に
て一夜吸着させた。ウェルを次にPBS Tween 0.1%(洗
浄緩衝液)を用いて5回洗浄し、1%牛血清アルブミ
ン、4%新生仔ウシ血清および0.1%Tween(飽和緩衝
液)を含有するPBSを用いて37℃にて1時間培養した。
飽和緩衝液中3倍希釈の血清(1/100希釈から始める)
をrgD2tをコートしたウェルに添加し、室温にて2時間
培養した。プレートを前記のようにして洗浄し、飽和緩
衝液中1/3000に希釈したビオチン複合ヒツジ抗モルモッ
トIgG(IgG1およびIgG2特異性、Serotec、Sopar、Bioch
em、Belgium)を各ウェルに添加し、1時間30分37℃に
て培養した。洗浄段階の後、飽和緩衝液中1/1000に希釈
したストレプタビジン−ビオチニル化ペルオキシダーゼ
複合体(Amersham、イギリス)を添加し、37℃にて30分
間培養した。プレートを前記のようにして洗浄し、o−
フェニレンジアミン(Sigma)0.04%H2O20.03%の0.1M
クエン酸緩衝液(pH4.5)中溶液とともに培養した。
止させ、吸光度は492nmで読み取る。
測定した光学密度(中点力価))を与える血清希釈度の
逆数と定義する。
直線回帰分析により計算する。
gG含量に関して校正する。Maxisorp Immunoプレートを
一夜4℃にて1マイクログラム/ml(50マイクロリット
ル/ウェル)のPBS中に希釈した精製ヤギ抗モルモットI
gG(Sigma、Belgium)でコートする。プレートを洗浄
し、前記のように飽和緩衝液と共に培養する。膣洗浄液
を飽和緩衝液中2倍希釈液(1/100希釈度で始める)で
連続希釈し、プレートに添加する。精製モルモットIgG
の標準曲線は各プレート中に包含される(2倍希釈100n
g/ml濃度から始める)。
前記のようにして洗浄し、飽和緩衝液中1/1000に希釈し
たモルモットIgG1およびIgG2(Serotec、Sopar、Bioche
m、Belgium)に関して特異的なビオチン複合ヒツジ抗体
を各ウェルに添加し、37℃にて1時間30分インキュベー
ションする。次の工程(ストレプタビジン−ビオチニル
化ペルオキシダーゼ複合体の添加および発色)は前記
(3.1.1.)のとおりである。
コンピュータープログラムを用いた4変数単一直線回帰
分析により求める。
載したのと同じELISAを用いてrgD2tに関して特異的なIg
G抗体の存在に関して膣洗浄物を試験する。結果を、0.5
マイクログラム/ml総IgG当たりの492nmで測定した光学
密度で表わす。
ト(各ウェルにつき25ulの各血清希釈物、二重反復試
験)中にて直接調製する。4000pfuのウイルスHG52およ
び補体(ウェル中最終希釈度1/100)を含有する混合物5
0マイクロリットルを各ウェルに添加する。プレートを3
7℃にて1時間インキュベーションする。4×105細胞/m
lの100マイクロリットルのBKH21細胞懸濁液を次に各ウ
ェルに添加する(4×104細胞/ml)。プレートを1000rp
mで5分間遠心分離し、7%CO2の存在下で37℃にて5日
間インキュベーションする。
ルのクリスタルバイオレット溶液(10%メタノール、90
%H2O、0.3%クリスタルバイオレット)を各ウェルに添
加し、室温にて20分間インキュベーションする。次にプ
レートを水道水でよく洗浄する。プラークの存在は、顕
微鏡により容易に観察できる。
0%細胞変性効果の防止)最高血清希釈度で測定する。
この時点で完全な細胞変性効果(100%の細胞単層溶
解)が対照ウェルで観察されることに留意することが重
要である。
して測定されるT細胞特異性免疫応答を誘起する能力に
ついて試験した。
究において用いた。この調製物は0.25mlあたり5マイク
ログラムのrgD2tを含有する。免疫化スケジュールは以
下のとおりである:一次免疫化:0.25mlのワクチン製剤
を筋肉内投与;追加免疫:0.25mlのワクチン製剤を21日
後に筋肉内投与;皮膚試験:5マイクログラムのrgD2tを
8日後に皮内投与(食塩水中)。モルモットはすべて対
照として食塩水で皮膚試験した。
皮膚試験した。皮内注射した部位の紅斑および硬結を24
および48時間後にモニターした。
アール・スタンバリー(LR Stanberry)ら(J.of Infec
tious Diseases 1982,146:397−403;Intervirology 198
5,24:226−231)により記載されている。
fuのHSV2 MS株を膣内点滴注射して投与する。一次感染
の臨床的過程を抗原投与後12日間外生殖器皮膚病巣の発
生率および程度を毎日観察することによりモニターす
る。
載するようにプラーク検定により感染性HSV2を滴定す
る。ついで、動物を13から60日まで毎日再発性ヘルペス
病巣の形跡について調べる。外生殖器皮膚のヘルペス病
巣を、0から4までの病巣評点スケールを用いて定量化
する(0=病巣または赤みがない;0.5=赤くなってい
る;1=水疱;1.5=4個以上の水疱;2=大きな水疱;2.5=
2の水疱の癒合によって出来た数個の大きな水疱;3=水
疱の大きさおよび数が増加;3.5=生殖器皮膚の表面が全
部病巣で覆われる;4=浸軟を伴う潰瘍化病巣)。
下に定義する基準にしたがって評価する。
と見做す: −あらゆる時点で1以上の赤い部分がある場合; −少なくとも連続して3日間同じ部分に1個の赤い部分
が存在する場合(病巣評点0.5); −1個又は数個の水疱(病巣評点≧1)。
るかまたは1日でも病巣評点が≧1の場合、動物は再発
病に関して陽性と評価した。再発病のエピソードの前後
は病巣又は赤みはない。
日)中測定された評点の合計として計算する。病巣の発
生は、観察期間(1〜12日(原発病)または13〜60日
(再発病))中、1以上の病巣を示す動物の数を示す。
を予め2%牛胎仔血清、2mM Lグルタミン、100U/mlペニ
シリン、100マイクログラム/mlストレプトマイシン、10
0マイクログラム/mlゲンタマイシンおよび1マイクログ
ラム/mlアムホテリシンBを追加したBasal Eagle培地
(スワブ培地)で予め湿らせたアルギン酸カルシウムを
付けたスワブでふく。
5mm 5mlポリアロマー試験管中にいれる。試験管を次に
撹拌してウイルスを取りだし、使用前まで凍結させる。
滴定の為に、5×105細胞/ウェルを入れた6ウェルの
培養プレートを一夜37℃にてインキュベーションする。
試験管を解凍してスワブ培地中連続希釈のサンプルを調
製する。6ウェル中の培地を除去した後、各サンプル希
釈液200マイクロリットルを細胞単層上二重反復試験物
に移し、1時間37℃に保つ。1.5%カルボキシメチルセ
ルロースを含有する培地4mlを各ウェルに添加する。次
にプレートを37℃にて2日間インキュベーションする。
このインキュベーション期間の後、培地を静かに除去
し、クリスタルバイオレットの溶液(10%メタノール、
90%H2O、0.3%クリスタルバイオレット)1mlを各ウェ
ルに15分間で添加する。プレートを次によくすすぎ、プ
ラークを計測する。HSV2価をpfu/mlで表わす。
類の異なる処方物中に配合した低用量の抗原(5マイク
ログラムのrgD2t)で免疫化した。この準最適抗原量を
選択して、膣内HSV2接種(予防試験)の前にモルモット
に投与した場合、原発および再発性HSV病に対して防御
を与えるより有効なrgD2tアジュバントの組み合わせを
選択する。
た群に比べて免疫促進物質として3D−MPLを含有するrgD
2t処方物で予防接種した群は血清中でより高いELISAお
よび中和価を示した。良好な平均中和価は、rgD2t 3D−
MPLo/w(R)またはrgD2t Alum 3D−MPLで3回免疫化し
た後に誘発される。
ルジョン中に配合したrgD2tが最も強いDTH応答を誘起す
ることがわかる。特異的DTH応答もrgD2t Alum 3D−MPL
により誘起される。マウスにおいて行った同様の実験か
らも、Alum+3D−MPLと組み合わせたrgD2tが、rgD2t Al
um処方物と対照的に、in vivoエフェクターT細胞応答
を誘起するのに非常に有効であることが判明した。
投与する。一次HSV2感染症の臨床的およびウイルス学的
経路に関する予防接種の効果を第1図に示し、第3表に
要約する。感染し、急性原発病にかかった対照群(第4
〜6群)に比べて、rgD2t 3D−MPL o/w処方物で予防接
種した動物はすべ皮膚病巣の発生および程度によりモニ
ターされるヘルペス病を示さなかった。さらには、これ
らの動物は抗原投与の5日後での膣のウイルス力価によ
り測定される膣管中でウイルスの複製を示さなかった。
rgD2t/Alum 3D−MPLで予防接種した群において非常によ
く似た結果が得られた。この群は観察期間中ヘルペス水
疱が見られなかった(病巣評点<1)。さらには、採集
した膣スワブ中でウイルスの複製はほとんど検出されな
かった。対照的にalum上に吸着されたrgD2t動物は余り
防御されなかった(皮膚病巣発生率75%)。
1および2群)により再発性ヘルペス病の発生は明らか
に変化した。2つの群の再発エピソードおよび再発日数
は対照またはrgD2t Alum処理群に比べて著しく少ない。
するファクターをさらに評価するために、さらに多数の
モルモットについて第2の実験を行った。
し、異なるアジュバント組成物を試験した。3種の免疫
化を0、28および84日に行った。動物は、ELISAおよび
中和検定による各抗体測定のために2週間毎に採血し
た。膣洗浄物を二回目の免疫化の後に採集し、rgD2tに
関して特異的な全身性抗体の存在について試験した。
すべてモルモットの血清において高いELISAおよび中和
価を刺激できることが判明した。
平均は、5マイクログラムまたは20マイクログラムのgD
2tを含有するrgD2t処方物で予防接種した群の血清にお
けるものと非常に似ている。50マイクログラムの3D−MP
L(第VI群)または100mgの3D−MPL(第X群)を含有す
るrgD2t Alumで免疫化した群(第X群)において測定さ
れる体液性応答において著しい差はなかった。
した群の膣洗浄物中において検出できたことに留意する
ことは重要である。この粘膜に存在する抗rgD2t抗体応
答は、一次感染中、生殖路における感性ウイルスの負荷
を減少させることにより重要な防御の働きをする。
投与する。HSV2感染症の臨床およびウイルス学的経路に
関するワクチン投与の効果を第6表に要約する。対照群
に比べて、50マイクログラムまたは100マイクログラム
のいずれかの3D−MPLを含有する5マイクログラムのrgD
2t Alum 3D−MPL処方物で予防接種した動物(第VIおよ
びX群)は皮膚病巣の程度および発生率が著しく低かっ
た(p<0.05)。
gD2tで予防接種した群において非常によく似た結果が得
られた(第III群)。予防接種した3つの群において抗
原投与の5日後に採集した膣のスワブ中でウイルスの複
製はほとんど検出されなかった。
群において皮膚病の発生率および再発日数は著しく減少
した(p>0.05)。これらの群は対照群よりも再発エピ
ソードも少なかった。
型エマルジョン中に添加された3D−MPLを含有するかま
たは水酸化アルミニウムと結合したrgD2t処方物を用い
た予防接種はHSV2接種の前にモルモットに投与した場
合、原発および再発性HSV2病に対しての防御を得るのに
非常に有効であることがわかる。このようなrgD2t3D−M
PL処方物は特異的体液性(中和抗体)およびエフェクタ
ー細胞性(DTH)免疫応答を向上させることができる。
これらの結果は少量(5マイクログラム)のrgD2tを用
いて得られる。
原性の比較 rgD2t/AlumおよびrgD2t/Alum 3D−MPLワクチンの免疫
原性をオナガザル(アフリカミドリザル、AGM)におい
て評価した。3回の免疫化を0、1および3カ月目に行
った。特異的体液性(ELISAおよび中和力価)およびエ
フェクター細胞性(DTH)免疫応答を測定した。
AL3+を含有する。50マイクログラムの3D−MPLを用い
た。オナガザル(AGM)の群を3回0、28および84日目
に免疫化した。免疫化は0.5ml(20rgD2t)を筋肉内投与
して行った。ELISAおよび中和検定による抗体測定のた
めに動物は±2週間ごとに採血した。2種の処方物も遅
延型過敏性(DTH)応答の誘起により測定されるそのT
細胞性免疫を誘起する能力について試験した。サルの腹
に異なる量のrgD2t(20、5および1マイクログラム)
の生理食塩水中溶液を2回目の免疫化の13日後に皮内投
与した。動物は対照として生理食塩水のみでも皮膚試験
した。皮内注射部位の紅斑および硬結を24時間後および
48時間後にモニターした。
を示さなかった(データは示さない)。第7表に示すよ
うに、2回目の免疫化の後、両方のワクチンにより良好
なELISAおよび中和価が誘起された。この抗体応答後、r
gD2t/Alumで予防接種したサルにおいて3回目の追加免
疫はしなかった。対照的に、rgD2t/Alum 3D−MPLで3回
目の免疫化を行ったサルではELISAおよび中和抗体応答
が増加した(平均ELISA価:10056;平均中和価:950)。
なりAlum+3D−MPLと結合したrgD2tはin vivoにてエフ
ェクターT細胞応答の誘起において非常に有効であるこ
とが判明した。20mgのrgD2tで皮膚試験した全てのrgD2t
Alum 3D−MPLで予防接種した動物において強いDTH応答
が観察された。特異的DTH応答も低濃度のgD2t(5およ
び1マイクログラム)でサルの大部分において測定され
た(5マイクログラムでは3/4、1マイクログラムでは2
/4)。これらのrgD2t量は20mgのrgD2t濃度よりも弱い皮
膚試験応答を誘起した。
m 3D−MPLの免疫原性 異なる量のrgD2t(100マイクログラム、10マイクログ
ラム、または5マイクログラム)を含有するrgD2t/Alum
3D−MPLワクチンの免疫原性をリーサスサルにおいて比
較した。
よび50マイクログラムの3D−MPLを含有する。3つのリ
ーサスサルの群(1群につきサル4匹)を以下のように
して3回、0、28および77日目に免疫化した: 第1群:100マイクログラムのrgD2t Alum+3D−MPL(5
0マイクログラム) 第2群:20マイクログラムのrgD2t Alum+3D−MPL(50
マイクログラム) 第3群:5マイクログラムのrgD2t Alum+3D−MPL(50
マイクログラム) 免疫化は1mlの用量を筋肉内投与した。ELISAおよび中
和検定による抗体測定のために動物は±2週間ごとに採
血した。
を示さなかった。100、20および5mgのgD2t Alum+3D−M
PLを接種した3つの予防接種群において良好なELISAお
よび中和価が観察された(データは示さない)。
よび3D−MPLの組み合わせを含有するrgD2tワクチンによ
り体液性(中和抗体)およびエフェクター細胞性(DT
H)免疫応答が向上することがわかる。このワクチンと
比べて、rgD2t Alum処方物は中和抗体を誘起するのに有
効でなく、in vivoでのDTH応答を誘起することが出来な
い。
um+3D−MPL処方物は少量の抗原量(rgD2t 50マイクロ
グラムまたは20マイクログラム)であっても特異的体液
性免疫を誘起するのに非常に有効であることがわかる。
乳剤中に添加されたかまたは水酸化アルミニウムと結合
した3D−MPLを含有するアジュバント処方物は膣内モル
モット抗原投与動物モデルにおいて少量の抗原量(rgD2
t 5マイクログラム)であっても組み換えHSV糖蛋白質ワ
クチンに関する防御免疫応答を誘起するのに非常に有効
であることがわかる。防御値からも、これらのrgD2t3D
−MPL処方物は防御を得るのにより有効であることがわ
かる。このような3D−MPL処方物は特異的体液性(中和
抗体)およびエフェクター細胞性(DTH)免疫応答を向
上させることができる。
霊長類において免疫原性を向上させ、エフェクターT細
胞応答を誘起し、このことから、このアジュバント効果
は小動物に限定されるのではないことがわかる。
Claims (10)
- 【請求項1】3脱アシル化モノホスホルリピッドAと結
合したHSV糖蛋白質Dまたはその免疫フラグメントおよ
び適切な担体を含有するワクチン製剤であって、その担
体がミョウバンであるところの、ワクチン製剤。 - 【請求項2】担体が水中油型エマルジョンである請求項
1記載のワクチン製剤。 - 【請求項3】糖蛋白質DがHSV−2糖蛋白質Dまたはそ
の免疫フラグメントである請求項1または2記載のいず
れか1つのワクチン製剤。 - 【請求項4】糖蛋白質Dが截形蛋白質である請求項1〜
3記載のいずれか1つのワクチン製剤。 - 【請求項5】截形蛋白質がHSVgD2であって、C末端アン
カー領域を欠く請求項4記載のワクチン製剤。 - 【請求項6】糖蛋白質Dが粒状担体と結合している請求
項1〜5のいずれか1つに記載のワクチン製剤。 - 【請求項7】3脱アシル化モノホスホルリピッドAが用
量あたり10マイクログラム〜100マイクログラムの範囲
で存在する請求項1〜6のいずれか1つに記載のワクチ
ン製剤。 - 【請求項8】医薬に用いる請求項1〜7のいずれか1つ
に記載のワクチン製剤。 - 【請求項9】HSV感染症の予防または治療用医薬の製造
において3脱アシル化モノホスホルリピッドAと結合し
たHSV糖蛋白質gDまたはその免疫フラグメントを使用す
る方法。 - 【請求項10】HSV糖蛋白質Dまたはその免疫フラグメ
ントを担体および3脱アシル化モノホスホルリピッドA
と混合することからなる請求項1〜7に記載のワクチン
の製造法。
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