JP2023171950A - 抗老化剤、抗酸化剤、抗炎症剤、及び美白剤、並びに、化粧料 - Google Patents

Abstract

【課題】優れた抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用からなる群から選択される少なくともいずれかの作用を有し、かつ安全性の高い、抗老化剤、抗酸化剤、抗炎症剤、及び美白剤、並びに、優れた抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用からなる群から選択される少なくとも１種の作用を有し、かつ安全性の高い化粧料を提供すること。【解決手段】ヨモギ属植物発酵液、タチジャコウソウ発酵液、コウスイハッカ発酵液、及びヤグルマギク発酵液の少なくともいずれかの発酵液を有効成分として含有する抗老化剤、ヨモギ属植物発酵液、タチジャコウソウ発酵液、コウスイハッカ発酵液、及びヤグルマギク発酵液の少なくともいずれかの発酵液を有効成分として含有する抗酸化剤、ヨモギ属植物発酵液、及びコウスイハッカ発酵液の少なくともいずれかの発酵液を有効成分として含有する抗炎症剤、コウスイハッカ発酵液及びヤグルマギク発酵液の少なくともいずれかの発酵液を有効成分として含有する美白剤、並びに、化粧料である。【選択図】なし

Description

本発明は、植物の麹菌による発酵液を有効成分として含有する抗老化剤、抗酸化剤、抗炎症剤、及び美白剤、並びに、前記抗炎症剤、前記抗酸化剤、前記抗炎症剤、及び前記美白剤の少なくともいずれかを含有する化粧料に関する。

近年、生体成分を酸化させる要因として、活性酸素が注目されており、その生体への悪影響が問題となっている。活性酸素は、生体細胞内のエネルギー代謝過程で生じるものであり、スーパーオキサイド〔即ち、酸素分子の一電子還元で生じるスーパーオキシドアニオン（・Ｏ_２ ^－）、過酸化水素（Ｈ_２Ｏ_２）、一重項酸素（^１Ｏ_２）、ヒドロキシラジカル（・ＯＨ）〕等がある。このような活性酸素は食細胞の殺菌機構にとって必須であり、ウイルスや癌細胞の除去に重要な働きを果たしている。

しかし、前記活性酸素の過剰な生成は、生体内の膜及び組織を構成する生体内分子を攻撃し、各種疾患を誘発する。生体内で生産され、他の活性酸素の出発物質ともなっているスーパーオキサイドは、通常、細胞内に含まれているスーパーオキサイドジスムターゼ（ＳＯＤ）の触媒作用により逐次消去されている。しかし、スーパーオキサイドの産生が過剰な場合、あるいはＳＯＤの作用が低下している場合には、スーパーオキサイドの消去が不十分になってスーパーオキサイド濃度が高くなる。このことが、関節リウマチ、ベーチェット病等の組織障害、心筋梗塞、脳卒中、白内障、シミ、ソバカス、しわ、糖尿病、動脈硬化、肩凝り、冷え性、皮膚の老化などを起こす原因の一つであると考えられている。

これらの中でも、皮膚は、紫外線等の環境因子の刺激を直接受けることから、スーパーオキサイドが生成し易い器官であるため、スーパーオキサイド濃度の上昇により、例えば、コラーゲン等の生体組織を分解、変性、又は架橋したり、また油脂類を酸化して細胞に障害を与える過酸化脂質を生成して、皮膚のしわを形成したり、皮膚の弾力性低下等の老化、炎症、肌の色素沈着を引き起こすという問題がある（非特許文献１参照）。したがって、活性酸素や生体内ラジカルの生成を阻害・抑制することにより、しわ形成や弾力低下等の皮膚の老化や、関節リウマチやベーチェット病等の組織障害、心筋梗塞、脳卒中、白内障、糖尿病、動脈硬化、肩凝り、冷え性等の活性酸素が関与する各種障害を予防、治療又は改善できるものと考えられる。

そこで、活性酸素消去物質、ラジカル消去物質、過酸化水素消去物質等を安全性の点で有利な天然物から得る試みがなされており、アブラナ科ブラシカ属植物の抽出物（特許文献１参照）、ベンケイソウ科リュウキュウベンケイ属植物の抽出物（特許文献２参照）、タマコチョウの抽出物（特許文献３参照）、スイオウの抽出物（特許文献４参照）、などに有効性が確認されている。

また、炎症性疾患、例えば、接触性皮膚炎（かぶれ）、乾癬、尋常性天疱瘡、その他肌荒れを伴う各種皮膚疾患等の原因及び発症機構は、多種多様である。その原因として、主にヒアルロニダーゼの活性の亢進によるものが知られている。

ヒアルロニダーゼは、ヒアルロン酸の加水分解酵素である。体組織への親和性を保つヒアルロン酸塩は、含水系の中では紫外線、酸素等によって分解され、分子量の低下に伴って保水効果も減少する。また、ヒアルロン酸は、生体内において細胞間組織として存在し、血管透過性にも関与している。さらに、ヒアルロニダーゼは、肥満細胞中に存在するが、その活性化により起こる脱顆粒により遊離され、炎症系ケミカルメディエーターとして作用する。したがって、ヒアルロニダーゼの活性を阻害することで、保湿の強化及び炎症の予防・軽減が期待される。
このようなヒアルロニダーゼ活性阻害作用を有するものとして、例えば、オスベッキア属植物の抽出物（特許文献５参照）、藤茶抽出物（特許文献６参照）等が知られている。

また、皮膚においてメラニンは、紫外線から生体を保護する役目も果たしているが、過剰生成や不均一な蓄積は、皮膚の黒化やシミの原因となる。一般にメラニンは、色素細胞の中で生合成される酵素チロシナーゼの働きによって、チロシンからドーパ、ドーパからドーパキノンに変化し、ついで５，６－ジヒドロキシインドフェノール等の中間体を経て形成されるものとされている。したがって、皮膚の色黒（皮膚色素沈着症）、シミ、ソバカス等を予防、治療又は改善するためには、メラニンの産生に関与するチロシナーゼの活性を阻害すること、又はメラニンの産生を抑制することが考えられる。

従来、皮膚色素沈着症、シミ、ソバカス等の予防、治療又は改善には、ハイドロキノン等の化学合成品を有効成分とする美白剤を外用する処置が行われてきた。しかしながら、ハイドロキノン等の化学合成品は、皮膚刺激、アレルギー等の副作用のおそれがある。
そこで、安全性の高い天然原料を有効成分とする美白剤の開発が望まれており、チロシナーゼ活性阻害作用を有するものとしては、例えば、藤茶抽出物（特許文献７参照）、ヤナギタデ抽出物（特許文献８参照）等が知られている。また、メラニン産生抑制作用を有するものとしては、例えば、トウゴマ根部からの抽出物（特許文献９参照）、サウスウレア（Ｓａｕｓｓｕｒｅａ）属に属する植物からの抽出物（特許文献１０参照）等が知られている。

また、皮膚の表皮及び真皮は、表皮細胞、線維芽細胞及びこれらの細胞の外にあって皮膚構造を支持するコラーゲン等の細胞外マトリックスにより構成されている。若い皮膚においては、これら皮膚組織の相互作用が恒常性を保つことにより水分保持、柔軟性、弾力性等が確保され、肌は外見的にも張りや艶があってみずみずしい状態に維持される。
ところが、紫外線（ＵＶ－Ａ、ＵＶ－Ｂ）の照射、空気の著しい乾燥、過度の皮膚洗浄等のある種の外的因子の影響があったり、加齢が進んだりすると、細胞外マトリックスの主要構成成分であるコラーゲンの産生量が減少すると共に架橋による弾力低下を起こす。その結果、皮膚は保湿機能や弾力性が低下し、角質は異常剥離を始めるため、肌は張りや艶を失い、荒れ、シワ等の老化症状を呈するようになる。
このように皮膚の老化に伴う変化、即ち、シワ、くすみ、きめの消失、弾力性の低下等には、様々な要因が挙げられているが、コラーゲン、ヒアルロン酸、エラスチン等の細胞外マトリックス成分の減少及び変性が関与している。したがって、コラーゲンやヒアルロン酸等の産生を促進することにより、皮膚の老化を防止及び改善することができると考えられる。

そこで、コラーゲン産生促進作用を有する物質を安全性の点で有利な天然物から取得しようという試みがなされている。コラーゲン産生促進作用を有するものとして、例えば、スターフルーツ葉抽出物（特許文献１１参照）、クスノハガシワ抽出物（特許文献１２参照）などが確認されている。

また、天然保湿因子（Ｎａｔｕｒａｌ Ｍｏｉｓｔｕｒｉｚｉｎｇ Ｆａｃｔｏｒｓ）の主成分であるアミノ酸は、ケラトヒアリン顆粒に由来するフィラグリンが角質層内で分解されて産生される。このフィラグリンは、角質層直下の顆粒層に存在する表皮ケラチノサイトでプロフィラグリンとして発現する。その後、直ちにリン酸化し、ケラトヒアリン顆粒に蓄積され、脱リン酸、加水分解を経てフィラグリンへと分解され、角質層に移行して、ケラチンフィラメントの凝集効率を高め、角質細胞の内部構築に関与することが報告されている（非特許文献２参照）。
近年、このフィラグリンが皮膚の水分保持に非常に重要かつ必要不可欠であること、及び乾燥などの条件によってフィラグリンの合成力が低下し、角質層におけるアミノ酸量が低下することが報告されている（非特許文献３参照）。
したがって、表皮ケラチノサイトにおいてプロフィラグリンｍＲＮＡの発現促進を通じて、フィラグリンの合成を促進することによって角質層内のアミノ酸量を増大させ、角質層の水分環境を本質的に改善できることが期待される。

天然物由来のフィラグリン合成促進剤として、例えば、カンゾウ抽出物（特許文献１３参照）、天然植物中に含まれるフラバノン配糖体として知られるリクイリチン（特許文献１４参照）、又、天然物由来のプロフィラグリン及びフィラグリン蛋白産生促進剤の少なくともいずれかとして、Ｃｉｔｒｕｓ属に属する植物エキス又は酵母エキス（特許文献１５参照）などが提案されている。

表皮は、角化細胞の分裂とその後の分化により、常に新しい角質細胞を作り出すことで、外界からの種々の刺激から皮膚を守る防御機能を有する。特に、角化細胞の分化過程において、有棘層から顆粒層にかけてインボルクリン等のタンパク質が発現し、酵素トランスグルタミナーゼ－１の作用によって架橋され、角化細胞を包み込む不溶性の細胞膜様構造体であるコーニファイドエンベロープ（以下「ＣＥ」と略記する）を形成し、角質細胞の細胞骨格及び構造の安定性に寄与する。
しかし、様々な要因で表皮におけるトランスグルタミナーゼ－１の産生量が減少すると、ＣＥ形成が不完全な状態となり、角化が正常に行われなくなる。その結果、角質バリア機能及び皮膚の保湿機能が低下し、肌荒れや乾燥肌等の皮膚症状を呈するようになると考えられる。
このようなことから、角化細胞の表皮におけるトランスグルタミナーゼ－１の産生を高め、ＣＥの形成を促進して角化を正常化することにより、乾燥や紫外線等の外部刺激に伴う皮膚バリア機能の低下を抑制し、肌の乾燥や肌荒れなど、様々な皮膚症状を予防・改善することができると考えられる。

天然物由来のトランスグルタミナーゼ－１産生促進剤として、ノニ抽出物（特許文献１６参照）、ローヤルゼリー抽出物（特許文献１７参照）などが提案されている。

また、皮膚細胞では、水チャンネルとして知られるアクアポリンが、細胞膜上に発現して、細胞間隙の水をはじめとする低分子物質を細胞内へ取り込む役割を担っていることが知られている。ヒトでは、１３種類のアクアポリン（ＡＱＰ０～ＡＱＰ１２）の存在が知られている。表皮細胞においては、主としてアクアポリン３（Ａｑｕａｐｏｒｉｎ ３；ＡＱＰ３）が存在しており、水に加えて、水分保持作用に関与するグリセロールや尿素等の低分子化合物をも取り込む役割を担っていると考えられている。

しかしながら、ＡＱＰ３は加齢とともに減少し、このことが水分保持機能の低下の一因であることが示唆されているため、ＡＱＰ３の発現を促進することにより、加齢による水分保持機能やバリア機能等を制御することが可能であると考えられる（非特許文献４参照）。ＡＱＰ３発現促進作用を有するものとして、例えば、スターフルーツの葉部からの抽出物（特許文献１８参照）等が知られている。

従来は、皮膚のバリア機能は角層のみが担っていると考えられていたが、表皮顆粒層に存在するタイトジャンクション（以下「ＴＪ」と略記する。）の構成タンパク質を遺伝子レベルで欠損させると皮膚のバリア機能が崩壊することから、近年、ＴＪも皮膚のバリア機能に重要な役割を担うと考えられている（非特許文献５参照）。ＴＪは、隣接する細胞同士を密着させるだけでなく、細胞と細胞の隙間をシールすることで物質の透過を制御する結合装置である。ＴＪを構成しているのは、細胞膜タンパク質のクローディンやオクルディンであり、これらのタンパク質はＴＪストランドの骨格を構成し、ＴＪのバリア機能を制御すると考えられている（非特許文献６参照）。以上のことから、クローディンやオクルディンの発現が何らかの原因で減少した場合、ＴＪの構造的な破壊が起こり、物質の透過バリアとして機能しなくなることによって、乾燥肌、荒れ肌、アトピー性皮膚炎や各種感染症などの皮膚症状の原因となると予想される。

したがって、表皮においてクローディンやオクルディンの産生を促進することにより表皮角化細胞のＴＪ形成を促すことで、皮膚のバリア機能及び水分保持機能を高め、前記皮膚症状を予防又は改善することができると考えられる。このような考えに基づき、ＴＪ形成促進作用を介して皮膚バリア機能を向上させるものとして、天然物由来のオウレン抽出物（特許文献１９参照）、トウヒ抽出物（特許文献２０参照）などが提案されている。

また近年、皮膚の老化に伴う変化を誘導する因子として、マトリックスメタロプロテアーゼ（ＭＭＰｓ；Ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅｓ）の関与が指摘されている。このＭＭＰｓの中でも、マトリックスメタロプロテアーゼ－１（ＭＭＰ－１）は、皮膚の真皮細胞外マトリックスの主要構成成分であるコラーゲンを分解する酵素として知られているが、その発現は紫外線の照射により大きく増加し、コラーゲンの減少・変性の一因となり、皮膚のシワの形成、弾力性の低下等の大きな要因となると考えられている。したがって、ＭＭＰ－１の活性を阻害することは、皮膚の老化症状を予防・改善する上で重要である。

このようなＭＭＰ－１阻害作用を有するものとしては、例えば、ヒマラヤザクラからの抽出物（特許文献２１参照）、ショウガ科ジンギバーカッサムナー又はクワ科フィカスネリフォリアからの抽出物（特許文献２２参照）等が知られている。

一方、ヨモギ属植物を麹菌で発酵させた発酵液（特許文献２３参照）や、タチジャコウソウを麹菌で発酵させた発酵液（特許文献２４参照）は知られているものの、これらの植物発酵液が、抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、美白作用などの作用を有することは知られていない。

特開２００３－８１８４８号公報 特開２００５－２９４８３号公報 特開２００６－３２１７３０号公報 特開２００７－８９０２号公報 特開２００３－５５２４２号公報 特開２００３－１２５３２号公報 特開２００２－３７０９６２号公報 特開２００４－８３４８８号公報 特開２００１－２１３７５７号公報 特開２００２－２０１１２２号公報 特開２００２－２２６３２３号公報 特開２００３－１４６８３７号公報 特開２００２－３６３０５４号公報 特開２００３－１４６８８６号公報 特開２００１－２６１５６８号公報 特開２０１０－０９００９３号公報 特開２００９－１８４９５５号公報 特開２００９－１９１０３９号公報 特開２００７－１７６８３０号公報 特開２００７－１７６８３５号公報 特開２００３－１７６２３２号公報 特開２００３－１７６２３０号公報 特開２０１１－１４０４５３号公報 特開２０１１－１３０６８９号公報

「フレグランスジャーナル」臨時増刊Ｎｏ．１４、ｐ１５６、１９９５年 フレグランスジャーナル臨時増刊，ｖｏｌ．１７，ｐｐ．１４－１９（２０００） Ａｒｃｈ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．Ｒｅｓ．，ｖｏｌ．２８８，ｐｐ．４４２－４４６（１９９６） 「フレグランスジャーナル」，２００６年，Ｖｏｌ．３４，Ｎｏ．１０，ｐ．１９－２３ Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．，ｖｏｌ．１５６，ｐｐ．１０９９－１１１１（２００２） 日本香粧品科学会誌，ｖｏｌ．３１，ｐｐ．２９６－３０１（２００７）

本発明は、従来における前記諸問題を解決し、以下の目的を達成することを課題とする。
即ち、本発明は、優れた抗老化作用を有し、かつ安全性の高い抗老化剤、優れた抗酸化作用を有し、かつ安全性の高い抗酸化剤、優れた抗炎症作用を有し、かつ安全性の高い抗炎症剤、及び優れた美白作用を有し、かつ安全性の高い美白剤を提供することを目的とする。
また、本発明は、優れた抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用からなる群から選択される少なくとも１種の作用を有し、かつ安全性の高い化粧料を提供することを目的とする。

前記課題を解決するための手段としては、以下の通りである。即ち、
＜１＞ ヨモギ属植物の麹菌による発酵液、タチジャコウソウの麹菌による発酵液、コウスイハッカの麹菌による発酵液、及びヤグルマギクの麹菌による発酵液の少なくともいずれかの発酵液を有効成分として含有することを特徴とする抗老化剤である。
＜２＞ ヨモギ属植物の麹菌による発酵液、タチジャコウソウの麹菌による発酵液、コウスイハッカの麹菌による発酵液、及びヤグルマギクの麹菌による発酵液の少なくともいずれかの発酵液を有効成分として含有することを特徴とする抗酸化剤である。
＜３＞ ヨモギ属植物の麹菌による発酵液、及びコウスイハッカの麹菌による発酵液の少なくともいずれかの発酵液を有効成分として含有することを特徴とする抗炎症剤である。
＜４＞ ヨモギ属植物の麹菌による発酵液、コウスイハッカの麹菌による発酵液、及びヤグルマギクの麹菌による発酵液の少なくともいずれかの発酵液を有効成分として含有することを特徴とする美白剤である。
＜５＞ 前記＜１＞に記載の抗老化剤、前記＜２＞の記載の抗酸化剤、前記＜３＞に記載の抗炎症剤、及び前記＜４＞に記載の美白剤からなる群から選択される少なくとも１種を含有することを特徴とする化粧料である。

本発明によると、従来における前記諸問題を解決し、前記目的を達成することができ、優れた抗老化作用を有し、かつ安全性の高い抗老化剤、優れた抗酸化作用を有し、かつ安全性の高い抗酸化剤、優れた抗炎症作用を有し、かつ安全性の高い抗炎症剤、及び優れた美白作用を有し、かつ安全性の高い美白剤を提供することができる。
また、本発明は、優れた抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用からなる群から選択される少なくとも１種の作用を有し、かつ安全性の高い化粧料を提供することができる。

図１Ａは、製造例１のヤマヨモギ発酵液１の接触角の測定時の液滴の一例を示す写真である。 図１Ｂは、製造例２のヤマヨモギ発酵液２の接触角の測定時の液滴の一例を示す写真である。 図１Ｃは、比較製造例１のヤマヨモギ抽出液の接触角の測定時の液滴の一例を示す写真である。 図２Ａは、製造例３のカワラヨモギ発酵液１の接触角の測定時の液滴の一例を示す写真である。 図２Ｂは、製造例４のカワラヨモギ発酵液２の接触角の測定時の液滴の一例を示す写真である。 図２Ｃは、比較製造例２のカワラヨモギ抽出液の接触角の測定時の液滴の一例を示す写真である。 図３Ａは、製造例５のタチジャコウソウ発酵液１の接触角の測定時の液滴の一例を示す写真である。 図３Ｂは、製造例６のタチジャコウソウ発酵液２の接触角の測定時の液滴の一例を示す写真である。 図３Ｃは、比較製造例３のタチジャコウソウ抽出液の接触角の測定時の液滴の一例を示す写真である。 図４Ａは、製造例７のコウスイハッカ発酵液１の接触角の測定時の液滴の一例を示す写真である。 図４Ｂは、製造例８のコウスイハッカ発酵液２の接触角の測定時の液滴の一例を示す写真である。 図４Ｃは、比較製造例４のコウスイハッカ抽出液の接触角の測定時の液滴の一例を示す写真である。 図５Ａは、製造例９のヤグルマギク発酵液１の接触角の測定時の液滴の一例を示す写真である。 図５Ｂは、製造例１０のヤグルマギク発酵液２の接触角の測定時の液滴の一例を示す写真である。 図５Ｃは、比較製造例５のヤグルマギク抽出液の接触角の測定時の液滴の一例を示す写真である。

（抗老化剤、抗酸化剤、抗炎症剤、及び美白剤）
＜抗老化剤＞
本発明の抗老化剤は、ヨモギ属植物の麹菌による発酵液（以下、「ヨモギ属植物発酵液」と称することがある）、タチジャコウソウの麹菌による発酵液（以下、「タチジャコウソウ発酵液」と称することがある）、コウスイハッカの麹菌による発酵液（以下、「コウスイハッカ発酵液」と称することがある）、及びヤグルマギクの麹菌による発酵液（以下、「ヤグルマギク発酵液」と称することがある）の少なくともいずれかの発酵液を有効成分として含有し、必要に応じて、更にその他の成分を含有する。

前記ヨモギ属植物発酵液、前記タチジャコウソウ発酵液、前記コウスイハッカ発酵液、及前記ヤグルマギク発酵液は、マトリックスメタロプロテアーゼ－１（ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ－１；ＭＭＰ－１）活性阻害作用、ヒアルロン酸合成酵素３（ｈｙａｌｕｒｏｎａｎ ｓｙｎｔｈａｓｅ ３；ＨＡＳ３）ｍＲＮＡ発現促進作用、Ｉ型コラーゲン産生促進作用、クローディン－１ ｍＲＮＡ発現促進作用、クローディン－４ ｍＲＮＡ発現促進作用、オクルディンｍＲＮＡ発現促進作用、トランスグルタミナーゼ－１（ｔｒａｎｓｇｌｕｔａｍｉｎａｓｅ－１；ＴＧＭ－１）ｍＲＮＡ発現促進作用、アクアポリン３（Ａｑｕａｐｏｒｉｎ ３；ＡＱＰ３）ｍＲＮＡ発現促進作用、及びフィラグリンｍＲＮＡ発現促進作用からなる群から選択される少なくとも１種の作用を有しており、これらの作用を利用して、抗老化剤の有効成分として使用することができる。

したがって、前記抗老化剤は、ＭＭＰ－１活性阻害作用、ヒアルロン酸合成酵素３ ｍＲＮＡ発現促進作用、Ｉ型コラーゲン産生促進作用、クローディン－１ ｍＲＮＡ発現促進作用、クローディン－４ ｍＲＮＡ発現促進作用、オクルディンｍＲＮＡ発現促進作用、トランスグルタミナーゼ－１ ｍＲＮＡ発現促進作用、アクアポリン３ ｍＲＮＡ発現促進作用、及びフィラグリンｍＲＮＡ発現促進作用からなる群から選択される少なくとも１種の作用を有するものである。

前記ヨモギ属植物発酵液、前記タチジャコウソウ発酵液、前記コウスイハッカ発酵液、及前記ヤグルマギク発酵液が有する、ＭＭＰ－１活性阻害作用、ヒアルロン酸合成酵素３ ｍＲＮＡ発現促進作用、Ｉ型コラーゲン産生促進作用、クローディン－１ ｍＲＮＡ発現促進作用、クローディン－４ ｍＲＮＡ発現促進作用、オクルディンｍＲＮＡ発現促進作用、トランスグルタミナーゼ－１ ｍＲＮＡ発現促進作用、アクアポリン３ ｍＲＮＡ発現促進作用、及びフィラグリンｍＲＮＡ発現促進作用の少なくともいずれかを発揮する物質の詳細については不明であるが、前記ヨモギ属植物発酵液、前記タチジャコウソウ発酵液、前記コウスイハッカ発酵液、及前記ヤグルマギク発酵液がこのような優れた作用を有し、抗老化剤として有用であることは、従来は全く知られておらず、本発明者らによる新たな知見である。

＜抗酸化剤＞
本発明の抗酸化剤は、ヨモギ属植物の麹菌による発酵液（ヨモギ属植物発酵液）、タチジャコウソウの麹菌による発酵液（タチジャコウソウ発酵液）、コウスイハッカの麹菌による発酵液（コウスイハッカ発酵液）、及びヤグルマギクの麹菌による発酵液（ヤグルマギク発酵液）の少なくともいずれかの発酵液を有効成分として含有し、更に必要に応じて、その他の成分を含有してなる。

前記ヨモギ属植物発酵液、前記タチジャコウソウ発酵液、前記コウスイハッカ発酵液、及前記ヤグルマギク発酵液は、ジフェニル－ｐ－ピクリルヒドラジル（ＤＰＰＨ）ラジカル消去作用を有しており、この作用を利用して、抗酸化剤の有効成分として使用することができる。
したがって、前記抗酸化剤は、ＤＰＰＨラジカル消去作用を有するものである。

前記ヨモギ属植物発酵液、前記タチジャコウソウ発酵液、前記コウスイハッカ発酵液、及前記ヤグルマギク発酵液が有する、ＤＰＰＨラジカル消去作用を発揮する物質の詳細については不明であるが、前記ヨモギ属植物発酵液、前記タチジャコウソウ発酵液、前記コウスイハッカ発酵液、及前記ヤグルマギク発酵液がこのような優れた作用を有し、抗酸化剤として有用であることは、従来は全く知られておらず、本発明者らによる新たな知見である。

＜抗炎症剤＞
本発明の抗炎症剤は、ヨモギ属植物の麹菌による発酵液（ヨモギ属植物発酵液）、及びコウスイハッカの麹菌による発酵液（コウスイハッカ発酵液）の少なくともいずれかの発酵液を有効成分として含有し、更に必要に応じて、その他の成分を含有してなる。

前記ヨモギ属植物発酵液及び前記コウスイハッカ発酵液は、ヒアルロニダーゼ活性阻害作用を有しており、この作用を利用して、抗炎症剤の有効成分として使用することができる。
したがって、前記抗炎症剤は、ヒアルロニダーゼ活性阻害作用を有するものである。

前記ヨモギ属植物発酵液及び前記コウスイハッカ発酵液が有するヒアルロニダーゼ活性阻害作用を発揮する物質の詳細については不明であるが、前記ヨモギ属植物発酵液及び前記コウスイハッカ発酵液がこのような優れた作用を有し、抗炎症剤として有用であることは、従来は全く知られておらず、本発明者らによる新たな知見である。

＜美白剤＞
本発明の美白剤は、ヨモギ属植物の麹菌による発酵液（ヨモギ属植物発酵液）、コウスイハッカの麹菌による発酵液（コウスイハッカ発酵液）、及びヤグルマギクの麹菌による発酵液（ヤグルマギク発酵液）の少なくともいずれかの発酵液を有効成分として含有し、更に必要に応じて、その他の成分を含有してなる。

前記ヨモギ属植物発酵液、コウスイハッカ発酵液、及び前記ヤグルマギク発酵液は、チロシナーゼ活性阻害作用及びメラニン産生抑制作用の少なくとも１種の作用を有しており、この作用を利用して、美白剤の有効成分として使用することができる。
したがって、前記美白剤は、チロシナーゼ活性阻害作用及びメラニン産生抑制作用の少なくとも１種の作用を有するものである。

前記ヨモギ属植物発酵液、コウスイハッカ発酵液、及び前記ヤグルマギク発酵液が有するチロシナーゼ活性阻害作用及びメラニン産生抑制作用の少なくともいずれかを発揮する物質の詳細については不明であるが、前記ヨモギ属植物発酵液及び前記ヤグルマギク発酵液がこのような優れた作用を有し、美白剤として有用であることは、従来は全く知られておらず、本発明者らによる新たな知見である。

＜＜ヨモギ属植物発酵液＞＞
前記ヨモギ属植物発酵液は、ヨモギ属に属する植物（以下、「ヨモギ属植物」と称することがある）の麹菌による発酵液である。

－ヨモギ属植物－
前記発酵原料として使用する前記ヨモギ属植物は、キク科（Ｃｏｍｐｏｓｉｔａｅ）ヨモギ属（Ａｒｔｅｍｉｓｉａ）に属する多年生草本であり、古代より食品や薬用の原料として利用されている。北海道、本州、四国、九州等の日本国内で広く自生又は栽培されており、これらの地域から容易に入手可能である。

前記ヨモギ属植物の種類としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、Ａｒｔｅｍｉｓｉａ ｍｏｎｔａｎａ（Ｎａｋａｉ） Ｐａｍｐ．、Ａｒｔｅｍｉｓｉａ ｃａｐｉｌｌａｒｉｓ Ｔｈｕｎｂｅｒｇｉｉ、Ａｒｔｅｍｉｓｉａ ｐｒｉｎｃｅｐｓ Ｐａｍｐａｎ.、Ａｒｔｅｍｉｓｉａ ｊａｐｏｎｉｃａ Ｔｈｕｎｂ.、Ａｒｔｅｍｉｓｉａ ａｂｓｉｎｔｈｉｕｍ Ｌ．、Ａｒｔｅｍｉｓｉａ ｌａｃｔｉｆｌｏｒａ Ｗａｌｌ.、Ａｒｔｅｍｉｓｉａ ｍａｒｉｔｉｍａ Ｌ.、Ａｒｔｅｍｉｓｉａ ｓｃｏｐａｒｉａ Ｗａｌｄｓｔ.ｅｔ ｋｉｔ.などが挙げられる。これらは、１種単独で使用してもよく、２種以上を併用してもよい。
前記ヨモギ属植物の入手方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、自然界から採取してもよいし、市販品を用いてもよい。

前記発酵原料として使用する前記ヨモギ属植物の使用部位としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、花、蕾、果実、果皮、種子、種皮、茎、葉、枝、枝葉等の地上部；根、根茎等の地下部などが挙げられる。これらは、１種単独で使用してもよく、２種以上を併用してもよい。これらの中でも、前記ヨモギ属植物の使用部位としては、地上部が好ましい。

前記発酵原料として使用する前記ヨモギ属植物の大きさとしては、前記麹菌の培養が可能な大きさであれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、採取したそのままの大きさ、切断した所望の大きさ、微粉（パウダー）化された大きさなどが挙げられる。

前記発酵原料として使用する前記ヨモギ属植物の状態としては、前記麹菌の培養が可能な状態であれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、採取したそのままの状態、乾燥した状態、粉砕した状態、搾汁の状態、抽出物の状態などが挙げられる。これらの中でも、前記麹菌が作用しやすい点で、採取したそのままの状態、粉砕した状態、搾汁の状態、抽出物の状態が好ましく、採取したそのままの状態、粉砕した状態がより好ましい。

前記ヨモギ属植物を乾燥した状態にする方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、天日で乾燥する方法、通常使用される乾燥機を用いて乾燥する方法などが挙げられる。

前記ヨモギ属植物を前記粉砕した状態にする方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ミキサー、シュガーミル、パワーミル、ジェットミル、衝撃式粉砕機等により粉砕する方法などが挙げられる。

前記ヨモギ属植物を前記搾汁の状態にする方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、圧搾などが挙げられる。

前記ヨモギ属植物を前記抽出物の状態にする方法としては、特に制限はなく、植物の抽出に一般に用いられる方法を、目的に応じて適宜選択することができる。

前記発酵原料として使用する前記ヨモギ属植物は、前記麹菌の接種前に滅菌されることが好ましい。前記ヨモギ属植物を滅菌する手段としては、特に制限はなく、公知の方法の中から適宜選択することができる。

－麹菌－
前記ヨモギ属植物を発酵させる前記麹菌としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、アスペルギルス オリゼー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）、アスペルギルス ソーヤ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓｏｊａｅ）等の黄麹菌；アスペルギルス ルチュエンシス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｌｕｃｈｕｅｎｓｉｓ）等の黒麹菌；アスペルギルス カワウチ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｋａｗａｕｃｈｉｉ）等の白麹菌；これらの変異株などが挙げられる。これらは、１種単独で使用してもよく、２種以上を併用してもよい。これらの中でも、前記麹菌としては、アスペルギルス オリゼー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）が、抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用に優れる点で好ましい。
前記麹菌の入手方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、自然界から採取してもよいし、市販品を用いてもよい。また、前記麹菌として、米などを原料とした種麹を使用してもよく、後述するヨモギ属植物種麹を使用してもよく、培地（寒天培地、液体培地など）で培養した麹菌を使用してもよい。これらの中でも、抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用に優れる点で、前記ヨモギ属植物種麹を用いることが好ましい。

前記発酵原料として使用する前記ヨモギ属植物への、前記麹菌の接種量としては、前記ヨモギ属植物を発酵することができる量である限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記発酵原料が液体の状態である場合には、１×１０^３個／ｍＬ～１×１０^８個／ｍＬが好ましく、前記発酵原料が固体の状態である場合には、１×１０^３個／ｇ～１×１０^８個／ｇが好ましい。

前記ヨモギ属植物に前記麹菌を接種する際、水を添加することが好ましい。前記水の添加量としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記ヨモギ属植物１００質量部に対して、５００質量部～５，０００質量部添加することが好ましく、１，０００質量部～４，０００質量部添加することがより好ましく、１，５００質量部～３，０００質量部添加することが特に好ましい。

前記発酵（培養）の温度としては、前記麹菌による発酵ができる温度の範囲内であれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、２０℃～４０℃が好ましく、２５℃～３５℃がより好ましい。前記発酵の温度が、２０℃未満であると、前記ヨモギ属植物を十分に発酵させることができず、抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用が不十分となることがある。なお、５０℃を超えると、前記麹菌が増殖できないことがある。

前記発酵（培養）の時間としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、１０時間～４０時間が好ましく、２０時間～３０時間がより好ましい。前記発酵の時間が、１０時間未満であると、前記ヨモギ属植物を十分に発酵させることができず、抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用が不十分となることがある。

前記発酵（培養）を停止する方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、加熱する方法などが挙げられる。
前記発酵を停止するための加熱温度としては、前記麹菌が生育できない温度であれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、５０℃以上が好ましく、７０℃以上がより好ましく、１００℃～１３０℃が特に好ましい。前記加熱温度が、５０℃未満であると、前記発酵を停止できないことがあり、１３０℃を超えると、抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用が不十分となることがある。
前記発酵を停止するための加熱時間としては、前記麹菌が生育できない状態にすることができれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、５分間以上が好ましく、１０分間～２０分間がより好ましい。前記加熱時間が、５分間未満であると、前記発酵を停止できないことがあり、２０分間を超えると、抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用が不十分となることがある。

なお、前記発酵を停止した後の前記ヨモギ属植物発酵液は、冷却されることが好ましい。冷却する方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、常温、冷蔵庫などに静置する方法などが挙げられる。

前記ヨモギ属植物の前記麹菌による発酵の回数としては、前記発酵を行う回数としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、１回であってもよく、複数回であってもよい。

前記発酵を複数回行う場合、前記麹菌は、初回のみ接種してもよく、数回のみ接種してもよく、全ての回で接種してもよいが、初回のみに接種することが好ましい。
前記発酵を複数回行う場合、発酵温度及び発酵時間は、それぞれ異なっていてもよく、同じであってもよい。

－－ヨモギ属植物種麹－－
前記ヨモギ属植物種麹は、前記ヨモギ属植物を種麹原料として使用し、該種麹原料に麹菌を接種して、該ヨモギ属植物に十分な量の胞子を着生させたものである。これを前記発酵において使用することで、肌なじみに優れたヨモギ属植物発酵液をより効率よく容易に得ることができる点で有利である。

前記種麹原料として使用する前記ヨモギ属植物は、前記－ヨモギ属植物－において記載したものと同様のものを使用することができ、前記ヨモギ属植物の使用部位、大きさ、状態などの態様についても同様である。

前記ヨモギ属植物種麹の作製において使用する前記麹菌としては、前記－麹菌－において記載したものと同様のものを使用することができる。

前記種麹原料として使用する前記ヨモギ属植物への、前記麹菌の接種量としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記ヨモギ属植物１００質量部に対して、滅菌水に懸濁した麹菌（１×１０^３個／ｍＬ～１×１０^８個／ｍＬ）を５質量部～１００質量部接種することが好ましく、１０質量部～５０質量部接種することがより好ましく、２０質量部～３０質量部接種することが特に好ましい。前記ヨモギ属植物１００質量部に対する前記麹菌の接種量が、５質量部未満であると、前記ヨモギ属植物に十分な量の胞子を着生できないことがあり、１００質量部を超えると、水分過多で異常繁殖することがある。

前記種麹原料として使用する前記ヨモギ属植物に前記麹菌を接種する際、水を添加することが好ましい。前記水の添加量としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記ヨモギ属植物１００質量部に対して、１０質量部～２５０質量部添加することが好ましく、２０質量部～２００質量部添加することがより好ましく、３０質量部～１５０質量部添加することが特に好ましい。前記ヨモギ属植物１００質量部に対する前記水の添加量が、１０質量部未満であると、前記ヨモギ属植物に十分な量の胞子を着生できないことがある。

前記培養の温度としては、前記麹菌が生育できる温度の範囲内であれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、２０℃～４０℃が好ましく、２５℃～３５℃がより好ましい。前記培養の温度が、２０℃未満であると、前記ヨモギ属植物に十分な量の胞子を着生できないことがある。なお、５０℃を超えると、前記麹菌が増殖できないことがある。

前記培養の時間としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、８０時間～２１０時間が好ましく、１００時間～１９０時間がより好ましく、１２０時間～１７０時間が特に好ましい。前記培養の時間が、８０時間未満であると、前記ヨモギ属植物に十分な量の胞子を着生できないことがあり、２１０時間を超えると、胞子の発芽率が落ちることがある。

前記ヨモギ属植物発酵液は、前記麹菌の菌体を含有したものであってもよく、前記麹菌の菌体を除去したものであってもよいが、前記麹菌の菌体を除去したものであることが好ましい。

前記ヨモギ属植物発酵液の状態としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、前記ヨモギ属植物発酵液そのものであってもよく、前記ヨモギ属植物発酵液の精製物、前記ヨモギ属植物発酵液の濃縮物、前記ヨモギ属植物発酵液の希釈物などであってもよい。また、前記ヨモギ属植物発酵液は、該ヨモギ属植物発酵液の乾燥物を再度、水や親水性溶媒等の溶媒に混合又は溶解させたものであってもよい。

前記ヨモギ属植物発酵液の精製物としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、前記ヨモギ属植物発酵液中の固形分（例えば、前記ヨモギ属植物の植物体、麹菌の菌体、オリなど）が除去された物などが挙げられる。
前記除去の手段としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ろ過などが挙げられる。
前記ろ過の方法としては、特に制限はなく、公知の方法の中から、目的に応じて適宜選択することができる。

前記ヨモギ属植物発酵液の希釈物及び前記ヨモギ属植物発酵液の濃縮物としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ヨモギ属植物発酵液が所望の濃度に調製された物などが挙げられる。
前記希釈の手段としては、特に制限はなく、公知の方法の中から、目的に応じて適宜選択することができる。
前記濃縮の手段としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、減圧濃縮などが挙げられる。

前記ヨモギ属植物発酵液の乾燥物としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ヨモギ属植物発酵液が乾燥された物などが挙げられる。
前記乾燥の手段としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、凍結乾燥などが挙げられる。

前記ヨモギ属植物発酵液は、ヨモギ属植物の麹菌による発酵液である限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、肌なじみがよい点で、接触角が８１°以下であるヨモギ属植物発酵液が好ましく、接触角が７８°以下であるヨモギ属植物発酵液がより好ましい。

本明細書において、接触角とは、動的接触角・表面張力測定装置（ＦＴＡ１０００ Ｆａｌｃｏｎ、Ｆｉｒｓｔ Ｔｅｎ Ａｎｇｓｔｒｏｍｓ社製）を用いて、前記装置のサンプルステージに測定試料を３μＬ滴下し、温度２２℃、相対湿度２０％の条件下で、液滴法にて測定を行い、１，０００ｍｓの接触角θ（°）をθ／２法で求めた値を表す。
前記接触角は、「濡れ」を表す指標として使用されており、「静止液体の自由表面が固体壁に接する場所で液面と固体面とのなす角(液の内部にある角をとる)をいう」（理化学辞典 第４版、株式会社岩波書店参照）と定義されている。前記接触角は、液体分子間の凝集力と固体壁間の付着力の大小関係によってきまり、液体が固体を濡らす（付着力が大きい）場合には鋭角、濡らさないときには鈍角である。したがって、接触角が小さい程、濡れやすい、即ち、肌なじみがよいことを示すため、前記ヨモギ属植物発酵液の接触角の下限としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。

＜＜タチジャコウソウ発酵液＞＞
前記タチジャコウソウ発酵液は、タチジャコウソウの麹菌による発酵液である。

－タチジャコウソウ－
前記発酵原料として使用するタチジャコウソウ（Ｔｈｙｍｕｓ ｖｕｌｇａｒｉｓ Ｌｉｎｎｅ）は、シソ科（Ｌａｂｉａｔａｅ）イブキジャコウソウ（Ｔｈｙｍｕｓ）属に属する多年生木本であり、ハーブの一種であり、古代より食用や薬用の原料として利用されている。別名として、コモンタイムなどがある。原産地は地中海沿岸であるが、日本国内においても自生又は栽培されており、これらの地域から容易に入手可能である。
前記タチジャコウソウの入手方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、自然界から採取してもよいし、市販品を用いてもよい。

前記発酵原料として使用する前記タチジャコウソウの使用部位としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、花、蕾、果実、果皮、種子、種皮、茎、葉、枝、樹皮、幹、枝葉等の地上部；根、根茎等の地下部などが挙げられる。これらは、１種単独で使用してもよく、２種以上を併用してもよい。これらの中でも、前記タチジャコウソウの使用部位としては、地上部が好ましい。

前記発酵原料として使用する前記タチジャコウソウの大きさとしては、前記麹菌の培養が可能な大きさであれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、採取したそのままの大きさ、切断した所望の大きさ、微粉（パウダー）化された大きさなどが挙げられる。

前記発酵原料として使用する前記タチジャコウソウの状態としては、前記麹菌の培養が可能な状態であれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、採取したそのままの状態、乾燥した状態、粉砕した状態、搾汁の状態、抽出物の状態などが挙げられる。これらの中でも、前記麹菌が作用しやすい点で、採取したそのままの状態、粉砕した状態、搾汁の状態、抽出物の状態が好ましく、採取したそのままの状態、粉砕した状態がより好ましい。

前記タチジャコウソウを乾燥した状態にする方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、天日で乾燥する方法、通常使用される乾燥機を用いて乾燥する方法などが挙げられる。

前記タチジャコウソウを前記粉砕した状態にする方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ミキサー、シュガーミル、パワーミル、ジェットミル、衝撃式粉砕機等により粉砕する方法などが挙げられる。

前記タチジャコウソウを前記搾汁の状態にする方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、圧搾などが挙げられる。

前記タチジャコウソウを前記抽出物の状態にする方法としては、特に制限はなく、植物の抽出に一般に用いられる方法を、目的に応じて適宜選択することができる。

前記発酵原料として使用する前記タチジャコウソウは、前記麹菌の接種前に滅菌されることが好ましい。前記タチジャコウソウを滅菌する手段としては、特に制限はなく、公知の方法の中から適宜選択することができる。

－麹菌－
前記タチジャコウソウを発酵させる前記麹菌としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、前記＜＜ヨモギ属植物発酵液＞＞で記載したものなどが挙げられる。これらは、１種単独で使用してもよく、２種以上を併用してもよい。これらの中でも、前記麹菌としては、アスペルギルス オリゼー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）が、抗老化作用及び抗酸化作用の少なくともいずれかの作用に優れる点で好ましい。
前記麹菌の入手方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、自然界から採取してもよいし、市販品を用いてもよい。また、前記麹菌として、米などを原料とした種麹を使用してもよく、後述するタチジャコウソウ種麹を使用してもよく、培地（寒天培地、液体培地など）で培養した麹菌を使用してもよい。これらの中でも、抗老化作用及び抗酸化作用の少なくともいずれかの作用に優れる点で、前記タチジャコウソウ種麹を用いることが好ましい。

前記発酵原料として使用する前記タチジャコウソウへの、前記麹菌の接種量としては、前記タチジャコウソウを発酵することができる量である限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記発酵原料が液体の状態である場合には、１×１０^３個／ｍＬ～１×１０^８個／ｍＬが好ましく、前記発酵原料が固体の状態である場合には、１×１０^３個／ｇ～１×１０^８個／ｇが好ましい。

前記タチジャコウソウに前記麹菌を接種する際、水を添加することが好ましい。前記水の添加量としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記タチジャコウソウ１００質量部に対して、５００質量部～５，０００質量部添加することが好ましく、１，０００質量部～４，０００質量部添加することがより好ましく、１，５００質量部～３，０００質量部添加することが特に好ましい。

前記発酵（培養）の温度としては、前記麹菌による発酵ができる温度の範囲内であれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、２０℃～４０℃が好ましく、２５℃～３５℃がより好ましい。前記発酵の温度が、２０℃未満であると、前記タチジャコウソウを十分に発酵させることができず、抗老化作用及び抗酸化作用の少なくともいずれかの作用が不十分となることがある。

前記発酵（培養）の時間としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、１０時間～４０時間が好ましく、２０時間～３０時間がより好ましい。前記発酵の時間が、１０時間未満であると、前記タチジャコウソウを十分に発酵させることができず、抗老化作用及び抗酸化作用の少なくともいずれかの作用が不十分となることがある。

前記発酵（培養）を停止する方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、加熱する方法などが挙げられる。
前記発酵を停止するための加熱温度としては、前記麹菌が生育できない温度であれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、５０℃以上が好ましく、７０℃以上がより好ましく、１００℃～１３０℃が特に好ましい。前記加熱温度が、５０℃未満であると、前記発酵を停止できないことがあり、１３０℃を超えると、抗老化作用及び抗酸化作用の少なくともいずれかの作用が不十分となることがある。
前記発酵を停止するための加熱時間としては、前記麹菌が生育できない状態にすることができれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、５分間以上が好ましく、１０分間～２０分間がより好ましい。前記加熱時間が、５分間未満であると、前記発酵を停止できないことがあり、２０分間を超えると、抗老化作用及び抗酸化作用の少なくともいずれかの作用が不十分となることがある。

なお、前記発酵を停止した後の前記タチジャコウソウ発酵液は、冷却されることが好ましい。冷却する方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、常温、冷蔵庫などに静置する方法などが挙げられる。

前記タチジャコウソウの前記麹菌による発酵の回数としては、前記発酵を行う回数としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、１回であってもよく、複数回であってもよい。

前記発酵を複数回行う場合、前記麹菌は、初回のみ接種してもよく、数回のみ接種してもよく、全ての回で接種してもよいが、初回のみに接種することが好ましい。
前記発酵を複数回行う場合、発酵温度及び発酵時間は、それぞれ異なっていてもよく、同じであってもよい。

－－タチジャコウソウ種麹－－
前記タチジャコウソウ種麹は、前記タチジャコウソウを種麹原料として使用し、該種麹原料に麹菌を接種して、該タチジャコウソウに十分な量の胞子を着生させたものである。これを前記発酵において使用することで、肌なじみに優れたタチジャコウソウ発酵液をより効率よく容易に得ることができる点で有利である。

前記種麹原料として使用する前記タチジャコウソウは、前記－タチジャコウソウ－において記載したものと同様のものを使用することができ、前記タチジャコウソウの使用部位、大きさ、状態などの態様についても同様である。

前記タチジャコウソウ種麹の作製において使用する前記麹菌としては、前記－麹菌－において記載したものと同様のものを使用することができる。

前記種麹原料として使用する前記タチジャコウソウへの、前記麹菌の接種量としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記タチジャコウソウ１００質量部に対して、滅菌水に懸濁した麹菌（１×１０^３個／ｍＬ～１×１０^８個／ｍＬ）を５質量部～１００質量部接種することが好ましく、１０質量部～５０質量部接種することがより好ましく、２０質量部～３０質量部接種することが特に好ましい。前記タチジャコウソウ１００質量部に対する前記麹菌の接種量が、５質量部未満であると、前記タチジャコウソウに十分な量の胞子を着生できないことがあり、１００質量部を超えると、水分過多で異常繁殖することがある。

前記種麹原料として使用する前記タチジャコウソウに前記麹菌を接種する際、水を添加することが好ましい。前記水の添加量としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記タチジャコウソウ１００質量部に対して１０質量部～２５０質量部添加することが好ましく、２０質量部～２００質量部添加することがより好ましく、３０質量部～１５０質量部添加することが特に好ましい。前記タチジャコウソウ１００質量部に対する前記水の添加量が、１０質量部未満であると、前記タチジャコウソウに十分な量の胞子を着生できないことがある。

前記培養の温度としては、前記麹菌が生育できる温度の範囲内であれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、２０℃～４０℃が好ましく、２５℃～３５℃がより好ましい。前記培養の温度が、２０℃未満であると、前記タチジャコウソウに十分な量の胞子を着生できないことがある。なお、５０℃を超えると、前記麹菌が増殖できないことがある。

前記培養の時間としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、８０時間～２１０時間が好ましく、１００時間～１９０時間がより好ましく、１２０時間～１７０時間が特に好ましい。前記培養の時間が、８０時間未満であると、前記タチジャコウソウに十分な量の胞子を着生できないことがあり、２１０時間を超えると、胞子の発芽率が落ちることがある。

前記タチジャコウソウ発酵液は、前記麹菌の菌体を含有したものであってもよく、前記麹菌の菌体を除去したものであってもよいが、前記麹菌の菌体を除去したものであることが好ましい。

前記タチジャコウソウ発酵液の状態としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、前記タチジャコウソウ発酵液そのものであってもよく、前記タチジャコウソウ発酵液の精製物、前記タチジャコウソウ発酵液の濃縮物、前記タチジャコウソウ発酵液の希釈物などであってもよい。また、前記タチジャコウソウ発酵液は、該タチジャコウソウ発酵液の乾燥物を再度、水や親水性溶媒等の溶媒に混合又は溶解させたものであってもよい。

前記タチジャコウソウ発酵液の精製物としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、前記タチジャコウソウ発酵液中の固形分（例えば、前記タチジャコウソウの植物体、麹菌の菌体、オリなど）が除去された物などが挙げられる。
前記除去の手段としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ろ過などが挙げられる。
前記ろ過の方法としては、特に制限はなく、公知の方法の中から、目的に応じて適宜選択することができる。

前記タチジャコウソウ発酵液の希釈物及び前記タチジャコウソウ発酵液の濃縮物としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、タチジャコウソウ発酵液が所望の濃度に調製された物などが挙げられる。
前記希釈の手段としては、特に制限はなく、公知の方法の中から、目的に応じて適宜選択することができる。
前記濃縮の手段としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、減圧濃縮などが挙げられる。

前記タチジャコウソウ発酵液の乾燥物としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、タチジャコウソウ発酵液が乾燥された物などが挙げられる。
前記乾燥の手段としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、凍結乾燥などが挙げられる。

前記タチジャコウソウ発酵液は、タチジャコウソウの麹菌による発酵液である限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、肌なじみがよい点で、接触角が８７°以下であるタチジャコウソウ発酵液が好ましく、接触角が８１°以下であるタチジャコウソウ発酵液がより好ましい。

＜＜コウスイハッカ発酵液＞＞
前記コウスイハッカ発酵液は、コウスイハッカの麹菌による発酵液である。

－コウスイハッカ－
前記発酵原料として使用するコウスイハッカ（Ｍｅｌｉｓｓａ ｏｆｆｉｃｉｎａｌｉｓ Ｌｉｎｎｅ）は、シソ科（Ｌａｂｉａｔａｅ）コウスイハッカ（Ｍｅｌｉｓｓａ）属に属する多年生草本である。ハーブの一種であり、古代より食用や薬用の原料として利用されている。別名として、レモンバーム、セイヨウヤマハッカなどがある。原産地は、南ヨーロッパであるが、日本国内においても自生又は栽培されており、これらの地域から容易に入手可能である。
前記コウスイハッカの入手方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、自然界から採取してもよいし、市販品を用いてもよい。

前記発酵原料として使用する前記コウスイハッカの使用部位としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、花、蕾、果実、果皮、種子、種皮、茎、葉、枝、枝葉等の地上部；根、根茎等の地下部などが挙げられる。これらは、１種単独で使用してもよく、２種以上を併用してもよい。これらの中でも、前記コウスイハッカの使用部位としては、地上部が好ましい。

前記発酵原料として使用する前記コウスイハッカの大きさとしては、前記麹菌の培養が可能な大きさであれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、採取したそのままの大きさ、切断した所望の大きさ、微粉（パウダー）化された大きさなどが挙げられる。

前記発酵原料として使用する前記コウスイハッカの状態としては、前記麹菌の培養が可能な状態であれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、採取したそのままの状態、乾燥した状態、粉砕した状態、搾汁の状態、抽出物の状態などが挙げられる。これらの中でも、前記麹菌が作用しやすい点で、採取したそのままの状態、粉砕した状態、搾汁の状態、抽出物の状態が好ましく、採取したそのままの状態、粉砕した状態がより好ましい。

前記コウスイハッカを乾燥した状態にする方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、天日で乾燥する方法、通常使用される乾燥機を用いて乾燥する方法などが挙げられる。

前記コウスイハッカを前記粉砕した状態にする方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ミキサー、シュガーミル、パワーミル、ジェットミル、衝撃式粉砕機等により粉砕する方法などが挙げられる。

前記コウスイハッカを前記搾汁の状態にする方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、圧搾などが挙げられる。

前記コウスイハッカを前記抽出物の状態にする方法としては、特に制限はなく、植物の抽出に一般に用いられる方法を、目的に応じて適宜選択することができる。

前記発酵原料として使用する前記コウスイハッカは、前記麹菌の接種前に滅菌されることが好ましい。前記コウスイハッカを滅菌する手段としては、特に制限はなく、公知の方法の中から適宜選択することができる。

－麹菌－
前記コウスイハッカを発酵させる前記麹菌としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、前記＜＜ヨモギ属植物発酵液＞＞で記載したものなどが挙げられる。これらは、１種単独で使用してもよく、２種以上を併用してもよい。これらの中でも、前記麹菌としては、アスペルギルス オリゼー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）が、抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用に優れる点で好ましい。
前記麹菌の入手方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、自然界から採取してもよいし、市販品を用いてもよい。また、前記麹菌として、米などを原料とした種麹を使用してもよく、後述するコウスイハッカ種麹を使用してもよく、培地（寒天培地、液体培地など）で培養した麹菌を使用してもよい。これらの中でも、抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用に優れる点で、前記コウスイハッカ種麹を用いることが好ましい。

前記発酵原料として使用する前記コウスイハッカへの、前記麹菌の接種量としては、前記コウスイハッカを発酵することができる量である限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記発酵原料が液体の状態である場合には、１×１０^３個／ｍＬ～１×１０^８個／ｍＬが好ましく、前記発酵原料が固体の状態である場合には、１×１０^３個／ｇ～１×１０^８個／ｇが好ましい。

前記コウスイハッカに前記麹菌を接種する際、水を添加することが好ましい。前記水の添加量としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記コウスイハッカ１００質量部に対して、５００質量部～５，０００質量部添加することが好ましく、１，０００質量部～４，０００質量部添加することがより好ましく、１，５００質量部～３，０００質量部添加することが特に好ましい。

前記発酵（培養）の温度としては、前記麹菌による発酵ができる温度の範囲内であれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、２０℃～４０℃が好ましく、２５℃～３５℃がより好ましい。前記発酵の温度が、２０℃未満であると、前記コウスイハッカを十分に発酵させることができず、抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用が不十分となることがある。

前記発酵（培養）の時間としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、１０時間～４０時間が好ましく、２０時間～３０時間がより好ましい。前記発酵の時間が、１０時間未満であると、前記コウスイハッカを十分に発酵させることができず、抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用が不十分となることがある。

前記発酵（培養）を停止する方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、加熱する方法などが挙げられる。
前記発酵を停止するための加熱温度としては、前記麹菌が生育できない温度であれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、５０℃以上が好ましく、７０℃以上がより好ましく、１００℃～１３０℃が特に好ましい。前記加熱温度が、５０℃未満であると、前記発酵を停止できないことがあり、１３０℃を超えると、抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用が不十分となることがある。
前記発酵を停止するための加熱時間としては、前記麹菌が生育できない状態にすることができれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、５分間以上が好ましく、１０分間～２０分間がより好ましい。前記加熱時間が、５分間未満であると、前記発酵を停止できないことがあり、２０分間を超えると、抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用が不十分となることがある。

なお、前記発酵を停止した後の前記コウスイハッカ発酵液は、冷却されることが好ましい。冷却する方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、常温、冷蔵庫などに静置する方法などが挙げられる。

前記コウスイハッカの前記麹菌による発酵の回数としては、前記発酵を行う回数としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、１回であってもよく、複数回であってもよい。

前記発酵を複数回行う場合、前記麹菌は、初回のみ接種してもよく、数回のみ接種してもよく、全ての回で接種してもよいが、初回のみに接種することが好ましい。
前記発酵を複数回行う場合、発酵温度及び発酵時間は、それぞれ異なっていてもよく、同じであってもよい。

－－コウスイハッカ種麹－－
前記コウスイハッカ種麹は、前記コウスイハッカを種麹原料として使用し、該種麹原料に麹菌を接種して、該コウスイハッカに十分な量の胞子を着生させたものである。これを前記発酵において使用することで、肌なじみに優れたコウスイハッカ発酵液をより効率よく容易に得ることができる点で有利である。

前記種麹原料として使用する前記コウスイハッカは、前記－コウスイハッカ－において記載したものと同様のものを使用することができ、前記コウスイハッカの使用部位、大きさ、状態などの態様についても同様である。

前記コウスイハッカ種麹の作製において使用する前記麹菌としては、前記－麹菌－において記載したものと同様のものを使用することができる。

前記種麹原料として使用する前記コウスイハッカへの、前記麹菌の接種量としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記コウスイハッカ１００質量部に対して、滅菌水に懸濁した麹菌（１×１０^３個／ｍＬ～１×１０^８個／ｍＬ）を５質量部～１００質量部接種することが好ましく、１０質量部～５０質量部接種することがより好ましく、２０質量部～３０質量部接種することが特に好ましい。前記コウスイハッカ１００質量部に対する前記麹菌の接種量が、５質量部未満であると、前記コウスイハッカに十分な量の胞子を着生できないことがあり、１００質量部を超えると、水分過多で異常繁殖することがある。

前記種麹原料として使用する前記コウスイハッカに前記麹菌を接種する際、水を添加することが好ましい。前記水の添加量としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記コウスイハッカ１００質量部に対して、１０質量部～２５０質量部添加することが好ましく、２０質量部～２００質量部添加することがより好ましく、３０質量部～１５０質量部添加することが特に好ましい。前記コウスイハッカ１００質量部に対する前記水の添加量が、１０質量部未満であると、前記コウスイハッカに十分な量の胞子を着生できないことがある。

前記培養の温度としては、前記麹菌が生育できる温度の範囲内であれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、２０℃～４０℃が好ましく、２５℃～３５℃がより好ましい。前記培養の温度が、２０℃未満であると、前記コウスイハッカに十分な量の胞子を着生できないことがある。なお、５０℃を超えると、前記麹菌が増殖できないことがある。

前記培養の時間としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、８０時間～２１０時間が好ましく、１００時間～１９０時間がより好ましく、１２０時間～１７０時間が特に好ましい。前記培養の時間が、８０時間未満であると、前記コウスイハッカに十分な量の胞子を着生できないことがあり、２１０時間を超えると、胞子の発芽率が落ちることがある。

前記コウスイハッカ発酵液は、前記麹菌の菌体を含有したものであってもよく、前記麹菌の菌体を除去したものであってもよいが、前記麹菌の菌体を除去したものであることが好ましい。

前記コウスイハッカ発酵液の状態としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、前記コウスイハッカ発酵液そのものであってもよく、前記コウスイハッカ発酵液の精製物、前記コウスイハッカ発酵液の濃縮物、前記コウスイハッカ発酵液の希釈物などであってもよい。また、前記コウスイハッカ発酵液は、該コウスイハッカ発酵液の乾燥物を再度、水や親水性溶媒等の溶媒に混合又は溶解させたものであってもよい。

前記コウスイハッカ発酵液の精製物としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、前記コウスイハッカ発酵液中の固形分（例えば、前記コウスイハッカの植物体、麹菌の菌体、オリなど）が除去された物などが挙げられる。
前記除去の手段としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ろ過などが挙げられる。
前記ろ過の方法としては、特に制限はなく、公知の方法の中から、目的に応じて適宜選択することができる。

前記コウスイハッカ発酵液の希釈物及び前記コウスイハッカ発酵液の濃縮物としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、コウスイハッカ発酵液が所望の濃度に調製された物などが挙げられる。
前記希釈の手段としては、特に制限はなく、公知の方法の中から、目的に応じて適宜選択することができる。
前記濃縮の手段としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、減圧濃縮などが挙げられる。

前記コウスイハッカ発酵液の乾燥物としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、コウスイハッカ発酵液が乾燥された物などが挙げられる。
前記乾燥の手段としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、凍結乾燥などが挙げられる。

前記コウスイハッカ発酵液は、コウスイハッカの麹菌による発酵液である限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、肌なじみがよい点で、接触角が８５°以下であるコウスイハッカ発酵液が好ましく、接触角が７９°以下であるコウスイハッカ発酵液がより好ましい。

＜＜ヤグルマギク発酵液＞＞
前記ヤグルマギク発酵液は、ヤグルマギクの麹菌による発酵液である。

－ヤグルマギク－
前記発酵原料として使用するヤグルマギク（Ｃｅｎｔａｕｒｅａ ｃｙａｎｕｓ Ｌｉｎｎｅ）は、キク科（Ｃｏｍｐｏｓｉｔａｅ）ヤグルマギク属（Ｃｅｎｔａｕｒｅａ）に属する一年生草本であり、古代より食用や薬用の原料として利用されている。別名として、ヤグルマソウ、ケンタウレア、セントーレアなどがある。原産地はヨーロッパであるが、日本国内においても自生又は栽培されており、これらの地域から容易に入手可能である。
前記ヤグルマギクの入手方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、自然界から採取してもよいし、市販品を用いてもよい。

前記発酵原料として使用する前記ヤグルマギクの使用部位としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、花、蕾、果実、果皮、種子、種皮、茎、葉、枝、枝葉等の地上部；根、根茎等の地下部などが挙げられる。これらは、１種単独で使用してもよく、２種以上を併用してもよい。これらの中でも、前記ヤグルマギクの使用部位としては、地上部が好ましい。

前記発酵原料として使用する前記ヤグルマギクの大きさとしては、前記麹菌の培養が可能な大きさであれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、採取したそのままの大きさ、切断した所望の大きさ、微粉（パウダー）化された大きさなどが挙げられる。

前記発酵原料として使用する前記ヤグルマギクの状態としては、前記麹菌の培養が可能な状態であれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、採取したそのままの状態、乾燥した状態、粉砕した状態、搾汁の状態、抽出物の状態などが挙げられる。これらの中でも、前記麹菌が作用しやすい点で、採取したそのままの状態、粉砕した状態、搾汁の状態、抽出物の状態が好ましく、採取したそのままの状態、粉砕した状態がより好ましい。

前記ヤグルマギクを乾燥した状態にする方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、天日で乾燥する方法、通常使用される乾燥機を用いて乾燥する方法などが挙げられる。

前記ヤグルマギクを前記粉砕した状態にする方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ミキサー、シュガーミル、パワーミル、ジェットミル、衝撃式粉砕機等により粉砕する方法などが挙げられる。

前記ヤグルマギクを前記搾汁の状態にする方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、圧搾などが挙げられる。

前記ヤグルマギクを前記抽出物の状態にする方法としては、特に制限はなく、植物の抽出に一般に用いられる方法を、目的に応じて適宜選択することができる。

前記発酵原料として使用する前記ヤグルマギクは、前記麹菌の接種前に滅菌されることが好ましい。前記ヤグルマギクを滅菌する手段としては、特に制限はなく、公知の方法の中から適宜選択することができる。

－麹菌－
前記ヤグルマギクを発酵させる前記麹菌としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、前記＜＜ヨモギ属植物発酵液＞＞で記載したものなどが挙げられる。これらは、１種単独で使用してもよく、２種以上を併用してもよい。これらの中でも、前記麹菌としては、アスペルギルス オリゼー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）が、抗老化作用、抗酸化作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用に優れる点で好ましい。
前記麹菌の入手方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、自然界から採取してもよいし、市販品を用いてもよい。また、前記麹菌として、米などを原料とした種麹を使用してもよく、後述するヤグルマギク種麹を使用してもよく、培地（寒天培地、液体培地など）で培養した麹菌を使用してもよい。これらの中でも、抗老化作用、抗酸化作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用に優れる点で、前記ヤグルマギク種麹を用いることが好ましい。

前記発酵原料として使用する前記ヤグルマギクへの、前記麹菌の接種量としては、前記ヤグルマギクを発酵することができる量である限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記発酵原料が液体の状態である場合には、１×１０^３個／ｍＬ～１×１０^８個／ｍＬが好ましく、前記発酵原料が固体の状態である場合には、１×１０^３個／ｇ～１×１０^８個／ｇが好ましい。

前記ヤグルマギクに前記麹菌を接種する際、水を添加することが好ましい。前記水の添加量としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記ヤグルマギク１００質量部に対して、５００質量部～５，０００質量部添加することが好ましく、１，０００質量部～４，０００質量部添加することがより好ましく、１，５００質量部～３，０００質量部添加することが特に好ましい。

前記発酵（培養）の温度としては、前記麹菌による発酵ができる温度の範囲内であれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、２０℃～４０℃が好ましく、２５℃～３５℃がより好ましい。前記発酵の温度が、２０℃未満であると、前記ヤグルマギクを十分に発酵させることができず、抗老化作用、抗酸化作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用が不十分となることがある。

前記発酵（培養）の時間としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、１０時間～４０時間が好ましく、２０時間～３０時間がより好ましい。前記発酵の時間が、１０時間未満であると、前記ヤグルマギクを十分に発酵させることができず、抗老化作用、抗酸化作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用が不十分となることがある。

前記発酵（培養）を停止する方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、加熱する方法などが挙げられる。
前記発酵を停止するための加熱温度としては、前記麹菌が生育できない温度であれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、５０℃以上が好ましく、７０℃以上がより好ましく、１００℃～１３０℃が特に好ましい。前記加熱温度が、５０℃未満であると、前記発酵を停止できないことがあり、１３０℃を超えると、抗老化作用、抗酸化作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用が不十分となることがある。
前記発酵を停止するための加熱時間としては、前記麹菌が生育できない状態にすることができれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、５分間以上が好ましく、１０分間～２０分間がより好ましい。前記加熱時間が、５分間未満であると、前記発酵を停止できないことがあり、２０分間を超えると、抗老化作用、抗酸化作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用が不十分となることがある。

なお、前記発酵を停止した後の前記ヤグルマギク発酵液は、冷却されることが好ましい。冷却する方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、常温、冷蔵庫などに静置する方法などが挙げられる。

前記ヤグルマギクの前記麹菌による発酵の回数としては、前記発酵を行う回数としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、１回であってもよく、複数回であってもよい。

前記発酵を複数回行う場合、前記麹菌は、初回のみ接種してもよく、数回のみ接種してもよく、全ての回で接種してもよいが、初回のみに接種することが好ましい。
前記発酵を複数回行う場合、発酵温度及び発酵時間は、それぞれ異なっていてもよく、同じであってもよい。

－－ヤグルマギク種麹－－
前記ヤグルマギク種麹は、前記ヤグルマギクを種麹原料として使用し、該種麹原料に麹菌を接種して、該ヤグルマギクに十分な量の胞子を着生させたものである。これを前記発酵において使用することで、肌なじみに優れたヤグルマギク発酵液をより効率よく容易に得ることができる点で有利である。

前記種麹原料として使用する前記ヤグルマギクは、前記－ヤグルマギク－において記載したものと同様のものを使用することができ、前記ヤグルマギクの使用部位、大きさ、状態などの態様についても同様である。

前記ヤグルマギク種麹の作製において使用する前記麹菌としては、前記－麹菌－において記載したものと同様のものを使用することができる。

前記種麹原料として使用する前記ヤグルマギクへの、前記麹菌の接種量としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記ヤグルマギク１００質量部に対して、滅菌水に懸濁した麹菌（１×１０^３個／ｍＬ～１×１０^８個／ｍＬ）を５質量部～１００質量部接種することが好ましく、１０質量部～５０質量部接種することがより好ましく、２０質量部～３０質量部接種することが特に好ましい。前記ヤグルマギク１００質量部に対する前記麹菌の接種量が、５質量部未満であると、前記ヤグルマギクに十分な量の胞子を着生できないことがあり、１００質量部を超えると、水分過多で異常繁殖することがある。

前記種麹原料として使用する前記ヤグルマギクに前記麹菌を接種する際、水を添加することが好ましい。前記水の添加量としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記ヤグルマギク１００質量部に対して、１０質量部～２５０質量部添加することが好ましく、２０質量部～２００質量部添加することがより好ましく、３０質量部～１５０質量部添加することが特に好ましい。前記ヤグルマギク１００質量部に対する前記水の添加量が、１０質量部未満であると、前記ヤグルマギクに十分な量の胞子を着生できないことがある。

前記培養の温度としては、前記麹菌が生育できる温度の範囲内であれば、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、２０℃～４０℃が好ましく、２５℃～３５℃がより好ましい。前記培養の温度が、２０℃未満であると、前記ヤグルマギクに十分な量の胞子を着生できないことがある。なお、５０℃を超えると、前記麹菌が増殖できないことがある。

前記培養の時間としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、８０時間～２１０時間が好ましく、１００時間～１９０時間がより好ましく、１２０時間～１７０時間が特に好ましい。前記培養の時間が、８０時間未満であると、前記ヤグルマギクに十分な量の胞子を着生できないことがあり、２１０時間を超えると、胞子の発芽率が落ちることがある。

前記ヤグルマギク発酵液は、前記麹菌の菌体を含有したものであってもよく、前記麹菌の菌体を除去したものであってもよいが、前記麹菌の菌体を除去したものであることが好ましい。

前記ヤグルマギク発酵液の状態としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、前記ヤグルマギク発酵液そのものであってもよく、前記ヤグルマギク発酵液の精製物、前記ヤグルマギク発酵液の濃縮物、前記ヤグルマギク発酵液の希釈物などであってもよい。また、前記ヤグルマギク発酵液は、該ヤグルマギク発酵液の乾燥物を再度、水や親水性溶媒等の溶媒に混合又は溶解させたものであってもよい。

前記ヤグルマギク発酵液の精製物としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、前記ヤグルマギク発酵液中の固形分（例えば、前記ヤグルマギクの植物体、麹菌の菌体、オリなど）が除去された物などが挙げられる。
前記除去の手段としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ろ過などが挙げられる。
前記ろ過の方法としては、特に制限はなく、公知の方法の中から、目的に応じて適宜選択することができる。

前記ヤグルマギク発酵液の希釈物及び前記ヤグルマギク発酵液の濃縮物としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ヤグルマギク発酵液が所望の濃度に調製された物などが挙げられる。
前記希釈の手段としては、特に制限はなく、公知の方法の中から、目的に応じて適宜選択することができる。
前記濃縮の手段としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、減圧濃縮などが挙げられる。

前記ヤグルマギク発酵液の乾燥物としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ヤグルマギク発酵液が乾燥された物などが挙げられる。
前記乾燥の手段としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、凍結乾燥などが挙げられる。

前記ヤグルマギク発酵液は、ヤグルマギクの麹菌による発酵液である限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、肌なじみがよい点で、接触角が８５°以下であるヤグルマギク発酵液が好ましく、接触角が７９°以下であるヤグルマギク発酵液がより好ましい。

＜＜その他の成分＞＞
前記抗老化剤、抗酸化剤、抗炎症剤、及び美白剤における前記その他の成分としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、賦形剤、防湿剤、防腐剤、強化剤、増粘剤、乳化剤、酸化防止剤、甘味料、酸味料、調味料、着色料、香料、美白剤、保湿剤、油性成分、紫外線吸収剤、界面活性剤、増粘剤、アルコール類、粉末成分、色剤、水性成分、水、皮膚栄養剤などが挙げられる。これらは、１種単独で使用してもよく、２種以上を併用してもよい。
前記その他の成分の含有量としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。

－用途－
本発明の抗老化剤、抗酸化剤、抗炎症剤、及び美白剤は、優れた抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用を有するため、例えば、医薬品、医薬部外品、化粧品、飲食品などとして好適に用いることができ、その配合量、用法、及び剤型としては、その使用目的に応じて適宜選択することができる。

前記配合量としては、前記発酵液の生理活性等によって適宜調整することができる。また、前記抗老化剤、前記抗酸化剤、前記抗炎症剤、及び前記美白剤は、前記発酵液そのものであってもよい。

前記用法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、経口用、非経口用、外用などの用法が挙げられる。これらの中でも外用が好ましい。

前記剤型としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、錠剤、粉剤、カプセル剤、顆粒剤、エキス剤、及びシロップ剤等の経口投与剤；注射剤、点滴剤、及び坐剤等の非経口投与剤；化粧水、乳液、クリーム、軟膏、美容液、ローション、パック、ゼリー、リップクリーム、口紅、ファンデーション、入浴剤、石鹸、ボディシャンプー、アストリンゼント、ヘアトニック、ヘアクリーム、ヘアリキッド、ポマード、シャンプー、リンス等の外用剤などが挙げられる。

また、本発明の抗老化剤、抗酸化剤、抗炎症剤、及び美白剤は、抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、又は美白作用の作用機構に関する研究の試薬としても用いることができる。

本発明の抗老化剤、抗酸化剤、抗炎症剤、及び美白剤は、ヒトに対して好適に適用されるものであるが、それぞれの作用効果が奏される限り、ヒト以外の動物（例えば、マウス、ラット、ハムスター、イヌ、ネコ、ウシ、ブタ、サルなど）に対して適用することもできる。

（化粧料）
本発明の化粧料は、本発明の抗老化剤、抗酸化剤、抗炎症剤、及び美白剤からなる群から選択される少なくとも１種を含有し、必要に応じて、更にその他の成分を含有する。

＜抗老化剤、抗酸化剤、抗炎症剤、美白剤＞
前記化粧料における前記抗老化剤、前記抗酸化剤、前記抗炎症剤、及び前記美白剤からなる群から選択される少なくとも１種の含有量としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができるが、前記化粧料の全体量に対して、５体積％以上が好ましく、２０体積％以上がより好ましい。前記抗老化剤、前記抗酸化剤、前記抗炎症剤、及び前記美白剤からなる群から選択される少なくとも１種の含有量が、５体積％未満であると、抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用が不十分となることがある。なお、前記抗老化剤、前記抗酸化剤、前記抗炎症剤、及び前記美白剤からなる群から選択される少なくとも１種の含有量は多い程好ましく、その上限としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。また、前記化粧料は、前記抗老化剤、前記抗酸化剤、前記抗炎症剤、及び前記美白剤からなる群から選択される少なくとも１種そのものであってもよい。

＜その他の成分＞
前記化粧料は、更に必要に応じて本発明の目的及び作用効果を損なわない範囲で、化粧料の製造に通常使用される各種主剤、助剤、その他の成分を添加することができる。
前記その他の成分としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、収斂剤、殺菌剤、抗菌剤、紫外線吸収剤、細胞賦活剤、油脂類、ロウ類、炭化水素類、脂肪酸類、アルコール類、エステル類、界面活性剤、香料などが挙げられる。これらは、１種単独で使用してもよく、２種以上を併用してもよい。これらの成分は、前記抗老化剤、前記抗酸化剤、前記抗炎症剤、及び前記美白剤からなる群から選択される少なくとも１種と併用した場合、相乗的に作用して、通常期待される以上の優れた作用効果をもたらすことがある。
前記化粧料における前記その他の成分の含有量としては、本発明の効果を損なわない限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。

＜用途＞
前記化粧料の用途としては、特に制限はなく、一般的な化粧料の中から適宜選択することができ、例えば、化粧水、乳液、クリーム、軟膏、美容液、ローション、パック、ゼリー、リップクリーム、口紅、ファンデーション、入浴剤、石鹸、ボディシャンプー等の皮膚化粧料；アストリンゼント、ヘアトニック、ヘアクリーム、ヘアリキッド、ポマード、シャンプー、リンス等の頭皮頭髪化粧料などが挙げられる。

前記化粧料は、前記抗老化剤、前記抗酸化剤、前記抗炎症剤、及び前記美白剤からなる群から選択される少なくとも１種を、その活性を妨げないように任意の化粧料に配合したものであってもよいし、前記抗老化剤、前記抗酸化剤、前記抗炎症剤、及び前記美白剤からなる群から選択される少なくとも１種を主成分とした化粧料であってもよい。また、前記化粧料は、前記抗老化剤、前記抗酸化剤、前記抗炎症剤、及び前記美白剤からなる群から選択される少なくとも１種そのものであってもよい。

本発明の化粧料は、ヒトに対して好適に適用されるものであるが、それぞれの作用効果が奏される限り、ヒト以外の動物（例えば、マウス、ラット、ハムスター、イヌ、ネコ、ウシ、ブタ、サルなど）に対して適用することもできる。

本発明の化粧料は、前記抗老化剤、前記抗酸化剤、前記抗炎症剤、及び前記美白剤からなる群から選択される少なくとも１種を含有するため、皮膚に使用した場合、優れた抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用を発揮する点で有用である。

以下に製造例及び試験例を挙げて本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらの試験例に何ら限定されるものではない。

＜製造例１：ヤマヨモギ発酵液１の調製＞
－種麹調製工程－
麹菌（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ、菌株名：ＡＯＫ１７１４、株式会社秋田今野商店製）を白金耳で取り、滅菌水５０ｍＬに懸濁して麹菌溶液を作製した。前記麹菌溶液の菌数を、トーマ血球計算盤（ＥＫＤＳ製）を用いて算定したところ、１．０×１０^５個／ｍＬであった。
次いで、０．５ｃｍ～５ｃｍに切断したヤマヨモギ（株式会社アルビオン製）１０ｇを三角フラスコに入れ、加圧滅菌し、ここに前記麹菌溶液を２ｍＬ接種し、３０℃で１６８時間静置培養した。培養終了後、４５℃で２４時間乾燥し、「ヤマヨモギ種麹」を得た。

－発酵工程－
粉砕機（シュガーミル）を用いてヤマヨモギ（株式会社アルビオン製）を粉砕し、２ｍｍのメッシュスクリーンを通過させ、ヤマヨモギ粉砕物を得た。このヤマヨモギ粉砕物５０ｇに水を１，０００ｍＬ添加し、混合した後、前記調製例１で得たヤマヨモギ種麹（菌数：約１．０×１０^６個／ｍＬ）を２０ｍＬ接種した。次いで、２５℃にて２２時間前培養した。得られた発酵液を、珪藻土を用いてろ過し、「ヤマヨモギ発酵液１」を得た。

＜製造例２：ヤマヨモギ発酵液２の調製＞
前記製造例１において、ヤマヨモギ種麹を、米を原料とした種麹（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ、白麹しらかみ、株式会社秋田今野商店製）（以下、「米種麹」と称することがある）に変更したこと以外は、前記製造例１と同様の方法で「ヤマヨモギ発酵液２」を得た。

＜比較製造例１：ヤマヨモギ抽出液の調製＞
粉砕機（シュガーミル）を用いてヤマヨモギ（株式会社アルビオン製）を粉砕し、２ｍｍのメッシュスクリーンを通過させ、ヤマヨモギ粉砕物を得た。このヤマヨモギ粉砕物５０ｇに水を１，０００ｍＬ添加し、混合した後、２５℃にて２２時間撹拌した。次いで、得られた撹拌物を、珪藻土を用いてろ過し、「ヤマヨモギ抽出液」を得た。

（試験例Ａ－１：接触角の測定）
製造例１で得られたヤマヨモギ発酵液１、製造例２で得られたヤマヨモギ発酵液２、及び比較製造例１で得られたヤマヨモギ抽出液を試験試料として、以下の方法で接触角を測定した。
具体的には、動的接触角・表面張力測定装置（ＦＴＡ１０００ Ｆａｌｃｏｎ、Ｆｉｒｓｔ Ｔｅｎ Ａｎｇｓｔｒｏｍｓ社製）を用いて、前記装置のサンプルステージ（アルミ製）に各試験試料をそれぞれ３μＬ滴下し、温度２２℃、相対湿度２０％の条件下で、液滴法にて測定を行った。１，０００ｍｓの接触角θ（°）をθ／２法で求めた。接触角の測定は３回行い、その平均値を求めた。結果を下記表１に示す。また、各試験試料の接触角の測定時の液滴の一例を図１Ａ～図１Ｃに示す。

比較製造例１で得られたヤマヨモギ抽出液に対して、製造例１で得られたヤマヨモギ発酵液１及び製造例２で得られたヤマヨモギ発酵液２は、いずれも接触角が小さく、８１°以下であり、肌なじみに優れるものであった。更に、製造例１で得られたヤマヨモギ発酵液１は、接触角が７８°以下であり、より肌なじみに優れるものであった。

（試験例１－１：マトリックスメタロプロテアーゼ－１（ＭＭＰ－１）活性阻害作用試験）
製造例１で得られたヤマヨモギ発酵液１、製造例２で得られたヤマヨモギ発酵液２、及び比較製造例１で得られたヤマヨモギ抽出液を被験試料として用い、Ｗｕｎｓｃｈ ａｎｄ Ｈｅｉｄｒｉｃｈ法を一部改変した下記の試験方法により、マトリックスメタロプロテアーゼ－１（ＭＭＰ－１）活性阻害作用を試験した。

蓋付試験管にて、各被験試料を２０ｍｍｏｌ／Ｌ塩化カルシウム含有０．１ｍｏｌ／Ｌ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．１）に溶解した。次いで、前記被験試料の溶解液５０μＬと、ＭＭＰ－１（ＣＯＬＬＡＧＥＮＡＳＥ Ｔｙｐｅ ＩＶ ｆｒｏｍ Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｈｉｓｔｏｌｙｔｉｃｕｍ、Ｓｉｇｍａ社製）溶液５０μＬと、Ｐｚ－ｐｅｐｔｉｄｅ（Ｐｚ－Ｐｒｏ－Ｌｅｕ－Ｇｌｙ－Ｐｒｏ－Ｄ－Ａｒｇ－ＯＨ、ＢＡＣＨＥＭ Ｆｅｉｎｃｈｅｍｉｋａｌｉｅｎ ＡＧ社製）溶液４００μＬとを混合し、３℃にて３０分間反応させた後、２５ｍｍｏｌ／Ｌクエン酸溶液１ｍＬを加え反応を停止した。なお、この際の前記被験試料の終濃度は、下記表２に示す濃度であった。次いで、酢酸エチル５ｍＬを加え、激しく振とうした。これを１，６００×ｇで１０分間遠心分離し、酢酸エチル層の波長３２０ｎｍにおける吸光度を測定した。

また、ブランクとして、ＭＭＰ－１溶液（酵素溶液）を、０．１ｍｏｌ／Ｌ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．１）に変更したこと以外は、上記同様の操作及び吸光度の測定を行った。

更に、コントロールとして、被験試料の溶解液を、被験試料を含まない２０ｍｍｏｌ／Ｌ塩化カルシウム含有０．１ｍｏｌ／Ｌ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．１）に変更したこと以外は、上記同様の操作及び吸光度の測定を行った。

得られた吸光度の測定値より、下記式１に基づきＭＭＰ－１活性阻害率を算出した。結果を下記表２に示す。
＜式１＞
ＭＭＰ－１活性阻害率（％）＝｛１－（Ｃ－Ｄ）／（Ａ－Ｂ）｝×１００
前記式１において、Ａ～Ｄは、それぞれ以下を表す。
Ａ：被験試料無添加、酵素添加での波長３２０ｎｍにおける吸光度
Ｂ：被験試料無添加、酵素無添加での波長３２０ｎｍにおける吸光度
Ｃ：被験試料添加、酵素添加での波長３２０ｎｍにおける吸光度
Ｄ：被験試料添加、酵素無添加での３２０ｎｍにおける吸光度

（試験例１－２：ヒアルロン酸合成酵素３（ＨＡＳ３）ｍＲＮＡ発現促進作用試験）
製造例１で得られたヤマヨモギ発酵液１、製造例２で得られたヤマヨモギ発酵液２、及び比較製造例１で得られたヤマヨモギ抽出液を被験試料として用い、下記の試験方法により、ヒアルロン酸合成酵素３（ＨＡＳ３）ｍＲＮＡ発現促進作用を試験した。

正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２、倉敷紡績株式会社製）に、終濃度が下記表３に示す濃度となるように、各被験試料を溶解し、被験試料添加培地を調製した。
正常ヒト新生児表皮角化細胞（Ｎｏｒｍａｌ Ｈｕｍａｎ Ｅｐｉｄｅｒｍａｌ Ｋｅｒａｔｉｎｏｃｙｔｅｓ；ＮＨＥＫ、倉敷紡績株式会社製）を、正常ヒト表皮角化細胞増殖用培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＧ２、倉敷紡績株式会社製）を用いて３７℃、５％ＣＯ_２の条件下でコンフルエントになるまで培養した後、トリプシン処理により細胞を回収した。これを正常ヒト表皮角化細胞増殖用培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＧ２）により１．５×１０^５細胞／ｍＬに調整した。
次いで、３５ｍｍシャーレに前記ＮＨＥＫ（１．５×１０^５細胞／ｍＬ）を２ｍＬ播種し、３７℃、５％ＣＯ_２条件下で一晩培養した。培養終了後、培地を正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２）に交換し、更に２４時間した。培養終了後、培地を前記被験試料添加培地２ｍＬに交換し、３７℃、５％ＣＯ_２の条件下で２４時間培養した。培養終了後、培養液を除去し、ＲＮＡ抽出用試薬（ＩＳＯＧＥＮ ＩＩ（カタログ番号：３１１－０７３６１）、株式会社ニッポンジーン製）にて総ＲＮＡを抽出し、それぞれのＲＮＡ量を分光光度計にて測定し、精製水を用いて２００ｎｇ／μＬとなるように総ＲＮＡを調製した。

また、コントロールとして、前記被験試料添加培地２ｍＬを、被験試料を含まない正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２） ２ｍＬに変更したこと以外は、上記同様の操作及び吸光度の測定を行い、上記同様の方法で２００ｎｇ／μＬとなるように総ＲＮＡを調製した。

前記各総ＲＮＡを鋳型とし、ヒアルロン酸合成酵素３（ＨＡＳ３）ｍＲＮＡ及び内部標準であるグリセルアルデヒド－３－リン酸デヒドロゲナーゼ（ＧＡＰＤＨ）ｍＲＮＡの発現量を測定した。ｍＲＮＡの検出は、リアルタイムＰＣＲ装置（Ｔｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ ＤＩｃｅ（登録商標） Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ Ｓｙｓｔｅｍ III、タカラバイオ株式会社製）、及びＳＹＢＲ（登録商標） ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ（登録商標） ＲＴ－ＰＣＲ Ｋｉｔ（Ｐｅｒｆｅｃｔ Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ（カタログ番号：ＲＲ０６３Ａ）、タカラバイオ株式会社製）を用いた２ステップＲＴ－ＰＣＲ反応により行った。
被験試料無添加及び被験試料添加のＨＡＳ３ ｍＲＮＡの発現量は、ＧＡＰＤＨ ｍＲＮＡの発現量で補正した。この補正値より、下記式２に基づきＨＡＳ３ ｍＲＮＡ発現促進率を算出した。結果を下記表３に示す。
＜式２＞
ＨＡＳ３ ｍＲＮＡ発現促進率（％）＝Ａ／Ｂ×１００
前記式２において、Ａ及びＢは、それぞれ以下を表す。
Ａ：被験試料添加時の補正値
Ｂ：被験試料無添加時の補正値

（試験例１－３：ＤＰＰＨラジカル消去作用試験）
製造例１で得られたヤマヨモギ発酵液１、製造例２で得られたヤマヨモギ発酵液２、及び比較製造例１で得られたヤマヨモギ抽出液を被験試料として用い、下記の試験方法により、ＤＰＰＨラジカル消去作用を試験した。

エタノール溶液（富士フィルム和光純薬株式会社製）に、各被験試料を溶解し、被験試料溶液を調製した。
１５０μｍｏｌ／Ｌ ＤＰＰＨ（ｄｉｐｈｅｎｙｌ－ｐ－ｐｉｃｒｙｌｈｙｄｒａｚｙｌ）エタノール溶液３ｍＬに、前記被験試料溶液３ｍＬを加え、直ちに容器を密栓して振り混ぜ、３０分間静置した後、波長５２０ｎｍの吸光度を測定した。なお、この際の前記被験試料の終濃度は、下記表４に示す濃度であった。

また、ブランクとして、ＤＰＰＨエタノール溶液を、ＤＰＰＨを含まないエタノール溶液に変更したこと以外は、上記同様の操作及び吸光度の測定を行った。

更に、コントロールとして、被験試料溶液を、被験試料を含まないエタノール溶液（富士フィルム和光純薬株式会社製）に変更したこと以外は、上記同様の操作及び吸光度の測定を行った。

得られた吸光度の測定値より、下記式３に基づきＤＰＰＨラジカル消去率を算出した。結果を下記表４に示す。
＜式３＞
ＤＰＰＨラジカル消去率（％）＝｛Ａ－（Ｂ－Ｃ）｝／Ａ×１００
前記式３において、Ａ～Ｃは、それぞれ以下を表す。
Ａ：被験試料無添加、ＤＰＰＨ添加での波長５２０ｎｍにおける吸光度
Ｂ：被験試料添加、ＤＰＰＨ添加での波長５２０ｎｍにおける吸光度
Ｃ：被験試料無添加、ＤＰＰＨ無添加の波長５２０ｎｍにおける吸光度

（試験例１－４：ヒアルロニダーゼ活性阻害作用試験）
製造例１で得られたヤマヨモギ発酵液１、製造例２で得られたヤマヨモギ発酵液２、及び比較製造例１で得られたヤマヨモギ抽出液を被験試料として用い、下記の試験方法により、ヒアルロニダーゼ活性阻害作用を試験した。

各被験試料を０．１ｍｏｌ／Ｌ酢酸緩衝液（ｐＨ ３．５）に溶解し、被験試料溶液を調製した。
前記被験試料溶液０．２ｍＬに、ヒアルロニダーゼ溶液（Ｔｙｐｅ ＩＶ－Ｓ（ｆｒｏｍ ｂｏｖｉｎｅ ｔｅｓｔｉｓ）、４００ ＮＦ ｕｎｉｔｓ／ｍＬ、ＳＩＧＭＡ社製）０．１ｍＬを加え、３７℃で２０分間反応した。次いで、活性化剤として２．５ｍｍｏｌ／Ｌ塩化カルシウム０．２ｍＬを加え、更に３７℃で２０分間反応した。これに０．８ｍｇ／ｍＬヒアルロン酸ナトリウム溶液（ｆｒｏｍ ｒｏｏｓｔｅｒ ｃｏｍｂ）（富士フィルム和光純薬株式会社製）０．５ｍＬを加え、３７℃で４０分間反応した。なお、この際の前記被験試料の終濃度は、下記表５に示す濃度であった。次いで、０．４ｍｏｌ／Ｌ水酸化ナトリウム０．２ｍＬを加えて反応を停止し、冷却した後、各反応溶液にホウ酸溶液０．２ｍＬを加え、３分間煮沸した。氷冷後、ｐ－ＤＡＢＡ試薬（ｐ－ジメチルアミノベンズアルデヒド１０ｇを１０Ｎ塩酸１２．５ｍＬと酢酸８７．５ｍＬの混合液に溶解し、酢酸で１０倍に希釈したもの）６ｍＬを加え、３７℃で２０分間反応した。次いで、波長５８５ｎｍにおける吸光度を測定した。

また、ブランクとして、ヒアルロニダーゼ溶液（酵素溶液）を、０．１ｍｏｌ／Ｌ酢酸緩衝液（ｐＨ ３．５）に変更したこと以外は、上記同様の操作及び吸光度の測定を行った。

更に、コントロールとして、被験試料溶液を、被験試料を含まない０．１ｍｏｌ／Ｌ酢酸緩衝液（ｐＨ３．５）に変更したこと以外は、上記同様の操作及び吸光度の測定を行った。

得られた吸光度の測定値より、下記式４に基づきヒアルロニダーゼ活性阻害率を算出した。結果を下記表５に示す。
＜式４＞
ヒアルロニダーゼ活性阻害率（％）＝｛１－（Ｃ－Ｄ）／（Ａ－Ｂ）｝×１００
前記式４において、Ａ～Ｄは、それぞれ以下を表す。
Ａ：被験試料無添加、酵素添加での波長５８５ｎｍにおける吸光度
Ｂ：被験試料無添加、酵素無添加での波長５８５ｎｍにおける吸光度
Ｃ：被験試料添加、酵素添加での５８５ｎｍにおける吸光度
Ｄ：被験試料添加、酵素無添加での波長５８５ｎｍにおける吸光度

（試験例１－５：チロシナーゼ活性阻害作用試験）
製造例１で得られたヤマヨモギ発酵液１、製造例２で得られたヤマヨモギ発酵液２、及び比較製造例１で得られたヤマヨモギ抽出液を被験試料として用い、下記の試験方法により、チロシナーゼ活性阻害作用を試験した。

各被験試料を２５％ＤＭＳＯ溶液に溶解し、被験試料溶液を調製した。
４８ｗｅｌｌプレートに、Ｍｃｌｌｖａｉｎｅ緩衝液（ｐＨ６．８）０．２ｍＬと、０．３ｍｇ／ｍＬチロシン溶液０．０６ｍＬと、前記被験試料溶液０．１８ｍＬとを加え、３７℃で１０分間静置した。これに、８００ユニット／ｍＬチロシナーゼ溶液（ＳＩＧＭＡ社製）０．０２ｍＬを加え、更に３７℃で１５分間反応させた。反応終了後、波長４７５ｎｍにおける吸光度を測定した。なお、この際の前記被験試料の終濃度は、下記表６に示す濃度であった。

また、ブランクとして、チロシナーゼ溶液（酵素溶液）を、Ｍｃｌｌｖａｉｎｅ緩衝液（ｐＨ６．８）に変更したこと以外は、上記同様の操作及び吸光度の測定を行った。

更に、コントロールとして、被験試料溶液を、被験試料を含まない２５％ＤＭＳＯ溶液に変更したこと以外は、上記同様の操作及び吸光度の測定を行った。

得られた吸光度の測定値より、下記式５に基づきチロシナーゼ活性阻害率を算出した。結果を下記表６に示す。
＜式５＞
チロシナーゼ活性阻害率（％）＝｛１－（Ｃ－Ｄ）／（Ａ－Ｂ）｝×１００
前記式５において、Ａ～Ｄは、それぞれ以下を表す。
Ａ：被験試料無添加、酵素添加での波長４７５ｎｍにおける吸光度
Ｂ：被験試料無添加、酵素無添加での波長４７５ｎｍにおける吸光度
Ｃ：被験試料添加、酵素添加での４７５ｎｍにおける吸光度
Ｄ：被験試料添加、酵素無添加での波長４７５ｎｍにおける吸光度

＜製造例３：カワラヨモギ発酵液１の調製＞
前記製造例１の種麹調製工程において、ヤマヨモギを、カワラヨモギ（Ａｒｔｅｍｉｓｉａ ｃａｐｉｌｌａｒｉｓ Ｔｈｕｎｂｅｒｇｉｉ）（株式会社アルビオン製）に変更したこと以外は、前記製造例１の種麹調製工程と同様の方法で「カワラヨモギ種麹」を調製した。
また、前記製造例１の発酵工程において、ヤマヨモギを、カワラヨモギ（Ａｒｔｅｍｉｓｉａ ｃａｐｉｌｌａｒｉｓ Ｔｈｕｎｂｅｒｇｉｉ）（株式会社アルビオン製）に変更したこと以外は、前記製造例１の発酵工程と同様の方法で「カワラヨモギ発酵液１」を得た。

＜製造例４：カワラヨモギ発酵液２の調製＞
前記製造例３において、カワラヨモギ種麹を、米種麹（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ、白麹しらかみ、株式会社秋田今野商店製）に変更したこと以外は、前記製造例３と同様の方法で「カワラヨモギ発酵液２」を得た。

＜比較製造例２：カワラヨモギ抽出液の調製＞
前記比較製造例１において、ヤマヨモギを、カワラヨモギ（Ａｒｔｅｍｉｓｉａ ｃａｐｉｌｌａｒｉｓ Ｔｈｕｎｂｅｒｇｉｉ）（株式会社アルビオン製）に変更したこと以外は、前記比較製造例１と同様の方法で「カワラヨモギ抽出液」を得た。

（試験例Ａ－２：接触角の測定）
前記試験例Ａ－１において、試験試料を、製造例３で得られたカワラヨモギ発酵液１、製造例２で得られたカワラヨモギ発酵液２、及び比較製造例２で得られたカワラヨモギ抽出液に変更したこと以外は、前記試験例Ａ－１と同様の方法で接触角を測定した。結果を下記表７に示す。また、各試験試料の接触角の測定時の液滴の一例を図２Ａ～図２Ｃに示す。

比較製造例２で得られたカワラヨモギ抽出液に対して、製造例３で得られたカワラヨモギ発酵液１及び製造例４で得られたカワラヨモギ発酵液２は、いずれも接触角が小さく、８１°以下であり、肌なじみに優れるものであった。更に、製造例３で得られたカワラヨモギ発酵液１は、接触角が７８°以下であり、より肌なじみに優れるものであった。

（試験例２－１：ヒアルロン酸合成酵素３（ＨＡＳ３）ｍＲＮＡ発現促進作用試験）
試験例１－２において、被験試料を、製造例３で得られたカワラヨモギ発酵液１、製造例４で得られたカワラヨモギ発酵液２、及び比較製造例２で得られたカワラヨモギ抽出液に変更し、被験試料の終濃度を下記表８に示す濃度に変更したこと以外は、試験例１－２と同様の方法でヒアルロン酸合成酵素３（ＨＡＳ３）ｍＲＮＡ発現促進作用を試験した。結果を下記表８に示す。

（試験例２－２：Ｉ型コラーゲン産生促進作用試験）
製造例３で得られたカワラヨモギ発酵液１、製造例４で得られたカワラヨモギ発酵液２、及び比較製造例２で得られたカワラヨモギ抽出液を被験試料として用い、下記の試験方法により、Ｉ型コラーゲン産生促進作用を試験した。

０．２５％ウシ胎児血清（Ｆｅｔａｌ ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ；ＦＢＳ、ｂｉｏｓｅｒａ社製）含有ダルベッコＭＥＭ、日水製薬株式会社製）に、終濃度が下記表９に示す濃度となるように、各被験試料を溶解し、被験試料添加培地を調製した。
正常ヒト線維芽細胞（ＮＢ１ＲＧＢ、ＲＩＫＥＮ ＢＲＣより購入）を、１０％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭを用いて３７℃、５％ＣＯ_２の条件下でコンフルエントになるまで培養した後、トリプシン処理により細胞を回収した。これを１０％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭにより１．６×１０^５細胞／ｍＬに調整した。
次いで、９６ｗｅｌｌマイクロプレートに前記ＮＢ１ＲＧＢ（１．６×１０^５細胞／ｍＬ）を、１ｗｅｌｌ当たり１００μＬずつ播種し、３７℃、５％ＣＯ_２の条件下で一晩培養した。培養終了後、培地を被験試料添加培地１００μＬに交換し、３７℃、５％ＣＯ_２の条件下で３日間培養した。培養終了後、各ｗｅｌｌの培地中のＩ型コラーゲン量をＥＬＩＳＡ法により測定した。

具体的には、培養上清９０μＬをＥＬＩＳＡプレートに移し換え、４℃、一晩でプレートに吸着させた後、溶液を捨て、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ－２０を含むリン酸生理緩衝液（ＰＢＳ－Ｔ）にて洗浄を行った。その後、１％ＦＢＳを含むリン酸生理緩衝液で、ブロッキング操作を行った。溶液を捨て、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ－２０を含むリン酸生理緩衝液（ＰＢＳ－Ｔ）にて、洗浄を行い、抗ヒトコラーゲンタイプＩ抗体（ウサギＩｇＧ、ケミコン社製）を反応させた。溶液を捨て、０．０５％Ｔｗｅｅｎ－２０を含むリン酸生理緩衝液（ＰＢＳ－Ｔ）にて、洗浄を行い、ＨＲＰ標識抗ウサギＩｇＧ抗体と反応させた後、同様の洗浄操作を行い、発色反応を行った。
Ｉ型コラーゲン産生促進率は、標準品を用いて上記ＥＬＩＳＡを行い、検量線を作成し、算出した。

また、コントロールとして、被験試料溶液を、被験試料を含まない０．２５％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭに変更したこと以外は、上記同様の操作及びＥＬＩＳＡ法による測定を行った。

得られた測定値より、下記式６に基づきＩ型コラーゲン産生促進率を算出した。結果を下記表９に示す。
＜式６＞
Ｉ型コラーゲン産生促進率（％）＝Ａ／Ｂ×１００
前記式６において、Ａ及びＢは、それぞれ以下を表す。
Ａ：被験試料添加時のＩ型コラーゲン量
Ｂ：被験試料無添加時のＩ型コラーゲン量

（試験例２－３：クローディン－１ ｍＲＮＡ発現促進作用試験）
製造例３で得られたカワラヨモギ発酵液１、製造例４で得られたカワラヨモギ発酵液２、及び比較製造例２で得られたカワラヨモギ抽出液を被験試料として用い、下記の試験方法により、クローディン－１ ｍＲＮＡ発現促進作用を試験した。

正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２、倉敷紡績株式会社製）に、終濃度が下記表１０に示す濃度となるように、各被験試料を溶解し、被験試料添加培地を調製した。
正常ヒト新生児表皮角化細胞（ＮＨＥＫ、倉敷紡績株式会社製）を、正常ヒト表皮角化細胞増殖用培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＧ２、倉敷紡績株式会社製）を用いて３７℃、５％ＣＯ_２の条件下でコンフルエントになるまで培養した後、トリプシン処理により細胞を回収した。これを正常ヒト表皮角化細胞増殖用培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＧ２）により１．５×１０^５細胞／ｍＬに調整した。
次いで、３５ｍｍシャーレに前記ＮＨＥＫ（１．５×１０^５細胞／ｍＬ）を２ｍＬ播種し、３７℃、５％ＣＯ_２条件下で一晩培養した。培養終了後、培地を正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２）に交換し、更に２４時間した。培養終了後、培地を前記被験試料添加培地２ｍＬに交換し、３７℃、５％ＣＯ_２の条件下で２４時間培養した。培養終了後、培養液を除去し、ＲＮＡ抽出用試薬（ＩＳＯＧＥＮ ＩＩ（カタログ番号：３１１－０７３６１）、株式会社ニッポンジーン製）にて総ＲＮＡを抽出し、それぞれのＲＮＡ量を分光光度計にて測定し、精製水を用いて２００ｎｇ／μＬとなるように総ＲＮＡを調製した。

また、コントロールとして、前記被験試料添加培地２ｍＬを、被験試料を含まない正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２） ２ｍＬに変更したこと以外は、上記同様の操作及び吸光度の測定を行い、上記同様の方法で２００ｎｇ／μＬとなるように総ＲＮＡを調製した。

前記各総ＲＮＡを鋳型とし、クローディン－１ ｍＲＮＡ及び内部標準であるＧＡＰＤＨ ｍＲＮＡの発現量を測定した。ｍＲＮＡの検出は、リアルタイムＰＣＲ装置（Ｔｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ ＤＩｃｅ（登録商標） Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ Ｓｙｓｔｅｍ III、タカラバイオ株式会社製）、及びＳＹＢＲ（登録商標） ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ（登録商標） ＲＴ－ＰＣＲ Ｋｉｔ（Ｐｅｒｆｅｃｔ Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ（カタログ番号：ＲＲ０６３Ａ）、タカラバイオ株式会社製）を用いた２ステップリアルタイムＰＣＲ反応により行った。
被験試料無添加及び被験試料添加クローディン－１ ｍＲＮＡの発現量は、ＧＡＰＤＨ ｍＲＮＡの発現量で補正した。この補正値より、下記式７に基づきクローディン－１ ｍＲＮＡ発現促進率を算出した。結果を下記表１０に示す。
＜式７＞
クローディン－１ ｍＲＮＡ発現促進率（％）＝Ａ／Ｂ×１００
前記式７において、Ａ及びＢは、それぞれ以下を表す。
Ａ：被験試料添加時の補正値
Ｂ：被験試料無添加時の補正値

（試験例２－４：クローディン－４ ｍＲＮＡ発現促進作用試験）
製造例３で得られたカワラヨモギ発酵液１、製造例４で得られたカワラヨモギ発酵液２、及び比較製造例２で得られたカワラヨモギ抽出液を被験試料として用い、下記の試験方法により、クローディン－４ ｍＲＮＡ発現促進作用を試験した。

正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２、倉敷紡績株式会社製）に終濃度が下記表１１に示す濃度となるように、各被験試料を溶解し、被験試料添加培地を調製した。
正常ヒト新生児表皮角化細胞（ＮＨＥＫ、倉敷紡績株式会社製）を、正常ヒト表皮角化細胞増殖用培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＧ２、倉敷紡績株式会社製）を用いて３７℃、５％ＣＯ_２の条件下でコンフルエントになるまで培養した後、トリプシン処理により細胞を回収した。これを正常ヒト表皮角化細胞増殖用培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＧ２）により１．５×１０^５細胞／ｍＬに調整した。
次いで、３５ｍｍシャーレに前記ＮＨＥＫ（１．５×１０^５細胞／ｍＬ）を２ｍＬ播種し、３７℃、５％ＣＯ_２条件下で一晩培養した。培養終了後、培地を正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２）に交換し、更に２４時間した。培養終了後、培地を前記被験試料添加培地２ｍＬに交換し、３７℃、５％ＣＯ_２の条件下で２４時間培養した。培養終了後、培養液を除去し、ＲＮＡ抽出用試薬（ＩＳＯＧＥＮ ＩＩ（カタログ番号：３１１－０７３６１）、株式会社ニッポンジーン製）にて総ＲＮＡを抽出し、それぞれのＲＮＡ量を分光光度計にて測定し、精製水を用いて２００ｎｇ／μＬとなるように総ＲＮＡを調製した。

また、コントロールとして、前記被験試料添加培地２ｍＬを、被験試料を含まない正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２） ２ｍＬに変更したこと以外は、上記同様の操作及び吸光度の測定を行い、上記同様の方法で２００ｎｇ／μＬとなるように総ＲＮＡを調製した。

前記各総ＲＮＡを鋳型とし、クローディン－４ ｍＲＮＡ及び内部標準であるＧＡＰＤＨ ｍＲＮＡの発現量を測定した。ｍＲＮＡの検出は、リアルタイムＰＣＲ装置（Ｔｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ ＤＩｃｅ（登録商標） Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ Ｓｙｓｔｅｍ III、タカラバイオ株式会社製）、及びＳＹＢＲ（登録商標） ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ（登録商標） ＲＴ－ＰＣＲ Ｋｉｔ（Ｐｅｒｆｅｃｔ Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ（カタログ番号：ＲＲ０６３Ａ）、タカラバイオ株式会社製）を用いた２ステップリアルタイムＰＣＲ反応により行った。
被験試料無添加及び被験試料添加クローディン－４ ｍＲＮＡの発現量は、ＧＡＰＤＨ ｍＲＮＡの発現量で補正した。この補正値より、下記式８に基づきクローディン－４ ｍＲＮＡ発現促進率を算出した。結果を下記表１１に示す。
＜式８＞
クローディン－４ ｍＲＮＡ発現促進率（％）＝Ａ／Ｂ×１００
前記式８において、Ａ及びＢは、それぞれ以下を表す。
Ａ：被験試料添加時の補正値
Ｂ：被験試料無添加時の補正値

（試験例２－５：オクルディンｍＲＮＡ発現促進作用試験）
製造例３で得られたカワラヨモギ発酵液１、製造例４で得られたカワラヨモギ発酵液２、及び比較製造例２で得られたカワラヨモギ抽出液を被験試料として用い、下記の試験方法により、オクルディンｍＲＮＡ発現促進作用を試験した。

正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２、倉敷紡績株式会社製）に終濃度が下記表１２に示す濃度となるように、各被験試料を溶解し、被験試料添加培地を調製した。
正常ヒト新生児表皮角化細胞（ＮＨＥＫ、倉敷紡績株式会社製）を、正常ヒト表皮角化細胞増殖用培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＧ２、倉敷紡績株式会社製）を用いて３７℃、５％ＣＯ_２の条件下でコンフルエントになるまで培養した後、トリプシン処理により細胞を回収した。これを正常ヒト表皮角化細胞増殖用培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＧ２）により１．５×１０^５細胞／ｍＬに調整した。
次いで、３５ｍｍシャーレに前記ＮＨＥＫ（１．５×１０^５細胞／ｍＬ）を２ｍＬ播種し、３７℃、５％ＣＯ_２条件下で一晩培養した。培養終了後、培地を正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２）に交換し、更に２４時間した。培養終了後、培養液を除去し、ＲＮＡ抽出用試薬（ＩＳＯＧＥＮ ＩＩ（カタログ番号：３１１－０７３６１）、株式会社ニッポンジーン製）にて総ＲＮＡを抽出し、それぞれのＲＮＡ量を分光光度計にて測定し、精製水を用いて２００ｎｇ／μＬとなるように総ＲＮＡを調製した。

また、コントロールとして、前記被験試料添加培地２ｍＬを、被験試料を含まない正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２） ２ｍＬに変更したこと以外は、上記同様の操作及び吸光度の測定を行い、上記同様の方法で２００ｎｇ／μＬとなるように総ＲＮＡを調製した。

前記各総ＲＮＡを鋳型とし、オクルディンｍＲＮＡ及び内部標準であるＧＡＰＤＨ ｍＲＮＡの発現量を測定した。ｍＲＮＡの検出は、リアルタイムＰＣＲ装置（Ｔｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ ＤＩｃｅ（登録商標） Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ Ｓｙｓｔｅｍ III、タカラバイオ株式会社製）、及びＳＹＢＲ（登録商標） ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ（登録商標） ＲＴ－ＰＣＲ Ｋｉｔ（Ｐｅｒｆｅｃｔ Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ（カタログ番号：ＲＲ０６３Ａ）、タカラバイオ株式会社製）を用いた２ステップリアルタイムＰＣＲ反応により行った。
被験試料無添加及び被験試料添加オクルディンｍＲＮＡの発現量は、ＧＡＰＤＨ ｍＲＮＡの発現量で補正した。この補正値より、下記式９に基づきオクルディンｍＲＮＡ発現促進率を算出した。結果を下記表１２に示す。
＜式９＞
オクルディンｍＲＮＡ発現促進率（％）＝Ａ／Ｂ×１００
前記式９において、Ａ及びＢは、それぞれ以下を表す。
Ａ：被験試料添加時の補正値
Ｂ：被験試料無添加時の補正値

＜製造例５：タチジャコウソウ発酵液１の調製＞
前記製造例１の種麹調製工程において、ヤマヨモギを、タチジャコウソウ（Ｔｈｙｍｕｓ ｖｕｌｇａｒｉｓ Ｌｉｎｎｅ）（株式会社アルビオン製）に変更したこと以外は、前記製造例１の種麹調製工程と同様の方法で「タチジャコウソウ種麹」を調製した。
また、前記製造例１の発酵工程において、ヤマヨモギを、タチジャコウソウ（Ｔｈｙｍｕｓ ｖｕｌｇａｒｉｓ Ｌｉｎｎｅ）（株式会社アルビオン製）に変更したこと以外は、前記製造例１の発酵工程と同様の方法で「タチジャコウソウ発酵液１」を得た。

＜製造例６：タチジャコウソウ発酵液２の調製＞
前記製造例５において、タチジャコウソウ種麹を、米種麹（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ、白麹しらかみ、株式会社秋田今野商店製）に変更したこと以外は、前記製造例５と同様の方法で「タチジャコウソウ発酵液２」を得た。

＜比較製造例３：タチジャコウソウ抽出液の調製＞
前記比較製造例１において、ヤマヨモギを、タチジャコウソウ（Ｔｈｙｍｕｓ ｖｕｌｇａｒｉｓ Ｌｉｎｎｅ）（株式会社アルビオン製）に変更したこと以外は、前記比較製造例１と同様の方法で「タチジャコウソウ抽出液」を得た。

（試験例Ａ－３：接触角の測定）
前記試験例Ａ－１において、試験試料を、製造例５で得られたタチジャコウソウ発酵液１、製造例６で得られたタチジャコウソウ発酵液２、及び比較製造例３で得られたタチジャコウソウ抽出液に変更したこと以外は、前記試験例Ａ－１と同様の方法で接触角を測定した。結果を下記表１３に示す。また、各試験試料の接触角の測定時の液滴の一例を図３Ａ～図３Ｃに示す。

比較製造例３で得られたタチジャコウソウ抽出液に対して、製造例５で得られたタチジャコウソウ発酵液１及び製造例６で得られたタチジャコウソウ発酵液２は、いずれも接触角が小さく、８７°以下であり、肌なじみに優れるものであった。更に、製造例５で得られたタチジャコウソウ発酵液１は、接触角が８１°以下であり、より肌なじみに優れるものであった。

（試験例３－１：トランスグルタミナーゼ－１（ＴＧＭ－１）ｍＲＮＡ発現促進作用試験）
製造例５で得られたタチジャコウソウ発酵液１、製造例６で得られたタチジャコウソウ発酵液２、及び比較製造例３で得られたタチジャコウソウ抽出液を被験試料として用い、下記の試験方法により、トランスグルタミナーゼ－１（ＴＧＭ－１）ｍＲＮＡ発現促進作用を試験した。

正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２、倉敷紡績株式会社製）に終濃度が下記表１４に示す濃度となるように、各被験試料を溶解し、被験試料添加培地を調製した。
正常ヒト新生児表皮角化細胞（ＮＨＥＫ、倉敷紡績株式会社製）を、正常ヒト表皮角化細胞増殖用培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＧ２、倉敷紡績株式会社製）を用いて３７℃、５％ＣＯ_２の条件下でコンフルエントになるまで培養した後、トリプシン処理により細胞を回収した。これを正常ヒト表皮角化細胞増殖用培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＧ２）により１．５×１０^５細胞／ｍＬに調整した。
次いで、３５ｍｍシャーレに前記ＮＨＥＫ（１．５×１０^５細胞／ｍＬ）を２ｍＬ播種し、３７℃、５％ＣＯ_２条件下で一晩培養した。培養終了後、培地を正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２）に交換し、更に２４時間した。培養終了後、培地を前記被験試料添加培地２ｍＬに交換し、３７℃、５％ＣＯ_２の条件下で２４時間培養した。培養終了後、培養液を除去し、ＲＮＡ抽出用試薬（ＩＳＯＧＥＮ ＩＩ（カタログ番号：３１１－０７３６１）、株式会社ニッポンジーン製）にて総ＲＮＡを抽出し、それぞれのＲＮＡ量を分光光度計にて測定し、精製水を用いて２００ｎｇ／μＬとなるように総ＲＮＡを調製した。

また、コントロールとして、前記被験試料添加培地２ｍＬを、被験試料を含まない正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２） ２ｍＬに変更したこと以外は、上記同様の操作及び吸光度の測定を行い、上記同様の方法で２００ｎｇ／μＬとなるように総ＲＮＡを調製した。

前記各総ＲＮＡを鋳型とし、トランスグルタミナーゼ－１（ＴＧＭ－１）ｍＲＮＡ及び内部標準であるＧＡＰＤＨ ｍＲＮＡの発現量を測定した。ｍＲＮＡの検出は、リアルタイムＰＣＲ装置（Ｔｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ ＤＩｃｅ（登録商標） Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ Ｓｙｓｔｅｍ III、タカラバイオ株式会社製）、及びＳＹＢＲ（登録商標） ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ（登録商標） ＲＴ－ＰＣＲ Ｋｉｔ（Ｐｅｒｆｅｃｔ Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ（カタログ番号：ＲＲ０６３Ａ）、タカラバイオ株式会社製）を用いた２ステップリアルタイムＰＣＲ反応により行った。
被験試料無添加及び被験試料添加のＴＧＭ－１ ｍＲＮＡの発現量は、ＧＡＰＤＨ ｍＲＮＡの発現量で補正した。この補正値より、下記式１０に基づきＴＧＭ－１ ｍＲＮＡ発現促進率を算出した。結果を下記表１４に示す。
＜式１０＞
ＴＧＭ－１ ｍＲＮＡ発現促進率（％）＝Ａ／Ｂ×１００
前記式１０において、Ａ及びＢは、それぞれ以下を表す。
Ａ：被験試料添加時の補正値
Ｂ：被験試料無添加時の補正値

（試験例３－２：アクアポリン３（ＡＱＰ３）ｍＲＮＡ発現促進作用試験）
製造例５で得られたタチジャコウソウ発酵液１、製造例６で得られたタチジャコウソウ発酵液２、及び比較製造例３で得られたタチジャコウソウ抽出液を被験試料として用い、下記の試験方法により、アクアポリン３（ＡＱＰ３）ｍＲＮＡ発現促進作用を試験した。

正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２、倉敷紡績株式会社製）に終濃度が下記表１５に示す濃度となるように、各被験試料を溶解し、被験試料添加培地を調製した。
正常ヒト新生児表皮角化細胞（ＮＨＥＫ、倉敷紡績株式会社製）を、正常ヒト表皮角化細胞増殖用培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＧ２、倉敷紡績株式会社製）を用いて３７℃、５％ＣＯ_２の条件下でコンフルエントになるまで培養した後、トリプシン処理により細胞を回収した。これを正常ヒト表皮角化細胞増殖用培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＧ２）により１．５×１０^５細胞／ｍＬに調整した。
次いで、３５ｍｍシャーレに前記ＮＨＥＫ（１．５×１０^５細胞／ｍＬ）を２ｍＬ播種し、３７℃、５％ＣＯ_２条件下で一晩培養した。培養終了後、培地を正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２）に交換し、更に２４時間した。培養終了後、培地を前記被験試料添加培地２ｍＬに交換し、３７℃、５％ＣＯ_２の条件下で２４時間培養した。培養終了後、培養液を除去し、ＲＮＡ抽出用試薬（ＩＳＯＧＥＮ ＩＩ（カタログ番号：３１１－０７３６１）、株式会社ニッポンジーン製）にて総ＲＮＡを抽出し、それぞれのＲＮＡ量を分光光度計にて測定し、精製水を用いて２００ｎｇ／μＬとなるように総ＲＮＡを調製した。

また、コントロールとして、前記被験試料添加培地２ｍＬを、被験試料を含まない正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２） ２ｍＬに変更したこと以外は、上記同様の操作及び吸光度の測定を行い、上記同様の方法で２００ｎｇ／μＬとなるように総ＲＮＡを調製した。

前記各総ＲＮＡを鋳型とし、アクアポリン３（ＡＱＰ３）ｍＲＮＡ及び内部標準であるＧＡＰＤＨ ｍＲＮＡの発現量を測定した。ｍＲＮＡの検出は、リアルタイムＰＣＲ装置（Ｔｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ ＤＩｃｅ（登録商標） Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ Ｓｙｓｔｅｍ III、タカラバイオ株式会社製）、及びＳＹＢＲ（登録商標） ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ（登録商標） ＲＴ－ＰＣＲ Ｋｉｔ（Ｐｅｒｆｅｃｔ Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ（カタログ番号：ＲＲ０６３Ａ）、タカラバイオ株式会社製）を用いた２ステップリアルタイムＰＣＲ反応により行った。
被験試料無添加及び被験試料添加のＡＱＰ３ ｍＲＮＡの発現量は、ＧＡＰＤＨ ｍＲＮＡの発現量で補正した。この補正値より、下記式１１に基づきＡＱＰ３ ｍＲＮＡ発現促進率を算出した。結果を下記表１５に示す。
＜式１１＞
ＡＱＰ３ ｍＲＮＡ発現促進率（％）＝Ａ／Ｂ×１００
前記式１１において、Ａ及びＢは、それぞれ以下を表す。
Ａ：被験試料添加時の補正値
Ｂ：被験試料無添加時の補正値

（試験例３－３：オクルディンｍＲＮＡ発現促進作用試験）
試験例２－５において、被験試料を、製造例５で得られたタチジャコウソウ発酵液１、製造例６で得られたタチジャコウソウ発酵液２、及び比較製造例３で得られたタチジャコウソウ抽出液に変更し、被験試料の終濃度を下記表１６に示す濃度に変更したこと以外は、試験例２－５と同様の方法でオクルディンｍＲＮＡ発現促進作用を試験した。結果を下記表１６に示す。

（試験例３－４：ＤＰＰＨラジカル消去作用試験）
試験例１－３において、被験試料を、製造例５で得られたタチジャコウソウ発酵液１、製造例６で得られたタチジャコウソウ発酵液２、及び比較製造例３で得られたタチジャコウソウ抽出液に変更し、被験試料の終濃度を下記表１７に示す濃度に変更したこと以外は、試験例１－３と同様の方法でＤＰＰＨラジカル消去作用を試験した。結果を下記表１７に示す。

＜製造例７：コウスイハッカ発酵液１の調製＞
前記製造例１の種麹調製工程において、ヤマヨモギを、コウスイハッカ（Ｍｅｌｉｓｓａ ｏｆｆｉｃｉｎａｌｉｓ Ｌｉｎｎｅ）（株式会社アルビオン製）に変更したこと以外は、前記製造例１の種麹調製工程と同様の方法で「コウスイハッカ種麹」を調製した。
また、前記製造例１の発酵工程において、ヤマヨモギを、コウスイハッカ（Ｍｅｌｉｓｓａ ｏｆｆｉｃｉｎａｌｉｓ Ｌｉｎｎｅ）（株式会社アルビオン製）に変更したこと以外は、前記製造例１の発酵工程と同様の方法で「コウスイハッカ発酵液１」を得た。

＜製造例８：コウスイハッカ発酵液２の調製＞
前記製造例７において、コウスイハッカ種麹を、米種麹（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ、白麹しらかみ、株式会社秋田今野商店製）に変更したこと以外は、前記製造例７と同様の方法で「コウスイハッカ発酵液２」を得た。

＜比較製造例４：コウスイハッカ抽出液の調製＞
前記比較製造例１において、ヤマヨモギを、コウスイハッカ（Ｍｅｌｉｓｓａ ｏｆｆｉｃｉｎａｌｉｓ Ｌｉｎｎｅ）（株式会社アルビオン製）に変更したこと以外は、前記比較製造例１と同様の方法で「コウスイハッカ抽出液」を得た。

（試験例Ａ－４：接触角の測定）
前記試験例Ａ－１において、試験試料を、製造例７で得られたコウスイハッカ発酵液１、製造例８で得られたコウスイハッカ発酵液２、及び比較製造例４で得られたコウスイハッカ抽出液に変更したこと以外は、前記試験例Ａ－１と同様の方法で接触角を測定した。結果を下記表１８に示す。また、各試験試料の接触角の測定時の液滴の一例を図４Ａ～図４Ｃに示す。

比較製造例４で得られたコウスイハッカ抽出液に対して、製造例７で得られたコウスイハッカ発酵液１及び製造例８で得られたコウスイハッカ発酵液２は、いずれも接触角が小さく、８５°以下であり、肌なじみに優れるものであった。更に、製造例７で得られコウスイハッカ発酵液１は、接触角が７９°以下であり、より肌なじみに優れるものであった。

（試験例４－１：Ｉ型コラーゲン産生促進作用試験）
試験例２－２において、被験試料を、製造例７で得られたコウスイハッカ発酵液１、製造例８で得られたコウスイハッカ発酵液２、及び比較製造例４で得られたコウスイハッカ抽出液に変更し、被験試料の終濃度を下記表１９に示す濃度に変更したこと以外は、試験例２－２と同様の方法でＩ型コラーゲン産生促進作用を試験した。結果を下記表１９に示す。

（試験例４－２：アクアポリン３（ＡＱＰ３）ｍＲＮＡ発現促進作用試験）
試験例３－２において、被験試料を、製造例７で得られたコウスイハッカ発酵液１、製造例８で得られたコウスイハッカ発酵液２、及び比較製造例４で得られたコウスイハッカ抽出液に変更し、被験試料の終濃度を下記表２０に示す濃度に変更したこと以外は、試験例３－２と同様の方法でアクアポリン３（ＡＱＰ３）ｍＲＮＡ発現促進作用を試験した。結果を下記表２０に示す。

（試験例４－３：ＤＰＰＨラジカル消去作用試験）
試験例１－３において、被験試料を、製造例７で得られたコウスイハッカ発酵液１、製造例８で得られたコウスイハッカ発酵液２、及び比較製造例４で得られたコウスイハッカ抽出液に変更し、被験試料の終濃度を下記表２１に示す濃度に変更したこと以外は、試験例１－３と同様の方法でＤＰＰＨラジカル消去作用を試験した。結果を下記表２１に示す。

（試験例４－４：ヒアルロニダーゼ活性阻害作用試験）
試験例１－４において、被験試料を、製造例７で得られたコウスイハッカ発酵液１、製造例８で得られたコウスイハッカ発酵液２、及び比較製造例４で得られたコウスイハッカ抽出液に変更し、被験試料の終濃度を下記表２２に示す濃度に変更したこと以外は、試験例１－４と同様の方法ヒアルロニダーゼ活性阻害作用を試験した。結果を下記表２２に示す。

（試験例４－５：チロシナーゼ活性阻害作用試験）
試験例１－５において、被験試料を、製造例７で得られたコウスイハッカ発酵液１、製造例８で得られたコウスイハッカ発酵液２、及び比較製造例４で得られたコウスイハッカ抽出液に変更し、被験試料の終濃度を下記表２２に示す濃度に変更したこと以外は、試験例１－５と同様の方法チロシナーゼ活性阻害作用を試験した。結果を下記表２３に示す。

＜製造例９：ヤグルマギク発酵液１の調製＞
前記製造例１の種麹調製工程において、ヤマヨモギを、ヤグルマギク（Ｃｅｎｔａｕｒｅａ ｃｙａｎｕｓ Ｌｉｎｎｅ）（株式会社アルビオン製）に変更したこと以外は、前記製造例１の種麹調製工程と同様の方法で「ヤグルマギク種麹」を調製した。
また、前記製造例１の発酵工程において、ヤマヨモギを、ヤグルマギク（Ｃｅｎｔａｕｒｅａ ｃｙａｎｕｓ Ｌｉｎｎｅ）（株式会社アルビオン製）に変更したこと以外は、前記製造例１の発酵工程と同様の方法で「ヤグルマギク発酵液１」を得た。

＜製造例１０：ヤグルマギク発酵液２の調製＞
前記製造例９において、ヤグルマギク種麹を、米種麹（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ、白麹しらかみ、株式会社秋田今野商店製）に変更したこと以外は、前記製造例９と同様の方法で「ヤグルマギク発酵液２」を得た。

＜比較製造例５：ヤグルマギク抽出液の調製＞
前記比較製造例１において、ヤマヨモギを、ヤグルマギク（Ｃｅｎｔａｕｒｅａ ｃｙａｎｕｓ Ｌｉｎｎｅ）（株式会社アルビオン製）に変更したこと以外は、前記比較製造例１と同様の方法で「ヤグルマギク抽出液」を得た。

（試験例Ａ－５：接触角の測定）
前記試験例Ａ－１において、試験試料を、製造例９で得られたヤグルマギク発酵液１、製造例１０で得られたヤグルマギク発酵液２、及び比較製造例５で得られたヤグルマギク抽出液に変更したこと以外は、前記試験例Ａ－１と同様の方法で接触角を測定した。結果を下記表２４に示す。また、各試験試料の接触角の測定時の液滴の一例を図５Ａ～図５Ｃに示す。

比較製造例５で得られたヤグルマギク抽出液に対して、製造例９で得られたヤグルマギク発酵液１及び製造例１０で得られたヤグルマギク発酵液２は、いずれも接触角が小さく、８５°以下であり、肌なじみに優れるものであった。更に、製造例９で得られヤグルマギク発酵液１は、接触角が７９°以下であり、より肌なじみに優れるものであった。

（試験例５－１：Ｉ型コラーゲン産生促進作用試験）
試験例２－２において、被験試料を、製造例９で得られたヤグルマギク発酵液１、製造例１０で得られたヤグルマギク発酵液２、及び比較製造例５で得られたヤグルマギク抽出液に変更し、被験試料の終濃度を下記表２５に示す濃度に変更したこと以外は、試験例２－２と同様の方法でＩ型コラーゲン産生促進作用を試験した。結果を下記表２５に示す。

（試験例５－２：トランスグルタミナーゼ－１ ｍＲＮＡ発現促進作用試験）
試験例３－１において、被験試料を、製造例９で得られたヤグルマギク発酵液１、製造例１０で得られたヤグルマギク発酵液２、及び比較製造例５で得られたヤグルマギク抽出液に変更し、被験試料の終濃度を下記表２６に示す濃度に変更したこと以外は、試験例３－１と同様の方法でトランスグルタミナーゼ－１ ｍＲＮＡ発現促進作用を試験した。結果を下記表２６に示す。

（試験例５－３：フィラグリンｍＲＮＡ発現促進作用試験）
製造例９で得られたヤグルマギク発酵液１、製造例１０で得られたヤグルマギク発酵液２、及び比較製造例５で得られたヤグルマギク抽出液を被験試料として用い、下記の試験方法により、フィラグリンｍＲＮＡ発現促進作用を試験した。

正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２、倉敷紡績株式会社製）に終濃度が下記表２７に示す濃度となるように、各被験試料を溶解し、被験試料添加培地を調製した。
正常ヒト新生児表皮角化細胞（ＮＨＥＫ、倉敷紡績株式会社製）を、正常ヒト表皮角化細胞増殖用培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＧ２、倉敷紡績株式会社製）を用いて３７℃、５％ＣＯ_２の条件下でコンフルエントになるまで培養した後、トリプシン処理により細胞を回収した。これを正常ヒト表皮角化細胞増殖用培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＧ２）により１．５×１０^５細胞／ｍＬに調整した。
次いで、３５ｍｍシャーレに前記ＮＨＥＫ（１．５×１０^５細胞／ｍＬ）を２ｍＬ播種し、３７℃、５％ＣＯ_２条件下で一晩培養した。培養終了後、培地を正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２）に交換し、更に２４時間した。培養終了後、培地を前記被験試料添加培地２ｍＬに交換し、３７℃、５％ＣＯ_２の条件下で２４時間培養した。培養終了後、培養液を除去し、ＲＮＡ抽出用試薬（ＩＳＯＧＥＮ ＩＩ（カタログ番号：３１１－０７３６１）、株式会社ニッポンジーン製）にて総ＲＮＡを抽出し、それぞれのＲＮＡ量を分光光度計にて測定し、精製水を用いて２００ｎｇ／μＬとなるように総ＲＮＡを調製した。

また、コントロールとして、前記被験試料添加培地２ｍＬを、被験試料を含まない正常ヒト表皮角化細胞基礎培地（ＨｕＭｅｄｉａ－ＫＢ２） ２ｍＬに変更したこと以外は、上記同様の操作及び吸光度の測定を行い、上記同様の方法で２００ｎｇ／μＬとなるように総ＲＮＡを調製した。

前記各総ＲＮＡを鋳型とし、フィラグリンｍＲＮＡ及び内部標準であるＧＡＰＤＨ ｍＲＮＡの発現量を測定した。ｍＲＮＡの検出は、リアルタイムＰＣＲ装置（Ｔｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ ＤＩｃｅ（登録商標） Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ Ｓｙｓｔｅｍ III、タカラバイオ株式会社製）、及びＳＹＢＲ（登録商標） ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ（登録商標） ＲＴ－ＰＣＲ Ｋｉｔ（Ｐｅｒｆｅｃｔ Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ（カタログ番号：ＲＲ０６３Ａ）、タカラバイオ株式会社製）を用いた２ステップリアルタイムＰＣＲ反応により行った。
被験試料無添加及び被験試料添加のフィラグリンｍＲＮＡの発現量は、ＧＡＰＤＨ ｍＲＮＡの発現量で補正した。この補正値より、下記式１２に基づきフィラグリンｍＲＮＡ発現促進率を算出した。結果を下記表２７に示す。
＜式１２＞
フィラグリンｍＲＮＡ発現促進率（％）＝Ａ／Ｂ×１００
前記式１２において、Ａ及びＢは、それぞれ以下を表す。
Ａ：被験試料添加時の補正値
Ｂ：被験試料無添加時の補正値

（試験例５－４：アクアポリン３（ＡＱＰ３）ｍＲＮＡ発現促進作用試験）
試験例３－２において、被験試料を、製造例９で得られたヤグルマギク発酵液１、製造例１０で得られたヤグルマギク発酵液２、及び比較製造例５で得られたヤグルマギク抽出液に変更し、被験試料の終濃度を下記表２８に示す濃度に変更したこと以外は、試験例３－２と同様の方法でアクアポリン３（ＡＱＰ３）ｍＲＮＡ発現促進作用を試験した。結果を下記表２８に示す。

（試験例５－５：ヒアルロン酸合成酵素３（ＨＡＳ３）ｍＲＮＡ発現促進作用試験）
試験例１－２において、被験試料を、製造例９で得られたヤグルマギク発酵液１、製造例１０で得られたヤグルマギク発酵液２、及び比較製造例５で得られたヤグルマギク抽出液に変更し、被験試料の終濃度を下記表２９に示す濃度に変更したこと以外は、試験例１－２と同様の方法でヒアルロン酸合成酵素３（ＨＡＳ３）ｍＲＮＡ発現促進作用を試験した。結果を下記表２９に示す。

（試験例５－６：クローディン－１ ｍＲＮＡ発現促進作用試験）
試験例２－３において、被験試料を、製造例９で得られたヤグルマギク発酵液１、製造例１０で得られたヤグルマギク発酵液２、及び比較製造例５で得られたヤグルマギク抽出液に変更し、被験試料の終濃度を下記表３０に示す濃度に変更したこと以外は、試験例２－３と同様の方法でクローディン－１ ｍＲＮＡ発現促進作用を試験した。結果を下記表３０に示す。

（試験例５－７：クローディン－４ ｍＲＮＡ発現促進作用試験）
試験例２－４において、被験試料を、製造例９で得られたヤグルマギク発酵液１、製造例１０で得られたヤグルマギク発酵液２、及び比較製造例５で得られたヤグルマギク抽出液に変更し、被験試料の終濃度を下記表３１に示す濃度に変更したこと以外は、試験例２－４と同様の方法でクローディン－４ ｍＲＮＡ発現促進作用を試験した。結果を下記表３１に示す。

（試験例５－８：オクルディンｍＲＮＡ発現促進作用試験）
試験例２－５において、被験試料を、製造例９で得られたヤグルマギク発酵液１、製造例１０で得られたヤグルマギク発酵液２、及び比較製造例５で得られたヤグルマギク抽出液に変更し、被験試料の終濃度を下記表３２に示す濃度に変更したこと以外は、試験例２－５と同様の方法でオクルディンｍＲＮＡ発現促進作用を試験した。結果を下記表３２に示す。

（試験例５－９：ＤＰＰＨラジカル消去作用試験）
試験例１－３において、被験試料を、製造例９で得られたヤグルマギク発酵液１、製造例１０で得られたヤグルマギク発酵液２、及び比較製造例５で得られたヤグルマギク抽出液に変更し、被験試料の終濃度を下記表３３に示す濃度に変更したこと以外は、試験例１－３と同様の方法でＤＰＰＨラジカル消去作用を試験した。結果を下記表３３に示す。

（試験例５－１０：Ｂ１６メラノーマ細胞に対するメラニン産生抑制作用試験）
製造例９で得られたヤグルマギク発酵液１、製造例１０で得られたヤグルマギク発酵液２、及び比較製造例５で得られたヤグルマギク抽出液を被験試料として用い、下記の試験方法により、Ｂ１６メラノーマ細胞に対するメラニン産生抑制作用を試験した。

１０％ＦＢＳ（ｂｉｏｓｅｒａ社製）及び１ｍｍｏｌ／Ｌテオフィリン（富士フィルム和光純薬株式会社製）含有ＤＭＥＭ（日水製薬株式会社製）に、各被験試料を溶解し、被験試料添加培地を調製した。
Ｂ１６メラノーマ細胞を、１０％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭを用いて３７℃、５％ＣＯ_２の条件下でコンフルエントになるまで培養した後、トリプシン処理により細胞を回収した。これを１０％ＦＢＳ及び１ｍｍｏｌ／Ｌテオフィリン含有ＤＭＥＭにより２．４×１０^５細胞／ｍＬに調整した。
次いで、４８ｗｅｌｌプレートに前記Ｂ１６メラノーマ細胞（２．４×１０^５細胞／ｍＬ）を、１ｗｅｌｌ当たり３００μＬずつ播種し、３７℃、５％ＣＯ_２の条件下で６時間培養した。培養終了後、培地を被験試料添加培地１００μＬに交換し、３７℃、５％ＣＯ_２の条件下で３日間培養した。培養終了後、前記被験試料添加培地をそれぞれ１ｗｅｌｌ当たり３００μＬ添加し、３７℃、５％ＣＯ_２の条件下で４日間培養した。なお、この際の前記被験試料の終濃度は、下記表３４に示す濃度であった。

培養終了後、各ｗｅｌｌから培地を除去し、２ｍｏｌ／Ｌ水酸化ナトリウム溶液２００μＬを添加して超音波破砕器により細胞を破壊し、波長４７５ｎｍにおける吸光度を測定した。
測定した吸光度の値から、合成メラニン（ＳＩＧＭＡ社製）を用いて作成した検量線をもとにメラニン量を算出した。

また、細胞生存率を測定するために、上記方法と同様の方法で、前記被験試料添加培地を用いてＢ１６メラノーマ細胞培養した後、培地を除去し４００μＬのＰＢＳ緩衝液で洗浄した。次いで、ニュートラルレッドを終濃度０．０５ｍｇ／ｍＬで１０％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭに溶解した溶液を各ウェルに２００μＬ添加し、２．５時間培養した。培養終了後、ニュートラルレッド溶液を除去し、エタノール・酢酸溶液（エタノール：酢酸：水＝５０：１：４９（体積比））を各ウェルに２００μＬ添加し、色素を抽出した。抽出後、波長５４０ｎｍにおける吸光度を測定した。

また、コントロールとして、被験試料溶液を、被験試料を含まない１０％ＦＢＳ及び１ｍｍｏｌ／Ｌテオフィリン含有ＤＭＥＭに変更したこと以外は、上記同様の操作及び吸光度の測定を行った。

得られた測定値より、下記式１３に基づき算出した細胞生存率により補正したメラニン産生抑制率（％）を、下記式１４に基づき算出した。結果を下記表３４に示す。
＜式１３＞
細胞生存率（％）＝（Ｃ／Ｄ）×１００
前記式１３において、Ｃ及びＤは、それぞれ以下を表す。
Ｃ：被験試料無添加での波長５４０ｎｍにおける吸光度
Ｄ：被験試料添加での波長５４０ｎｍにおける吸光度
＜式１４＞
メラニン産生抑制率（％）＝｛１－（Ｂ／Ｄ）／（Ａ／Ｃ）｝×１００
前記式１４において、Ａ～Ｄは、それぞれ以下を表す。
Ａ：被験試料無添加におけるメラニン量
Ｂ：被験試料添加におけるメラニン量
Ｃ：被験試料無添加での波長５４０ｎｍにおける吸光度
Ｄ：被験試料添加での波長５４０ｎｍにおける吸光度

本発明の抗老化剤、抗酸化剤、抗炎症剤、及び美白剤は、優れた抗老化作用、抗酸化作用、抗炎症作用、及び美白作用の少なくともいずれかの作用を有し、安全性の高い天然物系のものであることから、化粧料、食品、医薬品など分野を問わず幅広く利用可能である。
本発明の化粧料は、本発明の前記抗老化剤、前記抗酸化剤、前記抗炎症剤、及び前記美白剤からなる群から選択される少なくとも１種を含有することから、化粧水、乳液、クリーム、軟膏、美容液、ローション、パック、ゼリー、リップクリーム、口紅、ファンデーション、入浴剤、石鹸、ボディシャンプー等の皮膚化粧料；アストリンゼント、ヘアトニック、ヘアクリーム、ヘアリキッド、ポマード、シャンプー、リンス等の頭皮頭髪化粧料などに好適に利用可能である。

Claims (5)

1. ヨモギ属植物にアスペルギルス オリゼー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）を接種してヨモギ属植物種麹を得る種麹調製工程と、ヨモギ属植物に前記ヨモギ属植物種麹を接種して発酵する発酵工程と、により得られたヨモギ属植物発酵液、
   タチジャコウソウにアスペルギルス オリゼー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）を接種してタチジャコウソウ種麹を得る種麹調製工程と、タチジャコウソウに前記タチジャコウソウ種麹を接種して発酵する発酵工程と、により得られたタチジャコウソウ発酵液、
   コウスイハッカにアスペルギルス オリゼー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）を接種してコウスイハッカ種麹を得る種麹調製工程と、コウスイハッカに前記コウスイハッカ種麹を接種して発酵する発酵工程と、により得られたコウスイハッカ発酵液、及び
   ヤグルマギクにアスペルギルス オリゼー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）を接種してヤグルマギク種麹を得る種麹調製工程と、ヤグルマギクに前記ヤグルマギク種麹を接種して発酵する発酵工程と、により得られたヤグルマギク発酵液、
   からなる群から選択される少なくとも１種の発酵液を有効成分として含有し、
   マトリックスメタロプロテアーゼ－１活性阻害作用、ヒアルロン酸合成酵素３ ｍＲＮＡ発現促進作用、Ｉ型コラーゲン産生促進作用、クローディン－１ ｍＲＮＡ発現促進作用、クローディン－４ ｍＲＮＡ発現促進作用、オクルディンｍＲＮＡ発現促進作用、トランスグルタミナーゼ－１ ｍＲＮＡ発現促進作用、アクアポリン３ ｍＲＮＡ発現促進作用、及びフィラグリンｍＲＮＡ発現促進作用からなる群から選択される少なくとも１種の作用を有することを特徴とする抗老化剤。
2. ヨモギ属植物にアスペルギルス オリゼー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）を接種してヨモギ属植物種麹を得る種麹調製工程と、ヨモギ属植物に前記ヨモギ属植物種麹を接種して発酵する発酵工程と、により得られたヨモギ属植物発酵液、
   タチジャコウソウにアスペルギルス オリゼー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）を接種してタチジャコウソウ種麹を得る種麹調製工程と、タチジャコウソウに前記タチジャコウソウ種麹を接種して発酵する発酵工程と、により得られたタチジャコウソウ発酵液、
   コウスイハッカにアスペルギルス オリゼー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）を接種してコウスイハッカ種麹を得る種麹調製工程と、コウスイハッカに前記コウスイハッカ種麹を接種して発酵する発酵工程と、により得られたコウスイハッカ発酵液、及び
   ヤグルマギクにアスペルギルス オリゼー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）を接種してヤグルマギク種麹を得る種麹調製工程と、ヤグルマギクに前記ヤグルマギク種麹を接種して発酵する発酵工程と、により得られたヤグルマギク発酵液、
   からなる群から選択される少なくとも１種の発酵液を有効成分として含有し、
   ジフェニル－ｐ－ピクリルヒドラジルラジカル消去作用を有することを特徴とする抗酸化剤。
3. ヨモギ属植物にアスペルギルス オリゼー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）を接種してヨモギ属植物種麹を得る種麹調製工程と、ヨモギ属植物に前記ヨモギ属植物種麹を接種して発酵する発酵工程と、により得られたヨモギ属植物発酵液、及び
   コウスイハッカにアスペルギルス オリゼー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）を接種してコウスイハッカ種麹を得る種麹調製工程と、コウスイハッカに前記コウスイハッカ種麹を接種して発酵する発酵工程と、により得られたコウスイハッカ発酵液、
   からなる群から選択される少なくとも１種の発酵液を有効成分として含有し、
   ヒアルロニダーゼ活性阻害作用を有することを特徴とする抗炎症剤。
4. コウスイハッカにアスペルギルス オリゼー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）を接種してコウスイハッカ種麹を得る種麹調製工程と、コウスイハッカに前記コウスイハッカ種麹を接種して発酵する発酵工程と、により得られたコウスイハッカ発酵液、及び
   ヤグルマギクにアスペルギルス オリゼー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）を接種してヤグルマギク種麹を得る種麹調製工程と、ヤグルマギクに前記ヤグルマギク種麹を接種して発酵する発酵工程と、により得られたヤグルマギク発酵液、
   からなる群から選択される少なくとも１種の発酵液を有効成分として含有し、
   チロシナーゼ活性阻害作用及びメラニン産生抑制作用の少なくとも１種の作用を有することを特徴とする美白剤。
5. 請求項１に記載の抗老化剤、請求項２の記載の抗酸化剤、請求項３に記載の抗炎症剤、及び請求項４に記載の美白剤からなる群から選択される少なくとも１種を含有することを特徴とする化粧料（ただし、タチジャコウソウ発酵液又はヤグルマギク発酵液を含むものを除く）。