JP2023038370A - 増殖性状態の処置または予防 - Google Patents
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- C07D491/22—Heterocyclic compounds containing in the condensed ring system both one or more rings having oxygen atoms as the only ring hetero atoms and one or more rings having nitrogen atoms as the only ring hetero atoms, not provided for by groups C07D451/00 - C07D459/00, C07D463/00, C07D477/00 or C07D489/00 in which the condensed system contains four or more hetero rings
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Abstract
Description
る。
X1は、-X1-X2が、-O-X2、-S-X2、-SO2-O-X2、-SO2NZ10-X2、共役アルケンメチルオキシ、共役アルケンメチルチオ、共役アルケンメチルSO2-O、共役アルケンメチル-SO2NZ10、または次式
各nおよびmは、独立に0または1であり、
pは、0、1または2であり、
X3は、酸素または硫黄であり、加えて、m=0であるとき、SO2-O、SO2NZ10、共役アルケンメチルオキシ、共役アルケンメチルチオ、共役アルケンメチル-SO2-O、または共役アルケンメチル-SO2NZ10でもよく、
Y1、Y2およびY3はそれぞれ、独立に炭素または窒素であり、Y1が窒素である場合、Z1は存在せず、Y2が窒素である場合、Z3は存在せず、Y3が窒素である場合、Z5は存在せず、
Y4は、酸素、炭素、もしくは窒素原子、スルホキシド、またはスルホンであり、
-Y5-は、(i)単結合、(ii)=CH-(=CH-の二重結合=は、Y4と結合している)、または(iii)-CH2-もしくは-CH2CH2-のいずれかであるか、あるいは(ii)の水素原子または(iii)の1つまたは複数の水素原子が置換基Z11で置き換えられている(ii)~(iii)の1つであり、Z11は、アルキル、アルケニル、アルキニル、アリール、アラルキル、アルキルオキシ、アルケニルオキシ、アルキニルオキシ、アリールオキシ、アラルキルオキシ、アルキルチオキシ、アルケニルチオキシ、アルキニルチオキシ、アリールチオキシ、アラルキルチオキシ、アミノ、ヒドロキシ、チオ、ハロ、カルボキシ、ホルミル、ニトロ、およびシアノから独立に選択され、
Z1~Z4はそれぞれ、存在する場合、水素、アルキル、アルケニル、アルキニル、アリール、アラルキル、アルキルオキシ、アルケニルオキシ、アルキニルオキシ、アリールオキシ、アラルキルオキシ、アルキルチオキシ、アルケニルチオキシ、アルキニルチオキシ、アリールチオキシ、アラルキルチオキシ、アミノ、ヒドロキシ、チオ、ハロ、カルボキシ、ホルミル、ニトロ、およびシアノから独立に選択され、Z5は、存在する場合、水素、アルキル、アルケニル、アルキニル、アリール、アラルキル、アルキルオキシ、アルケニルオキシ、アルキニルオキシ、アリールオキシ、アラルキルオキシ、アルキルチオキシ、アルケニルチオキシ、アルキニルチオキシ、アリールチオキシ、アラルキルチオキシ、アミノ、ヒドロキシ、チオ、カルボキシ、ホルミル、ニトロ、およびシアノから独立に選択されるか、またはZ2とZ3、Z3とZ4、およびZ4とZ5のうちの1組が、それら
が結合している原子と一緒になって上記化合物の残部と縮合した芳香環を形成するが、但し、Z1、Z2およびZ4の少なくとも1つは水素であり、
Z6は、水素、アルキル、アルケニル、アルキニル、アリール、およびアラルキルから選択され、
Y6はどれも窒素原子でなくともよいか、あるいはY6の1または2つが窒素原子であって、残りは炭素原子であってもよく、
各Z7は、独立に、水素、アルキル、またはアリールであり、
各Z8は、水素、電子吸引性基、非置換C1~C6アルキル、置換C1~C6アルキル、非置換C1~C6アルコキシ、および置換C1~C6アルコキシから独立に選択され、上記置換アルキルまたは上記置換アルコキシは、エーテル、アミノ、一置換もしくは二置換アミノ、環式C1~C5アルキルアミノ、イミダゾリル、C1~C6アルキルピペラジニル、モルホリノ、チオール、チオエーテル、テトラゾール、カルボン酸、エステル、アミド、一置換もしくは二置換アミド、N-結合型アミド、N-結合型スルホンアミド、スルホキシ、スルホネート、スルホニル、スルホキシ、スルフィネート、スルフィニル、ホスホノオキシ、ホスフェート、およびスルホンアミドから選択される1個または複数の基で置換されており、
各Z9は、独立に酸素または硫黄であり、
Z10は、水素またはアルキル、たとえばC1~4アルキルであり、
エフェクターは、薬理学、診断、またはスクリーニングの機能を有する分子である]
または薬学的に許容されるその塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物を提供する。
(a)エフェクターがフルオロフォアである、一組の本発明の第一の態様による化合物を前記チトクロムP450酵素と接触させ、前記接触の結果として前記一組のうちの1種または複数の化合物から前記フルオロフォアが遊離するかを判定するステップと、
(b)前記一組の化合物を対照組織、組織もしくは細胞抽出物、または酵素と接触させ、前記接触の結果として前記一組のうちの1種または複数の化合物から前記フルオロフォアが遊離するかを判定するステップと、
(c)前記チトクロムP450によって特異的に活性化される前記化合物を、ステップ(a)で前記フルオロフォアを遊離させるが、ステップ(b)では遊離させないか、またははるかに少ない程度にしか遊離させない、前記一組の化合物の中の任意の化合物として特定するステップと
を含む方法を提供する。
これら部分のいくつかが結合している残りの炭素原子を含んでいる化合物部分を含むと一般に理解することができる。化合物のトリガー領域は、C(Z7)-X1-X2単位を含むリンカー領域を介して、そのようなものとして示されているエフェクター分子に結合している。
一部ではない。そうなる場合では、すなわちこれらの部分が個別の置換基である場合では、Z3は、アルキル、アルケニル、アルキニル、アリール、アラルキル、アルキルオキシ、アルケニルオキシ、アルキニルオキシ、アリールオキシ、アラルキルオキシ、アルキルチオキシ、アルケニルチオキシ、アルキニルチオキシ、アリールチオキシ、アラルキルチオキシ、アミノ、ヒドロキシ、チオ、ハロ、カルボキシ、ホルミル、ニトロ、およびシアノであってよく、Z5は、アルキル、アルケニル、アルキニル、アリール、アラルキル、アルキルオキシ、アルケニルオキシ、アルキニルオキシ、アリールオキシ、アラルキルオキシ、アルキルチオキシ、アルケニルチオキシ、アルキニルチオキシ、アリールチオキシ、アラルキルチオキシ、アミノ、ヒドロキシ、チオ、カルボキシ、ホルミル、ニトロ、およびシアノであってよい。本発明の特定の実施形態では、Z3は、アルキル、アルケニル、アルキニル、アリール、アラルキル、アルキルオキシ、アルケニルオキシ、アルキニルオキシ、アリールオキシ、アラルキルオキシ、アルキルチオキシ、アルケニルチオキシ、アルキニルチオキシ、アリールチオキシ、アラルキルチオキシ、アミノ、ヒドロキシ、チオ、ハロ、カルボキシ、ホルミル、ニトロ、およびシアノであってよい。
くはアリール基は本発明の特定の実施形態では置換されていない。本発明の特定の実施形態では、唯一のZ7または各々のZ7が、アルキル基、たとえば、非置換C1~C6アルキル基などの非置換アルキル基である。Z7部分の例として、メチルおよびエチルが挙げられる。本発明の特定の実施形態では、Z7=水素となって、-CH(Z7)-がメチレンになる。他の実施形態では、唯一または各々のZ7部分が、置換アルキル基、たとえば、置換メチル基またはエチル基である。そのような実施形態の例として、アミノ置換アルキル基、たとえば、モルホリノもしくはピペリジニルアルキル基、または水溶解性を向上させる他の基が挙げられる。あるいは、唯一、各々、または少なくとも1個のZ7は、任意選択で置換されている、ピリジルなどのヘテロアリール部分でもよい。
ド部分となるが、2個以上のZ9が存在する場合では、各Z9は、独立に選択されたものであってよい。
(Chlorethyl)側鎖が水素原子もしくはアルキル基で置き換えられ、または一方もしくは両方の末端クロロ置換基が、ブロモ、ヨード、メシレート(-OSO2CH3)などの脱離基で置き換えられている、構造的にはマスタードガス(1,5-ジクロロ-3-チアペンタン)と関連した非特異的アルキル化アミンであると定義される。ホスホラミドマスタードの例としては、ホスホラミドマスタード(PM)およびイソホスホラミドマスタード(IPM)として知られる化合物が挙げられる。
Z12は、酸素または硫黄であり、
各X4は、独立に、酸素、硫黄、またはNZ13であり、各-Z13は、独立に、-(CH2)2-Z14、-アルキル、または-水素であり、
各Z14は、独立に、クロロ、ブロモ、ヨード、またはメシレートである)である。
本発明のこれらおよび他の詳細な実施形態において、各Z14は、同じものであり、かつ/またはブロモもしくはクロロである。本発明の特定の実施形態では、存在する各Z14(2個、3個、または4個のZ14部分となり得る)は、ブロモである。
レクションのチトクロムP450 HTSから得られた生物活性データベースにおいて構築することができる。実際に、CYP1B1基質予測モデルと組み合わせて使用するエフェクター分子としてクマリンを含む本発明の化合物で実施した幾例かの実験を通して、本発明の実現性が実証された(実施例1および2を参照されたい)。
では遊離させないか、またははるかに少ない程度にしか遊離させない化合物が得られた場合、本発明の第7の態様の方法は、追加の、
(d)フルオロフォアが、前記チトクロムP450酵素の活性部位に結合する薬理学的機能を有する分子で置き換えられていることを除き、ステップ(c)で特定した化合物と構造が同一である化合物のモデルを作製するステップと、
(e)前記チトクロムP450酵素の基質であると予測されている、ステップ(d)でモデルを作製した化合物を合成するステップと
を場合により含む。
では実質的に毒性でないことが判明している。本発明の化合物は、CYP1A1酵素を発現する細胞でも細胞傷害性を示し得る。したがって、実際には、本発明の化合物は、(通常はCYP1B1によって)細胞傷害剤に変換される非毒性のプロドラッグである。
態の例は、悪性新生物および腫瘍、癌、白血病、乾癬、骨疾患、(たとえば結合組織の)線維増殖性障害、ならびにアテローム性動脈硬化症を含めた前悪性および悪性の細胞増殖である。
己噴射型製剤を用いることもできる。
一般事項
1H、13C、および31P核磁気共鳴(NMR)スペクトルは、表示する溶媒で、Bruker Avance DPX 500MHzまたはBruker Avance 300MHzのいずれかの分光計によって記録した。化学シフトは、ppmで表示する。シグナル分裂パターンは、一重線(s)、ブロード一重線(bs)、二重線(d)、三重線(t)、四重線(q)、多重線(m)、またはこれらの組合せとして記載する。低分解能エレクトロスプレー(ES)質量スペクトルは、メタノール/水(95:5)または水
アセトニトリル(1:1)+0.1%ギ酸のいずれかを移動相として使用し、陽イオンモードで運転するBruker Microtof質量分析計で記録した。高分解能エレ
クトロスプレー測定は、Bruker Microtof質量分析計で実施した。LC-MS分析は、Agilent HPLC1100(Phenomenex Gemini
Column 5μ C18 110Å 50×3.0mm、溶離液:0~20%のMeOH/H2O)およびダイオードアレイ検出器に続いて、Bruker Microtof質量分析計を用いて実施した。カラムクロマトグラフィーは、シリカゲル(230~400メッシュ)またはRediSep(商標)4、12、40もしくは80gシリカ充填済カラムを用いて実施した。出発材料はすべて、市販されており、さらに精製することなく使用した。反応はすべて、別段記載しない限り、無水かつ不活性な条件下で実施した。
[括弧付き短剣符
3,5-ジメトキシベンズアルデヒド(12.6g、76mmol)を酢酸(350mL)に溶解させた。得られた無色の溶液を0℃に冷却した。臭素(3.9mL)のエタン酸(50mL)溶液を1時間かけて滴下した。加え終えたとき、氷浴を取り外し、得られた淡緑色の溶液を室温で終夜撹拌した。溶液に冷水を加えた。得られた白色の固体を真空濾過によって収集し、水ですすいだ。次いで固体をEtOAcに再溶解させ、シリカゲルに吸着させた。生成物を、ヘキサン/EtOAc(4:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、1(12.5g、66%)を白色の固体として得た。
撹拌子、セプタムキャップ、滴下漏斗、温度計、およびアルゴン導入口を備え付けた三口丸底フラスコに、モルホリン(2.05g、24mmol)およびTHF(40mL)を入れた。フラスコをドライアイス-アセトン浴で-50℃に冷却し、n-BuLiのヘキサン溶液(1.6M、15mL、24mmol)を1回ですべて加えた。10分後、1(4.9g、20mmol)のTHF(30mL)溶液をシリンジで4分間かけて滴下し、混合物を20分かけて約-75℃に冷却した。次いでn-BuLiのヘキサン溶液(1.6M、20mL、32mmol)を、温度を-75℃に保ちながら45分かけて滴下した。n-BuLiを全部加えた後、溶液を35分間撹拌した。ニトロベンゼン(6.90g、46mmol)を10mLのTHFに溶かした溶液を、温度を-75℃に保ちながら滴下漏斗から加えた。得られた黒ずんだ混合物を-75℃で4時間撹拌し、次いで室温に温めた。これを6N HClでpH1に酸性化し、15分間撹拌した。ブライン(100mL)で希釈した後、真空中でTHFを除去した。水溶液をジエチルエーテル(4×40mL)で抽出した。有機層を合わせて2N NaOH(3×40mL)で抽出した。NaOH抽出物を合わせてジエチルエーテル(3×20mL)で洗浄し、次いで濃HClでpH1に酸性化した。得られた混合物をCH2Cl2(3×20mL)で抽出し、有機抽出物を合わせてブラインで洗浄し、乾燥させ(MgSO4)、シリカゲルに吸着させた。生成物を、EtOAc/ヘキサン(1:2)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製した。純粋な2(2.0g、55%)を黄色の固体として得た。
DMF(100mL)中に2(1.1g、6.0mmol)およびK2CO3(1.0g、7.2mmol)を含む撹拌した懸濁液に、ブロモアセトアルデヒドジエチルアセタール(0.93mL、6.0mmol)を滴下した。混合物を4時間還流させた。冷却し
た後、沈殿を濾別し、真空中で溶媒を蒸発させた。未精製残渣をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(4:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、3(1.2g、67%)を透明な油状物として得た。
3(1.2g、4.0mmol)を酢酸(35mL)に溶かし撹拌した溶液を16時間還流させた。冷却した後、溶液を蒸発乾燥させた。粗生成物をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(2:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、4(230mg、28%)を白色の固体として得た。
化合物4(460mg、2.23mmol)をTHF(5mL)およびEtOH(1mL)に溶解させた。激しく撹拌しながらNaBH4(102mg、2.68mmol)を0℃で少量ずつ加えた。懸濁液を0℃で15分間、次いで室温で1時間撹拌した。真空中で溶媒を留去した。未精製残渣をEtOAcに溶かし、水、ブラインで洗浄し、乾燥させた(MgSO4)。残渣をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(1:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、5(388mg、82%)を油状物として得た。
2-クロロエチルアミン塩酸塩(7.2g、62mmol)のCH2Cl2(110mL)懸濁液に、POCl3(2.84mL、31mmol)を-78℃で激しく撹拌しながら15分かけて加えた後、TEA(17.5mL、124mmol)のCH2Cl2(30mL)溶液を4時間かけて加えた。反応混合物を-78℃で1時間撹拌し、次いで室温に温め、2時間撹拌した。得られた固体を濾過し、冷EtOAcで洗浄した。固体を廃棄した。濾液を真空中で約5mLに濃縮し、EtOAcを加えた(10mL)。得られた懸濁液を濾過し、EtOAc(2×10mL)で洗浄した。固体をここでも廃棄した。濾液を真空中で濃縮乾燥した。次いで残渣をTHF(7mL)に溶解させた後、NaBr水溶液(100mLの水中にNaBr(5g))を0℃で20分かけて加えた。次いで混合物を室温に温め、水浴に浸して15時間撹拌した。反応混合物から白色の固体が沈殿した。次いで混合物を冷凍庫で2時間-20℃に保った。結晶質の固体を濾過し、冷水(2×50mL、0℃)および冷EtOAc(2×50mL、0℃)で洗浄した。真空中にて室温で終夜乾燥させた後、生成物6(1.8g、26%)が白色の固体として得られた。
5(300mg、1.44mmol)、6(479mg、2.16mmol)、およびPPh3(565mg、2.16mmol)をTHF(20mL)に懸濁させた懸濁液に、DIAD(0.426mL、2.16mmol)を0℃で滴下した。得られた懸濁液を室温に温め、2時間撹拌した。溶媒を除去し、残渣をフラッシュクロマトグラフィー(70%のアセトンのトルエン溶液)によって精製して、8(250mg、42%)を油状物として得た。
化合物9(SU046-04)は、上と同様の方法を使用して合成した。この化合物は、収率25%(10mg)で得られた。
ベンゾフラン-2イルメタノール(1.0g、6.7mmol)をトルエン(50mL)に溶解させ、ピリジン(653μL、8.1mmol)を加えた。溶液を0℃に冷却した。PBr3(760μL、8.1mmol)を15分かけて滴下した。次いで反応混合物を室温にし、1時間撹拌した。混合物をK2CO3溶液で洗浄し、EtOAc(3×30mL)で抽出した。EtOAc層をブラインで洗浄し、乾燥させた(MgSO4)。真空中で溶媒を留去し、生成物を、ヘキサン:EtOAc(4:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、10(780mg、55%)を油状物として得た。
DMF(10mL)に0℃でナトリウムエトキシド(77mg、1.13mmol)を加え、懸濁液を10分間撹拌した。7-ヒドロキシ-4-メチルクマリン(200mg、1.13mmol)をゆっくりと加え、得られた混合物をこの温度で0.5時間撹拌した。この混合物に10(200mg、0.94mmol)を少量ずつ加えた。得られた反応混合物を室温で2時間撹拌した。真空中でDMFを留去し、残渣をEtOAcに溶かし、ブライン、水、および1M NaOH(2×30mL)で洗浄した。有機層を乾燥させ(MgSO4)、生成物を、ヘキサン:EtOAc(2:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、11(35mg、12%)を白色の固体として得た。
DMF(10mL)中に2-ヒドロキシ-5-フルオロベンズアルデヒド(500mg、3.57mmol)およびK2CO3(524mg、13.79mmol)を含む撹拌した懸濁液に、ブロモアセトアルデヒドジエチルアセタール(0.6mL、3.93mmol)を滴下した。混合物を4時間還流させた。冷却した後、沈殿を濾別し、真空中で溶媒を蒸発させた。未精製残渣をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(4:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、12(300mg、33%)を油状物として得た。
12(300mg、4.0mmol)を酢酸(10mL)に溶かし撹拌した溶液を24時間還流させた。冷却した後、溶液を蒸発乾燥させた。粗生成物をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(4:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、13(180mg、94%)を白色の固体として得た。
化合物13(180mg、1.10mmol)をEtOH(12mL)に溶解させた。激しく撹拌しながらNaBH4(45mg、1.21mmol)を0℃で少量ずつ加えた。懸濁液を0℃で15分間、次いで室温で1.5時間撹拌した。真空中で溶媒を留去した。未精製残渣をEtOAcに溶かし、水、ブラインで洗浄し、乾燥させた(MgSO4)。真空中で溶媒を留去した。残渣をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(3:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、14(150mg、91%)を白色の固体として得た。
化合物14(150mg、0.90mmol)をトルエン(10mL)に溶解させ、溶液を0℃に冷却した。PBr3(102μL、1.08mmol)を15分かけて滴下した。次いで反応混合物を室温にし、1時間撹拌した。真空中で溶媒を留去した。残渣をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(4:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、15(150mg、72%)を油状物として得た。
DMF(3ml)に0℃でナトリウムエトキシド(8.9mg、0.13mmol)を加え、懸濁液を10分間撹拌した。7-ヒドロキシ-4-メチルクマリン(25.4mg、0.14mmol)をゆっくりと加え、得られた混合物をこの温度で0.5時間撹拌した。この混合物に15(30mg、0.13mmol)を少量ずつ加えた。得られた反応混合物を室温で2時間撹拌した。真空中でDMFを留去し、残渣を、ヘキサン:EtOAc(3:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、16(9.0mg、21%)を白色の固体として得た。m/z=325.20(M+H)。
DMF(10mL)中に2-ヒドロキシ-3,5-フルオロベンズアルデヒド(1.0g、6.32mmol)およびK2CO3(960mg、6.95mmol)を含み撹拌した懸濁液に、ブロモアセトアルデヒドジエチルアセタール(1.07mL、6.95mmol)を滴下した。混合物を4時間還流させた。冷却した後、沈殿を濾別し、真空中で溶媒を蒸発させた。未精製残渣をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(4:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、17(380mg、22%)を油状物として得た。
17(380mg、1.39mmol)を酢酸(10mL)に溶かし撹拌した溶液を24時間還流させた。冷却した後、溶液を蒸発乾燥させた。粗生成物(300mg)をEt
OH(5mL)に溶解させた。激しく撹拌しながらNaBH4(73mg、1.98mmol)を0℃で少量ずつ加えた。懸濁液を0℃で15分間、次いで室温で1.5時間撹拌した。真空中で溶媒を留去した。未精製残渣(280mg)をトルエン(20mL)に溶解させ、溶液を0℃に冷却した。PBr3(142μL、1.52mmol)を15分かけて滴下した。次いで反応混合物を室温にし、1時間撹拌した。真空中で溶媒を留去した。残渣をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(4:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、18(210mg、61%)を得た。
DMF(3mL)に0℃でナトリウムエトキシド(8.9mg、0.13mmol)を加え、懸濁液を10分間撹拌した。7-ヒドロキシ-4-メチルクマリン(25.4mg、0.14mmol)をゆっくりと加え、得られた混合物をこの温度で0.5時間撹拌した。この混合物に、2-(ブロモメチル)-5-フルオロベンゾフラン(30mg、0.12mmol)を少量ずつ加えた。得られた反応混合物を室温で2時間撹拌した。真空中でDMFを留去し、残渣を、ヘキサン:EtOAc(3:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、19(8.8mg、21%)を白色の固体として得た。m/z=343.12(M+H)。
DMF(8mL)中に5-フルオロ-2-ヒドロキシ-3-メチルベンズアルデヒド(1.0g、6.49mmol)およびK2CO3(980mg、7.10mmol)を含む撹拌した懸濁液に、ブロモアセトアルデヒドジエチルアセタール(1.10mL、7.15mmol)を滴下した。混合物を4時間還流させた。冷却した後、沈殿を濾別し、真空中で溶媒を除去した。未精製残渣をシリカゲルに吸着させ、フラッシュクロマトグラフィーによって精製した。生成物をヘキサン/EtOAc(4:1)で溶出して、20(350mg、20%)を油状物として得た。
20(350mg、1.30mmol)を酢酸(10mL)に溶かし撹拌した溶液を24時間還流させた。冷却した後、溶液を蒸発乾燥させた。粗生成物(300mg)をTHF(5mL)に溶解させた。激しく撹拌しながらNaBH4(78mg、2.02mmol)を0℃で少量ずつ加えた。懸濁液を0℃で15分間、次いで室温で1.5時間撹拌した。真空中で溶媒を留去した。未精製残渣(260mg)をトルエン(20mL)に溶解させ、溶液を0℃に冷却した。PBr3(135μL、1.44mmol)を15分かけて滴下した。次いで反応混合物を室温にし、1時間撹拌した。真空中で溶媒を留去した。残渣をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(4:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、21(200mg、36%)を得た。
DMF(3mL)に0℃でナトリウムエトキシド(8.9mg、0.13mmol)を加え、懸濁液を10分間撹拌した。7-ヒドロキシ-4-メチルクマリン(25.4mg、0.14mmol)をゆっくりと加え、得られた混合物をこの温度で0.5時間撹拌した。この混合物に21(30mg、0.12mmol)を少量ずつ加えた。得られた反応混合物を室温で2時間撹拌した。真空中でDMFを留去し、残渣を、ヘキサン:EtOAc(3:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、22を白色の固体(11mg、26%)として得た。m/z=33.20(M+H)。
DMF(20mL)中に2-ヒドロキシ-5-メトキシベンズアルデヒド(2.0g、13.16mmol)およびK2CO3(2.18g、15.79mmol)を含む撹拌した懸濁液に、ブロモアセトアルデヒドジエチルアセタール(2.43mL、15.79mmol)を滴下した。混合物を4時間還流させた。冷却した後、沈殿を濾別し、真空中で溶媒を蒸発させた。未精製残渣をシリカゲルに吸着させ、フラッシュクロマトグラフィーによって精製した。生成物をヘキサン/EtOAc(4:1)で溶出して、目的化合物23(1.10g、31%)を油状物として得た。
23(1.0g、3.74mmol)を酢酸(10mL)に溶かし撹拌した溶液を16時間還流させた。冷却した後、溶液を蒸発乾燥させた。粗生成物をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(4:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、24(160mg、24%)を白色の固体として得た。
化合物24(3.5g、19.9mmol)をEtOH(20mL)に溶解させた。激しく撹拌しながらNaBH4(957mg、25.87mmol)を0℃で少量ずつ加えた。懸濁液を0℃で15分間、次いで室温で1.5時間撹拌した。真空中で溶媒を留去した。残渣をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(2:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、25(3.0g、85%)を白色の固体と
して得た。
化合物25(40mg、0.22mmol)をトルエン(5mL)に溶解させ、溶液を0℃に冷却した。PBr3(21μL、0.22mmol)を10分かけて滴下した。次いで反応混合物を室温にし、1時間撹拌した。真空中で溶媒を留去した。残渣をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(4:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、26(40mg、74%)を油状物として得た。
DMF(5mL)に0℃でナトリウムエトキシド(12mg、0.18mmol)を加え、懸濁液を10分間撹拌した。7-ヒドロキシ-4-メチルクマリン(32mg、0.17mmol)をゆっくりと加え、得られた混合物をこの温度で0.5時間撹拌した。この混合物に26(40mg、0.17mmol)を少量ずつ加えた。得られた反応混合物を室温で2時間撹拌した。真空中でDMFを留去し、残渣を、ヘキサン:EtOAc(3:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、27(17mg、30%)を白色の固体として得た。m/z=337.04(M+H),673.13(2M+H)。
DMF(15mL)中に2-ヒドロキシ-3-メトキシベンズアルデヒド(4.0g、26.3mmol)およびK2CO3(4.36g、31.60mmol)を含む撹拌した懸濁液に、ブロモアセトアルデヒドジエチルアセタール(4.86mL、31.60mmol)を滴下した。混合物を4時間還流させた。冷却した後、沈殿を濾別し、真空中で溶媒を蒸発させた。未精製残渣をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(4:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、28(2.60g、36%)を得た。
28(2.0g、7.46mmol)を酢酸(10mL)に溶かし撹拌した溶液を24時間還流させた。冷却した後、溶液を蒸発乾燥させた。粗生成物をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(4:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、29(450mg、34%)を白色の固体として得た。
化合物29(450mg、2.56mmol)をEtOH(10mL)に溶解させた。激しく撹拌しながらNaBH4(104mg、2.81mmol)を0℃で少量ずつ加えた。懸濁液を0℃で15分間、次いで室温で1.5時間撹拌した。真空中で溶媒を留去した。得られた未精製アルコール残渣をトルエン(5mL)に溶解させ、溶液を0℃に冷却した。PBr3(240μL、2.56mmol)を10分かけて滴下した。次いで反応混合物を室温にし、1時間撹拌した。真空中で溶媒を留去した。残渣をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(4:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、30(150mg、24%)を油状物として得た。
DMF(5mL)に0℃でナトリウムエトキシド(12mg、0.18mmol)を加え、懸濁液を10分間撹拌した。7-ヒドロキシ-4-メチルクマリン(32mg、0.17mmol)をゆっくりと加え、得られた混合物をこの温度で0.5時間撹拌した。この混合物に30(40mg、0.17mmol)を少量ずつ加えた。得られた反応混合物を室温で2時間撹拌した。真空中でDMFを留去し、残渣を、ヘキサン:EtOAc(3:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、31(14mg、25%)を白色の固体として得た。m/z337.04(M+H),673.13(2M+H)。
DMF(10mL)に0℃でナトリウムエトキシド(76mg、1.10mmol)を加え、懸濁液を10分間撹拌した。7-ヒドロキシ-4-メチルクマリン(215mg、1.22mmol)をゆっくりと加え、得られた混合物をこの温度で0.5時間撹拌した。この混合物に、5-ブロモ-2-(クロロメチル)ベンゾフラン(250mg、1.02mmol)を少量ずつ加えた。得られた反応混合物を室温で2時間撹拌した。真空中でDMFを留去し、残渣を、ヘキサン:EtOAc(3:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、32(120mg、31%)を白色の固体として得た。
5-クロロ-2-ヒドロキシベンズアルデヒド(5.0g、32.1mmol)およびK2CO3(4.87g、35.3mmol)をDMF(20mL)の撹拌懸濁液に、ブロモアセトアルデヒドジエチルアセタール(5.43mL、35.3mmol)を滴下した。混合物を4時間還流させた。冷却した後、沈殿を濾別し、真空中で溶媒を蒸発させた。未精製残渣をシリカゲルに吸着させ、フラッシュクロマトグラフィーによって精製した。生成物をヘキサン/EtOAc(4:1)で溶出して、33(4.10g、38%)を油状物として得た。
33(4.10g、15.07mmol)を酢酸(20mL)に溶かし撹拌した溶液を24時間還流させた。冷却した後、溶液を蒸発乾燥させた。粗生成物をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(4:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、34(550mg、20%)を白色の固体として得た。
化合物34(160mg、0.89mmol)をEtOH(5mL)に溶解させた。激しく撹拌しながらNaBH4(36mg、0.98mmol)を0℃で少量ずつ加えた。懸濁液を0℃で15分間、次いで室温で1.5時間撹拌した。真空中で溶媒を留去した。得られた未精製アルコール残渣をトルエン(5mL)に溶解させ、溶液を0℃に冷却した。PBr3(92μL、0.98mmol)を10分かけて滴下した。次いで混合物を室
温にし、1時間撹拌した。真空中で溶媒を留去した。残渣をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(4:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、35(128mg、57%)を油状物として得た。
DMF(5mL)に0℃でナトリウムエトキシド(60mg、0.24mmol)を加え、懸濁液を10分間撹拌した。7-ヒドロキシ-4-メチルクマリン(47mg、0.27mmol)をゆっくりと加え、得られた混合物をこの温度で0.5時間撹拌した。この混合物に、2-(ブロモメチル)-5-メトキシベンゾフラン(40mg、0.17mmol)を少量ずつ加えた。得られた反応混合物を室温で2時間撹拌した。真空中でDMFを留去し、残渣を、ヘキサン:EtOAc(3:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、目的化合物を白色の固体(2.7mg、3%)として得た。m/z 341.10(M+H)。
3,5-ジメトキシベンズアルデヒド(12.6g、76mmol)を酢酸(350mL)に溶解させた。得られた無色の溶液を0℃に冷却した。臭素(3.9mL)の酢酸(50mL)溶液を1時間かけて滴下した。滴下が完了したとき、氷浴を取り外し、得られた淡緑色の溶液を室温で終夜撹拌した。溶液に冷水を加えた。得られた白色の固体を真空濾過によって収集し、水ですすいだ。次いで固体をEtOAcに再溶解させ、シリカゲル
に吸着させた。生成物を、ヘキサン/EtOAc(4:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、37(12.5g、66%)を白色の固体として得た。
撹拌子、セプタムキャップ、滴下漏斗、温度計、およびアルゴン導入口を備え付けた、乾燥した三口丸底フラスコに、モルホリン(2.05g、24mmol)およびTHF(40mL)を入れた。フラスコをドライアイス-アセトン浴で-50℃に冷却し、n-BuLiのヘキサン溶液(1.6M、15mL、24mmol)を1回ですべて加えた。10分後、2-ブロモ-3,5-ジメトキシベンズアルデヒド37(4.9g、20mmol)のTHF(30mL)溶液をシリンジで4分間かけて滴下し、混合物を20分かけて約-75℃に冷却した。次いでn-BuLiのヘキサン溶液(1.6M、20mL、32mmol)を、温度を-75℃に保ちながら45分かけて滴下した。n-BuLiを全部加えた後、溶液を35分間撹拌した。ニトロベンゼン(6.90g、46mmol)を10mLのTHFに溶かした溶液を、温度を-75℃に保ちながら滴下漏斗から加えた。得られた黒ずんだ混合物を-75℃で4時間撹拌し、次いで室温に温めた。これを6N HClでpH1に酸性化し、15分間撹拌した。ブライン(100mL)で希釈した後、真空中でTHFを除去した。水溶液をジエチルエーテル(4×40mL)で抽出した。有機層を合わせて2N NaOH(3×40mL)で抽出した。NaOH抽出物を合わせてジエチルエーテル(3×20mL)で洗浄し、次いで濃HClでpH1に酸性化した。得られた混合物をCH2Cl2(3×20mL)で抽出し、有機抽出物を合わせ、ブラインで洗浄し、乾燥させ(MgSO4)、シリカゲルに吸着させた。生成物を、EtOAc/ヘキサン(1:2)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、38(2.0g、55%)を黄色の固体として得た。
DMF(100mL)中に38(1.1g、6.0mmol)およびK2CO3(1.0g、7.2mmol)を含む撹拌した懸濁液に、ブロモアセトアルデヒドジエチルアセタール(0.93mL、6.0mmol)を滴下した。混合物を4時間還流させた。冷却した後、沈殿を濾別し、真空中で溶媒を蒸発させた。未精製残渣をシリカゲルに吸着させ、フラッシュクロマトグラフィーによって精製した。生成物をヘキサン/EtOAc(4:1)で溶出して、39(1.2g、67%)を油状物として得た。
39(1.2g、4.0mmol)を酢酸(35mL)に溶かし撹拌した溶液を16時間還流させた。冷却した後、溶液を蒸発乾燥させた。粗生成物をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(2:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、40(230mg、28%)を白色の固体として得た。
化合物39(460mg、2.23mmol)をTHF(5mL)およびEtOH(1mL)に溶解させた。激しく撹拌しながらNaBH4(102mg、2.68mmol)を0℃で少量ずつ加えた。懸濁液を0℃で15分、次いで室温で1時間撹拌した。真空中で溶媒を留去した。未精製残渣をEtOAcに溶かし、水、ブラインで洗浄し、乾燥させた(MgSO4)。残渣をシリカゲルに吸着させ、ヘキサン/EtOAc(1:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、41(388mg、82%)を白色の固体として得た。
化合物41(130mg、0.63mmol)をトルエン(5mL)に溶解させ、溶液を0℃に冷却した。PBr3(64μL、0.69mmol)を10分かけて滴下した。次いで反応混合物を室温にし、1時間撹拌した。真空中で溶媒を留去した。未精製残渣を次のステップで使用した。DMF(5mL)に0℃でナトリウムエトキシド(80mg、0.24mmol)を加え、懸濁液を10分間撹拌した。7-ヒドロキシ-4-メチルクマリン(47mg、0.27mmol)をゆっくりと加え、得られた混合物をこの温度で0.5時間撹拌した。この混合物に、2-(ブロモメチル)-5-メトキシベンゾフラン(40mg、0.17mmol)を少量ずつ加えた。得られた反応混合物を室温で2時間撹拌した。真空中でDMFを留去し、残渣を、ヘキサン:EtOAc(3:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、42(2.7mg、3%)を白色の固体として得た。m/z=367.05(M+H),733.15(2M+H)。
トルエン(100ml)中の9-アントラセンメタノール(2.0g、9.6mmol)の懸濁液に0℃で撹拌しながら、PBr3(1.2mL、12.51mmol)を加え、懸濁液を0℃で1時間撹拌した。次いで反応混合物を室温にし、さらに1時間撹拌した。混合物が黄色の溶液に変わった。K2CO3(10mL)を加えて反応をクエンチした。真空中でトルエンを留去した。残渣をEtOAcに溶かし、飽和K2CO3水溶液、水、およびブラインで洗浄し、乾燥させた(MgSO4)。真空中で溶媒を留去し、未精製残渣を、ヘキサン:EtOAc(2:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、47(1.4g、54%)を黄色の固体として得た。
2.21mmol)を加え、懸濁液を10分間撹拌した。7-ヒドロキシ-4-メチルクマリン(390mg、2.21mmol)をゆっくりと加え、得られた混合物をこの温度で0.5時間撹拌し、次いで室温に到達させた。この混合物に47(500mg、1.85mmol)を少量ずつ加えた。得られた反応混合物を室温で16時間撹拌した。真空中でDMFを留去し、残渣をEtOAcに溶かし、ブライン、水、および1M NaOH(2×30mL)で洗浄した。有機層を乾燥させ(MgSO4)、生成物を、ヘキサン:EtOAc(2:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、48(200mg、30%)を黄色の固体として得た。
トグラフィーによって精製して、49(100mg、15%)を白色の固体として得た。
りと留去して、クロロホルメート中間体54を白色の固体として得た。これを次のステップで直ちに使用した。ゲムシタビンHCl(200mg、0.67mmol)をH2O(2mL)に溶解させた。これに、酢酸エチル(5mL)に予め溶解させたKHCO3(67mg、0.67mmol)および54(147mg、0.67mmol)を加えた。混合物を100℃で16時間撹拌した。真空中で溶媒を留去し、生成物を、3%のMeOHの酢酸エチル溶液を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、56(15mg、5%)を油状物として得た。m/z=448.13(M+H)。
(40mg、15%)を油状物として得た。m/z=378.13(M+H)。
ベンゾフラン-2-イルメタノール59(300mg、2.03mmol)のTHF(5mL)溶液を0℃に冷却した。TEA(280μL、2.03mmol)を滴下した後、クロロギ酸p-ニトロフェニル(282mg、3.05mmol)を少量ずつ加えた。得られた溶液を室温で2時間撹拌した。真空中で溶媒を留去し、未精製残渣を、ヘキサン:EtOAc(3:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、60(350mg、54%)を白色の固体として得た。
(5,7-ジメトキシベンゾフラン-2-イル)メタノール6(100mg、0.48mmol)のTHF(3mL)溶液を0℃に冷却した。TEA(69μL、0.48mmol)を滴下した後、クロロギ酸p-ニトロフェニル(100mg、0.72mmol)を少量ずつ加えた。得られた溶液を室温で2時間撹拌した。真空中で溶媒を留去し、未精製残渣を、ヘキサン:EtOAc(3:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、61(120mg、67%)を白色の固体として得た。
ンゾフラン-2-イル)メチル1-(3,3-ジフルオロ-4-ヒドロキシ-5-(ヒドロキシメチル)-テトラヒドロフラン-2-イル)-2-オキソ-1,2-ジヒドロピリミジン-4-イルカルバメート(66)SU048-04
ゲムシタビンHCl(1.0g、3.3mmol)をピリジン(10mL)中で10分間撹拌した(2×5mL)。ピリジンを留去した。ピリジン(10mL)を加え、1,1,3,3,-テトライソプロピルジシロキサン(1.17mL、3.63mmol)を滴下した。得られた混合物を100℃で16時間撹拌した。さらに1,1,3,3,-テトライソプロピルジシロキサン(1mL)を加え、混合物を120℃で1時間撹拌した。反応混合物を室温に冷却し、真空中で溶媒を留去した。得られた未精製固体をEtOAc/エーテル(1:1)から再結晶させて、62(600mg、36%)を白色の固体として得た。m/z=506.23(M+H)。
62(300mg、0.59mmol)をTHF(5mL)に溶かし撹拌した溶液に、ベンゾフラン-2-イルメチル4-ニトロフェニルカーボネート(223mg、0.71mmol)を加えた。得られた溶液を100℃で4日間撹拌した。真空中で溶媒を留去し、生成物を分取HPLCによって精製して、63(350mg、87%)を油状物として得た。m/z=680.0(M+H),1359.49(2M+H)。
化合物63(200mg、0.29mmol)をTHF(1.5mL)に溶解させた。これに、フッ化テトラ-n-ブチルアンモニウムを加え、得られた溶液を室温で15分間撹拌した。真空中で溶媒を留去した。生成物を、5%のMeOHのEtOAc溶液を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、65(30mg、23%)を油状物として得た。m/z=438.14(M+H),874.24(2M+H)。
62(108mg、0.21mmol)をTHF(5mL)に溶かし撹拌した溶液に、61(100mg、0.27mmol)を加えた。得られた溶液を100℃で4日間撹拌した。真空中で溶媒を留去して、64を油状物として得た。これをそれ以上精製せずに次のステップに使用した。化合物64(100mg、0.14mmol)をTHF(1.5mL)に溶解させた。これにフッ化テトラ-n-ブチルアンモニウムを加え、得られた溶液を室温で15分間撹拌した。真空中で溶媒を留去した。生成物を、5%のMeOHのEtOAc溶液を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、66(18mg、26%)を油状物として得た。
DMF(30mL)中の1-フルオロ-4-ニトロベンゼン(1.0g、7.09mmol)に、ジエタノールアミン(2.70mL、2.5mmol)を加えた。得られた混合物を140℃で3.5時間撹拌した。溶液を室温に冷却し、真空中で溶媒を留去した。残渣をEtOAc(30mL)に溶解させ、水(3×10mL)およびブライン(3×20mL)で洗浄し、乾燥させた(MgSO4)。真空中で溶媒を留去し、生成物を、EtOAcを溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、67(400mg、25%)を黄色の固体として得た。
67(400mg、1.77mmol)およびイミダゾール(481mg、7.08mmol)をDMF(10mL)に溶かした冷却した溶液に、塩化tert-ブチルジメチルシリル(2.72mg、3.54mmol)を滴下した。混合物を室温に到達させ、48時間撹拌した。真空中で溶媒を留去し、生成物を、10%のEtOAcのエーテル溶液を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、68(200mg、25%)を黄色の固体として得た。
10%Pd担持炭素(20mg)の存在下、化合物68(200mg、0.44mmol)を水素で処理した。16時間撹拌した後、混合物をセライトで濾過し、真空中で溶媒を留去して、中間体アミノアニリン生成物を得た。次いでこれを、THF(15mL)中にてトリエチルアミン(260μL、0.70mmol)の存在下でトリホスゲン(195mg、0.70mmol)と反応させた。室温で1時間撹拌した後、白色の沈殿を濾別
し、真空中で溶媒を留去して、イソシアネートアニリンの未精製残渣を得た。これを次のステップで直ちに使用した。イソシアネート中間体をTHF(10mL)に溶解させた。溶液を0℃に冷却した。ベンゾフラン-2-イルメタノール59(100mg、1.35mmol)を加え、得られた混合物を室温で16時間撹拌した。混合物を氷上で冷却し、TBAF(996μL、3.38mmol)を5分かけて滴下した。得られた混合物を室温に温め、次いで20分間撹拌した。真空中でTHFを留去した。中間体をピリジン(5mL)に溶解させ、これにメタンスルホニルクロリド(12.5μL、0.16mmol)を加えた。混合物を室温で1時間撹拌した。真空中でピリジンを留去し、粗生成物を、ヘキサン:EtOAc(3:1)を溶離液としてフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、69(5mg、2%)を白色の固体として得た。m/z=408.07(M+H),837.16(2M+H)。
NaOH(2×30mL)で洗浄した。有機層を乾燥させ(MgSO4)、真空中で溶媒を留去して、エチル4-(ナフタレン-1-イルメトキシ)ベンゾエート(1.7g、5.55mmol)を得た。次いでこれをTHFに溶解させ、激しく撹拌しながらLiAlH4(211mg、5.55mmol)を少量ずつ加えた。懸濁液を室温で3時間撹拌した。真空中でTHFを留去した。未精製残渣をEtOAcに溶かし、水、ブラインで洗浄し、乾燥させた(MgSO4)。真空中でEtOAcを留去して、(4-(ナフタレン-1-イルメトキシ)フェニル)メタノール(1.3g、4.9mmol)を粗生成物として得た。これをそれ以上精製せずに次の反応ステップで使用した。
ノキシ)メチレン)ジベンゼンを油状物(450mg、74%)として得た。この中間体を次の反応で使用した。
DMF(10mL)に0℃でナトリウムエトキシド(580mg、8.5mmol)を加えた。得られた懸濁液を15分間撹拌した。4-ヒドロキシ安息香酸エチル(1.4g、8.5mmol)をゆっくりと加え、得られた混合物をこの温度で0.5時間撹拌し、次いで室温に到達させた。この混合物に、DMF(5mL)に予め溶解させた10(1.5g、7.1mmol)を滴下した。得られた反応混合物を室温で2時間撹拌した。真空中でDMFを留去し、残渣をEtOAcに溶かし、ブライン、水、および1M NaOH(2×30mL)で洗浄した。有機層を乾燥させ(MgSO4)、真空中で溶媒を留去して、93を白色の固体(920mg、44%)として得た。
化合物93(400mg、1.29mmol)をTHF(15mL)に溶解させ、激しく撹拌しながらLiAlH4(49mg、1.29mmol)を少量ずつ加えた。懸濁液を室温で1時間撹拌した。真空中でTHFを留去した。未精製残渣をEtOAcに溶かし、水、ブラインで洗浄し、乾燥させた(MgSO4)。真空中でEtOAcを留去して、(4-(ベンゾフラン-2-イルメトキシ)フェニル)メタノール(220mg、67%)を粗生成物として得た。これをトルエン(10mL)に溶解させた。溶液を0℃に冷却した。PBr3(98μL、1.04mmol)を15分かけて滴下した。得られた混合物を室温で1時間撹拌した。次いでこれを飽和K2CO3溶液で洗浄し、EtOAc(3×30mL)で抽出した。EtOAc層をブラインで洗浄し、乾燥させた(MgSO4)。真空中で溶媒を留去して、2-((4-(ブロモメチル)フェノキシ)メチル)ベンゾフランを無色の油状物(132mg)として得た。この中間体を次の反応で使用した。
(実施例1)
プロドラッグのCYP1B1代謝
ベンゾフランエーテル連結クマリンおよびカルバメート連結クマリンのCYP1イソ酵素およびヒト肝臓ミクロソーム(HLM)による切断に対する置換基の効果
市販のSupersomal(商標)CYP1A1、CYP1A2、CYP1B1、およびプールしたヒト肝臓ミクロソーム(供給元:BD Gentest、英国オックスフォード)が酵素スクリーンを構成しており、この酵素スクリーンは肝臓を含めた正常組織で発現されるチトクロムP450酵素を基準として、癌において発現されるCYP1B1によるプロドラッグ切断の効率および選択性を制御する構造上の特長の根底にある構造と活性の関係(SAR)を明らかにするものであった。HLMは、ヒト患者肝臓由来であり、供給業者によれば、CYP1A1またはCYP1B1を含まないが、CYP1A2、CYP2A6、CYP2B6、CYP2B6、CYP2C8、CYP2C9、CYP2D6、CYP2E1、CYP3A4、およびCYP4Aを含む、一群のチトクロムP450を含有する。
素の代謝研究では、37℃でpH7.4の10mmol dm-3のリン酸カリウム緩衝液中の10pmolの酵素、100μmol dm-3のNADPHを使用した。Supersomal(商標)酵素の代謝は、DMSOに溶解させたプロドラッグの保存液を加えて最終濃度を10μmol dm-3のプロドラッグおよび0.5%のDMSOとすることにより始動させた。HLMスクリーニングでは、37℃でpH7.4の10mmol
dm-3のリン酸カリウム緩衝液中の60マイクロリットルのミクロソーム、100μmol dm-3のNADPHを、1.5mlの合計反応体積で使用した。
rates of reductive elimination of leaving groups from indolequinone prodrugs: a
key factor in controlling hypoxia-selective drug release」、Biochem Pharmacol.、63巻:1629~39頁、2002年を参照されたい)。
みのある位置であるので、置換されないままである(R4およびR6=H)。ベンゾフランの5位および7位での置換基効果、ならびにCYP1イソ酵素による切断効率および選択性に影響する構造と活性の関係(SAR)は、エーテルまたはカルバメートリンカー切断については予測不可能である。
モデルプロドラッグライブラリーをCYP1B1基質予測モデルと組み合わせると、プロドラッグの活性化および切断に基質特異性が結び付けられる
ハイスループットスクリーン(HTS)を実施して、CYP1B1の生物活性データセットを構築する
活性に差異を生じさせる基礎構造および大きな生物活性データセット(これらから基質特異性モデルを構築する)を特定する目的で、ChemDiv Diversityの50,000種の試験化合物コレクションおよびChemDiv Kinase Targetedの10,000種の試験化合物コレクションを含めた2通りの市販のライブラリーに対して、目的酵素CYP1B1のスクリーニングを行った。HTSは、液体ハンドラー(Beckman FXp)、バルクディスペンサー(Matrix Wellmate)、および発光プレートリーダー(Molecular Devices Analyst AD plate Reader)を使用して、小型化した384ウェルフォーマットで実施した。P450-Glo(商標)Assaysは、チトクロムP450活性を
測定する発光法を提供するものである。従来の反応は、組み換え酵素のヒトSupersomal CYP1B1プラス還元酵素(BD Gentest(商標)、英国)を発光性のチトクロムP450基質、すなわち、CYP1B1の基質であるがルシフェラーゼの基質ではない、ルシフェリン6’クロロエチルエーテル(ルシフェリン-CEE)と共にインキュベートすることにより実施される。ルシフェリン-CEEは、ルシフェリン産物に変換され、この産物が、Luciferin Detection Reagent(Promega(米国マディソン)のCYP1B1 Luminescent Assay Kit、P450-Glo(商標))との第二の反応において検出される。この試薬は、同時にチトクロムP450反応を停止させ、半減期が2時間を超える安定した発光シグナルを起こさせる。第二の反応で生じた光の量は、CYP1B1の活性に比例する。生化学的な終点は、ルシフェリン-CEEの見かけのKm(20μmol dm-3)で働く酵素(0.5pmol/ウェル)の基質阻害であった。このアッセイは、384ウェルフォーマットで実施したとき、通常は0.6より大きい優秀なZ’因子(Z’=1.0は、完璧に強固な再現性の高いアッセイであることを示す)を特徴とする。負の対照は、酵素ターゲットの変更されていない状態を定めた活性のレベルであった一方で、正の対照は、ヒットを定めた活性のレベルであった。負の対照は、CYP1B1/KPO4/NADPH/基質の反応混合物と、試験化合物の可溶化に使用した等濃度の1%DMSOを含有するものであった。アッセイの正の対照は、CYP1B1/KPO4/NADPH 基質の反応混合物に、最終濃度5μmol dm-3でCYP1B1酵素活性を完全に阻害するα-ナフトフラボンを加えたものを含有するものであった。正および負の対照をすべての384ウェルプレートの外側の各列に配置し、試験化合物を残りの320ウェルに配置した。ヒットの定義は、0.5μmol dm-3の濃度でCYP1B1活性を80~100%阻害する基質阻害剤である試験化合物である。
プロドラッグ設計における主要な課題は、目的酵素に対する基質特異性を維持しながら、トリガー、リンカー、およびエフェクター化学を統合する戦略を明確にすることである。CYP1B1 HTSは、潜在的なトリガー部分を特定する際に極めて価値あるものであったが、リンカーおよびエフェクター薬物を組み込む、後続の「ヒットからリードへの」化学は、最終プロドラッグ構造が目的酵素による活性化に最適にならないかもしれないことを意味する場合もあった。(総計60,000種の試験化合物になる)2通りのHT
Sスクリーンからの膨大な量の構造データの最適な用い方は、拡張連結性フィンガープリントによる谷本の類似性探索をベースとするGaussian Kernel重み付きk近傍法(k-NN)アルゴリズムを使用して、チトクロムP450 1B1基質阻害のin silico予測モデルを開発することにより実現した。CYP1B1カーネル重み付きk-NNモデルの最適なパラメータは、ChemDivのDiverseおよびKinaseライブラリーからの45,000種および9,000種の試験化合物から選択された訓練セットについて、leave-one-out交差検定を使用して選択した。総計6,000種の残りの試験化合物は、基質阻害を予測するモデルの精度を確認するために内部試験セットとして使用した。20%を上回るが80%を下回る阻害を示す任意の試験化合物は、非分類に指定した。モデルは、分類された非基質阻害剤の89%および分類された基質阻害剤の95%を正確に予測した。CYP1B1基質予測モデルプロトコールは、推定上のプロドラッグ構造を、インターフェースを介して、ChemDraw/IsisDrawなどの標準の化学描画パッケージと結合させるのを容易にするために、Scitegic Web Portにアップロードした。
CYP1B1基質予測モデルの外部試験セットを構成する384ウェルストックプレートを構築し、このストックプレートには(1)公知のCYP1B1基質阻害剤(たとえば、テトラメトキシスチルベン、β-エストラジオール、α-ナフトフラボン、エトキシレゾルフィン、リスベラトロールなどが挙げられる)、(2)CYP1B1基質阻害剤でない化合物(たとえば、キニジン(CYP2D6の強力な特異的阻害剤)、スルファフェナゾール(CYP2C9の強力な特異的阻害剤)などが挙げられる)、(3)モデルプロドラッグVG016-05およびVG035-05、ならびに(4)ホスホロアミデートマスタードプロドラッグSU025-04およびSU046-04を組み込んだ。外部試験セット保存濃度は、DMSO中に10mmol dm-3であり、主要なCYP1B1 HTSについて記載した同じ方法を使用して、0.5mmol dm-3の最終濃度でのCYP1B1基質阻害百分率を決定した。実験を3通りに実施して、CYP1B1活性の平均基質阻害%±標準偏差を得た。すべての外部試験セット構造を、Scitegic Web Portを介してCYP1B1基質予測モデルに照会として送信して、CYP1B1の基質阻害%の予測値を生成し、基質阻害%の生化学的実測値と比較した。
野生型CHO細胞ならびにCYP1A1およびCYP1B1アイソザイムを発現するように操作したCHO細胞におけるプロドラッグ細胞傷害性
操作したCHO細胞を使用して、CYP1発現を媒介とする選択的な細胞死滅を実証した。以下に記載する実験において、CYP1A1(CHO/CYP1A1)またはCYP1B1(CHO/CYP1B1)のいずれかの酵素を発現するように操作した野生型CHO細胞に化合物を曝した。
11細胞を、標準の細胞培養条件下で増殖させた。細胞は、5%のCO2を加えた加湿雰囲気中にて37℃で増殖させた。
CHO細胞におけるヒトcDNA CYP1A1またはcDNA CYP1B1のジヒドロ葉酸還元酵素(DHFR)遺伝子増幅を使用して、ヒトP450還元酵素と同時に発現される高レベルの機能性酵素を得た(前掲書;Ding Sら、Biochem J.、356巻(2部):613~9頁、2001年)。改変CYP1A1またはCYP1B1 cDNAを消化し、哺乳動物発現ベクターpDHFRに連結して、プラスミドpDHFR/1A1およびpDHFR/1B1をそれぞれ作製した(前掲書)。細胞培養およびCHO DUKXB11へのDNA形質移入は、文献に記載の方法に従って実施し、形質移入された細胞は、ヌクレオシド欠如培地で増殖させることにより、DHFR+表現型を選抜した(前掲書)。形質移入したCYP1A1またはCYP1B1 cDNAを増幅させるために、DHFR+クローンをプールし、徐々に増大させたMTX濃度(0.02~0.1μM)で増殖させた。0.1mMのMTX選別で残存した細胞クローンを単離し、0.3μMのMTXでさらに選抜した。得られた細胞系を、CYP1A1またはCYP1B1発現について免疫ブロット法によって分析した。文献(前掲書)に記載の方法に従って、高レベルの各酵素を発現する細胞系に、全長ヒトチトクロムP450還元酵素(CPR)cDNAを含んでいるプラスミドpcDNA/HRを安定に形質移入し、G418(0.8mg/ml)およびMTX(0.3μM)で選抜した。耐性のあるクローンを単離した後、G418の濃度を0.4mg/mlに下げ、クローン化を繰り返して細胞系の均一性を確実なものにした。cDNA CYP1A1を運搬するプラスミドを形質移入し、引き続いてCPR cDNAを形質移入したCHO細胞系をCHO/CYP1A1と称し、cDNA CYP1B1を運搬するプラスミドを形質移入し、引き続いてCPR cDNAを形質移入したCHO細胞系をCHO/CYP1B1と称した。
文献(Ding Sら、1997年(その内容を参照により本明細書に援用する))にある標準の方法を使用して、細胞を収集し、超音波処理によって溶解させた。タンパク質(通常は50μgの溶解質)をSDS/PAGEによって分離し、ニトロセルロース膜に移し、標準の方法(Paine MJら、Arch.Biochem.Biophys.、328巻:380~388頁、1996年(その内容も参照により本明細書に援用する))を使用して探索した。ヒトCYP1A1プラス還元酵素Supersomes(商標)、ヒトCYP1A2プラス還元酵素Supersomes(商標)、およびCYP1B1プラス還元酵素Supersomes(商標)(BD Biosciences、英国オックスフォード)を、細胞系における酵素発現を免疫化学的に検出するための正の対照(通常は0.03~0.3pmol)として使用した。WB-1 B1一次抗体(1:1500希釈、BD Biosciences、英国オックスフォード)、およびCYP1A1と交差反応する抗CYP1A2抗体(1:2000希釈、Cancer Research Technology、英国ロンドン)を使用して、それぞれCYP1B1発現およびCYP1A1発現を検出した。二次抗体は、1:500希釈で使用したヤギ抗ウサギIgGであった。Enhanced Chemiluminescence(ECL)
ウエスタンブロット検出キット(GE Healthcare Life Sciences、Amersham、英国バッキンガムシア)を使用して免疫ブロットを展開した。
添付の図面の図1aは、形質移入していないCHO DUKXB11細胞またはCHO/CYP1A1細胞系ではどちらにおいても検出できない、CHO/CYP1B1細胞系由来の溶解質におけるCYP1B1タンパク質発現の検出を示す、典型的なウエスタンブロットである。バンドは、56kDaの分子量に相当し、ヒトCYP1B1 Supersomal(商標)酵素のバンドと一致する。図1bは、形質移入していないCHO DUKXB11細胞またはCHO/CYP1B1細胞系ではどちらにおいても検出できない、CHO/CYP1A1細胞系由来の溶解質におけるCYP1A1タンパク質発現の検出を示す典型的なウエスタンブロットである。バンドは、60kDaの分子量に相当し、抗CYP1A2抗体の交差反応性によって検出されるヒトCYP1A1 Supersomal(商標)酵素のバンドと一致する。
エトキシキシレゾルフィンO-脱エチル化(EROD)アッセイは、機能性のCYP1活性を確認するのに広く使用される(Chang TKおよびWaxman DJ、「Enzymatic Analysis of cDNA-Expressed Human CYP1A1, CYP1A2, and CYP1B1 with 7-Ethoxyresorufin as Substrate」、Methods Mol.Biol.、320巻:85~90頁、2006年(その内容を参照により本明細書に援用する))。このアッセイでは、580nmでの蛍光発光によって継続的にモニターされる、酵素産物のレゾルフィンを生じる、7-エトキシレゾルフィンのCYP1A1、CYP1A2、およびCYP1B1によるO-脱アルキル化を測定する。酵素活性を測定する別のアッセイは、Cali JJら、Expert.Opin.Drug Metabolism Toxicol.、2巻(4号):629~45頁、2006年(その内容を参照により本明細書に援用する)にある、ルシフェリン-CEEをCYP1酵素の発光基質として利用する、市販のPromega P450-Glo(商標)Assayである。ERODアッセイおよびPromega P450-Glo(商標)Assayを選択的および非選択的CYP1阻害剤と共に使用して、上で言及したCHO細胞系が、予想されたCYP1酵素を機能しうる形で発現していることを確認した。
CHO、CHO/CYP1A1、またはCHO/CYP1B1を100μlの必要な細胞培地に懸濁させた単一細胞懸濁液を、96ウェルプレートにウェルあたり1500細胞の細胞密度で播種し、37℃で24時間恒温器に入れた。次いで試験化合物のDMSO保存液を、100、30、10、3、1、0.3、0.1、0.03、0.01、0.003、0.001、0μMの濃度範囲になるように加えた。DMSOの最終濃度0.2%は、種々のCHO細胞系の増殖特性に影響を及ぼさないことがわかった。細胞を試験化合物と共に72時間または96時間インキュベートし、その後培地をすべて吸引し、100μlの新鮮な培地に取り替えて、蒸発による培地の損失を埋め合わせた。細胞を20μlのMTSアッセイ試薬と共に1.5時間インキュベートし、プレートリーダーを使用して、510nmでのウェルあたりの吸光度を測定した。各試験化合物濃度についての吸光度平均値および標準偏差を、(a)細胞プラス培地、(b)0.2%のDMSOを含有する細胞プラス培地、(c)培地のみ、および(d)0.2%のDMSOおよび0~100μmol dm-3の範囲の濃度の試験化合物を含有する培地を含めた一連の対照に対して算出した。細胞傷害性IC50値は、細胞増殖百分率(100%の細胞増殖は、未処置の対照細胞に相当する)を試験化合物濃度に対してプロットすることにより算出した。
市販のMTSアッセイは、増殖、細胞傷害性、または化学感受性アッセイにおいて生細胞数を決定するための均一系比色法である。このアッセイは、テトラゾリウム化合物[3-(4,5-ジメチルチアゾール-2-イル)-5-(3-カルボキシメトキシフェニル)-2-(4-スルホフェニル)-2H-テトラゾリウム分子内塩、MTS]および電子結合試薬PMS(フェナジンメトスルフェート)の溶液から構成される。MTSは、細胞による生体還元を受けて、組織培養培地に可溶性であるホルマザン産物になる。ホルマザン産物の510nmでの吸光度は、96ウェルアッセイプレートから直接測定することができる。490nmまたは510nmでの吸光度の量によって測定されるホルマザン産物の量は、培養物中の生細胞の数に正比例する。
dm-3未満であるCl-IPMおよびBr-IPMとは著しく対照的である(以下の表2を参照されたい)。2種のプロドラッグが活性化する機序は、CHO-野生型(CYP1酵素発現を欠く)、CHO/1A1、およびCHO/CYP1B1細胞におけるそれらの相対的な細胞傷害性IC50値から論理的に推理することができる。たとえば、SU025およびSU046は、野生型CHO細胞では低い毒性を示すが、CHO/1B1細胞に対しては毒性が高く、72時間曝露で示差的細胞傷害性IC50比がそれぞれ1689および5075となる。96時間のより長い曝露時間では、CYP1B1選択的プロドラッグSU025-04およびSU046-04は、CYP1B1発現細胞に対する毒性が非CYP1B1発現細胞の3367倍および5400倍である(以下の表2を参照されたい)。したがって、化合物SU025-04およびSU046-04は、CYP1B1によって活性化されるプロドラッグであることが証明される。SU025-04およびSU046-04は、野生型CHOおよびCHO/CYP1A1細胞に対しても同様に低い細胞傷害性を示し、72時間曝露での示差的細胞傷害性IC50比は1未満であるので、毒性の高いホスホロアミデートマスタードは、CYP1A1活性化によって遊離しないことが示唆される(以下の表2を参照されたい)。文献から推測されるとおり、臨床で使用される2種のプロドラッグであるイホスファミドおよびシクロホスファミドは、CYP2B6およびCYP3A4によって活性化されたとき、同様にアルキル化イソホスホアミデートマスタードを生じるがCYP1酵素では活性化されず(たとえば、McFadyen
MC、Melvin WT、およびMurray Gl、「Cytochrome P450 Enzymes: Novel Options for Cancer Therapeutics」、Mol Cancer Ther.、3巻(3号):363~71頁、2004年)、この細胞傷害性アッセイで使用した100μmol dm-3の最高濃度かつ96時間の最長曝露時間で、両方とも非毒性である(これも以下の表2を参照されたい)。
ヒト原発性腫瘍細胞系におけるプロドラッグの細胞傷害性
CYP1B1を構成的に発現するヒト原発性頭頸部扁平上皮癌腫瘍細胞系(UT-SCC-14)におけるプロドラッグの細胞傷害性
Greerらは、Proc.Am.Assoc.Cancer Res.、45巻:3701頁、2004年において、頭頸部扁平上皮癌(HNSCC)が悪性に進行する際、CYP1B1が過剰発現されたが、正常な上皮では過剰発現されなかったことを報告している。原発性UT-SCC-14腫瘍細胞系をHNSCCの癌患者から単離した(たとえば、Yarominaら、Radiother Oncol.、83巻:304~10頁、2007年、およびHesselら、Int J Radiat Biol.、80巻、719~27頁、2004年を参照されたい)。患者は、25才の男性であり、以下の臨床病理学的パラメータを特徴とするHNSCCに罹患していた。すなわち、位置:舌扁平上皮癌;T3、N1、M0;部位:舌;病巣:原発;段階:G2。UT-SCC-14細胞系は、mRNAおよびタンパク質のレベルでCYP1B1を構成的に発現しており、これを使用して、CYP1B1の過剰発現を特徴とするヒト癌に由来する癌細胞における化合物の細胞傷害性を実証した(Greerら、Proc.Am.Assoc.Cancer Res.、45巻:3701頁、2004年)。
96ウェルプレート上のウェルあたり2000細胞のUT-SCC-14腫瘍細胞懸濁液に、必要ならば新鮮な培地を加えて、ウェルあたりの総体積を100μlとした。恒温器において4時間かけて細胞を付着させた。4時間後、細胞が96ウェルプレートの底面に接着していることを顕微鏡で確認し、次いで培地を除去し、試験化合物の保存液を含有する新鮮な培地に取り替えて、ウェルあたり100μlの最終体積での最終濃度を、0、0.001、0.003、0.01、0.03、0.1、0.3、1、3、10、30、100μmol dm-3とした。エタノールの最終濃度0.2%は、UT-SCC-14細胞系の増殖特性をもたらさないことがわかった。UT-SCC-14細胞を試験化合物と共に72時間インキュベートし、その後すべて吸引し、100μlの新鮮な培地に取り替えて、蒸発による培地の損失を埋め合わせた。細胞を20μlのMTSアッセイ試薬と共に1.5時間インキュベートし、プレートリーダーを使用して、510nmでのウェルあたりの吸光度を測定した。各試験化合物濃度についての吸光度平均値および標準偏差を、(a)細胞プラス培地、(b)0.2%のエタノールを含有する細胞プラス培地、(c)培地のみ、および(d)0.2%のエタノールおよび0~100μmol dm-3の範囲の濃度の試験化合物を含有する培地を含めた一連の対照に対して算出した。細胞傷害性IC50値は、細胞増殖百分率(100%の細胞増殖は、未処置の対照細胞に相当する)を試験化合物濃度に対してプロットすることにより算出した。
T-SCC-10(0.21±0.04)、UT-SCC-14(0.12±0.07)であった。
CYP1B1を構成的に発現するヒト原発性腫瘍異種移植片モデルにおけるSU046-04の抗腫瘍活性
原発性UTSCC-14細胞系3×106個を、ヌードマウスの側腹部の皮下に埋め込んだ。腫瘍体積が100~150mm3になったとき、マウスを1群あたり10匹にランダム化した。PBS中12、25および50mg/KgのSU046-04、または対する媒体のみを、5日間毎日/2日間休止を2サイクルする間、腹腔内投与した。キャリパーを使用して、腫瘍体積を4日毎に測定した。3治療群すべてにおいて、媒体のみと比べて、腫瘍成長の有意な阻害が観察された。28日時点での腫瘍成長の遅れは、12mg/Kgで31%、25mg/Kgで56%、50mg/Kgで90%であり、4/10が完全な応答であった。最高の250mg/Kgの曝露後、有害作用または有意な体重減少は認められなかった。
(項目1)
式(I)の化合物
[式中、
X1は、-X1-X2が、-O-X2、-S-X2、-SO2-O-X2、-SO2NZ10-X2、共役アルケンメチルオキシ、共役アルケンメチルチオ、共役アルケンメチルSO2-O、共役アルケンメチル-SO2NZ10、または次式
からなるようなものであり、
-X2は、存在しないか、またはX1-X2-エフェクターが、
のうちの1つであるようなものであり、
各nおよびmは、独立に0または1であり、
pは、0、1または2であり、
X3は、酸素または硫黄であり、加えて、m=0であるとき、SO2-O、SO2NZ10、共役アルケンメチルオキシ、共役アルケンメチルチオ、共役アルケンメチル-SO2-O、または共役アルケンメチル-SO2NZ10でもよく、
Y1、Y2およびY3はそれぞれ、独立に炭素または窒素であり、Y1が窒素である場合、Z1は存在せず、Y2が窒素である場合、Z3は存在せず、Y3が窒素である場合、Z5は存在せず、
Y4は、酸素、炭素、もしくは窒素原子、スルホキシド、またはスルホンであり、
-Y5-は、(i)単結合、(ii)=CH-(=CH-の二重結合=は、Y4と結合している)、または(iii)-CH2-もしくは-CH2CH2-のいずれかであるか、あるいは(ii)の水素原子または(iii)の1つまたは複数の水素原子が置換基Z11で置き換えられている(ii)~(iii)の1つであり、Z11は、アルキル、アルケニル、アルキニル、アリール、アラルキル、アルキルオキシ、アルケニルオキシ、アルキニルオキシ、アリールオキシ、アラルキルオキシ、アルキルチオキシ、アルケニルチオキシ、アルキニルチオキシ、アリールチオキシ、アラルキルチオキシ、アミノ、ヒドロキシ、チオ、ハロ、カルボキシ、ホルミル、ニトロ、およびシアノから独立に選択され、
Z1~Z4はそれぞれ、存在する場合、水素、アルキル、アルケニル、アルキニル、アリール、アラルキル、アルキルオキシ、アルケニルオキシ、アルキニルオキシ、アリールオキシ、アラルキルオキシ、アルキルチオキシ、アルケニルチオキシ、アルキニルチオキシ、アリールチオキシ、アラルキルチオキシ、アミノ、ヒドロキシ、チオ、ハロ、カルボキシ、ホルミル、ニトロ、およびシアノから独立に選択され、Z5は、存在する場合、水素、アルキル、アルケニル、アルキニル、アリール、アラルキル、アルキルオキシ、アルケニルオキシ、アルキニルオキシ、アリールオキシ、アラルキルオキシ、アルキルチオキシ、アルケニルチオキシ、アルキニルチオキシ、アリールチオキシ、アラルキルチオキシ、アミノ、ヒドロキシ、チオ、カルボキシ、ホルミル、ニトロ、およびシアノから独立に選択されるか、またはZ2とZ3、Z3とZ4、およびZ4とZ5のうちの1組が、それらが結合している原子と一緒になって該化合物の残部と縮合した芳香環を形成するが、但し、Z1、Z2およびZ4の少なくとも1つは水素であり、
Z6は、水素、アルキル、アルケニル、アルキニル、アリール、およびアラルキルから選択され、
Y6はどれも窒素原子でなくともよいか、あるいはY6の1または2つが窒素原子であって、残りは炭素原子であってもよく、
各Z7は、独立に、水素、アルキル、またはアリールであり、
各Z8は、水素、電子吸引性基、非置換C1~C6アルキル、置換C1~C6アルキル、非置換C1~C6アルコキシ、および置換C1~C6アルコキシから独立に選択され、該置換アルキルまたは該置換アルコキシは、エーテル、アミノ、一置換もしくは二置換アミノ、環式C1~C5アルキルアミノ、イミダゾリル、C1~C6アルキルピペラジニル、モルホリノ、チオール、チオエーテル、テトラゾール、カルボン酸、エステル、アミド、一置換もしくは二置換アミド、N-結合型アミド、N-結合型スルホンアミド、スルホキシ、スルホネート、スルホニル、スルホキシ、スルフィネート、スルフィニル、ホスホノオキシ、ホスフェート、およびスルホンアミドから選択される1個または複数の基で置換されており、
各Z9は、独立に酸素または硫黄であり、
Z10は、水素またはアルキル、たとえばC1~4アルキルであり、
エフェクターは、薬理学的または診断機能を有する分子である]
または薬学的に許容されるその塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目2)
唯一のZ7または各Z7が水素である、項目1に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目3)
X1が酸素である、項目1または項目2に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目4)
Y1が炭素である、項目1から3のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目5)
Z1がアルコキシまたはアミノである、項目4に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目6)
Z1が水素である、項目4に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目7)
Z2および/またはZ4が水素である、項目1から6のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目8)
Y4が窒素、酸素、または硫黄である、項目1から7のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目9)
Y4が酸素または硫黄であり、p=0である、項目8に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目10)
Y4が酸素である、項目9に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目11)
-Y5-が単結合である、項目1から10のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目12)
Y2およびY3が、それぞれ炭素である、項目1から11のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目13)
Z3およびZ5が、それぞれアルコキシまたはアミノである、項目12に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目14)
Z3およびZ5が、それぞれC1~6アルコキシである、項目12に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目15)
Z3およびZ5が、それぞれメトキシである、項目12に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目16)
Z3が、水素、アルキル、アルケニル、アルキニル、アリール、アラルキル、アルキルオキシ、アルケニルオキシ、アルキニルオキシ、アリールオキシ、アラルキルオキシ、アルキルチオキシ、アルケニルチオキシ、アルキニルチオキシ、アリールチオキシ、アラルキルチオキシ、アミノ、ヒドロキシ、チオ、カルボキシ、ホルミル、ニトロ、およびシアノから選択される、項目1から12のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目17)
X1が、-X1-X2が-O-X2、-S-X2、-SO2-OX2、または-SO2
NZ10-X2であるようなものである、項目1から16のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目18)
X1が、-X1-X2が-O-X2であるようなものである、項目1から17のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目19)
X2が存在する、項目1から18のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目20)
X2が存在しないか、またはX1-X2-エフェクターが、式
からなる、項目1から18のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目21)
nおよびmの一方が0であるか、またはnおよびmが両方とも0である、項目19または項目20に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目22)
唯一のZ9または各Z9が酸素である、項目19から21のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目23)
どのY6も窒素でないか、あるいはY6の1個が窒素である、項目19から22のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目24)
X2が存在しない、項目1から18のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目25)
前記エフェクターが細胞傷害剤または細胞増殖抑制剤である、項目1から24のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目26)
前記エフェクターが、酸素または硫黄原子を介して前記化合物の残部に連結されており、前記-エフェクターが、式(II)
[式中、
Z12は、酸素または硫黄であり、
各X4は、独立に、酸素、硫黄、またはNZ13であり、各-Z13は、独立に、-(CH2)2-Z14、-アルキル、または-水素であり、
各Z14は、独立に、クロロ、ブロモ、ヨード、またはメシレートである]
からなる、項目25に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目27)
Z12が酸素である、項目26に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目28)
各X4がNZ13である、項目26または項目27に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目29)
各Z13が水素である、項目28に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目30)
各Z14がブロモまたはクロロである、項目26から29のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目31)
各Z14がブロモである、項目30に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目32)
項目1から31のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物を、薬学的に許容される担体と共に含む組成物。
(項目33)
医療で使用するための、項目1から31のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目34)
増殖性状態の治療または予防または方法において使用するための、項目1から31のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目35)
前記増殖性状態が、前悪性もしくは悪性の細胞増殖、癌、白血病、乾癬、骨疾患、線維増殖性障害、またはアテローム性動脈硬化症である、項目34に記載の治療または予防または方法において使用するための化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目36)
前記増殖性状態が、膀胱、脳、乳房、結腸、頭頸部、腎臓、肺、肝臓、卵巣、前立腺、および皮膚の癌から選択される、項目35に記載の治療または予防または方法において使用するための化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物。
(項目37)
治療上または予防上有用な量の項目1から31のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物を、それを必要とする被験体に投与することを含む、増殖性状態を治療または予防する方法。
(項目38)
増殖性状態の治療または予防または方法において使用する医薬を調製するための、項目1から31のいずれか一項に記載の化合物または薬学的に許容される塩、エステル、アミド、もしくは溶媒和物の使用。
(項目39)
前記エフェクターが、診断機能を有する分子である、項目1から24のいずれか一項に記載の化合物。
(項目40)
前記エフェクターがフルオロフォアである、項目39に記載の化合物。
(項目41)
前記フルオロフォアが、クマリン、レゾルフィン、フルオレセイン、およびローダミンからなる群から選択される、項目40に記載の化合物。
(項目42)
前記フルオロフォアがクマリンである、項目41に記載の化合物。
(項目43)
チトクロムP450酵素によって特異的に活性化される化合物を特定する方法であって、
(a)項目40に記載の化合物の一組を該チトクロムP450酵素と接触させ、該接触の結果として該一組のうちの1種または複数の化合物から前記フルオロフォアが遊離するかを判定するステップと、
(b)該一組の化合物を対照組織、組織もしくは細胞抽出物、または酵素と接触させ、該接触の結果として該一組のうちの1種または複数の化合物から該フルオロフォアが遊離するかを判定するステップと、
(c)該チトクロムP450によって特異的に活性化される該化合物を、ステップ(a)で該フルオロフォアを遊離させるが、ステップ(b)では遊離させないか、またははるかに少ない程度にしか遊離させない、該一組の化合物の中の任意の化合物として特定するステップと
を含む方法。
(項目44)
前記P450酵素によって特異的に活性化される前記化合物が、ステップ(a)において、ステップ(b)と比べて少なくとも10倍の前記フルオロフォアを遊離させる、項目43に記載の方法。
(項目45)
前記一組の化合物が少なくとも10種の異なる化合物を含む、項目43または項目44に記載の方法。
(項目46)
前記一組の化合物が少なくとも20種の異なる化合物を含む、項目43から45のいず
れか一項に記載の方法。
(項目47)
(d)前記フルオロフォアが、前記チトクロムP450酵素の活性部位に結合する薬理学的機能を有する分子で置き換えられていることを除き、ステップ(c)で特定した化合物と構造が同一である化合物のモデルを作製するステップと、
(e)該チトクロムP450酵素の基質であると予測されている、ステップ(d)でモデルが作製された化合物を合成するステップとをさらに含む、項目43から46のいずれか一項に記載の方法。
(項目48)
前記チトクロムP450酵素が、CYP1B1、CYP2S1、CYP2W1、CYP4Z1、およびこれらのアレル改変体からなる群から選択される、項目43から47のいずれか一項に記載の方法。
(項目49)
前記エフェクターが薬理学的機能を有する分子である項目1に記載の化合物が、癌治療に効果的であるかどうかを判定する方法であって、前記方法は、癌を有する動物に該化合物を投与することを含み、前記癌は、チトクロムP450酵素を構成的に発現するように改変された組み換え細胞、腫瘍もしくは癌から直接採取した組織、またはその起源である腫瘍もしくは癌によるレベルと同様のレベルで該チトクロムP450酵素を発現する腫瘍もしくは癌から直接採取した組織に由来する早期継代細胞系からの細胞のいずれかを埋め込んだ結果として生じるものである方法。
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