JP2023046320A

JP2023046320A - 糖化酵素の製造方法

Info

Publication number: JP2023046320A
Application number: JP2022150677A
Authority: JP
Inventors: 紘弥前田; Koya Maeda; 武子児玉; Takeko Kodama; 望柴田; Nozomi Shibata; 史員高橋; Fumikazu Takahashi; 一暁五十嵐; Kazuaki Igarashi
Original assignee: Kao Corp
Current assignee: Kao Corp
Priority date: 2021-09-22
Filing date: 2022-09-21
Publication date: 2023-04-03
Also published as: WO2023048199A1; EP4407039A1; CN117999349A

Abstract

【課題】バイオマスの糖化処理工程において、ペクチンに起因する高粘度化を抑制する糖化酵素の製造方法を提供する。【解決手段】下記の（ａ）で示される遺伝子群から選択されるポリガラクツロナーゼ遺伝子、及び（ｂ）で示される遺伝子群から選択されるペクチンリアーゼ遺伝子のいずれか一方又は両方を導入した組み換え糸状菌を培養することを含む、バイオマス糖化酵素の製造方法。（ａ）ＰｇａＢ遺伝子、ＰｇａＩ遺伝子、ＰｇａＩＩ遺伝子（ｂ）ＰｅｌＤ遺伝子、ＰｅｌＦ遺伝子【選択図】なし

Description

本発明は、バイオマス糖化酵素の製造方法に関する。

エネルギーや素材に用いられる化石資源の枯渇、及び地球温暖化等の環境問題から、化石資源を再生可能な資源へ代替する技術開発が世界中で行われている。その中でも、カーボンニュートラルの観点からセルロース系バイオマスの高度利用が求められており、産業廃棄物の活用が期待されている。

アフリカ、アジアで生産させるキャッサバは、主にアジアではでんぷんを抽出し、タピオカでんぷんとして利用されている。タピオカでんぷんを抽出した後のキャッサバ残渣は、含水率が７０～９０％であり、乾燥させた後に家畜の飼料として使用されるが、全ての残渣を使用することはできておらず残りは廃棄されている。しかし、キャッサバ残渣には、でんぷん、セルロースが多く含まれ、グルコース量が豊富なバイオマスであることから、糖に変換することで高度利用が期待されている。一方、キャッサバ残渣にはでんぷん、セルロース以外にもペクチンが多く含まれることが知られている。ペクチンは天然の多糖類であり、主に細胞壁に存在する高分子であることから、高粘度となる性質を持つ。

キャッサバ残渣中のセルロースなどを糖に変換するためには、セルラーゼなどで構成されるバイオマス糖化酵素にて処理する糖化工程が必要となるが、ペクチンによる高粘度化が糖への変換効率に影響を及ぼすことが課題となっている。また、キャッサバ残渣にはでんぷん、セルロース、ペクチンの他にヘミセルロース、リグニンが含まれており、糖化にはアミラーゼ、セルラーゼ、ペクチナーゼ、ヘミセルラーゼ等複数の酵素が必要不可欠となる。

非特許文献１には、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓａｃｕｌｅａｔｕｓ由来のセルラーゼ、ヘミセルラーゼ及びペクチナーゼを含む酵素混合物が、キャッサバの根、チップ及びパルプの粘度を低下させることが開示され、また、特許文献１には、セルラーゼ及びペクチナーゼを含む酵素調製物がキャッサバ残留物中の水分含量及び材料粘度を低減し、デンプンの収量を増加できることが開示されている。
しかしながら、多種の酵素混合物を使用してバイオマスを糖化するには非常にコストがかかることから、大規模でのキャッサバ残渣の糖化の実施にはこれらの技術は実用的ではなく、糖化酵素を安価に製造できる技術が求められている。

中国特許出願公開第１０１２８５０５８号明細書

Aphisit Poonsrisawat et al., Process Biochemistry 49(2014)1950-1957

本発明は、バイオマスの糖化処理工程において、ペクチンに起因する高粘度化を抑制する糖化酵素の製造方法を提供することに関する。

本発明者らは、特定のペクチン分解酵素（ペクチナーゼ）の遺伝子を導入した組み換え糸状菌を培養することにより、ペクチンに起因するバイオマスの高粘度化に対して優れた抑制効果を発揮する糖化酵素を効率よく製造できることを見出した。

すなわち、本発明は、以下の１）～２）に係るものである。
１）下記の（ａ）で示される遺伝子群から選択されるポリガラクツロナーゼ遺伝子、及び（ｂ）で示される遺伝子群から選択されるペクチンリアーゼ遺伝子のいずれか一方又は両方を導入した組み換え糸状菌を培養することを含む、バイオマス糖化酵素の製造方法。
（ａ）ＰｇａＢ遺伝子、ＰｇａＩ遺伝子、ＰｇａＩＩ遺伝子
（ｂ）ＰｅｌＤ遺伝子、ＰｅｌＦ遺伝子、
２）下記の（ａ）で示される遺伝子群から選択されるポリガラクツロナーゼ遺伝子、及び（ｂ）で示される遺伝子群から選択されるペクチンリアーゼ遺伝子のいずれか一方又は両方を導入した組み換え糸状菌を培養して得られる培養物をバイオマス糖化剤として用いる、バイオマスの糖化方法。
（ａ）ＰｇａＢ遺伝子、ＰｇａＩ遺伝子、ＰｇａＩＩ遺伝子
（ｂ）ＰｅｌＤ遺伝子、ＰｅｌＦ遺伝子、

本発明によれば、ペクチン質を含むバイオマスの糖化処理工程におけるスラリーの高粘度化を抑制し、効率的な糖化処理を可能とする糖化酵素を安価に製造することができる。

（１．定義）
本発明において、アミノ酸配列又はヌクレオチド配列の同一性は、Ｌｉｐｍａｎ－Ｐｅａｒｓｏｎ法（Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９８５，２２７：１４３５－１４４１）によって計算される。具体的には、遺伝情報処理ソフトウェアＧＥＮＥＴＹＣＳＶｅｒ．１２のホモロジー解析（Ｓｅａｒｃｈｈｏｍｏｌｏｇｙ）プログラムを用いて、Ｕｎｉｔｓｉｚｅｔｏｃｏｍｐａｒｅ（ｋｔｕｐ）を２として解析を行うことにより算出される。

本発明において、アミノ酸配列又はヌクレオチド配列に関する「少なくとも９０％の同一性」とは、９０％以上、好ましくは９５％以上、より好ましくは９６％以上、さらに好ましくは９７％以上、さらにより好ましくは９８％以上、なお好ましくは９９％以上の同一性をいう。
あるアミノ酸配列又はヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列又はヌクレオチド配列の例としては、１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加、又は挿入されたアミノ酸配列、１又は複数個のヌクレオチドが欠失、置換、付加、又は挿入されたヌクレオチド配列が挙げられる。
ここで、「１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、付加、又は挿入されたアミノ酸配列」とは、１個以上１０個以下、好ましくは１個以上８個以下、より好ましくは１個以上５個以下、さらに好ましくは１個以上３個以下のアミノ酸が欠失、置換、付加、又は挿入されたアミノ酸配列をいう。また、「１又は複数個のヌクレオチドが欠失、置換、付加、又は挿入されたヌクレオチド配列」とは、１個以上３０個以下、好ましくは１個以上２４個以下、より好ましくは１個以上１５個以下、さらにより好ましくは１個以上９個以下のヌクレオチドが欠失、置換、付加、又は挿入されたヌクレオチド配列をいう。本明細書において、アミノ酸又はヌクレオチドの「付加」には、配列の一末端及び両末端へのアミノ酸又はヌクレオチドの付加が含まれる。

本発明において、遺伝子に関する「上流」及び「下流」とは、該遺伝子の転写方向の上流及び下流をいう。例えば、「プロモーターの下流に配置された遺伝子」とは、ＤＮＡセ
ンス鎖においてプロモーターの３’側に遺伝子が存在することを意味し、遺伝子の上流とは、ＤＮＡセンス鎖における該遺伝子の５’側の領域を意味する。

本発明において、制御領域と遺伝子との「作動可能な連結」とは、遺伝子と制御領域とが、該遺伝子が該制御領域の制御の下で発現し得るように連結されていることをいう。遺伝子と制御領域との「作動可能な連結」の手順は当業者に周知である。

本発明において、「相当する遺伝子」とは、ある微生物において所定の反応を触媒する酵素をコードする遺伝子に対して、別の微生物において当該酵素と同じまたは類似の反応を触媒する酵素をコードする遺伝子をいう。ある遺伝子と、それに相当する遺伝子が同じヌクレオチド配列を有していてもよく、異なるヌクレオチド配列を有していてもよいが、ある遺伝子とある遺伝子に相当する遺伝子のヌクレオチド配列の同一性は少なくとも９０％であるのが好ましい。

（２．組み換え糸状菌及びその製造）
本発明の組換え糸状菌は、特定のペクチナーゼの遺伝子が導入された糸状菌である。具体的には、下記の（ａ）で示される遺伝子群から選択されるポリガラクツロナーゼ遺伝子、及び（ｂ）で示される遺伝子群から選択されるペクチンリアーゼ遺伝子のいずれか一方又は両方を導入した糸状菌である。
（ａ）ＰｇａＢ遺伝子、ＰｇａＩ遺伝子、ＰｇａＩＩ遺伝子
（ｂ）ＰｅｌＤ遺伝子、ＰｅｌＦ遺伝子

「ポリガラクツロナーゼ」とは、ペクチン酸を構成するＤ－ガラクツロン酸のα－１，４－グリコシド結合を加水分解する酵素（ＥＣ３．２．１．１５）であり、本発明のポリガラクツロナーゼ遺伝子としては、ＰｇａＢ遺伝子、ＰｇａＩ遺伝子及びＰｇａＩＩ遺伝子から選ばれる１又は２種以上の遺伝子が挙げられる。
斯かるポリガラクツロナーゼ遺伝子は、糸状菌に由来するものが好ましく、例えば、アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）属微生物（例えば、アスペルギルス・ニガー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｎｉｇｅｒ）、アスペルギルス・ジャポニクス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｊａｐｏｎｉｃｕｓ）、アスペルギルス・アクリータス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓａｃｕｌｅａｔｕｓ））、リゾプス（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ）属微生物（例えば、リゾプス・オリゼ（Ｒｈｉｚｏｐｕｓｏｒｙｚａｅ）、リゾプス・デレマ（Ｒｈｉｚｏｐｕｓｄｅｌｅｍａｒ））、タラロマイセス（Ｔａｌａｒｏｍｙｃｅｓ）属微生物（例えば、タラロマイセス・セルロリティカス（Ｔａｌａｒｏｍｙｃｅｓｃｅｌｌｕｌｏｌｙｔｉｃｕｓ））、ペニシリウム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ）属微生物（例えば、ペニシリウム・ロッケフォーティ（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｒｏｑｕｅｆｏｒｔｉ））等に由来するものが好適に挙げられる。
このうち、アスペルギルス・ニガーのＰｇａＢ遺伝子又は当該ＰｇａＢ遺伝子に相当する遺伝子、ＰｇａＩ遺伝子又は当該ＰｇａＩ遺伝子に相当する遺伝子、ＰｇａＩＩ遺伝子又は当該ＰｇａＩＩ遺伝子に相当する遺伝子等がより好ましい。

アスペルギルス・ニガーのＰｇａＢ遺伝子は、ＮＣＢＩの公開データベースにアクセッション番号ＸＭ＿０２５５９７７５６として登録されている遺伝子である。アスペルギルス・ニガーのＰｇａＢ遺伝子又は当該ＰｇａＢ遺伝子に相当する遺伝子としては、具体的には以下の１）～３）が挙げられる。
１）配列番号１に示すヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド
２）配列番号１に示すヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有するヌクレオチド配列からなり、且つポリガラクツロナーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド
３）配列番号２に示すアミノ酸配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列
からなり、且つポリガラクツロナーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド

アスペルギルス・ニガーのＰｇａＢ遺伝子に相当する遺伝子としては、ポリガラクツロナーゼをコードする他の糸状菌由来の遺伝子であるのが好ましく、例えば、アスペルギルス・アクリータスのｇｌｙｃｏｓｉｄｅｈｙｄｒｏｌａｓｅｆａｍｉｌｙ２８ｐｒｏｔｅｉｎ［ＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓａｃｕｌｅａｔｕｓＡＴＣＣ１６８７２］（アクセッション番号ＸＭ＿０２０２０１８３５）、アスペルギルス・ジャポニクスのｐｕｔａｔｉｖｅｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒｅｎｄｏ－ｐｏｌｙｇａｌａｃｔｕｒｏｎａｓｅ［ＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｊａｐｏｎｉｃｕｓＣＢＳ１１４．５１］（アクセッション番号ＸＭ＿０２５６７１７７７）、ペニシリウム・ロッケフォーティのＣＡＺｙｍｅｆａｍｉｌｙＧＨ２８［Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｒｏｑｕｅｆｏｒｔｉ］（アクセッション番号ＸＭ＿０３９０７６６９２）等が該当する。

アスペルギルス・ニガーのＰｇａＩ遺伝子は、ＮＣＢＩの公開データベースにアクセッション番号ＸＭ＿０２５５９６７６８として登録されている遺伝子である。アスペルギルス・ニガーのＰｇａＩ遺伝子又は当該ＰｇａＩ遺伝子に相当する遺伝子としては、具体的には以下の４）～６）が挙げられる。
４）配列番号３に示すヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド
５）配列番号３に示すヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有するヌクレオチド配列からなり、且つポリガラクツロナーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド
６）配列番号４に示すアミノ酸配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列からなり且つポリガラクツロナーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド

アスペルギルス・ニガーのＰｇａＩ遺伝子に相当する遺伝子としては、ポリガラクツロナーゼをコードする他の糸状菌由来の遺伝子であるのが好ましく、例えば、アスペルギルス・アクリータスのｐｕｔａｔｉｖｅｅｎｄｏｐｏｌｙｇａｌａｃｔｕｒｏｎａｓｅＩＩ［ＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓａｃｕｌｅａｔｉｎｕｓＣＢＳ１２１０６０］（アクセッション番号ＸＭ＿０２５６４３８６１）、アスペルギルス・ジャポニクスのｐｕｔａｔｉｖｅｅｎｄｏｐｏｌｙｇａｌａｃｔｕｒｏｎａｓｅＩＩ［ＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｊａｐｏｎｉｃｕｓＣＢＳ１１４．５１］（アクセッション番号ＸＭ＿０２５６６８０３７）等が該当する。

アスペルギルス・ニガーのＰｇａＩＩ遺伝子は、ＮＣＢＩの公開データベースにアクセッション番号ＸＭ＿０２５６０２３４３．１として登録されている遺伝子である。アスペルギルス・ニガーのＰｇａＩＩ遺伝子又は当該ＰｇａＩＩ遺伝子に相当する遺伝子としては、具体的には以下の７）～９）が挙げられる。
７）配列番号５示すヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド
８）配列番号５に示すヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有するヌクレオチド配列からなり、且つポリガラクツロナーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド
９）配列番号６に示すアミノ酸配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つポリガラクツロナーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド

アスペルギルス・ニガーのＰｇａＩＩ遺伝子に相当する遺伝子としては、ポリガラクツロナーゼをコードする他の糸状菌由来の遺伝子であるのが好ましく、例えば、アスペルギルス・アクリータスのＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓａｃｕｌｅａｔｕｓＡＴＣＣ１６
８７２ｕｎｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚｅｄｐｒｏｔｅｉｎ（ＡＳＰＡＣＤＲＡＦＴ＿４１６９０）（アクセッション番号ＸＭ＿０２０２００９７７．１）、ＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｊａｐｏｎｉｃｕｓＣＢＳ１１４．５１ｐｕｔａｔｉｖｅｅｎｄｏｐｏｌｙｇａｌａｃｔｕｒｏｎａｓｅＩＩ（ＢＯ８６ＤＲＡＦＴ＿４３１２９８）（アクセッション番号ＸＭ＿０２５６７５７６１．１）等が該当する。

「ペクチンリアーゼ」とは、ペクチンを末端残基のＣ－４、Ｃ－５間に不飽和結合をもつオリゴ糖に変換する反応を触媒する酵素（ＥＣ４．２．２．１０）であり、本発明のペクチンリアーゼ遺伝子としては、ＰｅｌＤ遺伝子及びＰｅｌＦ遺伝子から選ばれる１又は２種以上の遺伝子が挙げられる。

斯かるペクチンリアーゼ遺伝子は、糸状菌に由来するものが好ましく、例えば、アスペルギルス属微生物（例えば、アスペルギルス・ニガー、アスペルギルス・ジャポニクス、アスペルギルス・ルチュエンシス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｌｕｄｈｕｅｎｓｉｓ））、ペニシリウム属微生物（例えば、ペニシリウム・ディギタータム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｄｉｇｉｔａｔｕｍ）、ペニシリウム・ソリタム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｓｏｌｉｔｕｍ））、タラロマイセス属微生物（例えば、タラロマイセス・ルガロサス（Ｔａｌａｒｏｍｙｃｅｓｒｕｇｕｌｏｓｕｓ）、タラロマイセス・セルロリティカス）等に由来するものが挙げられる。
このうち、好ましくは、アスペルギルス・ニガーのＰｅｌＤ遺伝子又は当該ＰｅｌＤ遺伝子に相当する遺伝子、がより好ましい。

上記アスペルギルス・ニガーのＰｅｌＤ遺伝子は、ＮＣＢＩデータベースにアクセッション番号ＸＭ＿０２５６０４０３９．１として登録されている遺伝子である。アスペルギルス・ニガーのＰｅｌＤ遺伝子又は当該ＰｅｌＤ遺伝子に相当する遺伝子としては、以下の１０）～１２）が挙げられる。
１０）配列番号７に示すヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド
１１）配列番号７に示すヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有するヌクレオチド配列からなり、且つペクチンリアーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド
１２）配列番号８に示すアミノ酸配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列からなり且つペクチンリアーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド

アスペルギルス・ニガーのＰｅｌＤ遺伝子に相当する遺伝子としては、ペクチンリアーゼをコードする他の糸状菌由来の遺伝子であるのが好ましく、例えば、アスペルギルス・ルチュエンシスのＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｌｕｃｈｕｅｎｓｉｓｕｎｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚｅｄｐｒｏｔｅｉｎ（ＡＫＡＷ２＿５００５９Ｓ）（アクセッション番号ＸＭ＿０４１６８９８３５．１）、アスペルギルス・ジャポニクスのＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ
ｊａｐｏｎｉｃｕｓＣＢＳ１１４．５１ｐｅｃｔｉｎｌｙａｓｅｐｅｌＤ（ＢＯ８６ＤＲＡＦＴ＿４０２１８８）（アクセッション番号ＸＭ＿０２５６７３８３９．１）、ペニシリウム・ディギタータムのＰｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｄｉｇｉｔａｔｕｍ
ｓｔｒａｉｎＰｄ０１ＰＬ１ｍＲＮＡ，ｃｏｍｐｌｅｔｅｃｄｓ（アクセッション番号ＪＸ２９８８５３．１）等が該当する。

上記アスペルギルス・ニガーのＰｅｌＦ遺伝子は、ＮＣＢＩデータベースにアクセッション番号：ＸＭ＿００１４０１０２４．２として登録されている遺伝子である。アスペルギルス・ニガーのＰｅｌＦ遺伝子又は当該ＰｅｌＦ遺伝子に相当する遺伝子としては、以下の１３）～１５）が挙げられる。
１３）配列番号９に示すヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド
１４）配列番号９に示すヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有するヌクレ
オチド配列からなり、且つペクチンリアーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド
１５）配列番号１０に示すアミノ酸配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つペクチンリアーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド

アスペルギルス・ニガーのＰｅｌＦ遺伝子に相当する遺伝子としては、ペクチンリアーゼをコードする他の糸状菌由来の遺伝子であるのが好ましく、例えば、アスペルギルス・コスタリカエンシス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｃｏｓｔａｒｉｃａｅｎｓｉｓ）のＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｃｏｓｔａｒｉｃａｅｎｓｉｓＣＢＳ１１５５７４ｐｅｃｔｉｎｌｙａｓｅＡ（ＢＯ７９ＤＲＡＦＴ＿２３７６１２）（アクセッション番号ＸＭ＿０２５６８４７２３．１）、アスペルギルス・ジャポニクスのＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ
ｊａｐｏｎｉｃｕｓＣＢＳ１１４．５１ｐｅｃｔｉｎｌｙａｓｅ１（ＢＯ８６ＤＲＡＦＴ＿３０６３３５）（ＸＭ＿０２５６６７６９１．１）（アクセッション番号ＸＭ＿０２５６７３８３９．１）、ペニシリウム・グリセオフルバム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｇｒｉｓｅｏｆｕｌｖｕｍ）のＰｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｇｒｉｓｅｏｆｕｌｖｕｍＰｅｃｔｉｎｌｙａｓｅｆｏｌｄ／ｖｉｒｕｌｅｎｃｅｆａｃｔｏｒ（ＰＧＲＩ＿０１０７８０）（アクセッション番号ＸＭ＿０４０７８８７９１．１）等が該当する。

導入されるペクチナーゼ遺伝子は、上記のポリガラクツロナーゼ遺伝子及びペクチンリアーゼ遺伝子のいずれか一方又は両方でも良いが、ポリガラクツロナーゼ遺伝子とペクチンリアーゼ遺伝子の両方を導入するのが、バイオマスに対する粘度低下効果の点から好ましい。

本発明のポリガラクツロナーゼ遺伝子及び／又はペクチンリアーゼ遺伝子を糸状菌に導入する手段としては、例えば、上記のポリヌクレオチドを含有するベクター又はＤＮＡ断片を宿主糸状菌（親株）に導入することが挙げられる。
ここで、本発明のポリヌクレオチドを含有するベクターは発現ベクターであり、好ましくは該ポリヌクレオチドを宿主糸状菌に導入することができ、かつ宿主内で該ポリヌクレオチドを発現することができる発現ベクターである。また、該ベクターは、好ましくは本発明のポリヌクレオチド、及びこれと作動可能に連結された制御領域を含む。該ベクターは、プラスミド等の染色体外で自立増殖及び複製可能なベクターであってもよく、又は染色体内に組み込まれるベクターであってもよい。

具体的なベクターの例としては、例えば、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ II ＳＫ（－）（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）、ｐＵＣ１８／１９、ｐＵＣ１１８／１１９等のｐＵＣ系ベクター（タカラバイオ）、ｐＥＴ系ベクター（タカラバイオ）、ｐＧＥＸ系ベクター（ＧＥヘルスケア）、ｐＣｏｌｄ系ベクター（タカラバイオ）、ｐＨＹ３００ＰＬＫ（タカラバイオ）、ｐＵＢ１１０（Ｍｃｋｅｎｚｉｅ，Ｔ．ｅｔａｌ．，１９８６，Ｐｌａｓｍｉｄ
１５（２）：９３－１０３）、ｐＢＲ３２２（タカラバイオ）、ｐＲＳ４０３（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）、ｐＭＷ２１８／２１９（ニッポンジーン）、ｐＲＩ９０９／９１０等のｐＲＩ系ベクター（タカラバイオ）、ｐＢＩ系ベクター（クロンテック）、ＩＮ３系ベクター（インプランタイノベーションズ）、ｐＰＴＲ１／２（タカラバイオ）、ｐＤＪＢ２（Ｄ．Ｊ．Ｂａｌｌａｎｃｅｅｔａｌ．，Ｇｅｎｅ，３６，３２１－３３１，１９８５）、ｐＡＢ４－１（ｖａｎＨａｒｔｉｎｇｓｖｅｌｄｔＷｅｔａｌ．，ＭｏｌＧｅｎＧｅｎｅｔ，２０６，７１－７５，１９８７）、ｐＬｅｕ４（Ｍ．Ｉ．Ｇ．Ｒｏｎｃｅｒｏｅｔａｌ．，Ｇｅｎｅ，８４，３３５－３４３，１９８９）、ｐＰｙｒ２２５（Ｃ．Ｄ．Ｓｋｏｒｙｅｔａｌ．，ＭｏｌＧｅｎｅｔＧｅｎｏｍｉｃｓ，２６８，３９７－４０６，２００２）、ｐＦＧ１（Ｇｒｕｂｅｒ，Ｆ．ｅｔａｌ．，ＣｕｒｒＧｅ
ｎｅｔ，１８，４４７－４５１，１９９０）等が挙げられる。

本発明のポリヌクレオチドを含有するＤＮＡ断片の例としては、例えば、ＰＣＲ増幅ＤＮＡ断片及び制限酵素切断ＤＮＡ断片が挙げられる。好ましくは、該ＤＮＡ断片は、本発明のポリヌクレオチド、及びこれと作動可能に連結された制御領域を含む発現カセットであり得る。

上記ベクター又はＤＮＡ断片に含まれる制御領域は、該ベクター又はＤＮＡ断片が導入された宿主内で、本発明の遺伝子を発現させるための配列であり、例えばプロモーターやターミネーター等の発現調節領域、複製開始点等が挙げられる。該制御領域の種類は、ベクター又はＤＮＡ断片を導入する宿主細胞の種類に応じて適宜選択することができる。必要に応じて、該ベクター又はＤＮＡ断片はさらに、抗生物質耐性遺伝子、アミノ酸合成関連遺伝子等の選択マーカーを有していてもよい。

好ましくは、上記ベクター又はＤＮＡ断片に含まれる制御領域は、ポリガラクツロナーゼ遺伝子及び／又はペクチンリアーゼ遺伝子の上流に作動可能に連結され、下流遺伝子を構成的に発現又は高発現させる機能を有する制御領域（いわゆる強制御領域）である。当該強制御領域の例としては、例えば、トリコデルマ・リーセイのｃｂｈ１プロモーター、ｃｂｈ２プロモーター、ｅｇｌ１プロモーター、ｘｙｎ１プロモーター、ｘｙｎ２プロモーター、ｘｙｎ３プロモーター等が挙げられる。
強制御領域のさらなる例としては、これらに限定されないが、ｒＲＮＡオペロンの制御領域、リボソームタンパク質をコードする遺伝子の制御領域等が挙げられる。

上記ベクター又はＤＮＡ断片に含まれる目的のポリヌクレオチド及び制御領域は、宿主の核に導入されてもよいが、宿主ゲノムに導入されてもよい。あるいは、上記ベクター又はＤＮＡ断片に含まれる目的のポリヌクレオチドを、宿主ゲノムに直接導入して、該ゲノム上の高発現プロモーターと作動可能に連結させてもよい。ポリヌクレオチドをゲノムに導入する手段としては、相同組換え法が挙げられる。

上記宿主細胞へのベクター又はＤＮＡ断片の導入には、一般的な形質転換法、例えばエレクトロポレーション法、トランスフォーメーション法、トランスフェクション法、接合法、プロトプラスト法、パーティクル・ガン法、アグロバクテリウム法等を用いることができる。

目的のベクター又はＤＮＡ断片が導入された組み換え糸状菌は、選択マーカーを利用して選択することができる。例えば、選択マーカーが抗生物質耐性遺伝子である場合、該抗生物質添加培地で細胞を培養することで、目的のベクター又はＤＮＡ断片が導入された形質転換細胞を選択することができる。また例えば、選択マーカーがアミノ酸合成関連遺伝子である場合、該アミノ酸要求性の糸状菌株に遺伝子導入した後、該アミノ酸要求性の有無を指標に、目的のベクター又はＤＮＡ断片が導入された糸状菌株を選択することができる。あるいは、ＰＣＲ等によって組み換え株のＤＮＡ配列を調べることで目的のベクター又はＤＮＡ断片の導入を確認することもできる。

以上の手順で、糸状菌株に、本発明のポリガラクツロナーゼ遺伝子及び／又はペクチンリアーゼ遺伝子とが導入された組換え糸状菌を作製することができる。本発明の組換え糸状菌はセルラーゼ及びペクチナーゼ生産能を有している。

本発明における親株として用いる糸状菌は、バイオマス糖化酵素としてセルラーゼを生産する菌であって、導入するポリガラクツロナーゼ遺伝子又はペクチンリアーゼ遺伝子と異なる属又は種の糸状菌であれば、限定されず、真菌門（Ｅｕｍｙｃｏｔａ）及び卵菌門
（Ｏｏｍｙｃｏｔａ）に属する糸状菌が挙げられる。具体的には、上記糸状菌としては、トリコデルマ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ）属、アルペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）属、ペニシリウム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ）属、ニューロスポラ（Ｎｅｕｒｏｓｐｏｒａ）属、フサリウム（Ｆｕｓａｒｉｕｍ）属、クリソスポリウム（Ｃｈｒｙｓｏｓｐｏｒｉｕｍ）属、フミコーラ（Ｈｕｍｉｃｏｌａ）属、エメリセラ（Ｅｍｅｒｉｃｅｌｌａ）属、ハイポクレア（Ｈｙｐｏｃｒｅａ）属、アクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）属、クリソスポリウム（Ｃｈｒｙｓｏｓｐｏｒｉｕｍ）属、ミセリオフトラ（Ｍｙｃｅｌｉｏｐｈｔｈｏｒａ）属、ピロマイセス（Ｐｉｒｏｍｙｃｅｓ）属、タラロマイセス（Ｔａｌａｒｏｍｙｃｅｓ）属、サーモアスカス（Ｔｈｅｒｍｏａｓｃｕｓ）属、チエラビア（Ｔｈｉｅｌａｖｉａ）属等の糸状菌が挙げられるが、好ましくはトリコデルマ属の糸状菌である。

前記トリコデルマ属の糸状菌としては、トリコデルマ・リーセイ、トリコデルマ・ロンジブラキアタム（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａｌｏｎｇｉｂｒａｃｈｉａｔｕｍ）、トリコデルマ・ハリジアウム（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａｈａｒｚｉａｎｕｍ）、トリコデルマ・コニンギ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａｋｏｎｉｎｇｉｉ）及びトリコデルマ・ヴィリデ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａｖｉｒｉｄｅ）等が挙げられるが、好ましくはトリコデルマ・リーセイであり、より好ましくはトリコデルマ・リーセイＰＣＤ－１０株（ＦＥＲＭＰ－８１７２）及びトリコデルマ・リーセイＰＣ－３－７株（ＡＴＣＣ６６５８９）である。

親株である糸状菌は、野生型株であってもよく、当該野生型株から人工的に育種された株でもよく、そのゲノム中のヌクレオチド配列が置換、付加、欠失又は修飾された変異型株（変異体）又は突然変異体であってもよい。

本発明の組み換え糸状菌の好適な例としては、トリコデルマ・リーセイＰＣ－３－７株（ＡＴＣＣ６６５８９）やその変異体にアスペルギルス・ニガーのＰｇａＢ遺伝子又は当該ＰｇａＢ遺伝子に相当する遺伝子、又はアスペルギルス・ニガーのＰｅｌＤ遺伝子又は当該ＰｅｌＤ遺伝子に相当する遺伝子を導入した組み換え糸状菌、アスペルギルス・ニガーのＰｇａＢ遺伝子又は当該ＰｇａＢ遺伝子に相当する遺伝子とアスペルギルス・ニガーのＰｅｌＤ遺伝子又は当該ＰｅｌＤ遺伝子に相当する遺伝子を伴に導入した組み換え糸状菌が挙げられ、具体的には、後述する実施例に開示した株を挙げることができる。

斯くして構築された本発明の組み換え糸状菌株は、菌体内のペクチナーゼの発現が親株と比べて増加していることから、これを用いてセルロース及びペクチンを含有するバイオマスを糖化処理した場合に、ペクチンにより生じるスラリーの高粘度化が親株を用いて糖化した場合に比べて低減される。具体的には、本発明の組み換え糸状菌株を用いてキャッサバ残渣を糖化処理したスラリーの粘度を、親株を用いて糖化処理した場合に比べて、５０％以上、好ましくは６０％以上、より好ましくは７０％以上低下することが可能となる。
尚、粘度としては、例えば、Ｂ型粘度計で、固形分濃度１０－２０質量％及び５０℃にて測定される粘度が挙げられる。
したがって、本発明の組み換え糸状菌を用いれば、ペクチン質を多く含むキャッサバ等のバイオマスの糖化処理において、高粘度化を抑制し、糖化効率を高めることができる。

（３．バイオマス糖化酵素の製造）
上記の組み換え糸状菌をセルラーゼ誘導物質の存在下で培養し、培養物中にセルラーゼ及びペクチナーゼを含む酵素を生成、蓄積させ、当該培養物から当該酵素を採取することにより、バイオマス糖化酵素を製造することができる。

ここで、「セルラーゼ誘導物質」としては、セルラーゼ生産性糸状菌のセルラーゼ生産を誘導する物質であれば制限はないが、例えばセルロース；ソホロース；並びにセロビオース、セロトリオース、セロテトラオース、セロペンタオース及びセロヘキサオース等のセロオリゴ糖から選ばれる化合物を挙げることができる。

ここで、セルロースには、グルコースがβ－１，４－グルコシド結合により重合した重合体及びその誘導体が包含される。グルコースの重合度は特に限定されない。また、誘導体としては、カルボキシメチル化、アルデヒド化、又はエステル化等の誘導体が挙げられる。さらに、セルロースは、配糖体であるβグルコシド、リグニン及び／又はヘミセルロースとの複合体であるリグノセルロース、さらにペクチン等との複合体であってもよい。セルロースは、結晶性セルロースであってもよいし、非結晶性セルロースであってもよい。

セルラーゼ誘導物質は、一括（バッチ法）、分割添加（フェドバッチ法）あるいは連続添加（フィード法）等の任意の方法で添加することができる。培地中に添加するセルラーゼ誘導物質の量は、本発明の糸状菌がセルラーゼ及びペクチナーゼ産生を誘導できる量であればよく、添加法によっても異なるが、培地に対して、総量で、好ましくは０．１質量％以上、より好ましくは０．５質量％以上、より好ましくは１質量％以上であり、かつ好ましくは４０質量％以下、より好ましくは３５質量％以下、より好ましくは３０質量％以下である。また、好ましくは０．１～４０質量％、より好ましくは０．５～３５質量％、より好ましくは１～３０質量％である。
このうち、一括添加する場合の添加量は、好ましくは０．１質量％以上、より好ましくは０．５質量％以上、より好ましくは１質量％以上であり、かつ好ましくは１６質量％以下、より好ましくは１４質量％以下、より好ましくは１２質量％以下である。また、好ましくは０．１～１６質量％、より好ましくは０．５～１４質量％、より好ましくは１～１２質量％である。

本発明の方法で用いられる培地は、炭素源、窒素源、無機塩、ビタミン等、本発明の糸状菌の増殖並びにセルラーゼ及びペクチナーゼの生産に必要な栄養素を含む限り、合成培地、天然培地のいずれでもよい。

炭素源としては、本発明の組み換え糸状菌が資化できる炭素源であればいずれでもよく、具体的には、上記したセルラーゼ誘導物質の他、グルコース、フラクトースのような糖質、エタノール、グリセロールのようなアルコール類、酢酸のような有機酸類等を挙げることができる。これらは単独で、又は複数を組み合わせて使用することができる。炭素源としては、グルコース、フラクトースのような糖質が望ましく、グルコースがより好ましい。その際のグルコースの添加量は、培地に対して、好ましくは０．１質量％以上、より好ましくは０．５質量％以上、より好ましくは２．５質量％以上であり、かつ好ましくは１５質量％以下、より好ましくは１０質量％以下、より好ましくは５質量％以下である。また、好ましくは０．１～１５質量％、より好ましくは０．５～１０質量％、より好ましくは２．５～５質量％である。また、培地中のセルラーゼ誘導物質とグルコースの量は、質量比で１０：１～１：１であるのが好ましく、４：１～２：１であるのがより好ましい。

窒素源としては、アンモニア、硫酸アンモニウム等のアンモニウム塩、アミン等の窒素化合物、ペプトン、大豆加水分解物のような天然窒素源等をあげることができる。

無機塩としては、リン酸カリウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硫酸第一鉄、炭酸カリウム等をあげることができる。

ビタミンとしては、ビオチンやチアミン等を挙げることができる。さらに必要に応じて本発明の組み換え糸状菌が生育に要求する物質を添加することができる。

培養は、好ましくは振とう培養や通気攪拌培養のような好気的条件で行う。培養温度は好ましくは１０℃以上、より好ましくは２０℃以上、より好ましくは２５℃以上であり、且つ好ましくは５０℃以下、より好ましくは４２℃以下、より好ましくは３５℃以下である。また、好ましくは１０～５０℃、より好ましくは２０～４２℃、より好ましくは２５～３５℃である。
培養時のｐＨは３～９、好ましくは４～５である。培養時間は、１０時間～１０日間、好ましくは２～７日間である。

培養終了後、培養物を回収し、必要に応じて超音波や加圧等による菌体破砕処理を行い、ろ過や遠心分離等によって固液分離した後、限外ろ過、塩析、透析、クロマトグラフィー等を適宜組み合わせることによりセルラーゼ及びペクチナーゼを含む糖化酵素を取得できる。なお、分離精製の程度は特に限定されない。培養上清やその粗分離精製物自体をバイオマス糖化酵素として利用することもできる。

尚、「セルラーゼ」とは、セルロースを分解する酵素の総称であり、セルロースの分子内部から切断するエンドグルカナーゼ（ＥＣ３．２．１．４）；セルロースの還元末端又は非還元末端から分解し、セロビオースを遊離するエキソグルカナーゼ（セロビオヒドロラーゼ、ＥＣ３．２．１．９１）及びβ－グルコシダーゼ（ＥＣ３．２．１．２１）を包含する。
また、「ペクチナーゼ」とは、ペクチン質（Ｄ－ガラクチュロン酸のα－１，４結合からなる多糖類）を分解する酵素群の総称であり、ポリガラクツロナーゼ、ペクチンリアーゼ、ペクチンエステラーゼが包含されるが、本発明の糖化酵素としては、好ましくはポリガラクツロナーゼ及びペクチンリアーゼである。

（４．バイオマスの糖化）
本発明の組み換え糸状菌を用いることにより、バイオマスを分解、糖化し、単糖を製造することができるが、斯かる方法は公知の手法を用いて行うことができる。
すなわち、上述した、本発明の組み換え糸状菌をセルラーゼ誘導物質の存在下で培養して得られる培養物をバイオマス糖化剤とし、これとバイオマスを水性媒体中に共存させ、撹拌または振とうしながら加温することにより、バイオマスを糖化し、単糖を製造することができる。
本発明において、バイオマスとしては、セルロース及びペクチン含有物質、例えば、キャッサバ、キャッサバ残渣、コーン、コーンハル、リンゴの残渣、柑橘類の皮等が挙げられ、好ましくはキャッサバ残渣である。
バイオマスの糖化において、反応液のｐＨ及び温度は、セルラーゼ及びペクチナーゼが失活しない範囲内であればよく、一般的に、常圧で反応を行う場合、温度は５～９５℃、ｐＨは１～１１の範囲で行われる。
バイオマスの糖化の工程は、バッチ式で行っても、連続式で行ってもよい。

本発明はまた、例示的実施形態として以下を包含する。但し、本発明はこれらの実施形態に限定されない。
＜１＞下記の（ａ）で示される遺伝子群から選択されるポリガラクツロナーゼ遺伝子、及び（ｂ）で示される遺伝子群から選択されるペクチンリアーゼ遺伝子のいずれか一方又は両方を導入した組み換え糸状菌を培養することを含む、バイオマス糖化酵素の製造方法。
（ａ）ＰｇａＢ遺伝子、ＰｇａＩ遺伝子、ＰｇａＩＩ遺伝子
（ｂ）ＰｅｌＤ遺伝子、ＰｅｌＦ遺伝子
＜２＞ポリガラクツロナーゼ遺伝子がアスペルギルス・ニガーのＰｇａＢ遺伝子又は当該ＰｇａＢ遺伝子に相当する遺伝子であり、ペクチンリアーゼ遺伝子がアスペルギルス・ニガーのＰｅｌＤ又は当該ＰｅｌＤ遺伝子に相当する遺伝子である、＜１＞に記載の方法。
＜３＞バイオマスがセルロース及びペクチンを含むバイオマスである、＜１＞又は＜２＞に記載の方法。
＜４＞バイオマスがキャッサバである、＜１＞又は＜２＞に記載の方法。
＜５＞糸状菌がセルラーゼを生産する糸状菌である＜１＞～＜４＞のいずれかに記載の方法。
＜６＞糸状菌がトリコデルマ属糸状菌である、＜１＞～＜５＞のいずれかに記載の方法。
＜７＞糸状菌がトリコデルマ・リーセイである、＜６＞に記載の方法。
＜８＞下記の（ａ）で示される遺伝子群から選択されるポリガラクツロナーゼ遺伝子、及び（ｂ）で示される遺伝子群から選択されるペクチンリアーゼ遺伝子のいずれか一方又は両方を導入した組み換え糸状菌を培養して得られる培養物をバイオマス糖化剤として用いる、バイオマスの糖化方法。
（ａ）ＰｇａＢ遺伝子、ＰｇａＩ遺伝子、ＰｇａＩＩ遺伝子
（ｂ）ＰｅｌＤ遺伝子、ＰｅｌＦ遺伝子
＜９＞スラリーの高粘度化を抑制する、＜８＞に記載の方法。
＜１０＞糸状菌がセルラーゼを生産する糸状菌である＜８＞又は＜９＞のいずれかに記載の方法。
＜１１＞糸状菌がトリコデルマ属糸状菌である、＜８＞～＜１０＞のいずれかに記載の方法。
＜１２＞糸状菌がトリコデルマ・リーセイである、＜１１＞に記載の方法。
＜１３＞アスペルギルス・ニガーのＰｇａＢ遺伝子又は当該ＰｇａＢ遺伝子に相当する遺伝子が、以下の１）～３）のいずれかである、＜１＞～＜１２＞のいずれかに記載の方法。
１）配列番号１に示すヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド
２）配列番号１に示すヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有するヌクレオチド配列からなり、且つポリガラクツロナーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド
３）配列番号２に示すアミノ酸配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つポリガラクツロナーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド
＜１４＞アスペルギルス・ニガーのＰｇａＩ遺伝子又は当該ＰｇａＩ遺伝子に相当する遺伝子が、以下の４）～６）のいずれかである、＜１＞～＜１２＞のいずれかに記載の方法。
４）配列番号３に示すヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド
５）配列番号３に示すヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有するヌクレオチド配列からなり、且つポリガラクツロナーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド
６）配列番号４に示すアミノ酸配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列からなり且つポリガラクツロナーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド
＜１５＞アスペルギルス・ニガーのＰｇａＩＩ遺伝子又は当該ＰｇａＩＩ遺伝子に相当する遺伝子が、以下の７）～９）のいずれかである、＜１＞～＜１２＞のいずれかに記載の方法。
７）配列番号５示すヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド
８）配列番号５に示すヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有するヌクレオチド配列からなり、且つポリガラクツロナーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリ
ヌクレオチド
９）配列番号６に示すアミノ酸配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つポリガラクツロナーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド
＜１６＞アスペルギルス・ニガーのＰｅｌＤ遺伝子又は当該ＰｅｌＤ遺伝子に相当する遺伝子が、以下の１０）～１２）のいずれかである、＜１＞～＜１２＞のいずれかに記載の方法。
１０）配列番号７に示すヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド
１１）配列番号７に示すヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有するヌクレオチド配列からなり、且つペクチンリアーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド
１２）配列番号８に示すアミノ酸配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列からなり且つペクチンリアーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド
＜１７＞アスペルギルス・ニガーのＰｅｌＦ遺伝子又は当該ＰｅｌＦ遺伝子に相当する遺伝子としては、以下の１３）～１５）のいずれかである、＜１＞～＜１２＞のいずれかに記載の方法。
１３）配列番号９に示すヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチド
１４）配列番号９に示すヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有するヌクレオチド配列からなり、且つペクチンリアーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド
１５）配列番号１０に示すアミノ酸配列と少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列からなり、且つペクチンリアーゼ活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド

＜実施例１バイオマス糖化酵素の製造＞
（１）ＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｎｉｇｅｒＮＢＲＣ１０５６４９株のｃＤＮＡ合成
ＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｎｉｇｅｒＮＢＲＣ１０５６４９株は、製品評価技術基盤機構バイオテクノロジーセンターより購入した。ＮＢＲＣ１０５６４９株を、ペクチン培地（１％Ｐｅｃｔｉｎ，ｆｒｏｍｃｉｔｒｕｓ（和光純薬）、０．１４％（ＮＨ_４）_２ＳＯ_４、０．２％ＫＨ_２ＰＯ_４、０．０３％ＣａＣｌ_２・２Ｈ_２Ｏ、０．０３％
ＭｇＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ、０．１％ＢａｃｔｏＰｏｌｙｐｅｐｔｏｎ、０．０５％ＢａｃｔｏＹｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔ、０．１％Ｔｗｅｅｎ８０、０．１％Ｔｒａｃｅｅｌｅｍｅｎｔ２、５０ｍＭ酒石酸バッファー（ｐＨ４．０）；％はいずれもｗ／ｖ％）に、植菌した。Ｔｒａｃｅｅｌｅｍｅｎｔ２の組成は以下のとおりである：６ｍｇＨ_３ＢＯ３、２６ｍｇ（ＮＨ_４）_６Ｍｏ_７Ｏ_２４・４Ｈ_２Ｏ、１００ｍｇＦｅＣｌ_３・６Ｈ_２Ｏ、４０ｍｇＣｕＳＯ_４・５Ｈ_２Ｏ、８ｍｇＭｎＣｌ_２・４Ｈ_２Ｏ、２００ｍｇＺｎＣｌ_２を蒸留水にて１００ｍＬにメスアップ。２８℃にて３日間振とう培養を行い、培養した菌体をＭｉｒａｃｌｏｔｈ（ミリポア）を用いて回収後、液体窒素にて凍結し、マルチビーズショッカー（安井器械）を用いて破砕した。この際、粉砕媒体にはメタルコーンを使用し１７００ｒｐｍにて３０秒破砕を行った。破砕した菌体からはＲＮｅａｓｙＭｉｎｉＫｉｔ（キアゲン）を用いプロトコルに従ってＲＮＡを抽出した。その後、ＲＮＡ溶液はＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔＩＩＩＦｉｒｓｔ－ＳｔｒａｎｄＳｙｎｔｈｅｓｉｓＳｙｓｔｅｍｆｏｒＲＴ－ＰＣＲ（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）に供することで、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｎｉｇｅｒ
ＮＢＲＣ１０５６４９株のｃＤＮＡを合成した。

（２）ＰｇａＩ、ＰｇａII、ＰｇａＢ、ＰｅｌＤ、ＰｅｌＦ発現用ベクターの作製
ｐＵＣ１１８（タカラバイオ）のＨｉｎｃＩＩ制限酵素切断点にトリコデルマ・リーセイ由来のｘｙｎ２遺伝子の上流から下流までの領域（配列番号１１）を挿入したプラスミ
ドを鋳型とし、表１に示したＦｗプライマー１（配列番号１２）とＲｖプライマー１（配列番号１３）を用いてＰＣＲすることで断片（Ａ）を増幅した。また、トリコデルマ・リーセイのゲノムＤＮＡを鋳型として表１に示したＦｗプライマー２（配列番号１４）とＲｖプライマー２（配列番号１５）を用いてＰＣＲすることで増幅された断片（Ｂ）を増幅した。得られたＤＮＡ断片（Ａ）及び（Ｂ）はＩｎ－ＦｕｓｉｏｎＨＤＣｌｏｎｉｎｇＫｉｔ（タカラバイオ）のプロトコルに従って処理し、ｘｙｎ２の遺伝子にｃｂｈ１ターミネーターが連結されたプラスミドｐＵＣｆ－ｘｙｎ２を構築した。さらに、このｐＵＣｆ－ｘｙｎ２を鋳型とし、表１に示したＦｗプライマー３（配列番号１６）とＲｖプライマー３（配列番号１７）を用いてＰＣＲすることで増幅した断片（Ｃ）と、トリコデルマ・リーセイのゲノムＤＮＡを鋳型として表１に示したＦｗプライマー４（配列番号１８）とＲｖプライマー４（配列番号１９）を用いてＰＣＲすることで増幅された断片（Ｄ）とを、同様にはＩｎ－ＦｕｓｉｏｎＨＤＣｌｏｎｉｎｇＫｉｔによって処理することで、プラスミドｐＵＣｆ－ｘｙｎ２－ｐｙｒ４を得た。続いて、このｐＵＣｆ－ｘｙｎ２－ｐｙｒ４を鋳型とし、表１に示したＦｗプライマー５（配列番号２０）とＲｖプライマー５（配列番号２１）を用いてＰＣＲすることで増幅した断片（Ｅ）と、トリコデルマ・リーセイのゲノムＤＮＡを鋳型として表１に示したＦｗプライマー６（配列番号２２）とＲｖプライマー６（配列番号２３）を用いてＰＣＲすることで増幅された断片（Ｆ）とを、同様にはＩｎ－ＦｕｓｉｏｎＨＤＣｌｏｎｉｎｇＫｉｔによって処理することで、プラスミドｐＵＣｆ－ｘｙｎ２－ｐｙｒ４ｒｅｃを得た。
ｐＵＣｆ－ｘｙｎ２－ｐｙｒ４ｒｅｃを鋳型とし、表１に示したＦｗプライマー７（配列番号２４）とＲｖプライマー７（配列番号２５）を用いてＰＣＲすることで断片（Ｇ）を増幅した。また、ＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｎｉｇｅｒＮＢＲＣ１０５６４９株のｃＤＮＡを鋳型とし、表１に示したＦｗプライマー８（配列番号２６）とＲｖプライマー８（配列番号２７）、Ｆｗプライマー９（配列番号２８）とＲｖプライマー９（配列番号２９）、Ｆｗプライマー１０（配列番号３０）とＲｖプライマー１０（配列番号３１）、Ｆｗプライマー１１（配列番号３２）とＲｖプライマー１１（配列番号３３）、Ｆｗプライマー１２（配列番号３４）とＲｖプライマー１２（配列番号３５）を用いてＰＣＲすることで、それぞれ増断片（Ｈ）～（Ｌ）を増幅した。断片（Ｇ）とそれぞれ断片（Ｈ）～断片（Ｌ）を用い、Ｉｎ－ＦｕｓｉｏｎＨＤＣｌｏｎｉｎｇＫｉｔによって処理することで、それぞれＰｇａＩ、ＰｇａII、ＰｇａＢ、ＰｅｌＤ、ＰｅｌＦの発現用ベクターであるｐＵＣｆ－Ｐｘｙｎ２－ｐｇａＩ－ｐｙｒ４ｒｅｃ、ｐＵＣｆ－Ｐｘｙｎ２－ｐｇａＩＩ－ｐｙｒ４ｒｅｃ、ｐＵＣｆ－Ｐｘｙｎ２－ｐｇａＢ－ｐｙｒ４ｒｅｃ、ｐＵＣｆ－Ｐｘｙｎ２－ｐｅｌＤ－ｐｙｒ４ｒｅｃ、ｐＵＣｆ－Ｐｘｙｎ２－ｐｅｌＦ－ｐｙｒ４ｒｅｃを得た。

（３）形質転換体の作製
トリコデルマ・リーセイＥ１ＡＢ１株（Enzyme and Microbial Technology Volume 82,
January 2016, Pages 89-95）のウラシル要求性株に対して上記（１）で構築したベクターの形質転換を行った。導入はプロトプラストＰＥＧ法で行った。形質転換体は選択培地（２％グルコース、１．１Ｍソルビトール、２％アガー、０．２％ＫＨ_２ＰＯ_４（ｐＨ５．５）、０．０６％ＣａＣｌ_２・２Ｈ_２Ｏ、０．０６％ＣｓＣｌ_２、０．０６％ＭｇＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ、０．５％（ＮＨ_４）_２ＳＯ_４、０．１％Ｔｒａｃｅｅｌｅｍｅｎｔ１；％はいずれもｗ／ｖ％）にて選抜した。Ｔｒａｃｅｅｌｅｍｅｎｔ１の組成は以下のとおりである：０．５ｇＦｅＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ、０．２ｇＣｏＣｌ_２、０．１６ｇＭｎＳＯ_４・Ｈ_２Ｏ、０．１４ｇＺｎＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏを蒸留水にて１００ｍＬにメスアップ。選抜した形質転換体を植え継ぎにより安定化した後、コロニーＰＣＲにより目的の遺伝子が安定に保持された菌株をさらに選別した。

（４）形質転換体の培養
アビセル培地（１％アビセル（シグマアルドリッチ）、０．１４％（ＮＨ_４）_２ＳＯ_４、０．２％ＫＨ_２ＰＯ_４、０．０３％ＣａＣｌ_２・２Ｈ_２Ｏ、０．０３％ＭｇＳＯ
_４・７Ｈ_２Ｏ、０．１％ＢａｃｔｏＰｏｌｙｐｅｐｔｏｎ、０．０５％ＢａｃｔｏＹｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔ、０．１％Ｔｗｅｅｎ８０、０．１％Ｔｒａｃｅｅｌｅｍｅｎｔ２、５０ｍＭ酒石酸バッファー（ｐＨ４．０）；％はいずれもｗ／ｖ％）に、上記（３）で選択した菌株の胞子を２×１０^５個／ｍＬとなるよう植菌し、２８℃にて５日間振とう培養を行った。Ｔｒａｃｅｅｌｅｍｅｎｔ２の組成は以下のとおりである：６ｍｇＨ３ＢＯ３、２６ｍｇ（ＮＨ_４）_６Ｍｏ_７Ｏ_２４・４Ｈ_２Ｏ、１００ｍｇＦｅＣｌ_３・６Ｈ_２Ｏ、４０ｍｇＣｕＳＯ_４・５Ｈ_２Ｏ、８ｍｇＭｎＣｌ_２・４Ｈ_２Ｏ、２００ｍｇＺｎＣｌ_２を蒸留水にて１００ｍＬにメスアップ。得られた培養物を遠心分離した後フィルターろ過することで、各培養上清を取得した。得られた培養上清は糖化酵素溶液として検討に使用した。

＜実施例２バイオマスの糖化＞
（１）糖化酵素溶液のタンパク質濃度の定量は、ｂｒａｄｆｏｒｄ法にて測定した。ｂｒａｄｆｏｒｄ法に基づくＱｕｉｃｋＳｔａｒｔプロテインアッセイ（ＢｉｏＲａｄ）を使用し、ウシγグロブリンを標準タンパク質とした検量線をもとに上清のタンパク質濃度を計算した。

（２）バイオマスにはキャッサバ残渣を使用した。乾燥させたキャッサバ残渣をアブソルートミル（ＡＢＳ－Ｗ、大阪ケミカル株式会社製）を使用しスピードコントロール１０、粉砕時間３０秒で１００ｇずつ粉砕した。キャッサバ残渣の組成分析は株式会社東海テクノ及び日本食品分析センターで行った。組成分析結果（ｗｔ％）は、下記の通りであった。
グルコース６３．１％
キシロース５．２％
アラビノース２．２％
ガラクトース６．５％
リグニン７．４％
ガラクツロン酸７．０％
ラムノース０．７％

（３）実施例１で得られた６種のペクチナーゼを発現させた糖化酵素溶液を用い、粉砕したキャッサバ残渣を基質として糖化試験を実施した。粉砕したキャッサバ残渣を５００ｍＬバッフルフラスコに４０ｇ－ｄｒｙ量りとり、α－アミラーゼ（シグマアルドリッチ社製、α－ＡｍｙｌａｓｅｆｒｏｍＢａｃｉｌｌｕｓｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓＴｙｐｅＸＩＩ－Ａ）を０．０７ｍｇ－ｐｒｏｔｅｉｎとｍｉｌｌｉ－Ｑ水を基質濃度が１５ｗｔ％となるように加えた。その後、手でフラスコを十分に振盪させた。バッフルフラスコは綿栓で密閉し、アルミホイルを被せて、９０℃、２ｈでオートクレーブ（ＴＯＭＹ社製ＬＳＸ－７００）処理を行った（糊化）。その後、室温で６０℃前後になるまで放置し、５０℃に設定した振盪機（ＰＲＥＣＩ社製ＰＲＸＹ－３０－Ｒ－３Ｆ）で２１０ｒｐｍ、１ｈ振盪した。その後、キャッサバ残渣スラリーに、グルコアミラーゼ（シグマアルドリッチ社製、ＡｍｙｌｏｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅｆｒｏｍＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｎｉｇｅｒ）を２．０ｍｇ－ｐｒｏｔｅｉｎと、ペクチナーゼ発現酵素を８ｍｇ－ｐｒｏｔｅｉｎ添加し、５０℃、２００ｒｐｍで２４ｈ反応させた。

（４）スラリー粘度の測定
キャッサバ残渣を糖化酵素処理した後のスラリー粘度を、Ｂ型粘度計ＶＩＳＣＯＭＥＴＥＲＴＶＢ－１０（東機産業株式会社製）を用いて、回転速度６０ｒｐｍ、回転時間
１８０ｓｅｃ、温度５０℃の条件にて測定し、ペクチナーゼ発現酵素６種と、ペクチナーゼを発現させていない酵素で、得られた粘度の値をそれぞれ比較した。結果、ペクチナーゼを発現させていない酵素に対し、ペクチナーゼを発現させた酵素では総じて粘度が
低下し、異種のペクチナーゼを共発現させた酵素では最も粘度が低下した。

＜比較例ペクチナーゼの調製＞
（１）ＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｎｉｇｅｒＮＢＲＣ１０５６４９株のｃＤＮＡ合成
Ａ．ｎｉｇｅｒＮＢＲＣ１０５６４９株は、製品評価技術基盤機構バイオテクノロジーセンターより購入した。ＮＢＲＣ１０５６４９株を、ペクチン培地（１％Ｐｅｃｔｉｎ，ｆｒｏｍｃｉｔｒｕｓ（和光純薬）、０．１４％（ＮＨ_４）_２ＳＯ_４、０．２％ＫＨ_２ＰＯ_４、０．０３％Ｃａｃｌ_２・２Ｈ_２Ｏ、０．０３％ＭｇＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ、０．１％ＢａｃｔｏＰｅｐｔｏｎｅ、０．０５％ＢａｃｔｏＹｅａｓｔＥｘｔｒａｃｔ、０．１％Ｔｒａｃｅｅｌｅｍｅｎｔ、５０ｍＭ酒石酸バッファー（ｐＨ４．０）に植菌した。２８℃にて３日間振とう培養を行い、培養した菌体をＭｉｒａｃｌｏｔｈ（ミリポア）を用いて回収後、液体窒素にて凍結し、マルチビーズショッカー（安井器械）を用いて破砕した。この際、粉砕媒体にはメタルコーンを使用し１７００ｒｐｍにて３０秒破砕を行った。破砕した菌体からはＲＮｅａｓｙＭｉｎｉＫｉｔ（キアゲン）を用いプロトコルに従ってＲＮＡを抽出した。その後、ＲＮＡ溶液はＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔＩＩＩＦｉｒｓｔ－ＳｔｒａｎｄＳｙｎｔｈｅｓｉｓＳｙｓｔｅｍｆｏｒＲＴ－ＰＣＲ（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）に供することで、ＮＢＲＣ１０５６４９株のｃＤＮＡを合成した。

（２）Ｆｕｓａｒｉｕｍｏｘｙｓｐｏｒｕｍ由来ＤＮＡの人工合成
公開されているＤＮＡ情報をもとに、Ｆ．ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ由来のｐｇｘ１遺伝子を人工合成した。
Ｐｇｘ１はペクチナーゼの一種であるエキソポリガラクチュロナーゼであり、そのアミノ酸配列は配列番号４１で示され、Ｐｇｘ１遺伝子は配列番号４０で示されるヌクレオチド配列からなる。

（３）ＰｇｘＣ、ＲｇｘＣ、Ｐｇｘ１、ＰｇａＢ、ＰｅｌＤ発現用ベクターの作製
ピキア発現ベクターｐＤ９１２（ＡＴＵＭ社）を鋳型とし、表３に示したＦｗプライマー１３（配列番号４２）とＲｖプライマー１３（配列番号４３）を用いてＰＣＲすることで断片（Ａ）を増幅した。ＮＢＲＣ１０５６４９株のｃＤＮＡを鋳型として表１に示したＦｗプライマー１４（配列番号４４）とＲｖプライマー１４（配列番号４５）を用いてＰＣＲすることで増幅された断片（Ｂ）を増幅した。得られたＤＮＡ断片（Ａ）及び（Ｂ）はＩｎ－ＦｕｓｉｏｎＨＤＣｌｏｎｉｎｇＫｉｔ（タカラバイオ）のプロトコルに従って処理し、連結されたプラスミドｐＤ９１２－ＰｇｘＣを構築した。
ＮＢＲＣ１０５６４９株のｃＤＮＡを鋳型として表３に示したＦｗプライマー１５（配列番号４６）とＲｖプライマー１５（配列番号４７）を用いてＰＣＲすることで増幅された断片（Ｃ）を増幅した。得られたＤＮＡ断片（Ａ）及び（Ｃ）はＩｎ－ＦｕｓｉｏｎＨＤＣｌｏｎｉｎｇＫｉｔのプロトコルに従って処理し、連結されたプラスミドｐＤ９１２－ＲｇｘＣを構築した。
人工合成したＦ．ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ由来のｐｇｘ１遺伝子を鋳型として表３に示したＦｗプライマー１６（配列番号４８）とＲｖプライマー１６（配列番号４９）を用いてＰ
ＣＲすることで増幅された断片（Ｄ）を増幅した。得られたＤＮＡ断片（Ａ）及び（Ｄ）はＩｎ－ＦｕｓｉｏｎＨＤＣｌｏｎｉｎｇＫｉｔのプロトコルに従って処理し、連結されたプラスミドｐＤ９１２－Ｐｇｘ１を構築した。
ＮＢＲＣ１０５６４９株のｃＤＮＡを鋳型として表３に示したＦｗプライマー１７（配列番号５０）とＲｖプライマー１８（配列番号５１）を用いてＰＣＲすることで増幅された断片（Ｅ）を増幅した。得られたＤＮＡ断片（Ａ）及び（Ｅ）はＩｎ－ＦｕｓｉｏｎＨＤＣｌｏｎｉｎｇＫｉｔのプロトコルに従って処理し、連結されたプラスミドｐＤ９１２－ＰｇａＢを構築した。
ＮＢＲＣ１０５６４９株のｃＤＮＡを鋳型として表３に示したＦｗプライマー１８（配列番号５２）とＲｖプライマー１８（配列番号５３）を用いてＰＣＲすることで増幅された断片（Ｄ）を増幅した。得られたＤＮＡ断片（Ａ）及び（Ｄ）はＩｎ－ＦｕｓｉｏｎＨＤＣｌｏｎｉｎｇＫｉｔのプロトコルに従って処理し、連結されたプラスミドｐＤ９１２－ＰｅｌＤを構築した。

なお、上記ＰｇｘＣはペクチナーゼの一種であるエキソポリガラクチュロナーゼであり、そのアミノ酸配列は配列番号３７で示され、ＰｇｘＣ遺伝子は配列番号３６で示されるヌクレオチド配列からなる。
また、ＲｇｘＣはペクチナーゼの一種であるエキソラムノガラクチュロナンハイドロラーゼであり、そのアミノ酸配列は配列番号３９で示され、ＲｇｘＣ遺伝子は配列番号３８で示されるヌクレオチド配列からなる。

（４）形質転換体の作製
（３）で作製した各目的遺伝子発現ベクターをＰｉｃｈｉａｐａｓｔｏｒｉｓＰＰＳ－９０１０２（ＡＴＵＭ社）に対して、ＡＴＵＭ社のプロトコルに従って形質転換を行
った。

（５）形質転換体の培養
Ｐ．ｐａｓｔｏｒｉｓの培養は以下のように行った。ＢＭＤ１％培地（０．２Ｍリン酸カリウム（ｐＨ６．０）、１３．４ｇ／ＬＹｅａｓｔＮｉｔｒｏｇｅｎＢａｓｅ、０．４ｍｇ／ＬＢｉｏｔｉｎ、１．１％グルコース）に各形質転換体を植菌し、２８℃で振とう培養し、菌体が一定量に増えたらメタノールを添加し、発現誘導を行い、３－５日後に得られた各培養物はＳＤＳ－ＰＡＧＥで酵素発現量を確認した後、各培養物を遠心分離した後フィルターろ過することで、各培養上清を取得した。得られた培養上清を濃縮し、各種ペクチナーゼ（ＰｇｘＣ、ＲｇｘＣ、Ｐｇｘ１、ＰｇａＢ、ＰｅｌＤ）の酵素液として使用した。

＜比較試験例１＞
キャッサバ残渣を１００ｍＬ容バッフル付き三角フラスコに乾燥重量として４ｇとなるよう量りとり、α－アミラーゼ（シグマアルドリッチ社製、α－ＡｍｙｌａｓｅｆｒｏｍＢａｃｉｌｌｕｓｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓＴｙｐｅＸＩＩ－Ａ）を０．００２ｍｇ－ｐｒｏｔｅｉｎ／ｇ－基質、ｍｉｌｌｉ－Ｑ水を基質濃度が１５ｗｔ％となるように加えた。その後、バッフルフラスコを十分に混和し、綿栓で封をした上にアルミホイルを被せ、９０℃、２ｈ（オートクレーブ、ＴＯＭＹ社製ＬＳＸ－７００）の糊化処理を行った。その後、５０℃に設定した振盪機（ＰＲＥＣＩ社製ＰＲＸＹ－３０－Ｒ－３Ｆ）にて５０℃になるまで冷却した後、グルコアミラーゼ（シグマアルドリッチ社製、ＡｍｙｌｏｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅｆｒｏｍＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓｎｉｇｅｒ）を０．０５ｍｇ－ｐｒｏｔｅｉｎ／ｇ－基質で、実施例１に従ってＥ１ＡＢ１株を培養して得られた糖化酵素を計０．２ｍｇ―ｐｒｏｔｅｉｎ／ｇ－基質となるように添加し、５０℃、２００ｒｐｍで１８時間反応させた。その後、音叉振動式粘度計（株式会社エー・アンド・デイ社製ＳＶ－１０Ｈ）を用いて粘度を測定した。糖化後のスラリーは液体の状態とならず、粘度は測定不可であった。

＜比較試験例２＞
糊化処理後の基質に、Ｅ１ＡＢ１株由来糖化酵素を０．１４ｍｇ－ｐｒｏｔｅｉｎ／ｇ－基質、ＰｇｘＣを０．０６ｍｇ－ｐｒｏｔｅｉｎ／ｇ－基質で添加した以外は、試験例１と同様の検討を行った。糖化後のスラリーは液体の状態とならず、粘度は測定不可であった。

＜比較試験例３＞
糊化処理後の基質に、Ｅ１ＡＢ１株由来糖化酵素を０．１４ｍｇ－ｐｒｏｔｅｉｎ／ｇ－基質、ＲｇｘＣを０．０６ｍｇ－ｐｒｏｔｅｉｎ／ｇ－基質で添加した以外は、試験例１と同様の検討を行った。糖化後のスラリーは液体の状態とならず、粘度は測定不可であった。

＜比較試験例４＞
糊化処理後の基質に、Ｅ１ＡＢ１株由来糖化酵素を０．１４ｍｇ－ｐｒｏｔｅｉｎ／ｇ－基質、Ｐｇｘ１を０．０６ｍｇ－ｐｒｏｔｅｉｎ／ｇ－基質で添加した以外は、試験例１と同様の検討を行った。糖化後のスラリーは液体の状態とならず、粘度は測定不可であった。

＜参考試験例１＞
糊化処理後の基質に、Ｅ１ＡＢ１株由来糖化酵素を０．１８ｍｇ－ｐｒｏｔｅｉｎ／ｇ－基質、ＰｇａＢを０．０２ｍｇ－ｐｒｏｔｅｉｎ／ｇ－基質で添加した以外は、試験例１と同様の検討を行った。糖化後のスラリーの粘度は８４ｍＰａ・ｓであった。

＜参考試験例２＞
糊化処理後の基質に、Ｅ１ＡＢ１株由来糖化酵素を０．１４ｍｇ－ｐｒｏｔｅｉｎ／ｇ－基質、ＰｅｌＤを０．０６ｍｇ－ｐｒｏｔｅｉｎ／ｇ－基質で添加した以外は、試験例１と同様の検討を行った。糖化後のスラリーの粘度は４５９ｍＰａ・ｓであった。以上から粘度低減にはＰｇａＢやＰｅｌＤなどが有効であると考えられた。

Claims

下記の（ａ）で示される遺伝子群から選択されるポリガラクツロナーゼ遺伝子、及び（ｂ）で示される遺伝子群から選択されるペクチンリアーゼ遺伝子のいずれか一方又は両方を導入した組み換え糸状菌を培養することを含む、バイオマス糖化酵素の製造方法。
（ａ）ＰｇａＢ遺伝子、ＰｇａＩ遺伝子、ＰｇａＩＩ遺伝子
（ｂ）ＰｅｌＤ遺伝子、ＰｅｌＦ遺伝子
ポリガラクツロナーゼ遺伝子がアスペルギルス・ニガーのＰｇａＢ遺伝子又は当該ＰｇａＢ遺伝子に相当する遺伝子であり、ペクチンリアーゼ遺伝子がアスペルギルス・ニガーのＰｅｌＤ又は当該ＰｅｌＤ遺伝子に相当する遺伝子である、請求項１に記載の方法。
バイオマスがセルロース及びペクチンを含むバイオマスである、請求項１又は２に記載の方法。
バイオマスがキャッサバである、請求項１又は２に記載の方法。
糸状菌がセルラーゼを生産する糸状菌である、請求項１～４のいずれか１項に記載の方法。
糸状菌がトリコデルマ・リーセイである、請求項１～５のいずれか１項に記載の方法。
下記の（ａ）で示される遺伝子群から選択されるポリガラクツロナーゼ遺伝子、及び（ｂ）で示される遺伝子群から選択されるペクチンリアーゼ遺伝子のいずれか一方又は両方を導入した組み換え糸状菌を培養して得られる培養物をバイオマス糖化剤として用いる、バイオマスの糖化方法。
（ａ）ＰｇａＢ遺伝子、ＰｇａＩ遺伝子、ＰｇａＩＩ遺伝子
（ｂ）ＰｅｌＤ遺伝子、ＰｅｌＦ遺伝子
スラリーの高粘度化を抑制する、請求項７に記載の方法。
糸状菌がセルラーゼを生産する糸状菌である請求項７又は８に記載の方法。