JP2022523360A - Metに結合する抗met抗体および二特異性抗原結合分子を使用した眼癌の治療方法 - Google Patents
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Abstract
Description
配列表の公的な写しは、ASCIIフォーマットの配列表としてEFS-Webを介して電子的に本明細書と同時に提出され、当該写しのファイル名は「10548WO01_SEQ_LIST_ST25.TXT」であり、2020年2月20日が作成日であり、サイズは約140キロバイトである。このASCIIフォーマット書面に含まれる配列表は、本明細書の一部であり、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
ブドウ膜メラノーマ腫瘍は、G-タンパク質の変異(GNAQおよびGNA11)とc-Metの高発現を特徴とする。ブドウ膜メラノーマのc-Metの標的化は、細胞の浸潤と転移を阻害するが、腫瘍の増殖は抑制されない。局所的な腫瘍制御率や世界的な救命率は徐々に改善されているが、生存率は比較的未変化のままである。抗体-薬剤結合体(ADC:antibody-drug conjugate)は過去数年で進歩しており、そのうちのいくつかはFDAにより使用が承認されているが、ブドウ膜メラノーマに対して開発されたものはこれまでのところない。リガンド依存性とリガンド非依存性の両方のMETシグナル伝達を強力に遮断する、ブドウ膜メラノーマを含む眼癌の治療に使用するための抗癌剤の改善に対する重大なアンメットメディカルニーズが未だ存在している。
他の実施形態は、後に続く詳細な説明の検討を行うことから明白となるであろう。
「MET」、「c-Met」などの表現は、本明細書で使用される場合、(1)配列番号145に記載されるアミノ酸配列、および/もしくはアイソフォーム「a」の非プロセッシングプレプロタンパク質を表すNCBIアクセッション番号NM_001127500.2に記載されるアミノ酸配列を有するアミノ酸配列、(2)配列番号146に記載されるアミノ酸配列、および/もしくはアイソフォーム「b」の非プロセッシングプレプロタンパク質を表すNCBIアクセッション番号NM_000236.2に記載されるアミノ酸配列を有するアミノ酸配列、(3)配列番号147に記載されるアミノ酸配列、および/もしくはアイソフォーム「c」の非プロセッシングプレプロタンパク質を表すNCBIアクセッション番号NM_001311330.1に記載されるアミノ酸配列を有するアミノ酸配列、ならびに/または(3)三つのアイソフォームすべてに共通する細胞質アルファサブユニット(配列番号148)、および膜貫通ベータサブユニット(アイソフォームa、bおよびcに対しそれぞれ配列番号149、150または151)、を含む成熟タンパク質、を含むヒト膜貫通受容体チロシンキナーゼを指す。「MET」という表現には、単量体および多量体のMET分子の両方が含まれる。本明細書において使用される場合、「単量体ヒトMET」という表現は、任意の多量体形成ドメインを含有していない、または保有していない、および別のMET分子への直接的な物理的接続を伴わずに単一のMET分子として通常の条件下に存在する、METタンパク質またはその部分を意味する。例示的な単量体MET分子は、本明細書において、配列番号152のアミノ酸配列を含む「hMET.mmh」と呼称される分子である(例えば本明細書の実施例3を参照)。本明細書で使用される場合、「二量体ヒトMET」という表現は、リンカー、共有結合、非共有結合を介して、または抗体Fcドメインなどの多量体形成ドメインを介して、互いに接続された二個のMET分子を含む構築物を意味する。例示的な二量体MET分子は、本明細書において、配列番号153のアミノ酸配列を含む「hMET.mFc」と呼称される分子である(例えば本明細書の実施例3を参照)。
本明細書において、例えばブドウ膜メラノーマ、眼窩リンパ腫、網膜芽細胞腫、および髄様上皮腫などの眼癌を治療する方法が提供される。一部の態様では、方法は、その必要のある対象に、抗MET抗体またはMET X MET二特異性抗原結合分子(例えば、本明細書の表1に記載されるHCVR/LCVRまたはCDRの配列のいずれかを含む抗MET、または本明細書の表5に記載されるD1構成要素およびD2構成要素のいずれかを含むMET X MET二特異性抗原結合分子、またはオナルツズマブ(onartuzumab)、エミベツズマブ(emibetuzumab)、テリソツズマブ(telisotuzumab)、SAIT301、ARGX-111、Sym015、HuMax-cMet、およびCE-355621からなる群から選択される抗MET抗体)を含む治療用組成物を投与することを含む。一部の実施形態では、抗MET抗体またはMET X MET二特異性抗原結合分子は、以下に詳述されるように、例えばメイタンシノイドなどの細胞障害性化合物に結合される。治療用組成物は、細胞障害剤に結合された抗MET ADCまたはMET X MET二特異性抗原結合分子を含む、本明細書に記載される抗MET抗体またはMET X MET二特異性抗原結合分子のいずれかと、薬学的に許容可能な担体または希釈剤を含んでもよい。
さらなる詳細において、および一つの態様によれば、本明細書に提供される方法に従い有用な抗MET抗体は、本明細書の表1および表2に列挙される。表1には、例示的な抗MET抗体の重鎖可変領域(HCVR)、軽鎖可変領域(LCVR)、重鎖相補性決定領域(HCDR1、HCDR2およびHCDR3)、および軽鎖相補性決定領域(LCDR1、LCDR2およびLCDR3)のアミノ酸配列の識別子が記載されており、そこから本明細書に開示される二特異性抗原結合分子(本明細書において二特異性抗原結合タンパク質と相互交換可能に使用される)が誘導され得る。表2には、例示的な抗MET抗体のHCVR、LCVR、HCDR1、HCDR2、HCDR3、LCDR1、LCDR2およびLCDR3の核酸配列の識別子が記載されている。
本発明者らは、METへのHGF結合を遮断する特定の一特異性抗MET抗原結合分子が、METシグナル伝達を強力に活性化する傾向があること(治療用分子にとって望ましくない結果)を観察した。しかしながら本発明者らは驚くべきことに、METタンパク質の細胞外ドメイン上の二つの異なるエピトープに同時に結合する二特異性抗原結合分子は、METへのリガンド結合を遮断しながら、METシグナル伝達のアゴニズムをほとんど引き起こさないことを発見した。さらに本発明者らは驚くべきことに、当該二特異性抗原結合分子は、例えばブドウ膜メラノーマ、眼窩リンパ腫、網膜芽細胞腫、および髄様上皮腫などの眼癌の治療、および/または転移の阻害もしくは軽減に非常に適していることも発見した。
本明細書に開示される方法において有用な二特異性抗原結合分子は、二つの異なる抗原結合ドメイン(D1およびD2)を含む。本明細書において使用される場合、「抗原結合ドメイン」という表現は、対象の特定抗原(例えばヒトMET)に特異的に結合することができる、あらゆるペプチド、ポリペプチド、核酸分子、足場型(scaffold-type)分子、ペプチドディスプレイ分子(peptide display molecule)、またはポリペプチド含有構築物を意味する。「特異的に結合する」などの用語は、本明細書において使用される場合、抗原結合領域が、500pM以下の解離定数(KD)によって特徴付けられる特定の抗原と複合体を形成し、一般的な試験条件下においてその他の無関係な抗原を結合しないことを意味する。「関連性のない抗原」とは、互いに95%未満のアミノ酸相同性を有する、タンパク質、ペプチド、またはポリペプチドである。
本発明に提供される方法に従い有用な二特異性抗原結合分子は、ある実施形態において、一つ以上の多量体形成構成要素を含んでもよい。多量体形成構成要素は、抗原結合ドメイン(D1およびD2)間の会合を維持するように機能することができる。本明細書において使用される場合、「多量体形成構成要素」とは、同一のもしくは類似の構造または構成の第二の多量体形成構成要素と会合する能力を有する、任意の高分子、タンパク質、ポリペプチド、ペプチド、またはアミノ酸である。例えば、多量体形成構成要素は、イムノグロブリンCH3ドメインを含むポリペプチドであってもよい。多量体形成構成要素の非限定的な例として、イムノグロブリンのFc部分(例えば、以下のアイソタイプ、IgG1、IgG2、IgG3、およびIgG4、ならびに各アイソタイプ群における任意のアロタイプから選択されるアイソタイプのFcドメイン)が挙げられる。特定の実施形態において、多量体形成構成要素は、Fc断片であり、または少なくとも一つのシステイン残基を含有する1~約200のアミノ酸の長さのアミノ酸配列である。その他の実施形態において、多量体形成構成要素はシステイン残基であるか、または短システイン含有ペプチドである。その他の多量体形成ドメインとして、ロイシンジッパー、ヘリックス・ループ・モチーフ、またはコイルドコイル・モチーフを含むか、もしくはこれらからなるペプチドまたはポリペプチドが挙げられる。
また、本明細書に開示されるHCVR、LCVR、および/またはCDRのアミノ酸配列のいずれかのバリアントを含む抗MET抗体および二特異性抗原結合分子も本明細書において有用である。当該態様に含まれる例示的なバリアントとしては、一つ以上の保存的置換を有する、本明細書に開示されるHCVR、LCVR、及び/またはCDRアミノ酸配列のいずれかのバリアントが挙げられる。例えば本開示は、本明細書において表1に記載されるHCVRアミノ酸配列、LCVRアミノ酸配列、および/またはCDRアミノ酸配列のいずれかに対して、例えば、10個以下、8個以下、6個以下、または4個以下等の保存的アミノ酸置換を有するHCVRアミノ酸配列、LCVRアミノ酸配列、および/またはCDRアミノ酸配列を有する、抗MET抗体およびMET x MET二特異性抗原結合分子を含む。
本明細書に提供される特定の実施形態によると、本明細書において有用な抗MET抗体およびMET X MET二特異性抗原結合タンパク質は、例えば中性pHと比較して酸性pHで、FcRn受容体への抗体結合を強化する、または減少させる一つ以上の変異を含むFcドメインを含む。例えば、そのようなバリアントには、FcドメインのCH2またはCH3領域に変異を含む抗MET抗体およびMET X MET二特異性抗原結合タンパク質が含まれ、この場合において当該変異は、酸性環境において(例えば、pHが約5.5~約6.0の範囲のエンドソームにおいて)FcRnに対するFcドメインのアフィニティを増加させる。そのような変異によって、動物に投与されたときの抗体の血清半減期が延長され得る。そのようなFc修飾の非限定的な例としては、例えば、250位(例えば、EまたはQ);250位および428位(例えば、LまたはF);252位(例えば、L/Y/F/WまたはT)、254位(例えば、SまたはT)、および256位(例えば、S/R/Q/E/DまたはT)の修飾、または428位および/または433位(例えば、H/L/R/S/P/QまたはK)および/もしくは434位(例えば、H/FまたはY)の修飾、または250位および/もしくは428位の修飾、または307位もしくは308位(例えば、308F、V308F)と434位の修飾が挙げられる。一実施形態では、修飾は、428L(例えば、M428L)および434S(例えば、N434S)修飾、428L、259I(例えば、V259I)、および308F(例えば、V308F)修飾、433K(例えば、H433K)および434(例えば、434Y)修飾、252、254、および256(例えば、252Y、254T、および256E)修飾、250Qおよび428L修飾(例えば、T250QおよびM428L)、ならびに307および/または308修飾(例えば、308Fおよび/または308P)を含む。
本明細書に提供される方法によれば、ブドウ膜メラノーマ細胞の増殖を阻害し、浸潤を阻害し、アポトーシスを引き起こし、および/または生存率を低下させる抗体およびその抗原結合断片、ならびに当該抗体および抗原結合断片を含むADCが有用である。
本明細書に提供される方法によれば、例えば細胞障害剤、化学療法薬、または放射性同位体などの治療部分と結合された抗MET抗体、またはMET×MET二特異性抗原結合タンパク質を含む抗体-薬剤結合体(ADC)が有用である。
ある実施形態では、細胞障害剤は、メイタンシノイドであり、当該メイタンシノイドは、切断不可能なリンカーを介して抗体に共有結合される。ある実施形態では、細胞障害剤は、メイタンシノイドであり、当該メイタンシノイドは、切断可能なリンカーを介して抗体に共有結合される。
以下を接触させる工程を含むプロセスにより調製される:
(i)式IIIの化合物:
(ii)式IVの化合物:
(iii)シリカゲル、および
(iv)有機溶媒と水を含む希釈剤。
Ab-[L-Pay]n
式中:
Abは、本明細書に記載される抗MET抗体、またはMET x MET二特異性抗原結合タンパク質であり、
Lは、リンカーであり、
Payは、細胞障害剤であり、
nは、1~10の整数である。
Ab-[L-Pay]n
式中:
Abは、配列番号82のHCVRアミノ酸配列と、配列番号138のLCVRアミノ酸配列を含む抗MET抗体である。
L-Payは、以下である:
Ab-[L-Pay]n
式中:
Abは、配列番号82のHCVRアミノ酸配列と、配列番号138のLCVRアミノ酸配列を含む抗MET抗体である。
L-Payは、以下である:
Ab-[L-Pay]n
式中:
Abは、配列番号82のHCVRアミノ酸配列と、配列番号138のLCVRアミノ酸配列を含む抗MET抗体である。
L-Payは、以下である:
Ab-[L-Pay]n
式中:
Abは、配列番号82のHCVRアミノ酸配列と、配列番号138のLCVRアミノ酸配列を含む抗MET抗体である。
L-Payは、以下である:
Ab-[L-Pay]n
式中:
Abは、配列番号58のD1-HCVRアミノ酸配列、および配列番号82のD2-HCVRアミノ酸配列を含む、MET X MET二特異性抗原結合タンパク質である。
L-Payは、以下である:
Ab-[L-Pay]n
式中:
Abは、配列番号58のD1-HCVRアミノ酸配列、および配列番号82のD2-HCVRアミノ酸配列を含む、MET X MET二特異性抗原結合タンパク質である。
L-Payは、以下である:
Ab-[L-Pay]n
式中:
Abは、配列番号58のD1-HCVRアミノ酸配列、および配列番号82のD2-HCVRアミノ酸配列を含む、MET X MET二特異性抗原結合タンパク質である。
L-Payは、以下である:
Ab-[L-Pay]n
式中:
Abは、配列番号58のD1-HCVRアミノ酸配列、および配列番号82のD2-HCVRアミノ酸配列を含む、MET X MET二特異性抗原結合タンパク質である。
L-Payは、以下である:
Ab-[L-Pay]n
式中:
Abは、配列番号18のD1-HCVRアミノ酸配列、および配列番号82のD2-HCVRアミノ酸配列を含む、MET X MET二特異性抗原結合タンパク質である。
L-Payは、以下である:
Ab-[L-Pay]n
式中:
Abは、配列番号18のD1-HCVRアミノ酸配列、および配列番号82のD2-HCVRアミノ酸配列を含む、MET X MET二特異性抗原結合タンパク質である。
L-Payは、以下である:
Ab-[L-Pay]n
式中:
Abは、配列番号18のD1-HCVRアミノ酸配列、および配列番号82のD2-HCVRアミノ酸配列を含む、MET X MET二特異性抗原結合タンパク質である。
L-Payは、以下である:
Ab-[L-Pay]n
式中:
Abは、配列番号18のD1-HCVRアミノ酸配列、および配列番号82のD2-HCVRアミノ酸配列を含む、MET X MET二特異性抗原結合タンパク質である。
L-Payは、以下である:
を、以下の式(b)の化合物:
と、シリカゲルおよび希釈剤の存在下で接触させることにより調製される。一部の実施形態では、希釈剤は、有機溶媒と水を含有する。
(i)式(a)の化合物:
を、以下の式(b)の化合物:
と、シリカゲルおよび希釈剤の存在下で接触させ、中間体を合成させること、および
(ii)本明細書に記載される抗MET抗体またはMET x MET二特異性抗原結合タンパク質を、当該中間体、および水性希釈剤と接触させること。
式中、LGは、脱離基である。
と、N-ヒドロキシスクシンイミド(NHS)、ペプチドカップリング試薬、および有機希釈剤を接触させることにより調製される。好適なペプチドカップリング試薬としては、カルボン酸部分を活性化させる、すなわち反応性を与えて、求核試薬と反応させる試薬が挙げられる。ある実施形態では、ペプチドカップリング試薬は、N-(3-ジメチルアミノプロピル)-N’-エチルカルボジイミド塩酸塩(EDC)である。一部の実施形態では、有機溶媒は、ジクロロメタンである。
と、アジピン酸、ペプチドカップリング剤、および有機溶媒を接触させることにより調製される。ある実施形態では、ペプチドカップリング剤は、2-エトキシ-1-エトキシカルボニル-1,2-ジヒドロキノリン(EEDQ)である。ある実施形態では、有機溶媒は、ジクロロメタンを含む。化合物Dは、WO2014/145090に記載されるように調製することができる。
抗体または抗原結合ドメインが結合するエピトープは、METタンパク質の3個以上(例えば、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20個以上)のアミノ酸の単一連続配列からなる場合もある。あるいはその関連エピトープは、METの複数の非連続的アミノ酸(またはアミノ酸配列)からなる場合もある。一部の実施形態では、エピトープは、METのリガンド結合ドメイン上に位置し、またはその付近に位置する。他の実施形態では、エピトープは、METのリガンド結合ドメインの外側に位置し、例えば抗体が当該エピトープに結合したときに、METへのHGF結合に干渉しないMET表面上の位置にある。
本明細書に提供される方法により有用な抗MET抗体およびMET x MET二特異性抗体は、完全ヒト抗体であってもよい。完全ヒトモノクローナル抗体を含むモノクローナル抗体の作製方法は、当分野に公知である。ヒトMETに特異的に結合するヒト抗体を作製するために、本開示の状況下で任意のそうした公知の方法が使用され得る。
本明細書に提供される方法により有用な抗MET抗体および抗体断片は、記載される抗体のアミノ酸配列とは異なるが、ヒトMETに結合する能力を保持しているアミノ酸配列を有するタンパク質を包含する。そのようなバリアント抗体および抗体断片は、親配列と比較して一つ以上のアミノ酸の付加、欠失、または置換を含むが、記載された抗体の生物学的活性と本質的に均等である生物学的活性を呈する。同様に、本開示の抗MET抗体をコードするDNA配列は、開示される配列と比較して一つ以上のヌクレオチドの付加、欠失、または置換を含むが、本開示の抗MET抗体または抗体断片と本質的に生物学的に均等である抗MET抗体または抗体断片をコードする配列を包含する。そうしたバリアントなアミノ酸配列およびDNA配列の例は、上記に検討される。
本開示は特定の実施形態によると、ヒトMETに結合するが、他の種に由来するMETには結合せず、例えばブドウ膜メラノーマ、眼窩リンパ腫、網膜芽細胞腫および髄様上皮腫などの眼癌の治療に有用な抗MET抗体(および抗MET抗原結合ドメインを含む抗原結合分子)を提供する。本開示はさらに、ヒトMET、および一種以上の非ヒト種に由来するMETに結合し、例えばブドウ膜メラノーマ、眼窩リンパ腫、網膜芽細胞腫および髄様上皮腫などの眼癌の治療に有用な抗MET抗体(および抗MET抗原結合ドメインを含む抗原結合分子)も含む。例えば抗MET抗体および抗原結合分子は、ヒトMETに結合してもよく、そして場合によっては、マウス、ラット、モルモット、ハムスター、スナネズミ、ブタ、ネコ、イヌ、ウサギ、ヤギ、ヒツジ、ウシ、ウマ、ラクダ、カニクイザル、マーモセット、アカゲザルまたはチンパンジーのMETのうちの一つ以上に結合してもよく、または結合しなくてもよい。ある例示的実施形態によると、ヒトMETとカニクイザル(例えば、Macaca fascicularis)のMETに特異的に結合する抗MET抗体および抗原結合分子が提供される。他の抗MET抗体および抗原結合分子は、ヒトMETに結合するが、カニクイザルMETには結合しないか、または弱く結合するのみである。
本明細書において別段に記載されるように、本開示によると、二つの異なる抗原結合ドメインを含む二特異性抗原結合分子が有用であり、この場合において第一の抗原結合ドメイン(D1)は、MET上の第一のエピトープに結合し、第二の抗原結合ドメイン(D2)は、MET上の第二のエピトープに結合する。ある実施形態では、D1ドメインおよびD2ドメインが結合するMET上の第一および第二のエピトープは別個のものであり、または重複せず、または部分的に重複している。当該態様によれば、D1ドメインは、本明細書の表1に記載されるHCVR/LCVRまたはCDRのアミノ酸配列のいずれかを含んでもよく、およびD2ドメインは、本明細書の表1に記載されるHCVR/LCVRまたはCDRのアミノ酸配列のいずれか他の配列を含んでもよい(D1ドメインの結合特異性が、D2ドメインの結合特異性とは異なっており、および/またはD1が取得された抗原結合タンパク質が、D2が取得された抗原結合タンパク質と、METへの結合に関して競合しない限りにおいて)。一部の実施形態では、抗MET抗体が結合するヒトMETエピトープは、配列番号155のアミノ酸192~204、アミノ酸305~315、および/またはアミノ酸421~455を含む。一部の実施形態では、ヒトMETの第一のエピトープは、配列番号155のアミノ酸192~204を含み、ヒトMETの第二のエピトープは、配列番号155のアミノ酸305~315および421~455を含む。
本明細書において、本明細書に記載される方法により有用な抗MET抗体、またはMET X MET二特異性抗原結合分子を含む医薬組成物が提供される。医薬組成物は、適切な担体、賦形剤とともに、および輸送、送達、忍容性などの改善をもたらす他の剤とともに製剤化されてもよい。
抗MET抗体およびMET×MET二特異性抗原結合分子(または抗MET抗体およびMET×MET二特異性抗原結合分子を含む医薬製剤)は、任意の公知の送達システムおよび/または投与方法により患者に投与されてもよい。ある実施形態では、抗MET抗体およびMET×MET二特異性抗原結合分子は、眼注射、眼内注射、硝子体内注射、または結膜下注射により患者に投与される。他の実施形態では、抗MET抗体およびMET x MET二特異性抗原結合分子は、例えば、抗MET抗体およびMET x MET二特異性抗原結合分子を含有し、眼に直接適用することができる点眼剤または他の液体、ゲル、軟膏もしくは流体を介した局所投与により患者に投与することができる。他の可能性のある投与経路としては、例えば、皮内経路、筋肉内経路、腹腔内経路、静脈内経路、皮下経路、鼻腔内経路、硬膜外経路、および経口経路が挙げられる。
本明細書において、一つ以上の追加の治療活性成分と組み合わされた、本明細書に記載される抗MET抗体およびMET X MET二特異性抗原結合分子のいずれかを含む組成物および治療用製剤が提供され、および当該組成物を、その必要のある対象に投与することを含む治療方法が提供される。
ある実施形態によると、抗MET抗体またはMET X MET二特異性抗原結合分子(または、抗MET抗体もしくはMET X MET二特異性抗原結合分子と、本明細書に言及される追加の治療活性剤のいずれかの組み合わせを含む医薬組成物)の複数投与量を、規定の時間経過で対象に投与してもよい。当該態様による方法は、本明細書に提供される抗MET抗体またはMET x MET二特異性抗原結合分子の複数投与量を対象に順次投与することを含む。本明細書で使用される場合、「順次投与する」とは、抗体の各投与量が、例えば所定の間隔(例えば、時間、日、週または月)をあけた異なる日など、異なる時点で対象に投与されることを意味する。本開示は、抗MET抗体またはMET X MET二特異性抗原結合分子の一つの初回投与量、次いで当該抗MET抗体またはMET X MET二特異性抗原結合分子の一つ以上の第二の投与量、および任意で次いで当該抗MET抗体またはMET X MET二特異性抗原結合分子の一つ以上の第三の投与量を、患者に順次投与することを含む方法を含む。
本開示の抗MET抗体またはMET X MET二特異性抗原結合分子を使用して、例えば診断目的のためにサンプル中のMETもしくはMET発現細胞を検出および/または測定してもよい。例えば、抗MET抗体またはその断片を使用して、METの異常発現(例えば過剰発現、過小発現、発現の欠如など)を特徴とする状態または疾患を診断してもよい。METに対する例示的な診断アッセイは、例えば患者から取得されたサンプルを、抗MET抗体またはMET X MET二特異性抗原結合分子と接触させることを含み、この場合において、当該抗体は、検出可能な標識またはレポーター分子で標識される。あるいは、標識されていない抗MET抗体またはMET X MET二特異性抗原結合分子を、それ自体が検出可能に標識されている二次抗体と組み合わせて、診断アプリケーションに使用することもできる。検出可能な標識またはレポーター分子は、例えば3H、14C、32P、35S、または125Iなどの放射性同位体、例えばフルオレセインもしくはローダミンなどの蛍光または化学発光部分、または例えばアルカリホスファターゼ、ベータ-ガラクトシダーゼ、セイヨウワサビペルオキシダーゼ、もしくはルシフェラーゼなどの酵素であってもよい。サンプル中のMETを検出または測定するために使用され得る具体的な例示的アッセイとしては、酵素結合免疫吸着測定法(ELISA)、放射免疫測定法(RIA)、およびイムノ-PET(例えば、89Zr、64Cuなど)、および蛍光活性化細胞ソーティング法(FACS)が挙げられる。
抗MET抗体は、ヒトFcに融合された組換えヒトMET細胞外ドメインを含む免疫原を用いて、ヒト免疫グロブリン重鎖可変領域およびカッパ軽鎖可変領域をコードするDNAを含む遺伝子操作されたマウスを免疫化することにより取得された(R&D Systems社、カタログ番号358-MT、ミネソタ州ミネアポリス)。免疫化に使用されたマウスは、「ユニバーサル軽鎖」を発現する。すなわち、当該マウスで生成された抗体は、異なる重鎖可変領域を有するが、本質的に同一の軽鎖可変ドメインを有している。
表1は、本明細書に記載される選択された抗MET抗体の重鎖可変領域と軽鎖可変領域、およびCDRのアミノ酸配列識別子を記載する。(上述のように、実施例1で生成された全ての抗体は、同じ軽鎖可変領域を保有しており、それに伴い同じ軽鎖CDR配列を保有している)。対応する核酸配列の識別子は、表2に記載される。
ヒト抗MET抗体の結合アフィニティおよび速度定数を、37℃での表面プラズモン共鳴(Biacore 4000またはT-200)により決定した。本実施例で検証された抗MET抗体は、二価の一特異性MET結合物質であった。ヒトIgG4として発現された抗体(「H4H」と指定)は、モノクローナルマウス抗ヒトFc抗体とのアミンカップリングを介して誘導体化されたCM4またはCM5 Biacoreセンサー表面に捕捉された(GE社、BR-1008-39)。 様々な濃度の可溶性の単量体(ヒト(h)Met.mmh;配列番号152、カニクイザル(macaca fascicularis)(mf)Met.mmh;配列番号154)または二量体(hMet.mFc;配列番号153)のMETタンパク質を、30または50μL/分の流速で抗MET抗体捕捉表面に注入した。捕捉モノクローナル抗体と、hMET.mmhまたはhMET.mFcの結合は4または5分間モニタリングされ、HBS-ET(0.01M HEPES pH 7.4、0.15M NaCl、3mM EDTA、0.05% v/v Surfactant P20)またはPBS-P(0.01M リン酸ナトリウム pH 7.4、0.15M NaCl、0.05% v/v Surfactant P20)のランニング緩衝液中、hMET.mmhまたはhMET.mFcの解離が10分間モニタリングされた。
二つの抗Met抗体が、MET上のそれぞれのエピトープへの結合について互いに競合することができるかを評価するために、OCTET(登録商標)HTXバイオセンサー(ForteBio Corp.,カリフォルニア州メンロパーク)上でリアルタイムの無標識バイオレイヤー干渉法(BLI)を使用して結合競合アッセイを実施した。
本実施例は、二つの異なる抗原結合ドメイン(D1およびD2)を含む二特異性抗体の構築を記述する。D1およびD2は、異なる抗MET抗体に由来し、その結果、MET細胞外ドメイン上の異なるエピトープに結合する。
本明細書の実施例4に従って構築されたMET x MET二特異性抗体の結合アフィニティおよび速度定数を、37℃での表面プラズモン共鳴(Biacore 4000または T-200)により決定した。ヒトIgG4として発現された二特異性抗体(「H4H」と指定)を、モノクローナルマウス抗ヒトFc抗体とのアミンカップリングを介して誘導体化されたCM4またはCM5 Biacoreセンサー表面に捕捉した(GE社、BR-1008-39)。様々な濃度の可溶性の単量体METタンパク質(hMet.mmh、配列番号152)を、抗MET×MET二特異性抗体が捕捉された表面上に、30または50μL/分の速度で注入した。捕捉二特異性抗体と分析物の結合は、4または5分間モニタリングされ、HBS-ET(0.01M HEPES pH 7.4、0.15M NaCl、3mM EDTA、0.05% v/v Surfactant P20)またはPBS-P(0.01M リン酸ナトリウム pH7.4、0.15M NaCl、0.05% v/v Surfactant P20)のランニング緩衝液中、分析物の解離が10分間モニタリングされた。
肝細胞増殖因子(HGF)介在性のMET活性化を遮断する抗MET抗体の能力を、ルシフェラーゼベースのレポーターアッセイで検証した。増殖因子のHGFは、その受容体のc-Met(MET)の細胞外ドメインに結合し、急速なホモ二量体化を誘発して、いくつかの下流シグナル伝達カスケードを活性化する。本実施例で検証された抗MET抗体は、METの二価一特異性結合物質、または抗MET「二特異性」物質であり、二特異性抗体の各アームは、MET上の異なる別個のエピトープに結合した。
次に、選択された抗Met抗体を、MET増幅SNU5細胞の増殖を阻害する能力について試験した。簡潔に述べると、2.5×103個のヒト胃癌(SNU5)細胞を、1.5pM~100nMの範囲の濃度の抗MET抗体の存在下で、完全増殖培地中に播種した。SNU5完全増殖培地は、Iscove’s Modified Dulbecco’s Medium、10% FBS、およびペニシリン/ストレプトマイシン/グルタミンを含有した。細胞を5日間インキュベートし、CELLTITER-GLO(登録商標)Luminescent Cell Viability Assayキット(Promega社、ウィスコンシン州マディソン)を使用して、メーカーの説明書に従い、生細胞数を決定した。
ヒト肺腺扁平上皮癌細胞における、MET経路に対するMET×MET二特異性抗体の効果を、インビトロで評価した。
ヒト胃癌細胞のMET経路に対するMET×MET二特異性抗体の効果を、インビトロで評価した。250,000個のHs746Tヒト胃癌細胞(H.Smith,J.Nat’l.Cancer Inst.62(2):225-230,1979)を12ウェルプレートに播種し、10%のFBSを補充した改変ダルベッコ培地中で培養した。細胞を、(1)5μg/mlのhFc対照分子、(2)5μg/mlの親二価一特異性抗MET抗体のH4H13306P2、(3)5μg/mlの親二価一特異性抗MET抗体のH4H13312P2、(4)2.5μg/mLのH4H13306P2と2.5μg/mLのH4H13312P2の組み合わせ、または(5)5μg/mlのMET X MET二特異性抗体のH4H14639D、を用いて処理した。次いで細胞を37℃、5% CO2でインキュベートした。 18時間後、細胞溶解物を調製し、タンパク質含有量を正規化し、イムノブロット分析を実施した。MET発現、METリン酸化、およびERKリン酸化を、ImageJ画像処理プログラム(T.Collins,BioTechniques 43:S25-S30,2007)を用いて定量した。結果を表13および図7のパネルAに要約する。当該図において、イムノブロットの生データを示す。図7のパネルBは、10μg/mlのMET X MET二特異性抗体を用いて、0、2、または6時間、処理された細胞中のMETタンパク質発現を示す。Hs747T細胞における総METレベルは、MET×MET二特異性抗体を用いた処理により経時的に低下した。MET増幅ヒト乳頭腺がんのNCI-H820細胞株(Bean et al.,“MET amplification occurs with or without T790M mutations in EGFR mutant lung tumors with acquired resistance to getfitnib or erlotinib,” Proc.Natl.Acad.Sci.2007 Dec 26,104(52):20932-20937)に対しても同様の結果が得られた。
ヒト肺腺扁平上皮癌細胞上の肝細胞増殖因子受容体(HGFRまたはMET)の発現レベルに対する、MET x MET二特異性抗体と、親二価一特異性抗MET抗体の効果を評価した。250,000個のNCI-H596ヒト肺腺扁平上皮癌細胞を12ウェルプレートに播種し、10% FBSを補充されたRPMI培地中で培養した。細胞を、(1)5μg/mlのhFc対照分子、(2)5μg/mlの親二価一特異性抗MET抗体のH4H13306P2、(3)5μg/mlの親二価一特異性抗MET抗体のH4H13312P2、(4)2.5μg/mLのH4H13306P2と2.5μg/mLのH4H13312P2の組み合わせ、または(5)5μg/mlのMET X MET二特異性抗体のH4H14639D、を用いて処理した。次いで細胞を37℃、5% CO2でインキュベートした。 18時間後、細胞溶解物を調製し、タンパク質含有量を正規化し、イムノブロット分析を実施した。MET発現を、ImageJ画像処理プログラム(T.Collins,BioTechniques 43:S25-S30,2007)を用いて定量した。結果を表14に要約する。
胃癌細胞上の肝細胞増殖因子受容体(HGFRまたはMET)の発現レベルに対する、二価一特異性抗MET抗体、およびいくつかのMET x MET二特異性抗体の効果を評価した。ヒト胃癌SNU5細胞を、20% FBSと、ペニシリン-ストレプトマイシン-グルタミンを含有するIscove’s培地中に播種した。播種から24時間後、細胞を、対照hFc、抗MET親二価一特異性抗体のH4H13312P2、またはMET X MET二特異性抗体(H4H14634D、H4H14635D、H4H14636D、H4H14637D、H4H14638D、H4H14639D、H4H14640D、H4H14641D)を用いて18時間処理した。次いで細胞溶解物を調製し、ウェスタンブロッティングにより分析した。イムノブロットを、METおよびチューブリンに対してプローブした。METタンパク質の発現レベルを定量し、チューブリンローディング対照に対して正規化した。結果を表15および図10、パネルBに示す。
MET増幅ヒト肺扁平上皮細胞癌のEBC-1細胞(Lutterbach et al.,“Lung cancer cell lines harboring MET gene amplification are dependent on Met for growth and survival,” Cancer Res.2007 Mar 1;67(5):2081-8)を、対照抗体、または10μg/mlのMET X MET二特異性抗体を用いて18時間、上述のように処理した。MET発現とMET経路の活性化は、pMETおよびpErkにより確定され、指定抗体を用いた免疫ブロッティングにより判定された。イムノブロットを図11に示す。
ヒト胃癌細胞の増殖に対するMET×MET二特異性抗体の効果を、インビトロで評価した。2,500個のHs746Tヒト胃癌細胞(H.Smith,J.Nat’l.Cancer Inst.62(2):225-230,1979)を96ウェルプレートに播種し、10%のFBSを補充した改変ダルベッコ培地中で培養した。細胞は、(1)5μg/mlの個々の二価一特異性抗MET抗体(H4H13306P2またはH4H13312P2)、(2)それぞれ2.5μg/mlの二つの二価一特異性抗MET親抗体(H4H13306P2とH4H13312P2)の組み合わせ、または(3)5μg/mlの、H4H13306P2由来の一方の結合アームと、H4H13312P2由来の他方の結合アームを含有する二特異性抗体(H4H14639D)、を用いて処理された。次いで細胞を、5% CO2、37℃でインキュベートした。 5日後、相対的な細胞増殖は、指標色素のALAMAR BLUE(登録商標)(ThermoFischer Scientific社、マサチューセッツ州ウォルサム)を、Spectramax(登録商標)M3プレートリーダー(Molecular Devices社、カリフォルニア州サニーベール)において、その高度に蛍光性の形態への減少を測定することにより判定した。蛍光の増加は、細胞増殖と相関する。表17は、対照(処理なし)Hs746T細胞の増殖に対して正規化された各抗体処理の相対的なHs746T細胞の増殖を示す。二特異性抗体のH4H14639Dは、その親一特異性抗体の個々の、または組み合わせよりも強力にHs746T細胞の増殖を阻害する。
ヒト非小細胞肺癌(NSCLC)細胞(NCI-H596)の増殖に対するMET×MET二特異性抗体の効果をインビトロで評価した。10,000個のNCI-H596 肺腺扁平上皮癌細胞(Nair et al.,J.Nat’l.Cancer Inst.86(5):378-383,1994)を、1%ウシ胎児血清(FBS)を補充した培地中、0.66%アガーの層上で、96ウェルプレートに播種した。細胞を、0.3%アガロースを含む、1% FBSを補充されたRPMI1640培地中で培養した。細胞は、(1)5μg/mlの個々の親二価一特異性抗MET抗体(H4H13306P2またはH4H13312P2)、(2)それぞれ2.5μg/mlの二つの親二価一特異性抗MET抗体(H4H13306P2とH4H13312P2)の組み合わせ、(3)5μg/mlの、H4H13306P2由来の一方の結合アームと、H4H13312P2由来の他方の結合アームを含有する二特異性抗体(H4H14639D)、または(4)100ng/mLの肝細胞増殖因子(HGF)を用いて処理された。次いで細胞を、5% CO2、37℃でインキュベートした。 2週間後、相対的な細胞増殖は、指標色素のALAMAR BLUE(登録商標)(ThermoFischer Scientific社、マサチューセッツ州ウォルサム)を、SPECTRAMAX(登録商標)M3プレートリーダー(Molecular Devices社、カリフォルニア州サニーベール)において、その高度に蛍光性の形態への減少を測定することにより判定した。蛍光の増加は、細胞増殖と相関する。表18および図14は、対照(処理なし)のNCI-H596細胞の増殖に対して正規化された各抗体処理の相対的なNCI-H596細胞の増殖を示す。NCI-H596肺癌細胞をHGFで処理することにより、軟アガー中での増殖が強力に誘導された。MET x MET(図14のMM)二特異性抗体のH4H14639Dは、対照処理細胞と比較して増殖を有意に変化させなかった。それぞれの親二価一特異性抗体のH4H13306P2(M1)またはH4H13312P2(M2)の個別で、または組み合わせ(H4H13306P2とH4H13312P2)(M1M2)で、中程度の細胞増殖が観察された。
免疫不全マウスモデルにおける、ヒト胃癌腫瘍に対するMET×MET二特異性抗体の効果を評価した。300万個のHs746Tヒト胃癌細胞を、CB-17 SCIDマウスの側腹に皮下移植した(Bancroft et al.,J.Immunol.137(1):4-9,1986)。腫瘍体積が約200mm3に達した時点で、マウスを6群に無作為化し、25mg/kgの対照抗体、または25mg/kgのMET x MET二特異性抗体(H4H14639D)を用いて週に2回治療した。対照群に関して、移植から16日間、対照治療腫瘍がプロトコールのサイズ限界に達するときまで腫瘍増殖をモニタリングした。H4H14639治療群に関して、移植から30日間、腫瘍増殖をモニタリングした。
免疫不全マウスモデルにおける、ヒト胃癌腫瘍に対するMET×MET二特異性抗体の効果を評価した。1,000万個のSNU5ヒト胃癌細胞を、CB-17 SCIDマウスの側腹に皮下移植した。腫瘍体積が約500mm3に達した時点で、マウスを5群に無作為化し、10mg/kgの対照抗体、または1mg/kgもしくは10mg/kgいずれかのMET x MET二特異性抗体(H4H14639D)を用いて週に2回治療した。移植後81日間、対照治療腫瘍がプロトコールのサイズ限界に達するときまで腫瘍増殖がモニタリングされた。
免疫不全マウスモデルにおける、ヒトグリア芽腫腫瘍に対するMET×MET二特異性抗体の効果を評価した。500万個のU87-MGヒトグリア芽腫細胞(Vordermark and Brown,Int.J.Radiation Biol.56(4):1184-1193,2003)を、CB-17 SCIDマウスの側腹に皮下移植した。U87-MGグリア芽腫異種移植片モデルは、オートクラインのHGFシグナル伝達により誘導される。腫瘍体積が約100mm3に達した時点で、マウスを6群に無作為化し、対照抗体またはMET x MET二特異性抗体(H4H14639D)を用いて治療した。各マウスには、週に二回、25mg/kgの抗体(対照またはMET X MET)が投与sれた。移植後29日間、対照治療腫瘍がプロトコールのサイズ限界に達するときまで腫瘍増殖がモニタリングされた。
免疫不全マウスモデルにおける、ヒトグリア芽腫腫瘍に対するMET×MET二特異性抗体の効果を評価した。U118-MGグリア芽腫異種移植片モデルは、オートクラインのHGFシグナル伝達により誘導される。500万個のU118-MGヒトグリア芽腫細胞(Olopade et al.,Cancer Research 52:2523-2529,1992)を、CB-17 SCIDマウスの側腹に皮下移植した。腫瘍体積が約100mm3に達した時点で、マウスを6群に無作為化し、対照抗体またはMET x MET二特異性抗体(H4H14639D)を用いて治療した。各マウスには、週に二回、25mg/kgの抗体(対照またはMET X MET)が投与sれた。移植後72日間、腫瘍増殖をモニタリングした。
メイタンシン-3-N-メチル-L-アラニン-N-Me-ベータ-アラニン-カルバミル-(p-アミノ)ベンジル-シトルリン-バリン-アジポイル-コハク酸塩(図20の化合物1)を、化合物2(図19)から以下に記載されるように合成した。
抗体結合体
抗体上のリンカー-搭載物の担持量を判定するために、結合体を脱グリコシル化し、LC-MSにより分析した。
1.分布ピーク強度(PI)による薬剤(Dn)の相対割合(%):
Dn%=PIn/Σ(PI0+PI1+PI2…….+PIi)×100
(n=0,1,2,3,…,i)
2.平均DARの計算:
DAR=Σ(1×D1%+2×D2%+3×D3%+……+i×Di%)
MCC-DM1ジアステレオマー(メイタンシノイドA)、またはメイタンシン-3-N-メチル-L-アラニン-N-Me-ベータ-アラニン-カルバミル-(p-アミノ)ベンジル-シトルリン-バリン-アジポイル-コハク酸塩(化合物1、図20)(メイタンシノイドB)のいずれかと結合された抗MET抗体へのMET結合に対する平衡解離定数(KD値)は、Biacore 2000装置でのリアルタイム表面プラズモン共鳴バイオセンサーアッセイを使用して決定された。Biacoreセンサー表面を、モノクローナルマウス抗ヒトFc抗体(GE Healthcare社、# BR-1008-39)とのアミンカップリングを行うことにより誘導体化して、ヒト定常領域を含み発現される抗MET ADCと親非改変抗体を捕捉した。Biacore結合実験は、HEPES緩衝生理食塩水(HBS)-EPランニング緩衝液(0.01M HEPES pH 7.4、0.15M NaCl、3mM EDTA、0.05% v/v Surfactant P20)中で実施された。C末端myc-myc-ヘキサヒスチジンタグを発現するヒトMET(hMET-mmh)が社内で調製された。HBS-EPランニング緩衝液中で調製された、様々な濃度(3倍希釈)のhMET-mmh(30nM~1.1nMの範囲)を、抗MET ADCまたは抗体捕捉表面上に40μL/分の流量で注入した。hMET-mmhと、捕捉ADCおよびモノクローナル抗体の各々への結合は、4分間モニタリングされた。続いて、HBS-EPランニング緩衝液中で6分間、hMET-mmhの解離がモニタリングされた。抗ヒトFc表面は20mM H3PO4の短時間注入により再生された。すべての結合動態実験は、25℃で実施された。
本明細書に記載される抗MET抗体薬剤結合体(ADC)の相対的な細胞殺傷の有効性を判定するために、様々なレベルの内因性METを発現する複数の細胞株に対し、細胞殺傷アッセイを実施した。EBC-1(Riken Cell Bank;#RBRC-RCB1965)細胞株、MKN-45(JCRB;#JCRB0254)細胞株、NCI-H1993(ATCC;#CRL-5909)細胞株、およびJ.RT3(ATCC;#TIB-153)細胞株は、RPMI+10% FBS+1X ペニシリン/ストレプトマイシン/L-グルタミン(P/S/G)中で維持された。SNU-5(ATCC;#CRL-5973)細胞株は、Iscove’s + 10% FBS+1X P/S/G中で維持された。Hs746t(ATCC;#HTB-135)細胞株とHEK293(ATCC;# 003041)細胞株は、DME+10% FBS+1X P/S/G中で維持された。MDA-MB-231(ATCC;#HTB-26)細胞株は、Liebowitz’s L-15+10% FBS+1X P/S/G+1X 非必須アミノ酸(NEAA)中でCO2を用いずに維持された。U87MG(ATCC;# HTB-14)細胞株は、MEM Earle’s Salts+15% FBS+1X P/S/G+1X NEAA中で維持された。T47D(ATCC;#HTB-133)細胞株は、RPM1 1640 + 10% FBS + 1X P/S/G+10mM HEPES+1mM ピルビン酸ナトリウム + 10 ug/ml ウシインスリン中で維持された。A549(ATCC;# CCL-185)細胞株は、Kaighn’s Nutrient Mixture F-12(HAM’s F-12K)+10% FBS+1X P/S/G中で維持された。
300万個のHs746T胃癌細胞を、C.B.-17 SCIDマウスの側腹に皮下移植した。腫瘍体積が約150mm3に達した時点で、マウスを6群に無作為化し、対照抗体のREGN1945-メイタンシノイドB、10mg/kgのREGN1945-メイタンシノイドA、または3もしくは10mg/kgのH4H14639D-メイタンシノイドAまたはH4H14639D-メイタンシノイドBで治療した。すべての抗体を、週に1回の頻度で3回投与した。移植後37日間、腫瘍増殖をモニタリングした。
500万個のEBC1肺癌細胞を、C.B.-17 SCIDマウスの側腹に皮下移植した。腫瘍体積が約170mm3に達した時点で、マウスを6群に無作為化し、対照抗体のREGN1945-メイタンシノイドBを15mg/kg、またはH4H14639D-メイタンシノイドBを2.5、5、10、もしくは15mg/kgで用いて治療した。抗体は、週に1回の頻度で2回投与した。移植後73日間、腫瘍増殖をモニタリングした。
Met発現NSCLC CTG-0165の患者由来腫瘍を、nu/nu Nudeマウスの側腹に皮下移植した。腫瘍体積が約150mm3に達した時点で、マウスを6群に無作為化し、対照抗体のREGN1945-メイタンシノイドB、10mg/kgのREGN1945-メイタンシノイドA、または3もしくは10mg/kgのH4H14639D-メイタンシノイドAまたはH4H14639D-メイタンシノイドBで治療した。すべての抗体を、週に1回の頻度で3回投与した。移植後61日間、腫瘍増殖をモニタリングした。
ヒト肝細胞増殖因子受容体外部ドメイン(配列番号155:myc-myc-ヘキサヒスチジン(.mmh)タグとともに発現されるヒトMetアイソフォーム1(Uniprot ID:P08581。以下、hMetと呼称される)の、抗MET抗体のH4H13312P2、H4H13306P2、およびH4H14639Dが相互作用する特異的領域を決定するための実験を実施した。H4H13312P2およびH4H13306P2は二価-一特異性抗MET抗体であり、H4H14639Dは、二つの重鎖とユニバーサル軽鎖を含む二特異性抗体であり、当該二つの重鎖はそれぞれH4H13312P2とH4H13306P2に由来するMET上の異なるエピトープに結合する。(実施例5を参照)。
HDXを介して、抗Met抗体のH4H13312P2、H4H13306P2、およびH4H14639DのhMET上の結合エピトープをマッピングするために、個々の抗体を、NHS活性化されたSepharose 4 Fast Flowビーズ(GE Healthcare社、ペンシルバニア州ピッツバーグ)に別々に共有結合させた。以下に記載されるように、「オン-抗原」および「オン-複合体」の二つの方法を利用して、抗MET抗体の結合エピトープを確認した。
9.0分間のLC-MSEデータ取得と併せて、Waters Enzymate(商標)BEH Pepsin Column(2.1 x 30 mm、5μm)を介したオンラインのペプシン消化を使用して、ヒトMETから合計で162個のペプシン消化ペプチドを再現性良く特定した。H4H13312P2抗体ビーズを使用したときに、「オン-抗原」と「オン-複合体」の両方の実験に対し、追跡可能な重水素取り込みがあった。これらのペプチドは、55.7%の配列カバー率を表している。これらすべてのペプチドのうち、5個のペプチドのみが、抗原単独の重水素化(オン-抗原)と比較して、H4H13312P2の結合時(オン-複合体)に、重水素化取り込みが有意に減少した。両実験条件下でのこれら五つのペプチドの質量中心値を、表32に図示した。これらの五つのペプチドによってカバーされる192~204残基に対応する領域を、HDXデータに基づいて、H4H13312P2抗体の結合エピトープとして規定した。
二つのメイタンシノイド搭載物のうちの一つに結合された二特異性c-Met抗体のH4H14639Dは、H4H14639D-メイタンシノイドAとH4H14639D-メイタンシノイドBと指定された。これらをブドウ膜メラノーマ細胞株において試験し、当該細胞株のc-Met発現と比較した細胞増殖と細胞生存率に対する効果を判定した。
c-Metを発現するブドウ膜メラノーマ細胞株であるOMM1.3およびMel202、ならびにc-Met陰性のOCM3細胞を、10%FBSを含むRPMI中、1ウェル当たり800,000細胞で60mm3プレートに一晩播種し、5%CO2、37℃でインキュベートした。細胞を、1.25nM、2.5nM、または10nMのREGN1945(アイソタイプ対照抗体)、REGN1945-メイタンシノイドA、H4H14639D、またはH4H14639D-メイタンシノイドBで48時間処理した。次いで細胞をトリプシンで収集し、PBSで洗浄し、4%パラホルムアルデヒドを用いて室温で30分間固定し、4℃で一晩DAPIで染色した。 細胞を顕微鏡スライド上に置き、Cytoseal 40で密封した。アポトーシス細胞を、DAPI蛍光を励起するためのUV光を伴う顕微鏡下で定量した。
c-Metを発現するブドウ膜メラノーマ細胞株であるOMM1.3およびMel202、ならびにc-Met陰性のOCM3細胞を、10%FBSを含むRPMI中、1ウェル当たり800,000細胞で60mm3プレートに一晩播種し、5%CO2、37℃でインキュベートした。細胞は、未処理で、または10nMのH4H14639D-メイタンシノイドBで1、3、6、24、および48時間処理した。次いで細胞をトリプシンで収集し、PBSで洗浄し、-20℃で一晩、冷却70%エタノールで固定した。Millipore抗MPM2抗体で2時間インキュベートし、PBSで洗浄して、Alexa Fluor 488(Invitrogen社)と結合されたInvitrogen社の抗マウスIgG中でインキュベートし、再度PBSで洗浄した。次いで細胞を500μg/mlのヨウ化プロピジウムで染色し、4℃で一晩インキュベートした。次いで細胞をセルストレーナーに通し、その後、BD Bioscience LSR IIフローサイトメーターを通過させた。データは、FCS Express 6を使用し、De Novoソフトウェアによって分析された。
ウェスタンブロッティング解析を実施して、いくつかのブドウ膜メラノーマ細胞株ならびに胃癌細胞株および肺癌細胞株においてc-Metタンパク質発現レベルの差異を評価した。
ブドウ膜メラノーマ細胞株は、例えばGNAQまたはGNA11など、Gタンパク質の変異が一般的に認識されているが、それらはさらに様々なc-Met発現も呈する。図28に示されるように、ブドウ膜メラノーマ細胞株の各々は、OCM1A細胞株およびOCM3細胞株を除き、ある程度のレベルでc-Met受容体を発現するが、これらはBRAFV600E変異細胞である。SNU-5は、c-Metを高度に発現することが知られている陽性対照の胃癌細胞株であり、一方でA549は、c-Metも発現する肺癌細胞株である。
ウェスタンブロット解析を実施して、H4H14639D-メイタンシノイドBを用いた処理後のいくつかのブドウ膜メラノーマ細胞株における、c-Metタンパク質レベル、PARP切断およびヒストンH3のリン酸化を評価した。
図29は、H4H14639D-メイタンシノイドBが、処置から24時間後にOMM1.3細胞およびMel202細胞においてPARP切断(アポトーシスのマーカー)を誘導することを示すウェスタンブロットの画像である。REGN1945-メイタンシノイドBとH4H14639DのいずれもPARP切断を誘導しなかった。c-Met陽性細胞株とは異なり、OCM3細胞は、H4H14639D-メイタンシノイドB処理後でもPARP切断を呈さなかった。図29はさらに、H4H14639D-メイタンシノイドBで処理されたOMM1.3細胞およびMel202細胞におけるヒストンH3リン酸化の有意な増加を、REGN1945-メイタンシノイドBおよびH4H14639Dと比較して示しているが、OCM3細胞では増加はなかった。ヒストンH3のリン酸化は有糸分裂中に誘導されるものであり、細胞におけるメイタンシノイド誘導性の有糸分裂停止の証拠である。図29では、ヒストンH3のリン酸化は、c-Met発現細胞(OMM1.3およびMel202)にのみ見られ、OCM3では見られなかった。これは、c-Met抗体により細胞内にメイタンシノイドが輸送された証拠である。このデータは、c-Met ADCの特異性と有効性をさらに実証する。
c-Metを発現するブドウ膜メラノーマ細胞であるOMM1.3を、以下の処理を伴い、0.1%FBS含有RPMI中、1インサート当たり120,000個の細胞で、24ウェルプレートに配置されたマトリゲルインサートに一晩播種した:未処置対照、125pM、250pMおよび500pMのR1945、R1945-メイタンシノイドB、H4H14639DならびにH4H14639D-メイタンシノイドB。10%FBSと50ng/mlのヒトHGFを含有するRPMIを、化学的誘引物質としてウェル内に入れた。約24時間後、マトリゲルの挿入側から非遊走性細胞で除去した。遊走細胞をメタノールで2分間固定し、1%のトルイジンで2分間染色した。次いでddH2Oで2回洗浄した。その後、乾燥したマトリゲルを顕微鏡スライド上に置き、Cytoseal 60で密封した。Nikon社のTE-2000-U顕微鏡を使用して画像を取得した。
二特異性c-Met抗体のH4H14639D-メイタンシノイドBは、対照処理(R1945およびR1945-メイタンシノイドB)と比較して、c-Metタンパク質を発現するOMM1.3ブドウ膜メラノーマ細胞の浸潤を250pMから阻害した。また、H4H14639Dで処理された細胞においても、250pMから細胞浸潤の有意な阻害が認められた。しかしながら細胞生存率は、この用量でのH4H14639D-メイタンシノイドBの結合型メイタンシノイド搭載物では影響を受けなかった。図32を参照のこと。
Claims (41)
- 対象において、ブドウ膜メラノーマを治療する方法、ブドウ膜メラノーマの腫瘍増殖を低下させる方法、および/またはブドウ膜メラノーマの退縮を生じさせる方法であって、前記方法は、その必要のある対象に、二特異性抗原結合分子およびサイトトキシンを含む抗体-薬剤結合体(ADC)を投与することを含み、前記二特異性抗原結合分子は、
第一の抗原結合ドメイン(D1)、および
第二の抗原結合ドメイン(D2)を含み、
D1は、ヒトMETの第一のエピトープに特異的に結合し、および
D2は、ヒトMETの第二のエピトープに特異的に結合する、方法。 - 前記ブドウ膜メラノーマが、METを発現する、請求項1に記載の方法。
- D1は、配列番号58のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域(HCVR)内に三つの重鎖相補性決定領域(HCDR1、HCDR2およびHCDR3)、ならびに配列番号138のアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域(LCVR)内に三つの軽鎖相補性決定領域(LCDR1、LCDR2およびLCDR3)を含む、請求項1に記載の方法。
- D2は、配列番号82のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域(HCVR)内に三つの重鎖相補性決定領域(HCDR1、HCDR2およびHCDR3)、ならびに配列番号138のアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域(LCVR)内に三つの軽鎖相補性決定領域(LCDR1、LCDR2およびLCDR3)を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記二特異性抗原結合分子は、配列番号58のD1-HCVRアミノ酸配列内のCDR、および配列番号82のD2-HCVRアミノ酸配列内のCDRを含む、請求項1に記載の方法。
- ヒトMETの前記第一のエピトープは、配列番号155のアミノ酸192~204を含む、請求項1に記載の方法。
- ヒトMETの前記第二のエピトープは、配列番号155のアミノ酸305~315および421~455を含む、請求項1に記載の方法。
- ヒトMETの前記第一のエピトープは、配列番号155のアミノ酸192~204を含み、ヒトMETの前記第二のエピトープは、配列番号155のアミノ酸305~315および421~455を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記サイトトキシンは、バイオトキシン、化学療法剤、および放射性同位体からなる群から選択される、請求項1に記載の方法。
- 前記サイトトキシンは、メイタンシノイド、オーリスタチン、トメイマイシン、デュオカルマイシン、225Ac、227Th、およびそれらの任意の誘導体からなる群から選択される、請求項1に記載の方法。
- ブドウ膜メラノーマ細胞の増殖を阻害する方法、浸潤を阻害する方法、アポトーシスを生じさせる方法、および/または生存率を低下させる方法であって、前記細胞と、二特異性抗原結合分子およびサイトトキシンを含む抗体-薬剤結合体(ADC)とを接触させることを含み、前記二特異性抗原結合分子は、
第一の抗原結合ドメイン(D1)、および
第二の抗原結合ドメイン(D2)を含み、
D1は、ヒトMETの第一のエピトープに特異的に結合し、および
D2は、ヒトMETの第二のエピトープに特異的に結合する、方法。 - D1は、配列番号58のアミノ酸配列を含む、重鎖可変領域(HCVR)内に三つの重鎖相補性決定領域(HCDR1、HCDR2およびHCDR3)と、配列番号138のアミノ酸配列を含む、軽鎖可変領域(LCVR)内に三つの軽鎖相補性決定領域(LCDR1、LCDR2およびLCDR3)とを含む、請求項15に記載の方法。
- D2は、配列番号82のアミノ酸配列を含む、重鎖可変領域(HCVR)内に三つの重鎖相補性決定領域(HCDR1、HCDR2およびHCDR3)と、配列番号138のアミノ酸配列を含む、軽鎖可変領域(LCVR)内に三つの軽鎖相補性決定領域(LCDR1、LCDR2およびLCDR3)とを含む、請求項15に記載の方法。
- ブドウ膜メラノーマ細胞の有糸分裂停止を誘導する方法であって、前記細胞と、二特異性抗原結合分子およびサイトトキシンを含む抗体-薬剤結合体(ADC)とをインビボで接触させることを含み、前記二特異性抗原結合分子は、
第一の抗原結合ドメイン(D1)、および
第二の抗原結合ドメイン(D2)を含み、
D1は、ヒトMETの第一のエピトープに特異的に結合し、および
D2は、ヒトMETの第二のエピトープに特異的に結合する、方法。 - D1は、配列番号58のアミノ酸配列を含む、重鎖可変領域(HCVR)内に三つの重鎖相補性決定領域(HCDR1、HCDR2およびHCDR3)と、配列番号138のアミノ酸配列を含む、軽鎖可変領域(LCVR)内に三つの軽鎖相補性決定領域(LCDR1、LCDR2およびLCDR3)とを含む、請求項22に記載の方法。
- D2は、配列番号82のアミノ酸配列を含む、重鎖可変領域(HCVR)内に三つの重鎖相補性決定領域(HCDR1、HCDR2およびHCDR3)と、配列番号138のアミノ酸配列を含む、軽鎖可変領域(LCVR)内に三つの軽鎖相補性決定領域(LCDR1、LCDR2およびLCDR3)とを含む、請求項22に記載の方法。
- c-Met発現腫瘍に罹患する対象において、眼癌を治療する方法または転移を阻害する方法であって、前記対象に、
第一の抗原結合ドメイン(D1)、および
第二の抗原結合ドメイン(D2)とを含む二特異性抗原結合分子を投与することを含み、
D1は、ヒトMETの第一のエピトープに特異的に結合し、および
D2は、ヒトMETの第二のエピトープに特異的に結合する、方法。 - 前記眼癌は、ブドウ膜メラノーマ、眼窩リンパ腫、網膜芽細胞腫、および髄様上皮腫からなる群から選択される、請求項29に記載の方法。
- 前記対象に、第二の抗癌治療剤を投与することをさらに含む、請求項29に記載の方法。
- D1とD2は、ヒトMETへの結合に関し、互いに競合しない、請求項29に記載の方法。
- D1は、配列番号58のアミノ酸配列または前記配列に対して少なくとも95%同一であるアミノ酸配列を含む、重鎖可変領域(HCVR)内に三つの重鎖相補性決定領域(HCDR1、HCDR2およびHCDR3)、および配列番号138のアミノ酸配列または前記配列に対して少なくとも95%同一であるアミノ酸配列を含む、軽鎖可変領域(LCVR)内に三つの軽鎖相補性決定領域(LCDR1、LCDR2およびLCDR3)とを宇組む、請求項29に記載の方法。
- HCDR1は、配列番号60のアミノ酸配列を含み、HCDR2は、配列番号62のアミノ酸配列を含み、HCDR3は、配列番号64のアミノ酸配列を含み、LCDR1は、配列番号140のアミノ酸配列を含み、LCDR2は、配列番号142のアミノ酸配列を含み、そしてLCDR3は、配列番号144のアミノ酸配列を含む、請求項29に記載の方法。
- 前記二特異性抗原結合分子は、配列番号58のアミノ酸配列、または前記配列に対して少なくとも95%同一であるアミノ酸配列を含むHCVR、および配列番号138のアミノ酸配列、または前記配列に対して少なくとも95%同一であるアミノ酸配列を含むLCVR、とを含む、請求項34に記載の方法。
- 前記二特異性抗原結合分子は、配列番号58のアミノ酸配列を含むHCVR、および配列番号138のアミノ酸配列を含むLCVR、とを含む、請求項35に記載の方法。
- D2は、配列番号82のアミノ酸配列または前記配列に対して少なくとも95%同一であるアミノ酸配列を含む、重鎖可変領域(HCVR)内に三つの重鎖相補性決定領域(HCDR1、HCDR2およびHCDR3)、および配列番号138のアミノ酸配列または前記配列に対して少なくとも95%同一であるアミノ酸配列を含む、軽鎖可変領域(LCVR)内に三つの軽鎖相補性決定領域(LCDR1、LCDR2およびLCDR3)とを宇組む、請求項36に記載の方法。
- HCDR1は、配列番号84のアミノ酸配列を含み、HCDR2は、配列番号86のアミノ酸配列を含み、HCDR3は、配列番号88のアミノ酸配列を含み、LCDR1は、配列番号140のアミノ酸配列を含み、LCDR2は、配列番号142のアミノ酸配列を含み、そしてLCDR3は、配列番号144のアミノ酸配列を含む、請求項37に記載の方法。
- 前記二特異性抗原結合分子は、配列番号82のアミノ酸配列、または前記配列に対して少なくとも95%同一であるアミノ酸配列を含むHCVR、および配列番号138のアミノ酸配列、または前記配列に対して少なくとも95%同一であるアミノ酸配列を含むLCVR、とを含む、請求項38に記載の方法。
- 前記二特異性抗原結合分子は、配列番号82のアミノ酸配列を含むHCVR、および配列番号138のアミノ酸配列を含むLCVR、とを含む、請求項39に記載の方法。
- 前記二特異性抗原結合分子は、サイトトキシンと結合されて、抗体-薬剤結合体(ADC)を形成し、前記サイトトキシンは、メイタンシノイドである、請求項29に記載の方法。
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