JP2022521541A - 免疫機能を増強するための細胞、組成物、及び方法 - Google Patents
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Abstract
Description
[0044]そうでないことが規定されない限りにおいて、本明細書で使用される、全ての技術用語及び科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者により、一般に理解される意味と同じ意味を有する。本発明の実施又は試験では、本明細書で記載される方法及び材料と同様であるか、又は同等である、任意の方法及び材料が使用されうるが、好ましい方法及び材料が記載される。本発明の目的で、以下の用語が、下記に規定される。
[0093]本開示は、DNAM-1(また、CD226とも称される)が、腫瘍環境におけるT細胞の免疫機能に不可欠であることの決定に部分的に基づく。したがって、改変DNAM-1を含む、組換えDNAM-1など、細胞表面において、DNAM-1を発現するT細胞が提示される。また、本開示に従い、T細胞の表面における、DNAM-1の発現を利用して、T細胞の活性化の増大を含み、T細胞(例えば、CD8+ T細胞)機能を増強する方法も提示される。したがって、本開示のT細胞及び方法は、特に、養子細胞移入免疫療法の一部としての、がんの処置において有用である。本開示のT細胞及び方法はまた、感染症の処置においても有用である。例えば、本開示のT細胞は、慢性感染症を伴う対象へと、養子移入される場合があり、この場合、内因性T細胞は、枯渇させられうる。表面においてDNAM-1を発現する本開示のT細胞は、例えば、表面においてDNAM-1を発現しないT細胞と比較した活性化の増強(例えば、IFN-γ、IL-2、又はTNFの発現により測定される)、増殖の増強(例えば、Ki67の発現により測定される)、細胞溶解活性の増強、及び/又は抗腫瘍活性の増強を呈しうる。任意の1つ又は複数のT細胞の免疫機能は、表面においてDNAM-1を発現しないT細胞と比較して、少なくとも10%、20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%の100%、110%、120%、130%、140%、150%、200%、300%、400%、500%、若しくはこれを超えて、又はおよそこれらの比率増大させられうる。
[0094]DNAM-1は、まず、T細胞の細胞傷害性特性に関与する接着分子として記載された(Shibuyaら、1996、Immunity、4(6):573~581)。DNAM-1は、CD4 T細胞及びCD8 T細胞、NK細胞、血小板、並びに単球により、主に発現され、そのリガンドは、APC、形質転換細胞、及びウイルス感染細胞を含む、広範にわたる細胞において発現されるCD155(ポリオウイルス受容体)、及びCD112(ネクチン2)である。DNAM-1は、複数の細胞過程に関与していると思われる:DNAM-1は、免疫細胞の遊出において重要であり、免疫学的シナプスの安定性に関連しており、重要なNK細胞活性化受容体であり、CD4 T細胞に対する共受容体であると考えられている。したがって、DNAM-1欠損マウスは、GVHDに対してはよく保護されるが、発癌物質誘導性腫瘍形成を受けやすい(例えば、Nabekuraら、2010、Proc Natl Acad Sci U S A.、107(43):18593~18598;Iguchi-Manakaら、2008、J Exp Med.、205(13):2959~2964を参照されたい)。
EEVLWHTSVPFAENMSLECVYPSMGILTQVEWFKIGTQQDSIAIFSPTHGMVIRKPYAERVYFLNSTMASNNMTLFFRNASEDDVGYYSCSLYTYPQGTWQKVIQVVQSDSFEAAVPSNSHIVSEPGKNVTLTCQPQMTWPVQAVRWEKIQPRQIDLLTYCNLVHGRNFTSKFPRQIVSNCSHGRWSVIVIPDVTVSDSGLYRCYLQASAGENETFVMRLTVAEGKTDNQYTLFVAGGTVLLLLFVISITTIIVIFLNRRRRRERRDLFTESWDTQKAPNNYRSPISTSQPTNQSMDDTREDIYVNYPTFSRRPKTRV(配列番号2)
を有する。
EETLWDTTVRLSETMTLECVYPLTHNLTQVEWTKNTGTKTVSIAVYNPNHNMHIESNYLHRVHFLNSTVGFRNMSLSFYNASEADIGIYSCLFHAFPNGPWEKKIKVVWSDSFEIAAPSDSYLSAEPGQDVTLTCQLPRTWPVQQVIWEKVQPHQVDILASCNLSQETRYTSKYLRQTRSNCSQGSMKSILIIPNAMAADSGLYRCRSEAITGKNKSFVIRLIITDGGTNKHFILPIVGGLVSLLLVILIIIIFILYNRKRRRQVRIPLKEPRDKQSKVATNCRSPTSPIQSTDDEKEDIYVNYPTFSRRPKPRL(配列番号4)
を有する。
EEVLWHTSVPFAENMSLECVYPSMGILTQVEWFKIGTQQDSIAIFSPTHGMVIRKPYAERVYFLNSTMASNNMTLFFRNASEDDVGYYSCSLYTYPQGTWQKVIQVVQSDSFEAAVPSNSHIVSEPGKNVTLTCQPQMTWPVQAVRWEKIQPRQIDLLTYCNLVHGRNFTSKFPRQIVSNCSHGRWSVIVIPDVTVSDSGLYRCYLQASAGENETFVMRLTVAEGKTDNQYTLFVAGGTVLLLLFVISITTIIVIFLNRRRRRERRDLFTESWDTQKAPNNYRSPISTSQPTNQSMDDTREDIFVNYPTFSRRPKTRV(配列番号6)
EEVLWHTSVPFAENMSLECVYPSMGILTQVEWFKIGTQQDSIAIFSPTHGMVIRKPYAERVYFLNSTMASNNMTLFFRNASEDDVGYYSCSLYTYPQGTWQKVIQVVQSDSFEAAVPSNSHIVSEPGKNVTLTCQPQMTWPVQAVRWEKIQPRQIDLLTYCNLVHGRNFTSKFPRQIVSNCSHGRWSVIVIPDVTVSDSGLYRCYLQASAGENETFVMRLTVAEGKTDNQYTLFVAGGTVLLLLFVISITTIIVIFLNRRRRRERRDLFTESWDTQKAPNNYRSPISTSQPTNQSMDDTREDIYVNAPTASRRPKTRV(配列番号22)
EEVLWHTSVPFAENMSLECVYPSMGILTQVEWFKIGTQQDSIAIFSPTHGMVIRKPYAERVYFLNSTMASNNMTLFFRNASEDDVGYYSCSLYTYPQGTWQKVIQVVQSDSFEAAVPSNSHIVSEPGKNVTLTCQPQMTWPVQAVRWEKIQPRQIDLLTYCNLVHGRNFTSKFPRQIVSNCSHGRWSVIVIPDVTVSDSGLYRCYLQASAGENETFVMRLTVAEGKTDNQYTLFVAGGTVLLLLFVISITTIIVIFLNRRRRRARRDAATESWDTQKAPNNYRSPISTSQPTNQSMDDTREDIYVNAPTASRRPKTRV(配列番号24)
EEVLWHTSVPFAENMSLECVYPSMGILTQVEWFKIGTQQDSIAIFSPTHGMVIRKPYAERVYFLNSTMASNNMTLFFRNASEDDVGYYSCSLYTYPQGTWQKVIQVVQSDSFEAAVPSNSHIVSEPGKNVTLTCQPQMTWPVQAVRWEKIQPRQIDLLTYCNLVHGRNFTSKFPRQIVSNCSHGRWSVIVIPDVTVSDSGLYRCYLQASAGENETFVMRLTVAEGKTDNQYTLFVAGGTVLLLLFVISITTIIVIFLNRRRRRERRDLFTESWDTQAAPNNYRSPISTSQPTNQSMDDTREDIYVNYPTFSRRPKTRV(配列番号26)
EEVLWHTSVPFAENMSLECVYPSMGILTQVEWFKIGTQQDSIAIFSPTHGMVIRKPYAERVYFLNSTMASNNMTLFFRNASEDDVGYYSCSLYTYPQGTWQKVIQVVQSDSFEAAVPSNSHIVSEPGKNVTLTCQPQMTWPVQAVRWEKIQPRQIDLLTYCNLVHGRNFTSKFPRQIVSNCSHGRWSVIVIPDVTVSDSGLYRCYLQASAGENETFVMRLTVAEGKTDNQYTLFVAGGTVLLLLFVISITTIIVIFLNRRRRRERRDLFTESWDTQKAPNNYRSPISTSQPTNQSMDDTREDIYVNYPTFSRRPATRV(配列番号28)
EEVLWHTSVPFAENMSLECVYPSMGILTQVEWFKIGTQQDSIAIFSPTHGMVIRKPYAERVYFLNSTMASNNMTLFFRNASEDDVGYYSCSLYTYPQGTWQKVIQVVQSDSFEAAVPSNSHIVSEPGKNVTLTCQPQMTWPVQAVRWEKIQPRQIDLLTYCNLVHGRNFTSKFPRQIVSNCSHGRWSVIVIPDVTVSDSGLYRCYLQASAGENETFVMRLTVAEGKTDNQYTLFVAGGTVLLLLFVISITTIIVIFLNRRRRRERRDLFTESWDTQAAPNNYRSPISTSQPTNQSMDDTREDIYVNYPTFSRRPATRV(配列番号30)
EEVLWHTSVPFAENMSLECVYPSMGILTQVEWFKIGTQQDSIAIFSPTHGMVIRKPYAERVYFLNSTMASNNMTLFFRNASEDDVGYYSCSLYTYPQGTWQKVIQVVQSDSFEAAVPSNSHIVSEPGKNVTLTCQPQMTWPVQAVRWEKIQPRQIDLLTYCNLVHGRNFTSKFPRQIVSNCSHGRWSVIVIPDVTVSDSGLYRCYLQASAGENETFVMRLTVAEGKTDNQYTLFVAGGTVLLLLFVISITTIIVIFLN(配列番号8)
EEVLWHTSVPFAENMSLECVYPSMGILTQVEWFKIGTQQDSIAIFSPTHGMVIRKPYAERVYFLNSTMASNNMTLFFRNASEDDVGYYSCSLYTYPQGTWQKVIQVVQSDSFEAAVPSNSHIVSEPGKNVTLTCQPQMTWPVQAVRWEKIQPRQIDLLTYCNLVHGRNFTSKFPRQIVSNCSHGRWSVIVIPDVTVSDSGLYRCYLQASAGENETFVMRLTVAEGKTDNQ(配列番号9)
[00132]本明細書では、細胞の表面においてDNAM-1を発現する単離T細胞を含むT細胞が提示される。このような細胞は、特に、対象における免疫機能(T細胞機能を含む)を増強し、対象におけるがんを処置し、対象における感染症を処置するために有用である。DNAM-1を発現するT細胞は、CD4+ T細胞又はCD8+ T細胞の場合もある、及び/又はγδ T細胞又はαβ T細胞の場合もある。特定の実施形態では、T細胞は、CD8+ T細胞である。
[00134]本明細書では、組換えDNAM-1及び/又は改変DNAM-1を発現するT細胞が提示される。したがって、このようなT細胞は、内因性DNAM-1だけを発現するT細胞と比較して、表面DNAM-1のレベルを上昇させている。したがって、組換えDNAM-1を発現するT細胞は、T細胞機能の、組換えDNAM-1を発現しないT細胞(すなわち、内因性DNAM-1だけを発現するT細胞)と比較した増強を呈しうる。したがって、本開示はまた、T細胞において、組換えDNAM-1を発現するように、DNAM-1ポリヌクレオチドを、細胞へと導入することにより、T細胞の機能を増強するための方法も提示する。典型的に、組換えDNAM-1は、T細胞の表面において発現される。
[00142]本開示のT細胞を作製するために、細胞は、当技術分野で周知の方法を使用して、典型的に、対象(例えば、ヒト対象又は非ヒト動物対象、例えば、マウス、ラット、ウサギ、ブタ、チンパンジーなど)に由来する生物学的試料から得られるか、又は導出される。一部の例では、細胞は、細胞療法を施される対象、又はこのような対象に由来する試料から単離される、及び/又は他の形で調製される、すなわち、細胞は、自家細胞である。他の例では、細胞は、細胞療法を施される予定の対象、又は細胞療法を最終的に施される対象以外の対象から単離される、及び/又は他の形で調製される、すなわち、細胞は、同種細胞又は異種細胞である。典型的に、細胞は、生物学的試料から作出されたT細胞株に由来するT細胞もまた想定されるが、初代T細胞である。
[00169]本明細書ではまた、本開示のT細胞と、薬学的に許容できる担体とを含む、医薬組成物及び医薬製剤も提示される。医薬組成物はまた、1つ若しくは複数の化学療法剤、又は1つ若しくは複数の抗感染症剤など、1つ又は複数の他の活性薬剤も含みうる。これらの非限定例は、下記の節で詳述され、これらのうちの任意の1つ又は複数は、本開示の医薬組成物に組み入れられうる。
[00173]本開示は、対象における免疫機能(T細胞機能を含む)を増強するための方法、対象におけるがんを処置するための方法、及び対象へと、本明細書で記載される、DNAM-1を発現するT細胞を投与することにより、感染症を処置するための方法を提示する。したがって、本開示のT細胞は、がん又は感染症を処置するなどのために、対象へと、対象における免疫機能を増強するための養子細胞移入療法の一部として投与されうる。
[00197]本明細書で裏付けられる通り、DNAM-1は、腫瘍環境におけるT細胞の免疫機能に重要であり、がんに抗する生存及びがん治療(例えば、免疫チェックポイント阻害剤療法)に対する応答性について予後診断的である。したがって、DNAM-1は、T細胞機能についてのバイオマーカーとして使用されうる。したがって、本開示はまた、対象から得られたT細胞における、DNAM-1の量若しくはレベル、及び/又は集団における、DNAM-1+ T細胞の数若しくは百分率を決定することにより、対象の免疫機能、及び/又は対象におけるT細胞の免疫機能(例えば、CD4+ T細胞又はCD8+ T細胞)を評価するための方法も提示する。本開示はまた、対象から得られたT細胞における、DNAM-1の発現レベル、対象から得られたT細胞における、DNAM-1の量若しくはレベル、及び/又は集団における、DNAM-1+ T細胞の数若しくは百分率を決定することにより、対象が、がんに抗して生存する可能性、又はがんを伴う対象の生存時間を予測するための方法も提示する。また、対象から得られたT細胞における、DNAM-1の発現レベル、対象から得られたT細胞における、DNAM-1の量若しくはレベル、及び/又は集団における、DNAM-1+ T細胞の数若しくは百分率を決定することにより、がんを伴う対象が、免疫チェックポイント阻害剤などによるがん治療に応答する可能性を予測するための方法も提供される。一部の実施形態では、表面DNAM-1レベルは、T細胞の免疫機能、がんに抗する生存、及び/又は治療に対する応答性についてのバイオマーカーとして使用される。特定の実施形態では、集団におけるDNAM-1+ T細胞の数が評価され、バイオマーカー(例えば、表面DNAM-1について陽性であるT細胞の数又は百分率)として使用される。なおさらなる実施形態では、DNAM-1+ CD8+ T細胞の数又は百分率、例えば、全CD8+ T細胞に対する、腫瘍浸潤DNAM-1+CD8+ T細胞の数が評価される。さらなる実施形態では、DNAM-1の発現レベルは、がんに抗する生存についてのバイオマーカーとして使用される。
材料及び方法
マウス
[00207]野生型(WT)C57BL/6を、Walter and Eliza Hall Institute for Medical Researchから購入するか、又は自社で飼育した。C57BL6 Pmel-1 TCRtg GFPマウス(Gloddeら、2017)、C57BL/6 CD226欠損(CD226KO)マウス(Gilfillanら、2008)、C57BL/6 CD226KO Pmel-1 TCRtg GFPマウス、C57BL/6 CD226Y319F(CD226Y)マウス(Zhangら、2015)、C57BL/6 CD226Y Pmel-1 TCRtg GFPマウス、及びC57BL/6 CD155欠損(CD155KO)マウス(Liら、2018)を、自社で飼育し、QIMR Berghofer Medical Research Instituteで維持した。6週齢を超えるマウスを、適切なモデルと、性別をマッチさせた。各群の処置におけるマウスの数、又は各実験のためのマウス株を、図のキャプションに指し示す。全ての研究では、あらかじめ確立された基準に基づき、マウスを除外することはなく、無作為化は、治療実験における処置の直前に適用した。実験は、QIMR Berghofer Medical Research Institute Animal Ethics Committeeにより承認された通りに行った。
[00208]マウスB16F10(黒色腫)細胞(元は、ATCCから得た)、B16F10ctrl細胞、B16F10CD155KO細胞(Liら、2018、J Clin Invest、128、2613~2625)、MC38(結腸腺癌)細胞、MC38-OVAdim細胞、MC38-OVAhi細胞(Gilfillanら、2008、J Exp Med、205、2965~2973)、HEK293T細胞(QIMR Berghofer、Brisbane Australiaの、Steven Lane准教授の恵与による)、及びRM-1(前立腺癌)細胞(Blakeら、2016、Cancer Discov、6、446~459)を、10%のウシ胎仔血清(FCS;Cell Sera)、1%のグルタミン(Gibco)、1%のピルビン酸ナトリウム、1%の非必須アミノ酸(Gibco)、100IU/mlのペニシリン、及び100μg/mlのストレプトマイシン(Gibco)を補充した、ダルベッコ改変イーグル培地(DMEM;Gibco)において増殖させた。マウスLWT1(黒色腫)(Ferrari de Andradeら、2014、Cancer Res、74、7298~7308)細胞、及びHCmel12-PmelKO-Tyrp1-Scarlett-hgp100(HCmel12hgp100)(黒色腫)細胞(Effernら、審査中)を、10%のFCS(Cell Sera)、1%のグルタミン(Gibco)、1%のピルビン酸ナトリウム、1%の非必須アミノ酸(Gibco)、100IU/mlのペニシリン、及び100μg/mlのストレプトマイシン(Gibco)を補充したRPMI-1640(Gibco)からなる、「完全RPMI培地」において培養した。CHO由来細胞株を、4%のグルタミン(Gibco)及び2%のヒポキサンチン、チミジン(Corning)を補充された、CHO完全培地(Thermo Fisher)において培養した。B16F10細胞株及びそのバリアント、HCmel12hgp100細胞株、RM-1細胞株、並びにLWT1細胞株を、5%のCO2、37℃で維持した。全てのMC38由来細胞株を、10%のCO2、37℃で維持した。CHO由来細胞株を、8%のCO2、37℃、125rpmで維持した。内因性gp100を欠き、チロシナーゼ関連タンパク質1遺伝子座へとタグ付けされたヒトgp100エピトープを発現するHCmel12細胞株を、既に記載されている通りに(Effernら、審査中)作出した。注入手順及びモニタリング手順は、かつての研究(Gloddeら、2017、Immunity、47、789~802 e789;Liら、2018、J Clin Invest、128、2613~2625)において記載した。全ての細胞株は、定期的にマイコプラズマ属(Mycoplasma)検査を行い陰性であったが、定期的な細胞株認証は実施しなかった。
[00209]in vitro研究のために、マウスの脾臓から単離した、骨髄細胞及び/又はT細胞の、単一細胞懸濁液を、5%のCO2、37℃下の、1mMのHEPES(Gibco)、及び50μMの2-メルカプトエタノール(Sigma)を加えて補充した、「完全RPMI培地」(上記で記載した)において培養した。
[00210]ヒトPVR(NM_006505、NP_006496)を、R&D Systems RDC1289から、pLenti-EF1a(Origene)へとサブクローニングした。製造元の指示書(Clontech)に従い、Lenti-X Single Shot packaging systemを使用して、レンチウイルスを作製した。ポリブレン(Sigma;5μg/ml)により、CHO-OKT3(サブクローン2E5;Immuno-Oncology Discovery、Bristol-Myers Squibb)細胞に形質導入し、CD155の発現について、細胞を分取した。
[00211]HCmel12hgp100細胞株を、既に記載されている通りに(Effernら、審査中)作出した。略述すると、ターゲティングされたCRISPR/Cas9により、HCmel12黒色腫細胞における、Pmel遺伝子の、安定的ノックアウトをもたらした。HCmel12細胞に、マウスPmel遺伝子のエクソン1における、pmel-1 T細胞エピトープをコードするゲノム領域の上流をターゲティングする、二本鎖DNAオリゴヌクレオチドをコードするpx330-U6-Chimeric_BB-CBh-hSPCas9(Addgene型番:42230)プラスミドをトランスフェクトした。Pmelノックアウト単一細胞クローンのゲノム異常を、次世代シーケンシングにより特徴づけ、ウェブツールであるOutKnocker(Schmid-Burgkら、2014、Genome Res、24、1719~1723)を使用して解析した。プラスミドである、px330-U6-Chimeric_BB-CBh-hSPCas9を、標的セレクターとして使用した。所望の標的遺伝子のC末端をターゲティングする、二本鎖DNAオリゴヌクレオチドを、BbsIで消化されたpx330へとクローニングして、機能的sgRNAを作出した。フレームセレクターである、pCAS9-mCherry-Frame +0、pCAS9-mCherry-Frame +1及びpCAS9-mCherry-Frame +2は、Veit Hornung氏(LMU、Munich、Germmany;Addgene型番:66939、66940、及び66941)から恵与された。ユニバーサルのドナープラスミドを、既に記載されている通りに(Schmid-Burgkら、2016、Nat Commun、7、12338)、pCRISPaint-mNeon-PuroRプラスミドに基づきクローニングした。ユニバーサルのドナーである、pCRISPaint-mNeon-PuroRは、Veit Hornung氏(LMU、Munich、Germmany)から恵与された。分子クローニング法を使用した、pCRISPaint-mNeon-PuroRプラスミドを、(1)ピューロマイシン耐性カセットの、ブラストサイジン耐性カセットによる交換、(2)ゲノムへのランダムの組込みからの転写を防止するための、耐性カセットのメチオニン開始コドン(ATG)の、グリシン(GGG)による交換、(3)mNeon蛍光タンパク質の、mScarlet蛍光タンパク質による交換、及び(4)FLAGタグ及びヒトgp100エピトープ(アミノ酸25-33)の、蛍光タンパク質(C末端)への付加によりさらに改変した。エピトープのCRISPR支援型挿入により、Pmel遺伝子のC末端をターゲティングすることにより、CRISPitopeにより操作されたHCmel12黒色腫細胞を作出した。CRISPitopeプラスミドによるトランスフェクションのために、HCmel12-gp100ノックアウト細胞50,000~100,000個を、96ウェルプレートに播種し、製造元の指示書に従い、0.6μlのFu遺伝子トランスフェクション試薬(Promega)を使用して、Opti-MEM I(Life Technologies)により、200ngのDNA(50ngの標的セレクター、50ngのフレームセレクター、及び100ngのユニバーサルドナー)をトランスフェクトした。選択の後、FACS Aria III High-speed Cell Sorter(BD)を使用して、CRISPitope操作細胞株を、mScarletの発現について分取し、その後、個々の細胞株のポリクローナル培養物を確立した。
[00212]同系C57BL/6マウスのコホートに、100~200μlのPBSにおける、B16F10黒色腫細胞1×105個、MC38結腸腺癌細胞1×105若しくは1×106個、HCmel12hgp100細胞2×105個、又はMC38OVAdim細胞、MC38OVAbright細胞、又はMCA1956線維肉腫細胞1×106個を、マウスの脇腹後部へと皮下(s.c.)注入した。腫瘍サイズは、指し示される通りに測定し、電子キャリパーを使用して、2つの直交する測定値の平均値としてミリメートル単位で記録した。腫瘍の面積は、式:A=長さ×幅を使用して、mm2単位で計算した。そうでないことが言明されない限りにおいて、150mm2を超える腫瘍を伴うマウスは屠殺した。実験は、4匹又はこれを超えるマウスの群において実施した。
[00213]3-メチルコラントレン(MCA;Sigma)による、発癌物質誘導線維肉腫のために、表示の遺伝子型の雄マウスに、100μL滅菌トウモロコシ油における、5μg又は25μgのMCAを皮下注入し、線維肉腫の発生についてモニタリングした。
[00214]一次転移のために、B16F10黒色腫(細胞1×105個)、LWT1黒色腫(細胞5×105個)、又はRM-1前立腺癌(細胞1×104個)を、静脈内注入した。転移量は、既に記載されている通り(Blakeら、2016、Cancer Discov、6、446~459)、14日後に、肺において、肺表面のコロニーをカウントすることにより定量した。
[00215]移植用のVk*MYC骨髄腫細胞株である、Vk12598を、既に記載されている通りに(Nakamuraら、2018、Cancer Cell、33、634~648 e635)、維持及び拡大した。Vk12598 MM細胞(5×105個)を、表示の遺伝子型のマウスの尾静脈へと、i.v.注入した。生存は、施設の倫理ガイドラインに従い、毎日モニタリングし、マウスは、麻痺及び運動低減の徴候を発症したら、安楽死させた。
[00216]MC38-OVAdim腫瘍について、腫瘍細胞のs.c.注入後10、14、18、及び22日目に、100μlのPBSにおける、250μgのラット抗マウスPD-1 IgG2a(クローンRMP1-14;BioXcell)、又はラット対照IgG2a mAb(クローン1-1;Leinco)のi.p.注射により、PD-1の治療的遮断を実施した。B16F10について、腫瘍細胞のs.c.注入後6、9、12、及び15日目に、100μlのPBSにおける、250μgのラット抗マウスPD-1 IgG2a(クローンRMP1-14;BioXcell)、及び250μgのハムスター抗マウスCTLA-4 IgG2a(クローンUC10-4F10-11;BioXcell)、又はラット対照IgG2a mAb(クローン1-1;Leinco)、及び対照ハムスターIgG(BioXcell)のそれぞれのi.p.注射を使用して、PD-1及びCTLA-4の治療的遮断を実施した。
[00217]ACT免疫療法を、わずかな改変を伴うが、既に記載されている通りに(Gloddeら、2017、Immunity、47、789~802)実施した。略述すると、移植されたB16F10黒色腫が、直径>5mmのサイズに達したら、抗CD137抗体(3日ごと、100mlのPBSにおける、100μgのi.p.ラット抗マウスCD137;クローン3H3;BioXcell)で、2週間にわたり処理された、Pmel-1 TCRトランスジェニックマウスの脾臓から単離されたgp100特異的CD90.1+CD8+DNAM-1+Pmel-1 T細胞、又はDNAM-1-Pmel-1 T細胞0.5×106個(200μlのPBSにおける)の静脈内送達の1日前に、100μlのPBSにおける、2mg(100mg/kg)のシクロホスファミドの、単回i.p.注射により、マウスを、ACTのために条件付けした。100μlのPBSにおける、5×108PFUの組換えアデノウイルスベクターである、Ad-gp100の、in vivo単回i.p.注射により、養子移入されたT細胞を活性化させた。100μlの生理食塩液における、50μgのCpG 1826(MWG Biotech)、及び50μgのポリイノシン酸:ポリシチジン酸(ポリ(I:C)、Invivogen)を、養子Pmel-1 T細胞移入の3、6、及び9日後において、腫瘍周囲に注入した。
[00218]標準的プロトコールを使用して、腫瘍及び末梢リンパ系組織を処理した。略述すると、腫瘍又はリンパ系臓器を、マウスから摘出し、製造元の指示書に従い、GentleMACS Homogenizer(Miltenyi)を使用して、これを解離させるのに続き、37℃で、「完全RPMI培地」における、1mg/mlのコラゲナーゼD(Sigma)、及び1mg/mlのDNアーゼI(Roche)を伴うインキュベーションを行った。30~45分後、組織を、70μmの細胞ストレーナー(Greiner)に通し、さらに解析した。
[00219]マウスを屠殺し、臓器を摘出し、既に記載されている通りに(Gaoら、Gloddeら)、フローサイトメトリーのために調製した。多様な臓器に由来する、単一細胞懸濁液を、氷上のFc遮断緩衝液(2%のFBS及び抗CD16/32(クローン2.4G2;ATCCから得られるハイブリドーマ)を含有するPBS)において、15分間にわたりインキュベートした。以下のエピトープをターゲティングする、試薬又は抗体は、BioLegendから購入した:CD3(145-2C11)、CD8(53-6.7)、CD90.1(OX-7)、CD44(IM7)、Vb13(MR12-3)、CD62L(MEL-14)、DNAM-1(10E5)、IFN-γ(XMG1.2)、TIGIT(1G9)、TCRβ(H57-597)、TNF(MP6-XT220)、Zombie Yellow、又はAqua Fixable Viabilityキット。以下のエピトープをターゲティングする、試薬又は抗体は、eBioscienceから購入した:CD45.2(104)及びTCRβ(H57-597)。以下のエピトープをターゲティングする、試薬又は抗体は、BD Biosciencesから購入した:PD-1(J43)及びKi67(B56)。OVA四量体(SIINFEKL)は、DMI/PDI/University of MelbourneのAndrew Brooks教授から購入した。四量体化のために、単量体:SA-APC比が、1:1.7に達するまで、10~15分間ごと、6回にわたり、ストレプトアビジン-APC(Biolegened)を添加した。アセンブルされた四量体は、1週間以内に使用した。氷上で、30分間にわたり、四量体染色を実施した。細胞数は、BD Liquid Counting Beads(BD Biosciences)を使用することにより計算した。細胞内サイトカイン検出のために、リンパ球エンリッチ腫瘍ホモジネートを、37℃で、4時間にわたり、10%のFCS、Cell Stimulation Cocktail+タンパク質輸送阻害剤(刺激細胞)(eBioscience)、又はGolgiStop及びGolgiPlug(非刺激対照細胞)(いずれも、BD Biosciences製)を補充されたRPMI-1640においてインキュベートした。細胞表面染色の後、Intracellular Fixation & Permeabilization Buffer Set(eBioscience)を使用して、試料を、固定及び透過化し、1倍濃度の透過化緩衝液において、抗体で染色した。核内染色のために、単一細胞懸濁液を、前述の通り、細胞表面抗原に対する抗体で染色し、FoxP3 Fix/Perm Bufferキット(Biolegened)を使用して、固定及び透過化するのに続き、核内染色を行った。細胞は、BD LSR Fortessa Flow Cytometer(BD Biosciences)、CytoFLEX(Beckman Coulter)、又はCytek Aurora(3レーザー型)Flow Cytometer(Cytek)において捕捉した。FlowJo V10ソフトウェア(FlowJo、LLC)を使用して、解析を実行した。表示の数に適切なダウンサンプリングの後、FlowJo V10.2において、連結試料についてのtSNE解析を実施し、Rベースの「tSNEプロット」スクリプトを、視覚化のために使用した。
[00220]DNAM-1+pmel-1T細胞、又はDNAM-1-pmel-1T細胞を、抗CD137処理(3日ごと、100μgのi.p)の2週間後に、pmel-1 TCRトランスジェニックマウスの脾臓から単離し、CD8、CD90.1、及びDNAM-1に対する抗体で染色し、BD FACSAria II Cell Sorter(BD Biosciences)を使用して精製した。
[00221]マウスT細胞を活性化させるために、脾臓細胞、又は、適応の場合、MACS分離CD8+T細胞を、抗CD3(クローン145-2C11;Biolegened;ウェル1つ当たり50~100~250ngである、1~2~5μg/ml)+可溶性抗CD28(クローン37.51;Biolegened;1~2μg/ml)をプレートに結合させた、平底96ウェルプレートにおいて、1ml当たりの細胞0.5~2×106個で活性化させた。一部の実験では、プレートに結合させたCD155-Fc(Sino Biological)、又は関連性がないヒトIgG1(BioXCell)を、ウェル1つ当たり0.3μgで存在させた。プレートへの、抗体/タンパク質の結合は、PBSにおいて、4度で、一晩にわたり実施し、ウェルは、実験の直前に、PBSで洗浄した。
[00222]製造元のプロトコールに従い、MACS技術(Miltenyi)を使用して、表示の遺伝子型のCD8+T細胞を、脾臓の単一細胞懸濁液から単離した。単離の後、細胞を、1ml当たりの細胞1~2×106個の濃度で、20IU/mlのヒトIL-2(Novartis)を補充した「完全RPMI培地」における、可溶性抗CD3(クローン145-2C11;Biolegened;1μg/ml)抗体、及び可溶性抗CD28(クローン37.51;Biolegened;1μg/ml)抗体により、48時間にわたり刺激した。次いで、細胞を、hIgG1(IgG;BioXcell;ウェル1つ当たり0.3μg)、又はヒトIgG1のカルボキシ末端のFc領域へと融合した組換えmCD155(CD155-Fc;Sino Biological;ウェル1つ当たり0.3μg)により、4℃で、一晩にわたりコーティングされた平底96ウェルプレートに播種した。5%のCO2、37℃で、1時間にわたるインキュベーションの後、細胞を採取し、CD8+(BV421;クローン53-6.7;Biolegened)、及びCD226(AF647;クローン10E5;Biolegened)について表面染色するのに続き、CD226(PE;クローン480.1;Biolegened)の、固定、透過化、及び細胞内染色を行った。次いで、速やかに、細胞を、4レーザー、12チャネル式のAmnis ImageStreamX MkII(Amnis、EMD Millipore、Seattle、WA、USA)において、拡大率を60倍として、低速度で捕捉した。IDEASソフトウェア(Amnis)を使用して、データ解析を実施した。解析のためのゲーティング戦略は、「エネルギー勾配の二乗平均平方根」に基づき、焦点の合った細胞の選択を伴う。「アスペクト比」が高値であり、「面積」が低値である細胞は、シングレットである可能性が高いので、これらを選択し、CD8+(BV421)細胞に対してサブゲートをかけた。最後に、品質が良好であり、焦点が合い、中心化された細胞を選択し、群1つ当たりの細胞少なくとも100個について解析した。
[00223]シナプス形成アッセイを、わずかな改変を伴うが、既に記載されている通りに(Markeyら、2015、J Immunol Methods、423、40~44)実施した。骨髄由来樹状細胞は、表示の遺伝子型を有する、屠殺されたマウスの後肢に由来する長骨を洗い出すことにより調製した。細胞を、1ng/mlのマウスGM-CSFを補充した「完全RPMI培地」において、1ml当たりの細胞1~3×106個で播種した。3~4日後、非接着細胞を回収し、さらに培養した。実験は、in vitroにおける分化の少なくとも7日後に実施した。アッセイの前日に、BMDCを採取し、製造元の指示書に従い、Cell Trace Violet(CTV;Life Technologies)で、一晩にわたり標識し、1μg/mlのH2-Db結合性ペプチドである、hgp10025-33ペプチド(KVPRNQDWL;Mimotopes)で、ペプチドローディングした。同じ日に、製造元の指示書に従い、MACS技術(Miltenyi)を使用して、表示の遺伝子型を有するCD8+T細胞を、脾臓の単一細胞懸濁液から単離し、10~20UのhIL-2(Novartis)において、1ml当たりの細胞1×106個で播種した。翌日、T細胞を採取し、製造元のプロトコールに従い、CFSE(Biolegened)で標識化した。次いで、BMDCと、T細胞とを、T:DC比を、1:2として、5%のCO2、37℃で、1時間にわたり共培養した。インキュベーション時間の終了時に、細胞を、室温で、3倍容量の1.5%パラホルムアルデヒドにより固定するのに続き、2%(v/v)FCS(Cell Sera)を含むPBS中において抗D16/CD32(クローン2.4G2;自社製)の存在下でLFA-1(PE-Cy7;クローンH155-78;Biolegened)の表面染色を行った。表面染色の後、細胞を洗浄し、0.1%のTriton-X(Sigma)100μLを使用して透過化した。3μLのファロイジン(AlexaFluor 647;Life Technologies)を、各試料へと添加し、細胞を、室温で、30分間にわたりインキュベートした。全染色過程において、確立されたシナプス形成を維持するように、細胞は、極めて注意深く処理し、ボルテクシング、完全な再懸濁、又はEDTAを、意図的に回避した。染色時間の終了時に、細胞を洗浄し、速やかに、4レーザー、12チャネル式のAmnis ImageStreamXMkII(Amnis)において、拡大率を60倍として、低速度で捕捉した。IDEASソフトウェア(Amnis)を使用して、データ解析を実施した。解析のためのゲーティング戦略は、「エネルギー勾配の二乗平均平方根」に基づき、焦点の合った細胞の選択を伴う。「アスペクト比」が中間値であり、「面積」が中間値である細胞は、ダブレットである可能性が高いので、これらを選択した。本発明者らは、二重陽性CTV+及びCFSE+「イベント」にサブゲートをかけた。最後に、品質が良好であり、焦点が合い、中心化された細胞を選択し、群1つ当たりのシナプス少なくとも40個について解析した。次いで、インターフェースマスクを適用し、T細胞を、目的の標的として規定した。インターフェースマスク内の、LFA-1及びファロイジンの蛍光強度を、免疫学的シナプスの強度(strength及びintensity)についてのサロゲートマーカーとして用いる。統計学的有意性は、ノンパラメトリックの一元ANOVAを使用して決定した。
[00224]全長マウスCD226 cDNA配列を合成し、MSCV-IRES-GFPプラスミド(QIMR Berghofer、Brisbane、Australiaの、Steven Lane准教授の恵与による;Addgene型番:20672)へと、個別にクローニングした(BioMatik)。レトロウイルスの作出のために、HEK293T細胞を、10cmのディッシュに、ディッシュ1枚当たりの細胞4×106個の濃度で、一晩にわたり播種した。翌日、パッケージングプラスミドであるpCL-Eco(QIMR Berghofer、Brisbane、Australiaの、Steven Lane准教授の恵与による)、及びMSCV-IRES-GFP-Mock又はMSCV-IRES-GFP-CD226 WT-full-lengthをコードするプラスミドを、製造元のプロトコールに従い、Fu遺伝子6(Promega)と、Fu遺伝子:DNA比を3:1として混合し、HEK293T細胞へと、一晩にわたり適用した。次いで、培地を置きかえ、48時間後に、ウイルス上清を、2回にわたり回収した。ウイルスを濃縮するために、レトロウイルス上清を、17,000gで、2~6時間にわたりスピニングし、速やかに、-80℃で保管した。形質導入のために、CD8+T細胞を、5μg/mlのレトロネクチン(タカラバイオ株式会社)と、ウイルス上清とのvol/vol比を、1:1として、一晩にわたりコーティングされた6ウェルプレートに、ウェル1つ当たり1~3×106個で播種し、4μg/mlのポリブレン(Sigma)を添加した。スピンフェクションを、30℃、加速又は減速を伴わない2000gで、2時間にわたり実施した。2~4時間後に、培地を置きかえた。一部の実験では、24時間後に、スピンフェクションを反復した。細胞を、100IU/mlのヒトIL-2(Novartis)及び2ng/mlのマウスIL-7(Biolegened)において維持し、実験及びACTにおいて使用されるまで、純度について点検した。
[00225]腫瘍の単一細胞懸濁液を、等容量の「完全RPMI培地」に再懸濁し、5%のCO2、37℃で、4~5時間にわたり、インキュベートするのに続き、上清を回収した。上清は、製造元のプロトコールを使用する、サイトカインビーズアレイ(BD)を使用する解析まで、-80℃で保管した。
[00226]PBMCを融解させ、培養の前に、DNアーゼI(Roche)で処理して、死細胞を除去した。1×105個のPBMCを、U字底96ウェルプレートに、200mlの容量の、RPMI-1640(Gibco)+10%のFCS(Cell Sera)において培養した。T細胞の活性化は、CD3/CD28刺激ビーズ2×105個(Thermo Fisher Scientific)を添加することにより達成した。培養物は、5%のC02、37℃でインキュベートした。培養時間が終了したら、細胞を、表面マーカーについて染色し、フローサイトメトリーにより解析した。
[00227]Ficollにより処理され、RosetteSep(Stemcell)を使用して、ヒト健常血液からエンリッチされたCD3+T細胞を、ウェル1つ当たりの細胞1×105個で、U字底96ウェルプレートへと播種した。OKT3単一発現CHO細胞、又はOKT3/CD155二重発現CHO細胞5×104個を使用して、in vitroにおいて、CD155を、ヒトT細胞へと提示した。共培養されたT細胞を採取し、各時点に、PBSにおいて2%のPFAを使用して固定した。CD8+T細胞を、あらかじめ活性化させるために、調製されたT細胞を、25μl/mlの抗CD3/抗CD28四量体抗体(Stemcell)及び80IU/mlのヒトIL-2(PeproTech)を補充した「完全RPMI培地」において、7~10日間にわたり培養した。CD155を遮断するために、滴定された抗ヒトCD155抗体(クローンSKII.4、Biolegened)を、ヒトT細胞との共培養の前に、CHO細胞と共に、表示の投与量で、30分間にわたりプレインキュベートした。
[00228]ヒトの参加者を伴う、全ての手順は、QIMR Berghofer Medical Research Institute Human Research Ethics Committee(HREC)(EC00278)、及びRoyal Brisbane and Women’s Hospital HREC(EC00172)の両方による承認を受け、本研究は、ヘルシンキ宣言に準拠した。全ての組織試料及び血液試料は、参加する病院/研究機関のHuman Research Ethics Committeeによる手順及びガイドラインに従い、説明同意文書を得た後で回収した。
[00229]HNSCC検体は、Metro North HHS、Royal Brisbane and Women’s Hospital、Brisbane、Australiaから恵与された。いずれも、製造元のプロトコールに従い、組織解離プラットフォーム(GentleMACS、Miltenyi)を含む、市販のTumor Dissociationキット(Miltenyi)を使用して、新鮮な試料を処理した。Ficoll密度勾配遠心分離により、末梢血単核細胞(PBMC)を、腫瘍切出し時に患者から採取された血液試料から単離した。次いで、PBMC及び腫瘍の単一細胞懸濁液を、さらなる使用まで低温保存した。低温保存試料を融解させ、10μg/mlのDNアーゼI(Sigma)を含有するRPMI 1640においてインキュベートし、37℃で、1時間にわたりインキュベートして、凝集及び破砕物を消失させた。使用したT細胞刺激剤は、RPMI 1640(Gibco)+10%のFCS(Cell Sera)において、ウェル1つ当たりの細胞およそ2×105個の、5μlの抗CD3/抗CD28マイクロビーズ(Dynabeads、ThermoFisher Scientific)であり、フローサイトメトリーのための染色の前に、5%のCO2、37℃で、4時間にわたり培養した。
[00230]X線撮影により、病期IV(AJCC)の非リンパ系黒色腫が確認された、処置前患者に由来する、ホルマリンで固定され、パラフィンに包埋(FFPE)された、アーカイブ組織検体を、Melanoma Institute Australia(MIA)から、腫瘍のコア及び腫瘍の縁辺部に由来する組織マイクロアレイとして得た。患者についての人口学的解析、及び免疫療法による介入を、表2に列挙する。全ての患者は、2015年1月~2018年5月の間に、PD1ベースの免疫療法を施され、施設の規則に従い、試料の使用についての説明同意文書を提出した。免疫療法で処置される、全ての患者からの病理学報告を精査した。解析に十分なFFPEアーカイブ組織及び臨床注釈が存在する場合は、症例を、組入れのために選択した。
[00231]TMAを、スーパーフロストプラススライドガラスにおいて、3μmで切片化し、IHCを実施するまで、真空下で保管した。スライドを、65℃で、20分間にわたり脱水し、キシレンにおいて脱パラフィン化し、エタノール系列において再水和させた。抗原賦活化を、Decloaking Chamber(Biocare Medical)のEDTA緩衝液(pH9)において、100℃で、20分間にわたり実施した。IHCを、Autostainer-Plus(DAKO)において実施した。1:100希釈液を使用して、CD155(D3G7H;CST)に対する抗ヒト一次ウサギ抗体を、室温で、45分間にわたりインキュベートし、製造元の指示書に従い、MACH3 Rabbit HRPポリマー検出システム(Biocare)、及びDAB Chromogenキット(Biocare)を使用して視覚化した。スライドを、希釈されたヘマトキシリンで対比染色した。次いで、CD155を、膜陽性腫瘍細胞の百分率として査定し、免疫組織化学シグナルの最大強度を記録した。Hスコア法を使用して、CD155の発現を割り当て、以下:低(0~99)、又は高(200~300)の通りに類別した。
[00232]上記で言及したTMA及び多重スペクトル蛍光イメージングを使用して、本発明者らは、黒色腫試料のCD8+T細胞における、CD226の発現を定量した。SOX10を使用して、黒色腫細胞を同定し、DAPIを、核染色として使用した。検体を、4μmで、スーパーフロストプラス顕微鏡スライドへと切片化し、mIHFを実施するまで、真空下で保管した。Antigen Decloakerを使用して、EDTA標的賦活化緩衝液(DAKO)による熱誘導抗原賦活化を、100℃で、20分間にわたり実施し、Tween 20を伴うトリス緩衝生理食塩液溶液(TBS-T)(pH7.6)において洗浄した。染色は、自動式組織染色機(DAKO)において行った。既に結合させた抗体/HRP複合体を除去するのに、逐次的な染色ラウンドの間で、EDTA緩衝液を使用し、100℃で20分間にわたる加熱を伴い、製造元の指示書に従い、OPALマルチプレックスTSA検出システム(PerkinElmer)を使用して、一次抗体を視覚化した。一次抗体を、Van Gogh Yellow Diluent(Biocare)において希釈し、30分間にわたり、インキュベートするのに続き、2ステップのポリマー-HRP検出システム(Biocare)にかけ、次いで、TSAベースのフルオロフォア(Opal Reagent Pack;PerkinElmer)で標識付けした。以下の一次抗体/クローン:CD8/144b(1:1000;Opal570)、CD226/102(1:500;Opal520)、及びSOX10/BC34(1:500;Opal690)を、括弧内に列挙された、抗体希釈液及びOpalフルオロフォアと共に、列挙された順序で、逐次的に使用した。
[00233]Vectraイメージングシステム(PerkinElmer)を使用して、蛍光染色スライドを走査した。混合蛍光に続き、20×の多重スペクトルイメージングを使用して、全スライドスキャニングを、4倍の拡大率で行った。画像を、スペクトル分割するのに続き、Inform解析ソフトウェア(PerkinElmer;v2.2.1)を使用して、組織及び細胞のセグメント化を行った。融合されたデータファイルを加工し、Spotfire画像マッピングツール(Tibco Spotfire Analyst;v7.6.1)を使用して、蛍光閾値を設定するのに続き、Spotfireを使用して、セグメント化された細胞をカウントした。「低CD226+CD8+/CD8+」と対比した「高CD226+CD8+/CD8+」又は「低CD8+」と対比した「高CD8+」への、患者の層別化は、「Cutoff Finder」ツール(Budcziesら、2012、PLoS ONE、7、e51862)を使用して決定した。
[00234]健常ドナーから単離されたPBMCを、ウェル1つ当たりの細胞0.5×106個で、48ウェルプレートへと播種した。細胞を、アイソタイプ対照(MOPC-21マウスIgG1;BioLegend;1μg/ml)、又は抗CD226(クローンDX11;BioLegend;1μg/ml)の存在下で、最適未満濃度の抗CD3(クローンOKT3;BioLegend、200pg/ml)を伴うか、又は伴わずに、48時間にわたり刺激した。刺激された細胞を採取し、350μLのRLT溶解緩衝液(Qiagen)に再懸濁した。溶解させた細胞は、速やかに凍結させ、Nanostring解析のために、Core Diagnostics(Hayward、California)へと送付した。
[00235]TGCAがんコホートの遺伝子発現データ(RNA-seq)にアクセスし、Rベースのパッケージである、CGDS-R及びTCGAbiolinksを使用する、cBioportal for Cancer Genomics(http://www.cbioportal.org)を介して解析した。TCGAデータ(https://cancergenome.nih.gov/)の使用についてのガイドラインに従った。本発明者らは、RPKM正規化リードカウントとして、目的の遺伝子についての個々の遺伝子発現値を読み出した。
[00236]移動平均解析を、既に公表されている(Gloddeら、2017、Immunity、47、789~802 e789;Riesenbergら、2015、Nat Commun、6、8755)通りに実施した。1未満のRPKM値は、log2変換時において、負の発現値を回避するために、1とした。平均化されたCD226の発現値が増加するように、試料を順序づけた。n=20の試料ウィンドウサイズを使用して、腫瘍組織における、CD8B、NCAM、IFNG、PVR、GZMB、及びNECTIN2の遺伝子発現の移動平均を計算し、それぞれの有色の傾向線を、棒グラフに付加した。ノンパラメトリックのスピアマンランク相関の有意性は、元のlog2発現値を使用する、漸近的スピアマン相関検定により決定した。
[00237]統計学的解析は、Graph Pad Prism 7及び8(GraphPad Software)により決定した。そうでないことが言明されない限り、2つの群の比較には、スチューデントのt検定を使用し、多重群の比較には、多重比較のための事後チューキー検定を伴う、一元ANOVAを使用した。in vivo実験の有意性は、カプラン-マイヤー生存解析のためのログランク(マンテル-コックス)検定、又は多重比較のための事後チューキー検定を伴う、二元ANOVAにより計算した。フィッシャーの正確検定を使用して、無腫瘍マウスの比率の有意性を決定した。群間差は、平均値±SDとして示す。0.05未満のP値を、統計学的に有意であると考えた。p<0.05=*;p<0.01=**;p<0.001=***;p<0.0001=****である。
DNAM-1欠損マウスにおけるCD8 T細胞媒介性応答
[00238]他の大半の活性化受容体と対照的に、DNAM-1(又はCD226)は、マウスのナイーブ(TN)CD8+ T細胞及びセントラルメモリー(TCM)CD8+ T細胞において、均一に発現されるが、ごく小比率のエフェクターメモリー(TEM)CD8+ T細胞は、DNAM-1陰性であることが見出された(データは示さない)。しかし、脾臓CD8+ T細胞のT細胞受容体(TCR)が刺激されると、CD226は、一様に上方調節される(データは示さない)。
腫瘍微小環境における、DNAM-1-T細胞機能の評価
[00241]腫瘍微小環境における、CD226-(すなわち、DNAM-)T細胞の機能について、さらに評価するために、MC38-OVAhiC57BL/6J(WT)マウスにおける、CD226陽性(CD226+)CD8+ T細胞、及びCD226陰性(CD226-)CD8+ T細胞について検討した。WTマウスの、CD8+ T細胞浸潤MC38-OVAhi腫瘍における、CD226発現についてのフローサイトメトリー解析は、CD226-CD8+ T細胞が、腫瘍において蓄積されることを指し示した(データは示さない)。しかし、この集団内では、IFN-γ産生細胞の頻度は、CD2261+CD8+ T細胞と比較して、有意に低度であった(データは示さない)。さらに、CD226-CD8+ T細胞の中の、Ki67+細胞の頻度もまた、CD226+CD8+ T細胞と比較して低度であったことは、集団としてのCD226-CD8+ T細胞が、CD226+CD8+ T細胞より増殖性ではなかったことを指し示す。これらのデータは、機能不全性CD226-CD8+ T細胞が、腫瘍微小環境に蓄積されることを指し示す。
チロシン319の、T細胞機能に対する重要性についての評価
[00243]実施例2及び3において裏付けられた通り、DNAM-1は、抗腫瘍免疫のT細胞において、極めて重要な受容体である。しかし、どの機構により、DNAM-1が、細胞傷害性応答を容易とするのかは、明らかでなかった。マウスDNAM-1におけるチロシン319(ヒトDNAM-1におけるチロシン322に対応する)は、in vitro及びin vivoにおけるNK細胞機能に、絶対的に要求される。T細胞におけるこの残基の重要性について探索するために、Y319F変異を含むDNAM-1(すなわち、CD226)を発現するDNAM-1KIマウス(また、CD266Yマウスとも称される)を使用した。
腫瘍細胞における、CD155の、DNAM-1との相互作用
[00250]ナイーブCD155欠損マウスから単離された免疫細胞は、DNAM-1(すなわち、CD226)の発現を、わずかに上昇させた。CD226negT細胞の頻度と、腫瘍重量との間で、著明な相関(図6A、B)が観察され、いずれの腫瘍モデルも高レベルのCD155を発現していた(Liら、2018、J Clin Invest、128、2613~2625)ので、CD226表面発現の喪失は、腫瘍細胞由来CD155により媒介されうることが仮定された。CD155-Fcは、in vitroの非刺激T細胞では、CD226の発現を、わずかに低減したのに対し、CD226の、TCR誘導性上方調節は、完全に防止した(図6C)。ImageStreamシステムを使用して、CD155-Fc又は対照IgGの存在下における、活性化前T細胞の表面及び細胞内におけるCD226レベルを定量した(図6D)。略述すると、表面CD226を、AF647コンジュゲート抗体(クローン10E5)で染色するのに続き、PEコンジュゲート抗体(クローン480.1)によるCD226の細胞内染色を行った。クローン10E5は、480.1の結合を遮断するが、この逆は成り立たないことから、CD226の細胞内画分についての特異的評価を可能とすることは、注目に値する。実際、CD155の、CD226とのライゲーションは、細胞内CD226のMFIを、対照IgGと比較して、有意に増大させた(図6D)。これは、CD226-CD155間相互作用の後における、活性の内部化過程を示唆した。CD155が、in vivoにおけるCD226の下方調節を駆動するという知見を検証するために、本発明者らは、CD155発現B16F10黒色腫細胞(B16F10ctrl)、又はCD155欠損B16F10黒色腫細胞(B16F10CD155KO)を、WTマウス又はCD155欠損マウス(CD155KO)へと注入した(図6E)。この実験設定は、腫瘍浸潤CD8+T細胞におけるCD226表面発現の下方調節に対する、腫瘍細胞CD155の、宿主細胞CD155と対比した重要性についての精査を容易とした。興味深いことに、CD226negT細胞浸潤B16F10CD155KO黒色腫の頻度は、WTマウス及びCD155KOマウスのいずれにおいても、B16F10ctrl黒色腫と比較して、有意に低減された(図6E)。併せると、B16F10CD155KO黒色腫を保有する、WTマウス及びCD155KOマウスのいずれにおいても、著明に高頻度のCD226hiT細胞が観察された(データは示さない)。このデータは、TMEにおける、高レベルのCD155が、T細胞における、CD226の下方調節に寄与するという考えを裏書きする。
T細胞におけるDNAM-1発現の、養子細胞移入の効率に対する効果
[00252]養子細胞移入(ACT)免疫療法において使用されるT細胞における、CD226(すなわち、DNAM-1)発現の効果を、B16F10黒色腫を保有するマウスにおいて評価した。ACT免疫療法を、実施例1において記載した通りに実施した。略述すると、CD226+(DNAM-1+)黒色腫特異的CD8+ T細胞、及びDNAM-1-(CD226-)黒色腫特異的CD8+ T細胞を、pmel1-TCRtgマウスの脾臓から分取した。これらのT細胞は、黒色腫細胞系統の抗原であるgp100を認識し、黒色腫細胞を認識し、破壊することが可能である。シクロホスファミド、DNAM-1+pmel1 T細胞又はDNAM-1-pmel1 T細胞の、gp100に対するアデノウイルスワクチン(V)を伴う単回投与の後、3回にわたる、免疫刺激核酸(I;CpG+ポリI:C)の腫瘍内注射を行った。図5Aに示される通り、DNAM-1-T細胞が、B16F10黒色腫のコントロールにおいて、DNAM-1+T細胞と比較して、有意に効果的でなくなったことは、ACT免疫療法の有効性が、大部分、DNAM-1+ T細胞に依存することを指し示す。
免疫チェックポイント阻害剤療法における、DNAM-1の重要性
[00255]免疫チェックポイント阻害剤療法における、DNAM-1発現の重要性を、MC38結腸腺癌を保有するWTマウス及びCD226KO(DNAM-1KO)マウスにおいて評価した。略述すると、また、実施例1で記載した通りに、マウスに、腫瘍接種後10、12、14、及び16日目において、対照Ig(cIg)、又は抗PD1(RMP1-14)mAbが投与される前に、MC38結腸腺癌細胞を、s.c.注入した。WTマウスの群には、cIg又は抗CD226 mAbを、9、10、14、17、20、及び24日目に施した。図8Aに示される通り、抗PD1抗体の有効性は、CD226KOマウス、及び抗DNAM-1抗体を施されたWTマウスでは、抗PD1抗体を単独で施されたWTマウスと比較して、有意に減少していた。
TILにおける、DNAM-1発現の、エフェクター機能との相関
[00257]前臨床マウスモデルを使用して、DNAM-1(すなわち、CD226)が、(a)腫瘍浸潤CD8+T細胞において下方調節され、(b)CD8+T細胞のエフェクター機能に重要であり、(c)抗腫瘍免疫及び免疫療法に要求されることを示した(上記を参照されたい)。次いで、研究を実施して、健常ドナーのPBMCから単離された、ヒトCD8+T細胞が、活性化されると、CD226の上方調節を提示したことを確認したことは、マウスから得られた結果と符合する(図9A)。マウスと対照的に、可変的ではあるが、有意な比率のCD226陰性T細胞(約20%)が、健常ボランティアの血液中で観察された。T細胞機能に対する、CD226の重要性を評価するために、CD226遮断抗体(クローンDX11)の存在下、又は非存在下で活性化させたPBMについての、RNA発現解析を実施した。このアッセイでは、TCR刺激時における、IFNG及びGZMBの発現は、大部分、CD226に依存した(図9B)。次に、頭頸部扁平上皮がん(HNSCC)患者に由来する腫瘍組織試料から単離されたCD8+T細胞におけるCD226発現を評価した。マウスと同様に、ヒト腫瘍浸潤CD8+T細胞は、CD226の、可変的な表面発現を示した(図9C)。ex vivoにおいて刺激されたCD8+ TILについてのフローサイトメトリー解析は、IFN-γ、TNF-α、Ki67、及びCD107aの染色の増大により証拠立てられる通り、CD226の表面発現と、エフェクター機能との、有意な相関を示した(図9D~9F)。重要なことは、CD226遺伝子発現が、TCGAデータベースによる、HNSCC(HNSC)コホート及び皮膚黒色腫(SKCM)コホートにおける生存の改善と、有意に関連した(図9G)ことである。これらのデータセットでは、CD226遺伝子発現とCD8B、IFNG、及びGZMBとの間では、有意な相関が観察されたが、古典的NK細胞マーカーである、NCAM1(CD56)との相関は、観察されなかった(データは示さない)。興味深いことに、CD226と、PVR(CD155)との間では、わずかながら、有意な逆相関が観察されたが、NECTIN2(CD112)遺伝子発現との逆相関もまた、観察されなかった(データは示さない)。
CD155への結合は、ヒトCD8+ T細胞における、DNAM-1の下方調節を媒介する
[00258]マウスでは、CD155は、CD8+T細胞における、DNAM-1(CD226)下方調節の、主要な駆動因子として同定された。ヒトCD8+T細胞における、CD226の表面発現に対する、CD155の影響を評価するために、OKT3及び高レベルのhCD155を、安定的に発現するCHO細胞を作出した(図10A)。活性化前ヒトCD8+T細胞を、CHO-OKT3細胞と共にインキュベートしたところ、CD226の表面発現の増大が観察されたのに対し、CHO-OKT3-CD155細胞との共培養において、CD226の表面発現は、実質的に低減された(図10B)。実のところ、時系列解析は、共培養開始後1時間以内に、CD8+T細胞の大部分は、CD226の表面発現を喪失したこと(図10C)を明らかにした。これらの知見を確認し、CD155の量が、CD226の下方調節に影響を及ぼすのかどうかについて評価するために、多様なレベルのCD155を発現するCHO-OKT3細胞を作出した。実際、共培養アッセイでは、CD155の用量に依存する、CD226の下方調節が観察された(図10D)。別の実験セットでは、漸増量のCD155遮断抗体を、共培養物へと添加し、in vitroのヒトCD8+T細胞の、CD226の下方調節における、CD155の特異的役割について検証した(図10E)。したがって、がん患者におけるCD8+ TILは、CD155が高レベルであるTMEにおいて、低レベルのCD226を発現することが仮定された。これについて検証するために、十分に注釈された黒色腫患者コホートに由来するFFPE試料34例を、CD155について染色した(図10F)。CD155についての免疫組織化学は、CD155の発現の非存在/低度のCD155発現レベルを示す患者の亜群(n=9)、又は高度のCD155発現レベルを示す患者の亜群(n=15)(データは示さない)を明らかにした。後続のマルチプレックス免疫組織蛍光(IHF)解析は、TMEにおける全CD8+T細胞のうちの、CD226+CD8+の比が、CD155の発現レベルと負に相関することを確認した(図10H)。まとめると、このデータは、腫瘍細胞におけるCD155が、腫瘍浸潤CD8+T細胞における、CD226表面発現の下方調節を媒介するという考えを裏書きした。
CD8+ TILにおける、CD226の表面発現は、黒色腫患者におけるICBの応答と相関する
[00259]CD226の表面発現の増大は、前臨床マウスモデルにおける、T細胞のエフェクター機能及びがん免疫療法の有効性を改善するので、次に、ヒト黒色腫患者における、ICBに対する応答が、CD226+CD8+ TILの存在に依存するのかどうかについて問うた。このために、マルチプレックスIHFを、十分に注釈された黒色腫患者コホートに由来する、ICB処置前のFFPE試料31例において使用して、全CD8+T細胞に対する、腫瘍浸潤CD226+CD8+T細胞の数を検出した(図11A)。実際、CD8+T細胞における、CD226+CD8+T細胞の比は、ICBに対する応答と、有意に関連し(図11B)、無進行生存を改善した(PFS、HR3.38;p=0.036)(図11B)。統計学的に有意ではないが、全生存についても、同様の傾向が観察された(データは示さない)。注目すべきことは、ICBに対する応答も、PFSも、OSも、高CD8+T細胞カウントと、有意に相関しなかったので、この患者の層別化が、全CD8+T細胞カウントによっては説明されなかったことである(図11C)。したがって、データは、CD226についての染色が、TME内の、高度に機能的なCD8+T細胞を同定し、ICBに対する応答の予測を改善することを示唆する。全体として、CD8+T細胞における、CD226の表面発現は、がん患者における、効果的な抗腫瘍免疫及びがん免疫療法と関連することが裏付けられた。したがって、CD226の、CD155誘導性下方調節は、腫瘍により、免疫系から逃避するのに使用されてる、新規の、過小評価されている耐性機構を表す。
T細胞におけるDNAM-1の表面発現における、CBL-Bの関与
[00260]ユビキチンリガーゼE3 Cbl-2が、DNAM-1のユビキチン化及び内部化に関与するのかどうかについて評価するために、野生型マウス、又はユビキチンリガーゼ機能の阻害を結果としてもたらす、CBL-B遺伝子における点変異を保有するマウス(Cbl-bKIマウス)の脾臓に由来するCD8+T細胞を、IL-2(50IU/mlのhIL-2)を含有するcRPMI培地における、CD3/CD28ビーズ、又はCD3/CD28/CD155-Fcビーズによる、16時間にわたる刺激の後における、DNAM-1(CD226)の表面発現について評価した。図12に示される通り、Cbl-bKIマウスは、CD155媒介性のCD226下方調節に対して、部分的に耐性である。
T細胞における、改変DNAM-1の過剰発現
[00261]野生型DNAM-1及び改変DNAM-1をコードする、いくつかの核酸構築物を合成し、レトロウイルス発現ベクターである、pMSCV-IRES-GFP IIへとサブクローニングした(Holstら、2006、Nat Protoc.、1(1):406~17)。DNAM-1構築物を含有するレトロウイルスベクターを作製した後、in vitroにおいて、ベクターを、Pmel-1 T細胞へと形質導入し、GFP発現に基づき、細胞を精製した。T細胞の増殖及びサイトカインの産生を測定することにより、in vitroにおいて、各DNAM-1構築物の影響を評価する。個々のDNAM-1構築物の過剰発現の影響を評価するのに、レトロウイルスにより形質導入されたpmel-1 T細胞を、ACT免疫療法モデルにおいてもまた使用する。
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MAYVTWLLAILHVHKALCEETLWDTTVRLSETMTLECVYPLTHNLTQVEWTKNTGTKTVSIAVYNPNHNMHIESNYLHRVHFLNSTVGFRNMSLSFYNASEADIGIYSCLFHAFPNGPWEKKIKVVWSDSFEIAAPSDSYLSAEPGQDVTLTCQLPRTWPVQQVIWEKVQPHQVDILASCNLSQETRYTSKYLRQTRSNCSQGSMKSILIIPNAMAADSGLYRCRSEAITGKNKSFVIRLIITDGGTNKHFILPIVGGLVSLLLVILIIIIFILYNRKRRRQVRIPLKEPRDKQSKVATNCRSPTSPIQSTDDEKEDIYVNYPTFSRRPKPRL(配列番号3)
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atggcttatgttacttggcttttggctattcttcatgtgcacaaagcactgtgtgaagagacattgtgggacacaacagttcggctttctgatagttttgagatagcagcaccctcgataaggctgatcataactgatggtggaaccaataaacattttatccttcccatcgttggagggttagtttcactgttacttgtcatcctaattatcatcattttcattttatataacaggaagagacggagacaggtgagaattccacttaaagagcccagggataaacagagtaaggtagccaccaactgcagaagtcctacttctcccatccagtctacagatgatgaaaaagaggacatttatgtaaactatccaactttctctcgaagaccaaaaccaagactctaa(配列番号14)
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[0001]本出願は、参照によりそれらの全体において本明細書に組み込まれる、2019年2月27日に出願された、「免疫機能を増強するための細胞、組成物、及び方法」と題する、豪州仮出願第2019900621号の優先権を主張する。
Claims (73)
- 改変DNAM-1ポリペプチドを含むT細胞であって、
前記改変DNAM-1ポリペプチドが、野生型DNAM-1ポリペプチドと比較して細胞表面保持の増大を呈し、
ヒトT細胞である、
T細胞。 - 前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の322位に対応する位置において、チロシンの改変を含む、請求項1に記載のT細胞。
- 前記改変が、アミノ酸置換又はアミノ酸欠失である、請求項2に記載のT細胞。
- 前記改変が、前記チロシンの、フェニルアラニンによる置換である、請求項2又は請求項3に記載のT細胞。
- 前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の325~328位に対応する位置において、AP-2結合性モチーフであるYXXFの改変を含み、前記改変が、AP-2結合性モチーフであるYXXFを消失させるものである、請求項1~4のいずれか一項に記載のT細胞。
- 前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の325位に対応する位置において、チロシンのアミノ酸置換若しくはアミノ酸欠失を含む;
前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の328位に対応する位置において、フェニルアラニンのアミノ酸置換若しくはアミノ酸欠失を含む;
前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の325、326、若しくは327位に対応する位置のうちのいずれか1つの後におけるアミノ酸挿入を含む;並びに/又は
前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の326及び327位に対応する位置における残基のうちの1つ若しくは複数の欠失を含む、
請求項1~5のいずれか一項に記載のT細胞。 - 前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の282~287位に対応する位置において、AP-2結合性モチーフEXXXLFの改変を含み、前記改変が、前記AP-2結合性モチーフEXXXLFを消失させるものである、請求項1~6のいずれか一項に記載のT細胞。
- 前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の282位に対応する位置において、グルタミン酸のアミノ酸置換若しくはアミノ酸欠失を含む;
前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号の286位に対応する位置において、ロイシンのアミノ酸置換若しくはアミノ酸欠失を含む;
前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の287位に対応する位置において、フェニルアラニンのアミノ酸置換若しくはアミノ酸欠失を含む;
前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の282~286位に対応する位置における残基のうちのいずれか1つ若しくは複数の後におけるアミノ酸挿入を含む;並びに/又は
前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の283、284、及び285位に対応する位置における残基のうちの1つ若しくは複数の欠失を含む、
請求項1~7のいずれか一項に記載のT細胞。 - 前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の320~322位に対応する位置において、Cbl-B結合性モチーフの改変((D/N)XpY)を含み、前記改変が、前記Cbl-B結合性モチーフを消失させる、請求項1~8のいずれか一項に記載のT細胞。
- 前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の320位に対応する位置におけるアスパラギン酸のアミノ酸欠失又はアミノ酸置換を含む、請求項1~9のいずれか一項に記載のT細胞。
- 前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の320及び/又は321位に対応する位置の後におけるアミノ酸挿入を含む、請求項1~10のいずれか一項に記載のT細胞。
- 前記DNAM-1ポリペプチドが、295位に対応する位置におけるリシンのアミノ酸置換又はアミノ酸欠失を含む、請求項1~11のいずれか一項に記載のT細胞。
- 前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の333位に対応する位置におけるリシンのアミノ酸置換又はアミノ酸欠失を含む、請求項1~12のいずれか一項に記載のT細胞。
- 前記DNAM-1ポリペプチドが、細胞質ドメインの全部又は一部を欠く、請求項1に記載のT細胞。
- 前記DNAM-1ポリペプチドが、細胞外ドメインの全部又は一部を含む、請求項1~14のいずれか一項に記載のT細胞。
- 前記DNAM-1ポリペプチドが、IgG1ドメインを含む、請求項1~15のいずれか一項に記載のT細胞。
- 前記DNAM-1ポリペプチドが、IgG2ドメインを含む、請求項1~16のいずれか一項に記載のT細胞。
- 前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号5~9若しくは21~30のうちのいずれか1つに明示されたアミノ酸の配列、又はこれに対する、少なくとも90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、若しくは99%の配列同一性、又はおよそこれらの比率の配列同一性を有する配列を含み、野生型DNAM-1ポリペプチドと同じ配列を含まない、請求項1~17のいずれか一項に記載のT細胞。
- 前記T細胞が、CD8+T細胞である、請求項1~18のいずれか一項に記載のT細胞。
- 前記T細胞が、CD4+T細胞である、請求項1~19のいずれか一項に記載のT細胞。
- 前記T細胞が、αβ T細胞又はγδ T細胞である、請求項1~20のいずれか一項に記載のT細胞。
- 前記T細胞が、ヒト対象から単離された初代ヒトPBMCに由来する、請求項1~21のいずれか一項に記載のT細胞。
- 組換えTCR及び/又はキメラ抗原受容体(CAR)を含む、請求項1~22のいずれか一項に記載のT細胞。
- 前記CARが、TSHR、CD19、CD123、CD22、CD30、CD171、CS-1、CLL-1、CD33、EGFRvIII、GD2、GD3、BCMA、Tn Ag、PSMA、ROR1、FLT3、FAP、TAG72、CD38、CD44v6、CEA、EPCAM、B7H3、KIT、IL-13Ra2、メソテリン、IL-1Ra、PSCA、PRSS21、VEGFR2、Lewis Y、CD24、PDGFR-ベータ、SSEA-4、CD20、葉酸受容体アルファ、ERBB2(Her2/neu)、MUC1、EGFR、NCAM、プロスターゼ、PAP、ELF2M、エフリンB2、IGF-I受容体、CAIX、LMP2、gp100、bcr-abl、チロシナーゼ、EphA2、フコシルGM1、sLe、GM3、TGS5、HMWMAA、o-アセチル-GD2、葉酸受容体ベータ、TEM1/CD248、TEM7R、CLDN6、GPRC5D、CXORF61、CD97、CD179a、ALK、ポリシアル酸、PLAC1、GloboH、NY-BR-1、UPK2、HAVCR1、ADRB3、PANX3、GPR20、LY6K、OR51E2、TARP、WT1、NY-ESO-1、LAGE-la、MAGE-A1、レグマイン、HPVE6、E7、MAGEA1、ETV6-AML、精子タンパク質17、XAGE1、Tie 2、MAD-CT-1、MAD-CT-2、Fos関連抗原1、p53、p53変異体、プロステイン、スルビビン及びテロメラーゼ、PCTA-l/ガレクチン8、メランA/MART-1、Ras変異体、hTERT、肉腫転座切断点、ML-IAP、ERG(TMPRSS 2 ETS融合遺伝子)、NA17、PAX3、アンドロゲン受容体、サイクリンB1、MYCN、RhoC、TRP-2、CYP1B1、BORIS、SART3、PAX5、OY-TES1、LCK、AKAP-4、SSX2、RAGE-1、ヒトテロメラーゼ逆転写酵素、RU1、RU2、腸カルボキシルエステラーゼ、変異体hsp70-2、CD79a、CD79b、CD72、LAIR1、FCAR、LILRA2、CD300LF、CLEC12A、BST2、EMR2、LY75、GPC3、FCRL5、及びIGLL1の中から選択される腫瘍抗原に結合する、請求項23に記載のT細胞。
- 請求項1~24のいずれか一項に記載のT細胞と、薬学的に許容できる担体とを含む医薬組成物。
- 化学療法剤又は抗感染症剤をさらに含む、請求項25に記載の医薬組成物。
- 前記化学療法剤が、免疫チェックポイント阻害剤である、請求項26に記載の医薬組成物。
- 前記免疫チェックポイント阻害剤が、CTLA-4阻害剤、PD-1阻害剤、及びPD-L1阻害剤の中から選択される、請求項27に記載の医薬組成物。
- 前記抗感染症剤が、抗生剤、抗アメーバ剤、抗真菌剤、抗原虫剤、抗マラリア剤、抗結核剤、及び抗ウイルス剤の中から選択される、請求項26に記載の医薬組成物。
- 養子細胞療法のためのT細胞集団を調製する方法であって、
T細胞の試料を、対象から得るステップと;
DNAM+ T細胞を、前記試料から選択するステップと;
前記DNAM+ T細胞を拡大して、養子T細胞療法のためのT細胞集団を作製するステップと
を含む方法。 - DNAM+ CD8+ T細胞を選択するステップを含む、請求項36に記載の方法。
- DNAM+ CD4+ T細胞を選択するステップを含む、請求項36に記載の方法。
- 前記DNAM+T細胞を操作して、CAR又はトランスジェニックTCRを発現させるステップをさらに含む、請求項36~38のいずれか一項に記載の方法。
- 請求項30~33のいずれか一項に記載の方法により作製されるT細胞集団。
- 対象における免疫機能を増大させる方法であって、前記対象へと、請求項1~24のいずれか一項に記載のT細胞、請求項25~29のいずれか一項に記載の医薬組成物、又は請求項34に記載のT細胞集団を投与するステップを含む方法。
- 対象におけるがんを処置するための方法であって、前記対象へと、請求項1~24のいずれか一項に記載のT細胞、請求項25~29のいずれか一項に記載の医薬組成物、又は請求項34に記載のT細胞集団を投与するステップを含む方法。
- 化学療法剤を、前記対象へと投与するステップをさらに含む、請求項36に記載の方法。
- 前記化学療法剤が、免疫チェックポイント阻害剤である、請求項37に記載の方法。
- 前記免疫チェックポイント阻害剤が、CTLA-4阻害剤、PD-1阻害剤、及びPD-L1阻害剤の中から選択される、請求項38に記載の方法。
- 前記がんが、皮膚がん(例えば、黒色腫)、肺がん、乳がん、卵巣がん、胃がん、膀胱がん、膵がん、子宮内膜がん、結腸がん、腎がん、食道がん、前立腺がん、結腸直腸がん、神経膠芽腫、頭頸部がん、神経芽細胞腫、又は肝細胞癌である、請求項35~39のいずれか一項に記載の方法。
- 前記がんが、前記T細胞又は医薬組成物の投与の前に、1つ又は複数の免疫チェックポイント阻害剤に対して耐性である、請求項35~40のいずれか一項に記載の方法。
- 前記T細胞が、自家T細胞である、請求項35~41のいずれか一項に記載の方法。
- 前記T細胞が、同種T細胞である、請求項35~41のいずれか一項に記載の方法。
- 対象における感染症を処置するための方法であって、前記対象へと、請求項1~24のいずれか一項に記載のT細胞、請求項25~29のいずれか一項に記載の医薬組成物、又は請求項40に記載のT細胞集団を投与するステップを含む方法。
- 前記感染症が、ウイルス及び/又は細菌による感染症である、請求項44に記載の方法。
- 前記感染症が、急性感染症である、請求項44又は請求項45に記載の方法。
- 前記感染症が、慢性感染症である、請求項44又は請求項45に記載の方法。
- 抗感染症剤を、前記対象へと投与するステップをさらに含む、請求項44~47のいずれか一項に記載の方法。
- 前記抗感染症剤が、抗生剤、抗アメーバ剤、抗真菌剤、抗原虫剤、抗マラリア剤、抗結核剤、及び抗ウイルス剤の中から選択される、請求項48に記載の方法。
- 前記T細胞が、自家T細胞である、請求項44~49のいずれか一項に記載の方法。
- 前記T細胞が、同種T細胞である、請求項44~49のいずれか一項に記載の方法。
- 請求項1~24のいずれか一項に記載のT細胞、請求項25~29のいずれか一項に記載の医薬組成物、又は請求項34に記載のT細胞集団の、がんを処置するための医薬の調製のための使用。
- 請求項1~24のいずれか一項に記載のT細胞、請求項25~29のいずれか一項に記載の医薬組成物、又は請求項34に記載のT細胞集団の、感染症を処置するための医薬の調製のための使用。
- 請求項1~24のいずれか一項に記載のT細胞、請求項25~29のいずれか一項に記載の医薬組成物、又は請求項34に記載のT細胞集団の、対象における免疫機能を増強するための医薬の調製のための使用。
- 対象における、T細胞又はT細胞集団の免疫機能を評価するための方法であって、前記対象に由来する試料における、T細胞又はT細胞集団におけるT細胞の表面における、DNAM-1の量又はレベルを評価するステップと、前記対象に由来する前記試料における、前記T細胞又は前記T細胞集団におけるT細胞の表面における、DNAM-1の前記量又はレベルを、対照試料における、T細胞又はT細胞集団におけるT細胞の表面における、DNAM-1の量若しくはレベル、又は参照レベルと比較するステップとを含む方法。
- 試料における、T細胞集団におけるT細胞の表面における、DNAM-1の量又はレベルを評価するステップが、前記T細胞集団における、DNAM-1+ T細胞の数又は百分率を検出することを含む、請求項55に記載の方法。
- 前記対照試料が、免疫機能が正常であるか、又は効果的なT細胞を含み、前記対象に由来する前記試料における、T細胞又はT細胞集団におけるT細胞の表面における、DNAM-1の量又はレベルの、前記対照試料における、T細胞の表面における、DNAM-1の量又はレベルと比較した低減が、前記対象における、前記T細胞又はT細胞集団の免疫機能が、損なわれているか、又は効果的でないことを指し示す、請求項55又は56に記載の方法。
- 前記対象に由来する試料を得るステップであって、前記試料が、T細胞又はT細胞集団を含むステップと;
前記試料を、T細胞の表面におけるDNAM-1に結合する結合剤と接触させるステップと;
前記T細胞又は前記T細胞集団におけるT細胞に結合した場合の前記結合剤を検出し、これにより、前記T細胞の表面における、DNAM-1の量若しくはレベル、又は前記対象に由来する前記試料における、DNAM+ T細胞の数若しくは百分率を評価するステップと
を含む、
請求項55~57のいずれか一項に記載の方法。 - 前記結合剤が、抗DNAM-1抗体である、請求項58に記載の方法。
- 前記対象が、がんを有するか、又は感染症を有する、請求項55~59のいずれか一項に記載の方法。
- がんを伴う対象が、免疫チェックポイント阻害剤による治療に応答する可能性を予測するための方法であって、前記対象に由来する試料における、DNAM-1+ CD8+ T細胞の数又は百分率を検出するステップと、前記対象に由来する前記試料における、DNAM-1+ CD8+細胞の数又は百分率を、参照レベル又は参照量と比較するステップとを含む方法。
- 前記試料における全CD8+ T細胞の百分率としての、DNAM-1+ CD8+ T細胞の前記百分率が検出される、請求項61に記載の方法。
- 前記試料が、腫瘍試料であり、前記T細胞が、腫瘍浸潤T細胞である、請求項61又は62に記載の方法。
- 配列番号1の325~328位に対応する位置において、AP-2結合性モチーフであるYXXFの改変を含み、前記改変が、AP-2結合性モチーフであるYXXFを消失させるものである、改変DNAM-1ポリペプチド。
- 前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の325位に対応する位置において、チロシンのアミノ酸置換若しくはアミノ酸欠失を含む;
前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の328位に対応する位置において、フェニルアラニンのアミノ酸置換若しくはアミノ酸欠失を含む;
前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の325、326、若しくは327位に対応する位置のうちのいずれか1つの後におけるアミノ酸挿入を含む;並びに/又は
前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の326及び327位に対応する位置における残基のうちの1つ若しくは複数の欠失を含む、
請求項64に記載の改変DNAM-1ポリペプチド。 - 配列番号1の282~287位に対応する位置において、AP-2結合性モチーフEXXXLFの改変を含み、前記改変が、AP-2結合性モチーフEXXXLFを消失させるものである、改変DNAM-1ポリペプチド。
- 前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の282位に対応する位置において、グルタミン酸のアミノ酸置換若しくはアミノ酸欠失を含む;
前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号の286位に対応する位置において、ロイシンのアミノ酸置換若しくはアミノ酸欠失を含む;
前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の287位に対応する位置において、フェニルアラニンのアミノ酸置換若しくはアミノ酸欠失を含む;
前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の282~286位に対応する位置における残基のうちのいずれか1つ若しくは複数の後におけるアミノ酸挿入を含む;並びに/又は
前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の283、284、及び285位に対応する位置における残基のうちの1つ若しくは複数の欠失を含む、
請求項66に記載の改変DNAM-1ポリペプチド。 - 配列番号1の320~322位に対応する位置において、Cbl-b結合性モチーフの改変((D/N)XpY)を含み、前記改変が、前記Cbl-B結合性モチーフを消失させる、改変DNAM-1ポリペプチド。
- 前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の320位に対応する位置におけるアスパラギン酸のアミノ酸欠失又はアミノ酸置換を含む、請求項68に記載の改変DNAM-1ポリペプチド。
- 前記DNAM-1ポリペプチドが、配列番号1の320及び/又は321位に対応する位置の後におけるアミノ酸挿入を含む、請求項68又は69に記載の改変DNAM-1ポリペプチド。
- 配列番号1の295位に対応する位置におけるリシン、及び/又は配列番号1の333位に対応する位置におけるリシンの改変(例えば、アミノ酸置換又はアミノ酸欠失)を含む、改変DNAM-1ポリペプチド。
- T細胞において発現された場合の表面保持を、T細胞において発現された場合の、野生型DNAM-1ポリペプチドと比較して増大させている、請求項64~71のいずれか一項に記載の改変DNAM-1ポリペプチド。
- 配列番号5~9若しくは21~30のうちのいずれか1つに明示されたアミノ酸の配列、又はこれに対する、少なくとも90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、若しくは99%の配列同一性、又はおよそこれらの比率の配列同一性を有する配列を含み、野生型DNAM-1ポリペプチドと同じ配列を含まない、請求項64~72のいずれか一項に記載の改変DNAM-1ポリペプチド。
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