JP2022504392A - 腫瘍および／または転移の治療のための抗－ｍｅｔ ｆａｂ－ｆｃ - Google Patents

Abstract

単一の抗原結合アームおよびＦｃ領域を含む抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントであって、ここで、抗原結合アームは、配列番号７、８に示されるアミノ酸配列を有する可変領域によって定義され、ここで、抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントは、腫瘍および／または転移の治療に有用である。

Description

本開示は、腫瘍および／または転移の治療のための、新規の抗体由来の治療的薬剤に関する。

がんは、体細胞内因性遺伝子が突然変異を受ける遺伝子疾患である。ほんの少しの遺伝子－がん遺伝子および腫瘍抑制遺伝子として知られる－が、がん細胞において変更されて、腫瘍形成をもたらす。活性化されたがん遺伝子は促進剤であり、不活化された腫瘍抑制遺伝子は、がん細胞の増殖に関するブレーキを失っている。がんを生じさせる突然変異遺伝子の発見後に、がん遺伝子に関する新たな概念：「がん遺伝子依存性（ｏｎｃｏｇｅｎｅ ａｄｄｉｃｔｉｏｎ）」が出現し、それは、がん細胞が、多数の遺伝子変異にもかかわらず、それでもなお、その持続的な増殖または生存のために単一の発がんタンパク質に依存していることを示す。したがって、がんを治癒させるための「標的療法」を開発すべく、新たな治療的侵略の試みがなされた。ここ２０年間では、がんを生じさせる突然変異遺伝子によってコードされるタンパク質の薬理学的標的化－化学薬物または抗体を用いる－が、突然変異細胞を取り除いてがん疾患と闘うための最前線の医療設備（ａｒｍａｍｅｎｔａｒｉｕｍ）を代表している。標的治療は、従来の細胞傷害性化学療法よりも効果的で、しばしば、副作用がより少ないと見込まれている。しかしながら、腫瘍の中に変更された特定の標的遺伝子を保有している患者だけが、標的療法の恩恵を受けると思われる。したがって、患者腫瘍の総合的なゲノムプロファイリングを通して新薬の開発につながるような遺伝子病変を評価するために、個別化医療が並行して必要とされている。

ＭＥＴがん遺伝子は、多面的機能を有する独特な受容体チロシンキナーゼをコードしている。（点突然変異、遺伝子融合、転座、および／または増幅によって）遺伝学的に変更されると、ＭＥＴは、侵襲性の増殖プログラムを活性化するその能力のおかげで細胞の形質転換を開始する。したがって、構成的なＭｅｔキナーゼ過剰活性化をもたらすＭＥＴの遺伝子病変は、形質転換された表現型を開始して維持する（「ＭＥＴ依存性」）^１。

ＭＥＴ遺伝子病変は、大部分の固形腫瘍において１～４％の合計頻度で生じ、そのキナーゼ活性を上方調節することができる^１。点突然変異は、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）リガンド結合または受容体シグナル伝達に重要なドメイン（ＳＥＭＡドメイン、膜近傍ドメイン、および触媒ドメイン）に集中している。最近になって、次世代シーケンシングによって、非小細胞肺がんの３％においてエクソン１４スプライス部位突然変異が明らかになり^２、それは、ＭＥＴ転写産物の膜近傍領域のエクソンスキッピングおよび欠失を生じさせるものであり、ここで、セリン残基（Ｓｅｒ９８５）は、Ｍｅｔキナーゼ活性を負に調節し^３、チロシン残基（Ｔｙｒ１００３）は、Ｍｅｔの内在化および分解に必要である^４。

ＭＥＴによって誘発される「侵襲性の増殖」プログラムでは、増殖性応答は、遊走、生存、細胞外マトリックス分解、および細胞極性の誘導を伴う^５。これらの生物学的応答は、細胞が、不利な条件に適応および／またはより便利な環境を見つけようと回避するために行なわれる。適さないコンテキストでは、Ｍｅｔは、低酸素状態、炎症性サイトカイン、血管新生誘導因子、分裂促進因子、およびＨＧＦ自体などの様々な刺激によって－転写の上方調節を介して－過剰発現される。ついには、Ｍｅｔは、放射線によって誘導されるＤＮＡ損傷の条件下で過剰発現されて、ＤＮＡ修復の活性化とがん細胞のプログラム細胞死の回避を促進することにより、放射線療法に対する抵抗性に寄与する。

過剰活性のＭｅｔシグナル伝達を、選択的で、ロバスト性で、非常に効果的な様式で消去するために、いくつかのＭｅｔ－標的化分子が開発されている。これらの薬物は、ＨＧＦアンタゴニスト（ブロッキング抗体またはデコイ）、Ｍｅｔ受容体を標的化するｍＡｂ、および化学的チロシンキナーゼ阻害剤（ＴＫＩ）を含む。抗－Ｍｅｔ ｍＡｂは、ＭＥＴ駆動性の（ｄｒｉｖｅｎ ｂｙ ＭＥＴ）がんに対する闘いにおける主なステップを潜在的に代表している。近頃になって、４つの抗－Ｍｅｔ ｍＡｂ：ＭｅｔＭａｂ（オナルツズマブ（Ｏｎａｒｔｕｚｕｍａｂ），Ｒｏｃｈｅ）、ＬＹ２８７５３５８（エミベツズマブ（Ｅｍｉｂｅｔｕｚｕｍａｂ），Ｅｌｉ Ｌｉｌｌｙ＆Ｃｏｍｐａｎｙ）、ＡＲＧＸ－１１１（Ａｒｇｅｎｘ）、ＳＡＩＴ３０１（Ｓａｍｓｕｎｇ）、および、２つの抗体の混合物であるＳｙｍ０１５（Ｓｙｍｐｈｏｇｅｎ Ａ／Ｓ）が初期の臨床試験に入った。それらは、競合する様式でＭＥＴへのＨＧＦ結合をブロックすることにより作用し（オナルツズマブ、ＡＲＧＸ－１１１）、および／または、ＭＥＴを下方調節することにより作用する（エミベツズマブ、ＳＡＩＴ３０１、Ｓｙｍ０１５）。

ミューリンＤＮ３０ ｍＡｂ（ＷＯ２００７／０９０８０７に開示）は、ヒトＭｅｔ受容体の細胞外ドメインに結合して、Ｍｅｔによってトリガーされる生物学的効果のほんの一部を誘導するＩｇＧ２Ａである^６。それは、２つの別個の抗原分子に同時に結合するのを可能にするその二価の性質に起因して受容体リン酸化を部分的に活性化して、天然リガンドによって達成されるのと同様の様式で受容体複合体の安定化をもたらす。Ｍｅｔに対するこの不必要な部分アゴニスト活性は、一価ＤＮ３０ Ｆａｂフラグメント（ＭｖＤＮ３０）では観察されなかった^７。二価ＤＮ３０親抗体を一価Ｆａｂフラグメントに変換することは、ＤＮ３０抗－Ｍｅｔ抗体の治療可能性の制限をなくし（ｕｎｌｅａｓｈ）、完全なアンタゴニスト分子へと導く。しかしながら、Ｆａｂは低分子量のせいで半減期が短いことが、治療の展開に関する重大な制約となる。したがって、本発明者らは、ＤＮ３０ Ｆａｂに存在する定常ドメインの重複によって特徴付けられるＤＣＤ（二重定常ドメインＦａｂ）と呼ばれる新規の改変分子：ＤＣＤ－１（重複をタンデムで行なった）、および、ＤＣＤ－２（軽鎖および重鎖の定常ドメインを相互に交換した）を開発した（ＷＯ２０１４／１０８８２９に開示）。新規の組み換え分子は両方とも、インビトロで元のＦａｂと同等の生化学的特性を示し、完全なＭｅｔアンタゴニストとして作用する。インビボでは、全身投与すると、新規の組み換え分子は、Ｍｅｔ依存性（ａｄｄｉｃｔｅｄ）腫瘍増殖を減少させる。ＤＣＤ－１およびＤＣＤ－２は、２つとも元のｍＡｂと同等の挙動には到達しないにもかかわらず、元のＤＮ３０ Ｆａｂよりも改善された薬物動態プロファイルを示す^８。

抗体の二価から一価形態への変換は、２つの抗体アームのうちの１つを－分子工学手法により－除去することによっても達成することができると以前に報告されている（ＷＯ２００５／０６３８１６に開示）。データは、臓器内に発現されたＦｃ受容体に結合するＦｃドメインの活性に主に起因して、分子のインビボ安定性の改善を報告した。

本開示の目的は、腫瘍患者の治療に有用なモノクローナル抗体、すなわち、ＤＮ３０モノクローナル抗体に由来する、新規の抗－腫瘍剤を提供することである。

本発明によれば、上記目的は、本開示の不可欠な部分を形成していると理解される後の特許請求の範囲において特に想起される要旨によって達成される。

本発明は、単一の抗原結合アームおよびＦｃ領域を含む抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントに関し、ここで、Ｆｃ領域は、第１および第２のＦｃポリペプチドの複合体を含む。抗体フラグメントは、以下を含む：
（ｉ）１つのヒト化軽鎖可変（ＶＬ）ドメインおよび１つのヒト軽鎖定常（ＣＬ）ドメインを含む第１のポリペプチド（ここで、ヒト化軽鎖可変（ＶＬ）ドメインは、Ｎ末端からＣ末端の方向で、ヒト軽鎖定常（ＣＬ）ドメインに融合されて、ここで、ヒト化軽鎖可変（ＶＬ）ドメインは、配列番号１、２および３に示されるアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ）を含み、ここで、ヒト化ＶＬドメインは、配列番号７に示されるアミノ酸配列を有する）；
（ｉｉ）１つのヒト化重鎖可変（ＶＨ）ドメイン、１つのヒト重鎖定常ＣＨ１ドメインおよび第１のＦｃポリペプチドを含む第２のポリペプチド（ここで、第１のＦｃポリペプチドは、１つのヒトヒンジ領域、１つのヒト定常ＣＨ２ドメインおよび１つのヒト定常ＣＨ３ドメインを含み、ここで、Ｎ末端からＣ末端の方向で、ヒト化重鎖可変（ＶＨ）ドメインがヒト重鎖定常ＣＨ１ドメインに融合されて、それがヒトヒンジ領域に融合されて、それがヒト定常ＣＨ２ドメインに融合されて、それがヒト定常ＣＨ３ドメインに融合されて、ここで、ヒト化重鎖可変（ＶＨ）ドメインは、配列番号４、５および６に示されるアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ）を含み、ここで、ヒト化ＶＨドメインは、配列番号８に示されるアミノ酸配列を有する）；
（ｉｉｉ）第２のヒトＦｃポリペプチドを含む第３のポリペプチド（ここで、第２のヒトＦｃポリペプチドは、１つのヒンジ領域、１つのヒト定常ＣＨ２ドメイン、および、１つのヒト定常ＣＨ３ドメインを含み、ここで、Ｎ末端からＣ末端の方向で、ヒンジ領域がヒトＣＨ２定常ドメインに融合されて、それがヒトＣＨ３定常ドメインに融合されて、ここで、ヒンジ領域は、Ｎ末端がトランケートされている）。

上述の抗体フラグメントの改善された治療的特性は、可変領域の構造に依存し、抗体の一価形態および／またはＦｃ領域の存在に単に起因するものではなない。

本発明はまた、単一のボトル内または２つのボトル内に、（ａ）上記に定義した抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントおよび薬学的に許容できるビヒクル、および（ｂ）ヒトＭｅｔの細胞外部分および薬学的に許容できるビヒクルを含む生産物にも関し、ここで、ヒトＭｅｔの細胞外部分は、安定した様式で肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）に結合することが可能であり、抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントによって認識されるエピトープにおいて、抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントがそれに結合するのを防ぐための少なくとも１つのアミノ酸突然変異を含む。

本発明は、純粋に例示的かつ非限定的な実施例によって、および、付随する図面を参照して、ここに詳細に説明される。

ＤＮ３０抗体およびその一価誘導体の略図。（Ａ）元のミューリン二価ｍＡｂ；（Ｂ）ＭｖＤＮ３０、キメラＦａｂ；（Ｃ）ｃｈＯＡ－ＤＮ３０、キメラ一価「１本アーム」抗体；（Ｄ）ｈＯＡ－ＤＮ３０、ヒト化一価「１本アーム」抗体；（Ｅ）ＯＡ－ＤＮ３０抗体を、還元および非還元条件下でＳＤＳ－ＰＡＧＥに供した。ゲルをＧｅｌ Ｃｏｄｅ ｂｌｕｅで染色した。 一価ＤＮ３０由来分子のＭｅｔへの結合。（Ａ）ヒトＭｅｔ－Ｆｃキメラ（固相）に対する、ＭｖＤＮ３０、ｃｈＯＡ－ＤＮ３０、ｈＯＡ－ＤＮ３０抗体（液相）のＥＬＩＳＡ結合分析。（Ｂ）Ｍｅｔ－Ｆｃキメラ（固相）に対するｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８（液相）のＥＬＩＳＡ結合分析；ヒト、ミューリン、ラット、サル起源のＭｅｔをアッセイに含めた。抗－ヒトｋ鎖抗体を用いて結合を明らかにした。Ｏ．Ｄ．：光学濃度；ＡＵ：任意単位。各ポイントは、三重の値の平均である；バーは標準偏差を示す。グラフの下の表は、Ｋｄ値、結合最大値（Ｂｍａｘ）、およびフィッティング・スコア（Ｒ^２）を報告する。（Ｃ）異なる種（ＥＢＣ－１、ヒト肺がん；Ｃ２Ｃ１２ マウス筋肉の筋芽細胞；Ｈ９Ｃ２ ラット心臓の筋芽細胞；ＭＤＣＫ イヌ腎臓細胞；Ｃｏｓ－７ サル腎臓細胞）に由来する細胞株のパネルの表面に発現されたＭｅｔへのｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８結合のフローサイトメーター分析。新規の分子は、ヒトＭｅｔ－Ｆｃに高い親和性で結合する；抗体は、ヒト、ラット、イヌ、およびサルＭｅｔと交差反応する。 一価ＤＮ３０由来分子のアゴニスト活性。分散アッセイ。ＨＰＡＦ－ＩＩ細胞を、示された濃度のＨＧＦ（Ｍｅｔリガンド）、ＤＮ３０ ｍＡｂ（部分アゴニスト）、ＭｖＤＮ３０（完全アンタゴニスト）およびキメラまたはヒト化１本アーム抗体と２４時間インキュベートした。ＤＮ３０由来の一価分子は全て、細胞散乱（Ｍｅｔが介在する生物学的応答）を誘導しない。 一価ＤＮ３０由来分子によって処理された細胞における、Ｍｅｔシェディングおよび下方調節。Ａ５４９細胞を、示された増加する濃度のＭｖＤＮ３０、ｃｈＯＡ－ＤＮ３０、またはｈＯＡ－ＤＮ３０誘導体と、血清フリー培地内で４８時間インキュベートした。全体のＭｅｔレベルを、抗－Ｍｅｔ抗体を用いた細胞抽出物のウエスタンブロット分析によって決定した。検出されたバンドは、受容体の成熟型（ｐ１４５ Ｍｅｔ）に対応する。ローディングコントロールとして、フィルターを、関係のないタンパク質（ビンキュリン）でプローブした。Ｍｅｔシェディングを、抗－Ｍｅｔ抗体を用いた馴化培地のウエスタンブロット分析によって決定した。検出されたバンドは、受容体のシェディングされた細胞外ドメイン（ｐ８０ Ｍｅｔ外部ドメイン）に対応する。表は、ＩｍａｇｅＪソフトウェアを用いたデンシトメトリーによって測定される、対応するビンキュリンシグナルに対して正規化された各ウエスタンブロットバンドのピクセル強度の定量化を報告する。一価の１本アーム抗体は全て、Ｍｅｔを下方調節し、Ｍｅｔシェディングを誘導する。 一価ＤＮ３０由来分子によるＭｅｔ－活性化の阻害。ＧＴＬ－１６（ＭＥＴ遺伝子増幅によって維持される受容体過剰発現に起因して構成的に活性のＭｅｔを保有するＭＥＴ依存性細胞）を、血清フリー培地プラスｈＯＡ－ＤＮ３０またはｃｈＯＡ－ＤＮ３０抗体（１０００または２５０ｎＭ）中で２４時間インキュベートした。Ｍｅｔ活性化を、リン酸化Ｔｙｒ^{１２３４／１２３５}Ｍｅｔ残基（主なリン酸化部位）に特異的な抗－Ｍｅｔ抗体を用いたウエスタンブロッティングによって全細胞溶解物において決定した。同じブロットを、抗－Ｍｅｔ抗体で再プローブした。タンパク質のローディングをコントロールするために、フィルターを抗－ビンキュリン抗体でもプローブした。キメラおよびヒト化１本アーム抗体は、Ｍｅｔリン酸化を阻害する。 一価ＤＮ３０由来分子で処理したＭＥＴ依存性細胞の生命力。ＧＴＬ－１６ヒト胃癌腫細胞を、１０％ＦＣＳ培地中、９６ウェルプレート内にプレーティングした。２４時間後、増加する濃度のＭｖＤＮ３０、ｃｈＯＡ－ＤＮ３０、またはｈＯＡ－ＤＮ３０抗体で細胞をさらに７２時間処理した。細胞の数をＣｅｌｌ ｔｉｔｅｒ－ｇｌｏによって評価した。プロットは、未処理コントロールに対する生存細胞のパーセンテージを示す。各ポイントは、三重の値の平均である。表は、計算されたＩＣ_５０値およびフィッティング・スコア（Ｒ^２）を報告する。１本アーム分子は、ＭＥＴ依存性細胞の細胞増殖を阻害する。 一価ＤＮ３０由来分子を用いた処理によって誘導されるＭＥＴ依存性細胞の増殖および死滅。（Ａ）増殖アッセイ：ＧＴＬ－１６ヒト胃癌腫細胞を、１０％ＦＣＳ培地中、６ウェルプレート内にプレーティングした。２４時間後、固定濃度（１μＭ）のＭｖＤＮ３０、ｃｈＯＡ－ＤＮ３０、またはｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８で細胞をさらに４８時間処理した。それから、さらに２時間、ＥｄＵ（１０ｎ μＭ）を培養培地へ添加した。Ｓ相の細胞のパーセンテージを、ＣｌｉｃＫ－ｉＴ ＥｄＵフローサイトメトリーアッセイの手順後、細胞蛍光光度（ｃｙｔｏｆｌｕｏｒｉｍｅｔｅｒ）分析によって決定した。プロットは、ＡＰＣ染色に関してネガティブおよびポジティブの細胞を示す（ＥｄＵ＋、Ｓ相細胞）。表は、Ｓ相の細胞のパーセンテージを報告する。（Ｂ）細胞毒性アッセイ：ＧＴＬ－１６ヒト胃癌腫細胞を、１０％ＦＣＳ培地中、９６ウェル内にプレーティングした。２４時間後、増加する濃度のＭｖＤＮ３０、ｃｈＯＡ－ＤＮ３０、またはｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８で細胞をさらに４８時間処理した。細胞毒性を、Ｃｅｌｌ－Ｔｏｘ ｇｒｅｅｎアッセイによって評価した。グラフは、未処理コントロールに対する細胞毒性の増加を示す。各ポイントは、三重の値の平均である。表は、計算されたＥＣ_５０値、およびフィッティング・スコア（Ｒ^２）を報告する。１本アーム分子は、ＭＥＴ依存性細胞において効率的に増殖をブロックして細胞毒性を誘導する。 ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８で処理した細胞における、ＨＧＦによって誘導される細胞運動。ＨＰＡＦ－ＩＩ細胞を、示された濃度のｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８を単独またはＤｅｃｏｙＭｅｔ^{Ｋ８４２Ｅ}と組み合わせて（ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８と同量）用いて、１８時間、予め処理して、それから、ＨＧＦ（６．２５ｎｇ／ｍｌ）とともに２４時間インキュベートする。ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、ＨＧＦによって誘導される細胞運動を阻害する；ＤｅｃｏｙＭｅｔ^{Ｋ８４２Ｅ}との組み合わせは、細胞応答をより効果的に妨害する。 ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８で処理された細胞の浸潤。ＨＰＡＦ－ＩＩ細胞を、０．５μＭのｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８を単独または１μＭのＤｅｃｏｙＭｅｔ^{Ｋ８４２Ｅ}と組み合わせて含む血清フリー培地中、マトリゲルでコーティングされたトランスウェルフィルターの上側チャンバー内にプレーティングした。ＨＧＦ（２５ｎｇ／ｍｌ）を含む培地を、下側チャンバーに添加した。２４時間後、フィルターの下側部分に遊走した細胞を、染色および顕微鏡観察によって評価した。ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、ＨＧＦによって誘導される細胞浸潤を阻害し；ＤｅｃｏｙＭｅｔ^{Ｋ８４２Ｅ}との組み合わせは、生物学的応答をブロックする。 ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８によるＰＤ－Ｌ１発現の調節。ＧＴＬ－１６細胞を、５０ｎｇ／ｍｌのＩＦＮ－γを単独または２５０ｎＭのｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８と組み合わせて処理した。４８時間後、細胞を溶解させた；全タンパク質抽出物に対するＰＤ－Ｌ１発現およびＭｅｔ活性化をウエスタンブロットによって評価した。ローディングコントロールとして、フィルターを抗－ＧＡＰＤＨ抗体でプローブした。 ＭｖＤＮ３０、ＤＮ３０ ｍＡｂ、およびｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８の、インビボでの薬物動態プロファイル。免疫欠損マウスに、単回投与（１００μｇ）のＭｖＤＮ３０、ＤＮ３０ ｍＡｂ、またはｈＯＡ－ＤＮ３０を静脈内注入した。末梢血を異なる時点で回収した。治療的分子の血清濃度をＥＬＩＳＡによって測定した。グラフは、循環している分子の量を時間の関数として示す。サンプルは三重であり；バーは標準偏差を示す。 一価ＤＮ３０誘導体を用いた処置による、インビボでのＭＥＴ依存性腫瘍増殖の阻害。１×１０^６ ＧＴＬ－１６ ＭＥＴ依存性胃癌腫細胞を、免疫欠損ＮＯＤ－ＳＣＩＤマウスの脇腹に接種した。腫瘍が６８．４±５．４ｍｍ^３の平均体積に到達したときに、マウスを４つの均一なグループにランダム化して、３０ｍｇ／ｋｇのＭｖＤＮ３０、ｃｈＯＡ－ＤＮ３０、またはｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８を用いて、静脈内注入によって１週間に２回処置した。コントロールとして、１グループを同一容量のＰＢＳ（ビヒクル）で処置した。カリパスを用いて腫瘍増殖を定期的にモニターした。１５日後、マウスを屠殺した。（Ａ）腫瘍増殖のカイネティクス；（Ｂ）未処置グループのパーセンテージとして報告される、実験の最後における腫瘍体積。ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、ＭＥＴ依存性腫瘍増殖を、ｃｈＯＡ－ＤＮ３０よりも効果的に阻害する。 ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８処理による、インビボでのＭＥＴ依存性腫瘍増殖の用量応答阻害。１×１０^６ ＧＴＬ－１６ ＭＥＴ依存性胃癌腫細胞を、免疫不全ＮＯＤ－ＳＣＩＤマウスの脇腹に接種した。８日後、腫瘍は８０．７±２ｍｍ^３の平均体積に到達し、マウスを５つの均一なグループにランダム化して、増加する濃度のｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８を用いて静脈内注入によって処置した。コントロールとして、１グループを同一容量のＰＢＳ（ビヒクル）で処置した。カリパスを用いて腫瘍増殖を定期的にモニターした。１７日後、マウスを屠殺して、腫瘍を切除して計量した。（Ａ）腫瘍増殖のカイネティクス；（Ｂ）腫瘍重量。ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、用量応答プロファイルでＭＥＴ依存性腫瘍増殖を阻害する。 ｃｈＯＡ－ＤＮ３０およびｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８抗体のＶＬ、ＶＨ、ＣＬおよびＣＨ１ドメインのアミノ酸配列。相補性決定領域配列を太字下線文字によって強調する。 ＯＡ－ＤＮ３０の第１および第２のＦｃポリペプチドのアミノ酸配列。第１および第２のＦｃポリペプチドのＣＨ３ドメイン内のアミノ酸突然変異－それぞれ、ノブおよびホールを生じさせるために必要－を太字下線文字によって強調する。 ＤｅｃｏｙＭｅｔの突然変異型のアミノ酸配列。アミノ酸突然変異Ｋ８４２Ｅを太字下線文字によって強調する。

以下の説明において、実施態様の徹底的な理解を提供するための非常に多くの具体的な詳細が提供される。実施態様は、具体的な詳細の１つまたは複数を用いずに、または他の方法、構成要素、材料などを用いて実施され得る。他の例では、よく知られた構造、材料、または操作は、実施態様の態様が分かりにくくなるのを避けるために、示されないか、または詳細に説明されない。

本明細書全体を通して、「一実施態様（ｏｎｅ ｅｍｂｏｄｉｍｅｎｔ）」または「一実施態様（ａｎ ｅｍｂｏｄｉｍｅｎｔ）」との言及は、実施態様に関連して説明される特定の特質、構造、または特徴が、少なくとも１つの実施態様に含まれることを意味する。したがって、本明細書全体を通して、様々な場所における語句「一実施態様では（ｉｎ ｏｎｅ ｅｍｂｏｄｉｍｅｎｔ）」または「一実施態様では（ｉｎ ａｎ ｅｍｂｏｄｉｍｅｎｔ）」という表現は、必ずしも全てが同一の実施態様を指しているわけではない。さらに、特定の特質、構造、または特徴は、任意の適切な様式で、１つまたは複数の実施態様において組み合わされてよい。

本明細書において提供される見出しは、便宜のためのみであり、実施態様の範囲または意味を説明するものではない。

本開示は、腫瘍および／または転移の治療のための新規の治療的薬剤に関する。

１年に２００，０００人を超える患者が「ＭＥＴ依存性（ａｄｄｉｃｔｅｄ）」であると概算され、Ｍｅｔ阻害は疾患の寛解を潜在的にもたらし得る。突然変異は老化とともに蓄積すること、および、次の２０年にかけて老年人口が増加することを考慮すると、がんによる重荷は上がり、患者管理のための包括的な健康管理方策に大きな影響を持つことが予想される。「ＭＥＴ依存性」の原因となる遺伝子変異は、胃、食道、結腸直腸、腎臓、および肺の癌腫、黒色腫、および脳腫瘍に見られている（ＣＯＳＭＩＣデータベース：ｗｗｗ．ｓａｎｇｅｒ．ａｃ．ｕｋを参照）。さらに、ＭＥＴ遺伝子病変の選択は、結腸直腸および非小細胞肺がん（ＮＳＣＬＣ）における複数の他の標的化治療に対する獲得耐性メカニズムとして発見されている^９。

転移におけるＭｅｔの役割は、過酷環境に適応するように細胞を助けるＭｅｔの能力とも関連する。Ｍｅｔ駆動性の転移能力は、遺伝的および後成的変異だけでなく、線維芽細胞、常在性の上皮細胞、周皮細胞、筋線維芽細胞、血管およびリンパ血管内皮細胞、ならびに免疫系の浸潤細胞を含む、多種多様な細胞型によって構成される腫瘍間質組織によるＨＧＦのパラクリン分泌にも依存する。

Ｍｅｔは、近頃では、（ｉ）ＭＥＴ突然変異／増幅を有する腫瘍（「ＭＥＴへの依存性」）の個別化治療；（ｉｉ）他の標的化がん治療に対するＭｅｔ駆動性（ｄｒｉｖｅｎ）の一次および二次耐性の予防／復帰（ｒｅｖｅｒｓｉｏｎ）；および（ｉｉｉ）Ｍｅｔ駆動性の浸潤性／転移表現型の予防／復帰のための、がん特異的な標的として認識されている^１。

ＤＮ３０阻害活性は、細胞表面で作用するメタロプロテアーゼＡＤＡＭ－１０の生理学的活性を促進するその能力によるものであり（ｌｉｅｓ ｏｎ）^１０、それは、受容体の無傷の細胞外部分を細胞膜から放出し（Ｍｅｔ－シェディング）、Ｍｅｔ細胞内キナーゼドメインの迅速な分解がその後に続く^１１。これらのプロセスの結果として、Ｍｅｔは細胞表面から物理的に取り除かれて、細胞外ドメインは可溶性「デコイ」として作用して、ＨＧＦを隔離することによってリガンド結合を防止する。したがって、ＤＮ３０の利点は、ＨＧＦ－依存性およびＨＧＦ－非依存性の両方のＭｅｔ活性化を阻害することである^１２。

他の抗－Ｍｅｔ抗体と比較して、ＤＮ３０は、異なる相乗的な（ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ａｎｄ ｓｙｎｅｒｇｉｃ）活性：（ｉ）外部ドメインの「シェディング」による細胞表面からのＭｅｔの除去；（ｉｉ）ＨＧＦリガンドの隔離；（ｉｉｉ）膜におけるＭｅｔ受容体のホモ－またはヘテロ－二量体化の阻害；（ｉｖ）受容体分解の刺激を生じさせる独特なメカニズムにより、受容体機能をブロックする。したがって、ＤＮ３０は、がん細胞だけでなく腫瘍微小環境に対しても潜在的に作用することができるので（内皮細胞、線維芽細胞、およびマクロファージの、ＨＧＦ駆動性の生物学的応答）、一石二鳥を得る機会を提供し、Ｍｅｔパスウェイの最適なブロックを可能にする。

本発明は、抗－Ｍｅｔ抗体を用いて腫瘍に対する最大の治療可能性に到達するために、ｉ）Ｍｅｔ活性化の際に引き起こされる細胞内応答を部分的にさえ誘発しない、すなわち、アゴニストまたは部分アゴニストでない；ｉｉ）リガンド（ＨＧＦ）の排除（ｄｉｓｐｌａｃｅｍｅｎｔ）とは異なる作用メカニズムによりＭｅｔ活性化を減じさせ；ｉｉｉ）病院における展開に適切な、好適な薬物動態プロファイルを有し；ｉｖ）当然、ヒトにおいて免疫応答を与えない分子を適用することが必須であるという考えに基づく。上記の全ての考慮を満たすために、本発明者らは、ミューリンＤＮ３０抗体－シェディング・メカニズムによってＭｅｔ活性化をブロックする－を、「１本アーム」形態でフォーマティングする（ｆｏｒｍａｔｔｉｎｇ）ことによって、以下で「ｈＯＡ－ＤＮ３０」と命名される完全ヒト化の一価の非常に安定した分子に変換した。

一実施態様では、本発明は、単一の抗原結合アームおよびＦｃ領域を含む抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントに関し、ここで、Ｆｃ領域は、第１および第２のＦｃポリペプチドの複合体を含む。抗体フラグメントは、以下を含み、好ましくはからなる：
（ｉ）１つのヒト化軽鎖可変（ＶＬ）ドメインおよび１つのヒト軽鎖定常（ＣＬ）ドメインを含む、好ましくはからなる、第１のポリペプチド（ここで、ヒト化軽鎖可変（ＶＬ）ドメインは、Ｎ末端からＣ末端の方向で、ヒト軽鎖定常（ＣＬ）ドメインに融合されて、ここで、ヒト化軽鎖可変（ＶＬ）ドメインは、配列番号１、２および３に示されるアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ）を含み、ここで、ヒト化軽鎖可変（ＶＬ）ドメインは、配列番号７に示されるアミノ酸配列を有する）；
（ｉｉ）１つのヒト化重鎖可変（ＶＨ）ドメイン、１つのヒト重鎖定常ＣＨ１ドメインおよび第１のＦｃポリペプチドを含む第２のポリペプチド（ここで、第１のＦｃポリペプチドは、１つのヒトヒンジ領域、１つのヒト定常ＣＨ２ドメイン、および、１つのヒト定常ＣＨ３ドメインを含み、ここで、Ｎ末端からＣ末端の方向で、ヒト化重鎖可変（ＶＨ）ドメインがヒト重鎖定常ＣＨ１ドメインに融合されて、それがヒトヒンジ領域に融合されて、それがヒト定常ＣＨ２ドメインに融合されて、それがヒト定常ＣＨ３ドメインに融合されて、ここで、ヒト化重鎖可変（ＶＨ）ドメインは、配列番号４、５および６に示されるアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ）を含み、ここで、ヒト化重鎖可変（ＶＨ）ドメインは、配列番号８に示されるアミノ酸配列を有する）；
（ｉｉｉ）第２のヒトＦｃポリペプチドを含む、好ましくはからなる、第３のポリペプチド（ここで、第２のヒトＦｃポリペプチドは、１つのヒトヒンジ領域、１つのヒト定常ＣＨ２ドメイン、および、１つのヒト定常ＣＨ３ドメインを含み、好ましくはからなり、ここで、Ｎ末端からＣ末端の方向で、ヒンジ領域がヒトＣＨ２定常ドメインに融合されて、それがヒトＣＨ３定常ドメインに融合されて、ここで、ヒンジ領域は、Ｎ末端がトランケートされている）。

一実施態様では、ヒト軽鎖定常（ＣＬ）ドメインは、ヒト軽鎖κタイプドメインである。

一実施態様では、ヒトヒンジ領域およびヒト定常ドメインＣＨ１、ＣＨ２およびＣＨ３は、ヒトＩｇＧ１由来である。

一実施態様では、２つのＦｃポリペプチドは、ヒンジ領域において分子間ジスルフィド結合によって連結されている。

一実施態様では、第１のＦｃポリペプチドおよび第２のＦｃポリペプチドは、境界面において接触していて（ｍｅｅｔ）、第１および第２のＦｃポリペプチドの間の一方は境界面にノブを含み、第１および第２のＦｃポリペプチドの間の他方は境界面にホールを含み、ここで、ノブはホール内に配置可能である。

好ましい実施態様では、第１および第２のＦｃポリペプチドの間の一方は、突然変異したＣＨ３定常ドメインを含み、ここで、突然変異したＣＨ３定常ドメインは、３８９位にアミノ酸突然変異を保有し、ここで、３８９位の元のアミノ酸は、元のアミノ酸よりも大きな側鎖体積を有するアミノ酸を取り込むように突然変異されていて、それにより、Ｆｃポリペプチドの間の境界面にノブを生じさせ；ここで、第１および第２のＦｃポリペプチドの間の他方は、突然変異したＣＨ３定常ドメインを含み、ここで、突然変異したＣＨ３定常ドメインは、３つのアミノ酸突然変異を３８９位、３９１位および４３８位に保有し、ここで、元のアミノ酸は、元のアミノ酸よりも小さな側鎖体積を有するアミノ酸を取り込むように突然変異されていて、それにより、Ｆｃポリペプチドの間の境界面にホールを生じさせ、ここで、ノブはホールの中に配置可能であり、ここで、アミノ酸ナンバリングはＫａｂａｔのＥＵナンバリング・スキームに従っている（Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ ｉｎｔｅｒｅｓｔ，５ｔｈ ｅｄ．，Ｖｏｌ．１，１９９１；ＮＩＨ，Ｂｅｔｈｅｓｄａ，ＭＤのｐｐ．６８８－６９６）。

さらに好ましい実施態様では、３８９位、３９１位および４３８位の元のアミノ酸は、それぞれ、トレオニン、ロイシンおよびチロシンであり；ここで、第１および第２のＦｃポリペプチドの間の一方において、３８９位のトレオニンはトリプトファンに突然変異されていて；ここで、第１および第２のＦｃポリペプチドの間の他方において、３８９位のトレオニンはセリンに突然変異されていて、３９１位のロイシンはアラニンに突然変異されていて、４３８位のチロシンはバリンに突然変異されている。

好ましい実施態様では、ヒト軽鎖定常（ＣＬ）ドメインは、配列番号９に示されるアミノ酸配列を有し、ヒト重鎖定常ＣＨ１ドメインは、配列番号１０に示されるアミノ酸配列を有する。

好ましい実施態様では、第１のヒトＦｃポリペプチドは、配列番号１１に示されるアミノ酸配列を有し、第２のヒトＦｃポリペプチドは、配列番号１２に示されるアミノ酸配列を有する。

一実施態様では、本発明は、上記に開示される抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントをコードする単離された核酸に関する。

一実施態様では、本発明は、上記に開示される抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントを集合的に（ｃｏｌｌｅｃｔｉｖｅｌｙ）コードする２以上の組み換え核酸を含む組成物に関する。

本明細書において開示される抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントは、Ｍｅｔに結合すると、Ｍｅｔの細胞外ドメインのシェディングを誘導する。抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントは、Ｍｅｔに結合したときに、Ｍｅｔに対するアゴニスト活性を与えない。抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントは、Ｍｅｔに結合すると、Ｍｅｔリン酸化を阻害する。抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントは、Ｍｅｔに結合すると、ＭＥＴ依存性細胞において、さらに増殖をブロックして細胞毒性を誘導する。抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントは、Ｍｅｔに結合すると、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）によって誘導される細胞運動および細胞浸潤をさらに阻害する。当該説明の抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント対象物（ｏｂｊｅｃｔ）の前述の特性は、前記抗体フラグメントに、抗－腫瘍および／または抗－転移活性を与える。

本明細書において用いられる表現「抗原結合アーム」は、目的の標的分子に特異的に結合する能力を有している本発明の抗体フラグメントの構成要素部分を指す。抗原結合アームは、免疫グロブリン軽鎖および重鎖のＣＤＲおよびフレーム領域を含んでいる可変ドメイン配列（ＶＬおよびＶＨ）と、免疫グロブリン軽鎖および重鎖の定常ドメイン配列（ＣＬおよびＣＨ）の複合体である。

非ヒト（例えば、ミューリン）抗体の「ヒト化」形態は、非ヒト免疫グロブリンに由来する最小限のアミノ酸残基を含む非天然組み換え抗体である。大部分について、ヒト化抗体はヒト免疫グロブリン（レシピエント抗体）であって、その中で、レシピエントの超可変領域由来の残基（すなわち、相補性決定領域－ＣＤＲ）が、所望の特異性、親和性、および特性を有する非ヒト種（ドナー抗体）の超可変領域由来の残基で置換されている。場合によっては、ヒト免疫グロブリンのフレームワーク領域（ＦＲ）残基は、対応する非ヒト残基で置換されてよい。

さらに、ヒト化抗体は、レシピエント抗体内またはドナー抗体内に見られない残基を含んでよい。これらの改変は、抗体の能力をさらに精緻にするためになされる。一般に、ヒト化抗体は、超可変ループの全てまたは実質的に全てが非ヒト免疫グロブリンのものに対応し、フレーム残基（ＦＲ）の全てまたは実質的に全てがヒト免疫グロブリン配列のものである、２つの可変ドメインを含む。ヒト化抗体はまた、典型的にヒト免疫グロブリンのものである免疫グロブリン定常領域（Ｆｃ）の一部を含む。さらなる詳細については^{１３～１５}を参照。以下のレビュー論文および本明細書中に挙げられる参考文献：^{１６～１８}も参照。

本明細書において用いられる用語「Ｆｃ領域」は、一般に、免疫グロブリン重鎖のＣ末端ポリペプチド配列を含んでいる二量体の複合体を指し、ここで、Ｃ末端ポリペプチド配列は、無傷抗体のパパイン消化によって取得可能なものである。Ｆｃ領域は、本来または変異Ｆｃ配列を含んでよい。免疫グロブリン重鎖のＦｃ配列の境界は変化し得るが、ヒトＩｇＧ１重鎖Ｆｃ配列は通常、ＫａｂａｔのＥＵナンバリング・スキームに従って、Ａｓｐ２３４とＴｈｒ２３８の間に含まれるアミノ酸残基から、Ｆｃ配列のカルボキシル末端まで伸びるように定義される。免疫グロブリンのＦｃ配列は通常、１つのヒンジ領域、２つの定常ドメイン（ＣＨ２ドメインおよびＣＨ３ドメイン）を含み、任意選択でＣＨ４ドメインを含んでもよい。本明細書において「Ｆｃポリペプチド」とは、Ｆｃ領域を構成するポリペプチドの１つを意味する。Ｆｃ領域は、抗原結合アームを含んでいるＦａｂ分子と比較して抗体フラグメントの安定性を増大させる。

本明細書において用いられる「ヒンジ領域」、「ヒンジ配列」、およびそれらのバリエーションは、当技術分野で知られている意味を含み、それは例えば、Ｊａｎｅｗａｙ ｅｔ ａｌ．，Ｉｍｍｕｎｏ Ｂｉｏｌｏｇｙ：ｔｈｅ ｉｍｍｕｎｅ ｓｙｓｔｅｍ ｉｎ ｈｅａｌｔｈ ａｎｄ ｄｉｓｅａｓｅ，（Ｅｌｓｅｖｉｅｒ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｌｔｄ．，ＮＹ）（４ｔｈ ｅｄ．，１９９９）、および、^{１９、２０}において説明されている。

本明細書において用いられる語句「トランケートされたヒンジ領域」は、ヒンジ配列の全てではないが一部を含んでいるポリペプチドを指す。トランケートされたヒンジ領域は、「第１の」Ｆｃポリペプチドへの連結が可能である。野生型ヒンジ配列が存在しない場合は、「第２の」Ｆｃポリペプチド内の残りの配列が「第１の」Ｆｃポリペプチドへの連結が可能な構成要素を含む。例えば、前記構成要素は、ジスルフィド結合を形成することが可能な改変された残基または付加されたシステイン残基であってよい。

「ノブ」は、例えば、第１のＦｃポリペプチドの境界面から突出して、したがって、隣接境界面（すなわち第２のＦｃポリペプチドの境界面）内の補完的なホール内に配置可能であり、それによりヘテロ多量体を安定化させ、したがってホモ多量体形成よりもヘテロ多量体形成が好都合である、少なくとも１つのアミノ酸側鎖を指す。ノブは、元の境界面内に存在してよく、または、（例えば、境界面をコードする核酸を変更することにより）合成的に導入されてよい。通常は、第１のポリペプチドの境界面をコードする核酸は、ノブをコードするように変更される。これを達成するために、第１のポリペプチドの境界面内の少なくとも１つの「元の」アミノ酸残基をコードする核酸は、元のアミノ酸残基よりも大きな側鎖体積を有する少なくとも１つの「インポート」アミノ酸残基をコードする核酸で置換される。１を超える元の残基および対応するインポート残基が存在し得ることが理解されよう。置換される元の残基の数に関する上限は、第１のポリペプチドの境界面内の残基の合計数である。

「ホール」は、第２のＦｃポリペプチドの境界面から窪んでいて、したがって、第１のＦｃポリペプチドの隣接境界面にある対応するノブを収容する少なくとも１つのアミノ酸側鎖を指す。ホールは、元の境界面内に存在してよく、または、（例えば、境界面をコードする核酸を変更することにより）合成的に導入されてよい。通常は、第２のポリペプチドの境界面をコードする核酸は、ホールをコードするように変更される。これを達成するために、第２のポリペプチドの境界面内の少なくとも１つの「元の」アミノ酸残基をコードする核酸は、元のアミノ酸残基よりも小さな側鎖体積を有する少なくとも１つの「インポート」アミノ酸残基をコードする核酸で置換される。１を超える元の残基および対応するインポート残基が存在し得ることが理解されよう。置換される元の残基の数に関する上限は、第２のポリペプチドの境界面内の残基の合計数である。

ノブがホールの中に「配置可能」」であるというのは、第１のＦｃポリペプチドと第２のＦｃポリペプチドの境界面のノブとホールのそれぞれの空間的な位置およびノブとホールのサイズが、境界面における第１および第２のポリペプチドの正常な関連性を著しく混乱させずにノブがホールの中に配置され得るものであることを意味する。ノブは典型的に、境界面の軸から垂直に伸びず、好ましいコンフォメーションを有しないので（Ｓｉｎｃｅ ｋｎｏｂｓ ｄｏ ｎｏｔ ｔｙｐｉｃａｌｌｙ ｅｘｔｅｎｄ ｐｅｒｐｅｎｄｉｃｕｌａｒｌｙ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ａｘｉｓ ｏｆ ｔｈｅ ｉｎｔｅｒｆａｃｅ ａｎｄ ｈａｖｅ ｐｒｅｆｅｒｒｅｄ ｃｏｎｆｏｒｍａｔｉｏｎｓ）、対応するホールとノブの配置は、Ｘ線結晶解析または核磁気共鳴（ＮＭＲ）によって得られるもののような三次元構造に基づくノブ／ホールのペアの形成に依拠する。これは、当該分野において広く認められている技術を用いて達成することができる。

本明細書において用いられる、抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントの「非アゴニスト活性」という表現は、Ｍｅｔ活性化の際に引き起こされる細胞応答を誘発するいかなる活性も、部分的にさえも発揮しない、抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントを指す。抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントの非アゴニスト活性は、前記非アゴニスト抗体を用いた細胞のインキュベーションの際に、Ｍｅｔ、またはリン酸化の場合はＭｅｔ残基Ｔｙｒ^{１２３４／１２３５}（すなわちＭｅｔの主なリン酸化部位^２１）、またはリン酸化の場合はＭｅｔ残基Ｔｙｒ^{１３４９／１３５６}（すなわちＭｅｔのドッキング部位^２２）を特異的に認識する抗体の使用を含む、ウエスタンブロット、免疫蛍光、免疫組織化学、ＥＬＩＳＡ、細胞蛍光光度分析または任意の他の方法のような従来の技術によるＭｅｔリン酸化レベルの評価によって測定することができる。代替法として、ＨＧＦ治療によって誘導される応答と比較した抗体治療の際の細胞の生物学的応答の評価を適用することができる。

本発明はさらに、単一のボトル内または２つのボトル内に、（ａ）本明細書において開示される抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントおよび薬学的に許容できるビヒクル、および（ｂ）ヒトＭｅｔの細胞外部分および薬学的に許容できるビヒクルを含む生産物に関し、ここで、ヒトＭｅｔの細胞外部分は、安定した様式で肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）に結合することが可能であり、抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントによって認識されるエピトープにおいて、抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントがそれに結合するのを防ぐための少なくとも１つのアミノ酸突然変異を含む。

一実施態様では、ヒトＭｅｔの細胞外部分は、ＳＥＭＡ、ＰＳＩ、ＩＰＴ－１、ＩＰＴ－２、ＩＰＴ－３およびＩＰＴ－４ドメインを含む。

好ましい一実施態様では、ヒトＭｅｔの細胞外部分は、配列番号１３に示されるアミノ酸配列を有し、ここで、配列番号１３の７９７位と８７５位の間のアミノ酸の少なくとも１つは、抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントがそれに結合するのを防ぐために突然変異されている。

より好ましい一実施態様では、ヒトＭｅｔの細胞外部分は、配列番号１４に示されるアミノ酸配列を有する。

本明細書はまた、安定した様式で肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）に結合することが可能であって、抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントによって認識されるエピトープにおいて、抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントがそれに結合するのを防ぐための少なくとも１つのアミノ酸突然変異を含んでいる、ヒトＭｅｔの細胞外部分をコードする核酸分子に関し、好ましくは、ヒトＭｅｔの細胞外部分は、配列番号１４に示されるアミノ酸配列を有する。

本明細書において用いられる表現「ヒトＭｅｔの細胞外部分は、安定した様式でヒトＨＧＦに結合することが可能」とは、ヒトＭｅｔの細胞外部分が、１００ｎＭよりも高くない計算されたＫｄでＨＧＦに結合することを意味する。

本明細書において用いられる表現「ヒトＭｅｔの細胞外部分は、抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントによって認識されるエピトープにおいて、少なくとも１つのアミノ酸突然変異を含む」とは、抗－Ｍｅｔ抗体可変ドメインによる上記領域の結合を防ぐＭｅｔの細胞外部分内の改変を誘導することが可能な、Ｍｅｔの細胞外部分内の１つまたは複数の突然変異（すなわちアミノ酸置換および／または欠失および／または挿入）の存在を意味する。当業者は、その共通の一般的知識（例えば（ｉ．ａ．）ＤＮＡ複製中に特異的プライマーを用いて所定のＤＮＡ配列内に単一ヌクレオチドの変更を含んでいるｃＤＮＡを産生する可能性によって示される；Ｍａｎｉａｔｉｓ Ｔ．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｍａｎｕａｌ Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，１９８２を参照）を考慮して、ヒトＨＧＦに結合する能力は維持しているが抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントに結合する能力は維持していないヒトＭｅｔの細胞外部分の突然変異型の認識についてさらなる詳細を必要としない。したがって、当業者は、共通の一般的知識を考慮して、抗－Ｍｅｔ抗体が結合するのを防ぐ、配列番号１３を有しているヒトＭｅｔの細胞外部分のさらなる突然変異バージョンを生産することができるので、本発明は、本明細書において開示されるヒトＭｅｔの突然変異した細胞外部分（すなわち配列番号１４）のみを包含していると解釈されるべきでない。

用語「ＳＥＭＡ」、「ＰＳＩ」、「ＩＰＴ－１」、「ＩＰＴ－２」、「ＩＰＴ－３」および「ＩＰＴ－４」は、Ｍｅｔの細胞外領域を構成しているＭｅｔドメインを指す。かかるドメインの名称は、例えば（ｉ．ａ．）^{２３、２４}によって示されるように、当業者の共通の一般的知識に属している。ＳＥＭＡドメインは、セマフォリンおよびプレキシンに共通したタンパク質相互作用モジュールであり、Ｍｅｔ（配列番号１３）のアミノ酸２５～５１６の間に含まれる領域を包含していて；ＰＳＩは、プレキシン、セマフォリン、およびインテグリンに共通したドメインであり、Ｍｅｔ（配列番号１３）のアミノ酸５１９～５６１の間に含まれる領域を包含していて；ＩＰＴドメイン－４回繰り返し－は、プレキシンおよび転写因子に共通した免疫グロブリン様領域であり、ＭＥＴ（配列番号１３）のアミノ酸５６３～９３４の間に含まれる領域を包含している。詳しくは、ＩＰＴリピート１は配列番号１３のアミノ酸５６３位～６５６位をカバーし、ＩＰＴリピート２は配列番号１３のアミノ酸６５７位～７４０位をカバーし、ＩＰＴリピート３は配列番号１３のアミノ酸７４１位～８３７位をカバーし、ＩＰＴリピート４は配列番号１３のアミノ酸８３８位～９３４位をカバーする。

本発明はさらに、腫瘍および／または転移を患っている患者の治療における使用のための、本明細書において開示される抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントの治療的使用に関し、本明細書において開示されるヒトＭｅｔの細胞外部分と組み合わせてもよく、ここで、患者はＭＥＴ遺伝子の遺伝子変異を保有している。

本発明はさらに、腫瘍および／または転移を患っている患者の治療における使用のための、本明細書において開示されるヒトＭｅｔの細胞外部分と組み合わせた本明細書において開示される抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントの治療的使用に関し、ここで、患者は、野生型ＭＥＴ遺伝子を保有している。

一態様では、本発明は、対象における腫瘍および／または転移を治療する方法を提供し、前記方法は、有効量の抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント（ヒトＭｅｔの細胞外部分と組み合わせてもよい）の対象への投与を含み、それにより、前記症状が治療される。

一態様では、本発明は、Ｍｅｔを発現する細胞の増殖を阻害する方法を提供し、前記方法は、前記細胞を、本明細書において開示される抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント（本発明のヒトＭｅｔの細胞外部分と組み合わせてもよい）と接触させるステップを含み、それにより、前記細胞の増殖の阻害を生じさせる。

一態様では、本発明は、がん性腫瘍および／または転移を有する哺乳類を治療的に処置する方法を提供し、前記方法は、有効量の本明細書において開示される抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント（ヒトＭｅｔの細胞外部分と組み合わせてもよい）の前記哺乳類への投与を含み、それにより、前記哺乳類を効果的に処置する。

一態様では、本発明は、細胞増殖性障害を治療する方法を提供し、前記方法は、かかる治療を必要とする対象への、有効量の本開示の抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント対象物（ｏｂｊｅｃｔ）（ヒトＭｅｔの細胞外部分と組み合わせてもよい）の投与を含み、それにより、前記細胞増殖性障害を効果的に治療または予防する。

一態様では、本発明は、哺乳類における腫瘍および／または転移を治療的に処置する方法を提供し、ここで、前記腫瘍の増殖は、細胞増殖の増加、アポトーシスからの保護のいずれかまたはその両方の結果として、Ｍｅｔ／ＨＧＦ系の増殖増強効果に少なくとも部分的に依存している。前記方法は、腫瘍細胞を、有効量の抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント（有効量の本発明のヒトＭｅｔの細胞外部分と組み合わせてもよい）と接触させるステップを含み、それにより、前記腫瘍および／または転移を効果的に治療する。

抗－Ｍｅｔ抗体（ヒトＭｅｔの細胞外部分と組み合わせてもよい）を用いて効果的に治療することのできる腫瘍は、胸部、結腸直腸、肺、結腸、膵臓、前立腺、卵巣、頸部、中枢神経系、腎臓、肝細胞、膀胱、胃、頭頚部の腫瘍細胞、乳頭がん（例えば甲状腺）、黒色腫、リンパ腫、骨髄腫、神経膠腫／膠芽腫（例えば未分化星状細胞腫、多形性膠芽腫、退形成性乏突起神経膠腫、退形成性乏突起星状細胞腫（ａｎａｐｌａｓｔｉｃ ｏｌｉｇｏｄｅｎｄｒｏａｓｔｒｏｃｙｔｏｍａ））、白血病細胞、肉腫、横紋筋肉腫、または、未知の原発性がん（ＣＵＰ）由来の腫瘍から選択される。

一実施態様では、本発明の方法において治療的に標的化される細胞は、過剰増殖性および／または過形成性の細胞である。一実施態様では、本発明の方法において標的化される細胞は、形成異常細胞である。さらに別の実施態様では、本発明の方法において標的化される細胞は、転移細胞である。さらなる一実施態様では、本発明の方法において標的化される細胞は、腫瘍および／または転移を維持している微小環境に属するＭｅｔ発現細胞である。

本発明者らは、１本アーム構造（ＣＨ３ドメインの選択された点突然変異によって得られ、効率的なＦｃヘテロ二量体化をもたらす）が、抗体を一価形態にさせることを示した。

一価性（Ｍｏｎｏｖａｌｅｎｃｙ）は、抗体の二価の本来の構造に起因するＤＮ３０の結果として生じるアゴニスト活性を避けるために必須である。

予期せず、驚くべきことに、本発明者らは、ＤＮ３０のヒト化１本アーム形式の１つ（すなわちｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８）が、インビトロおよびインビボで強い阻害特性を示すことを発見した。

インビトロで、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、対応するキメラ形態（以下「ｃｈＯＡ－ＤＮ３０」と命名する）および本明細書において開示される全ての他のヒト化１本アーム誘導体（「ｈＯＡ－ＤＮ３０抗体」と命名する）と比較して優れた活性を示す（ＤＮ３０に由来する全ての１本アーム抗体の詳細な説明については材料および方法のセクションを参照）。予期せず、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、他の試験されたＯＡ－ＤＮ３０抗体（キメラまたはヒト）と比較して、より高い親和性でＭｅｔに結合する。予期され得ないことに、本発明者らは、シェディング応答が、Ｍｅｔに関するＤＮ３０抗体の親和性を増大させることによって増強されることを見いだした。その結果として、リン酸化Ｍｅｔ受容体の量として測定されるＭｅｔ活性化の阻害は、より強かった。これらの活性は、Ｍｅｔが介在する生物学的応答の抑制に換算される。ＭＥＴ依存性の腫瘍細胞増殖の欠陥（ｉｍｐａｉｒｍｅｎｔ）は、非常に少ない用量で生じ；ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８ ＩＣ_５０は、分析に含まれたＯＡ－ＤＮ３０抗体（キメラまたはヒト）に関して測定されたもの全てのうち最も低い。腫瘍細胞増殖のより良好な阻害は、細胞増殖のより広範囲のブロック、および／または細胞毒性のより顕著な増加に起因し得る。

ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、インビボにおいても改善された治療可能性を示す。このことは、ＭｖＤＮ３０（低分子量であることに起因して高い腎臓クリアランスに供される分子）と比較すれば予想されることである。ＭｖＤＮ３０の低い薬物動態特性は、インビボ実験モデルにおける分子の能力にかなり影響する。

腎臓クリアランスのカットオフよりも高い分子量に到達することが、それ自体で、最も良い治療的応答を誘発するのに十分であると考える人がいるかもしれないが、そうではない。実際に、ＤＮ３０ ｍＡｂのＤＣＤ－１およびＤＣＤ－２誘導体－ＭｖＤＮ３０に対して増大したサイズを有する組み換え分子－を用いて得られた結果は、薬物動態プロファイルは部分的に改善するだけであること、および、治療的応答は腫瘍増殖速度の減少に制限されることを明らかに示している^８。

ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８の優れた活性は、Ｆｃ受容体への結合に起因して抗体の組織／臓器分布における違いを生じさせ、したがって非常に好ましい薬物動態プロファイルを与える、Ｆｃ領域の存在に部分的に起因し得る。

Ｆｃ領域の存在に起因するインビボ安定性に関するポジティブな態様は、既に議論されていて、オナルツズマブの出願中に開示されている。これは、１本アーム形式で設計された抗－Ｍｅｔ抗体である^２５。それにもかかわらず、この抗体は細菌において産生され、したがって、グリコシル化されない。その結果として、それは、抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）および／または補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）を活性化する能力がない。それとは対照的に、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、哺乳類細胞において産生され、したがって、Ｆｃエフェクター機能を誘発することが十分に可能であると考えられるはずである。

ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、オナルツズマブとは作用機序に関しても異なる。１つめの抗体は、Ｍｅｔ受容体シェディングを誘導し、Ｍｅｔを細胞表面から取り除いて、細胞外環境内のＨＧＦを吸い取るが、２つめの抗体は、Ｍｅｔ結合に関してＨＧＦと競合する。結果として、ｈＯＡ－ＤＮ３０は、腫瘍受容体の異常な活性化を維持するメカニズムとは独立にＭｅｔを阻害するが、オナルツズマブは、リガンド依存性活性化の場合にのみ効果的である。

Ｆｃ領域の存在は、このドメインは試験された全てのヒト化およびキメラ１本アーム抗体に存在するので、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８によって得られるインビボでの治療的応答の著しい改善の要因とはなり得ない。ヒト化およびキメラ１本アーム抗体が共有していないものは可変領域であり、そこには、抗体の結合部位が存在する。特に、ＤＮ３０ ＣＤＲ－全ての誘導体において同一－は、フレーム領域内に挿入されている。抗体のこれらの部分は、たとえ結合ポケットの形成に直接関与しないとしても、バーニヤゾーン残基^２６と呼ばれる特定のアミノ酸を含み、ＣＤＲ構造の最終的なコンフォメーションに影響し得て、したがって、抗原に関する抗体の最終的な親和性を決定し得る。ｃｌ０３Ｅ０８の、フレーム配列と組み合わせたＤＮ３０ ＣＤＲ（すなわち、重鎖および軽鎖可変ドメインの配列）は、おそらくその配列の組み合わせはＭｅｔ受容体上の対応するエピトープとより良好にフィットする結合ポケットを産生するので、より強い親和性を有する抗－Ｍｅｔ抗体を生じさせる。抗体とＭｅｔの間のより強固な相互作用は、受容体のシェディングおよびＭｅｔが介在する生物学的応答のその後の欠陥（ｉｍｐａｉｒｍｅｎｔ）をさらに実行する。このことは、１本アーム形式に起因する改善された血漿安定性と組み合わせて、ＭＥＴ依存性／駆動性がんに対して予期せぬ優れた活性を有する抗体－すなわちｃｌ０３Ｅ０８－を生じさせる。

Ｂａｓｉｌｉｃｏ ｅｔ ａｌ．^２７において報告されるデータは、ＨＧＦおよびＭｅｔの両方の同時性の標的化は、腫瘍および／または転移の治療においてより高い治療的ロバスト性を生じさせることを示す。本明細書において証明される実験的データは、予期せずに、ＤｅｃｏｙＭｅｔ^{Ｋ８４２Ｅ}と組み合わせてｈＯＡ－ＤＮ３０を用いたＭＥＴ／ＨＧＦ軸の阻害が、ＤｅｃｏｙＭｅｔ^{Ｋ８４２Ｅ}と組み合わせたＭｖＤＮ３０の適用で得られる阻害よりも優れていることを示している。実際に、浸潤アッセイにおいて得られた結果（本明細書中、図９において報告される）を、Ｂａｓｉｌｉｃｏ ｅｔａｌ．^２７において公表された結果と比較すると、ｈＯＡ－ＤＮ３０は、がん細胞のＨＧＦ駆動性の浸潤を抑制し、一方で、ＭｖＤＮ３０が組み合わせの一部である場合は、残りの活性はまだなお存在する。

ＭＥＴ遺伝子変異を伴わないがん細胞は、低酸素状態、電離放射線または化学療法のようなストレス状態に応答して、悪性表現型をブーストして浸潤性転移表現型の制限をなくす（ｕｎｌｅａｓｈ）「好都合性（ｅｘｐｅｄｉｅｎｔ）」として、ＭＥＴがん遺伝子によってトリガーされる「生理学的」プログラムを利用する。「好都合性（Ｅｘｐｅｄｉｅｎｃｅ）」は、そのリガンドＨＧＦによる野生型ＭＥＴの刺激を必要とする。本明細書において提供されるデータは、ＭＥＴ「好都合性」の状態において、ＭＥＴ／ＨＧＦ軸の両側を攻撃する同時性の介入が、阻害活性の改善をもたらすことを示す。ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、外部ドメインの「シェディング」により細胞表面からＭＥＴの物理的除去を誘導する。後者は、細胞外環境において放出され、ＨＧＦに関する「デコイ」として作用する。組み換えＤｅｃｏｙＭｅｔの外因的な供給は、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８によって生産される内因性ＤｅｃｏｙＭｅｔのＨＧＦ隔離活性を強化する。ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８とＤｅｃｏｙＭｅｔ^{Ｋ８４２Ｅ}の組み合わせは、Ｍｅｔ発現がん細胞およびＨＧＦ分泌腫瘍間質に対して同時に作用する。このことは、ＨＧＦ駆動性のＭｅｔシグナル伝達の最適なブロックを可能にし、したがって、浸潤性／転移表現型を維持するためにＭＥＴに依拠する野生型ＭＥＴを発現している腫瘍を保有する患者の大きなコホートに関する信頼できる治療的選択肢を示す。

本明細書において開示されるタンパク質（例えば（ｉ．ａ．）ヒト化抗－Ｍｅｔ抗体およびヒトＭｅｔの細胞外部分）は、例えば（ｉ．ａ．）、Ｍａｎｉａｔｉｓ Ｔ．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｍａｎｕａｌ Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ（１９８２）によって示されるように、組み換えＤＮＡ技術に関する分野の共通の一般的知識を考慮して当業者によって、タンパク質の形態またはタンパク質をコードする核酸分子の形態のいずれかで簡単に製造され得る。例えば、以下の標準的な手順：（ｉ）対応するｃＤＮＡ配列の合成、（ｉｉ）従来の組み換えＤＮＡ方法による哺乳類における発現に適切なプラスミド内へのｃＤＮＡの挿入、（ｉｉｉ）哺乳類細胞株の上述のプラスミドを用いた一過的または安定した共トランスフェクション、（ｉｖ）培養上清の回収、（ｖ）組み換えタンパク質のアフィニティークロマトグラフィーによる精製に従ってよい。

本発明の活性成分（単数または複数）、すなわち、ヒト化抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントを、単独またはヒトＭｅｔの細胞外部分と組み合わせて含む治療的組成物は、生理的に許容できる担体、賦形剤、または安定剤（Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ １６ｔｈ ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｏｓｏｌ，Ａ．Ｅｄ．，１９８０）を用いて、水溶液、凍結乾燥、または他の乾燥された製剤の形態で調製され得る。許容できる担体、賦形剤、または安定剤は、用いられる用量および濃度でレシピエントに対して非毒性であり、バッファー；抗酸化剤；防腐剤；低分子量（約１０残基よりも小さい）ポリペプチド；タンパク質、例えば、血清アルブミン、ゼラチン、または免疫グロブリン；ポリビニルピロリドンなどの親水性ポリマー；アミノ酸；単糖類、二糖類、および他の炭水化物；キレート剤；糖類；塩形成対イオン；金属複合体および／または非イオン性界面活性剤を含む。製剤は、必要に応じて、治療される特定の適応症のための他の活性の化合物（単数または複数）、好ましくは、ｈＯＡ－ＤＮ３０単独またはヒトＭｅｔの細胞外部分と組み合わせた治療的活性に負の影響を及ぼさない相補活性を有するものを含んでもよい。かかる分子は、意図する目的に効果的な量の組み合わせで適切に存在する。

活性成分（単数または複数）は、例えば（ｉ．ａ．）Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ １６ｔｈ ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｏｓｏｌ，Ａ．Ｅｄ．（１９８０）に開示される技術を用いて調製されるマイクロカプセル内に封入されてもよい。

徐放性製剤が調製されてもよい。徐放製剤の適切な例は、本発明の活性成分を含んでいる固形疎水性ポリマーの半透性マトリックスを含み、そのマトリックスは、成形品、例えばフィルム、またはマイクロカプセルの形態である。

本発明の活性成分（単数または複数）は、単独で、または、他の抗体、小分子チロシンキナーゼ阻害剤、化学療法剤（単数または複数）（化学療法剤のカクテルを含む）、他の細胞傷害剤（単数または複数）、抗－血管新生剤（単数または複数）、サイトカイン、および／または、増殖阻害剤（単数または複数）と組み合わせて用いられ得る。上記のような組み合わせの治療は、組み合わせの投与（２以上の薬剤が同一または別個の製剤内に含まれる）、および別個の投与（その場合、ｈＯＡ－ＤＮ３０の投与は補助療法または治療の投与の前および／または後に生じてよい）を含む。

本発明の活性成分（単数または複数）（および補助の治療的薬剤（単数または複数））は、非経口、皮下、腹腔内、肺内、および鼻腔内を含む任意の適切な手段によって投与され、局所治療のために所望されるならば病巣内投与される。本発明の活性成分（単数または複数）は、パルスインフュージョンによって、特に、減少する用量の活性成分を用いて、適切に投与され得る。投与は、投与が短期または慢性であるかどうかに部分的に依存して、任意の適切な経路、例えば、静脈内注入または皮下注入によるものであってよい。

本発明の活性成分（単数または複数）は、適した医療行為と一貫した様式で処方され、投薬され、および投与される。このコンテキストにおいて考慮される因子は、治療される特定の障害、治療される特定の哺乳類、個々の患者の臨床状態、障害の原因、薬剤の送達部位、投与方法、投与スケジュール、および、医師に公知の他の因子を含む。本発明の活性成分（単数または複数）は、問題となっている障害を予防または治療するために現在のところ用いられる１つまたは複数の薬剤とともに処方される必要はないが、処方されてもよい。かかる他の薬剤の有効量は、製剤内に存在する本発明の活性成分（単数または複数）の量、障害または治療のタイプ、および、上述の他の因子に依存する。これらは一般に、上記で用いられるのと同一の用量および投与経路で、または従前に用いられている用量の約１～９９％で用いられる。

疾患の治療のために、本発明の活性成分（単数または複数）の適切な用量は（単独で、または他の薬剤（単数または複数）、例えば化学療法剤（単数または複数）と組み合わせて用いられる場合）、治療される疾患のタイプ、疾患の重症度および経過、活性成分が予防的または治療的な目的で投与されるのかどうかに依存し、患者の病歴および本発明の活性成分に対する応答を正当に考慮し、主治医の裁量である。

ｈＯＡ－ＤＮ３０は、１度に、または一連の治療にわたって患者に適切に投与される。疾患のタイプおよび重症度に応じて、約１ｍｇ／ｋｇ～３０ｍｇ／ｋｇの抗体が、例えば、１または複数の別個の投与によるにしても、または連続的インフュージョンによるにしても、患者への投与に関する最初の候補用量である。１つの典型的な毎日の用量は、上述の因子に応じて、約１μｇ／ｋｇ～１００ｍｇ／ｋｇの範囲またはそれよりも多い。数日またはより長くにわたる繰り返しの投与に関しては、症状に応じて、疾患症候の所望の抑制が生じるまで治療が維持される。抗体フラグメントの１つの例示的な用量は、約０．０５ｍｇ／ｋｇ～約２０ｍｇ／ｋｇの範囲内である。したがって、約０．５ｍｇ／ｋｇ、２．０ｍｇ／ｋｇ、４．０ｍｇ／ｋｇまたは１０ｍｇ／ｋｇ（またはそれらの任意の組み合わせ）の１以上の用量が、患者に投与されてよい。かかる用量は、間欠的に、例えば毎週または３週ごとに（例えば、約２～約２０、例えば約６の用量の抗体を患者が受け取るように）、投与されてよい。最初のより高い負荷投与量の後に、１以上のより低い用量が投与されてよい。例示的な投与レジメンは、約４ｍｇ／ｋｇの最初の負荷投与量の後に、約２ｍｇ／ｋｇの抗体の毎週の維持投与量を含む。しかしながら、他の投与レジメが有用であり得る。この療法の経過は、従来の技術およびアッセイによって簡単にモニターされる。併用療法に関して、ヒトＭｅｔの細胞外部分は、好ましくは、ｈＯＡ－ＤＮ３０と同時に送達され、疾患のタイプおよび重症度に応じて、優先的に、制限されないが、モル比１：１のｈＯＡ－ＤＮ３０：ＤｅｃｏｙＭｅｔ^{Ｋ８４２Ｅ}で、ｈＯＡ－ＤＮ３０と比例して投与される。

結果
ＤＮ３０抗体のキメラおよびヒト化１本アーム形式の作製。
古典的な分子生物学技術によって、本発明者らは、ＤＮ３０ ｍＡｂ重鎖および軽鎖の定常ドメインを、ヒト免疫グロブリンに由来する定常ドメインで置換した。軽鎖定常ドメインをヒトκタイプのドメイン（天然ヒト抗体においてより代表的なもの）で置換して、重鎖定常ドメインをヒトＩｇＧ１に由来する相同ドメイン（ＡＤＣＣ／ＣＤＣを誘導することのできるもの）で置換した。

ＤＮ３０マウス抗体のヒト化は、ファージディスプレイライブラリー手法を用いてＦａｉｒ Ｊｏｕｒｎｅｙ Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓによって行なった。それらは、利用可能なツールおよびデータベース：ａｂＹｓｉｓｔｏｏｌ（ＵＣＬのＤｒ．Ａｎｄｒｅｗ Ｍａｒｔｉｎ）プラス、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｂｉｏｃ．ｕｚｈ．ｃｈ／ｐｌｕｅｃｋｔｈｕｎ／ａｎｔｉｂｏｄｙ／およびｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ２．ｍｒｃ－ｌｍｂ．ｃａｍ．ａｃ．ｕｋ／ｖｂａｓｅ／を用いて、逸脱する（ｄｅｖｉａｔｉｎｇ）ＦＲ（フレーム）残基の同定および最も近いヒトＶ生殖細胞系の分析（ＣＤＲ１－ＣＤＲ２に関する同一の規準的な折りたたみの組み合わせ（ｃａｎｏｎｉｃａｌ ｆｏｌｄ ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ）を有する生殖細胞系から選択される）から始めた。ファージディスプレイライブラリーの作製の際（その際、ＶＨおよびＶＬ領域のランダム化が行なわれた）、４回の親和性－駆動性ファージディスプレイの選択ラウンドが行なわれた。プロセスの最後に、最も高いヒト同一性および相同性を有するＤＮ３０ヒト化変異を選択した。可変領域を、古典的な分子生物学技術によって、ヒト免疫グロブリン由来の定常ドメイン配列、すなわちヒトκ軽鎖およびＩｇＧ１重鎖定常ドメインに連結させた。

キメラおよびヒト化抗体を１本アームの単一鎖形態にフォーマットする（ｆｏｒｍａｔ）ために、特定のアミノ酸改変をＣＨ３領域内に挿入して、「ノブ・イントゥー・ホール」構造^{２８、２９}を生産した；一方のＣＨ３ドメインはノブ突然変異：^３８９Ｔ→Ｗを保有し、他方のＣＨ３ドメインはホール突然変異：^３８９Ｔ→Ｓ；^３９１Ｌ→Ａ；^４３８Ｙ→Ｖを保有する。キメラまたはヒト化軽鎖、キメラまたはヒト化重鎖（ＣＨ３ドメインにおいて突然変異）、および、ヒトＦｃドメイン（ＣＨ３ドメインにおいて突然変異）をコードするｃＤＮＡを、発現プラスミド内にクローニングして、それから、真核生物細胞内に発現させた。アセンブルした１本アーム抗体を、細胞培養上清からアフィニティークロマトグラフィーおよびゲル濾過によって精製した。図１は、ＤＮ３０誘導体の略図および精製された組み換えＯＡ－ＤＮ３０分子の非還元および還元条件下でのＳＤＳ－Ｐａｇｅ分離を示す。

ＤＮ３０ １本アーム抗体は、高い親和性でＭｅｔを認識する。
キメラまたはヒト化ＤＮ３０抗体の精製された１本アーム形態を、ＥＬＩＳＡアッセイによって、Ｍｅｔ受容体に対する結合に関して分析した。参照として、キメラＤＮ３０ Ｆａｂ（ＭｖＤＮ３０）^１２を分析に含めた。固相中にＭｅｔ－Ｆｃおよび液相中にＤＮ３０誘導体を含むようにアッセイをアセンブルした。抗－ヒトｋ鎖抗体を用いて結合を明らかにした。データは、キメラおよびヒト化抗体の両方ともＭｅｔに結合することを示し、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８が最も高い親和性を示した（図２Ａ）。

非ヒトＭｅｔ受容体とのｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８の交差反応性の分析。
本発明者らは、（ｉ）ヒト、マウス、ラット、およびサル起源の精製されたＭｅｔ細胞外ドメインを用いたＥＬＩＳＡアッセイ（図２Ｂ）；（ｉｉ）ヒト、マウス、ラット、イヌおよびサル起源の細胞によって発現された表面Ｍｅｔに結合する抗体のフローサイトメーター分析（図２Ｃ）を行ない、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８の種交差反応性を分析した。実験結果は、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８が、ヒト、ラット、イヌ、サル起源のＭｅｔに結合するが、マウスＭｅｔとの相互作用は非常に弱いことを示した。

ＤＮ３０ １本アーム抗体は、アゴニスト特性を発揮しない。
本発明者らは、新規のＤＮ３０誘導体が、高感度のアッセイである分散アッセイにおいてＭｅｔアゴニスト活性を示すことができるかどうか試験した。ＨＧＦ刺激に応答する細胞運動を判定するための標準的な系を代表するＨＰＡＦ－ＩＩヒト膵臓癌腫細胞を、増加する濃度の抗体を用いて２４時間刺激した。陽性コントロールとして、ＨＧＦおよび二価ＤＮ３０ ｍＡｂをアッセイに含めた。陽性コントロールを用いて刺激された細胞は明らかに分散したが、一価ＤＮ３０誘導体（ＭｖＤＮ３０、ｃｈＯＡ－ＤＮ３０、およびｈＯＡ－ＤＮ３０抗体）で処理した細胞の表現型は全て、未処理のものから区別できなかった（図３）。

ｈＯＡ－ＤＮ３０は、Ｍｅｔ「シェディング」を強く誘導する。
また、本発明者らは、ｈＯＡ－ＤＮ３０が、受容体シェディングおよび下方調節を促進する能力を維持するかどうか試験した。Ａ５４９細胞を、増加する濃度のｃｈＯＡ－ＤＮ３０およびｈＯＡ－ＤＮ３０抗体とともにインキュベートした。参照として、ＭｖＤＮ３０をアッセイに含めた。４８時間後、馴化培地内に放出されたＭｅｔ外部ドメインを、Ｍｅｔの細胞外部分に対して向けられるモノクローナル抗体を用いた免疫ブロッティングによってスコア化した。また、Ｍｅｔの全細胞レベルを、同一抗体を用いて細胞溶解物に対して決定した。この分析により、全てのＯＡ－ＤＮ３０抗体がＭｅｔシェディングを誘導し、細胞外空間における可溶性Ｍｅｔ外部ドメインの放出をもたらし、細胞表面からＭｅｔを物理的に除去することが明らかにされた（図４）。予期せずに、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８の活性は、試験に含められた全ての他のＤＮ３０誘導体と比較して優れていた。

ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、Ｍｅｔリン酸化を強く阻害する。
本発明者らは、ｃｈＯＡ－ＤＮ３０およびｈＯＡ－ＤＮ３０抗体が、ヒト癌腫に由来する細胞（すなわちＧＴＬ－１６）においてＭｅｔリン酸化を阻害するかどうか試験した。これらの細胞は、遺伝子増幅に起因する受容体過剰発現の結果として構成的に活性のＭｅｔを有する。Ｍｅｔ活性化を、抗－ｐｈｏｓｐｈｏＭｅｔ抗体を用いた免疫ブロッティングによって判定した。図５に示されるように、全ての分子が、用量応答モダリティでＭｅｔリン酸化／活性化を損なった。ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、細胞においてＭｅｔレベルの最も強い欠陥（ｉｍｐａｉｒｍｅｎｔ）を誘導し、より活性のＤＮ３０誘導体であった。

ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、ＭＥＴ依存性細胞増殖を強力に阻害する。
細胞増殖（生存能力）は、増殖／生存のためにＭｅｔシグナル伝達に頼っているＭＥＴ依存性細胞においてのみ、Ｍｅｔ－阻害剤によって損なわれ得る。ＤＮ３０誘導体の活性を試験するために、指数関数的に増殖しているＧＴＬ－１６細胞（ＭＥＴ依存性ヒト胃癌腫細胞）を、増加する濃度のｃｈＯＡ－ＤＮ３０またはｈＯＡ－ＤＮ３０抗体とともにインキュベートした。ＭｖＤＮ３０を陽性コントロールとしてアッセイ内に含めた。７２時間後、細胞生存能力を、発光に基づくＡＴＰアッセイを用いて判定した。全てのＤＮ３０誘導体は、ＭＥＴ依存性細胞増殖を用量依存的な様式で阻害した（図６）。ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、最も高い阻害を示し、ＩＣ_５０は、ＭｖＤＮ３０よりも２．５倍低く、ｃｈＯＡ－ＤＮ３０よりも５．４倍低く、他のｈＯＡ－ＤＮ３０抗体よりも少なくとも５．２倍低かった（図６の表を参照）。

ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、ＭＥＴ依存性細胞における増殖のブロックおよび細胞毒性の誘導に非常に効果的である。
ＤＮ３０誘導体によって発揮されるＭＥＴ依存性細胞増殖の阻害を強調する（ｕｎｄｅｒｌｉｎｉｎｇ）メカニズムをさらに分析するために、本発明者らは、ＭｖＤＮ３０、ｃｈＯＡ－ＤＮ３０、およびｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８と比較して、細胞増殖および細胞毒性を評価した。ＧＴＬ－１６細胞を、単回投与（１μＭ）のＤＮ３０誘導体でインキュベートして、細胞周期Ｓ相中の細胞によるＥｄＵ－チミジンアナログ－の取り込みを、ＣｌｉｃｋＩＴ Ｅｄｕフローサイトメトリーアッセイを用いて測定することによって、細胞増殖を評価した。ＭｖＤＮ３０を陽性コントロールとしてアッセイに含めた。この分析は、Ｓ相の処理された細胞のパーセンテージがコントロールと比較して劇的に減少したので、ＤＮ３０誘導体が増殖に影響を及ぼすことが明らかになった。特に、最も効果的な分子はｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８であり、増殖している細胞はたった４．９％であった（コントロールに対して８４．２％減少）。ｃｈＯＡ－ＤＮ３０を用いて処理された集団における増殖性細胞は１４．９７％であった（コントロールに対して５２％減少）（図７Ａ）。

ＤＮ３０誘導体が、増殖のブロックのみを誘導したのか、または、細胞毒性も生じさせたのかを試験するために、指数関数的に増殖しているＭＥＴ依存性ＧＴＬ－１６細胞を、増加する濃度のｃｈＯＡ－ＤＮ３０またはｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８とともにインキュベートした。ＭｖＤＮ３０を陽性コントロールとしてアッセイに含めた。７２時間時間後、ＣｅｌｌＴｏｘ（商標）グリーン色素を細胞に添加して、死滅細胞の数に直接比例する細胞の蛍光を測定することによって細胞毒性を判定した。全てのＤＮ３０誘導体が、ＧＴＬ－１６細胞において用量依存的な様式で細胞毒性を誘導した（図７Ｂ）。ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８が最も高い誘導を示し、ＥＣ_５０は、ＭｖＤＮ３０およびｃｈＯＡ－ＤＮ３０と比較してそれぞれ１．３倍および６．１倍低かった。

ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、ＨＧＦによって誘導される細胞運動を、単独およびＤｅｃｏｙＭｅｔと組み合わせて阻害する。
本発明者らは、ＨＰＡＦ－ＩＩヒト膵臓癌腫細胞のＨＧＦ－依存性の細胞運動をｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８が阻害する能力を試験した。細胞を、ＨＧＦとインキュベートし、またはインキュベートせずに、増大する用量のｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８を用いて処理した。２４時間後、細胞コロニーを染色して分析した。このアッセイにおいて、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、ＨＧＦ依存性の細胞散乱を強く減少させた（図８）。

上記の細胞系において、ＨＧＦによって誘導される生物学的応答のより効果的な阻害が、リガンド（ＨＧＦ）および受容体（Ｍｅｔ）を同時性にブロックすることによって達成され得ることが報告されている^２７。本発明者らは、したがって、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８が、ＤｅｃｏｙＭｅｔ^{Ｋ８４２Ｅ}と組み合わせて、より高い治療的応答を誘導するかどうか試験した。ＤｅｃｏｙＭｅｔ^{Ｋ８４２Ｅ}は、ＤＮ３０との相互作用を消失させる突然変異を保有しているＭｅｔの細胞外領域全体を包含している組み換え可溶性受容体であり；それは、ＨＧＦと高い親和性で結合して、そして、ＨＧＦを吸い取って中和することにより、および、細胞表面上にまだ存在する無傷のＭｅｔ受容体とヘテロ二量体を形成してそれらを不活性にさせることにより、リガンド－駆動性の生物学的活性を阻害する。等モル量の２分子を組み合わせると、分散表現型を完全に復帰させる効果的な用量は、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８が単独で同様の細胞表現型を誘発することが可能な用量よりも、４倍低かった（図８）。

ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、ＨＧＦによって誘導される細胞浸潤を、単独およびＤｅｃｏｙＭｅｔと組み合わせて阻害する。
本発明者らは、ＨＰＡＦ－ＩＩ細胞のＨＧＦ依存性の細胞浸潤をｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８が阻害する能力を試験した。ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８（０．５μＭ）を単独またはＤｅｃｏｙＭｅｔ^{Ｋ８４２Ｅ}（１μＭ）と組み合わせて含む血清フリー培地中、マトリゲルでコーティングされたトランスウェルフィルターの上側チャンバー内に細胞を蒔いた。下側チャンバーを、ＨＧＦ（２５ｎｇ／ｍｌ）を含んでいる培地で満たした。２４時間後、フィルターの下側部分に遊走している細胞を、染色および顕微鏡観察によって評価した。このアッセイにおいて、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、ＨＧＦ依存性の細胞浸潤を強く減少させて；細胞応答は、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８とＤｅｃｏｙＭｅｔ^{Ｋ８４２Ｅ}の組み合わせによってほとんど消失した（図９）。

ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、ＰＤ－Ｌ１発現のインターフェロン－γ誘導を消滅させる。
プログラム細胞死リガンド１（ＰＤ－Ｌ１）およびプログラム細胞死受容体１（ＰＤ－１）は、重要な調節分子であり、免疫応答と腫瘍微小環境の間の境界面で中心的な役割を果たす免疫チェックポイントとして知られている^３０。それらは、免疫系が腫瘍進行を制御する能力を著しく損ない得る。腫瘍細胞によるＰＤ－Ｌ１の発現は誘導性であり、インターフェロンγ（ＩＦＮγ）が最も強力な誘導因子である^３１。

本発明者らは、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８によるＭｅｔの阻害がＩＦＮγパスウェイを調節し、その結果としてＰＤ－Ｌ１を調節することができるかどうか分析した（図１０）。ＭＥＴ依存性ＧＴＬ－１６細胞をＩＮＦγで４８時間時間処理して、ＩＦＮγ誘導性のＰＤ－Ｌ１発現について分析した。無刺激条件では、ＰＤ－Ｌ１は検出不可能であったが、ＩＦＮγに暴露すると、一貫して上方調節された。ｈＯＡ－ＤＮ３０－Ｃｌ０３Ｅ０８を用いて４８時間処理すると、ＩＦＮγによって誘導されるＰＤ－Ｌ１の上方調節は著しく損なわれた。

ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、インビボで好ましい薬物動態プロファイルを示す。
本発明者らは、ＭｖＤＮ３０およびキメラＤＮ３０ ｍＡｂと比較して、ｈＯＡ－ＤＮ３０－Ｃｌ０３Ｅ０８の薬物動態特性を試験した。上述の分子の単回投与を、静脈内注入によって免疫不全マウスに送達した。処置されたマウス由来の末梢血を、送達後の異なる時点に回収した。試験分子の循環濃度を、血清サンプルに対して行なわれるＥＬＩＳＡによって決定した。ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８の循環レベルは、ｍＡｂに関して測定されるものと同等であり、常にＭｖＤＮ３０よりも高かった（図１１）。

ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、インビボでＭＥＴ－依存性腫瘍の増殖を損なわせる。
ＤＮ３０誘導体がインビボで腫瘍増殖を阻害する能力を、ＭＥＴ依存性モデルに対して試験した。１×１０^６ ＧＴＬ－１６細胞を、ＮＯＤ－ＳＣＩＤマウスの脇腹に皮下注入した。１週後、触知可能な腫瘍を保有するマウスを４つの均一な処置グループ：ビヒクル（ｎ＝６）、ＭｖＤＮ３０（ｎ＝６）、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８（ｎ＝５）、ｃｈＯＡ－ＤＮ３０（ｎ＝５）にランダム化した。抗体を、静脈内注入によって、２回／週、３０ｍｇ／Ｋｇで送達して；同量の分子を投与するために、ＭｖＤＮ３０を、１本アーム抗体の分子量はＭｖＤＮ３０に対して２倍なので、同様のスケジュールに従って１５ｍｇ／ｋｇで送達した（すなわち、ＯＡ－ＤＮ３０形式に関して約１００ＫＤａおよびＭｖＤＮ３０に関して約５０ＫＤａ）。ＭｖＤＮ３０は－その短い血漿半減期から予想されるとおり－効果的でなかったが、１本アーム誘導体は両方とも、腫瘍増殖を阻害した（図１２Ａ）（ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８およびｃｈＯＡ－ＤＮ３０に関してそれぞれ、ビヒクルに対してＰ＝０．０００７および０．０５）。驚くべきことに、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８は、ｃｈＯＡ－ＤＮ３０よりも非常に効果的であった：処置後の腫瘤（ｔｒｅａｔｅｄ ｍａｓｓｅｓ）は、コントロールよりも、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８の場合では８７．８％、ｃｈＯＡ－ＤＮ３０の場合では５２．９％小さかった（図１２Ｂ）（ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８対ｃｈＯＡ－ＤＮ３０に関してＰ＝０．００９）。本発明者らは、用量応答実験を行なってｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８の阻害活性をさらに分析した。上述の実験的条件を維持して、マウスを５つの均一なグループにランダム化して、異なる用量のｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８を用いて、３回／週、ｉ．ｖ．注入によって処置した。１０、３０、および６０ｍｇ／ｋｇの用量は、腫瘍増殖をブロックするのに非常に効果的であったが、３．３ｍｇ／ｋｇによる処置はコントロールから統計的に差がなかった（図１３）。

［材料および方法］
細胞培養
Ａ５４９ヒト肺腺がん細胞、ＨＰＡＦ－ＩＩヒト膵臓腺がん細胞、Ｃ２Ｃ１２マウス筋肉の筋芽細胞、Ｈ９Ｃ２（２－１）ラット心臓の筋芽細胞、ＭＤＣＫイヌ腎臓細胞、およびＣｏｓ－７サル腎臓細胞は、ＡＴＣＣ／ＬＧＣ Ｓｔａｎｄａｒｄｓ Ｓ．ｒ．ｌ．（Ｓｅｓｔｏ Ｓａｎ Ｇｉｏｖａｎｎｉ，Ｉｔａｌｙ）から取得した；ＧＴＬ－１６細胞株は、ＭＫＮ－４５細胞（Ｊａｐａｎｅｓｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｂｉｏｒｅｓｏｕｒｃｅｓ，Ｏｓａｋａ，Ｊａｐａｎによって利用可能なヒト胃癌腫細胞）から得られたクローンであり、親細胞株とはＭＥＴ遺伝子コピー数が異なる^３２。ＧＴＬ－１６細胞株は、Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｅｎｔｅｒ（ＡＢＣ）、Ｉｎｔｅｒｌａｂ Ｃｅｌｌ Ｌｉｎｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＩＣＬＣ）Ｉｔａｌｙによって、アクセッションナンバーＩＣＬＣ ＰＤ ０８００３で利用可能である。ＥＢＣ－１、ヒト肺がんは、Ｊａｐａｎｅｓｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｂｉｏｒｅｓｏｕｒｃｅｓ）由来である。ＤＮ３０ハイブリドーマは、Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｅｎｔｅｒ（ＡＢＣ）、Ｉｎｔｅｒｌａｂ Ｃｅｌｌ Ｌｉｎｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＩＣＬＣ）Ｉｔａｌｙによって、アクセッションナンバーＩＣＬＣ ＰＤ ０５００６で利用可能である。

全ての細胞は、供給元によって示唆されるとおりに培養した。全ての細胞培養物を、マイコプラズマ汚染について試験した。

ＤＮ３０抗体のキメラおよびヒト１本アーム形態の作製。
キメラＤＮ３０抗体について：軽鎖（ＶＬ－ＣＬ）、重鎖（ＶＨ－ＣＨ１－ｃＨ２－ＣＨ３）、およびＦｃドメイン（ＣＨ２－ＣＨ３）をそれぞれコードする３つの別個のｃＤＮＡを、遺伝子合成によって生産した。可変領域（マウス配列）はＤＮ３０抗体由来であり（配列番号１５および１６）；ヒト免疫グロブリン由来のヒト起源の定常領域、特に軽鎖は、ヒトκタイプ定常ドメイン（ＧｅｎＢａｎｋ配列番号：ＤＩ１６５９９２）を含み、重鎖はヒトＩｇＧ１定常ドメイン（ＧｅｎＢａｎｋ配列番号：ＤＪ３９２８９８）を含む。コード配列のＣ末端において、重鎖はＨｉｓ－ＴＡＧ（配列番号３８、３９）を含み、Ｆｃはｓｔｒｅｐ－ＴＡＧ（配列番号４０、４１）を含む。

ヒト化ＤＮ３０抗体について：ＤＮ３０マウス抗体の細菌株スクリーニングによるヒト化を、Ｆａｉｒ Ｊｏｕｒｎｅｙ Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓによって、ファージディスプレイライブラリー手法を用いて行なった。それらは、利用可能なツールおよびデータベース：ａｂＹｓｉｓｔｏｏｌ（ＵＣＬのＤｒ．Ａｎｄｒｅｗ Ｍａｒｔｉｎ）プラス、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｂｉｏｃ．ｕｚｈ．ｃｈ／ｐｌｕｅｃｋｔｈｕｎ／ａｎｔｉｂｏｄｙ／およびｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ２．ｍｒｃ－ｌｍｂ．ｃａｍ．ａｃ．ｕｋ／ｖｂａｓｅ／を用いて、逸脱するＦＲ（フレーム）残基の同定および最も近いヒトＶ生殖細胞系の分析（ＣＤＲ１－ＣＤＲ２に関する同一の規準的な折りたたみの組み合わせを有する生殖細胞系から選択される）から始めた。ファージディスプレイライブラリーの作製の際（その際、ＶＨおよびＶＬ領域のランダム化が行なわれた）、４の親和性－駆動性ファージディスプレイの選択ラウンドが行なわれた。プロセスの最後に、最も高いヒト同一性および相同性を有する５つの異なるＤＮ３０ヒト化変異体、すなわちクローン０３Ｅ０８、０３Ｇ０５、０３Ｆ０４、０３Ｈ０８および０４Ｈ０８を選択した。可変領域を、古典的な分子生物学技術によって、ヒト免疫グロブリン由来の定常ドメイン配列、すなわちヒトκ軽鎖およびＩｇＧ１重鎖定常ドメインに連結させた。

キメラおよびヒト化抗体の、１本アーム形態（ｃｈＯＡ－ＤＮ３０およびｈＯＡ－ＤＮ３０抗体）へのフォーマティングについて：特定のアミノ酸改変をＣＨ３領域内に挿入して、「ノブ・イントゥー・ホール」構造^{２８、２９}を生産した。「ノブ・イントゥー・ホール」は、ホモ二量体よりもヘテロ二量体の形成を増大させるための効果的な設計ストラテジーであることが示された。そのストラテジーは、ドメイン境界面の再構築に基づき、抗体ＦｃフラグメントのＣＨ３領域（ヒトＩｇＧ分子のＨ鎖間のタンパク質間相互作用の最も広範囲の部位）において、立体的に相補の突然変異を導入する。一方の鎖、ＶＨ－ＣＨ１－ＣＨ２－ＣＨ３ポリペプチドは、^３８９Ｔ→Ｗ（ノブ突然変異）を含み、小さなアミノ酸がより大きなアミノ酸によって置換されており；反対に、他方の鎖、ＣＨ２－ＣＨ３ポリペプチドは、より小さな残基による大きい残基の置換：^３８９Ｔ→Ｓ；^３９１Ｌ→Ａ；^４３８Ｙ→Ｖ（ホール突然変異）を含む。これらの突然変異は、ファージディスプレイ技術による最適化の際に選択されたものであり^３３、そこでは、残基３８９、３９１および４３８（パートナーＣＨ３ドメイン上のノブに近接している）が、ランダムに置換された。ノブ・イントゥー・ホール工学は、ホモ二量体すなわち本物の抗体（ＶＬ－ＣＬ＋ＶＨ－ＣＨ１－ＣＨ２－ＣＨ３）_２またはＦｃドメインのみ（ＣＨ２－ＣＨ３）_２の代わりに、３つの異なるアミノ酸鎖（ＶＬ－ＣＬ＋ＶＨ－ＣＨ１－ＣＨ２－ＣＨ３＋ＣＨ２－ＣＨ３）を含んでいるヘテロ二量体のアセンブリを促進する。

Ｎ末端において、ＣＨ２－ＣＨ３ポリペプチドは、トランケートされたヒトヒンジ領域に対応する配列を含む。欠失は、ＫａｂａｔのＥＵナンバリング・スキームに従って２３３位におけるシステインを除去するために必要であり、それは、軽鎖定常ドメイン（ＣＬ）のＣ末端位置におけるシステインとの鎖間ジスルフィド結合の形成に関与するものである。さらに、ＣＨ２－ＣＨ３ポリペプチドがタンパク質合成のＲＥＲ／ゴルジ体パスウェイに入るのを可能にするために－抗体の軽鎖（ＶＬ－ＣＬ）および重鎖（ＶＨ－ＣＨ１－ＣＨ２－ＣＨ３）がそうであるように－Ｎ末端において、トランケートされたヒンジ領域の前に、ＤＮ３０重鎖のシグナルペプチドに対応する配列が含められる。

本明細書において開示されるキメラ抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント（ｃｈＯＡ－ＤＮ３０）は、以下で構成される：
（ｉ）配列番号１５に示されるアミノ酸配列を有する軽鎖可変ドメイン；
（ｉｉ）配列番号１６に示されるアミノ酸配列を有する重鎖可変ドメイン；
（ｉｉｉ）配列番号９に示されるアミノ酸配列を有するヒト軽鎖定常（ＣＬ）ドメイン；
（ｉｖ）配列番号１０に示されるアミノ酸配列を有するヒト重鎖定常ＣＨ１ドメイン；
（ｖ）配列番号１１に示されるアミノ酸配列を有する第１のヒトＦｃポリペプチド；および
（ｖｉ）配列番号１２に示されるアミノ酸配列を有する第２のヒトＦｃポリペプチド。

本開示のヒト化抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント（ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８）対象物（ｏｂｊｅｃｔ）は以下で構成される：
（ｉ）配列番号７に示されるアミノ酸配列を有するヒト化軽鎖可変ドメイン；
（ｉｉ）配列番号８に示されるアミノ酸配列を有するヒト化重鎖可変ドメイン；
（ｉｉｉ）配列番号９に示されるアミノ酸配列を有するヒト軽鎖定常（ＣＬ）ドメイン；
（ｉｖ）配列番号１０に示されるアミノ酸配列を有するヒト重鎖定常ＣＨ１ドメイン；
（ｖ）配列番号１１に示されるアミノ酸配列を有する第１のヒトＦｃポリペプチド；および
（ｖｉ）配列番号１２に示されるアミノ酸配列を有する第２のヒトＦｃポリペプチド。

ヒト化抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント（ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｇ０５）は以下で構成される：
（ｉ）配列番号１７に示されるアミノ酸配列を有するヒト化軽鎖可変ドメイン；
（ｉｉ）配列番号１８に示されるアミノ酸配列を有するヒト化重鎖可変ドメイン；
（ｉｉｉ）配列番号９に示されるアミノ酸配列を有するヒト軽鎖定常（ＣＬ）ドメイン；
（ｉｖ）配列番号１０に示されるアミノ酸配列を有するヒト重鎖定常ＣＨ１ドメイン；
（ｖ）配列番号１１に示されるアミノ酸配列を有する第１のヒトＦｃポリペプチド；および
（ｖｉ）配列番号１２に示されるアミノ酸配列を有する第２のヒトＦｃポリペプチド。

ヒト化抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント（ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｆ０４）は以下で構成される：
（ｉ）配列番号１９に示されるアミノ酸配列を有するヒト化軽鎖可変ドメイン；
（ｉｉ）配列番号２０に示されるアミノ酸配列を有するヒト化重鎖可変ドメイン；
（ｉｉｉ）配列番号９に示されるアミノ酸配列を有するヒト軽鎖定常（ＣＬ）ドメイン；
（ｉｖ）配列番号１０に示されるアミノ酸配列を有するヒト重鎖定常ＣＨ１ドメイン；
（ｖ）配列番号１１に示されるアミノ酸配列を有する第１のヒトＦｃポリペプチド；および
（ｖｉ）配列番号１２に示されるアミノ酸配列を有する第２のヒトＦｃポリペプチド。

本開示のヒト化抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント（ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｈ０８）対象物（ｏｂｊｅｃｔ）は以下で構成される：
（ｉ）配列番号２１に示されるアミノ酸配列を有するヒト化軽鎖可変ドメイン；
（ｉｉ）配列番号２２に示されるアミノ酸配列を有するヒト化重鎖可変ドメイン；
（ｉｉｉ）配列番号９に示されるアミノ酸配列を有するヒト軽鎖定常（ＣＬ）ドメイン；
（ｉｖ）配列番号１０に示されるアミノ酸配列を有するヒト重鎖定常ＣＨ１ドメイン；
（ｖ）配列番号１１に示されるアミノ酸配列を有する第１のヒトＦｃポリペプチド；および
（ｖｉ）配列番号１２に示されるアミノ酸配列を有する第２のヒトＦｃポリペプチド。

本開示のヒト化抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント（ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０４Ｈ０８）対象物（ｏｂｊｅｃｔ）は以下で構成される：
（ｉ）配列番号２３に示されるアミノ酸配列を有するヒト化軽鎖可変ドメイン；
（ｉｉ）配列番号２４に示されるアミノ酸配列を有するヒト化重鎖可変ドメイン；
（ｉｉｉ）配列番号９に示されるアミノ酸配列を有するヒト軽鎖定常（ＣＬ）ドメイン；
（ｉｖ）配列番号１０に示されるアミノ酸配列を有するヒト重鎖定常ＣＨ１ドメイン；
（ｖ）配列番号１１に示されるアミノ酸配列を有する第１のヒトＦｃポリペプチド；および
（ｖｉ）配列番号１２に示されるアミノ酸配列を有する第２のヒトＦｃポリペプチド。

キメラおよびヒト１本アーム抗体の発現および精製
上述の軽鎖（ヌクレオチド配列は、ヒト化軽鎖に関して配列番号２５、２６、２７、２８、２９に示され、キメラ軽鎖に関して配列番号３０に示される）、重鎖（ヌクレオチド配列は、ヒト化重鎖に関して配列番号３１、３２、３３、３４、３５に示され、キメラ重鎖に関して配列番号３６に示される）、および、Ｆｃ（ヌクレオチド配列は、配列番号３７に示される）をコードするｃＤＮＡを、一般に利用可能な発現ベクター（例えばｐｃＤＮＡ３．１プラスミドｃａｔ．＃ Ｖ７９０２０ Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ｃａｍａｒｉｌｌｏ，ＣＡ）内にクローニングして、ＥｘｐｉＣＨＯ－Ｓ細胞（ｃａｔ．＃：Ａ２９１２７，ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）をトランスフェクトするために用いた。ベクター比は、所望の９７．５ｋＤａヘテロ二量体（ＯＡ－Ａｂ）の産出を最大にして、いかなる１５０ｋＤａ二価ホモ二量体（本物のＭａｂ）の存在も最小にするように最適化された。最適な比は、軽鎖、重鎖の全サイズ（「ノブ」ベクター）およびＦｃ（「ホール」ベクター）に関してそれぞれ１：１：２であった。この条件は、最少量のホモ二量体の存在をもたらし、ヘテロ二量体は全タンパク質のおよそ８５％であった。一過性発現を、ＥｘｐｉＦｅｃｔａｍｉｎｅ（商標）ＣＨＯトランスフェクション試薬（ｃａｔ．＃ Ａ２９１３０，ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）によって生じさせた（ｐｏｗｅｒｅｄ）。生産の９日後に上清を回収した。ＯＡ－ＤＮ３０抗体を、ＡＫＴＡ Ｐｕｒｅ ２５クロマトグラフィーシステム上のＨｉｔｒａｐ ＭａｂＳｅｌｅｃｔ Ｓｕｒｅカラム（ｃａｔ．＃ ＧＥ２９－０４９１－０４，Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ）を用いて精製した。ＯＡ－ＤＮ３０抗体をその後、０．１Ｍクエン酸バッファー（ｐＨ３．０）を用いて溶出させた。溶出画分を回収して、１Ｍ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ９．０）を用いて中和させた（溶出タンパク質１ｍｌあたり０．１５ｍｌの比で）。ＯＡ－ＤＮ３０抗体を、ＧＥ ＡＫＴＡ Ｐｒｉｍｅ Ｌｉｑｕｉｄ Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ Ｓｙｓｔｅｍ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ）上の１×ＰＢＳ（ｐＨ７．４）－平衡化Ｓｕｐｅｒｄｅｘ ２００ ２６／６００サイズの溶出カラム（ｃａｔ．＃ ＧＥ２８－９８９３－３６，Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ）に対してさらに精製して、ＯＡ－Ａｂを含む画分を、ホモ二量体画分（ｍＡｂまたはＦｃ）から分離した。ＯＡ－ＤＮ３０抗体を含む予備ＳＥＣ画分をプールして、ＳＤＳ－ＰＡＧＥによって分析して純度を確認した。プールした画分は、エンドトキシンレベルに関しても試験した。予備ＳＥＣ精製からの最終的なプール画分は、いかなる二価ホモ二量体も存在しないこと、および、ノブ－ノブＦｃホモ二量体に相当する少量（＜５％）のより小さな約７０ｋＤａのバンドの存在を示した。

突然変異Ｍｅｔ外部ドメインの作製、発現、および精製
単一アミノ酸置換を保有するヒトＭＥＴ外部ドメイン（ＤｅｃｏｙＭｅｔ）のｃＤＮＡ配列を、ＧｅｎＢａｎｋにおいて寄託番号Ｘ５４５５９で開示されるヒトＭｅｔ外部ドメイン配列からスタートして、ＱｕｉｃｋＣｈａｎｇｅ ＩＩ部位特異的突然変異誘発キット（ｃａｔ．＃ ２００５２４ Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｓａｎｔａ Ｃｌａｒａ，ＣＡ）を用いて、製造元の説明書に従って合成的に生産した。手順は、所望の点突然変異を含むセンスおよびアンチセンスオリゴヌクレオチドの設計が必要である。以下のオリゴを用いた：
－突然変異Ｋ８４２Ｅ：
ｓｎ． ５’－ｇｔａｃａｔａａｔｃｃｔｇｔｇｔｔｔｇａｇｃｃｔｔｔｔｇａａａａｇｃｃａｇｔｇ－３’（配列番号４２）；
ａｓ． ５’－ｃａｃｔｇｇｃｔｔｔｔｃａａａａｇｇｃｔｃａａａｃａｃａｇｇａｔｔａｔｇｔａｃ－３’（配列番号４３）。

改変された可溶性受容体を、ＤｅｃｏｙＭｅｔ突然変異体をコードするｃＤＮＡを発現するｐｃＤＮＡ３．１プラスミド（ｃａｔ．＃ Ｖ７９０２０ Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ｃａｍａｒｉｌｌｏ，ＣＡ）を用いたＨＥＫ－２９３Ｔ細胞の一過的トランスフェクションによって生産した。トランスフェクトされた細胞を３日間飢餓状態にさせて、可溶性受容体を含んでいる細胞培養上清を回収した。組み換えタンパク質の精製を、ＨｉｓＴｒａｐ ＨＰカラム（ｃａｔ．＃ １７５２４７０１ ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ，Ｆｒｅｉｂｕｒｇ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いたアフィニティークロマトグラフィーによって、製造元の説明書に従って行なった。大スケールのタンパク質生産および精製を、Ｕ－Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｘｐｒｅｓｓ ＢＶ（Ｕｔｒｅｃｈｔ，Ｔｈｅ Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）によって行なった。

ヒトＤｅｃｏｙＭｅｔ（ＤｅｃｏｙＭｅｔ^{Ｋ８４２Ｅ}）の変異体は、配列番号１４に示されるアミノ酸配列を有する。

ＳＤＳ－ＰＡＧＥ＋ブルークーマシーによる精製されたタンパク質の分析。
精製されたＯＡ－ＤＮ３０抗体（１μｇ）を、標準的な方法に従って、β－メルカプトエタノールの不存在下で、存在下で、ＳＤＳ－ＰＡＧＥによって４～１２％アクリルアミドの勾配ゲル内へ分離させた。分子量マーカー（ｃａｔ．＃ １６１０３７４，Ｂｉｏ－Ｒａｄ）を分析に含めた。ゲル内で分離したポリペプチドを、Ｇｅｌ Ｃｏｄｅ Ｂｌｕｅ Ｓｔａｉｎ試薬によって明らかにした（ｃａｔ．＃ ２４５９０，Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）。

ＥＬＩＳＡ結合アッセイ
ＭｅｔとＤＮ３０誘導体の間の相互作用の分析のために、精製されたＭｅｔ－Ｆｃキメラ（ｃａｔ ＃． ３５８－ＭＴ－１００ Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ，１００ｎｇ／ウェル）をＥＬＩＳＡプレート上に固定化した。３７℃で１時間、０．５％ＢＳＡのインキュベートにより飽和させた後、増加する濃度の抗体（ＭｖＤＮ３０、ｃｈＯＡ－ＤＮ３０またはｈＯＡ－ＤＮ３０抗体（ＰＢＳ－ＢＳＡ ０．５％－Ｔｗｅｅｎ０．１％中、０～５００ｎＭに調製））を液相内に添加した。結合を、ＨＲＰ－コンジュゲート抗－ヒトｋ鎖抗体（ｃａｔ．＃ Ａ７１６４，Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）を用いて、その後に、ＴＭＢ（ｃａｔ．＃ Ｔ８６６５，Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ）とのインキュベーションにより明らかにした。比色分析法を、マルチラベルプレートリーダーＶＩＣＴＯＲ－Ｘ４（Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ ＩＮＣ．，Ｗｈａｌｔｍａｎ，ＭＡ）によって定量化した。データを分析して、Ｐｒｉｓｍソフトウェア（ＧｒａｐｈＰａｄ）を用いてフィットさせた。

異なる種に由来するＭｅｔ－Ｆｃキメラ（固相）に対するｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８（液相）のＥＬＩＳＡ結合分析のために、ヒト（ｃａｔ＃． ３５８－ＭＴ－１００ Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）、ミューリン（ｃａｔ．＃ ５０６２２－Ｍ０２Ｈ，Ｓｉｎｏ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ）、ラット（ｃａｔ．＃ ８０００４－Ｒ０２Ｈ，Ｓｉｎｏ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ）、およびサル（ｃａｔ．＃ ９０３０４－Ｃ０２Ｈ、Ｓｉｎｏ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ）起源のＭｅｔをアッセイに含めた。手順は上述したものと同様であった。

フローサイトメーター結合分析
細胞の表面に発現されたＭｅｔに対するｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８結合について、２×１０^５のＥＢＣ－１、Ｃ２Ｃ１２、Ｈ９Ｃ２、ＭＤＣＫ、またはＣｏｓ－７細胞を、ＳｔｅｍＰｒｏ（商標）Ａｃｃｕｔａｓｅ（商標）細胞解離試薬（ｃａｔ．＃ Ａ１１１０５０１，ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）で処理して、回収し、ＰＢＳ－２％ ＦＣＳ中で４℃にて１時間インキュベートした。抗体染色を、ＰＢＳ－２％ ＢＳＡ中、１０μｇ／ｍｌのｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８と４℃にて３０分間、細胞をインキュベートすることによって、抗体染色を行なった。ＰＢＳ－２％ ＢＳＡを用いて６回洗浄した後、細胞を、１：１００に希釈された抗－ヒトＩｇＧ－ＡＰＣ（ｃａｔ．＃ １０９－６０６－０８８ Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏ Ｒｅｓｅａｒｃｈ）と４℃にて３０分間インキュベートして、それから洗浄して、結合しなかった抗体を除去した。ＤＡＰＩ（３μｌの１μｇ／ｍｌ使用液、Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ，ｃａｔ．＃ １０２３６２７６００１）を用いて４℃にて５分間、細胞を共染色して、Ｓｕｍｍｉｔ ４．３ソフトウェア（Ｄａｋｏ）によってＭｅｔ発現について分析した。アイソタイプコントロール（抗－ヒトＡＰＣ ＩｇＧ）に由来する蛍光シグナルを閾値（０＜ＭＦＩ＜１０^１）として設定した。細胞は、平均蛍光強度（ＭＦＩ）が閾値よりも高い場合に（ＭＦＩ＞１０^１）、Ｍｅｔ発現に関してポジティブと考えた。

Ｍｅｔシェディングの分析
サブコンフルエントなＡ５４９単層をＰＢＳで２回洗浄して、それから、増加する濃度（３７、１１１、３３３、１０００ｎＭ）のＤＮ－３０誘導体とともに血清フリー培地内でインキュベートした。４８時間後、馴化培地を回収して、Ｌａｅｍｍｌｉバッファーで細胞を溶解させた。Ｍｅｔタンパク質レベルを、抗－Ｍｅｔ抗体（３Ｄ４，ｃａｔ．＃ ０８－１３６６ Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を用いたウエスタンブロットによって１５μｇの全細胞タンパク質において決定して；ローディングコントロールとして、フィルターを抗－ビンキュリン抗体（クローンｈＶＩＮ－１，ｃａｔ．＃ Ｖ９１３１ Ｓｉｇｍａ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ）でもプローブした。Ｍｅｔ外部ドメインレベルを、受容体の細胞外ドメインに対して向けられた抗－ヒトＨＧＦＲ／Ｍｅｔ抗体（ｃａｔ．＃ ＡＦ２７６，Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）を用いたウエスタンブロッティングにより、１５μｌの細胞培養上清において決定した。抗‐マウスＩｇＧ１ ＨＲＰ－コンジュゲート二次抗体（ｃａｔ．＃ ＪＩ１１５０３５００３，Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ）およびＥＣＬ Ｓｙｓｔｅｍ（ｃａｔ．＃ Ｗ１０１５，Ｐｒｏｍｅｇａ，）をタンパク質検出に用いた。ウエスタンブロットバンドを、ＩｍａｇｅＪソフトウェアを用いて定量化した。

ＭＥＴリン酸化アッセイ
血清不足のＧＴＬ－１６細胞を、ＤＮ３０誘導体とともに２４時間インキュベートした（１０００または２５０ｎＭ）。全細胞溶解物を、以下の一次抗体：抗－Ｍｅｔ ｐｈｏｓｐｈｏ－Ｔｙｒ^{１２３４／１２３５}（Ｄ２６，ｃａｔ．＃ ３０７７ Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ）；抗－Ｍｅｔ（３Ｄ４，ｃａｔ．＃ ０８－１３６６ Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）；および抗－ビンキュリン（クローンｈＶＩＮ－１、ｃａｔ．＃ Ｖ９１３１ Ｓｉｇｍａ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ）を用いて、ウエスタンブロットにより分析した。抗－マウスＩｇＧ１および抗－ウサギＩｇＧ（ｃａｔ．＃ ＪＩ１１１０３５００３）ＨＲＰ－コンジュゲート二次抗体およびＥＣＬ Ｓｙｓｔｅｍをタンパク質検出に用いた。ウエスタンブロットバンドを、ＩｍａｇｅＪソフトウェアを用いて定量化した。

インビトロ生物学的アッセイ
細胞散乱アッセイのために、ＨＰＡＦ－ＩＩ細胞（８０００／ウェル）を、完全培養培地中、９６ウェルプレート内に蒔いた。抗体のアゴニスト活性を分析するために、２４時間後、ＨＧＦ（８ｎｇ／ｍｌ、ポジティブコントロール、ｃａｔ．＃ ２９４－ＨＧ－０２５，Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）または抗体（ＤＮ３０ ｍＡｂ、ＭｖＤＮ３０、ｃｈＯＡ－ＤＮ３０、ｈＯＡ－ＤＮ３０抗体、全て２００ｎＭの濃度）を、培養培地に添加した。阻害活性を分析するために、増加する濃度（０～４μＭ）のｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８を、単独またはＤｅｃｏｙＭｅｔ^{Ｋ８４２Ｅ}との１：１の組み合わせで添加した。さらに２４時間後、細胞を６．２５ｎｇ／ｍｌ ＨＧＦで２４時間刺激した。それから、細胞を１１％グルタルアルデヒド（ｃａｔ．＃ ３４０８５５ Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）で固定化して、０．１％ Ｃｒｙｓｔａｌ Ｖｉｏｌｅｔ（ｃａｔ．＃ Ｃ３８８６ Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）で染色して、顕微鏡観察（顕微鏡Ｌｅｉｃａ ＤＭ２０００）によって分析した。画像を、ＱＩＣＡＭ Ｆａｓｔ １３９４カラーデジタルカメラ（ＱＩｍａｇｉｎｇ）を用いてキャプチャーした。

細胞浸潤アッセイのために、ＨＰＡＦ－ＩＩ細胞（１．５×１０^５／ウェル）を、０．５μＭのｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８が単独または１μＭ ＤｅｃｏｙＭｅｔ^{Ｋ８４２Ｅ}と組み合わせて存在する血清フリー培養培地内に懸濁して、３０μｇ／ウェルのマトリゲルマトリックス（ｃａｔ．＃ ３５４２３４，Ｃｏｒｎｉｎｇ Ｉｎｃ．）で予めコーティングされたトランスウェルチャンバーの上側区画に蒔いた。２％ ＦＢＳおよび６．２５ｎｇ／ｍｌ ＨＧＦで補充された培養培地をチャンバーの下側区画に添加した。２４時間後、トランスウェルフィルターの上側の細胞を機械的に除去して、膜を通って遊走した細胞を１１％グルタルアルデヒドで固定化して、０．１％ Ｃｒｙｓｔａｌ Ｖｉｏｌｅｔで染色した。細胞浸潤をＩｍａｇｅ－Ｊソフトウェアで定量化した。

生命力アッセイのために、ＧＴＬ－１６細胞を、１０％ＦＢＳ培養培地中、９６ウェルプレート内に２０００細胞／ウェル蒔いた。２４時間後、培地を、１０％ＦＢＳプラス試験される分子（増加する濃度－０～１０μＭ）を含む新鮮な培地で交換した。７２時間後に、細胞生存能力を、ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ－Ｇｌｏ（ｃａｔ．＃ Ｇ７５７３ Ｐｒｏｍｅｇａ Ｃｏｒｐ）を用いて、製造元の説明書に従って評価した。化学発光をＶＩＣＴＯＲ Ｘ４で検出した。

増殖アッセイのために、３５００００ ＧＴＬ－１６細胞を、１０％ＦＣＳ培地中、６ウェルプレート内にプレーティングした。２４時間後、細胞を、固定濃度（１μＭ）のＤＮ３０誘導体を用いてさらに４８時間処理した。それから、さらに２時間、１０μＭ ＥｄＵ（ｃａｔ．＃ Ａ１００４４，Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ）を培養培地に添加した。Ｓ相の細胞の％を、Ｃｌｉｃｋ－ｉＴ（商標）ＥｄＵ Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（商標）４８８フローサイトメトリーアッセイ（ｃａｔ．＃ Ｃ１０４２５，Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ）の手順に従って細胞蛍光光度分析によって決定した。

細胞毒性アッセイのために、２０００ ＧＴＬ－１６細胞を、１０％ＦＣＳ培地中、９６ウェルプレート内にプレーティングした。２４時間後、細胞を、増加する濃度のＤＮ３０誘導体を用いてさらに４８時間処理した。細胞毒性を、製造元の説明書に従ってＣｅｌｌ－Ｔｏｘ（商標）Ｇｒｅｅｎ細胞毒性アッセイ（ｃａｔ．＃ Ｇ８７４１，Ｐｒｏｍｅｇａ）によって評価した。

ＰＤ－Ｌ１発現分析
サブコンフルエントなＧＴｌ－１６細胞を、５０ｎｇ／ｍｌのＩＦＮγ－１ｂ（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ，ｃａｔ．＃ １３０－０９６－４８４）を用いて４８時間（２４時間ごとに交換）、２５０ｎＭのｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８と組み合わせて処理した。それから、単層をＬａｅｍｍｌｉバッファー中に溶解させて、４５μｇの全タンパク質を８％ＳＤＳ－ＰＡＧＥゲルに供した。標準的な方法に従って、タンパク質をゲルからｉＢｌｏｔ Ｔｒａｎｓｆｅｒニトロセルロース膜（Ｌｉｆｅ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，ｃａｔ．＃ ＩＢ２３００１）上に移した。ＰＤ－Ｌ１発現を、抗－ＰＤ－Ｌ１抗体（Ｅ１Ｌ３Ｎ，ｃａｔ．＃ １３６８４，Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ）によって検出した。Ｐ－Ｍｅｔレベルを、抗－ＭＥＴ ｐｈｏｓｐｈｏ－Ｔｙｒ^{１２３４／１２３５}（Ｄ２６）抗体によってチェックした。ローディングコントロールとして、フィルターを抗－ＧＡＰＤＨ（Ｄ４Ｃ６Ｒ，ｃａｔ．＃ ９７１６６Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ）でプローブした。二次ＨＲＰ－コンジュゲートヤギ抗－マウスＩｇＧ（ｃａｔ．＃ ＪＩ１１５０３５００３）または抗－ウサギＩｇＧ（ｃａｔ．＃ ＪＩ１１１０３５１４４）（両方ともＪａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏ Ｒｅｓｅａｒｃｈ）およびＥＣＬ Ｓｙｓｔｅｍをタンパク質検出に用いた。

インビボ実験
全ての動物手順は、Ｆｏｎｄａｚｉｏｎｅ Ｐｉｅｍｏｎｔｅｓｅ ｐｅｒ ｌａ Ｒｉｃｅｒｃａ ｓｕｌ Ｃａｎｃｒｏの動物実験に関する倫理委員会およびイタリア保健省によって承認されたプロトコルに従って行われた。ＮＯＤ－ＳＣＩＤマウスはＣｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ（Ｃａｌｃｏ，Ｉｔａｌｙ）から購入した。

薬物動態分析のために、ＮＯＤ－ＳＣＩＤマウスに単回投与（１００μｇ）のｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８を静脈内注入した。末梢血を異なる時点：１０分、３０分、１時間、４時間、８時間、２４時間、４８時間、７２時間、１２０時間に回収した。治療的分子の血清濃度を、結合アッセイのセクションにおいて上述したとおりにＥＬＩＳＡによって測定して、異なる精製分子の段階希釈によって得られた検量線の直線部分上にサンプルの吸光度の値を挿入した。それぞれの時点は、４匹のマウスの平均値であった。

腫瘍増殖分析のために、１×１０^６ ＧＴＬ－１６細胞をＮＯＤ－ＳＣＩＤマウスの脇腹に接種した。腫瘍増殖をカリパス測定によって１週間に２回モニターした。腫瘍体積を、式：Ｖ＝４／３π（ｘ／２）（ｙ／２）（ｚ／２）を用いて計算した（ｘ、ｙおよびｚは、腫瘍体積の高さ、幅および深さである）。腫瘍が７０～１００ｍｍ^３の体積に到達したときに（細胞注入のおよそ１週後）、マウスを均一なグループにランダム化した。１つの場合では、４つのグループが作製されて（ＰＢＳ－ビヒクル、ＭｖＤＮ３０、ｃｈＯＡ－ＤＮ３０、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８；全ての抗体は３０ｍｇ／ｋｇ、１週あたり２回）；他方の場合では、５つのグループが作製された（ＰＢＳ－ビヒクル、ｈＯＡ－ＤＮ３０－ｃｌ０３Ｅ０８ ６０ｍｇ／ｋｇ、３０ｍｇ／ｋｇ、１０ｍｇ／ｋｇ、３．３ｍｇ／ｋｇ；全ての用量は１週あたり３回）。分子を静脈内注入によって投与した。実験の終わりに（１５日または１７日の処置）、マウスを屠殺して、腫瘍を切除して計量した。

統計分析
平均および標準偏差（ＳＤ）は、Ｍｉｃｒｏｓｏｆｔ Ｏｆｆｉｃｅ Ｅｘｃｅｌ ２０１０ソフトウェア（Ｍｉｃｒｏｓｏｆｔ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を用いて計算した。Ｋ_ｄ値を計算するために、ＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍソフトウェア（ＧｒａｐｈＰａｄソフトウェア）を用いて、非線形回帰、１サイト結合双曲線に従って、ＥＬＩＳＡアッセイからのデータを分析およびフィッティングした。ＩＣ_５０およびＥＣ_５０値を計算するために、ＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍソフトウェアを用いて、非線形回帰、シグモイド用量応答曲線に従ってデータを分析およびフィッティングした。全ての実験は、少なくとも２回繰り返した。図は１つの代表的な実験を示す。

Claims (18)

1. 単一の抗原結合アームおよびＦｃ領域を含む抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントであって（Ｆｃ領域は、前記抗原結合アームを含むＦａｂ分子と比較して前記抗体フラグメントの安定性を増大させる）、
   前記Ｆｃ領域は、第１および第２のＦｃポリペプチドの複合体を含み、ここで、前記抗体フラグメントは、以下を含む：
   （ｉ）１つのヒト化軽鎖可変（ＶＬ）ドメインおよび１つのヒト軽鎖定常（ＣＬ）ドメインを含む第１のポリペプチド、
   ここで前記ヒト化ＶＬドメインは、Ｎ末端からＣ末端の方向で、前記ヒトＣＬドメインに融合されて、ここで、前記ヒト化ＶＬドメインは、配列番号１、２および３に示されるアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ）を含み、ここで、前記ヒト化ＶＬドメインは、配列番号７に示されるアミノ酸配列を有する；
   （ｉｉ）１つのヒト化重鎖可変（ＶＨ）ドメイン、１つのヒト重鎖定常ＣＨ１ドメインおよび前記第１のＦｃポリペプチドを含む第２のポリペプチド、
   ここで前記第１のＦｃポリペプチドは、１つのヒンジ領域、１つのヒト定常ＣＨ２ドメインおよび１つのヒトＣＨ３定常ドメインを含み、ここで、Ｎ末端からＣ末端の方向で、前記ヒト化ＶＨドメインが前記ヒトＣＨ１ドメインに融合されて、それがヒトヒンジ領域に融合されて、それが前記ヒトＣＨ２ドメインに融合されて、それが前記ヒトＣＨ３ドメインに融合されて、ここで、前記ヒト化ＶＨドメインは、配列番号４、５および６に示されるアミノ酸配列を有する３つの相補性決定領域（ＣＤＲ）を含み、ここで前記ヒト化ＶＨドメインは、配列番号８に示されるアミノ酸配列を有する；および
   （ｉｉｉ）第２のヒトＦｃポリペプチドを含む第３のポリペプチド、
   ここで前記第２のヒトＦｃポリペプチドは、１つのヒトヒンジ領域、１つのヒト定常ＣＨ２ドメインおよび１つのヒトＣＨ３定常ドメインを含み、ここで、Ｎ末端からＣ末端の方向で、前記ヒトヒンジ領域が前記ＣＨ２ドメインに融合されて、それが前記ヒトＣＨ３ドメインに融合されて、ここで、前記ヒトヒンジ領域は、Ｎ末端がトランケートされている、
   抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント。
2. 請求項１に記載の抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントであって、
   前記ヒトＣＬドメインは、ヒト軽鎖κタイプドメインである、
   抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント。
3. 請求項１または２に記載の抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントであって、
   前記ヒトヒンジ領域および前記ヒト定常ドメインＣＨ１、ＣＨ２およびＣＨ３は、ヒトＩｇＧ１由来である、
   抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント。
4. 請求項１から３のいずれか一項に記載の抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントであって、
   前記の２つのＦｃポリペプチドは、ヒンジ領域において分子間ジスルフィド結合によって連結されている、
   抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント。
5. 請求項１から４のいずれか一項に記載の抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントであって、
   前記第１のＦｃポリペプチドおよび前記第２のＦｃポリペプチドは、境界面において接触していて（ｍｅｅｔ）、前記第１および前記第２のＦｃポリペプチドの間の一方は前記境界面にノブを含み、前記第１および前記第２のＦｃポリペプチドの間の他方は前記境界面にホールを含み、ここで、前記ノブは前記ホール内に配置可能である、
   抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント。
6. 請求項５に記載の抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントであって、
   前記第１および前記第２のＦｃポリペプチドの間の一方は、突然変異したＣＨ３定常ドメインを含み、ここで、前記の突然変異したＣＨ３定常ドメインは、３８９位にアミノ酸突然変異を保有し、ここで、３８９位の元のアミノ酸は、元のアミノ酸よりも大きな側鎖体積を有するアミノ酸を取り込むように突然変異されていて；
   前記第１および前記第２のＦｃポリペプチドの間の他方は、突然変異したＣＨ３定常ドメインを含み、ここで、前記の突然変異したＣＨ３定常ドメインは、３つのアミノ酸突然変異を３８９位、３９１位および４３８位に保有し、ここで、元のアミノ酸は、元のアミノ酸よりも小さな側鎖体積を有するアミノ酸を取り込むように突然変異されていて、
   ここで、アミノ酸ナンバリングはＫａｂａｔのＥＵナンバリング・スキームに従っている、
   抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント。
7. 請求項６に記載の抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントであって、
   ３８９位、３９１位および４３８位の元のアミノ酸は、それぞれ、トレオニン、ロイシンおよびチロシンであり；
   ここで、前記第１および前記第２のＦｃポリペプチドの間の一方において、３８９位のトレオニンはトリプトファンに突然変異されていて；
   ここで、前記第１および前記第２のＦｃポリペプチドの間の他方において、３８９位のトレオニンはセリンに突然変異されていて、３９１位のロイシンはアラニンに突然変異されていて、４３８位のチロシンはバリンに突然変異されている、
   抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント。
8. 請求項１から７のいずれか一項に記載の抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントであって、
   前記ヒトＣＬドメインは、配列番号９に示されるアミノ酸配列を有し、前記ヒトＣＨ１ドメインは、配列番号１０に示されるアミノ酸配列を有する、
   抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント。
9. 請求項１から８のいずれか一項に記載の抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントであって、
   第１のヒトＦｃポリペプチドは、配列番号１１に示されるアミノ酸配列を有し、第２のヒトＦｃポリペプチドは、配列番号１２に示されるアミノ酸配列を有する、
   抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント。
10. 請求項１から９のいずれか一項に記載の抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントであって、
    前記抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントは、Ｍｅｔに結合すると、Ｍｅｔの細胞外ドメインのシェディングを誘導する、
    抗－Ｍｅｔ抗体フラグメント。
11. 請求項１から１０のいずれかの抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントをコードする、
    単離された核酸。
12. 請求項１から１０のいずれかの抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントを、集合的に（ｃｏｌｌｅｃｔｉｖｅｌｙ）コードする２以上の組み換え核酸を含む、
    組成物。
13. 単一のボトル内または２つのボトル内に、（ａ）請求項１から１０のいずれか一項に記載の抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントおよび薬学的に許容できるビヒクル、および（ｂ）ヒトＭｅｔの細胞外部分および薬学的に許容できるビヒクルを含む生産物であって、
    ヒトＭｅｔの前記細胞外部分は、安定した様式で肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）に結合することが可能であり、前記抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントによって認識されるエピトープにおいて、前記抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントがそれに結合するのを防ぐための少なくとも１つのアミノ酸突然変異を含む、
    生産物。
14. 請求項１３に記載の生産物であって、
    ヒトＭｅｔの前記細胞外部分は、ＳＥＭＡ、ＰＳＩ、ＩＰＴ－１、ＩＰＴ－２、ＩＰＴ－３およびＩＰＴ－４ドメインを含む、
    生産物。
15. 請求項１３または１４に記載の生産物であって、
    ヒトＭｅｔの前記細胞外部分は、配列番号１３に示されるアミノ酸配列を有し、
    ここで、配列番号１３の７９７位と８７５位の間のアミノ酸の少なくとも１つは、前記抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントがそれに結合するのを防ぐために突然変異されている、
    生産物。
16. 請求項１３から１５のいずれか一項に記載の生産物であって、
    ヒトＭｅｔの前記細胞外部分は、配列番号１４に示されるアミノ酸配列を有する、
    生産物。
17. 腫瘍および／または転移を患っている患者の治療での使用のための、請求項１から１０のいずれか一項に記載の抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントまたは請求項１３から１６のいずれか一項に記載の生産物であって、
    前記患者は、ＭＥＴ遺伝子の遺伝子変異を保有している、
    抗－Ｍｅｔ抗体フラグメントまたは生産物。
18. 腫瘍および／または転移を患っている患者の治療での使用のための、請求項１３から１６のいずれか一項に記載の生産物であって、
    前記患者は、野生型ＭＥＴ遺伝子を保有している、
    生産物。

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