JP2013545736A - Pcsk9遺伝子の阻害のための組成物および方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2010年10月29日出願の米国仮出願第61/408,513号の利益を主張し、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
該当なし
便宜上、本明細書、実施例、および添付の特許請求の範囲で使用されるある特定の用語および語句の意味が以下に提供される。本明細書の他の部分での用語の用法と、本項に提供されるその定義との間に明らかな相違がある場合、本項の定義を優先することとする。
siRNA、例えば、PCSK9遺伝子の発現を阻害するdsRNAが本明細書に記載される。
表1、2、6、および7の配列のうちの1つからの少なくとも15、16、17、18、19、20個、またはそれ以上の連続ヌクレオチドの部分的な配列を有し、かつ標的遺伝子の発現を阻害するそれらの能力が完全な配列を含むdsRNAとは5、10、15、20、25、または30%以下異なるdsRNAが、本発明に従って企図される。
いくつかの実施形態において、組成物は、2個以上のsiRNA、例えば、第2のsiRNAを含むか、または方法は、2個以上のsiRNAを用いる。その2個のsiRNAを、共有リンカーを介して結合することができる。共有リンカーは、当業者に周知であり、例えば、核酸リンカー、ペプチドリンカー等を含む。
さらに別の実施形態では、siRNAは、安定性または他の有益な特徴を強化するために化学的に修飾される。本発明で取り上げられる核酸を、参照により本明細書に組み込まれる「Current protocols in nucleic acid chemistry」、Beaucage,S.L.et al.(Edrs.),John Wiley & Sons,Inc.,New York,NY,USAに記載される方法等の当技術分野において十分確立された方法によって合成および/または修飾することができる。修飾には、例えば、(a)末端修飾、例えば、5’末端修飾(リン酸化反応、共役、逆結合等)、3’末端修飾(共役、DNAヌクレオチド、逆結合等)、(b)塩基修飾、例えば、安定な塩基、不安定な塩基、もしくはパートナーの広範なレパートリーとの塩基対合する塩基との置換、塩基の除去(脱塩基ヌクレオチド)、または結合された塩基の除去、(c)糖修飾(例えば、2’位もしくは4’位で)、または糖の置換、ならびに(d)ホスホジエステル結合の修飾もしくは置換を含む骨格修飾が含まれる。本発明で有用なRNA化合物の具体的な例として、修飾された骨格を含有するRNAまたは非天然のヌクレオシド間結合を含有するRNAが挙げられるが、これらに限定されない。修飾された骨格を有するRNAには、とりわけ、骨格にリン原子を有しないものが含まれる。本明細書の目的上、当技術分野において時折言及されるように、それらのヌクレオシド間骨格にリン原子を有しない修飾されたRNAも、オリゴヌクレオシドと見なすことができる。特定の実施形態において、修飾されたRNAは、そのヌクレオシド間骨格内にリン原子を有する。
本発明のsiRNAの別の修飾は、iRNAの活性、細胞分布、または細胞取り込みを亢進する1つ以上のリガンド、部分、または結合体のRNAに化学的に結合することを含む。そのような部分には、コレステロール部分等の脂質部分(Letsinger et al.,Proc.Natl.Acid.Sci.USA,1989,86:6553−6556)、コール酸(Manoharan et al.,Biorg.Med.Chem.Let.,1994,4:1053−1060)、チオエーテル、例えば、beryl−S−トリチルチオール(Manoharan et al.,Ann.N.Y.Acad.Sci.,1992,660:306−309、Manoharan et al.,Biorg.Med.Chem.Let.,1993,3:2765−2770)、チオコレステロール(Oberhauser et al.,Nucl.Acids Res.,1992,20:533−538)、脂肪族鎖、例えば、ドデカンジオールもしくはウンデシル残基(Saison−Behmoaras et al.,EMBO J,1991,10:1111−1118、Kabanov et al.,FEBS Lett.,1990,259:327−330、Svinarchuk et al.,Biochimie,1993,75:49−54)、リン脂質、例えば、ジ−ヘキサデシル−rac−グリセロールもしくはトリエチル−アンモニウム1,2−ジ−O−ヘキサデシル−rac−グリセロ−3−ホスホネート(Manoharan et al.,Tetrahedron Lett.,1995,36:3651−3654、Shea et al.,Nucl.Acids Res.,1990,18:3777−3783)、ポリアミンもしくはポリエチレングリコール鎖(Manoharan et al.,Nucleosides & Nucleotides,1995,14:969−973)、またはアダマンタン酢酸(Manoharan et al.,Tetrahedron Lett.,1995,36:3651−3654)、パルミチル部分(Mishra et al.,Biochim.Biophys.Acta,1995,1264:229−237)、またはオクタデシルアミンもしくはヘキシルアミノ−カルボニルオキシコレステロール部分(Crooke et al.,J.Pharmacol.Exp.Ther.,1996,277:923−937)が含まれるが、これらに限定されない。
所与の化合物のすべての位置が均一に修飾される必要はなく、実際には、前述の修飾のうちの2つ以上を、単一の化合物に、またはさらにはiRNA内の単一のヌクレオシドに組み込むことができる。本発明は、キメラ化合物であるiRNA化合物も包含する。「キメラ(chimeric)」iRNA化合物または「キメラ(chimera)」は、本発明の文脈において、2つ以上の化学的にはっきりと異なる領域を含有し、それぞれ、少なくとも1つのモノマー単位、すなわち、dsRNA化合物の場合はヌクレオチドで構成されるiRNA化合物、好ましくはdsRNA化合物である。これらのiRNAは、典型的には、少なくとも1つの領域を含有し、RNAは、iRNAに、ヌクレアーゼ分解への耐性の増加、細胞取り込みの増加、および/または標的核酸への結合親和性の増加を付与するように修飾される。iRNAのさらなる領域は、RNA:DNAまたはRNA:RNAハイブリッドを切断することができる酵素の基質としての役割を果たすことができる。一例として、RNaseHは、RNA:DNA二本鎖のRNA鎖を切断する細胞エンドヌクレアーゼである。したがって、RNaseHの活性化は、RNA標的の切断をもたらし、それによって、遺伝子発現のiRNA阻害の効率を大きく亢進させる。その結果として、同一の標的領域にハイブリダイズするホスホロチオエートデオキシdsRNAと比較して、キメラdsRNAが使用されるとき、多くの場合、より短いiRNAで同様の結果を得ることができる。RNA標的の切断は、ゲル電気泳動、および必要であれば、当技術分野で既知の関連する核酸ハイブリダイゼーション技法により、日常的に検出することができる。
ある特定の場合において、iRNAのRNAは、非リガンド基によって修飾され得る。いくつかの非リガンド分子が、iRNAの活性、細胞分布、または細胞取り込みを亢進させるためにiRNAに結合されており、そのような結合を行うための手順は、科学文献で入手可能である。そのような非リガンド部分は、コレステロール等の脂質部分(Kubo,T.et al.,Biochem.Biophys.Res.Comm.,2007,365(1):54−61、Letsinger et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,1989,86:6553)、コール酸(Manoharan et al.,Bioorg.Med.Chem.Lett.,1994,4:1053)、チオエーテル、例えば、ヘキシル−S−トリチルチオール(Manoharan et al.,Ann.N.Y.Acad.Sci.,1992,660:306、Manoharan et al.,Bioorg.Med.Chem.Let.,1993,3:2765)、チオコレステロール(Oberhauser et al.,Nucl.Acids Res.,1992,20:533)、脂肪族鎖、例えば、ドデカンジオールもしくはウンデシル残基(Saison−Behmoaras et al.,EMBO J.,1991,10:111、Kabanov et al.pFEBS Lett.p1990,259:327、Svinarchuk et al.,Biochimie,1993,75:49)、リン脂質、例えば、ジ−ヘキサデシル−rac−グリセロールもしくはトリエチルアンモニウム1,2−ジ−O−ヘキサデシル−rac−グリセロ−3−H−ホスホネート(Manoharan et al.,Tetrahedron Lett.,1995、36:3651、Shea et al.,Nucl.Acids Res.,1990,18:3777)、ポリアミンもしくはポリエチレングリコール鎖(Manoharan et al.,Nucleosides & Nucleotides,1995,14:969)、またはアダマンタン酢酸(Manoharan et al.,Tetrahedron Lett.,1995,36:3651)、パルミチル部分(Mishra et al.,Biochim.Biophys.Acta,1995,1264:229)、またはオクタデシルアミンもしくはヘキシルアミノ−カルボニル−オキシコレステロール部分(Crooke et al.,J.Pharmacol.Exp.Ther.,1996,277:923)を含んでいる。そのようなRNA結合体の調製を教示する代表的な米国特許は、上に列記されている。典型的な結合プロトコルは、配列の1つ以上の位置にアミノリンカーを有するRNAの合成を含む。次いで、アミノ基は、適切なカップリング試薬または活性化試薬を用いて結合させられる分子と反応する。結合反応は、依然として固体支持体に結合されたRNAを用いて、または溶液相中でのRNAの切断後のいずれかで行われ得る。典型的には、HPLCによるRNA結合体の精製により、純粋な結合体が得られる。
iRNAを必要とする対象へのiRNAの送達を、いくつかの異なる方法において達成することができる。インビボ送達を、対象に、iRNA、例えば、dsRNAを含む組成物を投与することによって直接行うことができる。あるいは、送達を、iRNAの発現をコードして導く1つ以上のベクターを投与することによって間接的に行うことができる。これらの代替案は、以下でさらに議論される。
概して、核酸分子を送達する任意の方法を、iRNAとともに使用するために適合することができる(例えば、Akhtar S.and Julian RL.(1992)Trends Cell.Biol.2(5):139−144および国際公開第WO94/02595号を参照されたく、参照によりこれらの全体が本明細書に組み込まれる)。しかしながら、インビボでiRNA分子をうまく送達するために考慮すべき重要な3つの要因:(a)送達された分子の生物学的安定性、(2)非特異的影響の防止、および(3)標的組織内での送達された分子の蓄積が存在する。iRNAの非特異的影響を、例えば、組織(非限定的な例として、腫瘍)への直接注入もしくは移植による局所投与、または調製物の局所投与によって最小限に抑えることができる。治療部位への局所投与は、薬剤の局所濃度を最大にし、その他の点では薬剤によって悪影響を与えられ得るか、または薬剤を分解し得る全身組織への薬剤の曝露を制限し、投与されるiRNA分子の全線量を低減させることが可能である。いくつかの研究は、iRNAが局所投与されるとき、遺伝子産物のノックダウンが成功したことを示している。例えば、カニクイザルにおける硝子体内注入によるVEGF dsRNAの眼球内送達(Tolentino,MJ.,et al(2004)Retina 24:132−138)およびマウスにおける網膜下注入(Reich,SJ.,et al(2003)Mol.Vis.9:210−216)はともに、加齢に伴う黄斑変性の実験モデルにおける新血管形成を予防することを示した。加えて、マウスにおけるdsRNAの直接腫瘍内注入は、腫瘍の大きさを減少させ(Pille,J.,et al(2005)Mol.Ther.11:267−274)、腫瘍を有するマウスの生存期間を延長させることができる(Kim,WJ.,et al(2006)Mol.Ther.14:343−350、Li,S.,et al(2007)Mol.Ther.15:515−523)。RNA干渉も直接注入によるCNSへの局所送達(Dorn,G.,et al.(2004)Nucleic Acids 32:e49、Tan,PH.,et al(2005)Gene Ther.12:59−66、Makimura,H.,et al(2002)BMC Neurosci.3:18、Shishkina,GT.,et al(2004)Neuroscience 129:521−528、Thakker,ER.,et al(2004)Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.101:17270−17275、Akaneya,Y.,et al(2005)J.Neurophysiol.93:594−602)および鼻腔内投与による肺への局所送達(Howard,KA.,et al(2006)Mol.Ther.14:476−484、Zhang,X.,et al(2004)J.Biol.Chem.279:10677−10684、Bitko,V.,et al(2005)Nat.Med.11:50−55)の成功を示している。疾患の治療のためにiRNAを全身投与する場合、RNAを、薬物送達系を用いて修飾するか、またはあるいは送達することができ、これら両方の方法は、インビボでのエンドヌクレアーゼおよびエクソヌクレアーゼによるdsRNAの急速分解を阻止する役目を果たす。RNAまたは医薬担体の修飾は、標的組織へのiRNA組成物の標的化も可能にし、望ましくないオフターゲット効果を回避する。iRNA分子は、コレステロール等の親油基への化学結合によって修飾され、細胞取り込みを亢進し、分解を阻止することができる。例えば、親油性コレステロール部分に結合されるApoBに対するiRNAは、マウスに全身投与され、肝臓および空腸の両方において、ApoB mRNAのノックダウンをもたらした(Soutschek,J.,et al(2004)Nature 432:173−178)。アプタマーへのiRNAの結合は、前立腺癌のマウスモデルにおける腫瘍増殖を阻害し、腫瘍退行を媒介することが示されている(McNamara,JO.,et al(2006)Nat.Biotechnol.24:1005−1015)。代替の実施形態において、iRNAを、ナノ粒子、デンドリマー、ポリマー、リポソーム等の薬物送達系、またはカチオン性送達系を用いて送達することができる。正電荷を持つカチオン性送達系は、(負電荷を持つ)iRNA分子の結合を促進し、負電荷を持つ細胞膜での相互作用も亢進させ、細胞によるiRNAの効率的な取り込みを可能にする。カチオン性脂質、デンドリマー、またはポリマーは、iRNAへの結合または誘発のいずれかによって、iRNAを包む小胞またはミセル(例えば、Kim SH.,et al(2008)Journal of Controlled Release 129(2):107−116を参照のこと)を形成することができる。小胞またはミセルの形成は、全身投与されるとき、iRNAの分解をさらに阻止する。カチオン性iRNA複合体を作製および投与するための方法は、十分当業者の能力の範囲内である(例えば、Sorensen,DR.,et al(2003)J.Mol.Biol 327:761−766、Verma,UN.,et al(2003)Clin.Cancer Res.9:1291−1300、Arnold,AS et al(2007)J.Hypertens.25:197−205を参照されたく、参照によりこれら全体が本明細書に組み込まれる)。iRNAの全身送達に有用な薬物送達系のいくつかの非限定的な例として、DOTAP(Sorensen,DR.,et al(2003),上記参照、Verma,UN.,et al(2003),上記参照)、オリゴフェクタミン、「固体核酸脂質粒子」(Zimmermann,TS.,et al(2006)Nature 441:111−114)、カルジオリピン(Chien,PY.,et al(2005)Cancer Gene Ther.12:321−328、Pal,A.,et al(2005)Int J.Oncol.26:1087−1091)、ポリエチレンイミン(Bonnet ME.,et al(2008)Pharm.Res.Aug 16 Epub ahead of print、Aigner,A.(2006)J.Biomed.Biotechnol.71659)、Arg−Gly−Asp(RGD)ペプチド(Liu,S.(2006)Mol.Pharm.3:472−487)、およびポリアミドアミン(Tomalia,DA.,et al(2007)Biochem.Soc.Trans.35:61−67、Yoo,H.,et al(1999)Pharm.Res.16:1799−1804)が挙げられる。いくつかの実施形態において、iRNAは、全身投与用のシクロデキストリンを有する複合体を形成する。iRNAおよびシクロデキストリンの投与方法およびそれらの医薬組成物を、米国特許第7,427,605号で見出すことができ、参照によりその全体が本明細書組み込まれる。
別の態様では、本発明のdsRNAを、DNAまたはRNAベクターに挿入される転写ユニットから発現させることができる(例えば、Couture,A,et al.,TIG.(1996),12:5−10、Skillern,A.らの国際PCT公開第WO00/22113号、Conradの国際PCT公開第WO00/22114号、およびConradの米国特許第6,054,299号を参照されたい)。発現は、使用される特定の構築物および標的組織または細胞型に応じて、一時的(約数時間〜数週間)または持続的(数週間〜数ヶ月、またはそれ以上)であり得る。これらの導入遺伝子を、線状構築物、環状プラスミド、またはウイルスベクターとして導入することができ、これらは、組み込み型ベクターまたは非組み込み型ベクターであり得る。染色体外プラスミドとして受け継がれ得るように導入遺伝子を構築することもできる(Gassmann,et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA(1995)92:1292)。
一実施形態において、本発明は、本明細書に記載のsiRNAおよび薬学的に許容できる担体を含有する医薬組成物を提供する。siRNAを含有する医薬組成物は、PCSK9発現によって媒介される病理学的プロセス等の標的遺伝子の発現または活性に関連する疾患もしくは障害の治療に有用である。そのような医薬組成物は、送達様式に基づいて製剤化される。一例として、非経口送達、例えば、静脈内(IV)送達による全身投与用に製剤化される組成物がある。別の例として、例えば、連続的なポンプ注入等の脳への注入による脳実質への直接送達用に製剤化される組成物がある。
薬物の製剤化のために研究および使用されているマイクロエマルジョンの他に、多くの界面活性剤の組織構造が存在する。これらには、単層、ミセル、二重層、および小胞が含まれる。リポソーム等の小胞は、薬物送達の観点からのそれらが提示する特異性および作用持続期間を理由に、大きな関心を集めている。本発明で使用される「リポソーム」という用語は、球状の二重層(単数または複数)に配置された両親媒性脂質から成る小胞を意味する。
一実施形態において、本発明で取り上げられるsiRNAは、例えば、核酸脂質粒子、例えば、SPLP、pSPLP、またはSNALPを形成するために、脂質製剤中に完全に封入される。本明細書で使用される「SNALP」という用語は、SPLPを含む安定した核酸脂質粒子を指す。本明細書で使用される「SPLP」という用語は、脂質小胞内に封入されたプラスミドDNAを含む核酸脂質粒子を指す。核酸脂質粒子、例えば、SNALPは、典型的には、カチオン性脂質、非カチオン性脂質、および粒子の凝集を阻止する脂質(例えば、PEG−脂質結合体)を含有する。SNALPおよびSPLPは、静脈内(i.v.)注入後に循環寿命の延長を呈し、かつ遠位部位(例えば、投与部位から物理的に分離された部位)で蓄積するため、全身適用に非常に有用である。SPLPは「pSPLP」を含み、PCT公開第WO00/03683号に記載の封入された縮合剤−核酸複合体を含む。
LNP01製剤は、例えば、参照により本明細書に組み込まれる国際出願公開第WO2008/042973号に記載されている。さらなる例示的な脂質dsRNA製剤は、以下の通りである。
表A
本発明の核酸脂質粒子において使用される化合物、例えば、カチオン性脂質等のいずれも、実施例においてより詳細に記載される方法を含む、既知の有機合成技術によって調製することができる。すべての置換基は、別途示されない限り、以下に定義されるものとする。
一実施形態において、本発明の核酸脂質粒子は、式Aのカチオン性脂質を用いて製剤化され、XTCは、式Aのカチオン性脂質であり、
DLin−M−C3−DMA(すなわち、(6Z,9Z,28Z,31Z)−ヘプタトリアコンタ−6,9,28,31−テトラエン−19−イル4−(ジメチルアミノ)ブタノエート)の調製は、以下の通りであった。ジクロロメタン(5mL)中の(6Z,9Z,28Z,31Z)−ヘプタトリアコンタ−6,9,28,31−テトラエン−19−オール(0.53g)、4−N,N−ジメチルアミノブチル酸塩酸塩(0.51g)、4−N,N−ジメチルアミノピリジン(0.61g)、および1−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩(0.53g)の溶液を、室温で一晩撹拌した。溶液を希塩酸で、続いて、希重炭酸ナトリウム水溶液で洗浄した。有機画分を無水硫酸マグネシウム上で乾燥させ、濾過し、溶媒をロータリーエバポレータ上で除去した。残渣を、1〜5%のメタノール/ジクロロメタン溶出勾配を用いて、シリカゲルカラム(20g)に通した。精製生成物を含有する画分を合わせ、溶媒を除去し、無色の油(0.54g)を得た。
ケタール519[ALNY−100]の合成を、以下のスキーム3を用いて行った。
2口RBF(1L)中の200mLの無水THF中のLiAlH4(3.74g、0.09852mol)の撹拌懸濁液に、70mLのTHF中の514の溶液(10g、0.04926mol)を、窒素雰囲気下で、0℃で緩徐に添加した。添加が完了した後、反応混合物を室温まで加温し、その後、4時間加熱還流した。反応の進行をTLCで監視した。(TLCによる)反応が完了した後、混合物を0℃まで冷却し、飽和Na2SO4溶液を慎重に添加して反応停止処理した。反応混合物を室温で4時間撹拌し、濾去した。残渣をTHFで十分に洗浄した。濾液および洗浄液を混合し、400mLのジオキサンおよび26mLの濃縮HClで希釈し、室温で20分間撹拌した。揮発物質を真空下で揮散させて、白色の固体として515の塩酸塩を得た。収量:7.12g、1H−NMR(DMSO、400MHz):δ=9.34(広域、2H)、5.68(s、2H)、3.74(m、1H)、2.66〜2.60(m、2H)、2.50〜2.45(m、5H)。
250mLの2口RBF中の100mLの乾燥DCM中の化合物515の撹拌溶液に、NEt3(37.2mL、0.2669mol)を添加し、窒素雰囲気下で0℃まで冷却した。50mLの乾燥DCM中のN−(ベンジルオキシ−カルボニルオキシ)−スクシンイミド(20g、0.08007mol)を緩徐に添加した後、反応混合物を室温まで加温させた。(TLCによる2〜3時間の)反応が完了した後、混合物を1NのHCl溶液(1×100mL)および飽和NaHCO3溶液(1×50mL)で順次洗浄した。その後、有機層を無水Na2SO4上で乾燥させ、溶媒を蒸発させて、粗物質を得て、これをシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して、粘着性の塊として516を得た。収量:11g(89%)。1H−NMR(CDCl3、400MHz):δ=7.36〜7.27(m、5H)、5.69(s、2H)、5.12(s、2H)、4.96(br.、1H)、2.74(s、3H)、2.60(m、2H)、2.30〜2.25(m、2H)。LC−MS[M+H]−232.3(96.94%)。
シクロペンテン516(5g、0.02164mol)を、500mLの1口RBF中の220mLのアセトンおよび水(10:1)の溶液中に溶解し、これに、N−メチルモルホリン−N−オキシド(7.6g、0.06492mol)、続いて、4.2mLのtert−ブタノール中の7.6%のOsO4の溶液(0.275g、0.00108mol)を室温で添加した。反応が完了した後(約3時間)、混合物に固体Na2SO3を添加して反応停止処理し、結果として得られた混合物を室温で1.5時間撹拌した。反応混合物をDCM(300mL)で希釈し、水(2×100mL)、続いて、飽和NaHCO3(1×50mL)溶液、水(1×30mL)、最後にブライン(1×50mL)で洗浄した。有機相をNa2SO4上で乾燥させ、溶媒を真空中で除去した。粗物質をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製して、ジアステレオマーの混合物を得て、これを分取HPLCで分離した。収量:−6g(粗)
化合物505の合成について記載される手順と同様の手順を用いて、化合物518(1.2g、41%)を無色の油として得た。1H−NMR(CDCl3、400MHz):δ=7.35〜7.33(m、4H)、7.30〜7.27(m、1H)、5.37〜5.27(m、8H)、5.12(s、2H)、4.75(m、1H)、4.58〜4.57(m、2H)、2.78〜2.74(m、7H)、2.06−2.00(m、8H)、1.96〜1.91(m、2H)、1.62(m、4H)、1.48(m、2H)、1.37〜1.25(br m、36H)、0.87(m、6H)。HPLC−98.65%。
ヘキサン(15mL)中の化合物518(1当量)の溶液を、THF(1M、2当量)中のLAHの氷冷溶液に、滴加様式で添加した。添加が完了した後、混合物を0.5時間にわたって40℃で加熱し、その後、氷浴上で再び冷却した。混合物を飽和Na2SO4水溶液で慎重に加水分解し、その後、セライトを通して濾過し、油に還元した。カラムクロマトグラフィーが純粋な519(1.3g、68%)をもたらし、これを無色の油として得た。13C NMR=130.2、130.1(×2)、127.9(×3)、112.3、79.3、64.4、44.7、38.3、35.4、31.5、29.9(×2)、29.7、29.6(×2)、29.5(×3)、29.3(×2)、27.2(×3)、25.6、24.5、23.3、226、14.1、エレクトロスプレーMS(正):C44H80NO2(M+H)+に対する分子量、計算値654.6、実測値654.6.
標準の方法または押出を含まない方法のいずれかによって調製された製剤を、同様の様式で特徴付けることができる。例えば、製剤は、典型的には、目視検査を特徴とする。それらは、凝集体または堆積物を含まない白みがかった半透明の溶液であるはずである。脂質ナノ粒子の粒径および粒径分布を、例えば、Malvern Zetasizer Nano ZS(Malvern(USA)を用いて、光散乱により測定することができる。粒子は、40〜100nm等の約20〜300nmの粒径であるべきである。粒径分布は、単峰型であるべきである。製剤中、ならびに捕捉された画分中の総dsRNA濃度は、色素排除アッセイを用いて推定される。製剤化されたdsRNAの試料を、製剤破壊界面活性剤、例えば、0.5%のTriton−X100の存在下または不在下で、Ribogreen(分子プローブ)等のRNA結合染料とともにインキュベートすることができる。製剤中の総dsRNAを、標準曲線と比較して、界面活性剤を含有する試料からのシグナルによって決定することができる。捕捉された画分を、「遊離」dsRNA含有量(界面活性剤の不在下におけるシグナルによって測定される)を総dsRNA含有量から差し引くことによって決定する。捕捉されたdsRNAのパーセントは、典型的には、85%超である。SNALP製剤について、粒径は、少なくとも30nm、少なくとも40nm、少なくとも50nm、少なくとも60nm、少なくとも70nm、少なくとも80nm、少なくとも90nm、少なくとも100nm、少なくとも110nm、および少なくとも120nmである。好適な範囲は、典型的には、少なくとも約50nm〜少なくとも約110nm、少なくとも約60nm〜少なくとも約100nm、または少なくとも約80nm〜少なくとも約90nmである。
経口投与用の組成物および製剤には、粉末もしくは顆粒、微粒子、ナノ粒子、水もしくは非水性媒体中の懸濁液もしくは溶液、カプセル、ゲルカプセル、サシェット、錠剤、または小型錠剤が含まれる。増粘剤、香味剤、希釈剤、乳化剤、分散助剤、または結合剤が望ましくあり得る。いくつかの実施形態において、経口製剤とは、本発明で取り上げられるdsRNAが、1つ以上の浸透促進剤、界面活性剤、およびキレート化剤と併用して投与されるものである。好適な界面活性剤には、脂肪酸および/またはそのエステルもしくは塩、胆汁酸および/またはその塩が含まれる。好適な胆汁酸/塩には、ケノデオキシコール酸(CDCA)およびウルソデオキシケノデオキシコール酸(UDCA)、コール酸、デヒドロコール酸、デオキシコール酸、グルコール酸(glucholic acid)、グリコール酸(glycholic acid)、グリコデオキシコール酸、タウロコール酸、タウロデオキシコール酸、タウロ−24,25−ジヒドロ−フシジン酸ナトリウム、ならびにグリコジヒドロフシジン酸ナトリウムが含まれる。好適な脂肪酸には、アラキドン酸、ウンデカン酸、オレイン酸、ラウリン酸、カプリル酸、カプリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、ステアリン酸、リノール酸、リノレン酸、ジカプリン酸、トリカプリン酸、モノオレイン、ジラウリン、グリセリル1−モノカプリン酸、1−ドデシルアザシクロヘプタン−2−オン、アシルカルニチン、アシルコリン、またはそれらのモノグリセリド、ジグリセリド、もしくは薬学的に許容される塩(例えば、ナトリウム)が含まれる。いくつかの実施形態において、浸透促進剤の組み合わせ、例えば、胆汁酸/塩と組み合わせた脂肪酸/塩が使用される。1つの例示的な組み合わせは、ラウリン酸、カプリン酸、およびUDCAのナトリウム塩である。浸透促進剤にはさらに、ポリオキシエチレン−9−ラウリルエーテル、ポリオキシエチレン−20−セチルエーテルが含まれる。本発明で取り上げられるdsRNAを、噴霧乾燥粒子を含む顆粒形態で経口送達するか、または微小粒子もしくはナノ粒子を形成するように複合することができる。dsRNA複合剤には、ポリ−アミノ酸類;ポリイミン類;ポリアクリレート類;ポリアルキルアクリレート類、ポリオキセタン類、ポリアルキルシアノアクリレート類;カチオン化ゼラチン類、アルブミン類、デンプン類、アクリレート類、ポリエチレングリコール類(PEG)、およびデンプン類;ポリアルキルシアノアクリレート類;DEAE誘導体化ポリイミン類、ポルラン(pollulan)類、セルロース類、およびデンプン類が含まれる。好適な複合剤には、キトサン、N−トリメチルキトサン、ポリ−L−リジン、ポリヒスチジン、ポリオルニチン、ポリスペルミン、プロタミン、ポリビニルピリジン、ポリチオジエチルアミノメチルエチレンP(TDAE)、ポリアミノスチレン(例えば、p−アミノ)、ポリ(メチルシアノアクリレート)、ポリ(エチルシアノアクリレート)、ポリ(ブチルシアノアクリレート)、ポリ(イソブチルシアノアクリレート)、ポリ(イソヘキシルシアノアクリレート)、DEAE−メタクリレート、DEAE−ヘキシルアクリレート、DEAE−アクリルアミド、DEAE−アルブミンおよびDEAE−デキストラン、ポリメチルアクリレート、ポリヘキシルアクリレート、ポリ(D,L−乳酸)、ポリ(DL−乳酸−co−グリコール酸(PLGA)、アルギン酸塩、ならびにポリエチレングリコール(PEG)が含まれる。 dsRNAの経口製剤およびそれらの調製は、米国特許第6,887,906号、米国公開第20030027780号、および米国特許第6,747,014号に詳細に記載されており、それぞれ、参照により本明細書に組み込まれる。
エマルジョン
本発明の組成物を、エマルジョンとして調製および製剤化することができる。エマルジョンは、典型的には、通常直径0.1μmを超える液滴の形態で別の液体中に分散した1つの液体の多相系である(例えば、Ansel’s Pharmaceutical Dosage Forms and Drug Delivery Systems,Allen,LV.,Popovich NG.,and Ansel HC.,2004,Lippincott Williams & Wilkins(8th ed.),New York,NY、Idson,in Pharmaceutical Dosage Forms,Lieberman,Rieger and Banker(Eds.),1988,Marcel Dekker,Inc.,New York,N.Y.,volume 1,p.199、Rosoff,in Pharmaceutical Dosage Forms,Lieberman,Rieger and Banker(Eds.),1988,Marcel Dekker,Inc.,New York,N.Y.,Volume 1,p.245、Block in Pharmaceutical Dosage Forms,Lieberman,Rieger and Banker(Eds.),1988,Marcel Dekker,Inc.,New York,N.Y.,volume 2,p.335、Higuchi et al.,in Remington’s Pharmaceutical Sciences,Mack Publishing Co.,Easton,Pa.,1985,p.301を参照のこと)。エマルジョンは、多くの場合、相互に密接に混合され、かつ分散する2つの非混合性液相を含む二相系である。概して、エマルジョンは、油中水(w/o)または水中油(o/w)のいずれかの種類であり得る。水相がバルク油相中で微細に分割され、微小液滴として分散する場合、結果として得られる組成物は、油中水(w/o)型エマルジョンと呼ばれる。あるいは、油相がバルク水相中で微細に分割され、微小液滴として分散する場合、結果として得られる組成物は、水中油(o/w)型エマルジョンと呼ばれる。エマルジョンは、分散相に加えて、さらなる構成成分と、分離相として水相、油相、またはそれ自体のいずれかに溶液として存在し得る活性薬物とを含有し得る。乳化剤、安定剤、染料、および抗酸化剤等の薬学的賦形剤も、必要に応じて、エマルジョン中に存在してもよい。薬学的エマルジョンは、例えば、油中水中油(o/w/o)および水中油中水(w/o/w)型エマルジョンの場合等、2つより多い相から成る多重エマルジョンでもあり得る。このような複合製剤は、多くの場合、単純な二元エマルジョンが提供しないある特定の利点を提供する。o/w型エマルジョンの個々の油滴が小さな水滴を囲む多重エマルジョンは、w/o/w型エマルジョンを構成する。同様に、油性の連続相中で安定化された水の小球で囲まれた油滴の系は、o/w/o型エマルジョンを提供する。
一実施形態において、本発明は、動物の皮膚への核酸、特にiRNAの効率的な送達をもたらすために、様々な浸透促進剤を採用する。ほとんどの薬物は、イオン化形態および非イオン化形態の両方で溶液中に存在する。しかしながら、通常、脂溶性または親油性の薬物のみが、容易に細胞膜を横断する。横断される膜が浸透促進剤で処理されている場合、非親油性薬物でさえも細胞膜を横断し得ることが見出されている。細胞膜にわたる非親油性薬物の拡散を支援することに加えて、浸透促進剤は、親油性薬物の透過性も亢進する。
本発明のある特定の組成物は、担体化合物も製剤中に組み込む。本明細書で使用される「担体化合物」または「担体」は、不活性(すなわち、それ自体は生物学的活性を有しない)であるが、例えば、生物学的に活性な核酸を分解するか、または循環からそれを除去することを促進することによって、生物学的活性を有する核酸の生物学的利用能を低下させるインビボプロセスにより核酸と認識される核酸もしくはその類似体を指し得る。核酸と担体化合物の同時投与(典型的には、後者の物質を過剰に有する)は、恐らく共通の受容体への担体化合物と核酸との間の競合により、肝臓、腎臓、または他の循環外貯蔵所で回収される核酸の量の著しい減少をもたらし得る。例えば、ポリイノシン酸、硫酸デキストラン、ポリシチジン酸、または4−アセトアミド−4’イソチオシアノ−スチルベン−2,2’−ジスルホン酸と同時投与されるとき、部分的にホスホロチオエートであるdsRNAの肝組織における回収を低減させることができる(Miyao et al.,DsRNA Res.Dev.,1995,5,115−121、Takakura et al.,DsRNA & Nucl.Acid Drug Dev.,1996,6,177−183)。
担体化合物とは対照的に、「医薬担体」または「賦形剤」は、1つ以上の核酸を動物に送達するための薬学的に許容される溶媒、懸濁剤、または任意の他の薬理学的に不活性なビヒクルである。賦形剤は、液体または固体であってもよく、核酸および所与の医薬組成物の他の構成成分と組み合わされるときに、所望の用量、稠度等を提供するように、計画された投与様式を念頭において選択される。典型的な医薬担体には、結合剤(例えば、アルファ化トウモロコシデンプン(maize starch)、ポリビニルピロリドン、またはヒドロキシプロピルメチルセルロース等)、充填剤(例えば、ラクトースおよび他の糖類、微結晶セルロース、ペクチン、ゼラチン、硫酸カルシウム、エチルセルロース、ポリアクリル酸塩、またはリン酸水素カルシウム等)、滑沢剤(例えば、ステアリン酸マグネシウム、滑石、シリカ、コロイド状二酸化ケイ素、ステアリン酸、ステアリン酸金属塩、水素化植物油、トウモロコシデンプン(corn startch)、ポリエチレングリコール、安息香酸ナトリウム、酢酸ナトリウム等)、崩壊剤(例えば、デンプン、デンプングリコール酸ナトリウム等)、ならびに湿潤剤(例えば、ラウリル硫酸ナトリウム等)が含まれるが、これらに限定されない。
本発明の組成物は、その技術分野で確立された使用レベルの通常医薬組成物中に見られる他の補助成分をさらに含み得る。したがって、例えば、この組成物は、例えば、鎮痒薬、収斂薬、局所麻酔薬、もしくは抗炎症薬等の適合性の薬学的に活性な物質をさらに含有し得るか、または、染料、香味剤、防腐剤、抗酸化剤、乳白剤、増粘剤、および安定剤等の本発明の組成物の様々な剤形を物理的に製剤化するのに有用な物質をさらに含有し得る。しかしながら、そのような物質は、添加されるとき、本発明の組成物の構成成分の生物活性を過度に妨害すべきではない。製剤を滅菌し、所望の場合、その製剤の核酸(複数を含む)と有害に相互作用しない補助剤、例えば、滑沢剤、防腐剤、安定剤、湿潤剤、乳化剤、浸透圧に影響を与える塩、緩衝液、着色剤、香味料、および/または芳香族物質等と混合することができる。
一態様において、本発明は、哺乳動物におけるPCSK9遺伝子の発現を阻害するためにsiRNAの使用を提供する。方法は、標的PCSK9遺伝子の発現が減少するように、哺乳動物に本発明の組成物を投与することを含む。いくつかの実施形態において、PCSK9発現は、長期間、例えば、少なくとも1週間、2週間、3週間、もしくは4週間、またはそれ以上の期間減少する。例えば、ある特定の場合において、PCSK9遺伝子の発現は、本明細書に記載のsiRNAの投与により、少なくとも約5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、または50%抑圧される。いくつかの実施形態において、PCSK9遺伝子は、siRNAの投与により、少なくとも約60%、70%、または80%抑圧される。いくつかの実施形態において、PCSK9遺伝子は、二本鎖オリゴヌクレオチドの投与により、少なくとも約85%、90%、または95%抑圧される。
さらなる実施形態において、siRNAの投与は、さらなる治療薬と組み合わせて投与される。siRNAおよびさらなる治療薬を、同一の組成物と組み合わせて、例えば、非経口で投与することができるか、あるいはさらなる治療薬を、別個の組成物の一部として、または本明細書に記載の別の方法を用いて投与することができる。
一態様において、本発明は、患者がHDLの低下、ApoBの低下、または総コレステロールの低下させることなくLDLの低下を必要とするかに基づいて患者を選択することによって、患者を治療する方法を提供する。方法は、例えば、患者のHDLレベルを実質的に低下させることなく、患者のLDLレベルまたはApoBレベルを低下させるのに十分な量のsiRNAを患者に投与することを含む。
試薬の供給源
試薬の供給源が本明細書に具体的に提供されない場合、そのような試薬を、分子生物学における用途に対する品質/純度基準で、分子生物学用の試薬の任意の供給業者から入手することができる。
すべてのオリゴヌクレオチドを、AKTAオリゴパイロット合成機上で合成する。標準の保護基、5’−O−ジメトキシトリチルN6−ベンゾイル−2’−t−ブチルジメチルシリル−アデノシン−3’−O−N,N’−ジイソプロピル−2−シアノエチルホスホルアミダイト、5’−O−ジメトキシトリチル−N4−アセチル−2’−t−ブチルジメチルシリル−シチジン−3’−O−N,N’−ジイソプロピル−2−シアノエチルホスホルアミダイト、5’−O−ジメトキシトリチル−N2−−イソブチル−2’−t−ブチルジメチルシリル−グアノシン−3’−O−N,N’−ジイソプロピル−2−シアノエチルホスホルアミダイト、および5’−O−ジメトキシトリチル−2’−t−ブチルジメチルシリル−ウリジン−3’−O−N,N’−ジイソプロピル−2−シアノエチルホスホルアミダイト(Pierce Nucleic Acids Technologies)を有する市販の制御された孔質ガラス固体支持体(dT−CPG、500Å、Prime Synthesis)およびRNAホスホルアミダイトを、オリゴヌクレオチドの合成のために使用した。2’−Fホスホルアミダイト、5’−O−ジメトキシトリチル−N4−アセチル−2’−フルオロ−シチジン−3’−O−N,N’−ジイソプロピル−2−シアノエチル−ホスホルアミダイトおよび5’−O−ジメトキシトリチル−2’−フルオロ−ウリジン−3’−O−N,N’−ジイソプロピル−2−シアノエチル−ホスホルアミダイトを(Promega)から購入する。ホスホルアミダイトはすべて、10%のTHF/ANC(v/v)中0.2Mの濃度で使用されるグアノシンを除いては、アセトニトリル(CH3CN)中0.2Mの濃度で使用する。16分間のカップリング/再循環時間を用いる。活性化剤は、5−エチルチオテトラゾール(0.75M、American International Chemicals)であり、PO−酸化のためにヨウ素/水/ピリジンを使用し、PS−酸化のために2,6−ルチジン/ACN(1:1v/v)中のPS−酸化PADS(2%)を使用する。
合成が完了した後、支持体を100mLのガラスボトル(VWR)に移す。オリゴヌクレオチドを、55℃で6.5時間の80mLのエタノールアンモニア混合物[アンモニア:エタノール(3:1)]を用いた塩基およびリン酸基の脱保護と同時に、支持体から切断する。ボトルを氷上で短期間冷却し、その後、エタノールアンモニア混合物を新しい250mLボトルに濾過する。CPGをエタノール/水(1:1v/v)の2×40mL部分で洗浄する。その後、混合物の体積を、ロータリーエバポレータを用いて約30mLに減少させる。その後、混合物をドライアイス上で冷凍し、真空遠心分離装置(Speed−Vac)を用いて真空下で乾燥させる。
乾燥させた残基を、26mLのトリエチルアミン、トリエチルアミン三フッ化水素酸塩(TEA・3HF)またはピリジン−HF、およびDMSO(3:4:6)中に再懸濁し、60℃で90分間加熱して、2’位のtert−ブチルジメチルシリル(TBDMS)基を除去する。その後、反応物を50mLの20mM酢酸ナトリウムで反応停止処理し、pHを6.5に調整する。精製するまで、オリゴヌクレオチドを冷凍庫に保存する。
オリゴヌクレオチドを精製前に高速液体クロマトグラフィー(HPLC)で分析し、緩衝液およびカラムの選択は、配列および/または結合リガンドの性質に依存する。
リガンド結合オリゴヌクレオチドを、逆相分取HPLCで精製する。非結合オリゴヌクレオチドを、屋内で充填したTSKゲルカラムの陰イオン交換HPLCで精製する。緩衝液は、10%のCH3CN中20mMリン酸ナトリウム(pH8.5)(緩衝液A)、および10%のCH3CN中20mMリン酸ナトリウム、1MのNaBr(pH8.5)(緩衝液B)である。全長オリゴヌクレオチドを含有する画分をプールし、脱塩し、凍結乾燥する。約0.15ODの脱塩されたオリゴヌクレオチドを水中で希釈して150μLにし、その後、CGEおよびLC/MS分析のために特殊のバイアルにピペットで移した。その後、化合物をLC−ESMSおよびCGEで分析する。
iRNAの一般的な調製について、等モル量のセンス鎖およびアンチセンス鎖を、1倍のPBS中で、95℃で5分間加熱し、室温まで緩徐に冷却する。二本鎖の完全性を、HPLC分析により確認する。
表B:核酸配列の表示において用いるヌクレオチドモノマーの略語これらのモノマーが、オリゴヌクレオチド中に存在する場合、5’−3’−ホスホジエステル結合によって相互に結合されることが理解される。
PCSK9 siRNAを用いた設計、合成、およびアッセイの詳細な記述を、2007年5月10日出願の米国特許出願第11/746,864号(現在の米国特許第7,605,251号)および2007年5月10日出願の国際特許出願第PCT/US2007/068655号(国際公開第WO2007/134161号として公開されている)および2009年6月4日出願の米国特許出願第12/478,452号(米国第2010/0010066号として公開されている)および2009年1月30日出願の国際特許出願第PCT/US2009/032743号(国際公開第WO2009/134487号として公開されている)で見出すことができる。すべての目的のために、これらすべては、参照によりこれらの全体が組み込まれる。
3つの組のPCSK9二本鎖、1)ヒトとNHP PCSK9(利用可能な場合はカニクイザル、さもなければアカゲザル)との間に100%の同一性を有する二本鎖、2)NHP PCSK9に対してアンチセンス位置1、18、または19でミスマッチを許容したヒトPCSK9に対して100%の同一性を有する二本鎖、ならびに3)ヒトPCSK9に対してミスマッチおよび/または欠失を含有する二本鎖を設計した。それぞれの二本鎖組の大きさ、内容物、および設計基準は、以下の通りであった。
1.ヒトとカニクイザルPCSK9(ヒトPCSK9 NM_174936.2のスパン位置(spanning position)695〜2916)ならびにヒトおよびアカゲザルPCSK9(スパン位置1〜695/2916〜3561)が完全に一致したヒト/NHP二本鎖。すべて25〜65%のGC含有率を有し、いずれもアンチセンス位置1および2の両方でGまたはCを有さず、いずれも4より長い一連の反復ヌクレオチドを有さなかった。配列は、表1に列挙される。
2.アンチセンス位置1、18、および19でミスマッチを有するヒト/NHP二本鎖。これらの二本鎖は、ヒトPCKS9に完全一致するが、アンチセンス位置1、18、または19のうちのいずれかでNHP PCSK9に対するミスマッチを許容する。カニクイザルおよび/またはアカゲザルPCSK9転写物を、上の第1の組で使用した。すべて25〜65%のGC含有率を有し、いずれもアンチセンス位置1でGまたはCを有さず、いずれも5より長い一連の反復ヌクレオチドを有さなかった。配列は、表1に列挙される。
3.設計されたミスマッチ(9本の二本鎖、表6を参照のこと)および/または欠失(12本の二本鎖、表7を参照のこと)を有するヒトPCSK9二本鎖。これらの二本鎖は、AD−9680の変異体である。
PCSK9配列を、MerMade192合成機上で、1umolスケールで合成した。
・センス鎖中のすべてのピリミジン(シトシンおよびウリジン)を、対応する2’−O−メチル塩基(2’O−メチルCおよび2’−O−メチルU)に置換した。
・アンチセンス鎖において、リボAヌクレオシドに隣接した(5’位に向かう)ピリミジン(CおよびU)を、それらの対応する2−O−メチルヌクレオシドに置換した。
・センス配列およびアンチセンス配列の両方の3’末端で2塩基dTdTの拡張を導入した。この2塩基オーバーハングは、ホスホロチオエート結合を有する。
第1のステップにおいてメチルアミン、および第2のステップにおいてトリエチルアミン3HFを用いて、合成した配列を96ウェルプレート内で切断および脱保護した。粗配列をアセトン:エタノール混合物を用いて沈殿させ、ペレットを0.02Mの酢酸ナトリウム緩衝液中に再懸濁させた。それぞれの配列からの試料をLC−MSによって分析し、結果として得られた質量データにより、配列の同一性を確認した。選択された組の試料もIEXクロマトグラフィによって分析した。
粗PCSK9一本鎖を、二等分し、そのうちの1つをイオン交換クロマトグラフィーによって精製した。Source15Qカラムを用いたAKTA Explorer精製システムをこのプロセスのために使用した。精製を、カラムおよび60℃に設定したインライン緩衝液加熱器を用いて行った。全長配列に対応する単一ピークを溶離液中に収集した。精製した一本鎖を、イオン交換クロマトグラフィーを用いて純度について分析した。
細胞培養およびトランスフェクション:
Hela細胞(ATCC、Manassas、VA)を、10%FBS、ストレプトマイシン、グルタミン(ATCC)を補充したEagleのMinimum Essential Medium(EMEM、ATCC)中、5%CO2の雰囲気下で、37℃でほぼコンフルエンスになるまで成長させた後、トリプシン処理によってプレートから放出させた。1つのウェル当たり5μLのOpti−MEMおよび5μLのsiRNA二本鎖を、1つのウェル当たり10μLのOpti−MEMおよび0.2μLのLipofectamine RNAiMax(Invitrogen,Carlsbad CA.カタログ番号13778−150)とともに96ウェルプレートに添加することによって、逆トランスフェクションを実行し、室温で15分間インキュベートした。抗生物質を有さず、2.0×104Hela細胞を含有する80μLの完全成長培地を添加した。場合によって、細胞を最初にウェルに添加し、4〜5時間後に、上述のトランスフェクション試薬を添加した。細胞をRNA精製の前に24時間インキュベートした。0.1または10nMの最終二本鎖濃度で実験を行った。用量応答スクリーニングについて、HeLa細胞を用量の範囲にわたってsiRNAでトランスフェクトした。
細胞を回収し、140μLの溶解/結合溶液中に溶解し、その後、Eppendorf Thermomixerを用いて850rpmで1分間混合した(混合速度はプロセスを通して同一であった)。20マイクロリットルの磁気ビーズおよび溶解/結合エンハンサー混合物を細胞溶解物に添加し、5分間混合した。磁気ビーズを磁気スタンドを用いて捕捉し、ビーズを妨害することなく上清を除去した。上清を除去した後、磁気ビーズを洗浄液1(イソプロパノールを添加したもの)で洗浄し、1分間混合した。ビーズを再度捕捉し、上清を除去した。その後、ビーズを150μLの洗浄液2(エタノールを添加したもの)で洗浄し、捕捉し、上清を除去した。その後、50μLのDNase混合物(MagMax Turbo DNase緩衝液およびTurbo DNase)をビーズに添加し、それらを10〜15分間混合した。混合した後、100μLのRNA再結合溶液を添加し、3分間混合した。上清を除去し、磁気ビーズを150μLの洗浄液2で再度洗浄し、1分間混合し、上清を完全に除去した。磁気ビーズを2分間混合して乾燥させた後、RNAを50μLの水で溶出した。
1反応当たり2μLの10倍緩衝液、0.8μLの25倍dNTP、2μLのランダムプライマー、1μLの逆転写酵素、1μLのRNase阻害剤、および3.2μLの水H2Oのマスター混合物を、10μLの全RNAに添加した。cDNAを、以下のステップ:25℃で10分間、37℃で120分間、85℃で5秒、4℃で維持を介して、Bio−Rad C−1000またはS−1000サーマルサイクラー(Hercules,CA)を用いて生成した。
2μLのcDNAを、LightCycler480 384ウェルプレート(Roche、カタログ番号0472974001)中、1ウェル当たり1μLのGAPDH TaqManプローブ(Applied Biosystems、カタログ番号4326317E)、1μLのPCSK9 TaqManプローブ(Applied Biosystems、カタログ番号HS03037355_M1)および10μLのRocheプローブマスター混合物(Roche、カタログ番号04887301001)を含有するマスター混合物に添加した。リアルタイムPCRをLightCycler480リアルタイムPCR機(Roche)で行った。それぞれの二本鎖を、2つの独立したトランスフェクションにおいて試験し、それぞれのトランスフェクションを二重にアッセイした。
規定された用量(単数または複数)で24時間インキュベートした後、培地を除去し、細胞を100uLの溶解混合物(20mg/mLの最終濃度の、1容量の溶解混合物、2容量のヌクレアーゼを含まない水、および1mL当たり10uLのプロテイナーゼ−Kの混合物)中に溶解し、その後、65℃で35分間インキュベートした。その後、20μLの作業プローブセット(遺伝子標的用のTTRプローブおよび内在性コントロール用のGAPDH)ならびに80uLの細胞溶解物を捕捉プレートに添加した。捕捉プレートを55℃±1℃でインキュベートした(約16〜20時間)。翌日、捕捉プレートを1倍洗浄緩衝液(ヌクレアーゼを含まない水、緩衝液構成成分1、および洗浄緩衝液構成成分2)で3時間洗浄し、その後、1分間遠心分離で乾燥させて240gにした。100uLの事前増幅作業試薬をアルミホイルで密封した捕捉プレートに添加し、55℃±1℃で1時間インキュベートした。1時間のインキュベーション後、洗浄ステップを繰り返し、その後、100μLの増幅作業試薬を添加した。1時間後、洗浄および乾燥ステップを繰り返し、100μLの標識プローブを添加した。捕捉プレートを50℃±1℃で1時間インキュベートした。その後、プレートを1倍洗浄緩衝液で洗浄し、乾燥させ、100μLの基質を捕捉プレートに添加した。5〜15分間のインキュベーション後、捕捉プレートをSpectraMax照度計(Molecular Devices,Sunnyvale,CA)を用いて読み取った。
平均バックグラウンドをそれぞれの三重試料から差し引き、三重GAPDH(対照プローブ)およびPCSK9(実験プローブ)を平均化し、その後、比率:(実験プローブ−バックグラウンド)/(対照プローブ−バックグラウンド)を得ることによって、bDNAデータを分析した。
表2に記載の1072エンドライト化学修飾したPCSK9 siRNAを、0.1nMおよび10nMの単回用量実験で使用した。結果が表3に示される。
LDLR遺伝子に対してヘテロ接合性である患者における高コレステロール血症の治療の満たされていないニーズが大いに存在する。これらの個人は、LDLRの1つの変異体および1つの重量コピーを有し、結果として、著しく上昇したLDLcレベルおよび心血管系イベントのより高い発生率/危険性を有する。LDLRヘテロ接合体マウスにおけるsiRNAを用いたPCSK9のサイレンシングおよびそれらの総コレステロールへの効果を調査した。
ヒト対象を医薬組成物、例えば、siRNAを有する核酸脂質粒子で治療する。
表1.化学修飾していないPCSK9 siRNA(1072本の二本鎖、AD−27043〜28122)
本出願は、2011年10月31日出願の国際出願番号PCT/US2011/058682の国内段階であり、2010年10月29日出願の米国仮出願第61/408,513号の利益を主張し、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
Claims (38)
- PCSK9の発現を阻害するための二本鎖リボ核酸(dsRNA)であって、AD−27919からなる、dsRNA。
- PCSK9の発現を阻害するための二本鎖リボ核酸(dsRNA)であって、AD−9680を除く、表1、2、6、または7に記載のdsRNAからなる、dsRNA。
- PCSK9の発現を阻害するための二本鎖リボ核酸(dsRNA)であって、前記dsRNAは、センス鎖と、PCSK9 mRNA転写物に対する相補性領域を含むアンチセンス鎖と、を含み、前記アンチセンス鎖は、表1、2、6、または7に列挙されるアンチセンス配列のうちの1つとはヌクレオチドが3個以下異なる少なくとも15個の連続ヌクレオチドを含む、dsRNA。
- 前記相補性領域が、少なくとも17ヌクレオチド長である、請求項3に記載のdsRNA。
- 前記相補性領域が、19〜21ヌクレオチド長である、請求項3に記載のdsRNA。
- 前記相補性領域が、19ヌクレオチド長である、請求項3に記載のdsRNA。
- 前記相補性領域が、表1、2、6、または7のアンチセンス配列のうちの1つからなる、請求項3に記載のdsRNA。
- 前記dsRNAが、少なくとも1個の修飾ヌクレオチドを含む、請求項3〜7のいずれか1項に記載のdsRNA。
- 前記修飾ヌクレオチドのうちの少なくとも1個が、2’−O−メチル修飾ヌクレオチド、5’−ホスホロチオエート基を含むヌクレオチド、およびコレステリル誘導体またはドデカン酸ビスデシルアミド基に連結された末端ヌクレオチドからなる群から選択される、請求項8に記載のdsRNA。
- 前記修飾ヌクレオチドが、2’−デオキシ−2’−フルオロ修飾ヌクレオチド、2’−デオキシ−修飾ヌクレオチド、ロックされたヌクレオチド、脱塩基ヌクレオチド、2’−アミノ−修飾ヌクレオチド、2’−アルキル−修飾ヌクレオチド、モルホリノヌクレオチド、ホスホルアミデート、およびヌクレオチドを含む非天然塩基からなる群から選択される、請求項8に記載のdsRNA。
- それぞれの鎖が、30ヌクレオチド長以下である、請求項3〜10のいずれか1項に記載のdsRNA。
- 少なくとも1本の鎖が、少なくとも1個のヌクレオチドの3’オーバーハングを含む、請求項3〜11のいずれか1項に記載のdsRNA。
- 少なくとも1本の鎖が、少なくとも2個のヌクレオチドの3’オーバーハングを含む、請求項12に記載のdsRNA。
- リガンドをさらに含む、請求項1〜13のいずれか1項に記載のdsRNA。
- 前記リガンドが、前記dsRNAの前記センス鎖の3’末端に結合される、請求項14記載のdsRNA。
- 請求項1〜15のいずれか1項に記載のdsRNAを含有する細胞。
- 請求項1〜15のいずれか1項に記載のdsRNAの少なくとも1本の鎖をコードするベクター。
- 請求項18に記載のベクターを含む細胞。
- 請求項1〜15のいずれか1項に記載のdsRNAを含むPCSK9遺伝子の発現を阻害するための医薬組成物。
- 脂質製剤をさらに含む、請求項19に記載の医薬組成物。
- 前記脂質製剤が、核酸脂質粒子製剤である、請求項19に記載の医薬組成物。
- 細胞内のPCSK9発現を阻害する方法であって、
(a)請求項1〜15のいずれか1項に記載のdsRNAを前記細胞に導入することと、
(b)ステップ(a)において生成された前記細胞をPCSK9遺伝子の前記mRNA転写物の分解をもたらすのに十分な時間維持し、それによって、前記細胞内の前記PCSK9遺伝子の発現を阻害することと、を含む、方法。 - 前記PCSK9発現が少なくとも30%阻害される、請求項22に記載の方法。
- PCSK9発現によって媒介される障害を治療する方法であって、そのような治療を必要とするヒトに、請求項1〜15のいずれかに記載の治療的に有効な量のdsRNAを投与することを含む、方法。
- 前記ヒトが、高脂血症を有する、請求項24に記載の方法。
- 前記dsRNAが、前記対象の体重1kg当たり0.01mg〜5mgの濃度で投与される、請求項24に記載の方法。
- LDLR遺伝子に対してヘテロ接合性であるヒトにおける高コレステロール血症を治療するための方法であって、前記ヒトのLDLR遺伝子型または表現型を決定することと、前記ヒトに、脂質で製剤化されたAD−9680 dsRNAを含む有効な量のMC3を0.01〜5.0mg/kg(体重)の投与量で投与することと、を含み、投与が、血清コレステロールの低下をもたらす、方法。
- LDLR遺伝子に対してヘテロ接合性である対象における高コレステロール血症を治療するための方法であって、前記対象に、PCSK9の発現を阻害するために有効な量のdsRNAを投与することを含み、前記dsRNAは、センス鎖と、PCSK9 RNA転写物に対する相補性領域を含むアンチセンス鎖と、を含み、前記dsRNAは、30個以下の塩基対の長さである、方法。
- 前記アンチセンス鎖が、AD−9680のセンス配列またはAD−10792のセンス配列の少なくとも15個の連続ヌクレオチドに対して相補的である、請求項28に記載の方法。
- 前記dsRNAが、AD−10792またはAD−9680からなる、請求項28に記載の方法。
- 前記dsRNAが、脂質で製剤化される、請求項28に記載の方法。
- 前記dsRNAが、表Aから選択される製剤において脂質で製剤化される、請求項28に記載の方法。
- 前記対象が、霊長類または齧歯類である、請求項28に記載の方法。
- 前記対象が、ヒトである、請求項28に記載の方法。
- 前記有効な量が、前記対象の体重1kg当たり0.01〜5.0mgの濃度である、請求項28に記載の方法。
- 前記対象のLDLR遺伝子型または表現型を決定することをさらに含む、請求項28に記載の方法。
- 投与が、前記対象の血清コレステロールの減少をもたらす、請求項28に記載の方法。
- 前記対象の前記血清コレステロールのレベルを決定することをさらに含む、請求項28に記載の方法。
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