JP2012187101A - 尿臭発生部の視覚的判定方法 - Google Patents

Abstract

【課題】尿の付着した対象から時間の経過に伴い発生する尿臭発生部の位置を簡便に特定する方法の提供。
【解決手段】尿臭判定の対象となる物品、設備又は素材に対し、成分Ａを含有する液剤を適用する第一ステップと、前記液剤を適用した物品、設備又は素材で酵素反応を進行させる第二ステップと、前記液剤を適用した物品、設備又は素材の色の変化を観察する第三ステップを有し、色の変化した領域を尿臭発生部と判定し、色の変化量を尿臭強度と対応させる尿臭発生部及び尿臭強度の視覚的判定方法。並びに、尿臭生成抑制効果の評価対象としての素材、部材又は剤に、成分Ａを含有する液剤を接触させ、酵素反応による評価対象の色の変化が少ない評価対象を選択する、尿臭生成抑制効果に優れた素材、部材、尿臭生成抑制剤、又は部材の配置のスクリーニング方法。成分Ａ：酵素反応によって水に難溶の色素化合物又は蛍光色素化合物を生じる酵素基質型の酵素活性検出試薬
【選択図】図５

Description

本発明は尿臭発生部及び尿臭強度の簡便な判定方法、更にはこの方法を応用した尿臭生成抑制効果に優れた吸収性物品、吸水性ポリマー、尿臭生成抑制剤のスクリーニング方法に関する。

近年、消費者の衛生志向の高まりから、見た目の汚ればかりでなく汚れの存在を想起させる臭気についても、これを除去することが強く望まれている。特に尿に由来する臭気は、生活環境悪臭の中でもヒトに与える不快感がとりわけ大きい。例えばトイレ内においては、飛沫として便器の外側に残った尿が、その存在が目視で確認しづらいことから長期に渡ってその場に残り、悪臭の発生源となる場合がある。また、下着やオムツ、生理用品などのサニタリー製品も、尿が付着した状態で生活環境中に一定期間存在する場面があり、尿を由来とした悪臭の発生源となりうる。

一方、通常、排尿直後の尿の臭気は非常に弱く、尿に由来する悪臭成分の大部分は、尿中の有機物が微生物の酵素によって分解されることにより時間の経過に伴い発生してくるものと考えられている。このような微生物由来悪臭に対する消臭・防臭技術としては、悪臭成分を物理的又は化学的に除去する消臭剤や、悪臭を感覚的にマスキングする香料だけでなく、悪臭の発生を元から持続的に抑制できるとして、臭気原因微生物に対する抗菌剤や原因酵素（ウレアーゼ、β-グルクロニダーゼ、アリールサルファターゼ等）に対する酵素阻害剤の使用が提案されている。

一方、このような臭気やこれに関わる微生物を簡便に検出する手法としては、例えば特許文献１では酸塩基指示薬等の臭気に感色性のある指示薬を含むオムツ等のサニタリー製品が開示されている。

また、特許文献２では細菌に由来する揮発性成分をGC分析あるいは指示薬で検出することによって微生物の存在を検出する手法が開示されている。これによれば、例えば大腸菌の存在は、ジメチルアミノシンナミックアルデヒドで染色された綿を大腸菌の懸濁液に露出させ、菌体の産するインドールによる指示薬の変色によって確認される。

また、特許文献３ではβ-グルクロニダーゼ又はアリールサルファターゼの基質型酵素活性検出試薬を含有する培地によって、大腸菌を含む尿路感染症関連細菌を検出する方法が提案されている。この手法では前述の培地に検体を加えて培養し、菌体酵素に由来するコロニー及び／又は培地の着色を目視観察することによって微生物の検出を行う。

特表2007-508105号公報 特表2008-538179号公報 特表平9-512438号公報

前述のように、尿臭気の消臭・防臭技術としては、消臭剤、マスキング剤、抗菌剤、酵素阻害剤等、様々な剤の使用が考えられるが、これら剤の適用部位を決定する際、尿臭発生部の位置情報は非常に重要である。とりわけ抗菌剤、酵素阻害剤のような防臭剤は、剤の適用部位が臭気発生部から外れると著しく効果が落ちる場合があり、臭気発生部への適用は必須と言える。また、特に吸収性物品のように尿が様々な素材と接触しながら移動していく製品について、消臭・防臭剤の配合部位を決定するためには、尿臭発生部を的確に特定する必要がある。

このように、尿臭発生部及び尿臭強度の判定方法、とりわけ簡便な臭気発生部の可視化手法は、消臭・防臭剤の配合部位や配合量の最適化のため強く望まれる技術であるが、一方で、臭気成分には強い拡散性があるため、例えば特許文献１及び２のように臭気成分自体を指示薬あるいはGC分析等によって検出する手法では、高い空間分解能で臭気発生部を特定することは非常に困難である。

また、特許文献３のように培地での培養を前提とする方法は、微生物の増殖部位として臭気発生部の特定は可能であるが、求める空間分解能に応じてサンプルを細かく分割等する必要があることから操作は煩雑となり、製品と同様の系における尿臭発生部の特定は困難である。更に、観察される酵素活性についても培地中で発現するものであるため、得られた結果と臭気強度の関連性については推測の域を出ない。

そこで本発明は尿の付着した対象から時間の経過に伴い発生する尿臭発生部の位置を簡便に特定する方法を提供することを課題とする。

本発明者らは、上記の課題を解決するために、尿臭発生部の位置情報を視覚化する方法について鋭意研究を重ねた結果、本発明を完成するに至った。

すなわち、本発明は、尿臭判定の対象となる物品、設備又は素材に対し、成分Ａを含有する液剤を適用する第一ステップと、
前記液剤を適用した物品、設備又は素材で酵素反応を進行させる第二ステップと、
前記液剤を適用した物品、設備又は素材の色の変化を観察する第三ステップを有し、
色の変化した領域を尿臭発生部と判定し、色の変化量を尿臭強度と対応させる尿臭発生部及び尿臭強度の視覚的判定方法を提供するものである。
成分Ａ：酵素反応によって水に難溶の色素化合物又は蛍光色素化合物を生じる酵素基質型の酵素活性検出試薬

更に本発明は、尿臭生成抑制効果の評価対象としての素材、部材又は剤に、成分Ａを含有する液剤を接触させ、酵素反応による評価対象の色の変化が少ない評価対象を選択する、尿臭生成抑制効果に優れた素材、部材、尿臭生成抑制剤、又は部材の配置のスクリーニング方法を提供するものである。
成分Ａ：酵素反応によって水に難溶の色素化合物又は蛍光色素化合物を生じる酵素基質型の酵素活性検出試薬

本発明の視覚的判定方法によれば、簡便かつ客観的に、時間の経過に伴い発生する尿臭発生部及び臭気強度を特定／視覚化することができる。更に本発明の視覚的判定方法を、吸収性物品や吸水性ポリマーのスクリーニングに利用することにより、尿臭生成抑制効果に優れた製品構成や吸水性ポリマーを簡便に選択することができ、尿臭生成抑制剤のスクリーニングに使用することにより、実際の製品に配合する場合と同様の環境下における尿臭生成抑制剤の効果を簡便に把握し、尿臭生成抑制効果に優れた尿臭生成抑制剤を簡便に選択することができる。

実施例１で用いたマイクロテストチューブを示す模式図である。 実施例１における試験後の着色の様子を示す図である。 実施例２で用いた尿取りパッドの切片を示す図である。 実施例２における臭気強度評価値（官能評価値）と呈色面積比率の増加値（％）の相関を示すグラフである。 実施例２における吸水性ポリマーＢを用いた尿取りパッド切片の画像である。 実施例３における各サンプルの画像及び臭気強度評価値を示す図である。 実施例４における各サンプルの画像及び臭気強度評価値を示す図である。 実施例５におけるサンプルの画像及び臭気強度評価値を示す図である。 実施例６におけるサンプルの画像である。

<<尿臭の視覚的判定方法の対象となる物品、素材又は設備>>
本発明の判定方法は、尿臭の発生する物品（その構成部材を含む）、設備又は素材において尿臭発生部の位置及び尿臭強度を視覚的に判定する際に好適に用いられる。ここで、本願において「尿臭の発生する物品、設備又は素材」とは、実際に尿臭が発生している物品、設備又は素材であっても良いし、尿が吸収又は付着する可能性のある物品、設備又は素材であっても良い。

このような物品としては、尿取りパッド、軽失禁用品、オムツ、生理用品等のサニタリー製品、下着等の衣類、肌、寝具等のほか、犬、猫等のペット用排泄物関連製品（ペット用トイレ、尿吸収シート等）等のヒト以外の動物尿に由来する臭気の発生する物品を挙げることができ、更にはこれら物品の構成部材も挙げることができる。設備としては、便器、トイレ床等のトイレ環境が挙げられる。また、素材としては、上記物品又は設備を構成する材料、例えば吸水性ポリマー、パルプ、不織布、紙、布等の物品材料、陶器、硬質樹脂、木材、配管等の金属、あるいは種々の壁材、床材等の設備材料が挙げられる。

本発明の方法は、これら物品、設備又は素材の中でも、特に尿を吸収保持することを想定した尿取りパッド、軽失禁用品、オムツ、生理用品、ペット用尿吸収シート等の吸収性物品、及びこれらに用いられる吸水性ポリマー、パルプ、不織布、紙に対し、好適に用いることができる。また、より好ましくは尿取りパッド、軽失禁用品、オムツ、ペット用尿吸収シート及びこれらに用いられる吸水性ポリマーに用いることができる。

なお、本発明の対象となる吸水性ポリマーは上述の製品等に配合され、直接的あるいは副次的に尿を吸収保持する役割を担う親水性高分子であれば良く、その吸収性能や化学的組成については制限されない。

<<液剤について>>
＜成分Ａ：酵素活性検出試薬＞
本発明では後述するように第一ステップにおいて、尿臭発生部及び尿臭強度を特定／視覚化する目的で、酵素活性検出試薬（成分Ａ）を含有する液剤を使用する。

本発明において酵素活性検出試薬（成分Ａ）は、尿臭発生部を良好な空間分解能で特定する観点から、拡散の激しい揮発性成分の検出指示薬ではなく、酵素活性を直接的に検出できる酵素基質型の酵素活性検出試薬が用いられる。

更に本発明において使用する酵素活性検出試薬（成分Ａ）は、酵素反応により色素化合物又は蛍光色素化合物を生成するものであるが、この色素化合物又は蛍光色素化合物は、上記と同様の観点から、水中での拡散性が低いこと、すなわち水に難溶であることを要する。具体的には、上記色素化合物又は蛍光色素化合物は20℃の水に対する溶解度が10g/L未満が好ましく、更には６g/L未満が好ましく、更には0.5g/L未満が好ましく、特に0.05g/L未満であることが好ましい。

また、本発明において使用する酵素活性検出試薬（成分Ａ）は、対象となる物品に対して均一に分布することが好ましい。このため、酵素活性検出試薬（成分Ａ）は液剤の形で使用する。従って、酵素活性検出試薬（成分Ａ）は酵素反応前の時点では水中での拡散性が高いこと、即ち、酵素反応後に生じる色素化合物よりも水に対する溶解度が高いことが好ましい。

また、酵素反応により生成される上記化合物は、可視領域に吸収を持つ化合物又は可視領域に蛍光を発する化合物、すなわち色素化合物又は蛍光色素化合物であることを要する。なかでも、検出の容易性から、可視領域に吸収を持つ色素化合物であるものがより好ましい。更に尿の色とのコントラストが明確になることから、特に500〜800nmに吸収スペクトルを有する色素化合物が好ましく、青色に呈色するものがより好ましい。

検出の対象となる酵素は、尿臭発生の原因となる微生物によって産生される酵素であればよく、例えばグリコシダーゼ及びサルファターゼが挙げられる。また、実際に感じる尿臭気の強度、質、尿臭気発生までの時間等を近似的に再現できる観点からフェノール化合物及びインドール類の発生部を特定できるものが好ましく、このためβ-グルクロニダーゼあるいはアリールサルファターゼ活性を検出できるものが好ましく、更にはβ-グルクロニダーゼ活性を検出できるものが特に好ましい。

本発明の第一ステップで使用する液剤において、酵素活性検出試薬（成分Ａ）の液剤全体に対する含有量は、対塩基を除いた換算重量として0.002〜0.2w/v％とするのが良く、より好ましくは0.005〜0.05w/v％であり、更に好ましくは0.01〜0.025w/v％である。

＜グリコシダーゼ活性検出試薬＞
本発明において成分Ａとして用いられるグリコシダーゼ活性検出試薬は、酵素反応後に水に難溶の色素化合物又は蛍光色素化合物を生じる酵素基質型のグリコシダーゼ活性検出試薬であって、グリコシダーゼ活性を視覚的に検出できるものであれば特に限定されない。

酵素反応後に水に難溶の色素化合物又は蛍光色素化合物を生じるグリコシダーゼ活性検出試薬としては、例えば、フェノールフタレイン等のフェノール系酸塩基指示薬、5-ブロモ-4-クロロ-3-ヒドロキシインドール、5-ブロモ-6-クロロ-3-ヒドロキシインドール、6-クロロ-3-ヒドロキシインドール、3-ヒドロキシインドール等のヒドロキシインドール類縁体、4-メチルウンベリフェロン等のウンベリフェロン類縁体をアグリコン（非糖部分）とするグリコシド化合物を挙げることができる。

本発明で使用するグリコシダーゼ活性検出試薬は、上述のアグリコンと糖とがβ-D-グリコシド結合により結合したグリコシド化合物がより好ましい。

更に、発色のpH安定性の観点からヒドロキシインドール類縁体のグリコシド化合物、ウンベリフェロン類縁体のグリコシド化合物が好ましく、また、これらのうち、酵素反応により生じる化合物が可視領域に吸収を持つ色素化合物であり、これが水に特に難溶でもある観点から、ヒドロキシインドール類縁体のグリコシド化合物が特に好ましい。

これらのグリコシダーゼ活性検出試薬は糖部位の違いにより、種々のグリコシダーゼ活性を検出するものであり、例えば、グルコース、グルクロン酸、マンノース、ガラクトース、フルクトース、フコース、ラムノース、アラビノース、キシロースを糖部位として有するものを挙げることができる。この中でも尿臭関連微生物酵素の検出性の観点からグルコース、グルクロン酸、ガラクトースが前述のアグリコンと結合したものが好ましく、更にこれらの中でも尿臭気発生との関わりからグルクロン酸と前述のアグリコンのβ-D-グリコシド結合により成る化合物、即ちβ-グルクロニダーゼ活性検出試薬が特に好ましい。

このようなものとして具体的には、ヒドロキシインドール類縁体のグルクロン酸化化合物として5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニド、5-ブロモ-6-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニド、6-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニド、インドキシル-β-D-グルクロニドを、ウンベリフェロン類縁体のグルクロン酸化化合物としては4-メチルウンベリフェリル-β-D-グルクロニドを挙げることができる。

また、これらのうち、酵素反応により生じる化合物が可視領域に吸収を持つ色素化合物であり、これが水に特に難溶でもある観点から、ヒドロキシインドール類縁体のグルクロン酸化化合物、即ち、5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニド、5-ブロモ-6-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニド、6-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニド、インドキシル-β-D-グルクロニドがより好ましく、以上の中でも色素化合物の尿色とのコントラスト、発色の安定性及び価格の観点から5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニドが特に好ましい。

本発明の第一ステップで使用する液剤において、以上のグリコシダーゼ活性検出試薬、β-グルクロニダーゼ活性検出試薬の液剤全体に対する含有量は対塩基を除いた換算重量として0.002〜0.2w/v％とするのが良く、より好ましくは0.005〜0.05w/v％であり、更に好ましくは0.01〜0.025w/v％である。

＜サルファターゼ活性検出試薬＞
本発明において成分Ａとして用いられるサルファターゼ活性検出試薬は、酵素反応後に水に難溶の色素化合物又は蛍光色素化合物を生じる酵素基質型のサルファターゼ活性検出試薬であって、サルファターゼ活性を視覚的に検出できるものであれば特に限定されない。また、尿臭気発生との関わりからアリールサルファターゼ活性検出試薬がより好ましい。

以下、本発明において用いられるアリールサルファターゼ活性検出試薬について詳述するが、本発明において用いられるアリールサルファターゼ活性検出試薬は上述のような性状を有するものであれば特に限定されない。

本発明において用いられるアリールサルファターゼ活性検出試薬としてはヒドロキシインドール類縁体の硫酸化化合物、ウンベリフェロン類縁体の硫酸化化合物を挙げることができる。

この中でも、ヒドロキシインドール類縁体の硫酸化化合物としては5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリルサルフェイト、インドキシルサルフェイトを、ウンベリフェロン類縁体の硫酸化化合物としては4-メチルウンベリフェリルサルフェイトを、それぞれ好適に用いることができる。

また、これらのうち、酵素反応により生じる化合物が可視領域に吸収を持つ色素化合物であって、これが水に特に難溶でもある観点から、ヒドロキシインドール類縁体の硫酸化化合物、即ち、5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリルサルフェイト、インドキシルサルフェイトがより好ましく、色素化合物の尿色とのコントラスト、発色の安定性及び価格の観点から5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリルサルフェイトが特に好ましい。

本発明において、以上のサルファターゼ活性検出試薬、アリールサルファターゼ活性検出試薬の液剤全体に対する含有量は、対塩基を除いた換算重量として0.002〜0.2w/v％とするのが良く、より好ましくは0.005〜0.05w/v％であり、更に好ましくは0.01〜0.025w/v％である。

本発明の第一ステップで使用する液剤は、以上の酵素活性検出試薬（成分Ａ）を溶解あるいは分散させる目的で、水及び／又は尿を溶媒として用いることができる。また、後述のように、液剤を適用した物品、設備又は素材を一度乾燥させる手法を採る場合は、溶媒又は分散媒として揮発性の有機溶剤を用いても良い。このとき用いられる揮発性の有機溶剤としてはメタノール、エタノール、1-プロパノール、2-プロパノール、アセトニトリル等の水溶性を有するものが好ましい。また、本発明の第一ステップで使用する液剤は、添加剤として必要に応じて種々の界面活性剤、酸化防止剤、pH調整剤、油剤、有機溶剤、金属塩、金属イオン類等を、本発明の効果を阻害しない範囲で含有しても良い。

＜尿＞
本発明の視覚的判定方法及びスクリーニング方法は、尿の含有の有無に関わらず試薬の呈色によって尿臭発生部及び尿臭強度を模擬的に示すことができる点にも特徴を有するものであるが、実際の尿臭気発生の状態に近い化学的、生物学的環境を再現できる点で、成分Ａを含有する液剤（本発明の第一ステップで使用する液剤）が更に尿を含有することが好ましい。

成分Ａを含有する液剤が尿を含有する場合、その含有量に制約は無いが、上述の観点から対象となる物品、設備又は素材から実際に尿臭気が発生している状態に近づけることが好ましく、例えば対象が吸収性物品、吸水性ポリマー等、尿をそのまま吸収することを想定したものである場合、尿含有量は液剤全体に対して50〜100v/v％、より好ましくは80〜100v/v％、更に好ましくは90〜100v/v％とするのが良い。また、便器表面やトイレ床のような、ある程度乾燥した尿汚れから発生する臭気を想定した場合には、濃縮した尿を用いて液剤を調製し、濃縮前の尿で換算して100v/v％より高い濃度としても良い。

更に、成分Ａを含有する液剤において用いられる尿はヒト由来のものに限定されず、特に犬、猫等のペット用排泄物関連製品（ペット用トイレ、尿吸収シート等）やこれに用いられる吸収材、吸水性ポリマーを対象とする場合には、これら動物の尿を用いることが好ましい。

これらの尿は、採取したものをそのまま用いることができるが、成分Ａを含有する液剤が以下に詳述する微生物及び／又は酵素を共に含有して成る場合には、検出条件を安定にする観点から、フィルタ等を用いた除菌操作によって微生物を除いた尿を用いる方が好ましい。

＜微生物＞
成分Ａを含有する液剤を着用履歴のある吸収性物品や使用履歴のあるトイレ環境に適用する場合、あるいは成分Ａを含有する液剤が除菌操作の無い尿を含有して成る場合には、これらに常在の微生物によって本発明の方法を行うことが可能であるが、より再現性良く酵素反応を行いたい場合や、対象が新品の製品、素材等、無菌あるいはほとんどの微生物が除去された状態となっている場合には、液剤に更に微生物を含有させて用いることがより好ましい。

このとき用いられる微生物は、成分Ａを含有する液剤に用いられる酵素活性検出試薬に対応した酵素活性を有する株であれば良く、具体的にはグリコシダーゼ活性、サルファターゼ活性のいずれかを有する株より選ばれる一つ以上を用いることが好ましい。

本発明においては、これら微生物株の中でも酵素と尿臭気の関わりから、本発明の第一ステップに用いられる酵素活性検出試薬（成分Ａ）に対応して、β-グルクロニダーゼ活性株、アリールサルファターゼ活性株を用いることが好ましく、β-グルクロニダーゼ活性株を用いることがより好ましい。

また、以上の微生物は、尿臭気との関連性の高いものを用いることが好ましく、例えば尿を吸収させて時間の経過した吸収性物品や便器フチ裏のような尿に由来する環境より分離された株を用いることが好ましい。また、これら環境からの検出性、及び尿臭気との関わりから細菌を用いることがより好ましく、とりわけ、β-グルクロニダーゼ活性を有する大腸菌を用いることが好ましい。

本発明の第一ステップに用いられる液剤がこれら微生物を含有して成る場合、その含有量に制約は無いが、再現性の観点から、液剤に含有させる微生物の濃度は10⁰〜10⁸ CFU/mLとするのが好ましく、より好ましくは10¹〜10⁶CFU/mLであり、特に好ましくは10²〜10⁴ CFU/mLである。

＜酵素＞
成分Ａを含有する液剤により再現性良く酵素反応を行いたい場合や、あるいは対象となる物品、設備又は素材に用いられる尿臭生成抑制効果を有する剤の主要な作用が抗菌ではなく、主に酵素阻害である場合には特に、成分Ａを含有する液剤に酵素を含有させて用いることが好ましい。

このとき用いられる酵素は液剤に用いられる酵素活性検出試薬（成分Ａ）に対応した酵素であれば良く、具体的にはグリコシダーゼ、サルファターゼのいずれかより選ばれる一つ以上を用いることが好ましい。

本発明においては、これら酵素の中でも酵素と尿臭気の関わりから、第一ステップに用いられる液剤に含有させる酵素活性検出試薬（成分Ａ）に対応して、β-グルクロニダーゼ、アリールサルファターゼを用いることが好ましく、β-グルクロニダーゼを用いることがより好ましい。

第一ステップに用いられる液剤がこれら酵素を含有して成る場合、その含有量は、対象及び想定する状況により異なる。例えば、吸収性物品及びこれに用いられる吸水性ポリマーの評価においては、製品の使用から廃棄の範囲を想定し、使用を想定した場合には、液剤適用後、37℃、１〜24時間で、廃棄を想定した場合には30℃、８〜120時間の範囲で、特に何らかの尿臭生成抑制剤を含まないサンプル（コントロール）に十分な呈色反応が観察されるように調整するのが好ましい。このため、例えば酵素として大腸菌由来β-グルクロニダーゼType VII-Aを用いる場合、その液剤中での濃度は0.1〜30000units/mLの範囲で対象及び想定する状況に合わせ適宜選択して用いるのが良い。

＜栄養培地＞
成分Ａを含有する液剤は微生物の増殖を促し、酵素反応を円滑に進ませる目的で栄養培地を添加して用いても良い。栄養培地は微生物の増殖に寄与できるものであればどのようなものでも良いが、肉エキス、酵母エキス、カゼイン分解物、アミノ酸、糖、多糖、種々の無機塩及びpH調整剤等より選ばれる成分を含む栄養培地が好ましく、例えばSCD培地、ミュラーヒントン培地、LB培地等の汎用の栄養培地を挙げることができる。

<<視覚化方法>>
以下、本発明の手順について説明する。
本発明の方法を行う場合、まず、第一ステップとして尿臭の発生する物品、設備又は素材に前述の成分Ａを含有する液剤を適用する。

成分Ａを含有する液剤を適用するとは、液剤を尿臭が発生する物品、設備又は素材に接触、塗布、含浸、散布、滴下等することをいう。実際の使用環境における尿臭発生部を特定する観点から、尿臭が発生する物品、設備又は素材に適用する際には、実際の尿に見立てて適用することが好ましく、吸収性物品に成分Ａを含有する液剤を適用する場合であれば、実際の使用態様において尿が吸収される部位より流し込むように吸収させるのが好ましい。一方、後述のように、第一ステップと第二ステップの間に成分Ａを含有する液剤を適用した対象物品を乾燥させ、乾燥させた対象物品に新たに尿を添加する場合には、尿臭発生部特定の精度向上の点から成分Ａを含む液剤は吸収性物品内に均一に吸収させるのが好ましい。
また、トイレ環境内に成分Ａを含有する液剤を適用する場合であれば、液剤を塗布、あるいはスプレー容器等からスプレー散布するのが好ましい。
また、成分Ａを含有する液剤を吸収性物品に適用する場合は、吸収性物品をそのまま使用しても良いし、これを模した試作品を使用しても良い。また、必要に応じて、これらを適当なサイズに切断した切片を使用しても良い。

適用する液剤の量は特に限定されないが、実際の使用環境における尿臭発生部をより明確に判定する観点から、吸水性ポリマーの尿臭発生部を視覚化する場合には、吸水性ポリマー重量の４〜240重量倍とするのが良く、より好ましくは６〜120重量倍とするのが良く、更に好ましくは10〜60重量倍とするのが良い。

また、吸収性物品の尿臭発生部を視覚化する場合には、成分Ａを含有する液剤の好適な量は製品が保証する尿吸収容量によって異なり、具体的には尿吸収容量の1/4量〜等量とするのが良く、より好ましくは1/2量〜等量とするのが良い。また、対象が吸収性物品を模した試作品、又は製品もしくは試作品の切片である場合、好適な液剤の量は、元となる製品と対象となる試作品又は切片との尿吸収量の比が、元となる製品と対象となる試作品又は切片との吸収面面積の比と等しいものとして算出されたものであることが好ましい。

次いで第二ステップとして、成分Ａを含有する液剤を適用した物品、設備又は素材で酵素反応を進行させる。

第二ステップにおいては、液剤適用後の対象は実際に臭気が発生する状況と同様の温度下に保持されることが好ましく、例えば吸収性物品の使用後から廃棄時に発生する臭気を想定した場合には室温から体温、即ち、15℃前後〜37℃前後に保持することが好ましく、より好ましくは臭気発生の顕著な夏場を想定し、30℃前後に保持することが好ましい。

なお、成分Ａを含有する液剤適用後の物品、設備又は素材において、酵素反応は直ちに開始してもよいが、時間をおいて反応を開始させることもできる。時間を置いて反応を開始させる場合には、第一ステップと第二ステップの間に他のステップが含まれていても良い。時間を置いて酵素反応を開始させる場合、液剤には尿を含有しないことが好ましく、例えば第一ステップと第二ステップの間に成分Ａを含有する液剤を適用した対象物品を乾燥させ、乾燥させた対象物品に新たに尿を添加するステップを含むことが好ましい。
特に上述の手法を、複雑な構成より成る吸収性物品に用いる場合、吸収性物品そのものに成分Ａを含有する液剤を適用しても良いし、これを構成する個々の部材、即ち吸水性ポリマー、不織布、パルプ、台紙等の特定の部材に液剤を適用し、乾燥させた後、これら液剤が適用された部材を用いて吸収性物品を作製しても良い。

酵素反応を行う時間は対象及び想定する状況により異なるため、特に限定されないが、例えば吸収性物品及びこれに用いられる吸水性ポリマーの評価においては、製品の使用から廃棄の範囲を想定し、使用を想定した場合には１〜24時間とするのが好ましく、より好ましくは２〜16時間であり、特に好ましくは４〜８時間である。また、廃棄を想定した場合には８〜120時間とするのが好ましく、より好ましくは16〜96時間であり、特に好ましくは24〜72時間である。

次いで第三のステップにおいて酵素反応によって生じる色の変化を観察し、変化の大きい部分を尿臭発生部として特定する。また、色が変化した部分の面積の大きいものを尿臭強度の強い物品、設備又は素材として特定することができる。

色の変化の観察は液剤を適用した物品、設備又は素材の全体を直接観察しても良いが、吸収性物品の評価においては、複雑な構成により成る吸収性物品の臭気発生部となる位置をより明瞭とできる点から切断面に生じる色の変化を観察することが好ましい。観察のために吸収性物品を切断する必要がある場合、第三ステップの前であればいつ切断しても良いが、正確に臭気発生部となる位置を特定する観点から第一ステップの前に切断すること、即ち吸収体切片を使用することが好ましい。

また、本発明の方法において、色の変化は、蛍光色素化合物を生じる酵素活性検出試薬を用いる場合には暗所、紫外線照射下において判定を行う必要があるが、可視領域に吸収波長を持つ色素化合物を生じる試薬を用いた場合には特別な環境設定は必要なく、目視で観察することもできる。

判断をより客観的なものとする場合には、観察対象たる物品、設備又は素材の画像データから酵素反応後に色の変化の現れた面積を算出し、尿臭強度を判定するステップを更に含むことが好ましい。画像の取得は、例えばデジタルカメラの利用による方法が挙げられる。

画像データから色の変化を算出する方法としては、呈色部位を明瞭とし、その面積の増加を算出できる手法であれば、特に制約なくこれを採用できるが、酵素反応後の物品、設備又は素材において画像編集ソフト上で色の変化のコントラストが最も強くなるフィルタを選択し、画像をフィルタリング処理した後、反応前後での呈色面積の変化を算出するのが好ましい。

例えば成分Ａとして5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニドを含有する液剤を用いた場合について説明すると、以下のようになる。
まず酵素反応前後の画像データを画像編集ソフトに取り込む。
次いで、5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニドが酵素反応により濃い青色に呈色する試薬であることから、酵素反応後の色の変化のコントラストを最も強くするためにはレッドチャンネルのみを選択して得られる画像を解析に用いることが好ましい。これをグレースケール変換の後、２階調化することによって尿臭発生部位の明瞭な画像を得ることができる。
更に全ピクセル数に占める呈色ピクセル数の割合（％）を算出し、液剤添加直後の画像における値を減算することによって、呈色面積比率の増加値（％）を得、これを尿臭強度の指標として好適に用いることができる。なお、２階調化に用いる閾値は一連の評価対象において同一の値とすれば良く、更には目視によって判定される呈色領域にできる限り近似した画像が得られるように定めるのがより好ましい。

<<スクリーニング方法>>
本発明の視覚的判定方法を利用することにより、尿臭生成抑制効果に優れた素材、部材、剤、更には部材の配置のスクリーニングが可能となる。

スクリーニングを行う場合には、尿臭生成抑制効果の評価対象としての素材、部材又は剤に、成分Ａを含有する液剤を接触させ、酵素反応による評価対象の色の変化が少ない評価対象を選択すればよい。その際には、前述した視覚的判定方法と同様の手順で尿臭の発生する部位及び尿臭強度を視覚化した後、目視又は画像処理により色の変化を観察し、より色の変化、好適には呈色面積の増加の少ない素材、部材、剤、又は部材の配置を、尿臭生成抑制効果に優れたものとして選択することができる。

＜素材のスクリーニング＞
スクリーニングの対象となる素材としては、吸収性物品に用いられる吸水性ポリマーが挙げられるが、吸水性ポリマーは、特別な処理がされていないポリマーそのものに限定されず、防臭、消臭、抗菌等の目的で化学的又は物理的処理がされているものであってもよい。

吸水性ポリマーをスクリーニング対象とする場合は、複数種の吸水性ポリマーに対し、成分Ａを含有する液剤を適用する第一ステップと、
前記液剤を適用した吸水性ポリマーで酵素反応を行う第二ステップと、
前記液剤を適用した吸水性ポリマーの色の変化を観察する第三ステップと、
第三ステップにおいて色の変化がより少ない吸水性ポリマーを選択する第四のステップによって、尿臭生成抑制効果に優れた吸水性ポリマーを選択することができる。
上記第一ステップから第三ステップまでの各工程において、特に説明しない点については、先に述べた視覚的判定方法の第一ステップから第三ステップまでの各工程に関する説明が適宜適用される。

尿臭生成抑制効果に優れた吸水性ポリマーを選択するに際しては、吸水性ポリマー単独でスクリーニングを行うこともできるが、実際に吸水性ポリマーを使用する状況下において尿臭生成抑制効果に優れた吸水性ポリマーを選択する観点から、吸収性物品に吸水性ポリマーを含有させて酵素反応を行い、切片断面の呈色を観察してスクリーニングを行うことが好ましい。色の変化がより少ない吸水性ポリマーを選択する際には、色の濃度変化がより少ないものを選んでも良いし、色が変化した部分の面積の少ないものを選んでも良い。特に色の変化が無い吸水性ポリマーを選択することが好ましい。
＜部材のスクリーニング＞

また、スクリーニングの対象となる部材としては、吸収性物品の構成部材に用いられる吸水性ポリマー、不織布、パルプ、台紙等を挙げることができ、これら構成部材の種類や、その配置によっても尿臭の生成する部位や尿臭生成の抑制度が変化する場合がありうる。そこで、本発明の方法を用いることにより、尿臭生成抑制効果に優れた吸水性物品を得るための構成部材、及びその最適な配置を選択することも可能となる。

吸収性物品の構成部材をスクリーニング対象とする場合は、構成部材を異にする複数の吸収性物品に対し、成分Ａを含有する液剤を適用する第一ステップと、
前記液剤を適用した吸収性物品で酵素反応を行う第二ステップと、
前記液剤を適用した吸収性物品の切断面の色の変化を観察する第三ステップと、
第三ステップにおいて色の変化がより少ない吸収性物品における構成部材を選択する第四ステップによって、尿臭生成抑制効果に優れた吸収性物品の構成部材を選択することができる。
上記第一ステップから第三ステップまでの各工程において、特に説明しない点については、先に述べた視覚的判定方法の第一ステップから第三ステップまでの各工程に関する説明が適宜適用される。

また、吸収性物品の構成部材の配置をスクリーニング対象とする場合は、構成部材の配置を異にする複数の吸収性物品に対し、成分Ａを含有する液剤を適用する第一ステップと、
前記液剤を適用した吸収性物品で酵素反応を行う第二ステップと、
前記液剤を適用した吸収性物品の切断面の色の変化を観察する第三ステップと、
第三ステップにおいて色の変化がより少ない吸収性物品における構成部材の配置を選択する第四ステップによって、尿臭生成抑制効果に優れた吸収性物品の構成部材の配置を選択することができる。
上記第一ステップから第三ステップまでの各工程において、特に説明しない点については、先に述べた視覚的判定方法の第一ステップから第三ステップまでの各工程に関する説明が適宜適用される。

尿臭生成抑制効果に優れた吸収性物品における構成部材又はその配置の選択に際しては、対象となる吸収性物品は前述と同様の理由で切片を用い、断面の呈色を観察して行うことが好ましい。

＜剤のスクリーニング＞
更に、本発明の方法を用いることにより、尿臭生成抑制剤についても、好適なものを選択することが可能となる。このような本発明の対象となる尿臭生成抑制剤としては、尿臭の発生に関わる微生物の増殖、生育を抑制し、あるいは死滅させる無機系あるいは有機系の抗菌剤や、尿臭の発生に関わる酵素を阻害するβ-グルクロニダーゼ阻害剤、アリールサルファターゼ阻害剤等の酵素阻害剤を挙げることができる。また、これらの作用を直接的あるいは副次的に有する植物エキス、香料、油剤、界面活性剤、消臭剤等も本発明の選択方法の対象となり得る。但し、本発明において尿臭生成抑制剤とはこれらに限定されず、対象に適用することによって微生物の働きに由来する尿臭気の発生を抑制するものであれば良い。

尿臭生成抑制剤をスクリーニング対象とする場合は、異なる尿臭生成抑制剤を適用した複数の物品、設備又は素材に対し、成分Ａを含有する液剤を適用する第一ステップと、
前記液剤を適用した物品、設備又は素材で酵素反応を行う第二ステップと、
前記液剤を適用した物品、設備又は素材の色の変化を観察する第三ステップと、
第三ステップにおいて色の変化がより少ない尿臭生成抑制剤を選択する第四ステップによって、尿臭生成抑制効果に優れた尿臭生成抑制剤を選択することができる。
上記第一ステップから第三ステップまでの各工程において、特に説明しない点については、先に述べた視覚的判定方法の第一ステップから第三ステップまでの各工程に関する説明が適宜適用される。

尿臭生成抑制効果に優れた尿臭生成抑制剤を選択するに際しても、実際に尿臭生成抑制剤を使用する状況下において好適なものを選択する観点から、尿臭生成抑制剤を吸水性ポリマーや吸収性物品に塗布、含浸、固定化等の操作を行った上でスクリーニングすることが好ましい。

実施例１ 酵素活性検出試薬（成分Ａ）の選択
図１に示すように、吸水性ポリマー0.03ｇに表１に示す組成の酵素活性検出試薬又は臭気感色性指示薬を含有する各液剤300μLを吸収させ、これを更に、1.5mL容マイクロテストチューブ内において間にパルプ層を挟み３層に積層させた。この中央の層にのみ、臭気発生のイニシエーターとなる酵素、あるいは細菌を添加し、37℃恒温槽中で72時間臭気発生を行い、色の変化を観察した。この結果を表２及び図２に示す。表２には、発色性、尿色に対するコントラスト、尿臭発生部の特定の正確さについて、４名のパネルが以下の基準に基づき、協議によって判定した結果を示す。

＜発色性＞
ａ：強く発色する。
ｂ：やや強く発色する。
ｃ：発色が弱い。
ｄ：発色しない。

＜尿色に対するコントラスト＞
ａ：尿と色素化合物の色のコントラストが強い。
ｂ：尿と色素化合物の色のコントラストがやや強い。
ｃ：尿と色素化合物の色のコントラストが弱い。
ｄ：尿と色素化合物の色の区別がつかない。
−：発色不良（発色性：ｄ）のため、評価不能。

＜臭気発生部の特定の正確さ＞
ａ：尿臭の発生した位置が明確にわかる。
ｂ：尿臭が発生した位置がわかる。
ｃ：尿臭が発生した位置がやや不明確である。
ｄ：尿臭が発生した位置が不明確である。
−：発色不良（発色性：ｄ）のため、評価不能。

この結果から明らかなように、本発明で用いる水に難溶の色素化合物を生じる酵素基質型の酵素活性検出試薬（成分Ａ）を含有する液剤を吸収させたサンプル（実施例1-1〜1-7）は酵素、細菌のどちらをイニシエーターとして用いた場合にも中央の層のみで明瞭な色の変化が観察され、臭気発生部の明確な特定に成功した。これに対し臭気感色性指示薬を含有した比較例1-3及び酵素反応後の色素化合物が水溶性（4-ニトロフェノール水溶解度 11.6g/L（20℃））である比較例1-1では色の変化は見られたが、発色部位が拡散してしまい臭気発生部の特定には至らなかった。また比較例1-2、1-4のように、いくつかの臭気感色性指示薬は吸水性ポリマー中では指示薬として機能しなかった。

実施例２ 尿臭発生部及び尿臭強度の可視化並びに吸水性ポリマーのスクリーニング
（１）β-グルクロニダーゼ活性菌株の採取
使用済み（排尿のみ）の幼児用紙オムツから、5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニドを添加したSCDLP寒天平板培地（日本製薬株式会社製）を用いて常法によりβ-グルクロニダーゼ活性菌株の採取、分離を行った。これら菌株を除菌尿中で培養したところ臭気の発生が確認され、この中でも特に強い臭気を発生させた菌株を本実施例におけるβ-グルクロニダーゼ活性菌株として用いた。また本菌株は16S rDNA部分塩基配列解析によって大腸菌に帰属されるものであることを確認した。

（２）菌液の調製
上記のβ-グルクロニダーゼ活性菌株をSCD寒天平板培地上で一晩培養し、得られたコロニーから一部を滅菌ループによってかき取り、除菌済み生理食塩水中に希釈してCFU/mLで10⁵オーダーとなるように菌液を調製した。

（３）液剤の調製
実施例１において尿臭発生部の明確な特定に成功した酵素活性検出試薬のうち、5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニドを選択し、これを含有する液剤を調製した。即ち、採取後すぐにナルゲン社製フィルターユニットにより除菌を行ったヒト除菌尿（２名分等量混合）に、5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニドを200ppm(w/v)溶解させ、更に前記（２）で調製した菌液を0.1v/v％添加混合し、液剤を調製した。

（４）吸収体切片の調製
市販尿取りパッド（就寝時用）の構成を模倣し、吸水性ポリマーの種類のみが異なる４種の尿取りパッドを作製した。更に各尿取りパッドの中央部に近い位置から5.5cm四方を切り出し、この吸収体切片を以下の評価に供した（図３）。なお、このとき参照した市販尿取りパッドの尿吸収容量より比例的に算出された切片の尿吸収容量は16.7mLである。

（５）酵素反応
前記（４）で調製した吸収体切片に図３に示した観察面より1.5cm内側の上面から、前記（３）で調製した液剤を12.5mL滴下し、37℃恒温槽中において８時間及び24時間静置した。

（６）臭気強度評価
前記（５）の各サンプルについて、初期、８時間後、24時間後の臭気強度評価を行った。臭気強度評価には臭気判定士の資格を有する２名の専門パネルが携わり、０〜５の評価スコアによる６段階臭気強度表示法に準じて行った。即ち評価スコアは、「０」無臭、「１」やっと感知できるニオイ、「２」尿臭であることわかるが弱いニオイ、「３」楽に尿臭であると感じられるニオイ、「４」強い尿臭、「５」強烈な尿臭を示す。臭気強度の判定は0.5刻みで行い、２名の評価の平均値について、小数点以下の数値が、0.25である場合は0.5とし、0.75である場合は整数に切り上げた。得られた結果を表３に示した。

（７）画像解析
前記（５）の各サンプルについて、初期、８時間後、24時間後にデジタルカメラによる写真撮影を行った。得られた画像は画像編集ソフトPhotoshop6.0（Adobe社製）に読み込み、青色の呈色部位を検出するためレッドチャンネルのみを選択してグレースケール変換を行った。これを更に２階調化することによって呈色部位の明確な位置情報を得た。２階調化に用いる閾値は状況により選択できるが、今回は128を採用した。更に全ピクセル数に占める呈色ピクセル数の割合（％）を算出し、初期の値を減算することによって８時間後、24時間後の呈色面積比率の増加値（％）（値が０未満となる場合には０とした）を得た。この結果を表３に示した。

更に前記（６）の臭気強度評価値（官能評価値）と呈色面積比率の増加値（％）の相関を示すグラフを図４に示した。また、図５には画像の一例として吸水性ポリマーＢを用いた尿取りパッド切片の画像（初期及び24時間後）を示した。

これらの結果から、本発明の方法により、呈色面積比率の増加が臭気強度の増加を非常に良く反映し、この呈色部位を以って尿臭発生部を明瞭に特定できること、更に視覚的な情報から臭気強度の客観的な評価が可能となることが示された。更に吸水性ポリマーＢを使用した尿取りパッドが最も防臭効果に優れることも視覚的に判断することができ、本発明の方法によって吸収性物品において好適な尿臭生成抑制効果に優れた吸水性ポリマーを簡便に選択することが可能となることが示された。

実施例３ 尿臭生成抑制用抗菌剤のスクリーニング
尿臭生成抑制剤として有機系抗菌剤Ｐ、Ｑ又は無機系抗菌剤Ｒを吸水性ポリマーに対して様々な濃度（w/w％）で添加した。なお、有機系抗菌剤Ｐとしては四級アンモニウム塩系抗菌剤を、有機系抗菌剤Ｑとしてはフェノール系抗菌剤を、無機系抗菌剤Ｒとしては硫酸亜鉛をそれぞれ用いた。得られた抗菌剤添加吸水性ポリマー各0.45gを底面がおよそ5.5cm四方の容器底面に均一に配置し、ここへ実施例２の（３）で調製した液剤6.5mLを添加し、30℃恒温槽中で48時間酵素反応を行った。図６には各サンプルの画像及び画像下には実施例２の（６）の手法で行った臭気強度評価値を示し、表４には各抗菌剤の最小呈色抑制濃度を示した。
以上の結果より、本発明の方法により、吸水性ポリマーに好適な尿臭生成抑制用抗菌剤を簡便にスクリーニングできることが示された。

実施例４ 尿臭生成抑制用酵素阻害剤のスクリーニング
採取後すぐにナルゲン社製フィルターユニットにより除菌を行ったヒト除菌尿に、5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニドを200ppm(w/v)溶解させ、続いて160units/mLに調整した大腸菌由来β-グルクロニダーゼType VII-A（シグマ社より購入）水溶液を１v/v％添加混合することにより、液剤を調製した。
次いで、尿臭生成抑制剤としてβ-グルクロニダーゼ阻害剤Ｓ、Ｔを1.5w/w％添加した吸水性ポリマーを調製した。得られた酵素阻害剤添加吸水性ポリマー、及び添加剤の無い吸水性ポリマー各0.5ｇを底面がおよそ5.5cm四方の容器底面に均一に配置し、ここへ上述の液剤7.5mLを添加し、30℃恒温槽中で48時間酵素反応を行った。図７には各サンプルの画像及び画像下には実施例２の（６）の手法で行った臭気強度評価値を示した。
以上の結果より、本発明の方法により、吸水性ポリマーに好適な尿臭生成抑制用酵素阻害剤を簡便にスクリーニングできることが示された。

調製例１ 尿臭発生部が視覚的に判定される吸収性物品の調製
エタノールに対し、5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニドを200ppm（w/v）溶解させることにより液剤を調製した。市販尿取りパッド（昼用、尿吸収容量450mL）の構成を模倣して作製した尿取りパッドより、中央部に近い位置から5.5cm四方を切り出した。得られた吸収体切片に本液剤12.5mLを均一に含浸させ、電気乾燥機中で重量が変化しなくなるまで乾燥させた。

実施例５ 尿臭発生部が視覚的に判定される吸収性物品による尿臭発生部の可視化
（１）菌添加尿の調製
実施例２の（１）に記載のβ-グルクロニダーゼ活性菌株をSCD寒天平板培地上で一晩培養し、得られたコロニーから一部を滅菌ループによってかき取り、除菌済み生理食塩水中に希釈してCFU/mLで10⁴オーダーとなるように菌液を調製した。採取後すぐにナルゲン社製フィルターユニットにより除菌を行ったヒト除菌尿に、調製した菌液を１v/v％添加混合し、菌添加尿を調製した。

（２）酵素反応及び尿臭発生部の可視化
調製例１に記載の吸収体切片に図３に示した観察面より1.5cm内側の上面から、前記（１）で調製した菌添加尿を12.5mL滴下し、30℃恒温槽中において24時間静置した。
図８には初期及び24時間後のサンプルの画像及び画像下には実施例２の（６）の手法で行った臭気強度評価値を示した。
本結果により、本発明の方法により、吸収性物品において尿臭発生部を簡便に可視化できることが示された。

調製例２ 尿臭発生部が視覚的に判定される硬質表面の調製
エタノールに対し、5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニドを2000ppm（w/v）溶解させることにより液剤を調製した。本液剤をスプレー容器に入れ、液剤3.3gを陶器製プレートの中央部（半径6.5cm内）に数回に分けて均一にスプレーし、室温下で乾燥させた。

実施例６ 尿臭発生部が視覚的に判定される硬質表面による尿臭発生部の可視化
採取後すぐにナルゲン社製フィルターユニットにより除菌を行ったヒト除菌尿、及びこの除菌尿に25400units/mLに調整した大腸菌由来β-グルクロニダーゼType VII-A水溶液を１v/v％添加混合し、尿臭気が持続的に発生するようにした酵素添加尿を調製した。続いて、調製例４に記載の陶器製プレートに対して、左側に除菌尿、右側に酵素添加尿をそれぞれ300μL滴下し、プレート上面をラップで覆って室温下で24時間静置した。
図９には初期及び24時間後のサンプルの画像を示した。
本結果により、本発明の方法により、硬質表面上において尿臭発生部を簡便に可視化できることが示された。

Claims (16)

1. 尿臭判定の対象となる物品、設備又は素材に対し、成分Ａを含有する液剤を適用する第一ステップと、
   前記液剤を適用した物品、設備又は素材で酵素反応を進行させる第二ステップと、
   前記液剤を適用した物品、設備又は素材の色の変化を観察する第三ステップを有し、
   色の変化した領域を尿臭発生部と判定し、色の変化量を尿臭強度と対応させる尿臭発生部及び尿臭強度の視覚的判定方法。
   成分Ａ：酵素反応によって水に難溶の色素化合物又は蛍光色素化合物を生じる酵素基質型の酵素活性検出試薬
2. 尿臭が発生する物品が、吸収性物品であり、尿臭が発生する素材が、吸収性物品用吸水性ポリマーである請求項１に記載の方法。
3. 第三ステップにおいて、吸収性物品の切断面の色の変化を観察する請求項２に記載の方法。
4. 第一ステップと第二ステップの間に、成分Ａを含有する液剤を適用した物品を乾燥させる工程を含む請求項１〜３のいずれかに記載の方法。
5. 更に、画像データから酵素反応前後での色の変化の現れた面積を算出し、算出した面積に基づいて尿臭強度を判定するステップを有する請求項１〜４のいずれかに記載の方法。
6. 尿臭生成抑制効果の評価対象としての素材、部材又は剤に、成分Ａを含有する液剤を接触させ、酵素反応による評価対象の色の変化が少ない評価対象を選択する、尿臭生成抑制効果に優れた素材、部材、尿臭生成抑制剤、又は部材の配置のスクリーニング方法。
   成分Ａ：酵素反応によって水に難溶の色素化合物又は蛍光色素化合物を生じる酵素基質型の酵素活性検出試薬
7. 複数種の吸水性ポリマーに対し、成分Ａを含有する液剤を適用する第一ステップと、
   前記液剤を適用した吸水性ポリマーで酵素反応を進行させる第二ステップと、
   前記液剤を適用した吸水性ポリマーの色の変化を観察する第三ステップと、
   第三ステップにおいて色の変化がより少ない吸水性ポリマーを選択する第四のステップを有する請求項６に記載のスクリーニング方法。
8. 構成部材を異にする複数の吸収性物品に対し、成分Ａを含有する液剤を適用する第一ステップと、
   前記液剤を適用した吸収性物品で酵素反応を進行させる第二ステップと、
   前記液剤を適用した吸収性物品の切断面の色の変化を観察する第三ステップと、
   第三ステップにおいて色の変化がより少ない吸収性物品における構成部材を選択する第四ステップを有する請求項６に記載のスクリーニング方法。
9. 構成部材の配置を異にする複数の吸収性物品に対し、成分Ａを含有する液剤を適用する第一ステップと、
   前記液剤を適用した吸収性物品で酵素反応を進行させる第二ステップと、
   前記液剤を適用した吸収性物品の切断面の色の変化を観察する第三ステップと、
   第三ステップにおいて色の変化がより少ない吸収性物品における構成部材の配置を選択する第四ステップを有する請求項６に記載のスクリーニング方法。
10. 異なる尿臭生成抑制剤を適用した複数の物品、設備又は素材に対し、成分Ａを含有する液剤を適用する第一ステップと、
    前記液剤を適用した物品、設備又は素材で酵素反応を進行させる第二ステップと、
    前記液剤を適用した物品、設備又は素材の色の変化を観察する第三ステップと、
    第三ステップにおいて色の変化がより少ない尿臭生成抑制剤を選択する第四ステップを有する請求項６に記載のスクリーニング方法。
11. 成分Ａが、グリコシダーゼ活性検出試薬及びサルファターゼ活性検出試薬より選ばれる１以上である請求項１〜10のいずれかに記載の方法。
12. グリコシダーゼ活性検出試薬がβ-グルクロニダーゼ活性検出試薬であり、サルファターゼ活性検出試薬がアリールサルファターゼ活性検出試薬である請求項11に記載の方法。
13. β-グルクロニダーゼ活性検出試薬が5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニド、5-ブロモ-6-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニド、6-クロロ-3-インドリル-β-D-グルクロニド、インドキシル-β-D-グルクロニド、4-メチルウンベリフェリル-β-D-グルクロニドより選ばれるものであり、アリールサルファターゼ活性検出試薬が5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリルサルフェイト、インドキシルサルフェイト、4-メチルウンベリフェリルサルフェイトより選ばれるものである請求項12に記載の方法。
14. 液剤が、更に尿を含む請求項１〜13のいずれかに記載の方法。
15. 液剤が、更に微生物又は酵素より選ばれる１以上を含んで成る、請求項１〜14のいずれかに記載の方法。
16. 微生物が、β-グルクロニダーゼ活性又はアリールサルファターゼ活性を有する株より選ばれる１以上であり、酵素がβ-グルクロニダーゼ又はアリールサルファターゼから選ばれる１以上である請求項15に記載の方法。