JP2011155992A - ヒト腫瘍壊死因子に特異的なモノクローナルなキメラ抗体 - Google Patents

Abstract

【課題】マウス抗体免疫発現に関する諸問題を克服し、免疫発現の低い、そして中和活性
の高い新規なＴＮＦ抗体を提供すること。
【解決手段】ヒト腫瘍壊死因子−α（ＴＮＦα）に特異的であり、かつＴＮＦに仲介され
る種々の疾患や症状のｉｎ ｖｉｖｏでの診断および治療に有用な抗ＴＮＦ抗体、そのフ
ラグメントおよび領域部分、並びに、マウスとのキメラ抗体をコードするポリヌクレオチ
ド、前記抗体の製造方法、並びに前記抗ＴＮＦ抗体、そのフラグメント、領域およびそれ
らの誘導体の免疫学的分析や免疫学的治療への応用に関する種々のアプローチを提供する
。
【選択図】なし

Description

本願は１９９１年３月１８日に出願された米国特許出願０７／６７０，８２７号の継続
出願であり、同出願の内容は参照によってすべて本願に取り込まれている。
免疫学と医学の分野に属する本発明はヒトの腫瘍壊死因子−アルファ（ｈＴＮＦα）；
そのフラグメント、領域部分（原文：ｒｅｇｉｏｎｓ）および誘導体；その薬用組成物お
よび診断用組成物、ならびにその産生、それによる診断および治療法に関する。本発明は
、またそのような抗体、フラグメント、領域部分をコードするヌクレオチド配列、ならび
にそのような配列を含むベクターおよび宿主と、さらにその製法とに関する。

腫瘍壊死因子−アルファ（ＴＮＦα；カケクチンとも称せられる）として知られるサイ
トカイン（ｃｙｔｏｋｉｎｅ）は、主として単球およびマクロファージによって内毒素な
いし他の刺激に反応して分泌される、１７ｋＤの蛋白質サブユニットの可溶性ホモトリマ
ーとしての、蛋白質である（Ｓｍｉｔｈ，Ｒ．Ａ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ． Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅ
ｍ．２６２：６９５１−６９５４（１９８７））。ＴＮＦ由来の、膜に結合した２６ｋＤ
の前駆体形もまた、記載されている（Ｋｒｉｅｇｌｅｒ，Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ ５
３４５−５３（１９８８））。ＴＮＦについての総説は、Ｂｅｕｔｌｅｒ，Ｂ．ｅｔ ａ
ｌ，Ｎａｔｕｒｅ ３２０：５８４（１９８６）：Ｏｌｄ，Ｌ．Ｊ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２
３０：６３０（１９８６）：およびＬｅ，Ｊ．ｅｔ ａｌ．，Ｌａｂ Ｉｎｖｅｓｔ．５６
：２３３４（１９８７）を参照されたい。ＴＮＦは、もともと細菌ワクチン（ｂａｃｉｌ
ｌｕｓ Ｃａｌｍｅｔｔｅ−Ｇｕｅｒｉｎ，ＢＣＧ）または内毒素（Ｃａｒｉｗｅｌｌ，
Ｅ．Ａ．ｅｔ ａｌ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７２：３６６６（
１９７５））の連続注射を受けた動物の血清中に見出された。

ＴＮＦαをコードする遺伝子の発現は、単球／マクロファージ族の細胞に限定されるも
のではない。数種のヒトの非単球腫瘍細胞系列がＴＮＦαを産生することが、報告されて
いる（Ｒｕｂｂｉｎ，Ｂ．Ｙ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１６４：１３５０（
１９８６）；Ｓｐｒｉｇｇｓ，Ｄ．ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃ
ｉ．ＵＳＡ，８４：６５６３（１９８７））。ＴＮＦはまた、ＣＤ４⁺およびＣＤ８⁺末梢
血管血液Ｔリンパ球、または種々の培養されたＴおよびＢ細胞系列によって産生される（
Ｃｕｔｕｒｉ，Ｍ．Ｃ．ｅｔ ａｌ．Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１６５：１５８１（１９８７
）；Ｓｕｎｇ，Ｓ．−Ｓ．Ｊ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１６８：１５３９（
１９８８））。

蓄積されつつある証拠は、ＴＮＦが多面発現性生物学的活性を有する調節サイトカイン
であることを示す。これらの活性は、リポ蛋白質リパーゼ合成の阻害（カケクチン（ｃａ
ｃｈｅｃｔｉｎ）活性）（Ｂｅｕｔｌｅｒ，Ｂ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ ３１６：５
５２（１９８５））、多形核白血球の活性化（Ｋｌｅｂａｎｏｆｆ，Ｓ．Ｊ．ｅｔ ａｌ
．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３６：４２２０（１９８６）；Ｐｅｒｕｓｓｉａ，Ｂ．，ｅ
ｔ ａｌ．，Ｊ，Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３８：７６５（１９８７））、細胞成育の阻害もし
くは刺激（Ｖｉｌｃｅｋ，Ｊ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１６３：６３２（１
９８６）；Ｓｕｇａｒｍａｎ，Ｂ．Ｊ．ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２３０：９４３（
１９８５）；Ｌａｃｈｍａｎ，Ｌ．Ｂ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３８：２
９１３（１９８７））、ある種の形質転換細胞タイプに対する細胞毒活性（Ｌａｃｈｍａ
ｎ，Ｌ．Ｂ．ｅｔ ａｌ．，上掲文献；Ｄａｒｚｙｎｋｉｅｗｉｃｚ，Ｚ．ｅｔ ａｌ．，
Ｃａｎｃ．Ｒｅｓ．４４：８３（１９８４））、抗ウィルス活性（Ｋｏｈａｓｅ，Ｍ．ｅ
ｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ ４５：６５９（１９８６）； Ｗｏｎｇ，Ｇ．Ｈ．Ｗ．ｅｔ ａｌ．
，Ｎａｔｕｒｅ ３２３：８１９（１９８６））、骨再吸収の刺激（Ｂｅｒｔｏｌｉｎｉ
，Ｄ．Ｒ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ ３１９：５１６（１９８６）；Ｓａｋｌａｔｏｖ
ａｌａ，Ｊ．，Ｎａｔｕｒｅ ３２２：５４７（１９８６））、コラゲナーゼとプロスタ
グランジＥ２産生の刺激（Ｄａｙｅｒ，Ｊ．−Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．
１６２：２１６３（１９８５））；そしてＴ細胞の活性化を含む免疫調節作用（Ｙｏｋｏ
ｔａ，Ｓ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４０：５３１（１９８８））、Ｂ細胞
の活性化（Ｋｅｈｒｌ，Ｊ．Ｈ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１６６：７８６（
１９８７）、単球の活性化（Ｐｈｉｌｉｐ，Ｒ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ ３２３：８
６（１９８６））、胸腺リンパ球の活性化（Ｒａｎｇｅｓ，Ｇ．Ｅ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．
Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１６７：１４７２（１９８８））、主要組織適合性遺伝子複合体（ＭＨ
Ｃ）クラスＩおよびＩＩの細胞表面への出現の刺激（Ｃｏｌｌｉｎｓ，Ｔ．ｅｔ ａｌ．
，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８３：４６６（１９８６）；Ｐｕｊ
ｏｌ−Ｂｏｒｒｅｌｌ．Ｒ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ ３２６：３０４（１９８７））
も報告されている。

ＴＮＦは、脈管内皮細胞に対する凝集誘導作用のような組織破壊に到る炎症支援作用（
Ｐｏｂｅｒ，Ｊ．Ｓ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３６：１６８０（１９８６
））、好中球およびリンパ球付着増進作用（Ｐｏｂｅｒ，Ｊ．Ｓ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉ
ｍｍｕｎｏｌ．１３８：３３１９（１９８７））、マクロファージ、好中球および脈管内
皮細胞から血少板活性化因子を解放する刺激（Ｃａｍｍｕｓｓｉ，Ｇ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ
．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１６６：１３９０（１９８７））によっても知られている。

最近の証拠によると、ＴＮＦが、多くの感染において（Ｃｅｒａｎｉ，Ａ．ｅｔ ａｌ
．，Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｔｏｄａｙ ９：２８（１９８８））、免疫不全、悪性形質変換性
疾患、例えばある種の悪性腫瘍に伴う悪液質において（Ｏｌｉｆｆ，Ａ．ｅｔ ａｌ．，
Ｃｅｌｌ ５０：５５５（１９８７））、自己免疫性疾患および移植片体宿主疾患（原文
：ｇｒａｆｔ ｖｅｒｓｕｓ ｈｏｓｔ ｐａｔｈｏｌｏｇｙ）において（Ｐｉｇｕｅｔ，
Ｐ．−Ｆ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１６６：１２８０（１９８７））、発病
因に関係するようである。ＴＮＦと癌および感染疾患の病理の関連性は、しばしば宿主の
異化作用（物質分解代謝）に関係がある。癌患者における主要問題は、通常食欲不振に由
来する体重減少である。全体的消耗が、通常「悪液質」として知られる結果を惹起する（
Ｋｅｒｎ， Ｋ．Ａ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｐａｒｅｎｔ，Ｅｎｔｅｒ．Ｎｕｔｒ．１２：２
８６−２９８（１９８８））。悪液質は、進行性体重減少、食欲不振、腫瘍の成長に伴う
執ような身体のびらんを含む。基本的な生理上の障害は、エネルギー消費に対する食物摂
取の減退である。悪液質状態はかくして重要な疾病状態に関係し、癌死亡率の重要な要因
である。多数の研究が、ＴＮＦが癌と感染性疾患の病理と他の異化作用による悪液質の仲
介者となっていることを、示唆する。

ＴＮＦはグラム陰性菌による敗血症と内毒素ショックとの病理生理学的帰趨において中
心的役割を演ずると考えられており（Ｍｉｃｈｉｅ，Ｈ．Ｒ．ｅｔ ａｌ．，Ｂｒ．Ｊ．
Ｓｕｒｇ．７６：６７０−６７１（１９８９）；Ｄｅｂｅｔｓ，Ｊ．Ｍ．Ｈ．ｅｔ ａｌ
．，Ｓｅｃｏｎｄ ＶｉｅｎｎａＣｈｏｃｋ Ｆｏｒｕｍ，ｐ．４６３−４６６（１９８９
）；Ｓｉｍｐｓｏｎ，Ｓ．Ｑ．ｅｔ ａｌ．，Ｃｒｉｔ．Ｃａｒｅ Ｃｌｉｎ．５：２７−
４７（１９８９））、その範囲は発熱、倦怠感、食欲不振、悪液質を含む。内毒素は、Ｔ
ＮＦとその他のサイトカインの産生と分泌とを刺激する潜在的単球／マクロファージ活性
化剤である（Ｋｏｒｎｂｌｕｔｈ，Ｓ．Ｋ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３７
：２５８５−２５９１（１９８６）およびその他）。ＴＮＦは、内毒素の生理的効果を模
倣するから、内毒素に関連する疾患の臨床的所見に対して責任ある中心的仲介者であると
結論付けられる。ＴＮＦおよび他の単球から誘導されるサイトカインは、内毒素に対する
代謝的ならびに神経ホルモン的反応を仲介する（Ｍｉｃｈｉｅ，Ｈ．Ｒ．ｅｔ ａｌ．，
Ｎ．Ｅｎｇ．Ｊ．Ｍｅｄ．３１８：１４８１−１４８６（１９８８））。ヒトの有志被検
者に対する投与は、発熱、頻脈、代謝の増大、ストレスによるホルモン分泌を含むインフ
ルエンザ様症状を伴う急性疾患を惹起する（Ｒｅｖｈａｕｇ，Ａ．ｅｔ ａｌ．，Ａｒｃ
ｈ．Ｓｕｒｇ．１２３：１６２−１７０（１９８８））。グラム陰性菌による敗血症の患
者では、高レベルのＴＮＦの循環が見られる（Ｗａａｇｅ，Ａ．，ｅｔ ａｌ．，Ｌａｎ
ｃｅｔ１：３５５−３５７（１９８７）；Ｈａｍｍｅｒｌｅ，Ａ．Ｆ．ｅｔ ａｌ．，Ｓ
ｅｃｏｎｄ Ｖｉｅｎｎａ Ｓｈｏｃｋ Ｆｏｒｕｍ ｐ．７１５−７１８（１９８９）；Ｄ
ｅｂｅｔｓ，Ｊ．Ｍ．Ｈ．ｅｔ ａｌ．，Ｃｒｉｔ．Ｃａｒｅ Ｍｅｄ．１７：４８９−４
９７（１９８９）；Ｃａｌａｎｄｒａ，Ｔ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｎｆｅｃ．Ｄｉｓ．１
６１：９８２−９８７（１９９０））。
その殺腫瘍活性の故になされるＴＮＦによる癌患者の治療は、５４５μｇ／ｍ²／２４
ｈｒより多い投与で、健康人に対する内毒素４ｎｇ／ｋｇの注射によって惹起されるのに
似た変化を惹き起こすことがわかり（Ｍｉｃｈｉｅ，Ｈ．Ｒ．ｅｔ ａｌ．，Ｓｕｒｇｅ
ｒｙ １０４：２８０−２８６（１９８８））、敗血症と内毒素に対する反応の主たる宿
主の仲介者としてのＴＮＦの役割を支持している。ヒトまたはラットへの長期間にわたる
静脈内注入は食欲不振、体液うっ滞、急性反応、負の窒素バランス（すなわち、古典的異
化効果）に関係し、重篤な疾患において見られる多くの変化に対する原因であるという結
論に導かれる（（Ｍｉｃｈｉｅ，Ｈ．Ｒ．ｅｔ ａｌ．，Ａｎｎ．Ｓｕｒｇ．２０９：１
９−２４（１９８９））。

上に論じたように、中和作用を有するＴＮＦに向けられた受動的免疫療法はこの様な病
理状態で、増大したＴＮＦ産生と高められたＴＮＦレベルに基づいて、グラム陰性菌敗血
症と内毒素症に有利な効果を有するであろう。

後にＴＮＦと同一物であることが見出されたカケクチンとして特徴付けられる変調因子
物質に対する抗体は、Ｃｅｒａｍｉｅｔ ａｌ．によって開示されている（ヨーロッパ特
許公報Ｎｏ．０２１２４８９，１９８７年３月４日）。そのような抗体は、診断用免疫学
的検定と細菌感染におけるショックの治療とに有用であると言われていた。Ｒｕｂｉｎｅ
ｔ ａｌ．は、ヒトのＴＮＦに対する単クローン抗体、そのような抗体を分泌するハイブ
リドーマ、そのような抗体を産生する方法、ＴＮＦの免疫学的検定におけるそのような抗
体の使用を開示した（ヨーロッパ特許公報Ｎｏ．０２１８８６８）。Ｙｏｎｅｅｔ ａｌ
．は、ｍＡｂを含む抗ＴＮＦ抗体類と、それの、諸疾患、特に川崎病と細菌感染の免疫学
的診断における有用性とを開示した（ヨーロッパ特許公報Ｎｏ．０２８８０８８）。川崎
病（小児急性有熱性粘膜皮膚リンパ結節症侯群、Ｋａｗａｓａｋｉ，Ｔ．．Ａｌｌｅｒｇ
ｙ １６：１７８（１９６７）； Ｋａｗａｓａｋｉ，Ｔ．，Ｓｈｏｎｉｋａ（Ｐｅｄｉａ
ｔｉｒｉｃｓ）２６：９３５（１９８５））の患者の体液は高レベルのＴＮＦを含み、病
変の進展に関係があると言われていた（（Ｙｏｎｅｅｔ ａｌ．，上記文献）。

他の研究者等は、試験管内で中和作用を有する組換えヒトＴＮＦに特異的であるｍＡｂ
を記載した（Ｌｉａｎｇ，Ｃ−Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒ
ｅｓ．Ｃｏｍｍ．１３７：８４７−８５４（１９８６）；Ｍｅａｇｅｒ，Ａ．ｅｔ ａｌ
．，Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ ６：３０５−３１１（１９８７）；Ｆｅｎｄｌｙｅｔ ａｌ．，
Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ ６：３５９−３６９；Ｂｒｉｎｇｍａｎ，Ｔ．Ｓ．ｅｔ ａｌ．，Ｈ
ｙｂｒｉｄｏｍａ ６：４８９−５０７（１９８７）；Ｈｉｒａｉ Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ
．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈ．９６：５７−６２（１９８７）；Ｍｏｌｌｅｒ，Ａ．ｅｔ
ａｌ．，（Ｃｙｔｏｋｉｎｅ ２：１６２−１６９（１９９０））。これらのｍＡｂのあ
るものは、ヒトのＴＮＦのマッピングと酵素の免疫学的検定の開発に使用され（Ｆｅｎｄ
ｌｙｅｔ ａｌ．，上掲文献；Ｈｉｒａｉｅｔ ａｌ．，上掲文献；Ｍｏｌｌｅｒｅｔ ａ
ｌ．，上掲文献）、また組換えＴＮＦの生成の助剤とされた（Ｂｒｉｎｇｍａｎｅｔ ａ
ｌ．，上掲文献）。しかしながら、これらの研究は、ヒトにおける生体内診断または治療
に使用できるＴＮＦ中和抗体産生の基礎を提供するものではない。

抗ＴＮＦ免疫療法の採用に対する最も直接的な支持が、ヒト以外の動物の生体内保護の
研究から得られる。ＴＮＦに対する中和作用を有する抗血清またはｍＡｂが、ヒト以外の
哺乳類について、実験的に惹起された内毒素血症と菌血症における致死的挑戦の後に不利
な生理的変化を停止し死を阻止することが示された。この効果は、例えば、げっ歯類致死
率検定と霊長類病理モデル系において実証された（Ｍａｔｈｉｓｏｎ，Ｊ．Ｃ．，ｅｔ
ａｌ．，Ｊ．Ｃｌｉｎ，Ｉｎｖｅｓｔ．８１：１９２５−ｌ９３７（１９８８）；Ｂｅｕ
ｔｌｅｒ，Ｂ．ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２２９：８６９−８７１（１９６５）；Ｔ
ｒａｃｅｙ，Ｋ．Ｊ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ ３３０：６６２−６６４（１９８７）
；Ｓｈｉｍａｍｏｔｏ，Ｙ．ｅｔ ａｌ．，Ｉｍｍｕｏｌ．Ｌｅｔｔ．１７：３１１−３
１８（１９８８）；Ｓｉｌｖａ，Ａ．Ｔ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．１
６２：４２１−４２７（１９９０），Ｏｐａｌ，Ｓ．Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｎｆｅｃ
ｔ．Ｄｉｓ．１６１：１１４８−１１５２（１９９０）；Ｈｉｎｓｈａｗ，Ｌ．Ｂ．ｅｔ
ａｌ．，Ｃｉｒｃ．Ｓｈｏｃｋ ３０：２７９−２９２（１９９０））。例えば、抗ＴＮ
ＦｍＡｂを中和するＦ（ａｂ'）フラグメントは、ヒヒにおけるＥ．ｃｏｌｉ生菌によっ
て惹起された敗血症によるショックを阻止することができた（Ｔｒａｃｅｙ，Ｋ．Ｊ．ｅ
ｔ ａｌ．，上掲文献）。

ｈＴＮＦαの推定されるレセプター結合位置がＥｃｋとＳｐｒａｎｇとによって示され
た（Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６４（２９），１７５９５−１７６０５（１９８９））
。彼等は、ＴＮＦαのリセプター結合位置をアミノ酸１１−１３、３７−４２、４９−５
７および１５５−１５７と同定した。国際特許出願ＷＯ９１／０２０７８（優先権主張日
；１９８９年８月７日）は、次の様なエピトープ、すなわち１−２０、５６−７７および
１０８−１２７の少なくとも一つ、１−２０、５６−７７、１０８−１２７および１３８
−１４９の少なくとも二つ、１−１８、５８−６５、１１５−１２５および１３８−１４
９のすべて、１−１８、および１０８−１２８のすべて、５６−７９，１１０−１２７お
よび１３５−または１３６−１５５のすべて、１−３０、１１７−１２８および１４１−
１５３のすべて、１−２６，１１７−１２８および１４１−１５３のすべて、２２−４０
、４９−９６または−９７、１１０−１２７および１３６−１５３のすべて、１２−２２
、３６−４５、９６−１０５および１３２−１５７のすべて、１−２０と７６−９０の両
者のすべて、２２−４０、６９−９７，１０５−１２８および１３５−１５５のすべて、
２２−３１および１４６−１５７のすべて、２２−４０および４９−９８のすべて、２２
−４０、４９−９８および６９−９７の少なくとも一つ、そして２２−４０と７０−８７
の両者を有するモノクローナル抗体に結合することのできるＴＮＦリガンドを、開示して
いる。

今日までのところ、ヒトにおける抗ＴＮＦｍＡｂ療法についての実験は限られている。
一つのフェイズＩ研究では、１４人の重篤な敗血症ショックの患者が、中和作用を有する
マウスの抗ＴＮＦｍＡｂを０．４−１０ｍｇ／ｋｇの投与を１回受けた（Ｅｘｌｅｙ，Ａ
．Ｒ．，Ｌａｎｃｅｔ ３３５：１２７５−１２７７（１９９０））。しかしながら、１
４人中７人の患者がこの治療に対してヒトの抗マウス抗体反応を起こし、マウス抗体の重
鎖（原文；ｈｅａｖｙ ｃｈａｉｎ）および軽鎖（原文；ｌｉｇｈｔ ｃｈａｉｎ）部分に
よる免疫発現による既知の諸問題をこうむった。そのような免疫発現は、続く投与の有効
性を減じ、マウス抗ＴＮＦ抗体の診断的または治療的投与を受けた患者に、免疫拒絶反応
の故に、治療効果を無効にすることがある。

重篤な移植片体宿主疾患（原文；ｇｒａｆｔ ｖｓ ｈｏｓｔ ｐａｔｈｏｌｏｇｙ）を
患う患者に対するマウスＴＮＦｍＡｂの投与についてもまた報告されている（Ｈｅｒｖｅ
，Ｐ．ｅｔ ａｌ．，Ｌｙｍｐｈｏｍａ Ｒｅｓ．９：５９１（１９９０））。

したがって、マウス抗体免疫発現に関する諸問題を克服し、免疫発現の低い、そして中
和活性の高い新規なＴＮＦ抗体の提供が必要とされている。

本発明の目的は、従来技術の欠陥を克服することである。

本発明の他の目的は、マウス抗組織壊死因子（ＴＮＦ）抗体とキメラ抗体とそれらのフ
ラグメントおよび領域部分であって、生体内でＴＮＦの生物学的活性を阻害ないし中和し
、ヒト腫瘍壊死因子−アルファ（ｈＴＮＦα）に特異的であるものを提供することである
。一つの好適実施態様において、本発明の抗ＴＮＦ抗体はＡ２抗体のＴＮＦへの結合を完
全に阻害する。

他の好適実施態様においては、本発明の抗ＴＮＦ抗体は、（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１にお
ける）ｈＴＮＦαの残基８７−１０８または残基５９−８０および８７−１０８の両者の
少なくとも５個のアミノ酸のエピトープと結合するが、（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における
）アミノ酸配列１−２０、１１−１３、３７−４２、４９−５７または１５５−１５７の
ようなＴＮＦの既知あるいは推定されている結合部位には結合しない。

本発明のそのような抗ＴＮＦ抗体、そのフラグメント、領域部分は、マウス／マウスハ
イブリドーマのようなハイブリドーマと、マウス／ヒトキメラ抗体のような少なくとも可
変領域をコードする異種（非対応）核酸を発現する組換え細胞の両方から産生されるもの
を含む。すなわち、ＴＮＦ特異性抗体およびそのフラグメントと領域部分である。

ハイブリドーマと遺伝子工学技術を用いて抗ＴＮＦ抗体、そのフラグメントおよび領域
部分を提供する本発明の他の目的は、上述の様なＴＮＦに関連するヒトの疾病の生体内診
断および治療に有用な製品を提供することである。

本発明の他の目的は、ＴＮＦαの部分に相当するｈＴＮＦαの抗体ポリペプチドを提供
することであり、これらのポリペプチドのエピトープがＴＮＦ特異性抗体に結合するとき
、生体内においてＴＮＦαの生物学的活性を中和または阻害する。本発明のさらに他の目
的は、図１５に示されるようなｈＴＮＦα（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における）残基８７−
１０８または５９−８０および８７−１０８から選ばれる少なくとも５個のアミノ酸に相
当するポリペプチドの特定エピトープに結合するハイブリドーマまたは組換え宿主から産
生される抗体を提供することである。

本発明のさらに他の目的は、生体内においてＴＮＦαを阻害および／または中和する活
性を有し、悪液質を含むＴＮＦαに関連する疾患、細菌性疾患、ウィルス性疾患、真菌性
疾患を含む急性慢性の感染性および寄生虫性疾患、または自己免疫疾患、アルコール誘発
性肝炎、悪性形質転換疾患等を含む急性および慢性の炎症性および免疫性疾患の診断およ
び治療のための、薬用および診断用の組成物として提供され得る抗ＴＮＦαおよび／また
はそのフラグメント、領域部分を提供することである。
本発明のさらに他の目的は、生体内において、ＴＮＦα阻害ないし中和作用を有し、悪
液質を含むＴＮＦαに関連する疾患、細菌性疾患、ウィルス性疾患、および真菌性疾患の
ような急性および慢性の感染性および寄生虫性疾患、自己免疫疾患、アルコール誘発性肝
炎、悪性形質転換疾患等を含む急性および慢性の炎症性および免疫性疾患の診断および治
療のための、薬用および診断用の組成物として提供することのできる抗ＴＮＦαおよび／
またはそのフラグメント、領域部分を提供することである。治療用に好適なのは、高親和
性抗ＴＮＦα抗体で、モノクローナルキメラ抗体であって、組換えによりまたはハイブリ
ドーマによって産生されるものを含み、それは少なくとも約１μｇ／ｍｌ、より好ましく
は、少なくとも約１００ｎｇ／ｍｌ、もっとも好ましくは約１５ｎｇ／ｍｌの阻害投与量
５０（ＩＤ５０）で生体内でヒトのＴＮＦαを阻害ないし中和する。

本発明の他の様相によれば、抗ＴＮＦαｍＡｂまたはキメラｍＡｂまたはそのＴＮＦα
結合性フラグメントは、ＴＮＦαの産生に関連する症状を病むと疑われる患者の体内でヒ
トＴＮＦαを検出するための診断法において特に有用であり、本発明の高親和性マウス抗
ＴＮＦα抗体またはキメラ抗ＴＮＦα抗体が、患者または、検出された抗原抗体反応から
得られる生物学的物質と接触させられる方法を含む。本発明はまた、本発明の高親和性マ
ウス抗ＴＮＦα抗体および／またはキメラ抗ＴＮＦα抗体を、好ましくは、検出できるよ
うにラベルされた形で含む、生物学的流体（体液）中のＴＮＦαを検出するためのキット
をも含む。

本発明のキメラ抗体はｍＡｂの有利な特徴の組合せを具体化するものである。本発明の
キメラ抗体は、マウスｍＡｂと同様に、ヒトのＴＮＦを認識し、これと結合する。しかし
、マウスｍＡｂとは異なり、このキメラ抗体の「ヒトに特異的な」性質が、抗体に対する
免疫応答の可能性を低下させ、そして浄化値（原文；ｃｌｅａｒａｎｃｅ）の低下により
血液循環中で長く維持される。さらに、本発明によって開示された方法を採用することに
より、どのような所望のヒト免疫グロブリンのイソタイプでもその一定領域において所望
の抗原結合部位と結合できる。

本発明の一つの実施態様は、ヒトＴＮＦαに特異的であるＡ２と名付けられる高親和性
のマウスｍＡｂに関する。この抗体は、検出可能にラベルされた形で使用される。別の実
施態様では、ｈＴＮＦαのポリププチド部分であって、そのペプチド部分に含まれるエピ
トープに特異的な抗体またはそのフラグメントによって無傷のＴＮＦα分子の一部として
結合するときに、生体内においてＴＮＦα活性を阻害または中和するものが提供される。

本発明のさらに別の目的は、ＨまたはＬのキメラ免疫グロブリン鎖であって、可変また
は不変（恒常）領域を有し、ＴＮＦの一以上のエピトープに対する特異性を有する、好ま
しくは、（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における）ｈＴＮＦαの、残基５９−８０および８７−
１０８の両者の組合せまたは残基８７−１０７の少なくとも５個のアミノ酸のエピトープ
、に対する特異性を有するものを提供することである。好適実施態様において、エピトー
プアミノ酸は、（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における）ｈＴＮＦαの１１−１３、３７−４２
、４９−５７または１５５−１５７の少なくとも一つの残基からのアミノ酸を含まない。
ヒト／マウス−キメラ免疫グロブリン鎖は、天然のヒト免疫グロブリン中に存在するもの
に実質的に類似の不変（Ｃ）領域と、好ましくはＴＮＦエピトープに対する高親和性と所
望の特異性を有する可変（Ｖ）領域を含む。本発明はまた、分子全体が所望の抗原認識作
用および結合作用を示すように会合させられたキメラＨおよびＬ鎖を有する抗原、そのフ
ラグメント、領域部分を提供する。

具体的には、本発明は二つの軽鎖と二つの重鎖を有し、そのおのおのがヒトの不変領域
の少なくとも一部と非ヒト起源のｈＴＮＦαに対する特異性を有する（Ｖ）可変領域の少
なくとも一部とを有し、ｈＴＮＦαの阻害性および／または中和性エピトープに対して高
親和結合性を有するキメラ抗体に関する。本発明はまたそのような抗体のフラグメントま
たは誘導体を含む。好ましくは、Ｖ領域は、非ヒト起源のものであり、もっとも好ましく
はマウス起源のものである。好適実施態様において、Ｖ領域は、Ａ２ ｍＡｂのエピトー
プから誘導されるか、それに結合する。別の好適実施態様においては、キメラＡ２（ｃＡ
２）と名付けられるキメラ抗体か、ｃＡ２とＴＮＦαの結合を競合的に阻害するヒト／マ
ウス−キメラ抗ＴＮＦｍＡｂのエピトープと結合する抗体を提供する。

好ましくは、このキメラ抗体は、生体内で、少なくとも約１μｇ／ｍｌ、より好ましく
は少なくとも約１００ｎｇ／ｍｌ、最も好ましくは、少なくとも約１５、３０、５０もし
くは８０ｎｇ／ｍｌのＩＤ５０の投与で、ｈＴＮＦαを阻害または中和する。

予想外のこととして、本発明のｍＡｂｓは、ＥｃｋおよびＳｐｒａｎｇ（Ｊ．Ｂｉｏｌ
．Ｃｈｅｍ．，２６４（２９），１７５９５−１７６０５（１９８９）によって、（ＳＥ
Ｑ ＩＤ ＮＯ：１における）ｈＴＮＦαの１１−１３、３７−４２、４９−５７および１
５５−１５７である複数のアミノ酸であるとして示されたように、推定されたレセプター
結合位置に結合することなく、ＴＮＦ−αの活動を遮断することができる。

本発明は、マウス抗組織壊死因子（ＴＮＦ）抗体とネズミ／ヒトキメラ抗体とそれらの
フラグメントおよび領域部分であって、生体内（原文；ｉｎ ｖｉｖｏ）でＴＮＦ生物学
的活性を阻害ないし中和し、そして、ヒト腫瘍壊死因子−アルファ（ｈＴＮＦα）に対し
て特異的であるもの、かつ、診断上および治療上の目的のために、通常の健康な被検体に
存在するよりも過剰の量で存在する抗ＴＮＦ抗体特にｇＴＮＦαと反応活性である物質の
存在に付随した状態または病理学的状態にある被検体に、使用されるものを、提供する。
本発明の、抗体、ならびにそれらのフラグメント、領域部分および誘導体は、生体内で（
原文；ｉｎ ｖｉｖｏ）生物学的活性を阻害ないし中和するＴＮＦのエピトープを認識す
るところの、Ｖ領域部分を少なくとも好ましく含有する。

予想外のこととして、本発明のｍＡｂｓは、ＥｃｋおよびＳｐｒａｎｇ（Ｊ．Ｂｉｏｌ
．Ｃｈｅｍ．，２６４（２９），１７５９５−１７６０５（１９８９）によって、（ＳＥ
Ｑ ＩＤ ＮＯ：１における）ｈＴＮＦαの１１−１３、３７−４２、４９−５７および１
５５−１５７である複数のアミノ酸であるとして示されたように、推定されたレセプター
結合位置に結合することなく、ＴＮＦ−αの活動を遮断することができる。

本発明の好ましい抗体は、ネズミ抗体または高親和性ヒト／ネズミキメラ抗ＴＮＦα抗
体、ならびにそれらのフラグメントもしくは領域部分であり、それらは生体内で（原文；
ｉｎ ｖｉｖｏ）ヒトＴＮＦαに対して効力のある阻害活性および／または中和活性を有
する。そのような抗体およびキメラ抗体は、精製された組み換えｈＴＮＦα（ＳＥＱ Ｉ
Ｄ ＮＯ：１）またはそれらのペプチドフラグメントを使用する免疫感作によって生じた
ものを含む。そのようなフラグメントは、（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１の複数のアミノ酸に相
当する）ｈＴＮＦαの残基５９−８０および残基８７−１０７の両方の組み合わせまたは
残基８７−１０７の内の少なくとも５分子のアミノ酸のエピトープを含む。さらに、本発
明の好ましい抗体、抗ＴＮＦ抗体のフラグメントおよび抗ＴＮＦ抗体の領域部分は、（Ｓ
ＥＱ ＩＤ ＮＯ：１の）ｈＴＮＦαにおける複数のアミノ酸１１−１３、３７−４２、４
９−５７または１５５−１５７の少なくともひとつから由来する複数のアミノ酸（原文；
ａｍｉｎｏ ａｃｉｄｓ）を認識しない。

ＴＮＦの循環濃度は非敗血症個体中で約１０ｐｇ／ｍｌの程度で非常に低く、一方、敗
血症患者では約５０ｐｇ／ｍｌに達し（Ｈａｍｍｅｒｌｅ，Ａ．Ｆ．ｅｔ ａｌ．，１９
８９，上掲書）、あるいは、病理学的にＴＮＦでメディエートされたサイトで検出され得
るだけであるから、病理学的にＴＮＦでメディエートされた免疫検定および療法の両方の
ために、生体内で（原文；ｉｎ ｖｉｖｏ）ＴＮＦ阻害および／または中和する高親和性
および／または効力のある抗体、そのフラグメント、またはその領域部分を使用するのが
好ましい。そのような抗体、フラグメントおよび領域部分は、Ｋａとして発現された、た
とえば５×１０⁸Ｍ^-1、８×１０⁸Ｍ^-1、２×１０⁹Ｍ^-1、４×１０⁹Ｍ^-1、６×１０⁹Ｍ^-1
、８×１０⁹Ｍ^-1のような少なくとも１０⁸Ｍ^-1、より好ましくは少なくとも１０⁹Ｍ^-1の
ｈＴＮＦαに対する親和性を好適に有している。

ヒトに対する治療学的使用に対して好適であるのは、ＴＮＦ誘導ＩＬ−６分泌を遮断す
るところの、生体内で（原文；ｉｎ ｖｉｖｏ）ＴＮＦα阻害活性および／またはＴＮＦ
α中和活性を有する、本発明の高アフィニティを有するネズミとのキメラ抗体ならびにそ
れらのフラグメント、領域部分および誘導体である。ヒトに対する治療学的使用に対して
また好適であるのは、生体内外およびその位置において（原文；ｉｎ ｖｉｖｏ， ｉｎ
ｓｉｔｕ， ａｎｄ ｉｎ ｖｉｔｒｏ）、ＥＬＡＭ−１およびＩＣＡＭ−１のような細胞
接着分子のＴＮＦ誘導発現を遮断すること、および、ＴＮＦマイトジエン活性を遮断する
ことを含めて、ＴＮＦ誘導プロ凝固活性（原文；ｐｒｏｃｏａｇｕｌａｎｔ ａｃｔｉｖ
ｉｔｙ）を遮断するところの、高親和性を有するネズミとのキメラ抗ＴＮＦα抗体、なら
びにそれらのフラグメント、領域部分および誘導体である。

好ましい抗ＴＮＦ ｍＡｂｓは、ネズミの抗ＴＮＦα ｍＡｂ Ａ２、キメラｍＡｂ ｃＡ
２ または、前記フラグメントおよび領域部分と同様に特別の結合特性を実質的に備えた
抗体のヒトＴＮＦαへの結合を競合的に生体内で（原文；ｉｎ ｖｉｖｏ）阻害すること
のできるものである。本発明の好ましい抗体はＡ２およびｃＡ２により認識されたエピト
ープを結合したものであり、そのエピトープは、（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１の相当するアミ
ノ酸として）ｈＴＮＦαにおける５９−８０および／または８７−１０８の複数のアミノ
酸中に含まれ、ヒトｈＴＮＦαの上記部分から由米する少なくとも１分子のアミノ酸を有
する少なくとも５分子のアミノ酸からなる。競合的阻害によるｍＡｂの特異性および親和
性を決定する好適な方法は、Ｍｕｌｌｅｒ，Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．９２：５８９−
６０１（１９８３）により見出されることができ、その内容は参照によってこの明細書の
内容として完全に組み込まれる。

本発明における抗体の例として、本発明のネズミｍＡｂ Ａ２が、ｃ１３４Ａとして指
定される細胞系により産生される。キメラ抗体ｃＡ２が、ｃ１６８Ａとして指定される細
胞系により産生される。細胞糸ｃ１３４Ａは、セントコア セル バイオロジー サービス
デポジトリ（原文；Ｃｅｎｔｏｃｏｒ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ Ｄｅ
ｐｏｓｉｔｏｒｙ）にあるリサーチセルバンク（原文；ｒｅｓｅｒｃｈ ｃｅｌｌ ｂａｎ
ｋ）に預託され、また、細胞系ｃ１６８Ａ（ＲＣＢ）は、セントコア コーポレート セル
カルチャー リサーチ アンド デベロップメント デポジトリ（原文；Ｃｅｎｔｏｃｏｒ
Ｃｏｒｐｏｒａｔｅ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｒｅｓｅｒｃｈ ａｎｄ Ｄｅｖｅｌｏｐ
ｍｅｎｔ Ｄｅｐｏｓｉｔｏｒｙ）に預託されている。なお、両者とも、セントコア， ２
００グレート バレイ パークウェイ，マルバーン，ペンシルベニア州，１９３５５に位置
している。そのｃ１６８Ａ細胞系は、また、オランダ国ライデンのセントコアＢＶに預託
されている。

さらに、ｃ１６８Ａは、本願の出願日に、培地安全預託（原文：Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｓａ
ｆｅ Ｄｅｐｏｓｉｔ）として、メリーランド州のロックビルにあるアメリカン タイプ
カルチャー コレクション（原文；Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌ
ｅｃｔｉｏｎ）に、預託された。

用語の「エピトープ」は、抗体により認識されることができ、かつ抗体に結合されるこ
とのできるその部位を指すものとして、意味される。エピトープは、通常、複数のアミノ
酸または複数の糖側鎖のような、化学的に活性な複数の分子の集合表面からなり、特異的
な電荷特性のみならず特異的な三次元構造特性を有している。「阻害し、および／または
中和するエピトープ」とは、ＴＮＦリセプターへのＴＮＦの結合を含めて、生体内外およ
びその位置において（原文；ｉｎ ｖｉｖｏ， ｉｎ ｖｉｔｒｏ ａｎｄ ｉｎ ｓｉｔｕ）
、より好ましくは生体内で（原文；ｉｎ ｖｉｖｏ）、抗体が結合するとエピトープを含
有する分子または組織の生物学的活性を喪失するエピトープを意図する。本発明の好まし
い抗体、抗ＴＮＦ抗体のフラグメントおよびその領域部分は、（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１に
おける）ｈＴＮＦαの残基８７−１０８のアミノ酸からの、または残基５９−８０および
８７−１０８の両方のアミノ酸からの少なくとも１分子のアミノ酸を有する５分子のアミ
ノ酸を含むエピトープを認識する。本発明の好ましい抗体、抗ＴＮＦ抗体のフラグメント
およびその領域部分は、（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における）ｈＴＮＦαの１１−１３、３
７−４２、４９−５７または１５５−１５７のアミノ酸の少なくともひとつから由来する
エピトープを認識しない。好ましい態様においては、（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における）
ｈＴＮＦαの残基８７−１０８または残基５９−８０および８７−１０８の両方からの少
なくとも２分子のアミノ酸を含有する。他の好ましい態様においては、エピトープは、（
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における）ｈＴＮＦαの残基５９−８０および残基８７−１０８か
らの少なくとも３分子のアミノ酸を含有する。その他の好ましい態様においては、エピト
ープは、（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における）ｈＴＮＦαの残基８７−１０８または残基５
９−８０および８７−１０８の両方からの少なくとも４分子のアミノ酸を含有する。その
他の好ましい態様においては、エピトープは、（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における）ｈＴＮ
Ｆαの残基８７−１０８または残基５９−８０および８７−１０８の両方からの少なくと
も５分子のアミノ酸を含有する。その他の好ましい態様においては、エピトープは、（Ｓ
ＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における）ｈＴＮＦαの残基８７−１０８または残基５９−８０およ
び８７−１０８の両方からの少なくとも６分子のアミノ酸を含有する。その他の好ましい
態様においては、エピトープは、（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における）ｈＴＮＦαの残基８
７−１０８または残基５９−８０および８７−１０８の両方からの少なくとも７分子のア
ミノ酸を含有する。

「抗原」は、その抗原のエピトープに結合することのできる抗体を産生するために動物
を誘導することのできる抗体によって結合されることのできる分子であるか、または分子
の一部である。一つの抗原は、一以上のエピトープを含有していても良い。上記の特異的
な反応は、抗原が高度に選択的な挙動で、その対応する抗体と反応することができるが、
他の抗原により引き起こされる多数の他の抗体とは反応することがないということを示す
ものとして、意味される。抗体、本発明の抗ＴＮＦαのフラグメントおよび領域部分を結
合する好ましい抗原は、（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における）ｈＴＮＦαの残基８７−１０
８または残基５９−８０および８７−１０８の両方からのアミノ酸の少なくとも一つを含
有する少なくとも５分子のアミノ酸を含む。抗体、本発明の抗ＴＮＦαのフラグメントお
よび領域部分を結合する好ましい抗原は、（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における）ｈＴＮＦα
のアミノ酸１１−１３、３７−４２、４９−５７または１５５−１５７からのアミノ酸を
含まない。

用語の「抗体」は、ＴＮＦによるＴＮＦリセプターへの結合を阻害するＴＮＦの部分を
結合することのできる、ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体、ならびにそのフ
ラグメントおよび領域部分を、それらの誘導体と同様に、含んで意味される。フラグメン
トは、たとえば、Ｆａｂ、Ｆａｂ'、Ｆ（ａｂ'）₂、およびＦｖを含む。これらのフラグ
メントは、抗体そのもののＦｃフラグメントを欠き、循環からより迅速に清透になり（原
文；ｃｌｅａｒ ｍｏｒｅ ｒａｐｉｄｌｙ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ）
、そして抗体そのものよりも非特異的でない組織結合を有している（原文；ｍａｙ ｈａ
ｖｅ ｌｅｓｓ ｎｏｎ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｔｉｓｓｕｅ ｂｉｎｄｉｎｇ ｔｈａｎ ａｎ
ｉｎｔａｃｔ ａｎｔｉｂｏｄｙ）（Ｗａｈｌｅｔ ａｌ．，Ｊ． Ｎｕｃｌ．Ｍｅｄ．２
４：３１６−３２５（１９８３））。これらのフラグメントは、この技術分野に良く知ら
れた方法、たとえば（Ｆａｂフラグメントを得るには）パパインのような酵素、あるいは
（Ｆ（ａｂ'）₂を得るには）ペプシンのような酵素を使用するタンパク質分解により、抗
体そのものから得られる。本発明の抗ＴＮＦ抗体の領域は、重鎖定常領域（Ｈ_c）、重鎖
可変領域（Ｈ_v）、軽鎖可変領域（Ｌ_v）および軽鎖定常領域（Ｌ_c）の少なくとも一つを
含み、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、それらのフラグメントおよび領域部分
が、ＴＮＦの一部を結合し、かつＴＮＦ生物学的活性を阻害するところの、少なくとも一
つの重鎖可変領域（Ｈ_v）または軽鎖可変領域（Ｌ_v）を含む。

好適な態様においては、抗体は、ハイブリドーマまたは組み換え宿主により産生される
ところの、その抗体がＡ２、ｒＡ２、またはｃＡ２と指定されるＴＮＦのエピトープのア
ミノ酸を結合する、モノクローナル抗体である。他の好適な態様では、抗体は、Ａ２によ
り認識されたエピトープを認識するところの、キメラ抗体である。更に好適な態様におい
ては、抗体は、キメラＡ２（ｃＡ２）と指定されるキメラ抗体である。
本発明におけるマウスとのキメラ抗体、フラグメントおよび領域部分は、個々の重（Ｈ
）鎖免疫グロブリン鎖および軽（Ｌ）鎖免疫グロブリン鎖からなる。キメラＨ鎖は、ヒト
Ｈ鎖Ｃ領域の少なくとも一部に結合された、ＴＮＦに対して特異的な非ヒト抗体のＨ鎖か
ら誘導された抗原結合領域を有する。

本発明のキメラＬ鎖は、ヒトＬ鎖Ｃ領域（Ｃ_L）の少なくとも一部に結合された、ＴＮ
Ｆに対して特異的な非ヒト抗体のＬ鎖から誘導された抗原結合領域からなる。

ここで使用されているように、用語の「抗原結合領域」は、抗原と相互作用をし、抗原
に対するその特異性および親和性を抗体に付与するところのアミノ酸残基を含有する抗体
分子のその部位を示すものとされる。抗体領域は、抗原結合残基の適当な構造を維持する
ために必要な「読み取り枠」アミノ酸残基を含む。

この明細書で使用されるものとして、用語の「キメラ抗体」は、一価、二価または多価
の免疫グロブリンを含む。一価のキメラ抗体は、キメラＬ鎖とジスルフィド架橋で結合さ
れたキメラＨ鎖により形成された二量体（ＨＬ）である。二価のキメラ抗体は、少なくと
も一つのジスルフィド架橋で結合された二つのＨＬ二量体から形成された四量体（Ｈ₂Ｌ₂
）である。多価キメラ抗体は、たとえば、凝集するＣ_H領域（たとえばＩｇＭのＨ鎖また
はμ鎖から）を用いることによって得ることができる。

本発明はまた、ネズミのまたはキメラ抗体、そのフラグメント、その領域部分、または
それらの誘導体について「誘導体」を規定し、その用語は、免疫グロブリンと機能的に類
似する分子種を生成する、切り縮められ、または修飾された遺伝子によりコードされたそ
れらのタンパクを含む。その修飾は、植物毒および細菌毒のような細胞毒タンパクをコー
ドする遺伝子配列の付加を含むが、それらに限定はされない。そのフラグメントおよび誘
導体は、この発明のいかなる宿主からも産生されることができる。また、抗ＴＮＦ抗体、
フラグメントおよび領域部分は、細胞毒タンパクまたは化合物に生体外で（原文；ｉｎ
ｖｉｔｒｏ）結合されて、ＴＮＦリセプターを有する細胞を選択的に殺す細胞毒の抗ＴＮ
Ｆ抗体を産生する。

同一または相違するＶ領域を特異的に結合するキメラＨ鎖およびキメラＬ鎖を有する抗
体、フラグメント、または誘導体は、たとえばＳｅａｒｓｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａ
ｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７２：３５３−３５７（１９７５）により教示された
ように、個々のポリペプチド鎖の適当な会合により得られることができる。そのやり方の
場合、キメラＨ鎖（またはそれらの誘導体）を発現する宿主がキメラＬ鎖（またはそれら
の誘導体）を発現する宿主とは別々にして培養され、そして免疫グロブリンが別々に回収
されて会合される。また別に、複数の宿主が同時培養されることができ、複数の鎖が培地
中で自発的に会合させられ、会合した免疫グロブリン、フラグメンまたは誘導体が回収さ
れる。

本発明のキメラ抗体の抗原結合領域は、ヒトＴＮＦに対して特異的な非ヒト抗体から好
適に得られる。そのような非ヒト抗体をコードする好ましいＤＮＡ源は、抗体を産生する
細胞系、好ましくはハイブリドーマとして普通に知られている雑種細胞系を含む。好まし
いハイボリドーマはＡ２ハイブリドーマ細胞系である。
雑種細胞は、非ヒト抗ｈＴＮＦα抗体産生細胞、典型的には天然のもしくは組み換えヒ
トＴＮＦまたはヒトＴＮＦαタンパク配列のペプチドフラグメントに対して免疫された動
物の脾臓細胞の融合によって形成される。また、非ヒト抗ＴＮＦ抗体産生細胞は、血液、
脾臓、リンパ節またはＴＮＦで免疫された動物の他の組織から得られたＢリンパ球であっ
ても良い。

本発明におけるキメラ抗体の抗原結合領域をコードするヌクレオチド配列に寄与する抗
体産生細胞は、霊長類のような非ヒト細胞またはヒト細胞の形質転換により産生される。
たとえば、抗ＴＮＦ抗体を産生するＢリンパ球は、エプスタイン−バールウィルス（原文
；Ｅｐｓｔｅｉｎ−Ｂａｒｒ ｖｉｒｕｓ）のようなウィルスで感染され、形質転換され
て、不滅の抗ＴＮＦ抗体産生細胞を生成する（Ｋｏｚｂｏｒｅｔ ａｌ．，Ｉｍｍｕｎｏ
ｌ．Ｔｏｄａｙ ４：７２−７９（１９８３））。また、そのＢリンパ球は、この技術分
野で良く知られているように、形質転換遺伝子または形質転換遺伝子産生物を与えること
により、形質転換されても良い。

好ましくは、抗原結合領域部分は、ネズミ起源である。他の態様においては、抗原結合
領域部分は、他の動物種、特にウサギ、ラットまたはハムスターのような囓歯類から得ら
れる。

永続的機能を与える第２の融合相手は、リンパ球様細胞またはそれ自身抗体産生細胞で
はないが悪性である形質細胞腫もしくはミエローマの細胞であっても良い。好ましい融合
相手細胞は、ＳＰ２／０（ＡＴＣＣ ＣＲＬ１５８１）と略されるハイブリドーマＳＰ２
／０−Ａｇ１４、およびミエローマＰ３Ｘ６３Ａｇ８（ＡＴＣＣ ＴＩＢ９）もしくはそ
の誘導体（参照：Ｈａｒｔｌｏｗ，Ｅ．ｅｔ ａｌ．，Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂ
ｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏ
ｒｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ，（１９８８））を含む
。

ヒトＴＮＦαに特異的なｍＡｂを産生するネズミハイブリドーマは、マウス融合相手細
胞たとえばＳＰ２／０と、精製されたｈＴＮＦα、組み換えｈＴＮＦα、（ＳＥＱ ＩＤ
ＮＯ：１における）ＴＮＦの残基５９−８０および８７−１０８から選択される５以上の
アミノ酸を含む、天然もしくは人工のＴＮＦペプチドで免疫されたマウスの脾臓細胞との
融合によって形成される。マウスを免疫するために、従来の種々の異なる実験記録が参照
される。

（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における）ＴＮＦにおけるＴＮＦ残基８７−１０８もしくは残
基５９−８０および８７−１０８の両方、フラグメント、またはそれらの中に含まれるペ
プチドの組み合わせが、本来のＴＮＦ分子の脈絡（原文；ｃｏｎｔｅｘｔ）中に存在する
ペプチド配列を認識する抗体を形成するために、免疫源として有効である。

本発明における、抗体によって認識されるエピトープ、ならびにそのフラグメントおよ
び領域部分は、高ＴＮＦ活性を有し、本発明の抗体、フラグメント、それらの可変領域部
分によって認識されるＴＮＦの局所的エピトープを提供する、以下に示されるＴＮＦのア
ミノ酸配列の各々もしくは両方の少なくとも一つのアミノ酸を含有する５分子以上のアミ
ノ酸を含む。

５９−８０：Ｔｙｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｎ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｌｙｓ−Ｇｌｙ−Ｇｌ
ｉ−Ｇｌｙ−Ｃｙｓ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｔｈｒ−Ｈｉｓ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｔｈ
ｒ−Ｈｉｓ−Ｔｈｒ−Ｉｌｅ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１のＡＡ ５９−８０）および
８７−１０８：Ｔｙｒ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｌｙｓ−Ｖａｌ−Ａｓｎ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｓ
ｅｒ−Ａｌａ−Ｉｌｅ−Ｌｙｓ−Ｓｅｒ−Ｐｒｏ−Ｃｙｓ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｇｌｕ−Ｔ
ｈｒ−Ｐｒｏ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１のＡＡ ８７−１０８）

本発明の抗体を発生させるのに使用されることのできる特別のペプチドが、残基８７−
１０８または残基５９−８０および８７−１０８の両方の少なくともいずれかから選択さ
れるところの、抗ＴＮＦ抗体、フラグメントおよびそれらの領域部分により結合されたＴ
ＮＦエピトープを形成するために結合された、そして、その結合が抗ＴＮ生物学的活性を
発生させるアミノ酸の組み合わせを含む。そのようなエピトープは、ＴＮＦの他のアミノ
酸との結合により長さとして少なくとも５分子のアミノ酸のエピトープを生成するところ
の、残基８７−１０８または残基５９−８０および８７−１０８の各々から選択される少
なくとも１〜５分子のアミノ酸および２２未満のアミノ酸を含む。

本発明の抗体を、遊離のもしくは接合した形でまたは大きなペプチドの脈絡における本
来の配列として存在する時にそれらの配列を認識し、かつ結合する小さなペプチド配列に
する技術は、この技術分野において良く知られている。それらの抗体は、この技術分野で
知られたハイブリドーマまたは組み換え技術によって産生されたところの、Ｅネズミ抗体
、ネズミ／ヒト抗体およびヒト／ヒト抗体を含む。

本発明のｍＡｂｓによって認識されたこれらのペプチド配列の同定は、結合特性を有す
る付加的なモノクローナル抗体を発生させるに必要な情報およびこの好適な適用に匹敵す
る治療学上の有用性を提供する。

好適な態様において、エピトープのアミノ酸は、（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における）ｈ
ＴＮＦαのアミノ酸１１−１３、３７−４２、４９−５７および１５５−１５７に関連し
ない。

細胞融合は、免疫学の分野における当業者に良く知られた標準的な手法によって達成さ
れる（Ｋｏｈｌｅｒ ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｎａｔｕｒｅ ２５６：４９５−４９７
（１９７５）およびＵ．Ｓ．特許第４，３７６，１１０号；Ｈａｒｔｌｏｗ，Ｅ．ｅｔ
ａｌ．，上掲書；Ｃａｍｐｂｅｌｌ，Ａ．，"Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｏｄｉｙ
Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，"Ｉｎ：Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ｉｎ Ｂｉ
ｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｖｏｌｕｍｅ １３
（Ｂｕｒｄｏｎ，ｒ．，ｅｔ ａｌ．，ｅｄｓ．），Ｅｌｓｅｖｉｅｒ，Ａｍｓｔｅｒｄ
ｏｍ（１９８４）；Ｋｅｎｎｅｔｔｅｔ ａｌ．，Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄ
ｉｅｓ（Ｋｅｎｅｔｔｅｔ ａｌ．ｅｄｓ．ｐｐ．３６５−３６７，Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｒｅ
ｓｓ，ＮＹ，１９８０）；ｄｅ Ｓｔ．Ｇｒｏｔｈ，Ｓ．Ｆ．，ｅｔ ａｌ．Ｊ．Ｉｍｍｕ
ｎｏｌ．Ｍｅｔｈ．３５：１−２１（１９８０）；Ｇａｌｆｒｅ，Ｇ．ｅｔ ａｌ，，Ｍ
ｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．７３：３−４６（１９８１）；Ｇｏｄｉｎｇ，Ｊ．Ｗ．
１９８７．Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ａｎｄ
Ｐｒａｃｔｉｃｅ．２ｎｄ ｅｄ．Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｌｏｎｄｏｎ，１９
８７）；

融合相手細胞系と、ハイブリドーマを選択しかつ融合し、およびｍＡｂｓをスクリーニ
ングするための方法とは、この技術分野において良く知られている（Ｈａｒｔｌｏｗ，Ｅ
．ｅｔ ａｌ．，上掲書；Ｋａｗａｍｏｔｏ，Ｔ．ｅｔ ａｌ，，Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏ
ｌ １２１：２６６−２７７（１９８６）；Ｋｅａｒｎｅｙ，Ｊ．Ｆ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．
Ｉｍｍｕｎｏｌ．１２３：１５４８−１５５０（１９７９）：Ｋｉｌｍａｒｔｉｎ，Ｊ．
Ｖ．ｅｔ ａｌ，，Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｂｏｌ．９３：５７６−５８２（１９８２）：Ｋｏｈｌ
ｅｒ，Ｇ．ｅｔ ａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．６：２９２−２９５（１９７６
）；Ｌａｎｅ，Ｄ．Ｐ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｕｅｌｌｅｒ，Ｕ．Ｗ．
ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈ．８７：１９３−１９６（１９８６）；Ｐ
ｏｎｔｅｃｏｒｖｏ，Ｄ．，Ｓｏｍａｔｉｃ Ｃｅｌｌ Ｇｅｎｅｔ．１：３９７−４００
（１９７５）；Ｓｈａｒｏ，Ｊ．，ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ，Ａｃａｄ．Ｓｃ
ｉ．ＵＳＡ ７６：１４２０−１４２４（１９７９）；Ｓｈｕｌｍａｎ，Ｍ．ｅｔ ａｌ．
，Ｎａｔｕｒｅ ２７６：２６９−２７０（１９７８）；Ｓｐｒｉｎｇｅｒ，Ｔ．Ａ．（
ｅｄ），Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ｉｎ ｔｈｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ
ｓ ａｎｄ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１９８５；
ａｎｄ Ｔａｇｇａｒｔ，Ｒ．Ｔ．ｅｔ ａｌ，，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２１９：１２２８−１
２３０（１９８２））。

本発明の、ｈＴＮＦαに特異的なネズミｍＡｂまたはヒトｍＡｂは、抗体を分泌するハ
イブリドーマまたはトランスフェクトーマ細胞をネズミの腹腔内に注射するか、適当な時
間の経過後に高力価のｍＡｂに達している腹水症液を収集し、それからｍＡｂを単離する
かによって、大量に生産されることができる。そのような、非ネズミハイブリドーマ（た
とえばラットまたはヒト）によるｍＡＢの生体内で（原文；ｉｎ ｖｉｖｏ）の産生のた
めに、ハイブリドーマ細胞が、照射されたマウスまたは胸腺欠損マウス中で好適に成長さ
れる。

また、抗体は、ハイブリドーマまたはトランスフェクトーマ細胞を生体外で（原文；ｉ
ｎ ｖｉｔｒｏ）培養し、そして選択されたｍＡｂをその細胞培地から単離することによ
って産生されることもできる。

本発明のモノクローナル抗体は、（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における）ＴＮＦの残基８７
−１０８または残基５９−８０と８７−１０８との両方の非隣接配列内に位置された非隣
接残基を含むエピトープを認識する。好適な抗ＴＮＦｍＡｂは、これらの一以上のペプチ
ド配列に結合する能力によってヒトＴＮＦαのそのリセプターへの結合を阻害するもので
ある。これらの抗体は、（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における）ＴＮＦの８７−１０８および
／または１１０−１２８を含む配列のエピトープに結合することによって、ＴＮＦの活性
を遮断する。そのような結合は、ここに述べられたように、ＴＮＦ活性を阻害するために
例証される。

本発明の抗体をスクリーニングするために使用されることのできる特別なペプチドは、
少なくとも残基８７−１０８または残基５９−８０と８７−１０８との両方のいずれかか
ら選択されたところのアミノ酸の組み合わせを含み、それらのアミノ酸は、本発明の抗Ｔ
ＮＦ抗体、そのフラグメントおよびその領域部分により結合されたＴＮＦのエピトープを
提供するために結合され、その結合は抗ＴＮＦ生物学的活性を提供する。そのようなエピ
トープは、少なくとも１〜５分子のアミノ酸および２２未満のアミノ酸を含むか、または
残基５９−８０および８７−１０８の各々のアミノ酸を含み、それらは少なくとも５分子
長のアミノ酸のエピトープを形成する。

抗ＴＮＦ活性抗体の組み換え体の発現
アミノ酸配列中に（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１における）ｈＴＮＦαの残基８７−１０８ま
たは残基５９−８０と８７−１０８との両方のいずれかが含まれたエピトープを結合しか
つＴＮＦを阻害するところの、組み換え体であるネズミ抗体、またはネズミ／ヒトキメラ
抗体もしくはヒト／ヒトキメラ抗体は、ここに提供された教示に基づく既知の手法を使用
する本発明に従って提供される。

本発明の抗ＴＮＦ抗体をコードするＤＮＡは、重鎖定常領域（Ｈ_c）、重鎖可変領域（
Ｈ_v）、軽鎖定常領域（Ｌ_c）および軽鎖可変領域（Ｌ_v）の内の少なくとも一種をコード
するところの、ゲノムＤＮＡまたはｃＤＮＡであっても良い。ネズミのＶ領域における抗
原結合セグメントをコードするＤＮＡ源としての染色体遺伝子フラグメントを使用するこ
との外に取り得ることは、キメラ免疫グロブリン遺伝子の構成のためのｃＤＮＡを使用す
ることであり、このことはＬｉｕｅｔ ａｌ．，（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃ
ｉ．，ＵＳＡ ８４：３４３９（１９８７）およびＪ．Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ １３９：３
５２１（１９８７）により報告されており、その内容は参照することによってここに完全
に組み込まれる。ｃＤＮＡを使用するには、所望のタンパクを合成するために宿主細胞に
好適な遺伝子発現要素が遺伝子と結合されることを、要する。ｃＤＮＡ配列の使用には、
適当なＲＮＡスプライシング系を欠いている細菌または他の宿主中でｃＤＮＡ配列が発現
されることができるという点で、（イントロンを含む）ゲノム配列を使用する以上に利点
がある。

本発明におけるネズミのキメラ抗体、フラグメントおよびそれらの領域部分の定常（Ｃ
）領域をコードするヒト遺伝子は、ヒト胎生肝の遺伝子ライブラリーから、既知の方法に
より得られることができる。Ｃ領域をコードするヒト遺伝子は、ヒト免疫グロブリンを発
現し産生するものを初めとするヒト細胞から得られることができる。ヒトＣ_H領域は、既
知のクラス、またはガンマ、μ、α、δまたはεを初めとするヒトＨ鎖のイソタイプおよ
びＧ１、Ｇ２、Ｇ３およびＧ４のようなヒトＨ鎖のサブタイプのいずれからも得られるこ
とができる。Ｈ鎖のイソタイプは抗体の種々のエフェクター機能に対して応答するので、
Ｃ_H領域の選択が、所望のエフェクター機能、たとえば補体結合または抗体依存性細胞障
害（ＡＤＣＣ）における活性によって案内される。好ましくは、Ｃ_H領域は、ガンマ１（
ＩｇＧ４）、ガンマ３（ＩｇＧ３）、ガンマ４（ＩｇＧ４）またはμ（ＩｇＭ）から得ら
れる。

ヒトＣ_L領域はヒトＬ鎖イソタイプ、カッパまたはガンマから得られる。

ヒト免疫グロブリンのＣ領域をコードする遺伝子は、標準的なクローニング技術によっ
てヒト細胞から得られることができる（Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｊ．ｅｔ ａｌ．，（Ｍｏｌ
ｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｎｄ Ｅｓｉ
ｔｉｏｎ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ
Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ（１９８９） ａｎｄ Ａｕｓｂｅｌ ｅｔ ａｌ，ｅｄｓ．Ｃｕｒｒｅ
ｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ（１９８７−１９９
１））。ヒトＣ領域遺伝子は、Ｌ鎖の二つのクラス、Ｈ鎖の五つのクラスおよびそれらの
サブクラスを表す既知のクローンから入手される。キメラ抗体フラグメントたとえばＦ（
ａｂ'）₂およびＦａｂは、適当に切り縮められたキメラＨ鎖遺伝子を設計することにより
得られることができる。たとえば、Ｆ（ａｂ'）フラグメントのＨ鎖部分をコードするキ
メラ遺伝子は、ＣＨ₁ドメインおよびＨ鎖のヒンジ部分をコードし、切り縮められた分子
を生成するための翻訳停止コドンを有するＤＮＡ配列を含む。

一般的には、本発明の、ネズミのまたはヒト／ネズミのキメラ抗体、フラグメントおよ
びその領域部分は、ネズミのまたはヒト／ネズミのキメラ免疫グロブリンをコードする遺
伝子を産生するために、ＴＮＦに特異的な抗体のＨ鎖およびＬ鎖における抗原結合領域を
コードするＤＮＡをクローニングすること、およびこれらのＤＮＡセグメントをＣ_H領域
およびＣ_L領域をそれぞれコードするＤＮＡに結合することによって産生される。

このように、好適な態様においては、結合（Ｊ）セグメントを備えた機能的に再編成さ
れたＶ領域のような非ヒト起源の抗原結合領域を少なくともコードし、かつ、ヒトＣ領域
の少なくとも一部をコードする第２ＤＮＡに結合された第１のＤＮＡセグメントからなる
融合キメラ遺伝子が創生される。

それ故に、抗体におけるＶ領域およびＣ領域をコードするｃＤＮＡならびに本発明にお
けるキメラ抗体を産生する方法は、以下の段階を含み、その概要が以下に説明される。
１． 抗ＴＮＦ抗体を産生する細胞系から、および重鎖定常領域と軽鎖定常領域とを与え
る任意選択の付加的な抗体から、メッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）を単離し、クローニ
ングし、ｃＤＮＡを産生すること。
２． Ｌ鎖遺伝子およびＨ鎖遺伝子における適当なＶ領域遺伝子および／またはＣ領域遺
伝子が、（ｉ）適当なプローブで同定され、（ｉｉ）順序良く配列され（原文：ｓｅｑｕ
ｅｎｃｅｄ）、および（ｉｉｉ）キメラ抗体のためにその他の抗体からＣ遺伝子セグメン
トまたはＶ遺伝子セグメントと一致させられる、そのような精製したｍＲＮＡから全長の
ｃＤＮＡライブラリーを合成すること。
３． 上述されたように、クローニングされた特定のＶ領域遺伝子セグメントを、クロー
ニングされたＣ領域遺伝子を結合することによって、完全なＨ鎖またはＣ鎖をコードする
遺伝子が形成されること。
４． ネズミ／ネズミ、ヒト／ネズミ、ヒト／ヒトまたはヒト／ネズミ抗体を産生するた
めの原核細胞および真核細胞を含む、選択された宿主中でＬ鎖およびＨ鎖の発現と産生と
が行われること。

全ての免疫グロブリンにおけるＨ鎖およびＬ鎖の遺伝子、およびそれらがコードするｍ
ＲＮＡにおける共通の特徴は、Ｊ領域である。Ｈ鎖およびＬ鎖におけるＪ領域は異なる配
列を有するが、高度の配列相同性が（８０％以上の割合で）各グループの間に、特にＣ領
域の近傍に、存在する。この相同性はこの方法で開発され、そして、Ｈ鎖およびＬ鎖にお
けるＪ領域の一致した配列が、Ｖ領域セグメントをヒトＣ領域セグメントにその後に結合
するためのＪ領域に有益な制限サイトを導入するためのプライマーとして使用するための
、オリゴヌクレヲチドを設計するのに使用される。

ヒト細胞から調製されたＣ領域のｃＤＮＡベクターが、サイトの指定された突然変異誘
発によって修飾されて、ヒト配列中の類似の位置に制限サイトを配置することができる。
たとえば、完全なヒトカッパ鎖Ｃ（Ｃ_k）領域および完全なヒトガンマー１Ｃ領域（Ｃ_gam
ma-1）がクローニングされることができる。この場合、Ｃ領域ベクター源としてのゲノム
Ｃ領域クローンを基礎にした別の方法では、介在配列を除去するのに必要な酵素が存在し
ないような細菌系でこれらの遺伝子が発現されられない。クローン化されたＶ領域セグメ
ントが切り出され、そして、ＬまたはＨ鎖Ｃ領域ベクターに連結される。また別に、ヒト
Ｃ_gamma-1領域が、Ｆａｂ分子Ｈ鎖部分をコードする遺伝子配列をそれによって発生する
停止コドンを導入することにより修飾される。結合されたＶ領域およびＣ領域を有するコ
ード配列が、原核または真核の適当な宿主中での発現のために、適当な発現ビークル中に
転移される。

もしもトリプレット読み枠の改変または中断なしに結合が翻訳可能な配列となっている
ならば、二種のコードＤＮＡ配列が「操作的に結合された」（原文：ｏｐｅｒａｂｌｙ
ｌｉｎｋｅｄ）と称される。もしも結合が、コード配列が発現するようにその遺伝子発現
要素の適当な機能を有するならば、ＤＮＡコード配列が、遺伝子発現要素に、操作的に結
合される。

発現ビークルは、プラスミドまたは他のベクターを含む。これらの中でも好ましいのは
、適当な付着末端を有するいかなるＶ_HまたはＶ_L鎖配列もその中に挿入されることができ
るように設計された適当な制限サイトを有する機能的に完全なヒトＣ_HまたはＣ_L鎖配列を
運ぶビークルである。ヒトＣ_HまたはＣ_L鎖配列含有ビークルは、どのような適当な宿主中
でどのような所望の完全なＨまたはＬ鎖の発現のための中間としても、働く。

キメラ抗体、たとえばネズミ／ヒトまたはヒト／ヒトキメラ抗体が、典型的には、形成
のために使用されたネズミのＨおよびＬ鎖Ｖ領域に備わっている染色体遺伝子プロモータ
により駆動される遺伝子から合成されることができ、その場合通常、スプライシングが、
ネズミのＪ領域中のスプライス供与サイトとヒトＣ領域に先立つスプライス受容サイトと
の間であり、ヒトＣ_H領域内で発生するスプライス領域で、発生し、ポリアデニル化およ
び転写停止がヒトコード領域の下流側にある生来の染色体サイトで起こる。

ｃＤＮＡ遺伝子の発現のために有益である遺伝子発現要素は、（ａ）ウィルス性転写プ
ロモータおよびそれらのエンハンサー要素、たとえばＳＶ４０初期プロモータ（Ｏｋａｙ
ａｍａ，Ｈ．ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．３：２８０（１９８３））、
ラウス肉腫ウィルスＬＴＲ（Ｇｏｒｍａｎ，Ｃ．ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａ
ｃａｄ．，ＵＳＡ ７９：６７７７（１９８２）、およびモロニーネズミ白血病ウィルス
ＬＴＲ（原文：Ｍｏｌｏｎｅｙ ｍｕｒｉｎｅ ｌｅｕｋｅｍｉａ ｖｉｒｕｓ ＬＴＲ）（
Ｇｒｏｓｓｃｈｅｄｌ，Ｒ．ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ ４１：８８５（１９８５））、（ｂ
）スプライス領域およびポリアデニル化サイト、たとえばＳＶ４０後期領域から得られた
もの（Ｏｋａｙａｍａｅｔ ａｌ．，上掲書）および（ｃ）ポリアデニル化サイト、たと
えばＳＶ４０中のそれ（Ｏｋａｙａｍａｅｔ ａｌ．，上掲書）を含む。

免疫グロブリンｃＤＮＡ遺伝子は、Ｌｉｕｅｔ ａｌ．，上掲書およびＷｅｉｄｌｅｅ
ｔ ａｌ．，Ｇｅｎｅ ５１：２１（１９８７）に記載されたように、発現要素として、Ｓ
Ｖ４０初期プロモーターおよびそのエンハンサー、ネズミ免疫グロブリンＨ鎖プロモータ
エンハンサー、ＳＶ４０後期領域ｍＲＮＡスプライシング（原文：ＳＶ４０ ｌａｔｅ ｒ
ｅｇｉｏｎ ｍＲＮＡ ｓｐｌｉｃｉｎｇ）、ウサギβグロブリン介在配列、免疫グロブリ
ンおよびウサギβグロブリンポリアデニル化サイト、ならびにＳＶ４０ポリアデニル化要
素を使用して、発現されることができる。部分ｃＤＮＡ、部分ゲノムｃＤＮＡ（Ｗｈｉｔ
ｔｌｅｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ １：４９９（１９８７）
）を有する免疫グロブリン遺伝子のために、転写プロモータはヒトサイトメガロウィルス
であり、プロモータエンハンサーはサイトメガロウィルスおよびネズミ／ヒト免疫グロブ
リンであり、また、ｍＲＮＡスプライシングおよびポリアデニル化サイトは将来の染色体
免疫グロブリン配列由来である。

一つの態様において、囓歯類細胞中のｃＤＮＡ遺伝子の発現のために、転写プロモータ
はウィルス性ＬＴＲ配列であり、転写プロモータエンハンサーはマウス免疫グロブリン重
鎖エンハンサーおよびウィルス性ＬＴＲエンハンサーのいずれかまたは両方であり、スプ
ライス領域は３１ｂｐ以上のイントロンを含有し、ならびに、ポリアデニル化領域および
転写終結領域は、合成される免疫グロブリン鎖に相当する生来の染色体配列に由来される
。他の態様においては、他のタンパクをコードするｃＤＮＡ配列は、哺乳類細胞中でタン
パクの発現を達成するために、上に引用された発現要素に結合される。

各融合遺伝子が発現ベクター中で組み立てられ、あるいはそれに挿入される。キメラ免
疫グロブリン鎖遺伝子産生物を発現することのできる宿主細胞が、キメラＨまたはＬ鎖コ
ード遺伝子で形質移入（トランスフェクション）され、あるいは、キメラＨ鎖遺伝子およ
びキメラＬ鎖遺伝子で同時形質移入される。トランスフェクトされた宿主細胞が、組み込
まれた遺伝子が発現するような条件下に培養され、発現した免疫グロブリン鎖または無傷
の抗体またはフラグメントが培地から回収される。

一つの態様において、キメラＨ鎖またはキメラＬ鎖をコードする、またはそれらのタン
パクをコードする融合遺伝子が、宿主細胞を同時形質移入するために使用される分離した
発現ベクター中で組み立てられる。

各ベクターは二種の選択可能な遺伝子を含有していても良く、第１の選択可能な遺伝子
は細菌系内での選択のために設計され、第２の選択可能な遺伝子は真核生物系内での選択
のために設計され、いずれのベクターも相違する一対の遺伝子を有する。この方法は、細
菌系内で融合遺伝子を産生し、それを増殖させるベクター内で行われる。細菌宿主内でそ
のように産生し増殖された遺伝子は、真核細胞を同時トランスフェクトし、所望のトラン
スフェクトされた遺伝子を有する同時トランスフェクトされた細胞の選択をするために引
き続き使用される。

細菌系内での使用のための選択可能な遺伝子の例として、アンピシリンに対する耐久性
を付与する遺伝子、およびクロラムフェニコールに対する耐久性を付与する遺伝子がある
。真核生物系形質移入体（原文：ｅｕｋａｒｙｏｔｉｃ ｔｒａｎｓｆｅｃｔａｎｔ）中
での使用のための好適な選択可能な遺伝子は、キサンチングアニンホスホリボシルトラン
スフェラーゼ遺伝子（省略名はｇｐｔ）およびＴｎ５由来のトランスフェラーゼ遺伝子（
省略名はｎｅｏ）を含む。ｇｐｔを発現する細胞の選択は、この遺伝子によってコードさ
れた酵素はプリンヌクレオチド合成のための基質としてキサンチンを使用するが類似の内
生の酵素はそうではないという事実に基づく。（１）イノシン酸（原文：ｉｎｏｓｉｎｅ
ｍｏｎｏｐｈｏｓｐｈａｔｅ）をキサンチン酸（原文：ｘａｎｔｈｉｎｅ ｍｏｎｏｐｈ
ｏｓｐｈａｔｅ）に変換するのを遮断するマイコフェノール酸（原文：ｍｙｃｏｐｈｅｎ
ｏｌｉｃ ａｃｉｄ）、および（２）キサンチンを含有する培地中で、ｇｐｔ遺伝子を発
現する細胞のみが生き残る。ｎｅｏの産生物は、構成物質Ｇ４１８およびネオマイシンク
ラスの他の構成物質により、タンパク合成の阻害を遮断する。

二種の選択手法が、二種の相違するＤＮＡベクターで真核生物細胞中に導入された免疫
グロブリン鎖遺伝子の発現を選択するために、同時にまたは連続的に使用されることがで
きる。真核生物細胞のために、相違する選択可能なマーカーを含むことは必要ではなく、
それぞれが選択可能なベクターを含有しているＨ鎖ベクターおよびＬ鎖ベクターが、同時
トランスフェクトされる。適正な耐久性を有する細胞を選択した後に、大多数のクローン
が、Ｈ鎖ベクターおよびＬ鎖ベクターの両方が一体となった複製を含んでいる。

また、キメラＨおよびＬ鎖をコードする融合遺伝子は、同じ発現ベクターで組み立てら
れることができる。

発現ベクターおよびキメラ抗体の産生のために、好適な宿主細胞系はミエローマ細胞で
ある。ミエローマ細胞は、トランスフェクトされた免疫グロブリン遺伝子によりコードさ
れた免疫グロブリンを合成し、組み立て、そして分泌することができ、免疫グロブリンの
グリコシル化のための機作を有する。特に好適な宿主細胞は、Ｉｇ非産生ミエローマ細胞
ＳＰ２／０（ＡＴＣＣ＃ＣＲＬ８２８７）である。ＳＰ２／０細胞は、トランスフェクト
された遺伝子によりコードされた免疫グロブリンのみを産生する。ミエローマ細胞は、培
地中またはマウスの腹腔中で成長することができ、そのような培地または腹腔中で、分泌
された免疫グロブリンが腹水液から得られることができる。他の適当な宿主細胞は、リン
パ球細胞たとえばヒトまたは非ヒト起源のＢリンパ球、ヒトまたは非ヒト起源のハイブリ
ドーマ細胞、または種間ヘテロハイブリドーマ細胞を含む。

本発明のキメラ抗体の構造を運ぶ発現ベクターは、トランスフォーメーション、トラン
スフェクション、接合、プロトプラスト融合、リン酸カルシウム沈澱法、およびジエチル
アミノエチル（ＤＥＡＥ）デキストランなどのポリカチオンの投与のような生物化学的手
段、ならびにエレクトロポレーション、ダイレクトマイクロインジェクションおよびマイ
クロプロジェクティルボンバードメント（原文；ｍｉｃｒｏｐｒｏｊｅｃｔｉｌｅ ｂｏ
ｍｂａｒｄｍｅｎｔ）（Ｊｏｈｎｓｏｎｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４０：１５３８
（１９８８））のような機械的手段等の種々の好適な方法によって、適当なホスト細胞に
導入される。リンパ系細胞にはエレクトロポレーションによってＤＮＡを導入するのが好
ましい（Ｐｏｔｔｅｒｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８
１：７１６１（１９８４）；Ｙｏｓｈｉｋａｗａ，Ｋ．ｅｔ ａｌ．，Ｊｐｎ．Ｊ．Ｃａ
ｎｃｅｒ Ｒｅｓ．７７：１１２２−１１３３）。この方法においては、組み込むＤＮＡ
の存在下に受容体細胞を電気パルスにさらす。一般的には、トランスフェクションの後に
、細胞を完全培地中で約２４時間回復させる。次いで、選択培地の存在下に９６穴カルチ
ャープレートに植え付ける。Ｇ４１８セレクションは、約０．４から０．８ｍｇ／ｍｌの
Ｇ４１８を用いて行われる。ミコフェノール酸セレクション（原文；ｍｙｃｏｐｈｅｎｏ
ｌｉｃ ａｃｉｄ ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ）は６μｇ／ｍｌのミコフェノール酸と約０．２５
ｍｇ／ｍｌのキサンチンとを使用する。エレクトロポレーション技術は、Ｓｐ２／０細胞
に対して約１０^-5から約１０^-4の割合でトランスフェクション頻度をもたらすと期待され
る。プロトプラスト融合法では、リゾチームは、キメラ抗体遺伝子を有する組み換えプラ
スミドを包含しているカタルから、細胞壁を除去する。結果として得られるスフェロプラ
ストは、ポリエチレングリコールでミエローマ細胞と融合される。

本発明の免疫グロブリン遺伝子は、哺乳動物の非リンパ系細胞中、酵母のような他の真
核細胞中、原核細胞中または特定のバクテリア中で、発現し得る。

免疫グロブリンのＨ鎖およびＬ鎖を製造するという点で、酵母はバクテリアよりかなり
有用である。酵母は、糖鎖形成を含む翻訳後のペプチド修飾を行う。今日では、強力なプ
ロモーター配列と、酵母中で所望の蛋白を生産するために用いることのできる高複製数の
プラスミドとを使用するＤＮＡ組換え方法が多数存在している。酵母は哺乳動物のクロー
ン遺伝子生産物のリーダー配列を認識し、リーダー配列を生じさせるペプチド（即ち、プ
レペプチド）を分泌する（Ｈｉｔｚｍａｎ，ｅｔ ａｌ．，１１ｔｈ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉ
ｏｎａｌ Ｃｏｎｆｅｒｅｎｃｅ ｏｎ Ｙｅａｓｔ， Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ａｎｄ Ｍｏｌｅ
ｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， Ｍｏｎｔｐｅｌｌｉｅｒ， Ｆｒａｎｃｅ， Ｓｅｐｔｅｍ
ｂｅｒ １３−１７，１９８２）。

酵母の遺伝子発現システムを用いると、キメラＨ鎖およびＬ鎖蛋白、ならびに組み込ま
れたマウスとのキメラ抗体、フラグメントおよび領域の製造、分泌および安定性の程度を
評価することができる。酵母がグルコースに富んだ培地で培養されたときに大量に生産さ
れる解糖酵素をコードする活性発現遺伝子から、プロモーターと終結要素とを組み込むと
いう遺伝子発現システムの酵母であれば、いかなるシリーズのものも使用することができ
る。公知の解糖遺伝子も非常に効率的な転写調節信号を与えることができる。例えば、ホ
スホグリセレートキナーゼ（ＰＧＫ）遺伝子のプロモーターおよびターミネーター信号を
利用することができる。酵母中でクローン免疫グロブリンｃＤＮＡを発現するのに最適な
発現プラスミドを評価するにあたっては数多くの取り組みがなされている（Ｇｌｏｖｅｒ
， Ｄ．Ｍ．， ｅｄ．，ＤＮＡ Ｃｌｏｎｉｎｇ， Ｖｏｌ． ＩＩ， ｐｐ４５−６６，
ＩＲＬ Ｐｒｅｓｓ， １９８５を見よ）。

細菌株も、本発明で記述する抗体分子または抗体フラグメントの製造のホストとして使
用することができる。Ｅ．ｃｏｌｉ Ｗ３１１０（ＡＴＣＣ ２７３２５）のようなＥ．ｃ
ｏｌｉ Ｋ１２株、サルモネラ ティフィ厶リウム（原文；Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ ｔｙｐ
ｈｉｍｕｒｉｕｍ）もしくはセラティア マルセシェンス（原文；Ｓｅｒｒａｔｉａ ｍａ
ｒｃｅｓｃｅｎｓ）のような他のエンテロバクテリア、および様々なシュードモナス（原
文；Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）種を用いることができる。

宿主細胞と適合性のある種から得られるレプリコンおよびコントロール配列を有するプ
ラスミドベクターは、これらの細菌性宿主と関連して使用することができる。該ベクター
は、トランスフォームされた細胞中で表現型の選択を提供することのできる特定の遺伝子
は勿論のこと、複製部位も運ぶことができる。マウスとのキメラ抗体、フラグメントおよ
び領域の産生、または細菌中でクローンされた免疫グロブリンｃＤＮＡによってコードさ
れた抗体鎖の産生に関して、発現プラスミドを評価する数多くの試みがなされている（Ｇ
ｌｏｖｅｒ， Ｄ．Ｍ．， ｅｄ．，ＤＮＡ Ｃｌｏｎｉｎｇ， Ｖｏｌ． Ｉ， ＩＲＬ Ｐ
ｒｅｓｓ， １９８５を見よ）。

好ましい宿主は、生体内で（原文；ｉｎ ｖｉｔｒｏ）もしくは生体外で（原文；ｉｎ
ｖｉｖｏ）で成長した哺乳動物の細胞である。哺乳動物の細胞は、免疫グロブリン蛋白分
子に対して、翻訳後に、リーダーペプチドの除去、Ｈ鎖およびＬ鎖の折り畳みと組立、抗
体分子の糖鎖形成および機能性抗体蛋白の分泌等の修飾を行う。

上記のリンパ球系起源の細胞に加えて、抗体蛋白を製造するための宿主として有用な哺
乳動物の細胞は、ベロ（原文；Ｖｅｒｏ）（ＡＴＣＣ ＣＲＬ ８１）またはＣＨＯ−Ｋ１
（ＡＴＣＣ ＣＲＬ ６１）のような繊維芽細胞起源の細胞を含む。

哺乳動物の細胞では、クローンされたＨおよびＬ鎖の発現に多くのベクター系を使用す
ることができる（Ｇｌｏｖｅｒ， Ｄ．Ｍ．， ｅｄ．，ＤＮＡ Ｃｌｏｎｉｎｇ， Ｖｏｌ
． ＩＩ， ｐｐ１４３−２３８， ＩＲＬ Ｐｒｅｓｓ， １９８５を見よ）。引き続いて
異なる方法を行うことにより、完全なＨ₂Ｌ₂抗体を得ることができる。上で議論したよう
に、同じ細胞内で、Ｈ鎖とＬ鎖とを共発現させて、Ｈ鎖とＬ鎖との細胞内会合および結合
から完全な四量体のＨ₂Ｌ₂抗体を達成することができる。該共発現は、同じ宿主内で、同
じもしくは異なるプラスミドを使用することによって起こすことができる。Ｈ鎖とＬ鎖と
の両方の遺伝子は同じプラスミドに入れることができ、次いで該プラスミドを細胞にトラ
ンスフェクトし、それによって、両鎖を発現する細胞を直接的に選択する。他の方法とし
ては、片方の鎖、例えばＬ鎖をコードしたプラスミドで細胞を最初にトランスフェクトし
、次いで、得られた細胞系を第２の選択可能なマーカーを有するＨ鎖プラスミドでトラン
スフェクトする。いずれかの方法によってＨ₂Ｌ₂分子を製造する細胞系は、さらに他の選
択マーカーと接続したＨ鎖、Ｌ鎖およびＨプラスＬ鎖の複製をコードするプラスミドでト
ランスフェクトされて、組み立てられたＨ₂Ｌ₂抗体分子の生産が高度化する、もしくはト
ランスフェクトされた細胞系の安定性が増すなどの、優れた特性を有する細胞系を産生す
る。

モノクローナルまたはキメラ抗ＴＮＦ抗体に加えて、本発明は、本願の抗ＴＮＦ抗体に
特異的な抗イディオタイプ（以下、「抗Ｉｄ」と略すことがある）抗体にも関するもので
ある。一般に、抗Ｉｄ抗体は、他の抗体の抗原結合領域に関連する特有の決定基を認識す
る抗体である。ＴＮＦに特有の抗体が、イディオタイプあるいはＩｄ抗体と名付けられる
。抗Ｉｄは、同種および遺伝子型が同じである（例えば、マウス菌株）動物をＩｄ抗体源
とし、該動物をＩｄ抗体もしくはその抗原結合領域で免疫感作することによって調製する
ことができる。免疫感作された動物は、その動物を免疫感作した抗体のイディオタイプ決
定基を認識して反応し、抗Ｉｄ抗体を製造する。該抗Ｉｄ抗体はさらに他の動物に免疫反
応を起こさせ、抗−抗Ｉｄ抗体を製造させる「免疫原」としても用いることができる。抗
−抗Ｉｄは、その抗原決定基が前記抗Ｉｄを誘起した元々の抗体と全く同じである可能性
がある。このようにｍＡｂのイディオタイプ決定基への抗体を用いることによって、特異
性が全く同じである抗体を発現する他のクローンを同定することが可能である。

したがって、本発明のＴＮＦに抗して生成したｍＡｂｓは、ＢＡＬＢ／ｃマウスのよう
な適切な動物内において、抗Ｉｄ抗体を誘起するのに用いることができる。免疫感作され
たＢＡＬＢ／ｃ等のマウスから取り出した脾臟細胞は、抗ＩｄｍＡｂを分泌する抗Ｉｄハ
イブリドーマを製造するのに使用することができる。さらに、得られた抗ＩｄｍＡｂをキ
ーホールリンペットヘモシアニン（ＫＬＨ）のようなキャリアと結び付けることもできる
し、さらに他のＢＡＬＢ／ｃマウスを免疫感作するのに用いることもできる。これらのマ
ウスから取り出した血清は、あるＴＮＦエピトープに特異的な元のｍＡｂの結合特性を有
する抗−抗Ｉｄ抗体を含んでいるであろう。

本発明の抗体、フラグメントおよび誘導体は、抗ＴＮＦ抗体、特にＴＮＦと反応する物
質が正常で健康な人に存するレベルを越える量で存在することに関連する疾患あるいは状
態を有する患者の治療に有益である。上記の疾患としては、悪液質、循環虚脱および急性
あるいは慢性の細菌感染に起因するショックを含む敗血症候群；細菌性、ヴィールス性お
よび菌性の急性および慢性の寄生虫もしくは感染性の経過（原文；ｐｒｏｃｅｓｓｅｓ）
；全身系の紅斑性狼そうおよびリウマチ様関節炎のような急性および慢性の免疫および自
己免疫疾患；アルコール誘導肝炎；サイコイドーシスおよびクローン病のような慢性炎症
性疾患；播種性血管内凝固症のよな血管炎症性疾患；移植片対宿主病；川崎病；およびＴ
ＮＦ−分泌性腫瘍に関わる悪性病等を挙げることができるが、これらには限定されない。

前記治療は、抗体、フラグメントおよび誘導体の一回分または複数回分を非経口的に投
与することからなる。人体用の薬剤に使用するものとして好適であるものは、本発明の、
高度の親和性があるｈＴＮＦα−阻害型および／または中和型のマウスとのキメラの抗体
、フラグメントおよび領域である。

モノクローナル抗体は、哺乳動物の体内の薬剤が作用すべき位置に効力のある薬剤が届
くような方法であれば、いかなる方法で投与されてもよい。本発明の抗体の場合は、モノ
サイトとマクロファージとから放出されるＴＮＦに到達して該ＴＮＦと結合することがで
きるということが重要である。蛋白は、経口で投与されると消化されやすいので、静脈注
射、皮下注射および筋肉注射などの非経口投与が、通常、吸収を最大限にするために用い
られる。

モノクローナル抗体は個別の治療薬剤として投与されてもよいし、他の薬剤と組み合わ
せて投与されてもよい。モノクローナル抗体は単独で投与することもできるが、通常は、
投与のルートと標準的な薬剤投与のプラクティスとに基づいて選択された薬学的キャリア
と共に投与される。

言うまでもなく、投与量は、この薬剤の薬力学的性質、投与の型およびルート；患者の
年齢、健康状態および体重；ならびに、症状の性質と程度、同時に行う処置の種類、処置
の頻度および望まれる効果などの公知の因子に応じて変化することになる。一般的には、
有効成分の一日の投与量は、体重１キログラ厶当たり約０．１から１００ミリグラムであ
る。一日に体重１キログラムに対して、通常、０．５から５０ミリグラム、好ましくは１
から１０ミリグラムを、１回から６回に分け、あるいは持続的放出の形態で投与すると、
望ましい結果を得るのに効果的である。

体内投与に適した投薬剤（投与組成物）は、一般的に、単位当たり約１ミリグラムから
約５００ミリグラムの有効成分を含有するものである。これら薬剤組成物においては、有
効成分は、通常、組成物の全重量に対して０．５〜９５重量％の量で存在することになる
。

非経口投与用に、前記抗体は、薬剤として適用し得る非経口ビヒクルと共に、溶液、懸
濁液、エマルジョンあるいは凍結乾燥粉末として製剤することができる。前記ビヒクルの
例としては、水、生理食塩水、リンゲル液、デキストローゼ溶液および５％のヒトの血清
アルブミンを挙げることができる。リポソームや固定オイルのような非水性ビヒクルも使
用することができる。ビヒクルあるいは凍結乾燥粉末は等張性（例えば、塩化ナトリウム
、マンニトール）および化学的安定性（例えば、緩衝液および防腐剤）を維持するための
添加剤を含んでもよい。得られた製剤を通常使用されている方法によって滅菌する。

好適な薬剤キャリアは、この分野において標準的な参照文献であるＡ． Ｏｓｏｌ著の
「レミントンズ ファーマスーティカル サイエンス（原文；Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ'ｓ Ｐｈ
ａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ， Ａ．Ｏｓｏｌ）」の最新版に記載されて
いる。

例えば、注射による投与に好適なある非経口組成物は、０．９％の塩化ナトリウム溶液
に１．５重量％の有効成分を溶解して調製する。

本発明の抗体は、表面にＴＮＦが結合した細胞に対する抗体依存性細胞障害作用（ＡＤ
ＣＣ）および／または補体依存性細胞障害作用（ＣＤＣ）を媒介する（ｍｅｄｉａｔｅ）
作用を有するので、効力ある治療薬として好適である。上記作用には、エフェクター細胞
の内性源（原文；ｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓ ｓｏｕｒｃｅ）または外性源（原文；ｅｘｏｇ
ｅｎｏｕｓ ｓｏｕｒｃｅ）のいずれか（ＡＤＣＣに対する）、あるいは、補体成分（Ｃ
ＤＣに対して）を利用することができる。本発明のマウスとのキメラ抗体、フラグメント
および領域、それらのフラグメントおよび誘導体は、免疫接合体として治療に用いること
ができる（Ｄｉｌｍａｎ， Ｒ．Ｏ．，Ａｎｎ． Ｉｎｔ． Ｍｅｄ．１１１：５９２−６
０３（１９８９）を参照）。本発明のマウスとのキメラ抗体、フラグメントおよび領域、
それらのフラグメントおよび誘導体は、リチン−Ａ、シュードモナストキシン、ジフテリ
アトキシンおよびＴＮＦ等の（限定はされない）細胞毒蛋白と結び付けることができる。
抗体または他の配位子に接合した毒は、この分野では公知である（例えば、Ｏｌｓｎｅｓ
， Ｓ．ｅｔ ａｌ．，Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｔｏｄａｙ １０：２９１−２９５（１９８９）
を参照）。植物および細菌の毒は、一般に、蛋白合成機構を破壊するものである。

本発明の抗体は、放射性核種、細胞毒性剤および薬剤を含む（限定はされない）その他
の型の治療薬と接合させることができる。抗体と結合することができ、生体外での抗原の
位置に送ることのできる放射性核種の例としては、²¹²Ｂｉ、¹³¹Ｉ、¹⁸⁶Ｒｅおよび⁹⁰Ｙ
を挙げることができるが、これらは完全に研究されたものではない。放射線治療の技術分
野で知られていることであるが、放射性核種は細胞に局部的に細胞毒の照射を行い様々な
細胞内外傷をもたらすことによって、細胞毒性効果を作用させる。

抗体と接合して、次いで生体外でで治療に用いることのできる薬剤としては、ダウノル
ビシン（原文；ｄａｕｎｏｒｕｂｉｃｉｎ）、ドクソルビシン（原文；ｄｏｘｏｒｕｂｉ
ｃｉｎ）、メトトレキセート（原文；ｍｅｔｈｏｔｒｅｘａｔｅ）およびマイトマイシン
Ｃ（原文；Ｍｉｔｏｍｙｃｉｎ Ｃ）を挙げることができるが、これらに限定されるもの
ではない。細胞毒性薬剤は、ＤＮＡ、ＲＮＡおよび蛋白の合成を含む細胞の重要なプロセ
スを阻害する。この分野で知られているこのクラスの薬剤のより完全な説明と作用のメカ
ニズムとに関しては、Ｇｏｏｄｍａｎ， Ａ．Ｇ．，ｅｔ ａｌ．，Ｇｏｏｄｍａｎ ａｎ
ｄ Ｇｉｌｍａｎ'ｓ ＴＨＥ ＰＨＡＲＭＡＣＯＬＯＧＩＮＡＬ ＢＡＳＩＳ ＯＦ ＴＨＥ
ＲＡＰＥＵＴＩＣＳ， ７ｔｈ Ｅｄ．， Ｍａｃｍｉｌｌａｎ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃ
ｏ．， １９８５を参照。

本発明の抗体は、他のモノクローナルまたはマウスとのキメラ抗体、フラグメントおよ
び領域、または、リンフォカインまたは造血成長因子などと結び付けると、効果的に使用
することができる。このように結び付けることにより、抗体と相互作用するエフェクター
細胞の活性または数を増加させることができる。

本発明の抗体、フラグメントまたは誘導体は、ＴＮＦの好ましくない副作用を妨げるた
めに、ＴＮＦによる治療と組み合わせて使用してもよい。癌治療の最近のアプローチは、
癌患者へのＴＮＦの直接投与、または癌患者へのリンフォカイン活性化キラー細胞（ＬＡ
Ｋ）（Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇｅｔ ａｌ．，Ｎｅｗ Ｅｎｇ．Ｊ．Ｍｅｄ．３１３：１４８５
−１４９２（１９８５））もしくは腫瘍浸潤リンフォサイト（ＴＩＬ）（Ｋｕｒｎｉｃｋ
ｅｔ ａｌ．（Ｃｌｉｎ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｉｍｍｕｎｏｐａｔｈ．３８：３６７−３
８０（１９８６）； Ｋｒａｄｉｎｅｔ ａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｉｍｍ
ｕｎｏｔｈｅｒ．２４：７６−８５（１９８７）； Ｋｒａｄｉｎｅｔ ａｌ．，Ｔｒａｎ
ｓｐｌａｎｔ． Ｐｒｏｃ．２０：３３６−３３８（１９８８））による免疫治療等であ
る。現在、修飾されたＬＡＫ細胞もしくはＴＮＦ遺伝子でトランスフェクトされて多量の
ＴＮＦを産するようになったＴＩＬを使用した実験が進行中である。このような治療法は
、ＴＮＦの上記の多面的な作用によって引き起こされる数多くの望ましくない副作用を伴
いがちである。本発明によると、ＴＮＦを受容するものあるいは多量のＴＩＬを製造する
細胞を、本発明の抗体、フラグメントもしくは誘導体で同時に処理することにより、この
ような副作用を低下させることができる。効果的な投与量は上で述べた通りである。ＴＮ
Ｆの主要な抗腫瘍効果を損ねることなく副作用をブロックするためには、投与されるＴＮ
ＦやＴＮＦを産する細胞の投与量に応じて投与量レベルを調整する必要がある。当業者で
あれば不要な実験をすることなく、そのような投与量を決定する方法を知っている。

固体の担体に付着した本発明のマウスとのキメラ抗体、フラグメントおよび領域、また
はそれらのフラグメントまたは誘導体は、液体または組織抽出物もしくは細胞抽出物から
ＴＮＦを取り除くのに用いることができる。好ましい態様では、上記のものは血液あるい
は血漿生成物からＴＮＦを除去するのに用いられる。他の好ましい態様では、マウスとの
キメラ抗体、フラグメントおよび領域は、体外の免疫吸着装置で有効に利用される。この
ことは当該技術分野では知られていることである（例えば、Ｓｅｍｉｎａｒｓ ｉｎ Ｈｅ
ｍａｔｏｌｏｇｙ， Ｖｏｌ． ２６（２ Ｓｕｐｐｌ． １）（１９８９）を参照）。患者
の血液あるいは他の被験者の液体を抗体の付着した担体に曝すと、循環するＴＮＦ（遊離
であるかもしくは免疫複合体中にある）は部分的あるいは完全に除去され、次いで、ＴＮ
Ｆを除去された液体は体内に戻される。この免疫吸収は、細胞の遠心分離ステップを伴っ
てあるいは伴わないで、持続流方式で実施することができる。例えば、Ｔｅｒｍａｎ，
Ｄ．Ｓ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．１１７：１９７１−１９７５（１９７６）
を参照。

本発明は、以下に述べるように、検出用に標識された上記抗体、フラグメントおよび誘
導体をも提供する。これらはＴＮＦαが介在する病気であることがわかっている、あるい
は、疑われている患者のＴＮＦαを検出する診断方法に使用することができる。

本発明の抗体は、試料中のＴＮＦもしくは抗ＴＮＦ抗体を検出あるいは定量する免疫検
定に有効である。ＴＮＦの免疫検定は、一般に、選択的にＴＮＦに結合することのできる
検出用に標識された本発明の高親和性抗体の存在下で生物試料を保温し、試料に結びつい
た標識された抗体を検出することからなる。様々な臨床的免疫検定の手続はＩｍｍｕｎｏ
ａｓｓａｙｓ ｆｏｒ ｔｈｅ ８０' ｓ， Ａ． Ｖｏｌｌｅｒ ｅｔ ａｌ．， ｅｄｓ．，
ＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙＰａｒｋ， １９８１に記載されている。

したがって、本発明のこの面においては、細胞、細胞粒子または可溶蛋白を固定し得る
ニトロセルロースまたは他の固体担体に、抗体もしくは生物試料を添加する。該担体は適
当な緩衝液で洗浄され、次いで、検出用に標識されたＴＮＦに特異的な抗体で処理される
。結合していない抗体を除去するために、固相担体は緩衝液で二度目の洗浄を受ける。前
記固体担体に結合した標識の量は従来の手段で検出される。

「固相担体」あるいは「キャリア」という言葉は、抗原あるいは抗体を結合し得るあら
ゆる担体を示すものである。よく知られている担体は、ガラス、ポリスチレン、ポリプロ
ピレン、ポリエチレン、デキストラン、ナイロン、アミラーゼ、天然および変性セルロー
ス、ポリアクリルアミド、アガロースおよび磁鉄鉱を含む。本発明の目的を考慮すると、
キャリアの性質はある程度可溶か不溶性のものである。結合した分子がＴＮＦあるいは抗
ＴＮＦ抗体に結合し得る限り、担体材料は実質的にあらゆる実在する構造的形状を有する
ものであってよい。したがって、担体の形状は、ビーズのような球形、試験管の内面ある
いは棒の外面のような円筒状のものであってもよい。あるいは、その表面がシートやテス
トストリップ等のような平面状でもよい。好ましい担体はポリスチレンビーズを含む。当
業者であれば、抗体もしくは抗原を結合させるのに適当な他の多くのキャリアを知ってい
るか、または、ルーチン試験によって抗体もしくは抗原を結合させるのに適当な他の多く
のキャリアを確認することができる。

抗ＴＮＦ抗体の任意のロットの結合活性は、公知の方法に従って決定することができる
。当業者はルーチン試験によって有効で最適な分析条件を各分析について決定することが
できる。

ＴＮＦ特異性抗体を検出用に標識することのできる方法の１つは、該抗体を酵素に結合
させることによるものであり、酵素免疫分析（ＥＩＡ）もしくは酵素結合免疫吸収分析（
ＥＬＩＳＡ）で用いられているものである。引き続いて該酵素をその基質に曝すと、該酵
素は基質と反応して、例えば、分光光度分析的手段、蛍光光度分析的手段もしくは視覚的
手段によって検出することのできる化学的部分を発生する。本発明のＴＮＦに特異的な抗
体を検出用に標識するのに使用することのできる酵素は、リンゴ酸脱水素酵素、ブドウ球
菌ヌクレアーゼ、δ−５−ステロイド異性化酵素、アルコール酵母脱水素酵素、ａ−グリ
セリンリン酸脱水素酵素、リン酸トリオース異性化酵素、ホースラディッシュペルオキシ
ダーゼ、アルカリ性ホスファターゼ、アスパラギナーゼ、グルコースオキシダーゼ、β−
ガラクトシダーゼ、ＲＮＡ分解酵素、ウレアーゼ、カタラーゼ、グルコース６−ホスファ
ーゼ脱水素酵素、グルコアミラーゼおよびアセチルコリンエステラーゼ等であるが、これ
らに限定されない。

ＴＮＦ特異性抗体を放射能を用いて標識することにより、放射性同位元素標識免疫測定
（ＲＩＡ）の使用を通じてＴＮＦを検出することができる（例えば、Ｗｏｒｋ， Ｔ．Ｓ
．，ｅｔ ａｌ．，Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ａｎｄ Ｂｉｏｃｈｅｍ
ｉｓｔｒｙ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， Ｎｏｒｔｈ Ｈｏｌｌａｎｄ Ｐ
ｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ， Ｎ．Ｙ．（１９７８）を参照）。放射性同位体は
、ガンマカウンターもしくはシンチレーション計数計を使用する手段によって、またはオ
ートラジオグラフ法によって検出することができる。本願の目的に特に有用なアイソトー
プは³Ｈ、¹²⁵Ｉ、¹³¹Ｉ、³⁵Ｓおよび¹⁴Ｃであり、好ましくは¹²⁵Ｉである。

蛍光化合物でＴＮＦ特異性抗体に標識を付けることも可能である。蛍光性の標識が付い
た抗体が適当な波長の光に曝されると、その存在を蛍光によって検出することができる。
最も一般的に使用される蛍光性ラベリング化合物には、フルオレセインイソチオシアネー
ト、ローダミン、藻紅素、藻青紫、アロフィコシアニン（原文；ａｌｌｏｐｈｙｃｏｃｙ
ａｎｉｎ）、ｏ−フタルデヒド（原文；ｏ−ｐｈｔｈａｌｄｅｈｙｄｅ）およびフルオレ
スカミン（原文；ｆｌｕｏｒｅｓｃａｍｉｎｅ）がある。

前記ＴＮＦ特異性抗体は、¹⁵²Ｅｕや他のランタニド元素のような蛍光発光金属を用い
て検出可能に標識を付けることもできる。これらの金属はジエチレントリアミンペンタ酢
酸（ＤＰＴＡ）もしくはエチレンジアミン−テトラ酢酸（ＥＤＴＡ）などの金属をキレー
ト化する化合物を用いてＴＮＦ特異性抗体に付着させることができる。

ＴＮＦ特異性抗体は、化学発光をする化合物に結合させることによって、検出可能に標
識することもできる。化学発光によって標識された抗体の存在は、化学反応の間に生じる
発光の存在を検出することにより決定される。特に有用な化学発光ラベリング化合物の例
は、ルミノール、イソルミノール、テロマティックアクリディニウムエステル（原文；ｔ
ｈｅｒｏｍａｔｉｃ ａｃｒｉｄｉｎｉｕｍ ｅｓｔｅｒ）、イミダゾール、アクリディニ
ウム塩およびオキサレートエステルである。

同様に、生物発光化合物も本発明のＴＮＦ特異性抗体、フラグメントおよび誘導体に標
識を付けるのに使用することができる。生物発光は、触媒蛋白が化学発光反応の効率を増
加させる生物系で発見された化学発光の一種である。生物発光蛋白の存在は発光の存在を
検出することによって決定される。標識を付けるという目的に対して重要な生物発光化合
物は、ルシフェリン、ルシフェラーゼおよびエクオリンである。

ＴＮＦ特異性抗体、フラグメントまたは誘導体の検出は、例えば検出可能な標識がγ線
放射体である場合はシンチレーション計数計が、例えば標識が蛍光性のものである場合は
蛍光光度計が必要である。酵素標識の場合は、検出には、該酵素用の基質を使用する比色
法が必要である。比色法による検出では、同様に調製された基準と比較して基質の酵素反
応の程度を視覚的に比較ことも必要である。

本発明の目的に対しては、上記分析で検出されたＴＮＦが生物試料中に存在しても良い
。試料としては、ＴＮＦを含有するあらゆるものを使用することができる。好ましくは、
試料は、例えば血液、血清、リンパ、尿、炎症性滲出液、髄液、羊水、組織の抽出物もし
くはホモジェネートなどの生物液体である。しかしながら、本発明はこれらの試料のみを
使用した分析に限定されない。当業者には他の試料を使用するのに適した条件を定めるこ
とができる。

生体内原位置の検査は、患者から組織標本を切除し、その標本に本発明の標識の付いた
抗体を結合させることによってなされる。本発明においては、標識の付いた抗体（もしく
はフラグメント）を生物試料に塗布またはかぶせるのが好ましい。そのようにすることで
、ＴＮＦの存在だけではなく、被検組織中のＴＮＦの分布も決定することができる。本発
明を利用して、多岐に渡る組織学的方法（染色法などの）のいかなるものも上記生体内原
位置の検査を行うのに適宜変更し得ることを、当業者は理解するであろう。

本発明の抗体、フラグメントもしくは誘導体は、「ツーサイト（原文；ｔｗｏ−ｓｉｔ
ｅ）」または「サンドウイッチ（原文；ｓａｎｄｗｉｃｈ）」分析としても知られている
免疫測定分析において利用することができる。典型的な免疫測定分析においては、多量の
標識されていない抗体（あるいは抗体のフラグメント）は被検液体に不溶の固体担体に結
合しており、検出用に標識されている一定量の可溶抗体が固相の抗体、抗原および標識さ
れた抗体で形成された三元複合体の検出および／または定量をすべく添加される。

一般的で好ましい免疫測定分析の１つとして、固相と抗体ＴＮＦとの二元複合体の形成
による試料からＴＮＦを抽出するために、前記固相に結合している抗体を最初に被検試料
に接触させる「フォワード（原文；ｆｏｒｗａｒｄ）」分析を挙げることができる。該分
析においては、適当な時間保温した後に、固体担体は、もし存在すれば未反応ＴＮＦを含
有する液体試料の残さを除去するために洗浄され、次いで、公知の量の標識された抗体（
「レポーター分子」として機能する）を含有する溶液と接触させられる。標識されていな
い抗体を通して固体担体に結合しているＴＮＦと標識された抗体との複合体を形成するた
めの２度目の保温を経て、未反応の標識された抗体を除去するために、固体担体は２度目
の洗浄を受ける。このタイプの「フォワードサンドウイッチ（原文；ｆｏｒｗａｒｄ ｓ
ａｎｄｗｉｃｈ）」は、ＴＮＦが存在するかどうかを決定する単純な「イエス／ノー」分
析か、予めわかっている量のＴＮＦを含有している標準試料について得られた測定値と標
識された抗体の測定値とを比較することによって定量的になされるものである。このよう
な「ツーサイト（原文；ｔｗｏ−ｓｉｔｅ）」または「サンドウイッチ（原文；ｓａｎｄ
ｗｉｃｈ）」分析については、Ｗｉｄｅが論文を書いている（Ｒａｄｉｏｉｍｍｕｎｅ
Ａｓｓａｙ Ｍｅｔｈｏｄ， Ｋｉｒｋｈａｍ， ｅｄ．， Ｅ． ＆ Ｓ． Ｌｉｖｉｎｇｓ
ｔｏｎｅ， Ｅｄｉｎｂｕｒｇｈ， １９７０， ｐｐ． １９９−２０６）。

他のタイプの「サンドウイッチ（原文；ｓａｎｄｗｉｃｈ）」分析であって、やはりＴ
ＮＦに関して有用であるものは、いわゆる「同時（原文；ｓｉｍｕｌｔａｎｅｏｕｓ）」
分析と「リバース（原文；ｒｅｖｅｒｓｅ）」分析である。同時分析は保温ステップが１
段であり、そのステップでは、固体担体に結合した抗体と標識が付いた抗体との両方を同
時に被検試料に添加する。保温が終了すると、固体担体は液体試料の残渣と複合体を形成
していない標識の付いた抗体とを除去するために洗浄される。固体担体と結合した標識の
付いた抗体の存在は、従来の「フォワード」サンドウイッチ（原文；"ｆｏｒｗａｒｄ"
ｓａｎｄｗｉｃｈ）分析と同様にして決定される。

「リバース（原文：ｒｅｖｅｒｓｅ）」分析においては、最初に標識の付いた抗体の溶
液を流体試料に段階的に添加し、次いで、適当な保温時間を経た後に、固体担体に結合し
た標識の付いていない抗体を添加する、という方法が使用される。２度目の保温の後に、
被検試料の残渣と未反応の標識が付いた溶液とを除去するために従来法で固相を洗浄する
。固体担体に結合した標識の付いた抗体の測定は「同時（原文；ｓｉｍｕｌｔａｎｅｏｕ
ｓ）」分析および［フォワード（原文；ｆｏｒｗａｒｄ）」分析と同様に行う。一態様と
して、個々のエピトープに特異的な本発明の抗体を組み合わせによって、感度の良い３サ
イト（原文；ｔｈｒｅｅ−ｓｉｔｅ）免疫放射測定分析を構成することができる。

今まで一般的に発明を記述してきたが、説明の為のみに本願に含まれ、そうでない旨の
記載がない限り本発明を限定することのない具体的な実施例を参照することによって、本
発明はさらに理解されるであろう。

実施例Ｉ
マウス抗ヒトＴＮＦモノクローナル抗体の生産
ＴＮＦモノクローナル抗体の臨床研究を容易にするために、Ａ２と呼ばれる、阻害およ
び／または中和能のある高親和性のマウス抗ヒトＴＮＦ免疫グロブリンＧ１モノクローナ
ル抗体が生産された。１０週齢のＢＡＬＢ／ｃ雌マウスは、ジャクソン・ラボラトリー社
（バー・ハーバー）から得られた。０．４ｍｌ中に完全フロイント・アジュバント（ディ
フコ・ラボラトリーズ社から得られた）の４０μｇと共に乳剤化される、精製されたＥ．
Ｃｏｌｉ由来組換えヒトＴＮＦの４０μｇが、マウスの皮下および腹腔（以下、ｉ．ｐ．
と称することがある。）に注射された。一週間後、アジュバントを含まないＴＮＦの１０
μｇが連続４回腹腔に注射された後、不完全フロイント・アジュバント中に含まれるｒｈ
ＴＮＦの５μｇが腹腔に注射された。最後の注射から８週間後、マウスは、ＴＮＦの１０
μｇで腹腔に追加免疫された。

４日後、マウスは犠牲にされ、その脾臓が得られ、脾細胞の懸濁液が調製された。脾細
胞は、３０％ポリエチレングリコール、ＰＥＧ１４５０の０．３ｍｌ中で、非分泌性ハイ
ブリドーマの細胞であるＳｐ２／０（ＡＴＣＣ ＣＲＬ１５８１）と、脾細胞とＳｐ２／
０との比が４：１で融合された。３７℃で６時間の培養後、融合細胞は、２×１０⁴個の
Ｓｐ２／０細胞／ウエルの濃度で、９６穴プレート中に０．２ｍｌのアリクオットに配分
された。５×１０⁴個の正常ＢＡＬＢ／ｃ脾細胞が、各ウエルに添加された。

使用される増殖培地は、熱不活性化された１０％の子ウシ血清（ヒクローン（Ｈｙｃｌ
ｏｎｅ）社）、０．１ｍＭのＭＥＭ非必須アミノ酸、１ｍＭのピルビン酸ナトリウム、２
ｍＭのＬ−グルタミン、１００Ｕ／ｍｌのペニシリン、１００μｇ／ｍｌのストレプトマ
イシン（ギブコ・ラボラトリーズ社）、および選択のためのヒポキサンチン−アミノプテ
リン−チミジン（以下、ＨＡＴと称することがある。）（ベーリンガー・マンハイム社）
を含有するＲＰＭ１−１６４０培地からなる。

固相ラジオイムノアッセイ（以下、ＲＩＡと称することがある。）は、ｒｈＴＮＦαに
特異的なモノクローナル抗体の存在する上清をスクリーニングするのに用いられた。この
アッセイについては、以下の実験２において詳述される。このアッセイにおける結合のバ
ックグラウンドは、約５００ｃｐｍであった。上清は、２０００ｃｐｍ以上の結合を生じ
たならば陽性とみなされた。

スクリーンされた３２２の上清の内の２５が、ＲＩＡにより陽性を示した。これら２５
の内、結合の値が最高（４８００ｃｐｍ）であった１つは、Ａ２と名付けられた。陽性を
示すウエルは、添加されたマウス細胞に限界希釈された状態でサブクローンされた。中和
アッセイにおける前記上清の更なる分析に関して、Ａ２は、阻害および／または中和活性
を示す唯一の陽性クローンとして発見された。このように、ハイブリドーマ系Ａ２が選択
された。この系は、１０％の子ウシ血清（ギブコ・ラボラトリーズ社）、０．１ｍＭの非
必須アミノ酸、１ｍＭのピルビン酸ナトリウム、２ｍＭのＬ−グルタミン、１００Ｕ／ｍ
ｌのペニシリン、および１００μｇ／ｍｌのストレプトマイシンを含有するＲＰＭ１−１
６４０培地中に保存された。

ＴＮＦの生物活性を阻害する抗ＴＮＦ抗体は、上述したように、ｒＴＮＦタンパクの代
わりに用いられる、ＴＮＦ（ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．１の）の８７〜１０８のアミノ酸残基あ
るいは５９〜８０および８７〜１０８の両アミノ酸残基、あるいはその中に含まれるペプ
チド結合の組合せにおける、少なくとも５つのアミノ酸を含むペプチドへの結合によって
、選択的にスクリーニングされ得る。

実施例ＩＩ
この発明における抗ＴＮＦ抗体の特長
Ａ．ラジオイムノアッセイ
Ｅ．ｃｏｌｉ由来のｒｈＴＮＦは、ｐＨ９．６のＢＣＢ緩衝液中に１μｇ／ｍｌの濃度
に希釈され、この溶液の０．１ｍｌが各アッセイウエルに添加された。４℃で一昼夜培養
した後、各ウエルは、ＢＣＢで簡単に洗浄され、それから３７℃で１時間、ＢＣＢ中の１
％ウシ血清アルブミン（以下、ＢＳＡと称することがある。）でシールされた。各ウエル
は、それから０．０５％ツイーン−２０を含有するＰＢＳ（以下、ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎと
称することがある。）で３回洗浄され、希釈されたＡ２腹水の７０μｌが、各ウエルに添
加された。各ウエルは、３７℃で２時間培養され、ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎで３回洗浄された
。その後、１％ＢＳＡを含有するＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎの５０μｌ中に含まれる、¹²⁵Ｉで
標識された、ヒツジ抗マウスＩｇ抗体のＦ（ａｂ'）２フラグメントのおよそ５０，００
０ｃｐｍが、各ウエルに添加され、各ウエルは、更に３７℃で２時間培養された。各ウエ
ルは、各々ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎで４回洗浄され、切り離され、計数された。２つの測定の
結果が図１に示されている。

ＰＢＳに含まれる５μｇ／ｍｌのｒｈＴＮＦは、６０℃で加熱された。種々の時点にお
ける加熱処理されたＴＮＦ試料のアリクオットが、迅速に４℃に冷却され、ＢＣＢ中で５
倍に希釈され、ＲＩＡマイクロプレートウエルをコートするのに使用された。ＲＩＡは、
上述した通りに行われた。２つの測定の結果が図２に示されている。６０℃での培養は、
ｈＴＮＦαの生物活性を実質上低下させたので、この実験は、Ａ２モノクローナル抗体は
熱不活性化ヒトＴＮＦαには結合できないことを示している。

Ｂ．中和アッセイ
Ａ２およびｃＡ２の試料は、プロテインＡ・アフィニティー・クロマトグラフィーによ
り、Ｃ１３４Ａ、Ｃ１６８Ａ（上述）とそれぞれ呼ばれる細胞系のハイブリドーマ組織培
養上清から精製され、ｐＨ７．２のリン酸緩衝生理食塩水（以下、ＰＢＳと称することが
ある。）でダイアフィルトレーションされた。

一定の腫瘍細胞系におけるＴＮＦの細胞障害作用は、実験試料および生体液中における
ｉｎｖｉｔｒｏでのＴＮＦレベルと適合する。ＴＮＦ感受性標的細胞Ａ６３７（ヒト横紋
筋腫細胞系）を用いる、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４３：３５１７−３５２３（１９８９）
に記載のＡｄｅｒｋａｅｔ ａｌ．により改良された、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３８：６
３５−６４０（１９８７）に記載のＦｅｉｎｍａｎｅｔ ａｌ．のアッセイ法は、ＴＮＦ
の細胞障害作用を阻害あるいは中和するＡ２の能力を研究するのに用いられた。

培養されたヒトＡ６７３／６細胞は、３９℃で一昼夜、２０μｇ／ｍｌのシクロヘキシ
ミドの存在下、種々の濃度のモノクローナル抗体Ａ２と、ナチュラル（原文；ｎａｔｕｒ
ａｌ）のヒトＴＮＦα（ジェンザイム社、ボストン、ＭＡ）あるいは組換えヒトＴＮＦα
（サントリー（株）、大阪、日本）の４０ｐｇ／ｍｌと共に培養された。対照には、各ウ
エルにおいて、培地のみ、あるいは培地とＴＮＦとを含有するものを用いた。細胞の死は
、ナフトール・ブルー・ブラックで染色することにより測定され、その結果が、６３０ｎ
ｍの波長で光学的に測定された。この波長での吸光度は、現存する生細胞数と相関する。

線量依存法において、Ａ２は、天然および組換えヒトＴＮＦの両方の細胞障害作用を阻
害あるいは中和したことがわかった（図３）。

他の実験において、この阻害および／または中和活性の特異性が試験された。Ａ６７３
／６細胞は、ＴＮＦのバイオアッセイの前に、３×１０⁴細胞／ウエルの割合で２０時間
種培養された。ｒｈＴＮＦ、Ｅ．ｃｏｌｉ由来組換えヒトリンホトキシン（ＴＮＦβ）、
およびＥ．ｃｏｌｉ由来組換えネズミＴＮＦの２倍系列希釈液が、調製された。Ａ２ハイ
ブリドーマ上清は、希釈されたＴＮＦ試料液に等量添加され、その混合物は室温で３０分
間インキュベートされた。０．１ｍｌのアリクオットは、Ａ６７３／６細胞を含むウエル
に移され、シクロヘキシミドの２０μｇ／ｍｌが添加され、細胞は３９℃で一昼夜培養さ
れた。細胞は、それから固定され、細胞障害作用の評価のために染色された。結果は、Ａ
２モノクローナル抗体は、ヒトリンホトキシン（ＴＮＦβ）（図４）あるいはネズミＴＮ
Ｆ（図５）に作用しないが、ｒｈＴＮＦの細胞障害作用を特異的に阻害あるいは中和した
ことを示している。

次に、Ａ２モノクローナル抗体の非ヒト霊長類由来のＴＮＦとの交叉反応性を分析する
ため、実験が行われた。
Ｂ５１４（ヒヒ）、Ｊ９１（カニクイザル）、およびＲＨ３８３（アカゲザル）の血液
からフィコール比重差遠心により分離された単球は、ＴＮＦ生産を誘導するため、３７℃
で３時間あるいは１６時間、５％ＦＢＳおよび２μｇ／ｍｌのＥ．ｃｏｌｉＬＰＳを含む
ＲＰＭｌ １６４０培地中で、１×１０⁵細胞／ウエルの割合で培養された。同じウエルか
らの各上清は、上述のＡ６７３／６細胞を用いるＴＮＦのバイオアッセイが行われるまで
、４℃で２０時間未満、貯蔵された。培養上清の２倍希釈液は、１μｇ／ｍｌの最終濃度
で、培地あるいは精製されたＡ２モノクローナル抗体のいずれかと共に混合され、室温で
３０分間インキュベートされ、そして、アリクオットは、指示細胞に移された。結果とし
ては、Ａ２モノクローナル抗体は、ヒヒ、カニクイザルおよびアカゲザルの単球により生
産されるＴＮＦの細胞障害作用を阻害あるいは中和していなかった。

更なる実験は、チンパンジーＴＮＦを用いて行われた。ＣＨ５６３（チンパンジー）の
血液から分離された単球は、上述のように、ＴＮＦを含有する上清を生成するために培養
された。これらの上清の生物活性を阻害あるいは中和するＡ２モノクローナル抗体の１０
μｇ／ｍｌの能力は、上記のようにアッセイされた。ヒトＴＮＦは、ポジティブ・コント
ロールとして使用された。図６に示されるように、結果としては、Ａ２モノクローナル抗
体は、ヒトＴＮＦに対する活性能（図７）に類似した、チンパンジーＴＮＦに対する阻害
および／または中和活性能を有していた。

Ａ２モノクローナル抗体の阻害および／または中和活性は、ＴＮＦ−１、ＴＮＦ−２お
よびＴＮＦ−３と名付けられたヒトＴＮＦに特異的な他の３つのネズミモノクローナル抗
体、およびコントロール用モノクローナル抗体と比較された。精製されたモノクローナル
抗体の２倍系列希釈液は、ｒｈＴＮＦ（４０ｐｇ／ｍｌ）と共に混合され、室温で３０分
間インキュベートされ、そして、アリクオットは、上述のようにＴＮＦ生物活性について
試験された。ＴＮＦ−１、ＴＮＦ−２、およびＴＮＦ−３の各モノクローナル抗体は、類
似した適度の阻害および／または中和活性を有していたことがわかった。対照的に、Ａ２
モノクローナル抗体は、より高い阻害および／または中和活性能を有していた。

実施例ＩＩＩ
抗体のＶおよびＣ遺伝子をクローニングするための一般的な方法
上述の抗ＴＮＦ抗体を分泌するＡ２ハイブリドーマからのＨ鎖およびＬ鎖遺伝子につい
てのＶ領域をクローニングするための方法は、機能的に再編成される（および発現される
）Ｉｇ遺伝子についての、Ｖ領域および対応するＪ領域間のゲノムにおける連結に基づい
て行われた。Ｊ（結合）領域のＤＮＡブローブは、Ｊ領域にリンクされるＤＮＡを分離す
るため、ゲノム・ライブラリーをスクリーンするのに用いられた。生殖細胞系の配列にお
ける（すなわち、未再編成された）ＤＮＡは、Ｊプローブにハイブリッド化するにもかか
わらず、このＤＮＡは、ＩｇのＶ領域のシークエンスにリンクせず、分離されたクローン
の制限酵素分析により同定され得る。

ここで用いられるクローニング法は、Ｊ_HおよびＪκプローブを用いて、再編成された
Ｈ鎖およびＬ鎖遺伝子由来のＶ領域を分離する方法である。これらのクローンは、ノーザ
ンブロッティングによりＡ２ハイブリドーマ中にこれらのシークエンスが発現されるかど
うかを観察するために試験された。発現されたシークエンスを含むこれらのクローンは、
ヒトＣ領域を含む発現ベクター中にクローンされ、抗体が生産されるかどうかを測定する
ため、マウス骨髄腫細胞にトランスフェクトされた。細胞が生産した抗体は、その後、結
合の特異性について試験され、ネズミＡ２抗体と機能的に比較された。

実施例ＩＶ
Ｌ鎖ゲノム・ライブラリーの構築
Ａ２ハイブリドーマからのＬ鎖のＶ領域遺伝子を分離するため、大きさの選択されたゲ
ノム・ライブラリーは、λファージベクターシャロン（原文；Ｃｈａｒｏｎ）２７を用い
て構築された。高分子量ＤＮＡが、Ａ２ハイブリドーマ細胞から分離され、制限エンドヌ
クレアーゼＨｉｎｄＩＩＩで完全に切断された。ＤＮＡは、それから０．８％アガロース
ゲル上で分画され、およそ３ｋｂ、４ｋｂおよび６ｋｂという３つの異なる大きさのＤＮ
Ａフラグメントが、電気溶出によりゲルから分離された。ライブラリー構築についての大
きさの範囲は、サザーンブロッティングにおいてＪκプローブとハイブリッド化したＨｉ
ｎｄＩＩＩフラグメントの大きさに基づいて選択された。フェノール／クロロホルム溶出
およびエタノール沈澱の後、同じ大きさのクラスからのＤＮＡフラグメントは、λシャロ
ン（原文；Ｃｈａｒｏｎ）２７のアームと結合され、ストラタジーン社からの得たギガパ
ック・ゴールドを用いてｉｎｖｉｔｒｏでファージ粒子中にパッケージされた。

これらのライブラリーは、³²Ｐ標識されたＪκプローブを用いて、およそ２０，０００
プラーク／１５０ｍｍペトリ皿の密度で直接的にスクリーンされた。マウスのＬ鎖のＪκ
プローブは、全５つのＪκセグメントを含む２．７ｋｂのＨｉｎｄＩＩＩフラグメントで
あった。そのプローブは、ベーリンガー・マンハイム社から得られたキットを用いて、ラ
ンダム・プライミング（ｒａｎｄｏｍ ｐｒｉｍｉｎｇ）により³²Ｐで標識された。フリ
ーなヌクレオチドは、セファロースＧ−５０カラムを通じて遠心分離により除去された。
そのプローブの特異的な活性は、およそ１０⁹ｃｐｍ／μｇであった。

プラーク・ハイブリダイゼーションは、５倍濃度のＳＳＣ、５０％ホルムアミド、２倍
濃度のデンハルト（Ｄｅｎｈａｒｄｔ）溶液、および４２℃で１８〜２０時間変性された
２００μｇ／ｍｌのサケ精子ＤＮＡの系において行われた。最終の洗浄は、６５℃で０．
５倍濃度のＳＳＣおよび０．１％のＳＤＳを用いて行われた。ポジティブクローンは、オ
ートラジオグラフィーの後に同定された。

実施例Ｖ
Ｈ鎖ゲノム・ライブラリーの構築
Ａ２のＨ鎖についてのＶ領域遺伝子を分離するため、ゲノム・ライブラリーが、λｇｔ
１０ベクター系において構築された。高分子量のＤＮＡは、制限エンドヌクレアーゼＥｃ
ｏＲＩで完全に切断され、およそ７．５ｋｂのフラグメントが、アガロースゲル電気泳動
後に分離された。これらのフラグメントは、λｇｔ１０アームと共に結合され、ギガパッ
ク・ゴールドを用いてｉｎｖｉｔｒｏでファージ粒子中にパッケージされた。

このライブラリーは、Ｊ_Hプローブを用いて、２０，０００プラーク／１５０ｍｍプレ
ートの密度でスクリーンされた。Ｊ_Hプローブは、Ｊ３およびＪ４セグメントを含む、２
ｋｂのＢａｍＨＩ／ＥｃｏＲＩフラグメントであった。
そのプローブは、実験３のように標識され、同様の比放射活性を有していた。ハイブリ
ダイゼーションおよび洗浄の条件は、実験３において用いた条件と同様とした。

実施例ＶＩ
ＴＮＦに特異的なＶ遺伝子領域のクローニング
幾つかのポジティブ・クローンが、Ｊ_HおよびＪκプローブをそれぞれ用いて、各ライ
ブラリーからおよそ１０⁶個のプラークをスクリーニングした後に、ＨおよびＬ鎖ライブ
ラリーから分離された。プラーク精製に続いて、バクテリオファージＤＮＡが、各ポジテ
ィブ・クローンのために分離され、ＥｃｏＲＩ（Ｈ鎖クローン）あるいはＨｉｎｄＩＩＩ
（Ｌ鎖クローン）で切断され、１％アガロースゲルにおいて分画された。ＤＮＡは、ニト
ロセルロースに移され、ブロットはＪ_HあるいはＪκプローブでハイブリッド化された。

Ｊ_Hプローブにハイブリッド化した７．５ｋｂのＥｃｏＲＩ・ＤＮＡフラグメントを含
んだ幾つかのＨ鎖クローンが得られた。Ｌ鎖ライブラリーについては、Ｊκプローブにハ
イブリッド化するＨｉｎｄＩＩＩフラグメントを含む、大きさの選択された３つの各ライ
ブラリーから幾つかのクローンが、分離された。Ｌ鎖については、２ｋｂライブラリーか
ら独自に得られた、幾つかの２．９ｋｂのＨｉｎｄＩＩＩフラグメントは、ＳＰ２／０ｍ
ＲＮＡでなく、Ａ２からの１２５０ｂｐのｍＲＮＡと共にハイブリッド化した（実施例Ｖ
ＩＩ参照）。加えて、４ｋｂのライブラリー由来の幾つかのＨｉｎｄＩＩＩフラグメント
は、Ａ２ｍＲＮＡおよび融合相手のｍＲＮＡにハイブリッド化した。６ｋｂのライブラリ
ー由来の５．７ｋｂのＨｉｎｄＩＩＩフラグメントは、両方のＲＮＡのいずれにもハイブ
リッド化しなかった。

ハイブリッド化するＡ２ｍＲＮＡの観察された長さは、Ｈ鎖およびＬ鎖ｍＲＮＡの正確
な大きさに相当した。ＲＮＡ発現は、Ａ２ハイブリドーマに制限されたので、７．５ｋｂ
のＨ鎖フラグメントおよび２．９ｋｂのＬ鎖フラグメントは、Ａ２由来の正しいＶ領域シ
ークエンスを含むと仮定された。各型についてのある実験が、更なる研究のために選択さ
れた。重要な機能の試験は、これらのＶ領域シークエンスが、適当なＣ領域シークエンス
と結合したとき、ネズミＡ２抗体と同様の特異性および親和性を有する抗体の合成を指示
し得ることの証明である。

７．５ｋｂのＨ鎖フラグメントおよび２．９ｋｂのＬ鎖フラグメントは、ネズミ骨髄腫
細胞中のマウス／ヒト・キメラタンパクの発現を許容するプラスミド・ベクターにサブク
ローンされた（実施例ＶＩＩＩおよび実施例ＩＸ参照）。完全な抗体分子が分泌されるか
どうか、もしそうであるならば、これらの抗体分子が適当な特異性および親和性を有する
ものであるかどうかを確かめるため、これらのプラスミドは、ＳＰ２／０細胞中にトラン
スフェクトされた。対照のトランスフェクションは、推測上の抗ＴＮＦＨ鎖と、無関係な
、しかし発現されるＬ鎖とを組合せることにより、また、推測上の抗ＴＮＦＬ鎖と、無関
係な、しかし発現されるＨ鎖とを組合せることにより行われた。結果は、７．５ｋｂのＨ
鎖フラグメントは発現され得るが、２．９ｋｂのＬ鎖フラグメントは発現され得ないこと
を示した。このことは、他の公知のＬ鎖アミノ酸シークエンスと比較したときに、コード
領域の部分が、適当なアミノ酸読み枠（リーディング・フレーム）中に存在しないことを
示した、ＤＮＡシークエンス分析によって確認された。

２．９ｋｂのＨｉｎｄＩＩＩフラグメントは、機能できるＶ遺伝子を含んでいないよう
であったので、Ｌ鎖ライブラリーから分離された４．０ｋｂおよび５．７ｋｂのＨｉｎｄ
ＩＩＩフラグメントが、発現ベクター中にクローンされ、７．５ｋｂのＨ鎖とのトランス
フェクションの後、キメラ抗体の発現について試験された。５．７ｋｂのＨｉｎｄＩＩＩ
フラグメントは抗体発現を支持し得るが、４．０ｋｂＨｉｎｄＩＩＩフラグメントは抗体
発現を強く支持した。７．５ｋｂの推測上のＨ鎖Ｖ領域および４．０ｋｂのＬ鎖Ｖ領域の
トランスフェクションから生じた抗体は、精製され、固相ＴＮＦ結合アッセイにおいて試
験され、そして不活性であることがわかった。４．０ｋｂのＨｉｎｄＩＩＩフラグメント
に含まれるＶ領域は、正しい抗ＴＮＦのＶ領域ではなく、融合相手によってハイブリドー
マに付与されたものであったと結論された。このことは、Ａ２ハイブリドーマおよび融合
相手に由来するｃＤＮＡのシークエンス分析によって、その後確認された。

Ａ２ｍＲＮＡとハイブリッド化した２．９ｋｂのＨｉｎｄＩＩＩフラグメントを含む、
独自に得られた他のＬ鎖クローンが、より詳細に特徴づけられた。制限地図は類似してい
たにもかかわらず、クローンは、ＡｃｃＩ酵素部位の存在あるいは欠損に関し、二つのク
ラスに分かれた。オリジナル（機能のない）の２．９ｋｂフラグメント（クローン８．３
と呼ばれる）には、幾つかの他のクローン（クローン４．３に代表される）中におけるＡ
ｃｃＩ部位が欠損していた。クローン４．３のＤＮＡシークエンスは、クローン８．３に
極めて類似していたが、クローン８．３と異なる、公知のＬ鎖に近い相同性を有する一つ
のアミノ酸リーディング・フレームを含んでいた。クローン４．３からの２．９ｋｂのＨ
ｉｎｄＩＩＩフラグメントは、Ｌ鎖発現ベクター中にサブクローンされ、ＳＰ２／０細胞
中に推測上の抗ＴＮＦＨ鎖と共にトランスフェクトされた。抗体は合成され、精製され、
固相ＴＮＦ結合アッセイにより試験された。この抗体は、ＴＮＦに結合した。したがって
、クローン４．３のＬ鎖Ｖ領域が、正しい抗ＴＮＦのＶ領域であると仮定された。

Ａ２ネズミハイブリドーマは、再編成された少なくとも４つのＬ鎖Ｖ領域遺伝子を含む
ことが示された。これらの内の少なくとも２つ、即ちクローン４．３（正しい抗ＴＮＦの
Ｌ鎖遺伝子）、および４．０ｋｂのＨｉｎｄＩＩＩフラグメント（融合相手によって与え
られた）中に含まれる遺伝子は、タンパクとして発現される。２つのＬ鎖の発現は、ネズ
ミ・ハイブリドーマから分泌された抗体は、実際には、正しいＬ鎖を用いた抗体、正しく
ないＬ鎖を用いた抗体、およびこれらを各一つずつ用いた抗体の混合物であることを意味
する。ネズミＡ２抗体における２つの異なるＬ鎖の存在は、ＳＤＳゲルおよび精製された
抗体のＮ末端タンパクシークエンス分析によって確認された。Ａ２キメラ抗体の構築は、
個々のＨおよびＬ鎖遺伝子のクローニング、および非生産性細胞系でのそれらの発現を含
んでいるので、生じた抗体は、正しいＬ鎖のみを有し、したがって、より能力の高い抗体
である（実施例Ｘ、ＸＩおよびＸＩＩ参照）。

実施例ＶＩＩ
クローンされたＤＮＡのノーザン分析
Ａ２ハイブリドーマからの標準のＨ鎖およびＬ鎖Ｖ領域に相当する、クローンされたＤ
ＮＡは、Ａ２ｍＲＮＡにハイブリッド化することが予想される。Ｈ鎖あるいはＬ鎖の遺伝
的な位置での機能をもたないＤＮＡの再編成は、当然発現されない。

全細胞質ＲＮＡの１０μｇは、１％アガロース／ホルムアルデヒド・ゲル（Ｓａｍｂｒ
ｏｏｋｅｔ ａｌ．）において電気泳動され、ニトロセルロースに移された。ブロットは
、５０％ホルムアミド、２倍濃度のデンハルト（原文；Ｄｅｎｈａｒｄｔ）溶液、５倍濃
度のＳＳＣ、および４２℃で１０時間変性された２００μｇ／ｍｌのサケ精子ＤＮＡの系
において、ランダム・プライム（原文；ｒｏｎｄｏｍ ｐｒｉｍｅｄ）されたＤＮＡプロ
ーブと共にハイブリッド化された。最終の洗浄条件は、６５℃で０．５倍濃度のＳＳＣお
よび０．１％のＳＤＳを用いる条件であった。

サブクローンされたＤＮＡフラグメントは、ランダム・プライムによって³²Ｐで標識さ
れ、Ａ２細胞、あるいはＡ２の融合相手であるＳＰ２／０細胞に由来の全ＲＮＡを含むノ
ーザン・ブロットにハイブリッド化された。７．５ｋｂのＥｃｏＲＩ・Ｈ鎖フラグメント
は、ＳＰ２／０ｍＲＮＡとではなく、Ａ２からの２ｋｂのｍＲＮＡとハイブリッド化した
。同様に２．９ｋｂのＬ鎖ＨｉｎｄＩＩＩフラグメント（クローン４．３）は、ＳＰ２／
０ｍＲＮＡとではなく、Ａ２からの１２５０ｂｐのｍＲＮＡとハイブリッド化した。ハイ
ブリッド化するＡ２ｍＲＮＡの観察された長さは、Ｈ鎖およびＬ鎖ｍＲＮＡそれぞれにつ
いての正しいサイズであった。このことは、これらのＤＮＡフラグメントにおけるＶ領域
配列が、Ａ２ハイブリドーマ細胞中で発現されることを確証している。

実施例ＶＩＩＩ
発現ベクターの構築
上述の推測上のＬ鎖（クローン４．３）およびＨ鎖Ｖ遺伝子は、発現ベクター中におい
てヒトκ（原文；ｈｕｍａｎ ｋａｐｐａ）およびγ１定常領域遺伝子（原文；ｇａｍｍ
ａｌ ｃｏｎｓｔａｎｔ ｒｅｇｉｏｎ）に連結された。Ａ２からの推測上のＶ_H領域遺伝
子に相当する７．５ｋｂのＥｃｏＲＩフラグメントは、ｐＡ２ＨＧｌａｐｇｐｔと呼ばれ
るプラスミドを生ずる、ヒトＣγ₁遺伝子（原文；ｈｕｍａｎ Ｃ_gammal ｇｅｎｅ）およ
びＥｃｏｇｐｔ遺伝子を含む発現ベクター中にクローンされた（図８参照）。

クローン４．３からの２．９ｋｂの推測上のＶ_Lフラグメントは、動物細胞における分
泌を許容する、ヒトκＣκ遺伝子（原文；ｈｕｍａｎ ｋａｐｐａ Ｃκ）およびＥｃｏｇ
ｐｔ遺伝子を含むベクター中にクローンされた。生じたプラスミドは、ｐＡ２ＨｕＫａｐ
ｇｐｔと指定された。（図８参照）。

実施例ＩＸ
キメラ抗体遺伝子の発現
キメラＨ鎖およびＬ鎖遺伝子を発現させるため、発現プラスミドは、非生産性マウスミ
エローマ（骨髄腫）細胞系であるＳＰ２／０中にトランスフェクトされた。トランスフェ
クトされるプラスミドＤＮＡは、エチジウムブロマイド／セシウムクロライド・グラジュ
エント中での２回の平衡遠心によって精製された。プラスミドＤＮＡ（１０〜５０μｇ）
が、ハンク塩（原文；Ｈａｎｋ'ｓ ｓａｌｔｓ）を含有する培地中の１０⁷個のＳＰ２／
０細胞に添加され、この混合物は、バイオラッド社製のエレクトロポレーション装置中に
配置された。９６穴マイクロプレート中に細胞がプレートされた後、エレクトロポレーシ
ョンが２０Ｖで行われた。

２４時間後にマイコフェノール酸（原文；Ｍｙｃｏｐｈｅｎｏｌｉｃ ａｃｉｓ）選択
が行われ、薬剤耐性細胞のコロニーは、１〜２週間後に同定された。耐性細胞のコロニー
は、安定した細胞系に発展させられ、これらの細胞系からの組織培養上清が、ヤギ抗ヒト
ＩｇＧ・Ｆ_C抗体およびアルカリホスファターゼで結合されたヤギ抗ヒトＨ＋Ｌ（ジャク
ソン・ラボラトリーズ社から得られた）を用いるＥＬＩＳＡアッセイにより、抗体につい
て試験された。

キメラＡ２抗体は、プロテインＡ−セファロース・クロマトグラフィーにより組織培養
上清から精製された。上清は、０．１Ｍトリス、０．００２ＭのＥＤＴＡを用いてｐＨ８
．０に調整され、同じバッファー中で平衡されたプロテインＡ−セファロース・カラムに
充填された。ＩｇＧは、ｐＨ３．５の０．１Ｍクエン酸塩で溶出され、１Ｍトリスで阻害
あるいは中和され、そして、リン酸緩衝生理食塩水（以下、ＰＢＳと称することがある。
）中に透析された。

精製されたキメラ抗体は、その結合、ならびに阻害および／または中和活性について評
価された。

実施例Ｘ
抗ＴＮＦキメラ抗体の特異性
ｃＡ２のドメインと結合する抗体はネズミＡ２に由来するので、これらのモノクローナ
ル抗体は、ＴＮＦにおける同じ結合部位に拮抗（競合）することが予想される。ｒｈＴＮ
Ｆ（大日本、大阪、日本）で被覆された９６穴マイクロプレート中で、固定された濃度の
キメラＡ２およびネズミｍＡｂ Ａ２が、増加する濃度のネズミキメラＡ２の拮抗（競合
）体で、それぞれインキュベートされた。抗ヒト免疫グロブリンと結合したアルカリ・ホ
スホターゼおよび抗マウス免疫グロブリン第ニ抗体が、それぞれ、ネズミキメラＡ２の結
合のレベルを検出するのに用いられた。ＴＮＦ抗原に対する交叉競合が、この固層ＥＬＩ
ＳＡフォーマットにおいて観察された（図９）。この発見は、ｃＡ２およびネズミＡ２の
予想される同一のエピトープ特異性と矛盾していない。

マウスＡ２およびｃＡ２モノクローナル抗体のｒｈＴＮＦαへの結合についての親和定
数は、スカッチャード分析（Ｓｃａｔｃｈａｒｄ，Ｇ．，Ａｎｎ．Ｎ．Ｙ．Ａｃａｄ．Ｓ
ｃｉ．５１：６６０（１９４９））により決定された。この結果が、図１０に示されてい
る。この分析は、９６穴プレート中に固定されたｒｈＴＮＦαへの、¹²⁵Ｉ標識されたｃ
Ａ２の直接の結合を測定することを意味する。抗体は、ヨードゲン（原文；ｉｏｄｏｇｅ
ｎ）法により約９．７μＣｉ／μｇの比活性（原文；Ｓｐｅｃｉｆｉｃ ａｃｔｉｖｉｔ
ｙ）に各々標識された。マウスＡ２モノクローナル抗体については、０．５×１０⁹ｌ／
モルの親和定数（Ｋａ）が算出された。予想しないことに、キメラＡ２抗体は、Ｋａが１
．８×１０⁹ｌ／モルという高い親和性を有していた。このように、この発明のキメラ抗
ＴＮＦα抗体は、親株のネズミＡ２モノクローナル抗体のヒトＴＮＦαへの結合の親和性
よりも、高く重要なヒトＴＮＦαへの結合の親和性を示すことが、証明された。ネズミと
のキメラ抗体、フラグメントおよび領域は、親株のモノクローナル抗体の親和性と等しい
かあるいは低い親和性を有することが予想されるので、この発見は驚くべきことであった
。

ＴＮＦαへの結合の親和性が、Ｋａで表すと少なくとも１×１０⁸Ｍ^-1、好ましくは１
×１０⁹Ｍ^-1である、このような高親和性抗ＴＮＦ抗体は、生体液中の極微量レベルのＴ
ＮＦを検出するイムノアッセイに好適である。加えて、このような高親和性を有する抗Ｔ
ＮＦ抗体は、ＴＮＦαに介在される健康状態あるいは病状の診断に好適である。

ＴＮＦに対するｃＡ２の特異性は、ヒト・リンホトキシン（ＴＮＦ−β）の交叉中和反
応について試験することにより確認された。リンホトキシンは、幾つかの配列の相同性、
および、例えばＴＮＦによる腫瘍細胞の細胞障害作用などの一定の生物活性を共有してい
る（Ｐｅｎｎｉｃａ，Ｄ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ ３１２：７２４−７２９（１９８
４））。培養されたヒトＡ６７３細胞は、３９℃で一昼夜、２０μｇ／ｍｌのシクロヘキ
シミドの存在下で、４μｇ／ｍｌのキメラＡ２を含むあるいは含まない、増加する（異な
る）濃度のヒトリンホトキシン（ジェネンテック社）と共にインキュベートされた。細胞
の死は、上述のナフトール・ブルー・ブラックでの致命的な染色を行うことにより測定さ
れた。結果は、ｃＡ２はヒト・リンホトキシンの阻害および／または中和性に影響しなか
ったことを示した。これは、キメラ抗体のＴＮＦα特異性を確証している。

異なる動物種由来のＴＮＦと反応する、Ａ２あるいはｃＡ２の能力がまた評価された。
最初に言及したように、阻害および／または中和性のモノクローナル抗体が結合するヒト
ＴＮＦに多重エピトープが存在する（Ｍｏｌｌｅｒ，Ａ．ｅｔ ａｌ．）。ヒトＴＮＦは
、ホスト動物種の広い範囲において生物活性を有する。しかしながら、ヒトＴＮＦにおけ
る一定の阻害および／または中和性のエピトープは、異なる動物種間で維持されるにもか
かわらず、その外は、ヒトおよびチンパンジーに限定された。

中和反応実施例は、ＴＮＦ源として新たに分離したヒト、チンパンジー、アカゲザル、
カニクイザル、ヒヒ、ブタ、イヌ、ウサギ、あるいはラットの単球からの、細胞障害活性
化された細胞上清を用いた。上述したように、ネズミＡ２モノクローナル抗体は、ヒトあ
るいはチンパンジーＴＮＦのみの活性を阻害あるいは中和し、その他の霊長類あるいは低
級動物に由来するＴＮＦに対する効能を有していなかった。Ａ２は、また、組換えマウス
ＴＮＦの細胞障害作用を阻害あるいは中和しなかった。

このように、Ａ２により認識されるエピトープは、ヒトおよびチンパンジーＴＮＦαに
より共有されるエピトープである。また、キメラＡ２は、この方法でラット、ウサギ、イ
ヌおよびブタからの単球由来のＴＮＦとの交叉反応性についても、精製された組換えマウ
スＴＮＦαおよび天然あるいは組換えヒトＴＮＦαとの交叉反応性についても試験された
。キメラＡ２は、天然あるいは組換えＴＮＦαのみを阻害あるいは中和した。したがって
、ｃＡ２は、ネズミＡ２との種特異性を共有するようである。

実施例ＸＩ
キメラ抗ＴＮＦ抗体の生体外（原文；ｉｎ ｖｉｔｒｏ）活性と中和能力
ネズミキメラ抗ＴＮＦ−α抗体すなわちＡ２およびｃＡ２の両抗体が、有効なＴＮＦ阻
害および／または中和活性を有することが示された。前述の細胞障害性分析において、ネ
ズミ Ａ２は、約１２５ｎｇ／ｍｌの濃度で、４０ｐｇ／ｍｌ濃度のｒｈＴＮＦαの生物
学的活性を完全に阻害または中和した。二つの独立した系で阻害および／または中和能を
調べた結果、５０％阻害投与量（ＩＤ５０）は、１５．９±１．０１および１７．９±１
．６ｎｇ／ｍｌ（平均値±標準誤差）と測定された。よって、ｍＡｂ Ａ２は約１７ｎｇ
／ｍｌのＩＤ５０値を有する。

同一の実験系による、ＴＮＦに対して同程度の結合親和性を有する他の３つのネズミ抗
ＴＮＦ−α抗体（ＴＮＦ−１、ＴＮＦ−２、ＴＮＦ−３と定義する。）の試験の結果、こ
れらは１〜２オーダー大きいＩＤ値を有すること、つまりＡ２と比較すると明らかに小さ
い中和活性しか有さないことが判明した。

ｃＡ２の生体外での（原文；ｉｎ ｖｉｔｒｏ）ヒトＴＮＦ−αの生物学的活性に対す
る阻害および／または中和活性能の評価は、上述したバイオアッセイ系を用いて行われた
。培養Ａ６７３細胞が、４０ｐｇ／ｍｌのノーマルＴＮＦ（ゲンザイム（Ｇｅｎｚｙｍｅ
）社製、ボストン、ＭＡ）または組換えヒトＴＮＦ（サントリー社製、大阪、日本）と共
に、抗体の存在下または抗体非存在下に上述の方法で培養された。そして、生体染色によ
って細胞の生死が測定された。Ａ２ネズミｍＡｂの前記結果に基づいた予想通り、細胞障
害性アッセイにおいて、ｃＡ２も同様にノーマルヒトＴＮＦおよび組換えヒトＴＮＦの活
性の投与量に応じて阻害または中和した（図１１）。この実験系において、ｃＡ２は１２
５ｎｇ／ｍｌ程度の濃度で完全にＴＮＦの細胞障害作用を消失させた。実験を繰り返した
結果、前記ｃＡ２は元のネズミＡ２ｍＡｂよりも強いＴＮＦ阻害および／または中和活性
を示すことが判明した。このような抗体濃度１μｇ／ｍｌ以下での阻害および／または中
和活性は、抗体を投与した患者の血液中において容易に達成することができる。従って、
このような強力な阻害および／または中和活性（特にキメラ抗体の活性）は、ＴＮＦによ
り介される病気や健康状態の治療上好ましい。

前述の通り、ＴＮＦは細胞のＩＬ−６の分泌を誘起させる。更に、その症候群における
詳細な役割は不明であるが、ＩＬ−６は敗血症の病理学的状態に関与していることが明ら
かにされている（Ｆｏｎｇ，Ｙ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ Ｅｘｐ Ｍｅｄ １７０：１６２７〜１
６３３（１９８９）；Ｓｔａｒｎｅｓ Ｊｒ．，Ｈ．Ｆ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ Ｉｍｍｕｎｏ
ｌ １４５：４１８５〜４１９１（１９９０））。ＴＮＦにより誘起されるＩＬ−６の分
泌に対する、ｃＡ２の阻害または中和活性が、培養ヒト二倍体ＦＳ−４繊維芽細胞を用い
て調べられた。
表１に示す結果は、ｃＡ２がＴＮＦ添加で一晩培養された細胞のＩＬ−６の分泌を阻害
するのに有効であることを示している。ＴＮＦに誘導されるＩＬ−６の分泌は、ｍａｂの
非存在下または他の抗原に特異的なコントロールｍＡｂの存在下においては、阻害を受け
なかった。

ＴＮＦの有する内皮細胞（ＥＣ）のプロ凝固活性上昇や接着分子作用を誘導する機能は
、病理学の病理生理学において重要な内容である。特に、血管の損傷、播種性血管内凝固
、および敗血症の症状と関連する重厚な高血圧とも関連する。そのため、ｃＡ２が、ＴＮ
Ｆに誘導される、培養ヒトさい帯の、動脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）の活性を阻害するか否
かが評価された。未変性（原文；ｉｎｔａｃｔ）のＨＵＶＥＣ細胞を、抗体の存在下およ
び非存在下においてＴＮＦに４時間接触させた後、細胞溶解産物（原文；ｌｙｓａｔｅ）
をヒト結漿（原文；ｐｌａｓｍａ）凝固分析（原文；ｃｌｏｔｔｉｎｇ ａｓｓａｙ）す
ることにより、ＴＮＦのプロ凝固活性への刺激性が調べられた。表２に示された結果は、
予想されたＴＮＦのＨＵＶＥＣのプロ凝固活性に対する正の制御（ｕｐｒｅｇｕｌａｔｉ
ｏｎ）を示している（凝固時間の減少に反映される。）。キメラ抗体ｃＡ２は、ＴＮＦの
活性を投与量に応じて、効果的に阻害または中和した。

プロ凝固活性を上昇させる作用に加えて、ＴＮＦは内皮細胞にＥＬＡＭ−１やＩＣＡＭ
の等の接着分子（原文；ａｄｈｅｓｉｏｎ ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ）の産生を誘導する機能
を有する。このＴＮＦの活性を阻害または中和活性をＥＬＡＭ−１を検出する放射免疫定
量法によって調べた。培養したＨＵＶＥＣに、抗体添加、または無添加で２５０ｎｇ／ｍ
ｌ ｒｈＴＮＦ（大日本製薬製、大阪府、日本）による刺激が与えられ、３７℃において
一晩９６穴プレート上に培養された。ネズミ抗ヒトＥＬＡＭ−１ ｍＡＢおよび¹²⁵Ｉで標
識したウサギ抗ネズミ免疫グロブリンを４℃において、この順に直接培養プレートに添加
することによりＥＬＡＭ−１の細胞表面への発現が、評価された。

図１２に示すように、ＴＮＦは培養ＨＵＶＥＣの表面へのＥＬＡＭ−１の発現を誘導し
た。また、ｃＡ２の添加量に相関し、このＴＮＦの活性が効果的に阻害される。

最後に、ＴＮＦは培養繊維牙細胞に対して分裂促進（マイトジェン）活性を有すること
が知られている。キメラＡ２本発明はＴＮＦに誘導されるヒト二倍体ＦＳ−４培養繊維牙
細胞の有糸分裂（原文；ｍｉｔｏｇｅｎｅｓｉｓ）を阻害および／または中和する作用を
有する、これによりＡ２がｉｎ ｖｉｔｒｏにおいて、更にＴＮＦの幅広い生物学的活性
に渡って阻害および／または中和活性を有することが確信される。

実施例ＸＩＩ
ｃＡ２抗体の生体内（原文；ｉｎ ｖｉｖｏ）活性と機能
ｃＡ２の種交叉反応性が高度に制限的であるので、人間やチンパンジー以外の動物の生
体内での（原文；ｉｎ ｖｉｖｏ）この抗体の機能を調べるための試験は厳しい制約を受
ける。それでもなお、ｃＡ２の生体外での（原文；ｉｎ ｖｉｔｒｏ）強い阻害および／
または中和作用が生体内（原文；ｉｎ ｖｉｖｏ）においても発現されるという証明が望
まれていた。過去の動物実験は、実験動物へのＴＮＦの投与は、グラム陰性細菌の感染ま
たはエンドトキシンの直接的投与により呈される病理学的状態に類似することを示した（
Ｔｒａｃｅｙ，Ｋ．Ｊ．ｅｔ ａｌ．，１９８６．前出；Ｔｒａｃｅｙ，Ｋ．Ｊ．ｅｔ ａ
ｌ．，１９８７，前出；Ｌｅｈｍａｎｎ，Ｖ．ｅｔ ａｌ．，前出）。

ガラクトサミン感作のネズミにヒトＴＮＦの致死量を投与する生体内での（原文；ｉｎ
ｖｉｖｏ）実験系（Ｌｅｈｍａｎｎ，Ｖ．ｅｔ ａｌ．，前出）を、ｃＡ２の生体内での
（原文；ｉｎ ｖｉｖｏ）のＴＮＦ阻害または中和作用の評価をする実験に採用した。ｒ
ｈＴＮＦを５μｇ（０．２５ｍｇ／ｋｇ）腹腔投与した結果、ｃＡ２未処理のコントロー
ル用動物および投与後１５〜３０分後に生理食塩水または２ｍｇ／ｋｇのコントロール用
抗体（キメラＩｇＧｌ；ネズミ７Ｅ３抗血小板（原文；ｐｌａｔｅｌｅｔ）ｍＡＢ由来）
を静脈注射（ｉ．ｖ．）により投与した場合には８０〜９０％の致死率であった。
これに対し、ｃＡ２による処理は、致死率を０．４ｍｇ／ｋｇの抗体を投与した場合に
は０〜３０％に、２０ｍｇ／ｋｇｓの場合に０〜１０％に低下させた。これらの結果を表
３にまとめて記載したが、この結果は、ｉｎ ｖｉｔｒｏと同様に生体内での（原文；ｉ
ｎ ｖｉｖｏ）においても、ｃＡ２がＴＮＦの生物学的活性を阻害および／または中和す
る作用を有することが示された。

実施例ＸＩＩＩ
ｃＡ２により認識されるヒトＴＮＦ−αのアミノ酸配列（抗原決定基）の決定
試 薬 下記の市販の試薬は容易に入手可能である。ＦＭＯＣ−Ｌ−Ａｌａ−ＯＰｆｐ、
ＦＭＯＣ−Ｌ−Ｃｙｓ（Ｔｒｔ）−ＯＰｆｐ、ＦＭＯＣ−Ｌ−Ａｓｐ（ＯｔＢｕ）−ＯＰ
ｆｐ、ＦＭＯＣ−Ｌ−Ｇｌｕ（ＯｔＢｕ）−ＯＰｆｐ、ＦＭＯＣ−Ｌ−Ｐｈｅ−ＯＰｆｐ
、ＦＭＯＣ−Ｇｌｙ−ＯＰｆｐ、ＦＭＯＣ−Ｌ−Ｈｉｓ（Ｂｏｃ）−ＯＰｆｐ、ＦＭＯＣ
−Ｌ−Ｉｌｅ−ＯＰｆｐ、ＦＭＯＣ−Ｌ−Ｌｙｓ（Ｂｏｃ）−ＯＰｆｐ、ＦＭＯＣ−Ｌ−
Ｌｅｕ−ＯＰｆｐ、ＦＭＯＣ−Ｌ−Ａｓｎ−ＯＰｆｐ、ＦＭＯＣ−Ｌ−Ｐｒｏ−ＯＰｆｐ
、ＦＭＯＣ−Ｌ−Ｇｌｎ−ＯＰｆｐ、ＦＭＯＣ−Ｌ−Ａｒｇ（Ｍｔｒ）−ＯＰｆｐ、ＦＭ
ＯＣ−Ｌ−Ｓｅｒ（ｔＢｕ）−ＯＤｈｂｔ、ＦＭＯＣ−Ｌ−Ｔｈｒ（ｔＢｕ）−ＯＤｈｂ
ｔ、ＦＭＯＣ−Ｌ−Ｖａｌ−ＯＰｆｐ、ＦＭＯＣ−Ｌ−Ｔｒｐ−ＯＰｆｐ、ＦＭＯＣ−Ｌ
−Ｔｒｙ（ｔＢｕ）−ＯＰｆｐ、および１−ヒドロキシベノトリアゾール（ＨＯＢＴ）を
ケンブリッジ リサーチ バイオケミカルズより入手した。ビペリジン（原文；ｐｉｐｅｒ
ｉｄｉｎｅ）はアプライド バイオシステム社より入手した。１−メチル−２−ピロリジ
ノン（ＮＭＰ）をＥＭ サイエンスより入手した。以下、メタノールをＪＴ ベーカーより
、無水酢酸をアプライド バイオシステムズ社より、トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）をアプ
ライド バイオシステムズ社より、ジイソプロピルアミン（ＤＩＥＡ）、トリエチルアミ
ン、ジチオスレイトール（ＤＴＴ）およびアニソールをアルドリッチ社より、塩酸（ＨＣ
ｌ）をＪＴ ベーカー社よりそれぞれ入手した。

略 号 ＦＭＯＣは９−フルオレニルメトキシカルボニルを、ｔＢｕはｔ−ブチルエーテ
ルを、ＯｔＢはｔ−ブチルエステルを、Ｂｏｃはｔ−ブチルオキシカルボニルを、Ｍｔｒ
は４−メトキシ−２，３，６−トリメチルベンゼンスルホニルを、Ｔｒｔはトリチルを、
ＯＰｆｐはペンタフルオロェニルエステルを、ＯＤｈｂｔはオキソーベンゾトリアゾンエ
ステルを示す。

本発明のキメラ抗体（ｃＡ２と表示される抗体）が、ＴＮＦアミノ酸配列の内のどの部
分が抗体による阻害的結合に関与しているかをエピトープマッピングにより調べるために
、用いられた。これによって、ｃＡ２によって認識されるＴＮＦ−αのアミノ酸配列が決
定された。

ヒトＴＮＦαの完全な一次構造（Ｐｅｎｎｉｃａ ｅｔ ａｌ，Ｎａｔｕｒｅ ３１２：
７２４−７２９（１９８４）による）を図１３に示した。
ヒトＴＮＦαの全アミノ酸配列に渡る、二つ毎のアミノ酸より開始し、オーバーラップ
する、デカペプチドがポリエチレン ピン上にＧｙｓｅｎの方法を用いて合成された（Ｇ
ｙｓｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ｐｅｐｔｉｄｅｓ：Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ ｂｉｏｌｏｇｉ
ｃａｌ， アメリカン ペプチド シンポジウム文書，ｐ．５１９〜５２３，Ｅｄ、Ｇ．Ｒ
．Ｍａｒｓｈａｌｌ，Ｅｓｃｏｍ，Ｌｅｉｄｎ，１９８８）。アセチル化Ｎ−末端を有す
るペプチドのピン群と、遊離のＮ−末端を有するペプチドのピン群がそれぞれ調製された
。以下に示すように、ヒトＴＮＦ−αのエピトープを構成するアミノ酸配列を決定するた
め、これらペプチドピンの両群が、抗ＴＮＦ ｍＡＢ ｃＡ２含有溶液中にインキュベート
された。
図１４Ａに、それら全部でヒトＴＮＦ−αの全配列を網羅する、オーバーラップしてい
るデカペプチドのそれぞれについて、結合試験の結果を示した。Ｏ．Ｄ．は直接ｃＡ２の
結合の増加と相関する。図１４Ｂは、ＴＮＦ−αの存在下における同一のペプチドピン群
に対するｃＡ２の結合を調べた結果である。この競合的結合試験により、ｃＡ２に対し非
特異的に結合するペプチドが示された。

ｃＡ２に認識される互いに隣接しないＴＮＦ−αペプチド配列は、少なくても二以上あ
る。Ｎ末端アミノ酸を１とする通常の蛋白質の順番付与方法を用いると、ｃＡ２ ｍＡＢ
は、少なくともＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１により示されるＴＮＦの８７−１０８番の残基中、
または５９−８０番の残基および８７−１０８番の残基の両残基中に存在するアミノ酸部
分に形成されるエピトープを認識する。
図１５は、ＴＮＦ中に存在するこれらの非隣接の配列を示したものである。これらの配
列の空間配置図を図１６Ｂに示し、同時にＴＮＦ単量体の空間配置図を１６Ａに示した。

予想に反し、ｍＡＢ ｃＡ２は、ＴＮＦ−αのリセプターの結合位置と推定される位置
（例えばＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１のｈＴＮＦαにおける１１−１３、３７４２、４９−５７
、１５５−１５７）に結合することなく、ＴＮＦ−αの活性を阻害する。好ましい抗ＴＮ
ＦｍＡＢとしては、これらのペプチド配列の一つ若しくはいくつかに結合することによっ
て、ヒトＴＮＦ−αの対応するレセプターへの結合を阻害するものである。この様な抗体
はｃＡ２エピトープに結合することによってＴＮＦの活性を阻害することができる。この
結合がＴＮＦの活性を阻害することは証明されている。
ｃＡ２によって認識されるこれらのペプチド配列を同定によって、本発明の態様に類似
する結合特性および治療上の利用性を有する他のモノクローナル抗体の調製に必要な情報
が得られた。

ペプチドピンの合成 ケンブリッジ リサーチ バイオケミカルズ社（ＣＲＢ）より購入
したエピトープ マッピング キットを用いて、ヒトＴＮＦ−αの全配列に対応するドデカ
ペプチドをポリエチレンセイ製のピン上に合成した。

合成スケジュールが、ＣＲＢエピトープ マッピング ソフトウェアを用いて作成された
。最初のアミノ酸をカップリングする前に、予め２０％ピペリジンのＮＭＰ溶液中での、
室温下、３０分処理することにより、脱保護された。脱保護されたピンは室温下において
ＮＭＰで５回洗浄され、さらにメタノールで３回洗浄された。洗浄後、最低１０分間以上
空気中で乾燥した。

各カップリングサイクル毎に以下の操作が行なわれた。
１）前記アミノ酸誘導体および前記ＨＯＢＴの前記合成スケジュールにおける必要量が秤
量された。
２）前記ＨＯＢＴの前記合成スケジュールによる適当量がＮＭＰに溶解された。
３）前記アミノ酸誘導体が適量のＨＯＢＴ溶液に溶解され、次いでピペットによりその１
５０μｌが合成スケジュールのウェル位置表（原文；Ｓｈｅｅｔ）の示す適切なウェルに
注入された。
４）ピンを有するブロックが前記ウェル中に入れられ、この「サンドイッチ」ユニットは
プラスチック製容器中で、１８時間３０℃の湯浴中に保持された。
５）ピンがウェルより取り出され、ＮＭＰにより１回（５分間）、メタノールにより３回
（２分間）洗浄された後、１０分間空気中で乾燥された。
６）ピンが前記と同様に脱保護され、さらに、この操作が繰り返された。

一つのブロックのピン上のペプチドをアセチル化するためには、前記ペプチドピンは洗
浄され、脱保護され、ＮＭＰ；無水酢酸：トリエチルアミン（５：２：１）を含有する溶
液の１５０μｌで３０℃において９０分間処理され、次いで前に概説した洗浄方法により
洗浄された。他のペプチドピンの群は、Ｚ末端フリーアミノ酸残基を得るために、アセチ
ル化されず、脱保護された。

側鎖保護基を除去するための最後の脱保護は、ＴＦＡ：アニソール：ジチオスレイトー
ルの混合溶液、９５：２．５：２．５（Ｖ：Ｖ：Ｗ）を用いて、４時間、周囲の温度で処
理することにより行われた。脱保護の後、１０分間空気乾燥され、次いで１％塩酸のメタ
ノール−蒸留水の１：１混合溶液中で超音波処理（原文；ｓｏｎｉｃａｔｉｏｎ）が行わ
れた。一晩乾燥され、試験に供するピンが得られた。

ｃＡ２のＴＮＦ−αペプチドへの結合を調べるためのＥＬＩＳＡ分析
試 薬：ディスラプション バッファー：リン酸二水素ナトリウム（３１．２ｇ，シグマ
社（原文；Ｓｉｇｍａ）ｃａｔ＃Ｓ−０７５１または同等物）およびドデシル硫酸ナトリ
ウム（２０．０ｇ，シグマ社 ｃａｔ＃Ｌ−３７７１または同等物）を２．０ＬのミリＱ
（原文；ｍｉｌｌｉＱ）水に溶解した。次いで、５０％ ｗ／ｗ 水酸化ナトリウム（ＶＷ
Ｒ社 ｃａｔ ＃ ＶＷ６７３０−３または同等物）によりｐＨを７．２±０．１に調整し
た。

ブロッキング バッファー：リン酸二水素ナトリウム（０．３９ｇ，シグマ社 ｃａｔ＃
Ｓ−０７５１または同等物）、リン酸水素二ナトリウム（１．０７ｇ，ベーカー社（原文
；Ｂａｋｅｒ）ｃａｔ＃３８２８−１または同等物）および塩化ナトリウム（８．５０ｇ
，ベーカー社 ｃａｔ＃３６２４−５または同等物）をミリＱ水１．０Ｌに溶解した。５
０％ ｗ／ｗ 水酸化ナトリウム（原文；ＶＷＲ社 ｃａｔ ＃ ＶＷ６７３０−３または同
等物）によりｐＨを７．２±０．１に調整した。
鶏卵アルブミン（１０．０ｇ，シグマ社 ｃａｔ＃Ａ−５５０３または同等物）および
牛血清アルブミン（１０．０ｇ，シグマ社 ｃａｔ＃Ｌ−３２９４または同等物）を室温
下で緩やかに撹拌しながら溶解した。この溶液を濾過し、濾過液に、ツウィーン（原文；
Ｔｗｅｅｎ）２０（２．０ｍｌ シグマ社 ｃａｔ＃１３．７９または同等物）を添加した
。さらに４０分間室温にて緩やかに撹拌し、濾過した後、４０℃に保存した。

ＰＢＳ／ツウィーン（原文；Ｔｗｅｅｎ）２０：リン酸二水素ナトリウム（３．９０ｇ
，シグマ社 ｃａｔ＃Ｓ−０７５１または同等物）、リン酸水素二ナトリウム（１０．７
０ｇ，ベーカー社 ｃａｔ＃３８２８−１または同等物）および塩化ナトリウム（８５．
０ｇ，ベーカー社 ｃａｔ＃３６２４−５または同等物）をミリＱ水１．０Ｌに溶解する
ことによって、濃度１０溶液を調製した。次いで、５０％ ｗ／ｗ 水酸化ナトリウム（Ｖ
ＷＲ社 ｃａｔ ＃ ＶＷ６７３０−３または同等物）によりｐＨを７．２±０．１に調整
した。この溶液に対しツウィーン（原文；Ｔｗｅｅｎ）２０（５．０ｍｌ シグマ社 ｃａ
ｔ＃Ｐ−１３７９または同等物）を添加し、この混合液を緩やかに撹拌した。使用する直
前に、この溶液１００ｍｌをミリＱ水で１．０Ｌに希釈した。

基質溶液：クエン酸（４．２０ｇ，Ｍａｌｉｎｃｋｒｏｄｔ ｃａｔ＃Ｓ−０６２７ま
たは同等物）およびリン酸二ナトリウム（７．１０ｇ，ベーカー社 ｃａｔ＃３８２８−
１または同等物）をミリＱ水１．０Ｌに溶解し基質用バッファーを調製した。次いで、５
０％ ｗ／ｗ 水酸化ナトリウム（ＶＷＲ社 ｃａｔ＃ ＶＷ６７３０−３または同等物）に
よりｐＨを５．００に調整した。使用直前にＯＰＤ基質錠（３０ｍｇ，シグマ社 ｃａｔ
＃Ｐ−８４１２または同等物）および３０％ ｖ／ｖ 過酸化水素（４０μｌ，シグマ社
ｃａｔ＃Ｐ−１３７９または同等物）を基質バッファーに添加した。この溶液はアルミホ
イルで包んで充分に撹拌した。

４Ｎ硫酸：硫酸（５３ｍｌ，イーエム サイエンス社（ＥＭ Ｓｃｉｅｎｃｅ）ｃａｔ＃
ＳＸ１２４４−５または同等物）をミリＱ水（４４７ｍＬ）に徐々に添加し、使用前に室
温迄に冷却した。

装 置：モレキュラーデバイシス モデルｎｕ−ｍａｘプレートリーダーまたは同等物．
サイエンティフィックプロダクツ モデルＲ４１４０卓上振盪機または同等物．ブランソ
ン モデル５２００超音波バスまたは同等物．フィンピペット モデル４１７２３１７マル
チチャンネル ピペッターまたは同等物．コーニング（原文；ｃｏｒｎｉｎｇ）モデル２
５８０１ ９６ウェル ディスポーザブル ポリスチレン Ｅｌｉｓａ プレート

使用前にまたは下記に示す使用の後に、ペプチドピンは以下に示す手順で洗浄された。
ディプラプチョン バッファーは６０℃に加熱され、ヒューム（原文；ｆｕｍｅ）フード
中の超音波バスに注入された。このディスラプション バッファーにジチオスレイトール
（２．５ｇ，シグマ社 ｃａｔ＃Ｄ−０６３２または同等物）が添加された。ペプチドピ
ンが溶液中で３０分間超音波処理され、処理後ミリＱ水で完全に洗浄された。次いで沸騰
エタノール中に２分浸漬され、その後空気乾燥された。

ディスポーザブル ポリスチレン Ｅｌｉｓａ プレートの９６のウェル中に、ブロッキ
ング バッファー（２００μｌ）が、分注され、これらのウェル中にペプチドピンが保持
された。このペプチドピンおよびプレートは室温下、卓上振盪機上で２時間インキュベー
トされた。次いで、このプレートおよびペプチドピンはＰＢＳ／ツウィーン（原文；Ｔｗ
ｅｅｎ）２０で洗浄された（４回）。個々のウェルにそれぞれ２０μｇ／ｍｌ濃度のｃＡ
２抗体を注入された（ブロッキング バッファーにより希釈した。１７５μＬ／ウェル）
。ＴＮＦ競合の方は、ＴＮＦ−α（４０μｇ／ｍｌ）およびｃＡ２（２０μｇ／ｍｌ）を
含有するＢＳＡ／卵アルブミン／ＢＢＳ中に室温下、３時間インキュベートすることによ
って行われた。ペプチドピンはプレート中に保持され、４℃で一晩インキュベートされた
。一晩インキュベート後に、このペプチドピンおよびプレートはＰＢＳ／ツウィーン（原
文；Ｔｗｅｅｎ）２０で洗浄された（４回）。各ウェルに、西洋ワサビペルオキシダーゼ
標識の抗ヒトの山羊の抗体（ブロッキング バッファーで２０００倍に希釈、１７５μＬ
／ウェル，ジャクソン イムノ リサーチ ラボラトリーズ（原文；Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍ
ｕｎｏ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｓ））が添加された。このプレート中にペプチドピンが
保持され、室温下で卓上振盪機上で１時間インキュベートされた。インキュベート後、プ
レートおよびペプチドピンはＰＢＳ／ツウィーン（原文；Ｔｗｅｅｎ）２０で洗浄された
（４回）。各ウェル中に調製直後の基質溶液が分注され（１５０μｌ／ウェル）、室温下
において１時間、卓上振盪機上のこのプレート中でペプチドピンがインキュベートされた
。インキュベート後、ペプチドピンは取り外され、各ウェル中に４Ｎ硫酸（５０μＬ）が
添加された。このプレートをモレキュラー デバイシス プレートリーダーにより読み取ら
せ（４９０ｎｍの値，ブランク値として６５０ｎｍの値を減ずる）、この結果が、前記の
通り、図１４Ａおよび図１４Ｂに示した。

実施例ＸＩＶ
ＴＮＦペプチドフラグメントを使用したネズミの抗ヒトＴＮＦモノクローナル抗体の作製
ＴＮＦ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１により示される）における上述の非隣接の配列５９−８
０、８７−１０８中、または両配列５９−８０、８７−１０８中に存在する少なくとも５
アミノ酸残基である抗ＴＮＦエピトープを含有するＥ．ｃｏｌｉ由来組換えヒトＴＮＦ（
ｒｈＴＮＦ）フラグメントの精製品４０μｇを、等量の完全フロイント・アジュバンド（
ディフコ・ラボラトリーズ社から入手）により乳化し、０．４ｍｌとしたものが、実施例
Ｉにおけるのと同様に、ＢＡＬＢ／ｃ雌ネズミの皮下および腹腔に注射された。一週間後
、不完全フロイント・アジュバンド中の前記ｒｈＴＮＦフラグメント５μｇが腹腔に追加
免疫として注射され、次いで、ＴＮＦ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１により示される）における
配列５９−８０、８７−１０８中、または両配列５９−８０、８７−１０８中にのアミノ
酸残基を有する抗ＴＮＦエピトープを含有するＴＮＦフラグメントが、アジュバントなし
で、４回連続して腹腔注射された。最後の注射から８週間後に、ネズミはＴＮＦ１０μｇ
により追加免疫された。

４日後、ネズミは犠牲にされた。その脾臓を得、脾臓細胞の懸濁液が調製された。脾臓
細胞は、３０％ポリエチレングリコール、ＰＥＧ１４５０の０．３ｍｌ中で、非分泌性ハ
イブリドーマ細胞であるＳｐ２／０（ＡＴＣＣ ＣＲＬ１５８１）と、４：１の比で融合
された。３７℃で６時間インキュベートした後、融合細胞は、Ｓｐ２／０細胞濃度が１ウ
エル当たり２×１０⁴個になるように、９６穴プレート中に０．２ｍｌづつ配分された。
５×１０⁴個の正常ＢＡＬＢ／ｃ脾臓細胞が、各ウエルに添加された。

使用された増殖培地は、ＲＰＭ１−１６４０培地、熱で不活性化された１０％の子ウシ
血清（ＨＢＳ）（ヒクローン（原文；Ｈｙｃｌｏｎｅ）社製）、０．１ｍＭのＭＥＭ非必
須アミノ酸、１ｍＭのピルビン酸ナトリウム、２ｍＭのＬ−グルタミン、１００Ｕ／ｍｌ
のペニシリン、１００μｇ／ｍｌのストレプトマイシン（ギブコ・ラボラトリーズ社製）
、および選択のためのヒポキサンチン−アミノプテリン−チミジン（ＨＡＴ）（ベーリン
ガー・マンハイム社製）よりなる。

固相放射性免疫アッセイ（ＲＩＡ）が、配列５９−８０、８７−１０８、または両配列
５９−８０、８７−１０８中に存在するアミノ酸残基を含有するｒｈＴＮＦαフラグメン
トに特異的なモノクローナル抗体が存在する上清を選択するために、採用された。このア
ッセイについては、前記実験２において詳述した。このアッセイにおける結合のバックグ
ランドは、約５００ｃｐｍである。上清は、２０００ｃｐｍまたはそれ以上結合している
ならば陽性とみなした。

選択された上清の内の一つまたはいくつかの上清が通常のＲＩＡにより同定された。こ
れら陽性の上清の内で、最も高い結合性を有する（よりｃｐｍ値を示すことで判定される
。）ものが、ネズミのフィーダー細胞添加の限定希釈法によりサブクローニングされた。
中和アッセイにおける前記上清の更なる分析において、一つまたはいくつかの抗体が、阻
害および／または中和作用を有することを確認した。そして、これらの陽性であり、阻害
および／または中和作用を有するハイブリドーマ系列が選択され、１０％ＦＢＳ（ギブコ
社製）、０．１ｍＭのＭＥＭ非必須アミノ酸、１ｍＭのピルビン酸ナトリウム、２ｍＭの
Ｌ−グルタミン、１００Ｕ／ｍｌのペニシリン、および１００μｇ／ｍｌのストレプトマ
イシンを含有するＲＰＭ１−１６４０培地に保存（ｍａｉｎｔａｉｎ）された。

実施例ＸＶ
ＴＮＦペプチドを用いたネズミとのキメラ抗体、そのフラグメントおよび領域の作製
ネズミとのキメラ抗体、そのフラグメントおよび領域が、実施例ＸＩＶで得られたネズ
ミ抗体の可変領域とヒト定常領域とのキメラ発現媒体を構築することによって、前記実施
例４〜９に示した方法によって作製された。

キメラＡ２抗体は、タンパク Ａセファロース クロマトグラフィーによって組織培養上
清より精製され得られた。上清は０．００２Ｍ ＥＤＴＡ加０．１Ｍ トリスによってｐＨ
８．０に調整され、同バッファーにより平衡化されたタンパク Ａセファロースカラムに
アプライされた。ｐＨ３．５のクエン酸バッファーによりＩｇＧが溶出され、１Ｍトリス
で中和された後に、リン酸バッファーによる緩衝能を有する生理食塩水中で透析された。

こうして得られたネズミとのキメラ抗体、そのフラグメントおよび領域について、その
結合能、阻害および／または中和活性が評価された。

実施例ＸＶＩ
キメラ抗ＴＮＦ抗体のｉｎ ｖｉｔｒｏの活性と中和活性
例えば、阻害作用が５０％阻害投与量として表わされるＴＮＦ細胞障害作用のアッセイ
において、実施例ＸＩＶと実施例ＸＶにおいて得られたネズミ抗体およびキメラ抗ＴＮＦ
抗体のいづれも、阻害および／または中和活性を有することが確認された。

同一の実験系による評価試験により、同程度の結合親和性を有する他の３つのネズミ抗
ＴＮＦ−α抗体（ＴＮＦ−１、ＴＮＦ−２、ＴＮＦ−３と定義する。）を評価したところ
、ＩＤ値が１〜２オーダー大きいこと、つまり本発明のネズミ抗体およびキメラ抗ＴＮＦ
抗体と比較すると、明らかに小さい中和活性しか有さないことが判明した。

実施例ＸＩＶと実施例ＸＶにおいて得られたネズミ抗体およびキメラ抗ＴＮＦ抗体の両
抗体の生体外での（原文；ｉｎ ｖｉｔｒｏ）ヒトＴＮＦ−αに対する阻害および／また
は中和活性能の評価は、上述したバイオアッセイ系を用いて行われた。実施例ＸＩＶと実
施例ＸＶにおいて得られたネズミ抗体またはキメラ抗ＴＮＦ抗体を産生する培養細胞が、
４０ｐｇ／ｍｌのノーマルＴＮＦ（ゲンザイム（原文；Ｇｅｎｚｙｍｅ）社製、ボストン
、ＭＡ）または組換えヒトＴＮＦ（サントリー社製、大阪、日本）と、抗体の存在下また
は抗体非存在下に上述の方法で培養された。そして、生体染色によって細胞の生死が測定
された。
ＴＮＦの細胞障害アッセイにおいて、予想通り、実施例ＸＩＶと実施例ＸＶにおいて得
られた本発明のネズミ抗体およびキメラ抗ＴＮＦ抗体は、共に投与量に応じた、ノーマル
およびｒｈＴＮＦの活性の阻害または中和活性を示した。このような、抗体濃度１μｇ／
ｍｌ以下での阻害および／または中和能は抗体を投与された患者の血液中でも容易に達成
することができる。従って、このような抗ＴＮＦ抗体、特にキメラ抗体は、その高い阻害
および／または中和能によって、ＴＮＦによってもたらされる病気や病理学的状態の治療
に好適である。
培養ヒト二倍体ＦＳ−４繊維牙細胞を用いて、ｃＡ２のＴＮＦによるＩＬ−６の分泌の
阻害または中和能を評価した。望ましい結果は、実施例ＸＩＶと実施例ＸＶにおいて得ら
れたネズミ抗体およびキメラ抗ＴＮＦ抗体が共に、ＴＮＦの存在下に一晩培養した細胞に
おいてＩＬ−６の産生の阻害活性を示すという結果である。ＴＮＦによって誘導されるＩ
Ｌ−６の産生は、ｍＡＢの非存在下または他の抗原に対するコントロールｍＡＢの存在下
においては阻害されなかった。

ＴＮＦの有する内皮細胞（ＥＣ）のプロ凝固活性上昇や接着分子作用を誘導する機能は
、病理学の病理生理学において重要な内容である。特に、血管の損傷、播種性血管内凝固
、および敗血症の症状と関連する重厚な高血圧とも関連する。
そのため、実施例ＸＩＶと実施例ＸＶにおいて得られたネズミ抗体およびキメラ抗ＴＮ
Ｆ抗体について、ＴＮＦに誘導される、培養ヒトさい帯の、動脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）
の活性を阻害するか否かが評価された。未処理のＨＵＶＥＣ細胞を、抗体の存在下および
非存在下においてＴＮＦに４時間接触させた後、細胞溶解産物（原文；ｌｙｓａｔｅ）を
ヒト結漿（原文；ｐｌａｓｍａ）凝固分析（原文；ｃｌｏｔｔｉｎｇ ａｓｓｅｙ）する
ことにより、ＴＮＦのプロ凝固活性への刺激性が調べられた。予想される結果は、ＴＮＦ
がＨＵＶＥＣのプロ凝固活性に対しの正の制御を示すことである。本発明の実施例ＸＩＶ
と実施例ＸＶにおいて得られたネズミ抗体およびキメラ抗ＴＮＦ抗体は、ＴＮＦの活性を
投与量に応じて阻害または中和することが予想される。

プロ凝固活性を上昇させる作用に加えて、ＴＮＦは内皮細胞にＥＬＡＭ−１やＩＣＡＭ
の等の接着分子（原文；ａｄｈｅｓｉｏｎ ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ）の産生を誘導する機能
を有する。本発明の実施例ＸＩＶと実施例ＸＶにおいて得られたネズミ抗体およびキメラ
抗ＴＮＦ抗体の両抗体は、このＴＮＦの活性を阻害または中和することが予想されるが、
これについてＥＬＡＭ−１を検出する放射免疫定量法によって調べた。培養したＨＵＶＥ
Ｃに抗体添加、または無添加で２５０ｎｇ／ｍｌ ｒｈＴＮＦ（大日本、大阪、日本）に
よる刺激が与えられ、３７℃において一晩９６穴プレート上に培養された。ネズミ抗ヒト
ＥＬＡＭ−１ ｍＡＢおよび¹²⁵Ｉで標識したウサギ抗ネズミ免疫グロブリンを４℃におい
て、この順に直接培養プレートに添加することによりＥＬＡＭ−１の細胞表面への発現が
、評価された。

ＴＮＦは、ＥＬＡＭ−１の培養ＨＵＶＥＣ細胞表面の発現を誘導することが予想され、
さらに本発明の実施例ＸＩＶと実施例ＸＶにおいて得られたネズミ抗体およびキメラ抗Ｔ
ＮＦ抗体のいづれによっても添加量に応じて、このＴＮＦの活性が阻害されることが予想
される。

最後に、ＴＮＦは培養繊維牙細胞において分裂促進（マイトジェン）活性を有すること
が知られている。本発明の実施例ＸＩＶと実施例ＸＶにおいて得られたネズミ抗体および
キメラ抗ＴＮＦ抗体の両抗体とも、ＴＮＦに誘導されるヒト二倍体ＦＳ−４培養繊維牙細
胞の有糸分裂（原文；ｍｉｔｏｇｅｎｅｓｉｓ）を阻害および／または中和することが期
待され、本発明の実施例ＸＩＶと実施例ＸＶにおいて得られたネズミ抗体およびキメラ抗
ＴＮＦ抗体の両抗体が、ｉｎ ｖｉｔｒｏにおいてＴＮＦの生物学的活性を幅広く阻害お
よび／または中和することが確信される。

実施例ＸＶＩＩ
生体内での（原文；ｉｎ ｖｉｖｏ）におけるｃＡ２抗体の活性および効力
実施例ＸＩＶと実施例ＸＶにおいて得た本発明のネズミ抗体またはキメラ抗ＴＮＦ抗体
が生体内での（原文；ｉｎ ｖｉｖｏ）においてＴＮＦの阻害または中和作用を有するか
否かを調べるために、ガラクトサミンで感作したネズミに致死量のヒトＴＮＦを投与する
生体内での（原文；ｉｎ ｖｉｖｏ）実験系が採用された。
５μｇ（０．２５ｍｇ／ｋｇ）のｒｈＴＮＦを腹腔投与された結果、未処理のコントロ
ール用動物および投与後１５〜３０分後に生理食塩水または２ｍｇ／ｋｇのコントロール
用抗体（キメラＩｇＧ１；ネズミ７Ｅ３抗血小板（原文；ｐ１ａｔｅｌｅｔ）ｍＡＢ由来
）が静脈注射（ｉ．ｖ．）により投与された場合には８０〜９０％の致死率であった。
これに対し、実施例ＸＩＶと実施例ＸＶにおいて得た本発明のネズミ抗体およびキメラ
抗ＴＮＦ抗体で処理されたものは、致死率が、０．４ｍｇ／ｋｇの抗体を投与した群は０
〜３０％に、２０ｍｇ／ｋｇｓの群は０〜１０％に低下することが予想される。この予想
の結果によって、実施例ＸＩＶと実施例ＸＶにおいて得られた本発明のネズミ抗体および
キメラ抗ＴＮＦα抗体が生体外（原文；ｉｎ ｖｉｔｒｏ）のみならず生体内（原文；ｉ
ｎ ｖｉｖｏ）においてもＴＮＦの生物学的活性を阻害および／または中和する効力を有
することを示されることになる。

実施例ＸＶＩＩＩ
ｃＡ２抗体の臨床的活性および効力
抗ヒトＴＮＦのキメラＩｇＧ１モノクローナル抗体ｃＡ２が健康な男性ボランティアに
投与された。ＮＩＨ標準エンドトキシン４ｎｇ／ｋｇの投与の一時間後に、ボランティア
に、コントロールとしての生理食塩水または０．０１，０．１０または１０ｍｇ／ｋｇの
ｃＡ２が製剤の形態で投与された。血清中のＴＮＦ値が経時的に追跡された結果、ＴＮＦ
値の最高値はｃＡ２の投与に応じた減少することが示され、ｃＡ２を１０ｍｇ／ｋｇ投与
したボランティアについてはＴＮＦは検出されなかった。したがって、本発明の抗ＴＮＦ
抗体による処置は、人体中のＴＮＦによってもたらされる作用を阻害することが予想され
る。

エンドトキシンを受けた（原文；ｒｅｃｅｉｖｉｎｇ）患者は、白血球の辺縁趨向が原
因と考られる白血球減少を示す。白血球が活性化されるにことによって、内皮に結合可能
となりその結果として内皮の損傷を生じる。１．０〜１０．０ｍｇ／ｋｇの投与により、
この白血球減少は認められなくなる、これに対し、０．０１〜０．１ｍｇ／ｋｇの投与で
は白血球数の減少が観察された。この減少は特に多形核の細胞系列において顕著であった
。その後、全ての患者において白血球は増加した。この過程はｃＡ２によって何ら影響を
受けなかった。この白血球の辺縁趨向の防止効果はＴＮＦによる内皮細胞の損傷を防止で
きることを意味すると考えられる。この分野において、このＴＮＦによる内皮の損傷は敗
血症による症状や死において重要な役割を果たしていると考えられている。従って、本発
明の抗ＴＮＦ抗体は、ここに示されたように、このような損傷効果に対する予防効果を有
することが予想される。

前記各引用文献の内容は、特に組込むことの明記がなくても、ここに言及することによ
り全て本発明の内容に含めるものとする。

以上、本発明について充分に開示したのであるから、この分野における通常の知識を有
するものが、本発明の精神と目的の範囲内において、また不適当な（原文；ｕｎｄｕｅ）
実験でない限りにおいて、幅広い範囲について数値、濃度、条件を適当に変更して本発明
を実施することができる。

本願は本発明の特定の一態様について記載したのであるが、他にも様々な態様が可能で
ある。本出願は、本発明の原理に一般的に従い、この発明が属する技術の分野における公
知のあるいは慣習的なプラクティスの範囲内に入るような変更であって、かつ、以下に示
されたクレームの範囲内から外れることなく、本発明の本質的特長に適合するような変更
を含む、本発明の全ての態様、使用、または応用をも包含することを意図している。
本願における用語の選択および用語の定義は記述上の便宜のためのものでありこれらに
制限されるものではない。

本発明の実施態様ならびに目的生成物を挙げれば以下のとおりである。
１． ヒトの腫瘍壊死因子α（ＴＮＦα）に対する高親和性マウスモノクローナル抗体で
あって、（ａ）抗体Ａ２のＴＮＦとの結合を競合的に阻害し、（ｂ）ヒトＴＮＦαの中和
性エピトープに結合する抗体。
２． 請求項１に記載のマウスモノクローナル抗体であって、検出可能にラベルされてい
るもの。
３． ヒトの免疫グロブリンの不変領域の少なくとも一部と、ヒトのＴＮＦαに特異性を
有するヒト以外の免疫グロブリンの可変部分の少なくとも一部を含むキメラ免疫グロブリ
ン鎖。
４． 請求項３に記載のキメラ免疫グロブリン鎖であって、Ｈ鎖とＬ鎖を有するもの。
５． 請求項３に記載のキメラ免疫グロブリン鎖であって、不変領域がヒト起源のもので
あるもの。
６． ２個のＬ鎖と２個のＨ鎖を有し、そのおのおのが不変領域の少なくとも一部と可変
領域の少なくとも一部からなり、可変領域がヒトＴＮＦαに対して特異性を有し、生体内
で、ヒトＴＮＦαの中和作用を有するエピトームに高い親和性をもって結合するキメラ抗
体分子。
７． 請求項６に記載のキメラ抗体であって、ＴＮＦβに結合しないもの。
８． 請求項６に記載のキメラ抗体であって、可変領域および不変領域がマウス起源であ
るもの。
９． 請求項６に記載のキメラ抗体であって、その可変領域がヒトＴＮＦαの中和作用を
有するエピトープに結合する高親和性マウスモノクローナル抗体から誘導されるもの。
１０． 請求項９に記載のキメラ抗体であって、該マウスモノクローナル抗体がＡ２また
はｃＡ２のＴＮＦαに対する結合を競合的に阻害するするもの。
１１． 請求項９に記載のキメラ抗体であって、該マウスモノクローナル抗体がＡ２であ
るもの。
１２． 請求項６に記載のキメラ抗体であって、会合定数（Ｋａ）で示される親和性が少
なくとも１ｘ１０⁸ｌ／ｍｏｌであるもの。
１３． 請求項６に記載のキメラ抗体であって、会合定数（Ｋａ）で示される親和性が少
なくとも１ｘ１０⁹ｌ／ｍｏｌであるもの。
１４． 請求項６に記載のキメラ抗体であって、少なくとも１μｇ／ｍｌで、ＩＤ５０で
ヒトＴＮＦαを中和するもの。
１５． 請求項６に記載のキメラ抗体であって、少なくとも１００ｎｇ／ｍｌで、ＩＤ５
０でヒトＴＮＦαを中和するもの。
１６． 請求項６に記載のキメラ抗体であって、少なくとも１５ｎｇ／ｍｌで、ＩＤ５０
でヒトＴＮＦαを中和するもの。
１７． 請求項６に記載のキメラ抗体であって、検出可能にラベルされているもの。
１８． 請求項１に記載のモノクローナル抗体であって、ハイブリドーマにより、または
組換えにより産生される検出可能にラベルされたもの。
１９． 請求項１に記載のモノクローナル抗体であって、ｈＴＮＦαの残基８７−１０８
、または５９−８０および８７−１０８の両者と結合する抗原結合領域を有するもの。
２０． 請求項１に記載のモノクローナル抗体であって、それ自身、そのフラグメント、
または領域がＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１のｈＴＮＦαのアミノ酸１１−１３、３７−４２、４
９−５７または１５５−１５７に含まれる１個以上のエピトープに結合しないもの。
２１． （ａ）モノクローナル抗体Ａ２のマウスモノクローナル抗体、または
（ｂ）モノクローナル抗体ｃＡ２のマウス／ヒトーキメラモノクローナル抗体に相当する
抗ＴＮＦ結合領域またはそのフラグメントを有する抗ＴＮＦ抗体。
２２． ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１のアミノ酸残基８７−１０８または５９−８０および８７
−１０８の両者からなる群から選ばれる少なくとも５個のアミノ酸からなるＴＮＦペプチ
ドであって、ＴＮＦのＴＮＦレセプターへの結合を実質的に阻害するように、レセプター
結合配列と結合することによる抗ＴＮＦ生物学的活性を有する抗ＴＮＦ抗体のエピトープ
を有するＴＮＦポリペプチド。
２３． 請求項２２に記載のＴＮＦポリペプチドであって、実質的に、
ＳＥＤ ＩＤ ＮＯ：１のアミノ酸５９−８０ としてのＴｙｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｎ−Ｖａｌ
−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｌｙｓ−Ｇｌｙ−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｃｙｓ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｔｈｒ
−Ｈｉｓ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｔｈｒ−Ｈｉｓ−Ｔｈｒ−Ｉｒｅ； および
ＳＥＤ ＩＤ ＮＯ：１のアミノ酸８７−１０８としてＴｙｒ−Ｇｌｎ−Ｔｈｒ−Ｌｙｓ−
Ｖａｌ−Ａｓｎ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｓｅｒ−Ａｌａ−Ｉｌｅ−Ｌｙｓ−Ｓｅｒ−Ｐｒｏ−
Ｃｙｓ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｇｌｕ−Ｔｈｒ−Ｐｒｏ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙの少なくとも一つの
配列の３ないし２２個のアミノ酸からなるＴＮＦポリペプチド。
２４． 請求項１に記載の抗体もしくはそのフラグメント、領域部分、またはその薬学的
に許容されエステル、エーテル、硫酸塩、炭酸塩、グルクロン化物もしくはその塩、およ
び薬学的に許容される担体からなる薬学的組成物。
２５． 単離ＴＮＦポリヌクレオチドであって、請求項６に記載の抗体をコードするヌク
レオチド配列からなり、該ヌクレオチド配列が、少なくとも一つの不変領域との作動連関
（連鎖）において少なくとも一つの不変領域をコードするヌクレオチド配列からなるポリ
ヌクレオチド。
２６． 請求項２５に記載のポリヌクレオチドであって、ゲノムＤＮＡ配列またはｃＤＮ
Ａ配列から選ばれるヌクレオチド配列を有するもの。
２７． 請求項２５に記載のポリヌクレオチドであって、それ自身が発現担体であるもの
。
２８． 請求項２５に記載のポリヌクレオチドで転換され、またはトランスフェクトされ
た宿主。
２９． 請求項２８に記載の宿主であって、真核細胞または細菌細胞であるもの。
３０． 請求項２９に記載の宿主であって、哺乳類の細胞であるもの。
３１． 請求項６に記載の抗体またはそのフラグメント、領域部分の製法であって、
（ａ）請求項２８に記載の宿主を抗体が回収可能の量で発現するように培養し、
（ｂ）該抗体、またはそのフラグメント、領域部分を宿主または培養物から回収すること
からなる製法。
３２． ＴＮＦαによって仲介される疾患を有する患者の治療法であって、患者に請求項
２４に記載の薬学的組成物の治療量を投与することからなる治療法。
３３． ＴＮＦαによって仲介される疾患を有する患者の治療法であって、患者に請求項
４２に記載の薬学的組成物の治療量を投与することからなる治療法。
３４． 試料からＴＮＦαもしくはそのフラグメントまたは該ＴＮＦαを含む免疫複合体
から該ＴＮＦαを除去するための、
（ａ）該試料を、請求項１に記載の抗体またはそのフラグメント、領域部分であって、該
ＴＮＦα、その部分または免疫複合体が固定された抗体、フラグメント、または領域部分
が可逆的に結合して、結合したＴＮＦα、その部分または免疫複合体を生成するように支
持体に結合されたもの、を含む手段と接触させ、
（ｂ）該結合抗体、フラグメント、または領域部分から、結合したＴＮＦα、その部分、
または免疫複合体を回収することからなる方法。
３５． 試料からＴＮＦαもしくはそのフラグメントまたは該ＴＮＦαを含む免疫複合体
から該ＴＮＦαを除去するための、
（ａ）該試料を、請求項６に記載の抗体またはそのフラグメント、領域部分であって、該
ＴＮＦα、その部分または免疫複合体が固定された抗体、フラグメント、または領域部分
に可逆的に結合して、結合したＴＮＦα、その部分または免疫複合体を生成するように支
持体に結合されたもの、を含む装置と接触させ、
（ｂ）該結合抗体、フラグメント、または領域部分から、結合したＴＮＦα、その部分、
または免疫複合体を回収することからなる方法。
３６． 体液中の高レベルのＴＮＦαに関係する疾患または症状を有することを疑われて
いる患者を治療するための、
（ａ）請求項３４に記載の方法によって、該体液から該ＴＮＦαを除去し、
（ｂ）該体液を患者に戻すことからなる方法。
３７． 体液中の高レベルのＴＮＦαに関係する疾患または症状を有することを疑われて
いる患者を治療するための、
（ａ）請求項３５に記載の方法によって、該体液から該ＴＮＦαを除去し、
（ｂ）該体液を患者に戻すことからなる方法。
３８． 試料中のヒトのＴＮＦα検出する免疫検定方法であって、
（ａ）該試料を請求項１に記載の抗体、またはそのフラグメント、領域部分と接触させ、
（ｂ）抗体と該ＴＮＦαの結合を検出することからなる方法。
３９． 試料中のヒトのＴＮＦα検出する免疫検定方法であって、
（ａ）該試料を請求項６に記載の抗体、またはそのフラグメント、領域部分と接触させ、
（ｂ）抗体と該ＴＮＦαの結合を検出することからなる方法。
４０． 請求項３２に記載の患者の治療方法であって、該疾患が敗血症症侯群、悪液質、
循環虚脱、急性および慢性の細菌感染、ウィルス感染、真菌感染によるショック、紅斑性
狼蒼、リウマチ性関節炎、アルコール誘発性肝炎、慢性炎症性疾患、脈管炎症性疾患、Ｇ
ＶＨ疾患、カイサキ病、および悪性疾患の一つである方法。
４１． 請求項３３に記載の患者の治療方法であって、該疾患が敗血症症侯群、悪液質、
循環虚脱、急性および慢性の細菌感染、ウィルス感染、真菌感染によるショック、紅斑性
狼蒼、リウマチ性関節炎、アルコール誘発性肝炎、慢性炎症性疾患、脈管炎症性疾患、Ｇ
ＶＨ疾患、カイサキ病、および悪性疾患の一つである方法。
４２． 請求項６に記載の抗体、もしくはそのフラグメント、領域部分、またはその薬学
的に許容されるエステル、エーテル、硫酸塩、炭酸塩、グルコン化物もしくはその塩と、
薬学的に許容できる担体からなる薬学的組成物。

予想外のこととして、本発明のｍＡｂｓは、ＥｃｋおよびＳｐｒａｎｇ（Ｊ．Ｂｉｏ１
．Ｃｈｅｍ．，２６４（２９），１７５９５−１７６０５（１９８９）によって、（ＳＥ
Ｑ ＩＤ ＮＯ：１における）ｈＴＮＦαの１１−１３、３７−４２、４９−５７および１
５５−１５７である複数のアミノ酸であるとして示されたように、推定されたレセプター
結合位置に結合することなく、ＴＮＦ−αの活動を遮断することができる。

図１は、ヒトＴＮＦαに対する、マウスｍＡｂ Ａ２の結合に依存する用量（原文；ｄｏｓｅ）を示すグラフである。 図２は、ｍＡｂ Ａ２による、熱で不活性化されたヒトＴＮＦαの認識の欠如を示すグラフである。 図３は、ネズミのＡ２による生体内でのＴＮＦ細胞毒作用の中和を示すグラフである。対照：天然のヒトＴＮＦを有する、ネズミのＩｇＧ１抗脂質Ａ ｍＡｂ（８Ａ１）。対照に対する平均吸光度値は次のとおりである：ＴＮＦなし＝１．０８；天然ＴＮＦ、抗体なし＝０．２９０；組み替えＴＮＦ、抗体なし＝０．５００。 図４は、ｍＡｂ Ａ２およびキメラＡ２がヒトリンホトキシン（ＴＮＦβ）を阻害または中和しないことを示すグラフである。 図５は、ｍＡｂネズミＡ２およびキメラＣＡ２がネズミＴＮＦαを阻害または中和しないことを示すグラフである。 図６は、ｍＡｂ Ａ２が、チンパンジー単球およびｒｈＴＮＦαによって産生されたＴＮＦを阻害または中和することを示すグラフである。 図７は、ｍＡｂ Ａ２が、チンパンジー単球およびｒｈＴＮＦαによって産生されたＴＮＦを阻害または中和することを示すグラフである。 図８は、キメラＡ２抗体のキメラＨ鎖（ｐＡ２ＨＧ１ａｐｇｐｔ）およびキメラＬ鎖（ｐＡ２ＨｕＫａｐｇｐｔ）の発現のために使用されたプラスミドを示す模式図である。 図９は、ネズミのＡ２（ｍＡ２）およびキメラ抗体（ｃＡ２）で競合的にエピトープ ＥＬＩＳＡを交差ブロック（原文；ｃｒｏｓｓ−ｂｌｏｃｋｉｎｇ）した結果を示すグラフである。 図１０は、マイクロタイタープレート（原文；ｍｉｃｒｏｔｉｔｅｒ）上に固定された組み換えヒトＴＮＦαに結合する、¹²⁵ＩでラベルされたｍＡｂ Ａ２（ｍＡ２）およびキメラＡ２（ｃＡ２）に関するスキャチャード分析のグラフである。各Ｋａ値は、二つの独立した測定値の平均から計算された。 図１１は、キメラＡ２によるＴＮＦ細胞毒作用の中和を示すグラフである。対照は、天然のヒトＴＮＦと反応するキメラマウス／ヒトＩｇＧ１抗血小板ｍＡｂ（７Ｅ３）である。対照に対する平均吸光度値は、ＴＮＦなし＝１．０８；天然ＴＮＦ、Ａｂなし＝０．２９０；組み換えＴＮＦ、Ａｂなし＝０．５００である。 図１２は、キメラＡ２による、ＴＮＦ導入ＥＬＡＭ−１発現の生体外（原文；ｉｎ ｖｉｔｒｏ）での中和を示すグラフである。対照は、キメラマウス／ヒトＩｇＧ抗ＣＤ４抗体である。 図１３は、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１としての、ヒトＴＮＦのアミノ酸の配列を示す。 図１４Ａは、ヒトＴＮＦペプチドピンヘのｃＡ２の相対的な結合を示すキメラｍＡｂ ｃＡ２のエピトープ地図を示すグラフ表示である。 図１４Ｂは、ヒトＴＮＦの存在下におけるヒトＴＮＦペプチドピンヘのｃＡ２の相対的な結合を示すキメラｍＡｂ ｃＡ２のエピトープ地図を示すグラフ表示である。 図１５は、ｃＡ２により認識されたエピトープの部分を有する配列を示している、ヒトＴＮＦのアミノ酸配列を表す。 図１６は、ヒトＴＮＦモノマーのモデルを示す三次元画像およびｃＡ２により認識されたヒトＴＮＦの非隣接ペプチド配列のモデルを示す三次元画像である。

Claims (1)

1. ヒト免疫グロブリンの定常領域の少なくとも一部および非ヒト免疫グロブリンの可変領域を含むキメラ抗腫瘍壊死因子α（TNFα）モノクローナル抗体であって、
   親和定数（Ka）として測定される少なくとも1.8×10⁹L／molの親和性でTNFαに結合し；
   かつ、オーバーラップする複数のTNFフラグメントのペプチドピンを合成することを含むエピトープマッピング法により決定されるSEQ ID NO: 1の５９−８０位および８７−１０８位のアミノ酸残基内のヒトTNFαのエピトープでTNFαに結合する、前記キメラ抗TNFαモノクローナル抗体。

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