JP2007132776A - Cell-immobilizing solution, and container containing it - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、細胞固定液に関する。より詳細には、細胞診検査用の標本を作製するために細胞を固定するための細胞固定液、該細胞固定液を含む容器、および該細胞固定液を用いた細胞診検査用標本の作製方法に関する。 The present invention relates to a cell fixing solution. More specifically, a cell fixing solution for fixing cells to prepare a specimen for cytodiagnosis examination, a container containing the cell fixing solution, and a method for preparing a specimen for cytodiagnosis examination using the cell fixing solution About.
従来、細胞診検査は、主として、スメアー標本などのスライド直接塗抹法により行われていた。しかし、スメアー法では、採取器具に付着した採取物を直接スライドガラスに塗抹するため、採取物に含まれる細胞を、すべてスライドガラスに塗抹することが困難であった。したがって、採取した細胞の中で、重要な細胞を捨ててしまうこともあり、正確な診断ができず、誤診にもつながっていた。 Conventionally, cytological examinations have been performed mainly by a slide direct smear method such as a smear specimen. However, in the smear method, the collected material adhering to the collection device is directly smeared on the slide glass, so that it was difficult to smear all the cells contained in the collected material on the slide glass. Therefore, in the collected cells, important cells may be discarded, and an accurate diagnosis cannot be made, leading to misdiagnosis.
さらに、採取物を直接スライドガラスに塗抹するため、例えば、血液が付着した採取物を用いた場合、この血液が誤って作業者の指などに付着することがあった。すなわち、作業者は、血液感染症のリスクなどに曝されていた。 Furthermore, since the collected material is smeared directly on the slide glass, for example, when a collected material to which blood adheres is used, this blood may accidentally adhere to an operator's finger or the like. That is, the worker was exposed to the risk of blood infection.
そこで、近年、液状固定処理細胞診(LBC)が導入され始め、医療機関からのニーズが増大している。LBCでは、採取物が付着した器具などを細胞固定液に直接浸漬するため、採取物に含まれる細胞をすべて利用することができ、さらに、採取物を直接スライドガラスに塗抹しないので、作業者の感染症のリスクなども低減される。また、細胞変性を伴う生検体や穿刺吸引検体についても、従来は採取当日にスライドガラスに塗抹し、固定処理まで行わなければならなかったが、LBCにより、細胞の固定および保存が可能となり、一旦固定保存した後に標本を作製できるようになった(例えば、非特許文献1〜5参照)。 Thus, in recent years, liquid fixed cytology (LBC) has begun to be introduced, and needs from medical institutions are increasing. In LBC, since the instrument attached to the sample is directly immersed in the cell fixing solution, all cells contained in the sample can be used, and the sample is not smeared directly on the slide glass. The risk of infection is also reduced. In addition, for biological specimens with cell degeneration and puncture aspirate specimens, conventionally, the specimen had to be smeared on a slide glass on the day of collection and until the fixing process was performed. A specimen can be prepared after fixed storage (for example, see Non-Patent Documents 1 to 5).
しかし、血液が混入した検体に対して現在市販されているLBC用細胞固定液を用いると、細胞と赤血球とが一緒に固定されて血液の塊が生じる。そのため、目的とする細胞の検鏡が困難となる。したがって、血液が混入した検体を用いる場合、細胞を固定させる前に、予め血液除去処理を行わなければならず、標本作製に長時間を要する。さらに、血液除去処理中に、重要な細胞が破壊されたり、血液と一緒に除去されたりするおそれもある。
本発明の目的は、検体が血液を含む場合であっても、迅速かつ容易に細胞診検査用標本を作製するための細胞固定液、該細胞固定液を含む容器、および該細胞固定液を用いた細胞診検査用標本の作製方法を提供することにある。 An object of the present invention is to use a cell fixing solution, a container containing the cell fixing solution, and the cell fixing solution for quickly and easily preparing a specimen for cytodiagnosis even when the specimen contains blood. It is to provide a method for preparing a specimen for cytodiagnosis.
本発明は、溶血剤、細胞固定剤、およびグリセロールを有効成分とする、細胞固定液を提供する。 The present invention provides a cell fixing solution containing a hemolytic agent, a cell fixing agent, and glycerol as active ingredients.
1つの実施態様では、上記細胞固定液中の上記グリセロールの量は、上記溶血剤による溶血作用が完了した後に上記細胞固定剤による固定作用が生じるように調節されている。 In one embodiment, the amount of the glycerol in the cell fixing solution is adjusted such that the fixing action by the cell fixing agent occurs after the hemolytic action by the hemolytic agent is completed.
ある実施態様では、上記溶血剤は、ラウリル硫酸ナトリウムおよび塩化アンモニウムからなる群より選択される少なくとも1つであり、そして上記細胞固定剤は、エタノールおよび2−プロパノールからなる群より選択される少なくとも1つである。 In one embodiment, the hemolytic agent is at least one selected from the group consisting of sodium lauryl sulfate and ammonium chloride, and the cell fixative is at least one selected from the group consisting of ethanol and 2-propanol. One.
さらなる実施態様では、上記細胞固定液は、上記グリセロール100mLに対して、上記溶血剤を0.5〜6gおよび上記固定剤を100〜800mLの割合で含有する。 In a further embodiment, the cell fixing solution contains 0.5 to 6 g of the hemolytic agent and 100 to 800 mL of the fixing agent with respect to 100 mL of the glycerol.
本発明はまた、上記のいずれかの細胞固定液を含有する、細胞固定用容器を提供する。 The present invention also provides a cell fixing container containing any of the cell fixing solutions described above.
本発明はさらに、上記のいずれかの細胞固定液および該細胞固定液を装填するための容器を備える、細胞固定用キットを提供する。 The present invention further provides a cell fixing kit comprising any one of the cell fixing solutions described above and a container for loading the cell fixing solution.
1つの実施態様では、上記細胞固定用キットにおいて、上記細胞固定液は上記容器中に装填されている。 In one embodiment, in the cell fixing kit, the cell fixing solution is loaded in the container.
本発明は、上記のいずれかの細胞固定液に、細胞を含む検体を投入する工程を含む、細胞の固定方法を提供する。 The present invention provides a method for fixing cells, comprising the step of introducing a specimen containing cells into any of the above cell fixing solutions.
1つの実施態様では、本発明の細胞の固定方法は、
上記投入工程終了直後に上記検体を含む細胞固定液を遠心分離して沈渣を得る工程;および
該沈渣に、上記のいずれかの細胞固定液を投入する工程;
をさらに含む。
In one embodiment, the cell fixation method of the present invention comprises:
A step of centrifuging the cell fixing solution containing the sample immediately after the completion of the adding step to obtain a sediment; and a step of introducing any of the cell fixing solutions described above into the sediment;
Further included.
本発明はまた、細胞診検査用標本の作製方法を提供し、該方法は、
上記のいずれかの細胞固定液に、細胞を含む検体を投入し、少なくとも30分間放置する工程;
該放置した細胞固定液を遠心分離して沈渣を得る工程;および
該沈渣を、スライドガラスに塗抹する工程;
を包含する。
The present invention also provides a method for preparing a specimen for cytological examination, the method comprising:
Placing a sample containing cells into any of the cell fixatives described above and allowing to stand for at least 30 minutes;
Centrifuging the left cell fixing solution to obtain a sediment; and smearing the sediment on a slide glass;
Is included.
本発明はさらに、他の細胞診検査用標本の作製方法を提供し、該方法は、
上記のいずれかの細胞固定液に、細胞を含む検体を投入する工程;
該投入工程終了直後に該検体を含む細胞固定液を遠心分離して沈渣を得る工程;
該沈渣に、上記のいずれかの細胞固定液を投入し、少なくとも30分間放置する工程;
該放置した細胞固定液を遠心分離して沈渣を得る工程;および
該沈渣を、スライドガラスに塗抹する工程;
を包含する。
The present invention further provides a method for preparing another specimen for cytodiagnosis, which comprises:
Introducing a specimen containing cells into any of the above cell-fixing solutions;
A step of centrifuging the cell fixing solution containing the sample immediately after the completion of the adding step to obtain a sediment;
A step of adding any of the above cell fixatives to the sediment and allowing to stand for at least 30 minutes;
Centrifuging the left cell fixative to obtain a sediment; and smearing the sediment on a slide glass;
Is included.
本発明によれば、溶血剤、細胞固定剤、およびグリセロールを有効成分とする細胞固定液が提供される。この細胞固定液を用いると、血液を含む検体であっても、血液を除去する工程を必要とせず、しかもこの細胞固定液中で、赤血球が溶血され血液の塊を生じさせることなく、有核細胞のみが固定される。また、1つの細胞固定液を1つの容器内で用いることにより、迅速かつ容易に細胞固定が行われ得る。そのため、検鏡しやすい細胞診検査用標本を短時間で容易に作製することができる。 According to the present invention, a cell fixing solution containing a hemolytic agent, a cell fixing agent, and glycerol as active ingredients is provided. When this cell fixative is used, even if it is a specimen containing blood, there is no need for a step of removing blood, and in this cell fixative, erythrocytes are hemolyzed and blood clots are not formed. Only cells are fixed. Moreover, cell fixation can be performed quickly and easily by using one cell fixing solution in one container. Therefore, it is possible to easily produce a specimen for cytological examination that is easy to microscopically in a short time.
(I)細胞固定液
本発明の細胞固定液は、溶血剤、細胞固定剤、およびグリセロールを有効成分として含有する。本発明は、一定の溶血剤および細胞固定剤の濃度下において、両者の作用速度がグリセロールの溶解濃度に対してほぼ反比例するため、細胞固定液中のグリセロールの量により、溶血作用および細胞固定作用の速度をコントロールできることを見い出したことに基づく。
(I) Cell fixing solution The cell fixing solution of the present invention contains a hemolytic agent, a cell fixing agent, and glycerol as active ingredients. According to the present invention, since the action speed of both of the hemolytic agent and the cell fixing agent is almost inversely proportional to the dissolution concentration of glycerol, the hemolytic action and the cell fixing action are determined depending on the amount of glycerol in the cell fixing solution. Based on finding out that it can control the speed of.
具体的には、溶血作用速度は一定の溶血剤の濃度下でグリセロール濃度を上げていくとその速度は低下し、同様に細胞の固定作用速度も一定の細胞固定剤の濃度下でグリセロール濃度を上げて行くとその速度は低下する。それぞれの作用速度は、グリセリン濃度と反比例しており、実際には、作用速度とは、各作用の開始時間の遅延ならびに開始から完了までの作用時間の延長を指す。さらに、これらの薬剤のそれぞれの異なった作用速度(溶血剤>>細胞固定剤)は、溶血剤と細胞固定剤との一定の濃度比の下でグリセロールの濃度を上げて行くと、それぞれの作用速度の低下の割合の差により、両者に作用の時間差が生じる(図1を参照のこと)。このため、本発明においては、溶血と細胞固定とを1つの細胞固定液で行うことが可能になった。以下、細胞固定液について詳細に説明する。 Specifically, the rate of hemolysis decreases as the glycerol concentration increases at a constant hemolytic agent concentration, and similarly, the rate of cell fixation also decreases the glycerol concentration at a constant cell fixing agent concentration. As you go up, the speed decreases. The rate of action of each is inversely proportional to the glycerin concentration. In practice, the rate of action refers to the delay in the start time of each action and the extension of the action time from start to completion. In addition, the different rates of action of each of these drugs (hemolytic agent >> cell fixative) can be achieved by increasing the concentration of glycerol under a certain concentration ratio of hemolyzer and cell fixative. Due to the difference in the rate of speed reduction, there is a time difference in action between the two (see FIG. 1). For this reason, in the present invention, hemolysis and cell fixation can be performed with one cell fixing solution. Hereinafter, the cell fixing solution will be described in detail.
(1)溶血剤
本発明の細胞用固定液に含有される溶血剤は、赤血球を破壊し溶血させ得る物質であれば、特に限定されない。例えば、サポニン、塩化アンモニウム、ラウリル硫酸ナトリウム(SDS)などが挙げられる。これらは、単独で用いても、2種以上組み合わせて用いてもよい。例えば、ラウリル硫酸ナトリウム(SDS)と塩化アンモニウムとの組み合わせが用いられる。
(1) Hemolytic agent The hemolytic agent contained in the cell fixing solution of the present invention is not particularly limited as long as it is a substance capable of destroying red blood cells and causing hemolysis. For example, saponin, ammonium chloride, sodium lauryl sulfate (SDS) and the like can be mentioned. These may be used alone or in combination of two or more. For example, a combination of sodium lauryl sulfate (SDS) and ammonium chloride is used.
(2)細胞固定剤
本発明の細胞用固定液に含有される細胞固定剤としては、通常LBCで用いられる固定剤が挙げられ、例えば、エタノール、メタノール、2−プロパノールなどが挙げられる。これらは、単独で用いても、2種以上組み合わせて用いてもよい。例えば、エタノールと2−プロパノールとの組み合わせが用いられる。上記の溶血剤は、赤血球を溶血破壊させると同時に他の有核細胞も変性・破壊する。しかし、アルコールなどで完全に固定された細胞においては、溶血剤を過剰に(例えば、通常の数十倍量)加えても、赤血球を含む細胞の形態に変化は見られない。すなわち、アルコールなどの細胞固定剤による固定作用は、同時に溶血作用の停止剤としての作用も担うことができる。
(2) Cell fixative Examples of the cell fixative contained in the cell fixative of the present invention include fixatives commonly used in LBC, such as ethanol, methanol, 2-propanol, and the like. These may be used alone or in combination of two or more. For example, a combination of ethanol and 2-propanol is used. The hemolytic agent described above causes hemolysis and destruction of erythrocytes and at the same time denatures and destroys other nucleated cells. However, in cells completely fixed with alcohol or the like, even if a hemolytic agent is added in excess (for example, several tens of times the usual amount), there is no change in the morphology of cells containing erythrocytes. That is, the fixing action by a cell fixing agent such as alcohol can also act as a hemolytic action stop agent at the same time.
(3)グリセロール
本発明の細胞固定液に含有されるグリセロールは、溶血速度および細胞の固定速度の調節、細胞の乾燥防止および形態保持、細胞のスライドガラス塗抹の貼り付きの増強、細胞固定液の比重を高めることによる細胞の沈殿速度の低下などの作用を有する。本発明の細胞固定液に用いられるグリセロールは、特に限定されず、市販品などを適宜用い得る。
(3) Glycerol Glycerol contained in the cell fixing solution of the present invention adjusts the hemolysis rate and cell fixing rate, prevents cell drying and maintains its shape, enhances the adhesion of cell slide glass smears, It has effects such as a decrease in the sedimentation rate of cells by increasing the specific gravity. Glycerol used in the cell fixing solution of the present invention is not particularly limited, and commercially available products can be used as appropriate.
(4)細胞固定液
本発明の細胞固定液は、グリセロールを含有するため、当該細胞固定液の粘度が高くなっている。そのため、溶血速度および細胞の固定速度がそれぞれ低下し、それによって溶血速度および細胞の固定速度が調節され得る。すなわち、一定の溶血剤および細胞固定剤の濃度下において、両者の作用速度がグリセロールの溶解濃度の上昇に伴って低下するので、細胞固定液中のグリセロールの量を調節することにより、溶血作用および細胞固定作用の速度をコントロールできる。
(4) Cell fixative Since the cell fixative of the present invention contains glycerol, the viscosity of the cell fixative is high. Therefore, the hemolysis rate and the cell fixation rate are decreased, respectively, whereby the hemolysis rate and the cell fixation rate can be adjusted. That is, under a certain concentration of hemolytic agent and cell fixing agent, the rate of action of both decreases as the glycerol dissolution concentration increases, so that by adjusting the amount of glycerol in the cell fixing solution, hemolysis and Control the rate of cell fixation.
本発明においては、物質に影響を与えずそして高比重、高粘度、水溶性、かつ透明であるグリセロールを加えることにより、先に溶血作用を完了させ、次に固定作用が起こり、かつ有核細胞への溶血剤による変性の影響を最小限に抑えるようにそれぞれの量が調節される。したがって、溶血終了から細胞の固定開始までの間に時間差を設けることができ、細胞膜の弱い赤血球は、固定されずに破壊され、赤血球以外の有核細胞は、破壊されずに固定される。また、時間差を設けることにより、高比重の細胞固定液中で浮遊している破壊・溶血した赤血球のほとんどを、遠心分離などにより分離・除去することも可能である。 In the present invention, by adding glycerol that does not affect the substance and has high specific gravity, high viscosity, water solubility and transparency, the hemolysis action is completed first, then the fixation action occurs, and nucleated cells Each amount is adjusted so as to minimize the effects of hemolytic denaturation. Therefore, a time difference can be provided between the end of hemolysis and the start of cell fixation. Red blood cells with weak cell membranes are destroyed without being fixed, and nucleated cells other than red blood cells are fixed without being destroyed. In addition, by providing a time difference, it is possible to separate and remove most of the broken and hemolyzed red blood cells floating in the high specific gravity cell fixing solution by centrifugation or the like.
したがって、本発明の細胞固定液は、上記溶血剤、細胞固定剤、およびグリセロールの量が、溶血剤による溶血作用が完了した後に上記細胞固定剤による固定作用が生じるように調節される。これらの量は、溶血剤および細胞固定剤の種類に応じて適宜決定され得る。本発明の細胞固定液に含まれる溶血剤の量は、検体中に混入し得る赤血球を溶血させるに十分な量であり、そして細胞固定剤の量は、検体中に含まれる細胞を固定するに十分な量である。 Therefore, in the cell fixing solution of the present invention, the amounts of the hemolytic agent, the cell fixing agent, and glycerol are adjusted so that the fixing action by the cell fixing agent occurs after the hemolytic action by the hemolytic agent is completed. These amounts can be appropriately determined depending on the types of hemolytic agent and cell fixing agent. The amount of the hemolytic agent contained in the cell fixing solution of the present invention is an amount sufficient to hemolyze erythrocytes that can be mixed in the sample, and the amount of the cell fixing agent is used to fix the cells contained in the sample. It is a sufficient amount.
例えば、溶血剤は、グリセロール100mLに対して、好ましくは0.5〜6g、より好ましくは1〜5g、さらに好ましくは1.5〜4gの割合で含有される。溶血剤がSDSと塩化アンモニウムとの組み合わせである場合、グリセロール100mLに対して、SDSおよび塩化アンモニウムの合計量は好ましくは2.5〜3.5gであり得る。この場合のSDSと塩化アンモニウムとの質量比は、好ましくは1:1〜1:30、より好ましくは1:1.5〜1:10、さらに好ましくは1:2〜1:6である。 For example, the hemolytic agent is contained in an amount of preferably 0.5 to 6 g, more preferably 1 to 5 g, and still more preferably 1.5 to 4 g with respect to 100 mL of glycerol. When the hemolytic agent is a combination of SDS and ammonium chloride, the total amount of SDS and ammonium chloride may preferably be 2.5-3.5 g per 100 mL of glycerol. In this case, the mass ratio of SDS to ammonium chloride is preferably 1: 1 to 1:30, more preferably 1: 1.5 to 1:10, and still more preferably 1: 2 to 1: 6.
例えば、細胞固定剤は、グリセロール100mLに対して、好ましくは100〜800mL、より好ましくは200〜700mL、さらに好ましくは300〜600mLの割合で含有される。細胞固定剤がエタノールおよび2−プロパノールである場合は、グリセロール100mLに対して、エタノールおよび2−プロパノールの合計量は好ましくは350〜500mLであり得る。この場合のエタノールと2−プロパノールとの質量比は、好ましくは1:0.2〜1:8、より好ましくは1:0.3〜1:3、さらに好ましくは1:0.4〜1:1である。 For example, the cell fixing agent is contained in a proportion of preferably 100 to 800 mL, more preferably 200 to 700 mL, and still more preferably 300 to 600 mL with respect to 100 mL of glycerol. When the cell fixing agent is ethanol and 2-propanol, the total amount of ethanol and 2-propanol can be preferably 350 to 500 mL with respect to 100 mL of glycerol. In this case, the mass ratio of ethanol to 2-propanol is preferably 1: 0.2 to 1: 8, more preferably 1: 0.3 to 1: 3, and still more preferably 1: 0.4 to 1: 1.
さらに、溶血剤と細胞固定剤との質量比は、好ましくは1:20〜1:800、より好ましくは1:50〜1:600、さらに好ましくは1:80〜1:400である。例えば、溶血剤がSDSおよび細胞固定剤がエタノールである場合は、好ましくは1:100〜1:200である。 Furthermore, the mass ratio of the hemolytic agent to the cell fixing agent is preferably 1:20 to 1: 800, more preferably 1:50 to 1: 600, and still more preferably 1:80 to 1: 400. For example, when the hemolytic agent is SDS and the cell fixing agent is ethanol, the ratio is preferably 1: 100 to 1: 200.
本発明の細胞固定液は、一般的には、上記の成分以外に、当業者が通常用いる媒体および添加剤を含有し得る。媒体は、細胞固定液自体の粘度を調節するなどの目的で用いられる。このような媒体としては、例えば、生理食塩水、リン酸緩衝化生理食塩液(pH7.4)などが挙げられる。添加剤は、グリセロールによる細胞の乾燥防止および保護、スライドガラスへの細胞の塗抹(貼り付き)の増強、細胞固定液の高比重化などの目的で用いられる。このような添加剤としては、例えば、ポリエチレングリコールなどが挙げられる。 In general, the cell fixing solution of the present invention may contain media and additives commonly used by those skilled in the art, in addition to the components described above. The medium is used for the purpose of adjusting the viscosity of the cell fixing solution itself. Examples of such a medium include physiological saline and phosphate buffered physiological saline (pH 7.4). The additive is used for the purpose of preventing and protecting the cells with glycerol, enhancing the smearing (attaching) of the cells on the slide glass, and increasing the specific gravity of the cell fixing solution. Examples of such additives include polyethylene glycol.
例えば、媒体は、グリセロール100mLに対して、好ましくは100〜800mL、より好ましくは200〜700mL、さらに好ましくは300〜600mLの割合で含有される。媒体が生理食塩水である場合、グリセロール100mLに対して、生理食塩水は好ましくは350〜500mLであり得る。 For example, the medium is contained in a proportion of preferably 100 to 800 mL, more preferably 200 to 700 mL, and still more preferably 300 to 600 mL with respect to 100 mL of glycerol. When the medium is physiological saline, the physiological saline can be preferably 350 to 500 mL with respect to 100 mL of glycerol.
例えば、添加剤は、グリセロール100mLに対して、好ましくは0.01〜15g、より好ましくは0.03〜10g、さらに好ましくは0.05〜8gの割合で含有される。添加剤がポリエチレングリコールである場合、グリセロール100mLに対して、ポリエチレングリコールは好ましくは0.08〜4gであり得る。 For example, the additive is contained in an amount of preferably 0.01 to 15 g, more preferably 0.03 to 10 g, and still more preferably 0.05 to 8 g with respect to 100 mL of glycerol. When the additive is polyethylene glycol, the polyethylene glycol can preferably be 0.08-4 g per 100 mL of glycerol.
細胞固定液の使用量は、検体の量に応じて適宜決定される。例えば、検体の量が0.1〜0.4mLの場合は、細胞固定液の量は5〜10mLであり、検体の量が0.4〜2.0mLの場合は、細胞固定液の量は10〜20mLであり、検体の量が0.5〜20mLの場合は、細胞固定液の量は20〜30mLである。 The amount of cell fixative used is appropriately determined according to the amount of specimen. For example, when the amount of the sample is 0.1 to 0.4 mL, the amount of the cell fixative is 5 to 10 mL, and when the amount of the sample is 0.4 to 2.0 mL, the amount of the cell fixative is When the amount is 10 to 20 mL and the amount of the specimen is 0.5 to 20 mL, the amount of the cell fixing solution is 20 to 30 mL.
(II)細胞固定用容器
本発明の細胞固定用容器は、上記細胞固定液を含有する。後述のように、固定された細胞、溶血赤血球などを遠心分離によって分離することを考慮すると、本発明の細胞固定用容器は、遠心分離を行うことが可能な容器であることが好ましい。
(II) Cell fixing container The cell fixing container of the present invention contains the cell fixing solution. As described later, in consideration of separating fixed cells, hemolyzed red blood cells, and the like by centrifugation, the cell fixing container of the present invention is preferably a container capable of performing centrifugation.
本発明の細胞固定用容器の材質は、特に制限されない。例えば、好ましくは、ポリエチレン(PE)、ポリプロピレン(PP)、ポリスチレン(PS)、ポリカーボネイト(PC)などが挙げられる。より好ましくは、遠心分離を行うことが可能な材質であり、このような材質としては、ポリプロピレン(PP)およびポリスチレン(PS)が挙げられる。また、容器の形状およびサイズも特に制限されず、当該分野で通常用いられる遠心分離機に搭載可能な形状およびサイズであればよい。 The material for the cell fixing container of the present invention is not particularly limited. For example, Preferably, polyethylene (PE), polypropylene (PP), polystyrene (PS), polycarbonate (PC), etc. are mentioned. More preferably, it is a material that can be centrifuged, and examples of such a material include polypropylene (PP) and polystyrene (PS). Further, the shape and size of the container are not particularly limited, and may be any shape and size that can be mounted on a centrifuge normally used in the field.
本発明の細胞固定用容器に含まれる細胞固定液の量は、上記のように、検体の量に応じて適宜決定される。また、細胞固定用容器の大きさ(容量)は、細胞固定液の量に応じて適宜決定される。細胞固定液は、細胞固定用容器の容量に対して、好ましくは40〜80容積%、より好ましくは60〜75容積%の割合で含有される。 The amount of the cell fixing solution contained in the cell fixing container of the present invention is appropriately determined according to the amount of the specimen as described above. Further, the size (capacity) of the cell fixing container is appropriately determined according to the amount of the cell fixing solution. The cell fixing solution is preferably contained in a proportion of 40 to 80% by volume, more preferably 60 to 75% by volume with respect to the capacity of the cell fixing container.
(III)細胞固定用キット
本発明の細胞固定用キットは、細胞固定液および該細胞固定液を装填するための容器を備える。好ましくは、該容器は遠心分離を行うことが可能であり得、上記(II)のように、細胞固定液が装填された細胞固定用容器を備える。必要に応じて、例えば、採取器具、追加用の細胞固定液、使用説明書などが含まれ得る。細胞固定用容器は、大きさの異なる細胞固定用容器を数個組み合わせてもよい。
(III) Cell fixing kit The cell fixing kit of the present invention comprises a cell fixing solution and a container for loading the cell fixing solution. Preferably, the container may be capable of performing centrifugation, and includes a cell fixing container loaded with a cell fixing solution as described in (II) above. If necessary, for example, collection devices, additional cell fixatives, instructions for use, and the like may be included. The cell fixing container may be a combination of several cell fixing containers having different sizes.
(IV)細胞の固定方法
本発明の細胞の固定方法は、本発明の細胞固定液に、細胞を含む検体を投入する工程(以下、「投入工程」という場合がある)を含む。検体に血液が多く混入している場合には、該投入工程終了直後に該検体を含む細胞固定液を遠心分離して沈渣を得る工程;および該沈渣に、本発明の細胞固定液を投入する工程をさらに含む。
(IV) Cell immobilization method The cell immobilization method of the present invention includes a step of introducing a specimen containing cells into the cell fixing solution of the present invention (hereinafter sometimes referred to as “input step”). When a lot of blood is mixed in the specimen, a step of centrifuging the cell fixing solution containing the specimen immediately after the completion of the adding step to obtain a sediment; and the cell fixing solution of the present invention is introduced into the sediment The method further includes a step.
本発明において、細胞を含む検体とは、一般的なLBC細胞診検査用の検体をいう。このような検体としては、婦人科検体(例えば、綿棒・ブラシなどによる膣頸部採取物、特殊器具による子宮内膜掻把物)、分泌液(乳汁・鼻汁など)、滲出液、擦過物(気管支・皮膚など)、穿刺物(肺・乳腺・甲状腺・耳下腺・皮下腫瘤など)、洗浄液沈渣(気管支・腹腔内・膀胱内など)、消化液、喀痰(3日間蓄痰など)、尿沈渣などが挙げられる。 In the present invention, the specimen containing cells refers to a specimen for general LBC cytodiagnosis examination. Such specimens include gynecological specimens (eg, vaginal neck collection with cotton swabs, brushes, endometrial scrapings with special instruments), secretions (milk, nasal discharge, etc.), exudates, scrapes ( Bronchi, skin, etc.), puncture (lung, breast, thyroid, parotid, subcutaneous mass, etc.), lavage fluid (bronchial, intraperitoneal, intravesical, etc.), digestive fluid, sputum (3-day accumulation, etc.), urine Examples include sediment.
投入工程では、上記の検体を本発明の細胞固定液に投入する。使用される細胞固定液の量は、上述のように、検体の量に応じて適宜決定され得る。例えば、綿棒、ブラシなどの採取器具による採取物の場合は、採取物が付着した部分を、任意の量の細胞固定液に浸漬すればよい。分泌液、滲出液、穿刺物などの場合は、これらを任意の量の細胞固定液に直接投入すればよい。投入後、検体と細胞固定液とを十分に攪拌し、細胞が固定されるまで静置する。この場合、細胞固定液中では、まず溶血が生じ、次いで細胞固定が始まる。細胞の固定は、通常、約30分で完了する。本発明においては、検体中に少量(例えば、50μL程度まで)の血液が混入している場合であっても、上記の操作によって十分に検鏡可能に細胞が固定され得る。 In the loading step, the sample is loaded into the cell fixing solution of the present invention. The amount of the cell fixing solution to be used can be appropriately determined according to the amount of the specimen as described above. For example, in the case of a collected material using a collection tool such as a cotton swab or a brush, the portion to which the collected material is attached may be immersed in an arbitrary amount of cell fixing solution. In the case of secretion fluid, exudate, puncture, etc., these may be directly put into an arbitrary amount of cell fixing solution. After the addition, the specimen and the cell fixing solution are sufficiently stirred and allowed to stand until the cells are fixed. In this case, hemolysis occurs first in the cell fixing solution, and then cell fixation starts. Cell fixation is usually complete in about 30 minutes. In the present invention, even when a small amount of blood (for example, up to about 50 μL) is mixed in the sample, the cells can be fixed sufficiently in a microscopic manner by the above operation.
一方、検体に血液が多く混入している場合、予め赤血球を除去することが好ましい。検体を細胞固定液に投入すると、直ちに赤血球は溶血破壊される。その後、細胞固定が開始されるまでの時間に遠心分離を行うと、溶血赤血球と検査対象の細胞とが分離され、高比重の細胞固定液中で溶血破壊した赤血球は上清に浮遊する。したがって、上清を除去することにより、溶血赤血球が除去され得る。本発明においては、遠心分離は、検体の投入後直ちに、好ましくは少なくとも120秒以内に行われる。遠心分離は、例えば、1600Gにて20〜50秒間行われる。上清の除去後、検査対象の細胞を含む沈渣に、本発明の細胞固定液を投入し、よく攪拌した後、細胞が固定されるまで(例えば、少なくとも30分間)静置する。ここで追加投入される細胞固定液の量は、沈渣の量に応じて適宜決定され、通常は最初に用いた細胞固定液と同量であり得る。 On the other hand, when a lot of blood is mixed in the specimen, it is preferable to remove red blood cells in advance. When the specimen is put into the cell fixing solution, the red blood cells are immediately hemolyzed and destroyed. Thereafter, when centrifugation is performed during the time until cell fixation is started, the hemolyzed erythrocytes and the cells to be examined are separated, and the erythrocytes that have undergone hemolysis destruction in the high-density cell fixing solution float in the supernatant. Therefore, hemolyzed red blood cells can be removed by removing the supernatant. In the present invention, the centrifugation is performed immediately after the sample is introduced, preferably within at least 120 seconds. Centrifugation is performed at 1600 G for 20 to 50 seconds, for example. After removing the supernatant, the cell fixing solution of the present invention is poured into the sediment containing the cells to be examined, and after stirring well, it is allowed to stand until the cells are fixed (for example, at least 30 minutes). The amount of the cell fixing solution additionally added here is appropriately determined according to the amount of sediment, and can be usually the same amount as the cell fixing solution used first.
細胞の固定が終了した後、遠心分離などによって、固定された細胞と細胞固定液とに分離され得る。得られた沈渣は、細胞診検査用標本の作製に用いられ得る。あるいは、固定された細胞は、細胞固定液とともに、例えば室温で約2〜4週間、冷暗所保存で約2〜6カ月間保存可能である。 After the cells are fixed, the cells can be separated into fixed cells and a cell fixing solution by centrifugation or the like. The obtained sediment can be used for preparing a specimen for cytological examination. Alternatively, the fixed cells can be stored with the cell fixative, for example, at room temperature for about 2-4 weeks and stored in a cool dark place for about 2-6 months.
(V)細胞診検査用標本の作製方法
本発明の細胞診検査用標本の作製方法は、上記の細胞の固定方法の後、該方法によって得られた沈渣(固定された細胞)を、スライドガラスに塗抹する工程を包含する。例えば、次のような方法で標本が作製され得る。
(V) Method for Preparing Specimen for Cytological Examination The method for preparing the specimen for cytological examination of the present invention is the above-described method for fixing cells, and then, the sediment (fixed cells) obtained by the method is used as a slide glass. Including the step of smearing. For example, a specimen can be prepared by the following method.
固定された細胞は、通常ペースト状であり、これを、例えば、ピペットなどを用いて採取して1枚のスライドガラス上に載せる。さらにもう1枚のスライドガラスを重ね、2枚のスライドガラスを擦り合わせる。次いで、2枚のスライドガラスを剥がすことによって、均一な厚さで細胞が塗抹された2枚のスライドガラスを得る。このスライドガラス上の塗抹細胞の余分な水分、アルコール分などを、例えば送風などによって揮発乾燥させ、スライドガラス上への細胞の貼り付きを強固にすることによって、細胞診検査用標本が得られる。得られた細胞診検査用標本を、当業者が通常用いる手段によって染色する。LBCにおいては、パパニコロウ染色が一般的である。なお、細胞固定剤としてアルコールを用いた場合は、ギムザ染色には不適である。 The fixed cells are usually in the form of a paste, which is collected using, for example, a pipette and placed on one slide glass. Stack another glass slide and rub the two glass slides together. Next, the two slide glasses are peeled off to obtain two slide glasses in which cells are smeared with a uniform thickness. A sample for cytological examination can be obtained by evaporating and drying excess moisture, alcohol, and the like of the smear cells on the slide glass by, for example, blowing air, and strengthening the sticking of the cells on the slide glass. The obtained specimen for cytodiagnosis is stained by means usually used by those skilled in the art. In LBC, Papanicolaou staining is common. In addition, when alcohol is used as a cell fixing agent, it is unsuitable for Giemsa staining.
標本作製に用いられるスライドガラスとしては、一般的に用いられるスライドガラスでよいが、スライドガラス表面の粘着性が高められた蛋白コーティングスライドガラスを用いることが好ましい。さらに、スプレー固定剤(スライドガラスに載せた細胞に直接噴霧して細胞を固定させるLBC用の細胞固定液)を併用してもよい。蛋白コーティングスライドガラスおよびスプレー固定剤を併用することによって、よりスライドガラスへの細胞の貼り付けをより強固にし得る。 As a slide glass used for specimen preparation, a slide glass generally used may be used, but it is preferable to use a protein-coated slide glass having an increased adhesiveness on the surface of the slide glass. Furthermore, you may use together spray fixing agent (The cell fixing solution for LBC which sprays directly on the cell mounted on the slide glass, and fixes a cell). By using the protein-coated glass slide and the spray fixing agent in combination, it is possible to further strengthen the attachment of the cells to the glass slide.
以下、実施例を挙げて本発明をより詳細に説明するが、本発明は、この範囲に限定されるものではない。 EXAMPLES Hereinafter, although an Example is given and this invention is demonstrated in detail, this invention is not limited to this range.
(実施例1:細胞固定液1の調製)
溶血剤としてラウリル硫酸ナトリウム(1級:和光純薬工業株式会社製)1.33g、細胞固定剤としてエタノール(1級99.5%:和光純薬工業株式会社製)416.67mL、グリセロール(1級:SAJ株式会社製)100mL、添加剤としてポリエチレングリコール4000(1級:和光純薬工業株式会社製;平均分子量3,000)0.83g、および生理食塩水416.67mLを混合し、細胞固定液1を調製した。
(Example 1: Preparation of cell fixative 1)
Sodium lauryl sulfate (1st grade: Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) 1.33 g as a hemolytic agent, ethanol (19.5 grade: Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) 416.67 mL, glycerol (1) Class: SAJ Co., Ltd.) 100 mL, additive polyethylene glycol 4000 (Class 1: Wako Pure Chemical Industries, Ltd .; average molecular weight 3,000) 0.83 g, and physiological saline 416.67 mL were mixed, and cell fixation Liquid 1 was prepared.
(実施例2:細胞固定液2の調製)
溶血剤として塩化アンモニウム(1級:和光純薬工業株式会社製)6.67g、細胞固定剤として2−プロパノール(1級99.5%以上:SAJ株式会社製)458.33mL、グリセロール(1級:SAJ株式会社製)100mL、添加剤としてポリエチレングリコール4000(1級:和光純薬工業株式会社製;平均分子量3,000)2.5g、および生理食塩水375mLを混合し、細胞固定液2を調製した。
(Example 2: Preparation of cell fixative 2)
6.67 g of ammonium chloride (1st grade: Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) as a hemolytic agent, 458.33 mL of 2-propanol (19.5% or higher grade: SAJ Ltd.) as a cell fixing agent, glycerol (1st grade) : SAJ Co., Ltd.) 100 mL, polyethylene glycol 4000 (1st grade: Wako Pure Chemical Industries, Ltd .; average molecular weight 3,000) 2.5 g as an additive, and physiological saline 375 mL are mixed, and cell fixative 2 is prepared. Prepared.
(実施例3:細胞固定液3の調製)
まず、生理食塩水50mL、溶血剤としてラウリル硫酸ナトリウム(1級:和光純薬工業株式会社製)0.16g、および細胞固定剤としてエタノール(1級99.5%:和光純薬工業株式会社製)50mLを混合し、A液を調製した。これとは別に、生理食塩水45mL、溶血剤として塩化アンモニウム(1級:和光純薬工業株式会社製)0.8g、および細胞固定剤として2−プロパノール(1級99.5%以上:SAJ株式会社製)55mLを混合し、B液を調製した。次いで、A液とB液とを7:3の割合で混合し、その100mLに、グリセロール(1級:SAJ株式会社製)12mLおよびポリエチレングリコール4000(1級:和光純薬工業株式会社製;平均分子量3,000)0.3gを加えて攪拌し、細胞固定液3を調製した。
(Example 3: Preparation of cell fixative 3)
First, 50 mL of physiological saline, 0.16 g of sodium lauryl sulfate (1st grade: manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) as a hemolytic agent, and ethanol (1st grade 99.5%: manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) as a cell fixing agent ) 50mL was mixed and A liquid was prepared. Separately, 45 mL of physiological saline, 0.8 g of ammonium chloride (first grade: Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) as a hemolytic agent, and 2-propanol (first grade 99.5% or higher: SAJ stock as a cell fixing agent) (Manufactured) 55 mL was mixed to prepare B liquid. Next, liquid A and liquid B were mixed at a ratio of 7: 3, and 100 mL thereof was mixed with 12 mL of glycerol (first grade: manufactured by SAJ) and polyethylene glycol 4000 (first grade: manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd .; average) A cell fixing solution 3 was prepared by adding 0.3 g of molecular weight 3,000) and stirring.
(実施例4:細胞固定用容器の製造)
材質がPP(ポリプロピレン)で、遠心分離を行うことが可能な容器(容量10mL)に、上記細胞固定液1を6mL入れて、細胞固定用容器1を製造した。
(Example 4: Production of cell fixation container)
6 mL of the cell fixing solution 1 was put into a container (capacity: 10 mL) made of PP (polypropylene) and capable of being centrifuged to produce a cell fixing container 1.
この細胞固定用容器1は、採取物の体積が0.4mL以内の場合に用いられる。 This cell fixing container 1 is used when the volume of the collected material is within 0.4 mL.
(実施例5:細胞固定用容器の製造)
材質がPP(ポリプロピレン)で、遠心分離を行うことが可能な容器(容量20mL)に、上記細胞固定液1を15mL入れて、細胞固定用容器2を製造した。
(Example 5: Production of cell fixation container)
A cell fixing vessel 2 was manufactured by putting 15 mL of the cell fixing solution 1 into a vessel (capacity 20 mL) made of PP (polypropylene) and capable of being centrifuged.
この細胞固定用容器2は、採取物の体積が1.0mL以内の場合に用いられる。 This cell fixing container 2 is used when the volume of the collected material is within 1.0 mL.
(実施例6:細胞固定用容器の製造)
材質がPP(ポリプロピレン)で、遠心分離を行うことが可能な容器(容量30mL)に、上記細胞固定液1を20mL入れて、細胞固定用容器3を製造した。
(Example 6: Production of cell fixation container)
20 mL of the cell fixing solution 1 was placed in a container (capacity: 30 mL) made of PP (polypropylene) and capable of being centrifuged to produce a cell fixing container 3.
この細胞固定用容器3は、採取物の体積が0.8〜1.8mLの場合に用いられる。 This cell fixing container 3 is used when the volume of the collected material is 0.8 to 1.8 mL.
(実施例7:標本の作製1)
上記細胞固定用容器2を用いて、下記の手順で細胞診検査用標本を作製した。
(Example 7: Preparation of specimen 1)
Using the cell fixing container 2, a specimen for cytological examination was prepared by the following procedure.
まず、子宮体部内膜掻把で微量の血液を含む採取物0.6mLを得た。得られた採取物を、上記細胞用固定容器2に投入して、静置した。投入直後、容器内の細胞固定液は、濁淡赤色であった。採取物を投入して1〜3秒後には、容器内の細胞固定液は透明赤褐色になり、溶血が観察された。さらに、採取物を投入した約2〜3分後より、細胞固定液は固定作用の開始サインである混濁茶褐色へ変化し始め、タンパク質の凝固が認められた。次いで、採取物を投入して30分後に、細胞固定容器ごと遠心分離(1000G、5分間)して、上清を除去した。得られた沈渣の小豆大の量を、ピペットを用いてスライドガラスに載せ、もう1枚のスライドガラスで覆い、2枚のスライドガラスを擦り合わせて均一に塗抹した。次いで、2枚のスライドガラスを剥離して、約15分間送風することにより、余分な水およびアルコール分を揮発乾燥させ、染色用標本を得た。 First, 0.6 mL of a sample containing a trace amount of blood was obtained by endometrial intima scraping. The obtained collected material was put into the cell fixing container 2 and allowed to stand. Immediately after the addition, the cell fixing solution in the container was muddy red. One to three seconds after the collected material was added, the cell fixing solution in the container became transparent reddish brown and hemolysis was observed. Furthermore, from about 2 to 3 minutes after the collected material was added, the cell fixative began to change to a turbid brown color, which is a sign of the start of fixation, and protein coagulation was observed. Next, 30 minutes after the collected material was added, the whole cell-fixed container was centrifuged (1000 G, 5 minutes), and the supernatant was removed. The amount of red beans in the obtained sediment was placed on a slide glass with a pipette, covered with another slide glass, and the two slide glasses were rubbed together and smeared uniformly. Next, the two slide glasses were peeled off, and air was blown for about 15 minutes to evaporate and dry excess water and alcohol to obtain a specimen for staining.
(実施例8:標本の作製2)
上記細胞固定用容器3を用いて、下記の手順で細胞診検査用標本を作製した。
(Example 8: Preparation of specimen 2)
Using the cell fixing vessel 3, a specimen for cytological examination was prepared by the following procedure.
まず、皮下腫瘤から穿刺吸引採取物1mLを得た。得られた採取物は、血液の混入が多かったので、上記細胞用固定容器3に投入して混和し、5秒後には遠心分離(1600G、40秒間)を行った。次いで、上清(浮遊している溶血赤血球を含む)を除去し、上記実施例1で得た細胞固定液1(20mL)を追加投入して混和した。追加投入して30分後に、細胞固定容器ごと遠心分離(1000G、5分間)し、上清を除去した。得られた沈渣の小豆大の量を、ピペットを用いてスライドガラスに載せて、もう1枚のスライドガラスで覆い、2枚のスライドガラスを擦り合わせて均一に塗抹した。次いで、2枚のスライドガラスを剥離して、約15分間送風することにより、余分な水およびアルコール分を揮発乾燥させ、染色用標本を得た。 First, 1 mL of puncture aspiration sample was obtained from the subcutaneous mass. Since the obtained collected material had a lot of blood contamination, it was put into the cell fixing container 3 and mixed, and after 5 seconds, centrifugation (1600 G, 40 seconds) was performed. Subsequently, the supernatant (including floating hemolyzed erythrocytes) was removed, and the cell fixing solution 1 (20 mL) obtained in Example 1 was additionally added and mixed. 30 minutes after the addition, the whole cell-fixed container was centrifuged (1000 G, 5 minutes), and the supernatant was removed. The amount of red beans in the obtained sediment was placed on a slide glass using a pipette, covered with another slide glass, and the two slide glasses were rubbed together and smeared uniformly. Next, the two slide glasses were peeled off, and air was blown for about 15 minutes to evaporate and dry excess water and alcohol to obtain a specimen for staining.
(実施例9:標本の作製3)
口腔粘膜少量および血液40μLの混合物を検体材料として用いたこと以外は、上記実施例7と同様に操作して、標本を作製した。容器中の細胞固定液の状態の写真および標本の細胞像(顕微鏡写真)を図2に示す。
(Example 9: Preparation of specimen 3)
A specimen was prepared in the same manner as in Example 7 except that a mixture of a small amount of oral mucosa and 40 μL of blood was used as the specimen material. FIG. 2 shows a photograph of the state of the cell fixing solution in the container and a cell image (micrograph) of the specimen.
容器内の細胞固定液は透明赤褐色になり、溶血が観察された。また、細胞像からわかるように、上皮細胞(有核細胞)の形態観察の妨げになる多くの赤血球は溶血破壊され、背景に小さく変性して散在していた。そのため、標本は、判定および診断しやすい状態となっていた。 The cell fixing solution in the container became transparent reddish brown and hemolysis was observed. Also, as can be seen from the cell image, many red blood cells that hinder the observation of the morphology of epithelial cells (nucleated cells) were hemolyzed and broken down and scattered in the background. Therefore, the sample is in a state that is easy to determine and diagnose.
(比較例1:標本の作製4)
口腔粘膜少量および血液40μLの混合物を検体材料として用いた。この検体材料を、従来用いられている細胞固定液(50%エタノール+2%ポリエチレングリコール)を含む容器に投入してよく攪拌・混和した。遠心分離(1000G、5分間)後、有核細胞層の沈渣上層部(バフィーコート部)の小豆大の量を、ピペットを用いてスライドガラスに載せて、もう1枚のスライドガラスで覆い、2枚のスライドガラスを擦り合わせて均一に塗抹した。次いで、2枚のスライドガラスを剥離して、約15分間送風することにより、余分な水およびアルコール分を揮発乾燥させ、染色用標本を得た。容器中の細胞固定液の状態の写真および標本の細胞像(顕微鏡写真)を図3に示す。
(Comparative Example 1: Preparation of specimen 4)
A mixture of a small amount of oral mucosa and 40 μL of blood was used as the specimen material. This specimen material was put into a container containing a conventionally used cell fixing solution (50% ethanol + 2% polyethylene glycol) and well stirred and mixed. After centrifugation (1000 G, 5 minutes), the amount of red beans in the upper part of the sediment (buffy coat part) of the nucleated cell layer is placed on a glass slide using a pipette and covered with another glass slide. The glass slides were rubbed together and smeared uniformly. Next, the two slide glasses were peeled off, and air was blown for about 15 minutes to evaporate and dry excess water and alcohol to obtain a specimen for staining. FIG. 3 shows a photograph of the state of the cell fixing solution in the container and a cell image (micrograph) of the specimen.
容器内の細胞固定液には、小型の凝血塊が観察された。また、細胞像からわかるように、多量の赤血球が大小の凝血塊になって上皮細胞に絡みつき、上皮細胞(有核細胞)の形態観察が困難であった。 Small clots were observed in the cell fixative in the container. Also, as can be seen from the cell image, a large amount of red blood cells became large and small clots and entangled with epithelial cells, making it difficult to observe the morphology of epithelial cells (nucleated cells).
(実施例10:標本の作製5)
口腔粘膜少量および血液300μLの混合物を検体材料として用いたこと以外は、上記実施例8と同様に操作して、標本を作製した。容器中の細胞固定液の状態の写真および標本の細胞像(顕微鏡写真)を図4に示す。
(Example 10: Preparation of specimen 5)
A specimen was prepared in the same manner as in Example 8 except that a mixture of a small amount of oral mucosa and 300 μL of blood was used as the specimen material. FIG. 4 shows a photograph of the state of the cell fixing solution in the container and a cell image (micrograph) of the specimen.
容器内の細胞固定液は、検体材料投入直後には混濁赤色であったが、すぐに透明赤褐色になり、溶血が観察された。遠心分離により赤血球を除去した後には、細胞固定液は半透明淡黄色になった。細胞固定液1の追加投入後に遠心分離して得られた沈渣物の細胞像では、赤血球はほとんど除去されており、上皮細胞(有核細胞)は正確に形態を観察できることがわかる。このように、標本は、非常に判定および診断しやすい状態となっていた。 The cell fixative in the container was turbid red immediately after the sample material was added, but soon became transparent reddish brown and hemolysis was observed. After removing red blood cells by centrifugation, the cell fixative became translucent light yellow. In the cell image of the sediment obtained by centrifugation after the additional addition of the cell fixative 1, it can be seen that the red blood cells are almost removed and the morphology of the epithelial cells (nucleated cells) can be accurately observed. Thus, the sample was in a state that was very easy to determine and diagnose.
(比較例2:標本の作製6)
口腔粘膜少量および血液300μLの混合物を検体材料として用いたこと以外は、上記比較例1と同様に操作して、染色用標本を得た。容器中の細胞固定液の状態の写真および標本の細胞像(顕微鏡写真)を図5に示す。
(Comparative Example 2: Preparation of specimen 6)
A sample for staining was obtained in the same manner as in Comparative Example 1 except that a mixture of a small amount of oral mucosa and 300 μL of blood was used as the sample material. FIG. 5 shows a photograph of the state of the cell fixing solution in the container and a cell image (micrograph) of the specimen.
容器内の細胞固定液には、大型の凝血塊が観察された。また、細胞像からわかるように、多量の赤血球が大小の凝血塊になって上皮細胞に絡みつき、上皮細胞(有核細胞)の形態観察が非常に困難であった。 Large clots were observed in the cell fixative in the container. Also, as can be seen from the cell image, a large amount of red blood cells became large and small clots and entangled with epithelial cells, making it very difficult to observe the morphology of epithelial cells (nucleated cells).
本発明によれば、溶血剤、細胞固定剤、およびグリセロールを組み合わせることにより、血液を含む検体を用いても、血液を除去する工程を必要とせず、1つの細胞固定液を1つの容器内で用いることにより、迅速かつ容易に細胞固定が行われ得る。したがって、検鏡しやすい細胞診検査用標本を容易に作製することができ、非常に有用である。また、検体の移し替え操作の必要がないため、作業者への感染の危険性も非常に減少する。 According to the present invention, by combining a hemolytic agent, a cell fixing agent, and glycerol, even if a specimen containing blood is used, a step of removing blood is not required, and one cell fixing solution is contained in one container. By using it, cell fixation can be performed quickly and easily. Therefore, a specimen for cytodiagnosis examination that can be easily microscopically can be easily produced, which is very useful. In addition, since there is no need to transfer the specimen, the risk of infection to the worker is greatly reduced.
Claims (12)
該沈渣に、請求項1から5のいずれかの項に記載の細胞固定液を投入する工程;
をさらに含む、請求項9に記載の方法。 A step of centrifuging the cell fixing solution containing the specimen immediately after the completion of the adding step to obtain a sediment; and a step of introducing the cell fixing solution according to any one of claims 1 to 5 to the sediment;
10. The method of claim 9, further comprising:
請求項1から5のいずれかの項に記載の細胞固定液に、細胞を含む検体を投入し、少なくとも30分間放置する工程;
該放置した細胞固定液を遠心分離して沈渣を得る工程;および
該沈渣を、スライドガラスに塗抹する工程;
を包含する、方法。 A method for preparing a specimen for cytodiagnosis,
A step of putting a specimen containing cells into the cell fixing solution according to any one of claims 1 to 5 and allowing it to stand for at least 30 minutes;
Centrifuging the left cell fixative to obtain a sediment; and smearing the sediment on a slide glass;
Including the method.
請求項1から5のいずれかの項に記載の細胞固定液に、細胞を含む検体を投入する工程;
該投入工程終了直後に該検体を含む細胞固定液を遠心分離して沈渣を得る工程;
該沈渣に、請求項1から5のいずれかの項に記載の細胞固定液を投入し、少なくとも30分間放置する工程;
該放置した細胞固定液を遠心分離して沈渣を得る工程;および
該沈渣を、スライドガラスに塗抹する工程;
を包含する、方法。 A method for preparing a specimen for cytodiagnosis,
A step of introducing a specimen containing cells into the cell fixing solution according to any one of claims 1 to 5;
A step of centrifuging the cell fixing solution containing the sample immediately after the completion of the adding step to obtain a sediment;
Putting the cell fixing solution according to any one of claims 1 to 5 into the sediment and allowing it to stand for at least 30 minutes;
Centrifuging the left cell fixative to obtain a sediment; and smearing the sediment on a slide glass;
Including the method.
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