JP2005520489A - アポリポタンパク質(a)発現のアンチセンス調節 - Google Patents
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Abstract
Description
乳剤
本発明の組成物は乳剤として製造かつ処方してよい。乳剤は、典型的には、直径が通常0.1μmを超える液滴の形態で別のもの中に分散された一方の液体の不均質な系である。(Idson、Pharmaceutical Dosage Forms、Liberman、RiegerとBanker(編)、1988、マルセル デッカー インク(Marcel Dekker,Inc.)、ニューヨーク州ニューヨーク、第1巻中、p.199;Rosoff、Pharmaceutical Dosage Forms、Liberman、RiegerとBanker(編)、1988、マルセル デッカー インク(Marcel Dekker,Inc.)、ニューヨーク州ニューヨーク、第1巻中、p.245;Block、Pharmaceutical Dosage Forms、Liberman、RiegerとBanker(編)、1988、マルセル デッカー インク(Marcel Dekker,Inc.)、ニューヨーク州ニューヨーク、第2巻中、p.335;Higuchiら、Remington’s Pharmaceutical Sciences、マック パブリッシング カンパニー(Mack Publishing Co.)、フィラデルフィア州イーストン、1985中、p.301)。乳剤は、しばしば、相互と緊密に混合かつ分散された2種の混合不可能な液相で構成する二相系である。一般に、乳剤は油中水型(w/o)もしくは水中油型(o/w)の異種のいずれかであってよい。水相を微小な液滴に微細に分割しかつ大量の油相中にそれとして分散させる場合、生じる組成物は油中水型(w/o)乳剤と呼ばれる。あるいは、油相を微小な液滴に微細に分割しかつ大量の水相中にそれとして分散させる場合、生じる組成物は水中油型(o/w)乳剤と呼ばれる。乳剤は、水相、油相のいずれか中に溶液として、もしくはそれ自身別個の相として存在してよい、分散された相および有効成分に加えて付加的な成分を含有してもよい。乳化剤、安定剤、色素および抗酸化剤のような製薬学的賦形剤もまた、必要とされるように乳剤中に存在してもよい。製薬学的乳剤はまた、例えば油中水中油(o/w/o)および水中油中水型(w/o/w)乳剤の場合のように、2種以上の相から構成される多相乳剤(multiple emulsion)であってもよい。こうした複雑な製剤は、しばしば、単純な二相乳剤が提供しないある種の利点を提供する。o/w乳剤の個々の油滴が小さな水滴を囲む多相乳剤はw/o/w乳剤を構成する。同様に、油連続相中で安定化された水の球体に囲まれる油滴の系はo/w/o乳剤を提供する。
リポソーム
薬物の製剤について研究かつ使用されている、マイクロエマルション以外の多くの組織化された界面活性剤構造が存在する。これらは、単層、ミセル、二重層および小胞を包含する。リポソームのような小胞は、それらの特異性、およびそれらが薬物送達の見地から提供する作用の持続期間のため、大きな興味を引いてきた。本発明で使用されるところの「リポソーム」という用語は、球形の二重層(1個もしくは複数)中に配置される両親媒性脂質から構成される小胞を意味する。
浸透増強剤
一態様において、本発明は、動物の皮膚への核酸、とりわけオリゴヌクレオチドの効率的送達を遂げるために多様な浸透増強剤を使用する。大部分の薬物は、イオン化および非イオン化双方の形態で溶液中に存在する。しかしながら、通常、脂質溶解性もしくは親油性の薬物のみが細胞膜を容易に横断する。非親油性薬物でさえ、横断されるべき膜を浸透増強剤で処理する場合に細胞膜を横断するかもしれないことが発見された。細胞膜を横切る非親油性薬物の拡散を補助することに加えて、浸透増強剤はまた、親油性薬物の浸透性も高める。
担体
本発明のある種の組成物は製剤中に担体化合物もまた組み込む。本明細書で使用されるところの「担体化合物」もしくは「担体」は、不活性である(すなわちそれ自身生物学的活性を有しない)がしかし例えば生物学的に活性の核酸を分解することもしくは循環からのその除去を促進することにより生物学的活性を有する核酸の生物学的利用性を低下させるin vivo過程により核酸として認識される、核酸もしくはその類似物を指すことができる。核酸および担体化合物の、典型的には過剰の後者の物質を伴う共投与は、おそらく共通の受容体に対する担体化合物と核酸との間の競争により、肝、腎もしくは他の循環外の貯蔵所(reservoir)にて回収される核酸の量の実質的低減をもたらす可能性がある。例えば、肝組織における部分的にホスホロチオエートのオリゴヌクレオチドの回収は、それがポリイノシン酸、デキストラン硫酸、ポリシチジン酸もしくは4−アセトアミド−4’イソチオシアノ−スチルベン−2,2’−ジスルホン酸と共投与される場合に低下される可能性がある(Miyaoら、Antisense Res.Dev.、1995、5、115−121;Takakuraら、Antisense & Nucl.Acid Drug Dev.、1996、6、177−183)。
賦形剤
担体化合物と対照的に、「製薬学的担体」もしくは「賦形剤」は、1種もしくはそれ以上の核酸を動物に送達するための製薬学的に許容できる溶媒、懸濁化剤もしくはいずれかの他の薬理学的に不活性のベヒクルである。賦形剤は液体もしくは固体であってよく、そして、所定の製薬学的組成物の核酸および他の成分と組合せられる場合に所望の容積、粘稠度などを提供するように、計画された投与様式を念頭におき選択される。典型的な製薬学的担体は、限定されるものでないが、結合剤(例えば糊化済トウモロコシデンプン、ポリビニルピロリドンもしくはヒドロキシプロピルメチルセルロースなど);増量剤(例えば乳糖および他の糖、微晶質セルロース、ペクチン、ゼラチン、硫酸カルシウム、エチルセルロース、ポリアクリレートもしくはリン酸水素カルシウムなど);滑沢剤(例えばステアリン酸マグネシウム、タルク、シリカ、コロイド状二酸化ケイ素、ステアリン酸、金属ステアリン酸塩、硬化植物油、トウモロコシデンプン、ポリエチレングリコール、安息香酸ナトリウム、酢酸ナトリウムなど);崩壊剤(例えばデンプン、デンプングリコール酸ナトリウムなど);ならびに湿潤剤(例えばラウリル硫酸ナトリウムなど)を挙げることができる。
他成分
本発明の組成物は、それらの技術で確立された使用レベルの、製薬学的組成物中で慣習的に見出される他の付属成分を付加的に含有してもよい。従って、例えば、組成物は、例えば鎮痒薬、収れん剤、局所麻酔薬もしくは抗炎症薬のような付加的な適合性の製薬学的有効成分を含有してもよいか、または、色素、着香料、保存剤、抗酸化剤、乳白剤、増粘剤および安定剤のような、本発明の組成物の多様な投薬形態を物理的に処方することにおいて有用な付加的物質を含有してもよい。しかしながら、こうした物質は、添加される場合に、本発明の組成物の成分の生物学的活性をむやみに妨害すべきでない。製剤は滅菌することができ、そして、所望の場合は、製剤の核酸(1種もしくは複数)と有害に相互作用しない補助作用物質、例えば滑沢剤、保存剤、安定剤、湿潤剤、乳化剤、浸透圧に影響するための塩、緩衝剤、着色料、着香料および/もしくは芳香物質などと混合することができる。
実施例
実施例1
オリゴヌクレオチド合成のためのヌクレオシドホスホルアミダイト
デオキシおよび2’−アルコキシアミダイト
2’−デオキシおよび2’−メトキシβ−シアノエチルジイソプロピルホスホルアミダイトは商業的供給源(例えばケムジーンズ(Chemgenes)、マサチューセッツ州ニーダムもしくはグレン リサーチ インク(Glen Research,Inc.)バーモント州スターリング)から購入した。他の2’−O−アルコキシ置換ヌクレオシドアミダイトは、米国特許第5,506,351号明細書(引用することにより本明細書に組み込まれる)に記述されるとおり製造する。2’−アルコキシアミダイトを使用して合成されるオリゴヌクレオチドについて、テトラゾールおよび塩基の拍動送達後の待機段階を360秒に増大させたことを除き、未修飾オリゴヌクレオチドについての標準的周期を利用した。
2’−フルオロアミダイト
2’−フルオロデオキシアデノシンアミダイト
2’−フルオロオリゴヌクレオチドは以前に(Kawasakiら、J.Med.Chem.、1993、36、831−841)かつ米国特許第5,670,633号明細書(引用することにより本明細書に組み込まれる)記述されたとおり合成した。簡潔には、保護されたヌクレオシドN6−ベンゾイル−2’−デオキシ−2’−フルオロアデノシンを、商業的に入手可能な9−β−D−アラビノフラノシルアデニンを出発原料として利用し、かつ、文献の手順を改変してそれにより2’−α−フルオロ原子が2’−β−トリチル基のSN2−置換により導入されることにより合成した。従って、N6−ベンゾイル−9−β−D−アラビノフラノシルアデニンが、3’,5’−ジテトラヒドロピラニル(THP)中間体として中程度の収量で選択的に保護された。THPおよびN6−ベンゾイル基の脱保護を、標準的方法論を使用して達成し、また、標準的方法を使用して、5’−ジメトキシトリチル−(DMT)および5’−DMT−3’−ホスホルアミダイト中間体を得た。
2’−デオキシ−2’−フルオログアノシンの合成は、出発原料としてのテトライソプロピルジシロキサニル(TPDS)保護された9−β−D−アラビノフラノシルグアニン、および、中間体ジイソブチリルアラビノフラノシルグアノシンへの転化を使用して達成した。TPDS基の脱保護、次いでTHPでのヒドロキシル基を保護し、ジイソブチリルジ−THP保護アラビノフラノシルグアニンを生じた。選択的O−脱アシル化およびトリフラート化、次いでフッ化物で粗生成物を処理し、その後THP基を脱保護した。標準的方法論を使用して、5’−DMT−および5’−DMT−3’−ホスホルアミダイトを得た。
2’−デオキシ−2’−フルオロウリジンの合成は、2,2’−アンヒドロ−1−β−D−アラビノフラノシルウラシルを70%フッ化水素−ピリジンで処理した、文献の手順の変法により達成した。標準的手順を使用して、5’−DMTおよび5’−DMT−3’ホスホルアミダイトを得た。
2’−デオキシ−2’−フルオロシチジンは、2’−デオキシ−2’−フルオロウリジンのアミノ化、次いでN4−ベンゾイル−2’−デオキシ−2’−フルオロシチジンを生じる選択的保護を介して合成した。標準的手順を使用して、5’−DMTおよび5’−DMT−3’ホスホルアミダイトを得た。
2’−O−メトキシエチル置換ヌクレオシドアミダイトは、以下のとおり、あるいは、Martin,P.、Helvetica Chimica Acta、1995、78、486−504の方法に従って製造する。
5−メチルウリジン(リボシルチミン、ヤマサ、銚子市により商業的に入手可能)(72.0g、0.279M)、炭酸ジフェニル(90.0g、0.420M)および重炭酸ナトリウム(2.0g、0.024M)をDMF(300mL)に添加した。混合物を攪拌しながら還流に加熱して、発生された二酸化炭素ガスを制御された様式で放出させた。1時間後に、わずかに黒ずんだ溶液を減圧下に濃縮した。生じるシロップを攪拌しながらジエチルエーテル(2.5L)中に注いだ。生成物はガム状物を形成した。エーテルをデカンテーションし、そして残渣を最少量のメタノール(約400mL)に溶解した。溶液を新鮮なエーテル(2.5L)中に注いで比較的堅いガム状物を生じた。エーテルをデカンテーションし、そしてガム状物を真空オーブン(1mmHgで60℃24時間)中で乾燥して固形物を生じ、これを淡黄褐色粉末に粉砕した(57g、85%粗収率)。NMRスペクトルは、そのナトリウム塩としてのフェノールで汚染された(約5%)該構造に一致した。物質を、さらなる反応についてそうであるように使用した(もしくは、酢酸エチル中メタノールの勾配(10〜25%)を使用するカラムクロマトグラフィーによりそれをさらに生成して白色固形物、mp 222−4℃を生じることができる)。
2,2’−アンヒドロ−5−メチルウリジン(195g、0.81M)、トリス(2−メトキシエチル)ホウ酸塩(231g、0.98M)および2−メトキシエタノール(1.2L)を2Lのステンレス鋼圧容器に添加し、そして160℃で予め加熱された油浴中に入れた。155〜160℃で48時間加熱した後に、容器を開放し、そして溶液を乾固まで蒸発させかつMeOH(200mL)とともに摩砕した。残渣を熱アセトン(1L)に懸濁した。不溶性の塩を濾過し、アセトン(150mL)で洗浄し、そして濾液を蒸発させた。残渣(280g)をCH3CN(600mL)に溶解しかつ蒸発させた。シリカゲルカラム(3kg)を、0.5%Et3NHを含有するCH2Cl2/アセトン/メタノール(20:5:3)で充填した。残渣をCH2Cl2(250mL)に溶解し、そして、カラムに負荷する前にシリカ(150g)に吸着させた。生成物を充填溶媒で溶出して160g(63%)の生成物を生じた。付加的な物質を、不純な画分で再作業することにより得た。
2’−O−メトキシエチル−5−メチルウリジン(160g、0.506M)をピリジン(250mL)と共蒸発させ、そして乾燥された残渣をピリジン(1.3L)に溶解した。塩化ジメトキシトリチルの第一のアリコート(94.3g、0.278M)を添加し、そして混合物を室温で1時間攪拌した。塩化ジメトキシトリチルの第二のアリコート(94.3g、0.278M)を添加し、そして反応を追加の1時間攪拌した。メタノール(170mL)をその後添加して反応を停止した。HPLCはおよそ70%の生成物の存在を示した。溶媒を蒸発させ、そしてCH3CN(200mL)とともに摩砕した。残渣をCHCl3(1.5L)に溶解し、そして2×500mLの飽和NaHCO3および2×500mLの飽和NaClで抽出した。有機層をNa2SO4で乾燥し、濾過しかつ蒸発させた。275gの残渣を得た。残渣を、0.5%Et3NHを含有するEtOAc/ヘキサン/アセトン(5:5:1)で充填かつ溶出される3.5kgのシリカゲルカラムで精製した。純粋な画分を蒸発させて164gの生成物を生じた。付加的なおよそ20gを不純な画分から得て、183g(57%)の合計収量を生じた。
2’−O−メトキシエチル−5’−O−ジメトキシトリチル−5−メチルウリジン(106g、0.167M)、DMF/ピリジン(562mLのDMFおよび188mLのピリジンから調製された3:1混合物の750mL)、ならびに無水酢酸(24.38mL、0.258M)を合わせそして室温で24時間攪拌した。反応を、TLCサンプルをMeOHの添加で最初にクエンチすることによりTLCによりモニターした。TLCにより判断されるところの反応の完了に際してMeOH(50mL)を添加し、そして混合物を35℃で蒸発させた。残渣をCHCl3(800mL)に溶解し、そして2×200mLの飽和重炭酸ナトリウムおよび2×200mLの飽和NaClで抽出した。水層を200mLのCHCl3で戻し抽出した(back extracted)。合わせられた有機物を硫酸ナトリウムで乾燥しかつ蒸発させて122gの残渣(およそ90%の生成物)を生じた。残渣を3.5kgのシリカゲルカラム上で精製し、そしてEtOAc/ヘキサン(4:1)を使用して溶出した。純粋な生成物画分を蒸発させて96g(84%)を生じた。追加の1.5gを後の画分から回収した。
第一の溶液を、3’−O−アセチル−2’−O−メトキシエチル−5’−O−ジメトキシトリチル−5−メチルウリジン(96g、0.144M)をCH3CN(700mL)に溶解することにより調製し、そしてわきに置いた。トリエチルアミン(189mL、1.44M)をCH3CN(1L)中のトリアゾール(90g、1.3M)の溶液に添加し、−5℃に冷却し、そして頭上攪拌機を使用して0.5時間攪拌した。POCl3を、−10℃で維持された攪拌された溶液に30分の期間にわたって一滴ずつ添加し、そして生じる混合物を追加の2時間攪拌した。第一の溶液を、後者の溶液に45分の期間にわたって一滴ずつ添加した。生じる反応混合物を低温室に一夜保存した。塩を反応混合物から濾過し、そして溶液を蒸発させた。残渣をEtOAc(1L)に溶解し、そして不溶性固形物を濾過により除去した。濾液を1×300mLのNaHCO3および2×300mLの飽和NaClで洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥しかつ蒸発させた。残渣をEtOAcとともに摩砕して表題化合物を生じた。
ジオキサン(500mL)およびNH4OH(30mL)中の3’−O−アセチル−2’−O−メトキシエチル−5’−O−ジメトキシトリチル−5−メチル−4−トリアゾールウリジン(103g、0.141M)の溶液を室温で2時間攪拌した。ジオキサン溶液を蒸発させ、そして残渣をMeOH(2×200mL)と共沸させた。残渣をMeOH(300mL)に溶解し、そして2リットルのステンレス鋼圧容器に移した。NH3ガスで飽和されたMeOH(400mL)を添加し、そして容器を100℃に2時間加熱した(TLCは完全な転化を示した)。容器の内容物を乾固まで蒸発させ、そして残渣をEtOAc(500mL)に溶解しかつ飽和NaCl(200mL)で1回洗浄した。有機物を硫酸ナトリウムで乾燥し、そして溶媒を蒸発させて85g(95%)の表題化合物を生じた。
2’−O−メトキシエチル−5’−O−ジメトキシトリチル−5−メチルシチジン(85g、0.134M)をDMF(800mL)に溶解し、そして無水安息香酸(37.2g、0.165M)を攪拌しながら添加した。3時間攪拌した後、TLCは反応がおよそ95%完了であることを示した。溶媒を蒸発させ、そして残渣をMeOH(200mL)と共沸させた。残渣をCHCl3(700mL)に溶解し、そして飽和NaHCO3(2×300mL)および飽和NaCl(2×300mL)で抽出し、MgSO4で乾燥しかつ蒸発させて残渣(96g)を生じた。残渣を、溶出溶媒として0.5%Et3NHを含有するEtOAc/ヘキサン(1:1)を使用する1.5kgのシリカカラムでクロマトグラフィー分離した。純粋な生成物の画分を蒸発させて90g(90%)の表題化合物を生じた。
N4−ベンゾイル−2’−O−メトキシエチル−5’−O−ジメトキシトリチル−5−メチルシチジン(74g、0.10M)をCH2Cl2(1L)に溶解した。テトラゾールジイソプロピルアミン(7.1g)および2−シアノエトキシテトラ(イソプロピル)ホスファイト(40.5mL、0.123M)を窒素雰囲気下で攪拌しながら添加した。生じる混合物を室温で20時間攪拌した(TLCは反応が95%完了であることを示した)。反応混合物を飽和NaHCO3(1×300mL)および飽和NaCl(3×300mL)で抽出した。水性洗浄液をCH2Cl2(300mL)で戻し抽出し、そして抽出物を合わせ、MgSO4で乾燥しかつ濃縮した。得られた残渣を、溶出溶媒としてEtOAc/ヘキサン(3:1)を使用する1.5kgのシリカカラムでクロマトグラフィー分離した。純粋な画分を合わせて90.6g(87%)の表題化合物を生じた。
2’−O−(アミノオキシエチル)ヌクレオシドアミダイトおよび2’−O−(ジメチルアミノオキシエチル)ヌクレオシドアミダイト
2’−(ジメチルアミノオキシエトキシ)ヌクレオシドアミダイト
2’−(ジメチルアミノオキシエトキシ)ヌクレオシドアミダイト(2’−O−(ジメチルアミノオキシエチル)ヌクレオシドアミダイトとしてもまた当該技術分野で知られる)は以下の段落に記述されるとおり製造する。アデノシン、シチジンおよびグアノシンヌクレオシドアミダイトは、環外アミンをアデノシンおよびシチジンの場合にベンゾイル部分で、ならびにグアノシンの場合にイソブチリルで保護することを除き、チミジン(5−メチルウリジン)に類似に製造する。
O2−2’−アンヒドロ−5−メチルウリジン(Pro.Bio.Sint.、イタリア・バレーゼ、100.0g、0.416mmol)、ジメチルアミノピリジン(0.66g、0.013等量、0.0054mmol)を、アルゴン雰囲気下かつ機械的攪拌を伴い周囲温度で無水ピリジン(500ml)に溶解した。tert−ブチルジフェニルクロロシラン(125.8g、119.0mL、1.1等量、0.458mmol)を一部分で添加した。反応を周囲温度で16時間攪拌した。TLC(Rf 0.22、酢酸エチル)は完了した反応を示した。溶液を減圧下に濃厚な油状物まで濃縮した。これを、ジクロロメタン(1L)と飽和重炭酸ナトリウム(2×1L)および塩水(1L)との間で分配した。有機層を硫酸ナトリウムで乾燥しかつ濃厚な油状物まで減圧下に濃縮した。油状物を酢酸エチルおよびエチルエーテルの1:1混合物(600mL)に溶解し、そして溶液を−10℃に冷却した。生じる結晶生成物を濾過により収集し、エチルエーテル(3×200mL)で洗浄し、そして149g(74.8%)の白色固形物まで乾燥(40℃、1mmHg、24時間)した。TLCおよびNMRは純粋な生成物と一致した。
2Lのステンレス鋼の攪拌されない圧反応器中にテトラヒドロフラン中ボラン(1.0M、2.0等量、622mL)を添加した。ヒュームフード中かつ人的攪拌を伴い、エチレングリコール(350mL、過剰)を、水素ガスの発生が止むまで最初に慎重に添加した。5’−O−tert−ブチルジフェニルシリル−O2−2’−アンヒドロ−5−メチルウリジン(149g、0.311mol)および重炭酸ナトリウム(0.074g、0.003等量)を、人的攪拌を伴い添加した。反応器を封止し、そして160℃の内部温度が達成されるまで油浴中で加熱し、そしてその後16時間維持した(圧<100psig)。反応容器を周囲まで冷却しかつ開放した。TLC(所望の生成物についてRf 0.67およびara−T副生成物についてRf 0.82、酢酸エチル)は生成物への約70%の転化を示した。付加的な副生成物形成を回避するため、反応を停止し、温水浴(40〜100℃)中減圧(10ないし1mmHg)下で濃縮し、より極端な条件を使用してエチレングリコールを除去した。[あるいは、一旦低沸点溶媒がなくなれば、残存する溶液を酢酸エチルと水との間で分配することができる。生成物は有機層中にあることができる。]残渣をカラムクロマトグラフィー(2kgシリカゲル、酢酸エチル−ヘキサン勾配1:1ないし4:1)により精製した。適切な画分を合わせ、ストリップし、そして出発原料(17.4g)で汚染された白色の砕けやすい泡状物としての生成物(84g、50%)および純粋な再使用可能な出発原料20gまで乾燥した。出発原料より少なく純粋な回収された出発原料に基づく収率は58%であった。TLCおよびNMRは99%純粋な生成物と一致した。
5’−O−tert−ブチルジフェニルシリル−2’−O−(2−ヒドロキシエチル)−5−メチルウリジン(20g、36.98mmol)をトリフェニルホスフィン(11.63g、44.36mmol)およびN−ヒドロキシフタルイミド(7.24g、44.36mmol)と混合した。その後、それを高真空下で40℃で2日間P2O5で乾燥した。反応混合物をアルゴンで洗い流し、そして無水THF(369.8mL、アルドリッチ(Aldrich)、sure sealボトル)を添加して澄明な溶液を得た。アゾジカルボン酸ジエチル(6.98mL、44.36mmol)を反応混合物に一滴ずつ添加した。生じる濃赤色の着色が次の滴を添加する前にちょうど脱色されるような添加の速度を維持する。添加が完了した後に反応を4時間攪拌した。その時点までにTLCは反応の完了を示した(酢酸エチル:ヘキサン、60:40)。溶媒を真空中で蒸発させた。得られた残渣をフラッシュカラム上に置き、そして酢酸エチル:ヘキサン(60:40)で溶出して2’−O−([2−フタルイミドキシ)エチル]−5’−t−ブチルジフェニルシリル−5−メチルウリジンを白色泡状物(21.819g、86%)として得た。
2’−O−([2−フタルイミドキシ)エチル]−5’−t−ブチルジフェニルシリル−5−メチルウリジン(3.1g、4.5mmol)を無水CH2Cl2(4.5mL)に溶解し、そしてメチルヒドラジン(300mL、4.64mmol)を−10℃ないし0℃で一滴ずつ添加した。1時間後に混合物を濾過し、濾液を氷冷CH2Cl2で洗浄し、そして合わせられた有機層を水、塩水で洗浄しかつ無水Na2SO4で乾燥した。溶液を濃縮して2’−O−(アミノオキシエチル)チミジンを得、これをその後MeOH(67.5mL)に溶解した。これにホルムアルデヒド(20%水性溶液、w/w、1.1等量)を添加し、そして生じる混合物を1時間攪拌した。溶媒を真空下に除去し;残渣をクロマトグラフィー分離して、5’−O−tert−ブチルジフェニルシリル−2’−O−[(2−ホルムアドキシミノオキシ)エチル]−5−メチルウリジンを白色泡状物(1.95g、78%)として得た。
5’−O−tert−ブチルジフェニルシリル−2’−O−[(2−ホルムアドキシミノオキシ)エチル]−5−メチルウリジン(1.77g、3.12mmol)を無水MeOH中の1M p−トルエンスルホン酸ピリジニウム(PPTS)の溶液(30.6mL)に溶解した。シアノホウ水素化ナトリウム(0.39g、6.13mmol)を不活性雰囲気下10℃でこの溶液に添加した。反応混合物を10℃で10分間攪拌した。その後、反応容器を氷浴から取り出しかつ室温で2時間攪拌し、反応をTLC(CH2Cl2中5%MeOH)によりモニターした。水性NaHCO3溶液(5%、10mL)を添加しそして酢酸エチル(2×20mL)で抽出した。酢酸エチル層を無水Na2SO4で乾燥し、乾固まで蒸発させた。残渣をMeOH中の1M PPTSの溶液(30.6mL)に溶解した。ホルムアルデヒド(20% w/w、30mL、3.37mmol)を添加し、そして反応混合物を室温で10分間攪拌した。反応混合物を氷浴中で10℃に冷却し、シアノホウ水素化ナトリウム(0.39g、6.13mmol)を添加し、そして反応混合物を10℃で10分間攪拌した。10分後に反応混合物を氷浴から取り出しかつ室温で2時間攪拌した。反応混合物に5%NaHCO3(25mL)溶液を添加し、そして酢酸エチル(2×25mL)で抽出した。酢酸エチル層を無水Na2SO4で乾燥しかつ乾固まで蒸発させた。得られた残渣をフラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製し、そしてCH2Cl2中5%MeOHで溶出して、5’−O−tert−ブチルジフェニルシリル−2’−O−[N,N−ジメチルアミノオキシエチル]−5−メチルウリジンを白色泡状物(14.6g、80%)として得た。
トリエチルアミントリヒドロフルオリド(3.91mL、24.0mmol)を無水THFおよびトリエチルアミン(1.67mL、12mmol、無水、KOH上に保管)に溶解した。その後、トリエチルアミン−2HFのこの混合物を5’−O−tert−ブチルジフェニルシリル−2’−O−[N,N−ジメチルアミノオキシエチル]−5−メチルウリジン(1.40g、2.4mmol)に添加しかつ室温で24時間攪拌した。反応をTLC(CH2Cl2中5%MeOH)によりモニターした。溶媒を真空下に除去し、そして残渣をフラッシュカラム上に置きかつCH2Cl2中10%MeOHで溶出して、2’−O−(ジメチルアミノオキシエチル)−5−メチルウリジン(766mg、92.5%)を得た。
2’−O−(ジメチルアミノオキシエチル)−5−メチルウリジン(750mg、2.17mmol)を40℃で高真空下にP2O5で一夜乾燥した。その後、それを無水ピリジン(20mL)と共蒸発させた。得られた残渣をアルゴン雰囲気下でピリジン(11mL)に溶解した。4−ジメチルアミノピリジン(26.5mg、2.60mmol)、塩化4,4’−ジメトキシトリチル(880mg、2.60mmol)を混合物に添加し、そして反応混合物を、出発原料の全部が消失するまで室温で攪拌した。ピリジンを真空下に除去し、そして残渣をクロマトグラフィー分離しかつCH2Cl2中10%MeOHで溶出して、5’−O−DMT−2’−O−(ジメチルアミノオキシエチル)−5−メチルウリジン(1.13g、80%)を得た。
5’−O−DMT−2’−O−(ジメチルアミノオキシエチル)−5−メチルウリジン(1.08g、1.67mmol)をトルエン(20mL)と共蒸発させた。残渣にN,N−ジイソプロピルアミンテトラゾニド(0.29g、1.67mmol)を添加し、そして高真空下40℃で一夜P2O5で乾燥した。その後、反応混合物を無水アセトニトリル(8.4mL)に溶解し、そして2−シアノエチル−N,N,N1,N1−テトライソプロピルホスホルアミダイト(2.12mL、6.08mmol)を添加した。反応混合物を不活性雰囲気下周囲温度で4時間攪拌した。反応の進行をTLC(ヘキサン:酢酸エチル 1:1)によりモニターした。溶媒を蒸発させ、その後残渣を酢酸エチル(70mL)に溶解しかつ5%水性NaHCO3(40mL)で洗浄した。酢酸エチル層を無水Na2SO4で乾燥しかつ濃縮した。得られた残渣をクロマトグラフィー分離して(溶離液として酢酸エチル)、5’−O−DMT−2’−O−(2−N,N−ジメチルアミノオキシエチル)−5−メチルウリジン−3’−[(2−シアノエチル)−N,N−ジイソプロピルホスホルアミダイト]を泡状物(1.04g、74.9%)として得た。
2’−(アミノオキシエトキシ)ヌクレオシドアミダイト(2’−O−(アミノオキシエチル)ヌクレオシドアミダイトとしてもまた当該技術分野で知られる)は以下の段落に記述されるとおり製造する。アデノシン、シチジンおよびチミジンヌクレオシドアミダイトは同様に製造する。
2’−O−アミノオキシエチルグアノシン類似物は、ジアミノプリンリボシドの選択的2’−O−アルキル化により得てよい。少量の3’−O−異性体と一緒に2’−O−(2−エチルアセチル)ジアミノプリンリボシドを提供するために、複数グラム(multigram)量のジアミノプリンリボシドをシェーリング AG(Schering AG)(ベルリン)から購入してよい。2’−O−(2−エチルアセチル)ジアミノプリンリボシドを分割し、そしてアデノシンデアミナーゼでの処理により2’−O−(2−エチルアセチル)グアノシンに転化してよい。(McGee,D.P.C.、Cook,P.D.、Guinosso,C.J.、第WO 94/02501 A1号明細書 940203。)標準的保護手順が2’−O−(2−エチルアセチル)−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)グアノシン、および還元されて2−N−イソブチリル−6−O−ジフェニルカルバモイル−2’−O−(2−ヒドロキシエチル)−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)グアノシンを提供するかもしれない2−N−イソブチリル−6−O−ジフェニルカルバモイル−2’−O−(2−エチルアセチル)−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)グアノシンを提供するはずである。前のとおり、ヒドロキシル基をミツノブ反応を介してN−ヒドロキシフタルイミドにより置換してよく、そして、保護されたヌクレオシドを通常どおりホスフィチル化して、2−N−イソブチリル−6−O−ジフェニルカルバモイル−2’−O−([2−フタルミドキシ]エチル)−5’−O−(4,4’−ジメトキシトリチル)グアノシン−3’−[(2−シアノエチル)−N,N−ジイソプロピルホスホルアミダイト]を生じる。
2’−ジメチルアミノエトキシエトキシ(2’−DMAEOE)ヌクレオシドアミダイト
2’−ジメチルアミノエトキシエトキシヌクレオシドアミダイト(2’−O−ジメチルアミノエトキシエチル、すなわち2’−O−CH2−O−CH2−N(CH2)2もしくは2’−DMAEOEヌクレオシドアミダイトとしてもまた当該技術分野で知られる)は以下のとおり製造する。他のヌクレオシドアミダイトは同様に製造する。
2[2−(ジメチルアミノ)エトキシ]エタノール(アルドリッチ(Aldrich)、6.66g、50mmol)を、100mLボンベ(bomb)中で攪拌しながらテトラヒドロフラン中のボランの溶液(1M、10mL、10mmol)にゆっくりと添加する。固体が溶解する際に水素ガスが発生する。O2−,2’−アンヒドロ−5−メチルウリジン(1.2g、5mmol)および重炭酸ナトリウム(2.5mg)を添加しかつボンベを封止し、油浴中に入れかつ155℃に26時間加熱する。ボンベを室温に冷却しかつ開放する。粗溶液を濃縮し、そして残渣を水(200mL)とヘキサン(200mL)との間で分配する。過剰のフェノールがヘキサン層に抽出される。水層を酢酸エチル(3×200mL)で抽出し、そして合わせられた有機層を水で1回洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥しかつ濃縮する。残渣を、溶離液としてメタノール/ジクロロメタン 1:20(2%トリエチルアミンを有する)を使用してシリカゲル上でカラム分離する(columned)。カラム画分を濃縮する際に無色固形物が生じ、これを収集して、表題化合物を白色固形物として生じる。
5’−O−ジメトキシトリチル−2’−O−[2(2−N,N−ジメチルアミノエトキシ)エチル]]−5−メチルウリジン
無水ピリジン(8mL)中の0.5g(1.3mmol)の2’−O−[2(2−N,N−ジメチルアミノエトキシ)エチル)]−5−メチルウリジンに、トリエチルアミン(0.36mL)および塩化ジメトキシトリチル(DMT−Cl、0.87g、2等量)を添加しかつ1時間攪拌する。反応混合物を水(200mL)中に注ぎかつCH2Cl2(2×200mL)で抽出する。合わせられたCH2Cl2層を飽和NaHCO3溶液、次いで飽和NaCl溶液で洗浄し、そして無水硫酸ナトリウムで乾燥する。溶媒の蒸発、次いでMeOH:CH2Cl2:Et3N(20:1、v/v、1%トリエチルアミンを含む)を使用するシリカゲルクロマトグラフィーは表題化合物を生じる。
ジイソプロピルアミノテトラゾリド(0.6g)および2−シアノエトキシ−N,N−ジイソプロピルホスホルアミダイト(1.1mL、2等量)を、アルゴンの雰囲気下で、CH2Cl2(20mL)に溶解された5’−O−ジメトキシトリチル−2’−O−[2(2−N,N−ジメチルアミノエトキシ)エチル)]−5−メチルウリジン(2.17g、3mmol)の溶液に添加する。反応混合物を一夜攪拌しそして溶媒を蒸発させる。生じる残渣を、溶離液として酢酸エチルを用いるシリカゲルフラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製して、表題化合物を生じる。
実施例2
オリゴヌクレオチド合成
未置換および置換ホスホジエステル(P=O)オリゴヌクレオチドは、ヨウ素による酸化を伴う標準的ホスホルアミダイトの化学を使用し、自動化DNA合成機(アプライド バイオシステムズ(Applied Biosystems)モデル380B)で合成する。
実施例3
オリゴヌクレオシド合成
MMI結合オリゴヌクレオシドとしてもまた同定されるメチレンメチルイミノ結合オリゴヌクレオシド、MDH結合オリゴヌクレオシドとしてもまた同定されるメチレンジメチルヒドラゾ結合オリゴヌクレオシド、およびアミド−3結合オリゴヌクレオシドとしてもまた同定されるメチレンカルボニルアミノ結合オリゴヌクレオシド、ならびに、アミド−4結合オリゴヌクレオシドとしてもまた同定されるメチレンアミノカルボニル結合オリゴヌクレオシド、ならびに、例えば交互に並ぶMMIおよびP=OもしくはP=S結合を有する混合バックボーン化合物は、米国特許第5,378,825号、同第5,386,023号、同第5,489,677号、同第5,602,240号および同第5,610,289号明細書(その全部は引用することにより本明細書に組み込まれる)に記述されるとおり製造する。
実施例4
PNA合成
ペプチド核酸(PNA)は、Peptide Nucleic Acids(PNA):Synthesis,Properties and Potential Applications、Bioorganic & Medicinal Chemistry、1996、4、5−23に言及される多様な手順のいずれかに従って製造する。それらはまた、米国特許第5,539,082号、同第5,700,922号および同第5,719,262号明細書(引用することにより本明細書に組み込まれる)に従って製造してもよい。
実施例5
キメラオリゴヌクレオチドの合成
本発明のキメラオリゴヌクレオチド、オリゴヌクレオシドもしくは混合オリゴヌクレオチド/オリゴヌクレオシドはいくつかの異なる型のものであることができる。これらは、結合されるヌクレオシドの「ギャップ」セグメントが、結合されるヌクレオシドの5’と3’の「ウイング(wing)」セグメントの間に位置される第一の型、および、「ギャップ」セグメントがオリゴマー化合物の3’もしくは5’いずれかの末端に配置される第二の「開放端」型を包含する。第一の型のオリゴヌクレオチドは「ギャップマー(gapmer)」もしくはギャップトオリゴヌクレオチド(gapped oligonucleotide)としてもまた当該技術分野で既知である。第二の型のオリゴヌクレオチドは「ヘミマー(hemimer)」もしくは「ウィングマー(wingmer)」としてもまた当該技術分野で既知である。
2’−O−アルキルホスホロチオエートおよび2’−デオキシホスホロチオエートオリゴヌクレオチドセグメントを有するキメラオリゴヌクレオチドは、上のとおり、アプライド バイオシステムズ(Applied Biosystems)の自動化DNA合成機モデル380Bを使用して合成する。オリゴヌクレオチドは、自動化合成機、ならびにDNA部分について2’−デオキシ−5’−ジメトキシトリチル−3’−O−ホスホルアミダイト、ならびに5’および3’ウイングについて5’−ジメトキシトリチル−2’−O−メチル−3’−O−ホスホルアミダイトを使用して合成する。標準的合成周期は、RNAについて4回および2’−O−メチルについて2回反復される、テトラゾールおよび塩基の供給後の待機段階を600秒に増大させることにより改変する。完全に保護されたオリゴヌクレオチドを支持体から切断し、そしてリン酸基を3:1アンモニア/エタノール中で室温で一夜脱保護し、その後乾固まで凍結乾燥する。その後、室温で24時間のメタノール性アンモニア中での処理を行って全部の塩基を脱保護し、そしてサンプルを再度乾固まで凍結乾燥する。ペレットをTHF中1M TBAFに室温で24時間再懸濁して2’位を脱保護する。その後、反応を1M TEAAでクエンチし、そしてその後、サンプルを、G25サイズ排除カラム上で脱塩される前にロトバック(rotovac)により1/2容量に減量する。その後、回収されたオリゴを、収量について分光測光的に、ならびに純度についてキャピラリー電気泳動および質量分析により分析する。
[2’−O−(2−メトキシエチル)]−−[2’−デオキシ]−−[2’−O−(メトキシエチル)]キメラホスホロチオエートオリゴヌクレオチドは、2’−O−メチルアミダイトについての2’−O−(メトキシエチル)アミダイトの置換を伴い、2’−O−メチルキメラオリゴヌクレオチドについての上の手順に従って製造した。
[2’−O−(2−メトキシエチルホスホジエステル]−−[2’−デオキシホスホロチオエート]−−[2’−O−(メトキシエチル)ホスホジエステル]キメラオリゴヌクレオチドは、2’−O−メチルアミダイトについての2’−O−(メトキシメチル)アミダイトの置換、キメラ構造のウイング部分内のホスホジエステルヌクレオチド間結合を生成させるためのヨウ素での酸化、および、中央のギャップのホスホロチオエートヌクレオチド間結合を生成させるための3,H−1,2ベンゾジチオール−3−オン1,1ジオキシド(ビューケージ(Beaugage)試薬)を利用する硫化を伴い、2’−O−メチルキメラオリゴヌクレオチドについての上の手順に従って製造する。
実施例6
オリゴヌクレオチドの単離
細孔性ガラス(controlled pore glass)カラム(アプライド バイオシステムズ(Applied Biosystems))からの切断、および濃水酸化アンモニウム中55℃で18時間脱保護した後に、オリゴヌクレオチドもしくはオリゴヌクレオシドを、2.5容量のエタノールを用いる0.5M NaClからの2回の沈殿により精製する。合成されたオリゴヌクレオチドは、変性ゲル上でのポリアクリルアミドゲル電気泳動により分析し、そして最低85%の完全長物質であることを判断した。合成で得られたホスホロチオエートおよびホスホジエステル結合の相対量を、31P核磁気共鳴分光法により定期的に確認し、また、いくつかの研究については、オリゴヌクレオチドをChiangら、J.Biol.Chem.1991、266、18162−18171により記述されるとおりHPLCにより精製した。HPLC精製された物質で得られた結果は、HPLC精製されない物質で得られたものに類似であった。
実施例7
オリゴヌクレオチド合成−96穴プレート形式
オリゴヌクレオチドを、標準的な96穴形式で同時に96種の配列を集成することが可能な自動化合成機上で固相P(III)ホスホルアミダイト化学を介して合成した。ホスホジエステルヌクレオチド間結合は水性ヨウ素を用いる酸化により提供された。ホスホロチオエートヌクレオチド間結合は、水性アセトニトリル中で3,H−1,2ベンゾジチオール−3−オン1,1,ジオキシド(ビューケージ(Beaucage)試薬)を利用する硫化により生成させた。標準的な塩基保護されたβ−シアノエチルジイソプロピルホスホルアミダイトは、商業的供給元(例えばPE−アプライド バイオシステムズ(PE−Applied Biosystems)、カリフォルニア州フォスターシティ、もしくはファルマシア(Pharmacia)、ニュージャージー州ピスカタウェイ)から購入した。非標準的ヌクレオシドは既知の文献もしくは特許を与えられた方法に従って合成する。それらは、塩基保護されたβ−シアノエチルジイソプロピルホスホルアミダイトとして利用する。
実施例8
オリゴヌクレオチド分析−96穴プレート形式
各ウェル中のオリゴヌクレオチドの濃度は、サンプルの希釈およびUV吸収分光法により評価した。個々の生成物の完全長の完全性は、96穴形式(ベックマン(Beckman)P/ACETM MDQ)、もしくは個別に調製されたサンプルについては商業的CE装置(例えばベックマン(Beckman)P/ACETM 5000、ABI 270)のいずれかでのキャピラリー電気泳動(CE)により評価した。塩基およびバックボーン組成は電子スプレー質量分析法を利用する化合物の質量分析により確認した。全部のアッセイ試験プレートは、単一および複数チャンネルのロボット式ピペッターを使用してマスタープレートから希釈した。プレートは、プレート上の化合物の最低85%が最低85%の完全長であった場合に許容できると判断した。
実施例9
細胞培養およびオリゴヌクレオチド処理
標的核酸発現に対するアンチセンス化合物の影響は、標的核酸が測定可能なレベルで存在することを条件に、多様な細胞型のいずれでも試験することができる。これは、例えばPCRもしくはノーザンブロット分析を使用して慣例に測定することができる。以下の7細胞型を具体的説明の目的上提供するが、しかし、標的が選ばれた細胞型で発現されることを条件に、他の細胞型を慣例に使用することができる。これは、当該技術分野で慣例の方法、例えばノーザンブロット分析、リボヌクレアーゼ保護アッセイもしくはRT−PCRにより容易に測定することができる。
T−24細胞:
ヒト移行上皮細胞膀胱癌細胞系T−24はアメリカン タイプ カルチャー コレクション(American Type Culture Collection)(ATCC)(バージニア州マナサス)から得た。T−24細胞は、10%ウシ胎児血清(ギブコ/ライフ テクノロジーズ(Gibco/Life Technologies)、メリーランド州ゲイタースバーグ)、ペニシリン1mLあたり100単位、およびストレプトマイシン1mLあたり100マイクログラム(ギブコ/ライフ テクノロジーズ(Gibco/Life Technologies)、メリーランド州ゲイタースバーグ)を補充された完全マッコイ5A基礎培地(ギブコ/ライフ テクノロジーズ(Gibco/Life Technologies)、メリーランド州ゲイタースバーグ)中で慣例に培養した。細胞は、それらが90%コンフルエンスに達した場合に、トリプシン処理および希釈により慣例に継代した。細胞を、RT−PCR分析での使用のために7000細胞/ウェルの密度で96穴プレート(ファルコン−プライマリア(Falcon−Primaria)#3872)に接種した。
A549細胞:
ヒト肺癌細胞系A549はアメリカン タイプ カルチャー コレクション(American Type Culture Collection)(ATCC)(バージニア州マナサス)から得た。A549細胞は、10%ウシ胎児血清(ギブコ/ライフ テクノロジーズ(Gibco/Life Technologies)、メリーランド州ゲイタースバーグ)、ペニシリン1mLあたり100単位、およびストレプトマイシン1mLあたり100マイクログラム(ギブコ/ライフ テクノロジーズ(Gibco/Life Technologies)、メリーランド州ゲイタースバーグ)を補充されたDMEM基礎培地(ギブコ/ライフ テクノロジーズ(Gibco/Life Technologies)、メリーランド州ゲイタースバーグ)中で慣例に培養した。細胞は、それらが90%コンフルエンスに達した場合にトリプシン処理および希釈により慣例に継代した。
NHDF細胞:
ヒト新生児皮膚線維芽細胞(NHDF)はクローンティックス コーポレーション(Clonetics Corporation)(メリーランド州ウォーカーズビル)から得た。NHDFは、供給元により推奨されたとおり補充された線維芽細胞成長培地(クローンティックス コーポレーション(Clonetics Corporation)、メリーランド州ウォーカーズビル)中で慣例に維持した。細胞は、供給元により推奨されたとおり10継代までの間維持した。
HEK細胞:
ヒト胎児ケラチノサイト(HEK)はクローンティックス コーポレーション(Clonetics Corporation)(メリーランド州ウォーカーズビル)から得た。HEKは、供給元により推奨されたとおり処方されたケラチノサイト成長培地(クローンティックス コーポレーション(Clonetics Corporation)、メリーランド州ウォーカーズビル)中で慣例に維持した。細胞は、供給元により推奨されたとおり10継代までの間慣例に維持した。
HepG2細胞:
ヒト肝芽細胞腫細胞系HepG2はアメリカン タイプ カルチャー コレクション(American Type Culture Collection)(ATCC)(バージニア州マナサス)から得た。HepG2細胞は、10%ウシ胎児血清、非必須アミノ酸および1mMピルビン酸ナトリウム(ギブコ/ライフ テクノロジーズ(Gibco/Life Technologies)、メリーランド州ゲイタースバーグ)を補充されたイーグルMEM中で慣例に培養した。細胞は、それらが90%コンフルエンスに達した場合にトリプシン処理および希釈により慣例に継代した。細胞を、RT−PCR分析での使用のために7000細胞/ウェルの密度で96穴プレート(ファルコン−プライマリア(Falcon−Primaria)#3872)に接種した。
AML12細胞:
AML12(αマウス肝12)細胞系は、ヒトTGFαについてトランスジェニックのマウス(CD1血統、系統MT42)からの肝細胞から樹立した。細胞は、0.005mg/mlインスリン、0.005mg/mlトランスフェリン、5ng/mlセレンおよび40ng/mlデキサメサゾン、ならびに90%;10%ウシ胎児血清を含むダルベッコの改変イーグル培地およびハムF12培地の1:1混合物中で培養する。継代培養のためには、消費された培地を除去し、そして0.25%トリプシン、0.03%EDTA溶液の新鮮培地を添加する。新鮮トリプシン溶液(1ないし2ml)を添加し、そして、細胞がはがれるまで培養物を室温でそのまま放置する。
初代マウス肝細胞:
初代マウス肝細胞は、チャールズ リバー ラブス(Charles River Labs)(マサチューセッツ州ウィルミントン)から購入されたCD−1マウスから調製し、そして、10%ウシ胎児血清(ギブコ/ライフ テクノロジーズ(Gibco/Life Technologies)、メリーランド州ゲイタースバーグ)、250nMデキサメサゾン(シグマ(Sigma))および10nMウシインスリン(シグマ(Sigma))を補充された肝細胞接着培地(Hepatoyte Attachment Media)(ギブコ(Gibco))中で慣例に培養した。細胞を、RT−PCR分析での使用のために10000細胞/ウェルの密度で96穴プレート(ファルコン−プライマリア(Falcon−Primaria)#3872)に接種した。
アンチセンス化合物での処理:
細胞が80%コンフルエンシーに達した場合にそれらをオリゴヌクレオチドで処理する。96穴プレート中で成長された細胞については、ウェルを200μLのOPTI−MEMTM−1血清使用量低減培地(ギブコ BRL(Gibco BRL))で1回洗浄し、そしてその後、3.75μg/mLのリポフェクチン[LIPOFECTIN]TM(ギブコ BRL(Gibco BRL))および所望の濃度のオリゴヌクレオチドを含有する130μLのOPTI−MEMTM−1で処理する。4〜7時間の処理後に培地を新鮮培地と交換する。細胞はオリゴヌクレオチド処理16〜24時間後に収集する。
実施例10
アポリポタンパク質(a)発現のオリゴヌクレオチド阻害の分析
アポリポタンパク質(a)発現のアンチセンス調節は当該技術分野で既知の多様な方法にてアッセイすることができる。例えば、アポリポタンパク質(a)のmRNAレベルは、例えばノーザンブロット分析、競争的ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)もしくは実時間PCR(RT−PCR)により定量することができる。実時間定量的PCRが現在好ましい。RNA分析は全細胞RNAもしくはポリ(A)+ mRNAで実施することができる。RNAの単離方法は、例えばAusubel,F.M.ら、Current Protocols in Molecular Biology、第1巻、pp.4.1.1−4.2.9および4.5.1−4.5.3、ジョン ワイリー アンド サンズ インク(John Wiley & Sons,Inc.)、1993に教示される。ノーザンブロット分析は当該技術分野で慣例であり、かつ、例えばAusubel,F.M.ら、Current Protocols in Molecular Biology、第1巻、pp.4.2.1−4.2.9、ジョン ワイリー アンド サンズ インク(John Wiley & Sons,Inc.)、1996に教示される。実時間定量的(PCR)は、PE−アプライド バイオシステムズ(PE−Applied Biosystems)、カリフォルニア州フォスターシティから入手可能かつ製造元の説明書に従って使用される、商業的に入手可能なABI プリズム[PRISM]TM 7700配列検出装置を使用して、便宜的に達成することができる。
実施例11
ポリ(A)+ mRNAの単離
ポリ(A)+ mRNAはMiuraら、Clin.Chem.、1996、42、1758−1764に従って単離することができる。他のポリ(A)+ mRNA単離方法は、例えばAusubel,F.M.ら、Current Protocols in Molecular Biology、第1巻、pp.4.5.1−4.5.3、ジョン ワイリー アンド サンズ インク(John Wiley & Sons,Inc.)、1993に教示される。簡潔には、96穴プレート上で成長される細胞については、成長培地を細胞から除去し、そして各ウェルを200μLの冷PBSで洗浄する。60μLの溶解緩衝液(10mMトリス−HCl、pH7.6、1mM EDTA、0.5M NaCl、0.5%NP−40、20mMバナジル−リボヌクレオシド錯体)を各ウェルに添加し、プレートを穏やかに攪拌し、そしてその後室温で5分間インキュベートする。55μLのライセートをオリゴd(T)被覆96穴プレート(AGCT インク(AGCT Inc.)、カリフォルニア州アーヴァイン)に移す。プレートを室温で60分間インキュベートし、200μLの洗浄緩衝液(10mMトリス−HCl、pH7.6、1mM EDTA、0.3M NaCl)で3回洗浄する。最後の洗浄後に、プレートをペーパータオル上で吸い取って過剰の洗浄緩衝液を除去し、そしてその後5分間風乾する。70℃に予め加熱された60μLの溶出緩衝液(5mMトリス−HCl pH7.6)を各ウェルに添加し、プレートを90℃のホットプレート上で5分間インキュベートし、そしてその後、溶出物を新しい96穴プレートに移す。
実施例12
全RNAの単離
全RNAは、製造元の推奨される手順に従って、キアゲン インク(Qiagen Inc.)(カリフォルニア州バレンシア)から購入されるRNイージー 96[RNEASY 96]TMキットおよび緩衝液を使用して単離することができる。簡潔には、96穴プレート上で成長される細胞について、成長培地を細胞から除去し、そして各ウェルを200μLの冷PBSで洗浄する。100μLの緩衝液RLTを各ウェルに添加し、そしてプレートを20秒間活発に攪拌する。その後、100μLの70%エタノールを各ウェルに添加し、そしてピペットで3回出し入れすることにより内容物を混合する。その後、サンプルを、廃棄物収集トレイを備え付けられたキアバック[QIAVAC]TMマニホールドに接続されかつ真空源に接続されたRNイージー 96[RNEASY 96]TM穴プレートに移す。真空を15秒間適用する。1mLの緩衝液RW1をRNイージー 96[RNEASY 96]TMプレートの各ウェルに添加し、そして真空を再度15秒間適用した。その後、1mLの緩衝液RPEをRNイージー 96[RNEASY 96]TMプレートの各ウェルに添加し、そして真空を15秒の期間、適用する。その後、緩衝液RPE洗浄を反復し、そして真空を追加の10分間適用する。その後、プレートをキアバック[QIAVAC]TMマニホールドから取り外し、そしてペーパータオル上で吸い取る。その後、プレートを、1.2mLの収集管を含有する収集管ラックを備え付けられたキアバック[QIAVAC]TMマニホールドに再接続する。その後、RNAを、各ウェルに60μLの水をピペットで入れること、1分インキュベートすること、およびその後30秒間真空を適用することにより溶出する。溶出段階を、追加の60μLの水で反復する。
実施例13
アポリポタンパク質(a)のmRNAレベルの実時間定量的PCR分析
アポリポタンパク質(a)のmRNAレベルの定量は、製造元の説明書に従ってABI プリズム[PRISM]TM7700配列検出装置(PE−アプライド バイオシステムズ(PE−Applied Biosystems)、カリフォルニア州フォスターシティ)を使用する実時間定量的PCRにより測定することができる。これは、実時間でのポリメラーゼ連鎖反応(PCR)生成物の高スループット定量を可能にする、閉鎖管のゲルに基づかない蛍光検出系である。PCRが完了した後に増幅生成物が定量される標準的PCRと対照的に、実時間定量的PCRでの生成物は、それらが蓄積する際に定量される。これは、順および逆PCRプライマー間で特異的にアニーリングしかつ2種の蛍光色素を含有するオリゴヌクレオチドプローブをPCR反応に包含することにより達成される。レポーター色素(例えば、JOE、FAMもしくはVIC、オペロン テクノロジーズ インク(Operon Technologies Inc.)、カリフォルニア州アルメダもしくはPE−アプライド バイオシステムズ(PE−Applied Biosystems)、カリフォルニア州フォスターシティのいずれかから得られる)をプローブの5’端に結合し、そしてクエンチャー色素(例えばTAMRA、オペロン テクノロジーズ インク(Operon Technologies Inc.)、カリフォルニア州アルメダもしくはPE−アプライド バイオシステムズ(PE−Applied Biosystems)、カリフォルニア州フォスターシティのいずれかから得られる)をプローブの3’端に結合する。プローブおよび色素が無傷である場合、レポーター色素の発光は3’のクエンチャー色素の近接により消光される。増幅の間、標的配列へのプローブのアニーリングが、Taqポリメラーゼの5’−エンドヌクレアーゼ活性により切断されることができる基質を創製する。PCR増幅周期の伸長期の間に、Taqポリメラーゼによるプローブの切断がプローブの残部から(およびこれゆえにクエンチャー部分から)レポーター色素を遊離し、そして配列特異的な蛍光シグナルを生成させる。各周期で、付加的なレポーター色素分子がそれらのそれぞれのプローブから切断され、そして、蛍光強度を、ABI プリズム[PRISM]TM7700配列検出装置に作り付けられたレーザー光学系により一定の間隔でモニターする。各アッセイにおいて、未処理の対照サンプルからのmRNAの連続希釈物を含有する一連の同時反応が標準曲線を生成させ、それを使用して、試験サンプルのアンチセンスオリゴヌクレオチド処理後の阻害パーセントを定量する。
実施例14
アポリポタンパク質(a)のmRNAレベルのノーザンブロット分析
アンチセンス処理18時間後に、細胞単層を冷PBSで2回洗浄し、そして1mLのRNAゾール[RNAZOL]TM(テル−テスト「B」インク(TEL−TEST“B”Inc.)、テキサス州フレンズウッド)中で溶解する。全RNAは製造元の推奨されるプロトコルに従って調製する。20マイクログラムの全RNAを、MOPS緩衝系(アムレスコ インク(AMRESCO,Inc.)オハイオ州ソロン)を使用する1.1%ホルムアルデヒドを含有する1.2%アガロースゲルを通る電気泳動により分画する。RNAを、ノーザン/サザン転写緩衝系(テル−テスト「B」インク(TEL−TEST“B”Inc.)、テキサス州フレンズウッド)を使用する一夜キャピラリー転写により、ゲルからハイボンド[HYBOND]TM−N+ナイロンメンブレン(アマーシャム ファルマシア バイオテック(Amersham Pharmacia Biotech)、ニュージャージー州ピスカタウェイ)に転写する。RNAの転写をUV可視化により確認する。メンブレンを、ストラタリンカー[STRATALINKER]TMUVクロスリンカー(Crosslinker)2400(ストラタジーン インク(Stratagene,Inc.)、カリフォルニア州ラホヤ)を使用してUV架橋することにより固定し、そしてその後、ストリンジェントな条件についての製造元の推奨を使用して、クイックハイブ[QUICKHYB]TMハイブリダイゼーション溶液(ストラタジーン(Stratagene)、カリフォルニア州ラホヤ)を使用してプロービングする。
実施例15
ヒトアポリポタンパク質(a)に標的を定める、2’−MOEウイングおよびデオキシギャップを有するキメラホスホロチオエートオリゴヌクレオチド
本発明により、一連のオリゴヌクレオチドを、公表された配列(ジェンバンク(GenBank)受託番号NM_005577、配列番号3として本明細書に組み込まれる)を使用して、ヒトアポリポタンパク質(a)RNAの多様な領域に標的を定めるよう設計した。該オリゴヌクレオチドを表1に示す。「標的部位」はオリゴヌクレオチドが結合する特定の標的配列の最初の(最も5’の)ヌクレオチド番号を示す。表1中の全化合物は、双方の側(5’および3’の方向)で5ヌクレオチドの「ウイング」により隣接される10の2’−デオキシヌクレオチドよりなる中央「ギャップ」領域から構成される長さ20ヌクレオチドのキメラオリゴヌクレオチド(「ギャップマー」)である。該ウイングは2’−メトキシエチル(2’−MOE)ヌクレオチドから構成される。ヌクレオシド間(バックボーン)結合は該オリゴヌクレオチド全体でホスホロチオエート(P=S)である。全シチジン残基は5−メチルシチジンである。
アポリポタンパク質(a)のタンパク質レベルのウェスタンブロット分析
ウェスタンブロット分析(イムノブロット分析)は標準的方法を使用して実施する。細胞をオリゴヌクレオチド処理16〜20時間後に収集し、PBSで1回洗浄し、レムリ(Laemmli)緩衝液(100μl/ウェル)に懸濁し、5分間沸騰させそして16%SDS−PAGEゲルに負荷する。ゲルを150Vで1.5時間泳動し、そしてウェスタンブロッティングのためメンブレンに転写する。一次抗体種に対し向けられた放射標識もしくは蛍光で標識された二次抗体とともに、アポリポタンパク質(a)に向けられた適切な一次抗体を使用する。バンドを、ホスホルイメジャー[PHOSPHRIMAGER]TM(モレキュラー ダイナミックス(Molecular Dynamics)、カリフォルニア州サニーベール)を使用して可視化する。
Claims (20)
- ヒトアポリポタンパク質(a)をコードする核酸分子と特異的にハイブリダイズしかつヒトアポリポタンパク質(a)の発現を阻害する、ヒトアポリポタンパク質(a)をコードする核酸分子に標的を定められた長さ8ないし50核酸塩基の化合物。
- アンチセンスオリゴヌクレオチドである、請求項1記載の化合物。
- アンチセンスヌクレオチドが、配列番号7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40もしくは41を含んで成る配列を有する、請求項2記載の化合物。
- アンチセンスオリゴヌクレオチドが最低1個の修飾ヌクレオシド間結合を含んで成る、請求項2記載の化合物。
- 修飾ヌクレオシド間結合がホスホロチオエート結合である、請求項4記載の化合物。
- アンチセンスオリゴヌクレオチドが最低1個の修飾糖部分を含んで成る、請求項2記載の化合物。
- 修飾糖部分が2’−O−メトキシエチル糖部分である、請求項6記載の化合物。
- アンチセンスオリゴヌクレオチドが最低1個の修飾核酸塩基を含んで成る、請求項2記載の化合物。
- 修飾核酸塩基が5−メチルシトシンである、請求項8記載の化合物。
- アンチセンスオリゴヌクレオチドがキメラオリゴヌクレオチドである、請求項2記載の化合物。
- ヒトアポリポタンパク質(a)をコードする核酸分子上の活性部位の最低8核酸塩基部分と特異的にハイブリダイズする、長さ8ないし50核酸塩基の化合物。
- 請求項1記載の化合物および製薬学的に許容できる担体もしくは希釈剤を含んで成る組成物。
- コロイド分散系をさらに含んで成る、請求項12記載の組成物。
- 化合物がアンチセンスオリゴヌクレオチドである、請求項12記載の組成物。
- ヒトアポリポタンパク質(a)の発現が阻害されるように、細胞もしくは組織を請求項1記載の化合物と接触させることを含んで成る、前記細胞もしくは組織中でのヒトアポリポタンパク質(a)の発現の阻害方法。
- ヒトアポリポタンパク質(a)の発現が阻害されるように、ヒトアポリポタンパク質(a)に関連する疾患もしくは状態を有するヒトに、治療上もしくは予防上有効な量の請求項1記載の化合物を投与することを含んで成る、前記ヒトの治療方法。
- 状態が異常な脂質代謝を伴う、請求項16記載の方法。
- 状態が異常なコレステロール代謝を伴う、請求項16記載の方法。
- 状態がアテローム硬化症である、請求項16記載の方法。
- 疾患が心血管系疾患である、請求項16記載の方法。
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