JP2003516125A - Dna単離方法 - Google Patents
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Abstract
Description
細工法装置(microfabricated apparatus)、特にはCD機器における細胞試料
、特には哺乳類の血液からのDNAの単離に関する。
。DNAの確保は、配列決定及びハイブリダイゼーション技術の応用を通じて、
多数の生物体中のゲノムの分析及び特徴付けに大いに役立ってきた。DNA単離
及び精製のための従来の手法は、フェノール/クロロホルムを含む多段階の工程
に基づいている(例えば、Sambrook, J 他、Molecular Cloning:A Laboratory,
Manual. 2nd Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press、1989参照)。
これらの工程は、本来的に煩雑であり、結局ダメージをうけたDNA試料を得る
ことに帰することもあり得るし、また一般的には自動化するのは難しい。無害な
抽出方法が幾つか報告されてはいる(Nucleic Acids Research, 15, 859, 1897
;Analytical Biochemistry, 120, 282-288 1982)が、これらの手法は、大規模
な透析、あるいはフィルターの使用が必要とされる。改良抽出方法では、カオト
ロピック剤(Bio Techniques, 22, 550-553, 1997)を使用するものもある。他
には、特定の細胞型に適用可能であって、溶解、希釈、PCR管への添加だけで
済むものもある(Bio Techniques, 11, 30-31, 1991)。
DNAが結合し、その膜からDNAの溶出が可能である十分な親水性及び電気陽
性度を呈する変性ガラス繊維膜に関する。該変性ガラス繊維膜は、他の細胞成分
からのDNAの単離に有益である。ガラス繊維上での血液からDNAの単離に関
して、有益な製品もある(GFX(登録商標)Genomic Blood DNA Purification
Kit, Amersham Pharmacia Biotech)。
当該ポリヌクレオチドを磁性微粒子のような固体表面に可逆的にかつ非特異的に
結合させることにより、DNA、RNA、及びPNAといったポリヌクレオチド
を分離する方法を開示する。Dynal A/S、ノルウェーにより市販されている製品
「Dynabeads DNA Sirect」において同様の手法が利用されてきた。
膜を有するピペットチップ機器を用いて細胞から核を分離する方法を開示してい
る。本方法は、細胞核の大部分を無傷で残しながら、核膜の一部と一緒に細胞質
膜を選択的に溶解するよう全細胞を含有する液体を処理することを包含する。処
理液を該膜にのせ、それによりその表面上に溶解核からのDNAのメッシュが形
成され無傷の細胞核が捕捉される。細胞の他の成分から捕捉された細胞核を分離
するために、次いでその表面上のDNAからなるメッシュを洗浄する。当該方法
で使用される機器もまた記載されており、当該機器は、その先方端全体を覆う膜
を有するピペットチップからなる。
ィング、ボルテクス(vortexing)あるいは加熱インキュベーション工程がしば
しば必要とされる従来技術の実質的な簡易化が要求されている。全血からDNA
を精製する1つの方法では、直接PCR(Nucleic Acids Reseach, 24, 380〜38
5, 1996)に先立って白血球細胞を単離するので、PCRの主要な阻害物質、す
なわちヘモグロビンは除去されている。別の方法(Science, 282, 399〜401, 19
98)は細胞を溶解させる食塩水と血液を混同することを包含する。次いで溶解物
を、電荷相互作用によりDNAが結合するガラス壁を有するチャンバー中に導入
し、残りの試料は排出する。DNAはエタノール/水混合物で洗浄した後、隣接
するチャンバーへ溶出する。
方法及び装置に関する。本発明は、試料流入ポート、液体マイクロチャネル、反
応チャンバー、及び流出ポートを含む回転可能なディスクからなる装置を提供す
る。該装置内での例えば試薬、試料、及び他の液体成分といった液体の移動は、
ディスクに埋め込まれたマイクロチャネルを通じてディスクの回転により生じる
液体の求心加速度により促進される。DNA合成、微量抽出、及び細胞カウント
を含む広汎な工程を実施するための本発明の装置に特異的な方法が提供される。
料から短い(500bp)及び中程度の(4800bp)DNAの抽出及び濃縮
をする方法は、J. Biomechanical Engineering, 121, 23〜27(1999)に開示さ
れている。この工程により得られた核酸を分析するためにPCR及びゲル電気泳
動を利用した。
容易には自動化できない。試料調製は、ゲノムDNAの投入が必要とされ、一貫
して工程における律速段階であることが示されている。本発明は、複数の細胞試
料を並行して処理させることが可能な様式におけるDNAの単離に関する。DN
A単離の従来法に係る複雑で連続的な抽出工程が、各ウェルが試料を添加したり
除去したりするために別々にアクセスされなければならないマルチチャネル及び
マイクロウェルピペッティング工程とは対照的に、ミクロ流体工学を利用して並
行して途切れなく実施される。
A及び/あるいは細胞核を単離する方法を提供し、当該方法は、DNA及び/あ
るいは細胞核に対するバリア(barrier)として作用する1つあるいはそれ以上
のマイクロチャネル中にメッシュを形成することを包含する。 好ましくは、前記微細工法装置の1つあるいはそれ以上のマイクロチャネルに
おいて形成されるメッシュが核酸のメッシュを包含する。
混合物を単離する方法を提供し、当該方法は: a)細胞質膜及び少なくとも核膜の一部を溶解するように全細胞の懸濁液を溶解
剤で処理し; b)工程a)からの溶解物を、微細工法装置のマイクロチャネルであって、当該
各マイクロチャネルが、マイクロチャネルを通じて液体を通過させながらDNA
及び細胞核の通過あるいは流動を妨げるための手段を組み込むことによりDNA
からなるメッシュをチャネル内に形成するマイクロチャネル中に導入し;そして c)該DNAからなるメッシュを洗浄することを包含する。 細胞核を単離することを所望する場合、工程a)が、一定量の核膜が無傷なま
まであるのに適切なように実施されなければならない。
合物を単離するための微細工法装置を提供し、その装置は回転可能なディスクを
含み、そのディスクは、環状の試料リザーバ−と連絡してディスクの中心に向っ
て配置し、次いでそのリザーバーが放射状に配列した複数のマイクロチャネルと
連結される試料導入ポートを含み、各マイクロチャネルは、ディスクの周縁部に
向って配置される入口チャネル及び出口チャネル、そしてマイクロチャネルを通
じて液体を通過させながらDNA及び細胞核の通過あるいは流動を妨げるために
各マイクロチャネルに組み込まれた手段を含む。 DNA及び細胞核の通過あるいは流動を妨げるために各マイクロチャネルに組
み込まれた手段がバリアを包含するのが適切である。
ながらDNA及び細胞核の流動あるいは通過を妨げるビーズからなる。本発明に
係る第2の実施の形態において、該バリアはマイクロチャネル内に配置された隆
起構造からなる。該隆起構造は、例えば支柱(pillar)を形成するよう成形され
ているのが好ましい。本発明の特に好ましい実施の形態においては、該隆起構造
がマイクロチャネルの底面部に配置され、液体を通過させながらDNA及び細胞
核の流動あるいは通過を妨げるような支柱を形成するよう成形されている。
、DNA及び細胞核を単離するのに利用され得る。本発明は、特には哺乳類の細
胞DNA、更にいえば、全血からのDNAの単離に適している。適切には、本方
法の工程a)が、細胞溶解物を微細工法装置のマイクロチャネル中へ導入するの
に前もって、別々の容器中で実施されてもよい。別法としては、工程a)が、該
溶解物を該装置のマイクロチャネル中へ導入するのに前もって、例えば環状の試
料リザーバ−内部にある全細胞懸濁液を溶解剤で処理することにより、微細工法
装置内で実施されてもよい。
チック材であってもよい。適切なプラスチックは、ポリマー中の架橋の程度次第
で多孔質であってもなくてもよく、そのようなプラスチックとしては、ポリスチ
レン、スチレンアクリレートコポリマー、ジビニルベンゼンで架橋したポリスチ
レン、ポリビニルトルエン、ポリメタクリレート、及びポリカーボネートが挙げ
られる。別の材料としては、ポリサッカライド(例えばデキストラン)、金属酸
化物(例えばアルミニウム酸化物)、ガラス、及びカーボンが挙げられる。更に
、該ビーズの表面を、表面がDNAにより更に結合されやすくさせるために化学
的及び物理的手段により、例えば陽性電荷種で誘導することにより処理したり活
性化したりしてもよい。
実施したりDNAをプロセシングしたりするための反応チャンバーを更に包含し
、直列でバリアの下流部に連結しているのが好ましい。
する図面を参照して以下に記載する: 図1は、DNA単離を実施するための微細組立てディスクの平面図であり; 図2aは、DNA単離のためのマイクロビーズを含有する微細工法装置の個々の
マイクロチャネル要素の平面図における略図であり; 図2bは、マイクロチャネルが支柱を形成するためにマイクロチャネルの底面部
上に配置された隆起構造を提供する微細工法装置の個々のマイクロチャネル要素
の平面図における略図であり; 図2cは、マイクロチャネル中に形成されたチャンバー内部にマイクロビーズが
含有されている微細工法装置の個々のマイクロチャネル要素の平面図における略
図であり; 図2dは、マイクロチャネル中に形成されたチャンバー内部に隆起構造がが配置
した微細工法装置の個々のマイクロチャネル要素の平面図における略図であり;
図3は、本発明の方法に従ってビーズにより捕捉し、エピ蛍光顕微鏡を用いてPi
coGreen染色液により視覚化した、抗凝結剤としてEDTAを混ぜたヒトの全血
からのDNAを示す画像であり;そして 図4は、本方法に従ってPBS緩衝液をマイクロチャネルに通したコントロール
試料からの画像である。
連結する試料導入ポート(図示せず)を提供し、次いでそのリザーバーが放射状
に配列した複数のマイクロチャネル(3)と連結するように微細細工された回転
可能なディスク(1)からなる微細工法装置(図1に示す)を用いて、細胞から
DNAを単離する方法を提供する。各マイクロチャネル(3)は、液体及び/あ
るいは試料を除去するためにディスクの周縁部に向って配置する試料入口チャネ
ル(4)及び出口チャネル(5)を含む。閉鎖したチャンバーと連結するチャネ
ルを特定するためにカバープレート(図示せず)をディスク上に置いている。各
マイクロチャネルは、一方の末端で環状の試料リザーバーに、反対側の末端にで
共通の廃液チャネルに連結している。
過性プラスチック又はポリマー材料から分離成形し、装置を液体で充填させ液体
試料を除去させるために閉鎖構造で特定の位置に開口部を提供するよう組み立て
ることにより形成される。適切には、プラスチック又はポリマー材料が、疎水性
を有するように選択され得る。好ましいプラスチック又はポリマー材料は、ポリ
スチレンあるいはポリカーボネートから選択される。別法としては、マイクロチ
ャネルの表面を、所望の特性を与えるようマイクロチャネルの内部に親水性又は
疎水性の局在領域を作るために、該表面の特性を変えるための化学的又は物理的
手段を用いて付加的に選択的に変更してもよい。好ましいプラスチックは、荷電
された表面をもつポリマ−、適切には、化学的に若しくはイオンプラズマで処理
されたポリスチレン、ポリカーボネート、あるいは他の硬質透明ポリマーから選
択される。
ツがあるいはそれぞれが貼り合わせるときに固体ディスク本体の内部で中心部か
ら放射上に配置させて複数のマイクロチャネルを形成する成形構造を搭載する。
別法としては、マイクロチャネルがディスクの表面中に微細細工される微細加工
方法により形成され、チャネルを閉鎖するために例えばプラスチック膜であるカ
バープレートをその表面に接着してもよい。
。1つの好ましい態様(図2aに示す)においては、各マイクロチャネル(10
)が左側末端でリザーバー(2)に連結する、チャネル(12)を通じて反応チ
ャンバー(15)まで延びる試料入口チャネル(11)、及び右側末端で廃棄チ
ャネル(6)に連結する出口チャネル(13)からなる。各マイクロチャネルは
反応チャンバー(15)の上流にマイクロビーズ(14)の層あるいは「プラグ
」を含み、マイクロチャネルの階段壁あるいは境界面(interface)(16)に
より適所に維持されている。このビーズの「プラグ」は、液体を通過させながら
マイクロチャネルを通過するDNA及び細胞核を捕捉する役割を果たす。好都合
には、境界面(16)の上流のチャネル(11)は、境界面(16)の下流のチ
ャネル(12)よりも大きい断面積を有することにより特徴付けられる。適切に
は界面(16)の下流のチャネル(12)の断面積が、界面(16)の上流のチ
ャネルの断面積の0.99〜0.01倍であり、マイクロビーズを通過させない寸
法であるのが適切であり、マイクロビースは、チャネルの上流と下流との間の境
界面で「プラグ」を形成する。
ル(20)が左側末端でリザーバー(2)に連結する、チャネル(12)を通じ
て反応チャンバー(23)まで延びる試料入口チャネル(21)、及び右側末端
で廃棄チャネル(6)に連結する出口チャネル(22)からなる。反応チャンバ
ー(23)の上流のチャネル(21)には、マイクロチャネルの底面部上に配置
された隆起構造が提供される。その隆起構造は、支柱を形成するように成形され
ており、液体を通過させながらその支柱に達するDNA及び細胞核の流動あるい
は通過に対するバリアを形成する。
(30)が左側末端でリザーバー(2)に連結する入口チャネル(31)、本発
明の方法を実施するのに使用する複数のマイクロビース(35)を含み、チャネ
ル(32)を通じて反応チャンバー(36)まで延びるチャンバー(34)、及
び共通の廃棄チャネル(6)に連結する出口チャネル(33)からなる。好都合
には、チャンバー(34)を反応チャンバー(36)と連結させるチャネル(3
2)が、チャンバー(34)の上流のチャネル(31)の0.99〜0.01倍の
断面積であり、マイクロビーズを通過させない寸法であって、それによりチャン
バー内に集められてビーズの「プラグ」となっていることにより特徴付けられる
。
ル(40)が左側末端でリザーバー(2)に連結する入口チャネル(41)、チ
ャネル(42)を通じて反応チャンバー(46)まで延びるチャンバー(44)
、及び共通の廃棄チャネル(6)に連結する出口チャネル(43)からなる。チ
ャンバー(44)には、チャンバーの底面部上に配置された隆起構造が提供され
てもよい。その隆起構造は、支柱(45)を形成するように成形されており、液
体を通過させながらその支柱に達するDNA及び細胞核の流動あるいは通過に対
するバリアを形成する。
μm2の範囲、好ましくは1000μm2から1,000,000μm2の範囲、
及び更に好ましくは10,000μm2から1,000,000μm2の範囲の床
面積となる大きさである。
には、マイクロチャネルは、任意の断面形状、例えば四角形、長方形、円形、台
形、及び三角形であってもよく、典型的には20〜30μmあるいはそれ以上の
大きさの寸法である。適切には250μm幅のマイクロチャネルが使用されても
よい。
マニピュレーションのために、あるいは本発明の方法により単離されたDNAを
用いるアッセイを実施するために、直列でバリアの下流に連結した反応チャンバ
ー(15、23、36、46)が提供される。該反応チャンバーは、チャンバー
(34、44)の体積の2倍から10分の1であるのが適切である。典型的には
、本発明の方法により調製されたDNAのアッセイを実施したりマニピュレーシ
ョンを行うための反応物の適切な体積は10nlから1μlの範囲である。適切
には、出口チャネル(13、22、33、43)は、反応チャンバー(15、2
3、36、46)の上流のチャネル(12、20、32、42)の0.99から
0.01倍の範囲の断面積を有することにより特徴付けられる。
支柱)は、液体を通過させながら機器中に懸濁液体として運ばれた細胞核を通過
させないぐらい狭い構造間の間隙を提供するように選択された寸法からなる。マ
イクロチャネル(24)又はチャンバー(45)中に形成される隆起した支柱の
間の間隙の適切な寸法は5μmから50μmの範囲であり、捕捉するよう選択さ
れた細胞核の型及び大きさによる。
チック材であってもよい。適切なプラスチックは、ポリマー中の架橋の程度次第
で多孔質であってもなくてもよく、そのようなプラスチックとしては、ポリスチ
レン、スチレンアクリレートコポリマー、ジビニルベンゼンで架橋したポリスチ
レン、ポリビニルトルエン、ポリメタクリレート、及びポリカーボネートが挙げ
られる。別の材料としては、ポリサッカライド(例えばデキストラン)、金属酸
化物(例えばアルミニウム酸化物)、ガラス、及びカーボンが挙げられる。ビー
ズの表面は、DNAが例えば疎水結合、荷電相互作用、あるいは物理的吸着によ
り結合可能である材料からなるのが好ましい。ビーズの荷電された表面は静電相
互作用を好み得るし、一方荷電されていないポリマー表面は疎水結合が促進され
得る。それ故、ビーズの表面を、DNAの結合能を改善するために化学的及び物
理的手段により、処理したり活性化したりしてもよい。例えば、DNAによりビ
ーズの表面により結合しやすくさせるために、ビーズの表面を当業者には周知で
あるような陽性荷電した化学基で誘導したり修飾したりしてもよい。結合は、ビ
ーズ表面への付加的なコ−ティング、例えばポリリジンの使用により更に改善さ
れ得る。DNAの捕捉に適切なビーズの大きさは、5μmから100μm、好ま
しくは15μmから50μmの範囲が適切である。
動物細胞を含む任意の細胞源からの核をもつ細胞が使用され得る。本発明は全血
液を含む哺乳類の細胞からの細胞核及びDNAの単離に特に有益である。細胞か
ら細胞核を単離する方法の第一工程は、核膜の一部と共に細胞全体の細胞膜を選
択的に溶解させることである。本発明のこの工程は、適切な容器中で実施されて
もよく、細胞溶解物は微細工法装置の環状の試料リザーバ−へ搬送される。別法
としては、細胞懸濁液を試料リザーバ−中に導入し、次に本方法に従って細胞質
膜と少量の核膜を溶解するように溶解緩衝液を添加してもよい。本発明の方法に
よる細胞溶解のプロトコールは、米国特許第5447864号に開示されている。例え
ば、10mM Tris、pH8.0、320mM スクロース、及び1% Triton X−
100を含有する溶解緩衝液を、室温で5分間細胞をインキュベートすることによ
り赤血球及び白血球膜、及び少量の核膜を溶解するのに使用してもよい。本発明
の方法に適切な別の溶解緩衝液としては、SDS(ドデシル硫酸ナトリウム)の
ような陰イオン界面活性剤がある。
ネルの入口チャネル中に導入し、ディスクを適切な手段、及び回転力(centripe
tal force)によりディスクの周縁部に向って細胞溶解物の外側へ、そしてディ
スクのマイクロチャネル中に形成されたビーズあるいは支柱のバリアに向って各
入口チャネル(4)に沿って移動させるのに十分なスピードで回転させる。この
ようにして、ディスクの回転により、細胞溶解物がマイクロチャネル中に配置し
たバリアに向って流され、更にDNA、あるいは細胞核の捕捉のためのDNAか
らなるメッシュが形成される。別法としては、細胞溶解物を固定したディスクの
疎水性表面上に不連続な液滴として加えられ、ディスクの回転は、バリアでDN
A及び細胞核の捕捉するために適したマイクロチャネル中にその混合物を移動す
るために利用する。次に捕捉したDNAメッシュを、マイクロチャネル中に形成
されたメッシュに洗浄溶液を通すことにより洗浄する。洗浄溶液を、各マイクロ
チャネルの入口チャネルを介して微細工法装置中に導入し、ディスクは、マイク
ロチャネルに沿って、そして中に捕捉されたDNAメッシュに洗浄液を通すため
に回転させる。
溶解剤を含有する溶液を各マイクロチャネルに通すことにより、DNAを遊離す
るためにメッシュにより捕捉された細胞核を更に処理する。溶解剤は、核膜を破
壊可能なものである。例えば、リン酸緩衝化生理食塩水中に0.5%(w/v)ドデ
シル硫酸ナトリウム及びプロテイナーゼK(250μg/ml)を含有する試薬
を使用してもよい。別法としては、DNAメッシュ中に捕捉された細胞核の核膜
を、80℃から95℃の範囲の温度で1〜30分間ディスクを加熱することによ
り破壊してもよい。
方法により獲得したDNAのプロセシングは、メッシュ上で実施してもよいし、
あるいはDNAを回転力によって微細工法装置の周縁部に向って移動させてから
続いてプロセシングしてもよい。この場合、微細工法装置の個々のマイクロチャ
ネルには、ディスクの周縁部近くに配置され、バリア手段と出口チャネルとの間
のマイクロチャネル中に直列に連結される反応チャンバーが提供されてもよい。
反応チャンバーは、反応チャンバーの上流よりも小さな径を有する狭いチャネル
により共通の廃棄チャネルに連結する。チャネルの径の差により、上述のような
回転と回転力の制御された条件下において、本発明の方法により単離されたDN
Aの試料はバリア部位から反応チャンバーまで移動し、DNAのプロセシングあ
るいは、マニピュレーションのために試薬が添加される。
る。もしDNAの制限が必要であれば、メッシュ上で制限消化をin situで実施
してもよい。制限消化したDNAを同様に、次のプロセシングのために適切なス
ピードでディスクを回転させることにより反応チャンバーに移動してもよい。 本発明は、以下に続く実施例を参考として示すことにより更に示される。
ル中に導入した: 以下に示す大きさのマイクロチャネル(長さ4000μmx幅120μm、マ
イクロチャネルの長さの半分は奥行き60μmで、残りは奥行き10μm)に1
5μm径の硬い単分散球状プラスチックビーズ(非誘導体化ジビニルベンゼンで
架橋したポリスチレン、SOURCE(登録商標)プラスチック、Amersham Pha
rmacia Biotech)を充填した。これらはマイクロチャネルの奥行きのある領域と
奥行きのない領域との間の境界面にビーズの薄い層を形成した(図2a参照)。
ロース、5mM MgCl2、及び1%(v/v) Triton X−100を含有する溶解緩
衝液と混合し、室温で5分間インキュベートした。溶解物は、溶解緩衝液とリン
酸緩衝化生理食塩水(PBS、Sigma)の1:1の混合物で10倍に希釈した。
希釈した溶解物0.4μlは、ビーズを含むマイクロチャネルを通じて引き込ん
だ。ビーズを1μlのPBSで洗浄し、次に1μlのTE(10mM Tris/HC
l、1mM EDTA、pH7.5)中に1:200に希釈したPicoGreen(2本
鎖DNAに特異的な蛍光染色液;Molecular Probes Inc.、USA)で洗浄し、次い
でTEのみ1μlで洗浄した。
約480nmの励起波長及び約520nmの発光波長をもつエピ蛍光分光計を用
いて検定した(図3に示す)。血液をPBSで置き換えたコントロールは、マイ
クロチャネルの奥行きのある区画と奥行きのない区画との間の境界面に充填され
たビーズのバックグラウンドの蛍光のみを呈して同じ経過に終わった(図4に示
す)。
、DNAを冷凍したクエン酸血から奥行きのないビーズ床上で単離した。この場
合、多少大きいチャネル(長さ4000μmx幅500μm、マイクロチャネル
の長さの半分は奥行き55μmで、残りは奥行き10μm)を用いた。
バー中に導入した:10mM Tris/HCl、pH8、0.5% SDS、1mg/
ml プロテイナーゼK。反応混合物は、55℃で5分間インキュベーションし
た。チャンバーの内容物は、以下の組成を含有する1μlの溶液で洗浄した:1
xPCR緩衝液II(Perkin Elmer ABI);6% α-シクロデキストリン(Aldrich
)。結果生じた液体を回収し、水で10μlまで希釈した。
μl)に添加した:1xPCR緩衝液II(Perkin Elmer ABI);1.5mM Mg
Cl2;200μM デオキシヌクレオチド;1U AmpliTaq Gold(Perkin Elme
r ABI);15pmol エクソン2及び部分的なフランキングイントロンからなるC
YP2D6遺伝子の1035bp領域に特異的な各プライマー。その反応混合物
は以下のプロトコールを使用してサイクルさせた:95℃x9分;(95℃x1
5秒、60℃x30秒、72℃x45秒)x35回;72℃x5分。
光のもとで視覚化することにより分析した。はっきりと目に見えるPCR生成物
が試験DNAから得られた。生成物は、ネガティブコントロールにおいては存在
せず、他の方法により単離した純粋なDNAを含有するポジティブコントロール
においては存在した。
μlをCYP2D6のエクソン2を含む262bpからなるプライマーを除いて
1回目と同様の組成を含有する2回目のPCR混合物(最終容量25μl)に添
加し、AmpliTaqを使用した。サイクルプログラムは、AmpliTaq Goldを用いる場
合のみ必要とされる最初の95℃でのインキュベーションを省略して同様である
。1μlのオリジナルの希釈されたDNA単離物を用いて同じ反応を行った(す
なわち、オリジナルのDNAのネストしない増幅を試みた)。
の存在が示された。この場合、ネストしたPCRは非常に強い増幅が得られた。
オリジナルのDNAを直接PCRに用いた場合にもまた、弱いがはっきりと目に
見える生成物が得られた。ネガティブ及びポジティブコントロールは予想した結
果を呈した。
。
個々のマイクロチャネル要素の平面図における略図である。
底面部上に配置された隆起構造を提供する微細工法装置の個々のマイクロチャネ
ル要素の平面図における略図である。
ーズが含有されている微細工法装置の個々のマイクロチャネル要素の平面図にお
ける略図である。
が配置した微細工法装置の個々のマイクロチャネル要素の平面図における略図で
ある。
いてPicoGreen染色液により視覚化した、抗凝結剤としてEDTAを混ぜたヒト
の全血からのDNAを示す画像である。
ロール試料からの画像である。
Claims (22)
- 【請求項1】 複数のマイクロチャネルを含む微細工法装置においてDNA
及び/あるいは細胞核を単離する方法であって、DNA及び/あるいは細胞核に
対するバリア(barrier)として作用する1つあるいはそれ以上のマイクロチャ
ネル中においてメッシュを形成することを包含する、方法。 - 【請求項2】 該微細工法装置の1つあるいはそれ以上のマイクロチャネル
において形成されるメッシュが、核酸のメッシュを包含する、請求項1に記載の
方法。 - 【請求項3】 細胞からDNA若しくは細胞核、あるいはその混合物を単離
する方法であって: a)細胞質膜及び少なくとも核膜の一部を溶解するように全細胞の懸濁液を溶解
剤で処理し; b)工程a)からの溶解物を、微細工法装置のマイクロチャネルであって、当該
各マイクロチャネルが、マイクロチャネルを通じて液体を通過させながらDNA
及び細胞核の通過あるいは流動を妨げるための手段を組み込んだをチャネル内に
形成することによりDNAからなるメッシュをチャネル中に形成する、マイクロ
チャネル中に導入し;そして c)該DNAからなるメッシュを洗浄することを包含する、方法。 - 【請求項4】 工程a)において、核膜の大部分が無傷なままで実施される
、請求項3に記載の方法。 - 【請求項5】 該微細工法装置が、回転可能なディスクを含み、そのディス
クは、環状の試料リザーバ−と連絡してディスクの中心に向って配置し、次いで
そのリザーバーが放射状に配列した複数のマイクロチャネルと連結される試料導
入ポートを含み、各マイクロチャネルは、ディスクの周縁部に向って配置される
入口チャネル及び出口チャネル、そしてマイクロチャネルを通じて液体を通過さ
せながらDNA及び細胞核の通過あるいは流動を妨げるために各マイクロチャネ
ルに組み込まれた手段を含む、請求項3あるいは4に記載の方法。 - 【請求項6】 該DNA及び細胞核の通過あるいは流動を妨げるために各マ
イクロチャネルに組み込まれた手段が、バリアを包含する、請求項3から5に記
載の方法。 - 【請求項7】 該バリアが、液体を通過させながらDNA及び細胞核の流動
あるいは通過を妨げるビーズからなる、請求項6に記載の方法。 - 【請求項8】 該ビーズが、ポリスチレン、スチレンアクリレートコポリマ
ー、ジビニルベンゼンで架橋したポリスチレン、ポリビニルトルエン、ポリメタ
クリレート、及びポリカーボネート、ポリサッカライド、金属酸化物、ガラス、
及びカーボンから選択される、請求項7に記載の方法。 - 【請求項9】 該バリアが、マイクロチャネル内に配置された隆起構造から
なる、請求項6に記載の方法。 - 【請求項10】 該隆起構造が、マイクロチャネルの底面部に配置され、液
体を通過させながらDNA及び細胞核の流動あるいは通過を妨げるような支柱を
形成するよう成形されている、請求項9に記載の方法。 - 【請求項11】 微細工法装置のマイクロチャネルの少なくとも幾つかが、
それぞれアッセイを実施したりDNAをプロセシングしたりするための反応チャ
ンバーを更に包含する、請求項3から10に記載の方法。 - 【請求項12】 工程a)の全細胞が植物細胞及び動物細胞から選択される
、請求項3から11に記載の方法。 - 【請求項13】 工程c)が、マイクロチャネルに洗浄溶液を通すことによ
り実施される、請求項3から12に記載の方法。 - 【請求項14】 メッシュに捕捉された細胞核が、DNAを遊離するために
更に処理される、請求項3から13に記載の方法。 - 【請求項15】 細胞からDNA若しくは細胞核、あるいはその混合物を単
離するための微細工法装置であって、回転可能なディスクを含み、そのディスク
は、環状の試料リザーバ−と連絡してディスクの中心に向って配置し、次いでそ
のリザーバーが放射状に配列した複数のマイクロチャネルと連結される試料導入
ポートを含み、各マイクロチャネルは、ディスクの周縁部に向って配置される入
口チャネル及び出口チャネル、そしてマイクロチャネルを通じて液体を通過させ
ながらDNA及び細胞核の通過あるいは流動を妨げるために各マイクロチャネル
に組み込まれた手段を含む、装置。 - 【請求項16】 該DNA及び細胞核の通過あるいは流動を妨げるために各
マイクロチャネルに組み込まれた手段が、バリアを包含する、請求項15に記載
の装置。 - 【請求項17】 該バリアが、液体を通過させながらDNA及び細胞核の流
動あるいは通過を妨げるビーズからなる、請求項16に記載の装置 - 【請求項18】 該ビーズが、ポリスチレン、スチレンアクリレートコポリ
マー、ジビニルベンゼンで架橋したポリスチレン、ポリビニルトルエン、ポリメ
タクリレート、及びポリカーボネート、ポリサッカライド、金属酸化物、ガラス
、及びカーボンから選択される、請求項17に記載の装置。 - 【請求項19】 該バリアが、マイクロチャネル内に配置された隆起構造か
らなる、請求項16に記載の措置。 - 【請求項20】 該隆起構造が、マイクロチャネルの底面部に配置され、支
柱を形成するよう成形されている、請求項19に記載の装置。 - 【請求項21】 微細工法装置のマイクロチャネルの少なくとも幾つかが、
それぞれアッセイを実施したりDNAをプロセシングしたりするための反応チャ
ンバーを更に包含する、請求項15から20に記載の装置。 - 【請求項22】 請求項1から14のいずれかに記載の方法により単離され
た、DNA。
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