JP2003503446A - 体重増加の処置方法および/または抑制方法 - Google Patents
体重増加の処置方法および/または抑制方法Info
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Abstract
Description
願)の優先権を主張する。
法に関し、そしてヒトを含む感受性温血動物における異常なインスリン抵抗性の
獲得を処置するか、または抑制することに関する。本発明の方法は、下記の一般
式Iの化合物またはその薬学的組成物を投与することを伴う。他の実施形態にお
いて、本発明の方法は、選択的エストロゲン受容体調節剤(「SERM」)を性
ステロイド前駆体と組み合わせて投与することを伴う。
および乳ガンなどの多くの疾患に対するよく知られた危険因子である。さらに、
個人的な外見は、ほとんどの人々の全体的な幸福において重要な役割を果たして
いる。
び運動などの肥満の一般的な処置は、多くの人々に対して様々な程度で成功をも
たらしている。しかし、先行技術を用いて十分な結果が得られない人々に対する
他の技術、あるいは従来技術に対する補足法として使用される技術が依然として
求められている。
たは防止のために開示された:欧州特許出願番号EP0659423A1におけ
るラロキシフェンおよび関連化合物;欧州特許出願番号EP0716855A2
におけるベンゾチオフェン核を有するエストロゲンアゴニスト;国際特許出願番
号PCT/DK96/00011における3,4−ジフェニルクロマン化合物;
国際特許出願番号PCT/IB95/00286におけるナフチルエストロゲン
のアゴニスト/アンタゴニスト。
て雌性ラットにおけるスルピリド誘導体重増加が防止されることもまた報告され
た(Baptista他、Pharmacol.Biochem.Behav.
(1997)、57(1/2)、215〜222)。タモキシフェンが、ラット
における食物摂取、体重増加および身体組成に対するエストラジオールの作用を
模倣することもまた報告されている(Wade他、American Jour
nal of Physiology 1993、33(6)、R1219〜1
223)。
老齢のSprague−Dawleyラットにおいて、Schwartz(Ke
ntにおいて、Geriatrics 37:157〜160、1982)は、
体重が、DHEAにより、食物摂取量に影響を及ぼすことなく600gから55
0gに減少したことを観測している。Schwartz(Cancer 39:
1129〜1132、1979)は、DHEA(450mg/kg、 3回/週
)が与えられたC3Hマウスは、コントロール動物よりも著しく少ない体重増加
を示し、長寿命であり、そして体脂肪が少なく、活動的であったことを認めた。
体重増加の減少が、食欲の喪失または食物制限を伴うことなく達成された。さら
に、DHEAは、成体になってから肥満になるように育種された動物における体
重増加を防止し得る。
関わらず、体重増加を減少させた。処置された動物は、脂肪パッドが小さくなっ
ていた。従って、このことは、全体的に見れば、DHEAは食物代謝を増大させ
、これにより体重増加および脂肪蓄積の低下を生じさせていることを示唆してい
る(Svec他、Prov.2nd Int.Conf.Cortisol.a
nd Anti−Cortisols、Las Vegas、Nevada、米
国、アブストラクト:56頁、1997年)。
、1977)およびZuckerラット(ClearyおよびZisk、Fed
.Proc.42:536、1983)において改善されたことが見出された。
DHEAで処理されたC3Hマウスはコントロールよりも若い外見を有した(S
chwartz、Cancer Res.39:1129〜1132、1979
)。
62;Ledoux他、CMAJ 1997、157Suppl.1:46〜5
3)。
る。
疾患または状態の危険性を低下させることは、本発明の別の目的である。
増加を処置するか、または抑制するための新規な方法を提供することである。こ
の方法は、そのような処置または抑制を必要とする対象体に、薬学的な希釈剤、
賦形剤またはキャリアとともに、あるいは薬学的な希釈剤、賦形剤またはキャリ
アを伴うことなく、下記の一般式Iの化合物の少なくとも1つの治療有効量を投
与することを含む:
または分枝状のC1〜C4アルキル、直鎖状または分枝状のC3〜C4アルケニ
ル、直鎖状または分枝状のC3〜C4アルキニルからなる群から選択される)、
および生体内でヒドロキシルに変換され得る基からなる群から選択され; Gは−Hまたは−CH3であり;そして R3は、ピロリジニル、ピペリジノ、モルホリノおよびNRaRb(Raおよ
びRbは独立して、水素、直鎖状または分枝状のC1〜C6アルキル、直鎖状ま
たは分枝状のC3〜C6アルケニル、および直鎖状または分枝状のC3〜C6ア
ルキニルである)からなる群から選択される化学種である。本発明は、肥満の発
症を処置するか、または低下させる方法を提供する。この方法は、そのような処
置または低下を必要とする対象体に、下記一般式の化合物またはその薬学的に受
容可能な塩の治療有効量を投与することを含む:
または分枝状のC1〜C4アルキル、直鎖状または分枝状のC3〜C4アルケニ
ル、直鎖状または分枝状のC3〜C4アルキニルからなる群から選択される)、
および生体内でヒドロキシルに変換され得る基からなる群から選択され; Gは−Hまたは−CH3であり;そして R3は、ピロリジニル、ピペリジノ、モルホリノおよびNRaRb(Raおよ
びRbは独立して、水素、直鎖状または分枝状のC1〜C6アルキル、直鎖状ま
たは分枝状のC3〜C6アルケニル、および直鎖状または分枝状のC3〜C6ア
ルキニルである)からなる群から選択される化学種であり; R1またはR2はピバロイルオキシ基ではない。
受容可能な塩が、腹部脂肪を減少させるために、あるいは腹部脂肪の蓄積を低下
させるために投与される。
ステロン、硫酸デヒドロエピアンドロステロン、アンドロスト−5−エン−3b
,17b−ジオール)が、肥満を処置するために、あるいは体重増加を抑制する
ために、選択的エストロゲン受容体調節剤(SERM)に加えて添加される。5
0歳以上の年齢のヒトは、おそらくは前駆体のレベルが年齢とともに望ましくな
いほど低下しやすいために、混合療法に十分に応答すると考えられる。
制に対する方法を提供する。この方法は、そのような抑制または処置を必要とす
る対象体に、薬学的な希釈剤またはキャリアとともに、あるいは薬学的な希釈剤
またはキャリアを伴うことなく、少なくとも1つのSERMの治療有効量と、デ
ヒドロエピアンドロステロン、硫酸デヒドロエピアンドロステロン、アンドロス
ト−5−エン−3b,17b−ジオール、および生体内で前記の前駆体のいずれ
かに変換される化合物からなる群から選択される少なくとも1つの性ステロイド
前駆体の有効量とを投与することを含む。
るか、または低下させるための方法を提供する。この方法は、そのような処置ま
た低下を必要とする対象体に少なくとも1つのSERMの治療有効量を投与する
ことを含む。いくつかの実施形態において、デヒドロエピアンドロステロン、硫
酸デヒドロエピアンドロステロン、アンドロスト−5−エン−3b,17b−ジ
オール、および生体内でいずれかに変換される化合物からなる群から選択される
少なくとも1つの性ステロイド前駆体の有効量が、混合療法の一部として同様に
投与される。
キットは、少なくとも1つのSERMを含む第1の容器と、デヒドロエピアンド
ロステロン、硫酸デヒドロエピアンドロステロン、アンドロスト−5−エン−3
b,17b−ジオール、および生体内でいずれかに変換される化合物からなる群
から選択される少なくとも1つの性ステロイド前駆体を含む第2の容器とを有す
る。
おいて提供され得る。薬学的な賦形剤、キャリアまたは希釈剤は、この分野で知
られている保存剤および他の添加剤を含み得る。薬学的な賦形剤、キャリアまた
は希釈剤はまた、本明細書中に記載されている様々な発明のいずれかの実施形態
において使用されるいずれかの有効成分とともに含まれ得る。
RM)は、直接的に、あるいはその活性な代謝体を介して、乳組織においてエス
トロゲン受容体アンタゴニスト(「抗エストロゲン」)として機能する化合物で
あるが、それにもかかわらず、(すなわち、血清コレステロールを減少させるこ
とによって)体脂肪、骨組織および血清コレステロールレベルに対するエストロ
ゲン様作用をもたらす化合物である。インビトロにおいて、あるいはヒトまたは
ラットの乳組織においてエストロゲン受容体アンタゴニストとして機能する非ス
テロイド化合物は、(特に、化合物がヒト乳ガン細胞に対する抗エストロゲンと
して作用する場合には)SERMとして機能することが考えられる。本発明者ら
によって試験され、SERMとして機能することを見出された非ステロイド抗エ
ストロゲンには、EM−800、EM−652、EM−652.HCl(EM−
01538)、ラロキシフェン、タモキシフェン、イドキシフェン、トリメフェ
ン、LY353381、LY335563、GW5638およびドロロキシフェ
ンが含まれる(これらは下記においてより詳しく記載される)。SERMは、本
発明のいずれかの実施形態に従って、好ましくは、これらの化合物が抗エストロ
ゲンとして使用されるときにこの分野で知られているのと同じ投薬量で投与され
る。
は複数の炭素原子により連結された2つの芳香族環を好ましくは有しているが、
受容体により最もよく認識される分子の前記部分によってエストロゲン受容体と
相互作用するものと考えられる。そのようなSERMはまた、乳組織または子宮
内膜組織におけるアンタゴニスト的性質を、他の組織(特に、骨)における著し
いアンタゴニスト的性質を有することなく選択的に生じさせ得る側鎖を有する。
従って、そのようなSERMは、望ましいことに、乳組織および子宮内膜におけ
る抗エストロゲンとして機能し得る一方で、驚くべきことに、そして望ましいこ
とに、体脂肪に対するエストロゲン様活性を有する。
な体重が達成されない場合でさえ、望ましいことに体重減少を提供することを含
む。
な脂肪組織を意味する。本発明の防止方法および処置方法は、体重増加の阻害お
よび体重減少の誘導を含む。本発明は、その体重を正常値にまで減少させること
(および体重を正常値で維持すること)によって肥満のヒトを処置することを含
む。本発明はまた、そのような疾患にかかりやすい人に対する肥満の防止をも含
む。本明細書中における本発明を必要とする患者には、(標準と医学的に認識さ
れる場合と比較して)太りすぎている患者、または体重過多になる危険性を有す
る患者が含まれる。
に使用することができる。例えば、EM−800(これは本明細書中に記載され
ている)は、この目的に対して効果的であると考えられる。
成物が提供される。
険性を低下させることを必要とする患者は、そのような疾患と診断されている患
者、またはそのような疾患にかかりやすい患者のいずれかである。本発明は、遺
伝、環境的要因または他の認識されている危険因子のために、本発明が関連する
状態にかかる危険性が一般的な人々よりも高い人に対して特に有用である。
目的および予防目的の両方について同一である。本明細書中で議論されている各
有効成分の投薬量は、処置(または防止)されている疾患にかかわらず同じであ
る。
本明細書中において混合療法の一部として議論されている場合、多数の活性を有
する1つの化合物よりもむしろ、多数の異なる化合物が投与される。
には、ラセミ混合物の形態または光学活性形態におけるその任意の可能な立体異
性体が含まれ得る。
中における投薬量は、薬学的な賦形剤、希釈剤、キャリアまたは他の成分によっ
て影響されない活性化合物の重量をいう:しかし、本明細書中の実施例に示され
ているように、そのようなさらなる成分を含むことは望ましいことである。製薬
業界において広く使用されている任意の投薬形態(カプセル剤、錠剤、注射など
)は、本明細書中における使用に適切であり、「賦形剤」、「希釈剤」または「
キャリア」の各用語には、この業界においてそのような投薬形態物に有効成分と
ともに典型的に含まれるような非活性成分が含まれる。例えば、典型的なカプセ
ル、ピル、腸溶コーティング物、固体または液体の希釈剤または賦形剤、香料、
保存剤などが含まれる。
グ(すなわち、生体内で有効成分に変換される化合物)が使用される。本明細書
中で議論されている活性な化合物の官能基に生体内で変換される多くの官能基が
製薬業界では知られている。例えば、「Design and Applica
tion of Prodrugs」の第5章、A Textbook of
Drug Design & Development Bundgaad&L
arsen編、Harwood Academic Publishers G
mbH(Chur、スイス、1991年)を参照のこと。プロドラッグは、しば
しば、対応する活性な化合物よりも良好な生物利用性、貯蔵安定性および/また
は製造の容易さを提供し得る。
べて、1つまたは複数の他の有効成分もまた含む薬学的組成物に配合され得る。
あるいは、有効成分はそれぞれ、別々に、しかし時間的に十分に同時に投与する
ことができ、その結果、患者は最終的には、有効成分の血中レベルを上昇させ、
あるいはそうでなければ有効成分(または方法)のそれぞれの利益を同時に享受
する。本発明のいくつかの好ましい実施形態において、例えば、1つまたは複数
の有効成分が1つの薬学的配合物に配合され得る。本発明の他の実施形態におい
て、少なくとも2つの別個の容器を含むキットが提供される。この場合、少なく
とも2つの別個の容器において、少なくとも1つの容器の内容物は、容器に含ま
れる有効成分に関して、すべてまたは一部が少なくとも1つの他の容器の内容物
と異なる。2つ以上の異なる容器が本発明の混合療法において使用される。本明
細書中で議論されている混合治療もまた、問題としている疾患の処置(または防
止)に必要な医薬品を製造することにおいて組合せの1つの有効成分を使用する
ことを含む。この場合、処置または防止は組合せの別の有効成分または方法をさ
らに含む。
がない場合でも生じ得る。腹部の脂肪はまた、さらには心臓疾患における危険因
子であると考えられている。腹部の脂肪は、本発明に都合よく応答する。
おける望ましくないエストロゲン作用を有していない。これは、いくつかの先行
技術の方法において利用されているSERM治療に対する非常に重要な改善であ
る。
インスリン抵抗性を低下させるのに有益であると考えられる。
DHEAまたは類似する性ステロイド前駆体によって増強される。
せることによって得られる相乗作用の1つの説明は、それらの作用機構が少なく
とも部分的に異なり得るということである。DHEAは、例えば、食欲を抑制す
ることなく食物代謝を増大させるようである。SERMであるEM−652.H
Clは食物摂取量を抑制するようである。
ストロゲン受容体調節剤で、下記一般式I:
状または分枝状のC1〜C4アルキル、直鎖状または分枝状のC3〜C4アルケ
ニル、直鎖状または分枝状のC3〜C4アルキニルからなる群から選択される)
、および生体内でヒドロキシルに変換され得る基からなる群から選択され; Gは−Hまたは−CH3であり;R3は、ピロリジニル、ピペリジノ、モルホ
リノおよびNRaRb(RaおよびRbは独立して、水素、直鎖状または分枝状
のC1〜C6アルキル、直鎖状または分枝状のC3〜C6アルケニル、および直
鎖状または分枝状のC3〜C6アルキニルである)からなる群から選択される化
学種である) を有する選択的エストロゲン受容体調節剤と、デヒドロエピアンドロステロン、
硫酸デヒドロエピアンドロステロン、アンドロスト−5−エン−3b,17b−
ジオール、および生体内でいずれかに変換される化合物からなる群から選択され
る性ステロイド前駆体とを含む薬学的組成物を投与することが好ましい。
宮内膜に対するエストロゲン様作用をほとんど有していないという予想外の利点
を提供する。
を有する立体異性体を50%よりも多く有することが好ましい。
式Iの化合物と、酢酸、アジピン酸、ベンゼンスルホン酸、安息香酸、カンファ
ースルホン酸、クエン酸、フマル酸、ヨウ化水素酸、臭化水素酸、塩酸、ヒドロ
クロロチアジド酸、ヒドロキシナフトエ酸、乳酸、マレイン酸、メタンスルホン
酸、メチル硫酸、1,5−ナフタレンジスルホン酸、硝酸、パルミチン酸、ピバ
ル酸、リン酸、プロピオン酸、コハク酸、硫酸、酒石酸、テレフタル酸、p−ト
ルエンスルホン酸および吉草酸からなる群から選択される酸との塩であることは
好ましい。
/26201)に報告されているEM−800である。EM−800の分子構造
を下記に示す:
M−01538とも呼ばれる):
得るピバロイル基を含有しないので、EM−800などの他のSERMを上回る
さらなる利点を提供する。
−2−[4−(1,2−ジフェニル−1−ブテニル)]−N,N−ジメチルエタ
ンアミン)(Zeneca(英国)から入手可能)、トレミフェン(Orion
−Farmos Pharmaceuticla(フィンランド)またはSch
ering−Plough社から入手可能)、ドロロキシフェンおよびCP−3
36(cis−1R−[4’−ピロリジノ−エトキシフェニル]−2S−フェニ
ル−6−ヒドロキシ−1,2,3,4−テトラヒドロナフタレンD−(−)−酒
石酸塩(Pfizer Inc.(米国)、米国特許第5,889,042号に
記載される)(これはラソホキシフェンとも呼ばれる)、ラロキシフェン(El
i Lilly and Co.(米国))、LY335563およびLY35
3381(EliLilly and Co.(米国)、WO98/45287
、WO98/45288およびWO98/45286に記載される)、イドキシ
フェン(SmithKline Beecham(米国))、レボルメロキシフ
ェン(3,4−trans−2,2−ジメチル−3−フェニル−4−[4−(2
−(2−(ピロリジンン−1−イル)エトキシ)フェニル]−7−メトキシクロ
マン)(Novo Nordisk,A/S(デンマーク))(これは、Sha
lmi他のWO97/25034、WO97/25035、WO97/2503
7、WO97/25038に、そしてKorsgaard他のWO97/250
36に開示される)、GW5638(Willson他(Endocrinol
ogy、130(9)、3901〜3911、1997)によって記載される)
およびインドール誘導体(Miller他(EP0802183A1)によって
開示される)およびTSE424、ならびにERA923(Wyeth Aye
rst(米国)によって開発され、JP10036347(American
home products corporation)に開示される)、およ
びWO97/32837に記載される非ステロイドエストロゲン誘導体。本発明
の他のSERMは、WO99/07377;WO98/48806;EP082
3437A2;EP0838464A1;EP0835867A1、EP083
5868A1;EP0792641A1;EP0873992A1およびEP0
895989A1に開示されている。
されているような)効能のために必要とされるように使用されるSERMはどれ
も使用することができる。適切な投薬量はこの分野で知られている。市販されて
いる他の非ステロイド抗エストロゲンはどれも本発明に従って使用することがで
きる。SERMに類似する活性を有する任意の化合物(例えば、ラロキシフェン
を使用することができる)。
1日あたり0.01mg/kg体重〜10mg/kg体重(好ましくは、0.0
5mg/kg〜1.0mg/kg)の投薬量範囲で投与され、平均的な体重の人
に対しては60mg/日(特に、20mg/日)が好ましく、あるいは非経口投
与(すなわち、筋肉内投与、皮下投与または経皮投与)の場合には1日あたり0
.003mg/kg体重〜3.0mg/kg体重(好ましくは、0.015mg
/kg〜0.3mg/kg)の投薬量範囲で投与され、平均的な体重の人に対し
ては20mg/日(特に、10mg/日)が好ましい。好ましくは、SERMは
、下記に記載されているように薬学的に受容可能な希釈剤またはキャリアととも
に投与される。
(Diosynth Inc.(Chicago、Illinois、米国)か
ら入手可能)、そのプロドラッグ(Steroids(Wilton、New
Hampshire、米国)から入手可能)、5−アンドロステン−3b,17
b−ジオールおよびそのプロドラッグのアンドロスト−5−エン−3b,17b
−ジオール3−アセタートおよびアンドロスト−5−エン−3b,17b−ジオ
ールジヘミスクシナート(Steroids(Wilton、New Hamp
shire、米国)から入手可能)である。
セリド(Noebee M−5);10%〜20%のヘキシレングリコール:2
.0%〜10%のジエチレングリコールモノメチルエーテル(Transuto
l);2.0%〜10%のシクロメチコーン(Dow Corning 345
);1.0%〜2%のベンジルアルコールおよび1.0%〜5.0%のヒドロキ
シプロピルセルロース(Klucel HF)を含有するアルコール性ゲルとし
て配合され得る。
いて一般に使用されている様々な添加剤を含むことができる。例えば、芳香剤、
抗酸化剤、香料、ゲル化剤、増粘剤(カルボキシメチルセルロースなど)、界面
活性剤、安定化剤、皮膚軟化剤、着色剤および他の類似する薬剤が存在してもよ
い。有効成分が経皮投与される場合、皮膚上の塗布部位は、有効成分の過度な局
所的濃度、ならびに性ステロイド前駆体のアンドロゲン生成代謝による皮膚皮お
よび脂腺の考えられる過度な刺激を避けるために変えることが望ましい。
くは、組成物の総重量に対して5重量%〜98重量%の濃度で存在し、より好ま
しくは50%〜98%の濃度で存在し、特に80量%〜98%の濃度で存在する
。DHEAなどの単一前駆体は唯一の有効成分であり得るか、あるいは多数の前
駆体および/またはそれらのアナログを使用することができる(例えば、DHE
A、DHEA−S、5−ジオールの組合せ、あるいはDHEA、DHEA−Sま
たは5−ジオールに生体内で変換される2つ以上の化合物の組合せ、あるいはD
HEAまたは5−ジオールと、DHEAまたは5−ジオールに生体内で変換され
るそれらの1つまたは複数のアナログとの組合せなど)。DHEAの血中レベル
は、吸収および代謝における個体変動が考慮されている、十分な投薬量の最終的
な判断規準である。
および(上記に議論された好ましい血清濃度と比較して)DHEAの血清レベル
をモニターし、そして処置に対する患者の全体的な応答をモニターし、これによ
り、処置に対する特定の患者の代謝または反応が非定型である場合には必要なよ
うに投薬量を調節する。
よび/または5−ジオールまたは他の前駆体、処置により、DHEAレベルが、
更年期前の女性に通常存在する範囲(4マイクログラム/リットル〜10マイク
ログラム/リットルの血清濃度)に類似するか、または若い成人男性に通常存在
する範囲(4マイクログラム/リットル〜10マイクログラム/リットルの血清
濃度)に類似する範囲内に単に維持されることが期待される。
投与することができ、また従来の薬学的賦形剤(例えば、噴霧乾燥されるラクト
ース、微結晶セルロース、およびステアリン酸マグネシウム)を用いて、経口投
与用の錠剤またはカプセル剤に配合することができる。
ムまたはリン酸二カルシウムなど)および結合剤(ポリビニルピロリドン、ゼラ
チンまたはセルロース誘導体など)と混合することによって、可能であれば、滑
剤(ステアリン酸マグネシウム、ラウリル硫酸ナトリウム、「Carbowax
」またはポリエチレングリコールなど)をも加えることによって錠剤または糖衣
剤コアに加工することができる。当然のことではあるが、味覚改善物質を、経口
投与形態物の場合には加えることができる。
可塑剤(例えば、グリセリン)を含む密閉された軟ゼラチンカプセルと同様に使
用することができる。プラグカプセルは、好ましくは、例えば、充填剤(ラクト
ース、サッカロース、マンニトール、デンプン(ジャガイモデンプンまたはアミ
ロペクチンなど)、セルロース誘導体、または高分散化ケイ酸など)と混合され
た顆粒の形態で活性な化合物を含有する。軟ゼラチンカプセルにおいて、活性な
物質は、好ましくは、植物油または液状ポリエチレングリコールなどの好適な液
体に溶解または懸濁される。
らかに認められないように皮膚に十分に塗り込まれることが望ましく、そして皮
膚は、経皮的な浸透の大部分が生じるまで、好ましくは少なくとも4時間、より
好ましくは少なくとも6時間、その領域を洗浄すべきではない。
送達することができる。経皮パッチは、典型的にははるかに長い時間(例えば、
1日間〜4日間)にわたって適用されるが、典型的には有効成分をより小さな表
面領域に接触させ、それにより有効成分のゆっくりした一定割合での送達を可能
にする。
発明の有効成分を送達するために好適である。放出速度は、典型的には、マトリ
ックスの拡散によって制御されるか、あるいは有効成分は制御用膜を通り抜ける
ことによって制御される。
発明の有効成分を送達するために好適である。放出速度は、典型的には、マトリ
ックスの拡散によって制御されるか、あるいは有効成分は制御用膜を通り抜ける
ことによって制御される。
ば、米国特許第5,162,037号、同第5,154,922号、同第5,1
35,480号、同第4,666,441号、同第4,624,665号、同第
3,742,951号、同第3,797,444号、同第4,568,343号
、同第5,064,654号、同第5,071,644号、同第5,071,6
57号に説明されている(これらの開示は参考として本明細書中に組み込まれる
)。さらなる背景が、欧州特許第0279982号および英国特許出願第218
5187号によって提供されている。
含むこの分野で知られている一般的なタイプのいずれかであり得る。このような
デバイスは、有効成分および/またはキャリアを吸収する繊維が配合された薬物
含有マトリックスを含む。リザーバー型デバイスにおいて、リザーバーは、キャ
リアおよび有効成分に対して不透過性であるポリマー膜によって規定され得る。
た皮膚表面との接触状態で維持される。そのようなデバイスにおいては、有効成
分に対するキャリアの粘度は、クリームまたはゲルの場合よりも重要ではない。
経皮的デバイスに対する溶媒システムは、例えば、オレイン酸、直鎖アルコール
ラクタートおよびジプロピレングリコール、またはこの分野で知られている他の
溶媒システムを含み得る。有効成分はキャリアに溶解または懸濁され得る。
の接着テープで固定することができる。接着部は、好ましくは、使用前に、接着
部を保護するために剥離ライナーによって覆われる。剥離に好適な典型的な材料
には、除去を容易にするためにシリコーンコーティングされていることが好まし
いポリエチレンおよびポリエチレンコーティング紙が含まれる。デバイスを貼り
付けるために、剥離ライナーは単に剥がされ、そして接着部が患者の皮膚に付け
られる。米国特許第5,135,480号(その開示は参考として組み込まれる
)において、Bannon他は、デバイスを皮膚を固定するための非接着性手段
を有する代わりのデバイスを記載している。
たは処置に対する新規な改善された送達システムとして使用することができる。
HClによる20日間の処置の効果
性Sprague−Dawleyラット(Crl:CD(SD)Br)(Cha
rles River Laboratory、 St−Constant、カ
ナダ)を使用した。実験を開始する1週間前から動物を環境条件(温度:22±
3℃;10時間照明−14時間消灯のサイクル、06:00時に点灯)に順応さ
せた。動物を従来型のステンレススチール製ケージに1匹づつ入れて、飲み水と
、トウモロコシデンプン(31.2);デキストロース(31.2);カゼイン
(20.0);トウモロコシ油(6.4);dl−メチオニン(0.3);ビタ
ミン混合物(1.0);AIN−76ミネラル混合物(4.9)および繊維(5
.0)(g/100g)から構成される高炭水化物混合飼料とを自由に摂取させ
た。実験を、カナダ動物管理委員会(Canada Council on A
nimal Care)承認施設において、実験動物の管理および使用に関する
CCAC指針に従って行った。
為に分けた:1)無傷コントロール;2)OVXコントロール;3)OVX+E
M−652.HCl(0.5mg/ラット、約2.5mg/kg);4)OVX
+エストラジオール(E2、インプラント)。研究の1日目に、適切な群の動物
は、イソフラン麻酔のもとで両側の卵巣摘出が行われた。エストラジオールのS
ilasticインプラント(E2)を第4群の各動物の背側領域の皮下に1個
挿入した。E2の生理学的レベルをもたらす予備実験で選ばれたこのインプラン
トは下記のステロイド濃度およびサイズを有していた:E2:コレステロール(
1:50、w:w)、0.5cm(silastic管材で希釈されたステロイ
ドの長さ)、0.125インチ(silastic管材の外径)および0.06
2インチ(silastic管材の内径)。エストラジオールのインプラントは
、動物内へのその皮下挿入の前に37℃で0.9%NaClに一晩浸けられた。
EM−652.HClまたはビヒクル単独(0.4%メチルセルロースを含む水
)による処置を研究の2日目に開始した。化合物またはビヒクルは、経口胃管栄
養補給によって0.5ml/ラットで20日間にわたって1日に1回投与された
。
ンで麻酔し、血液を心臓穿刺により抜き取った。血液は、白色脂肪組織および褐
色脂肪組織と同様に採取された。
増加の測定 体重、食物摂取量、ならびにエネルギー、脂肪およびタンパク質における体重
増加を、Deshaies他、Am.J.Physiol.、1997;273
、E355〜E362(1997)に従って測定した。
、空腹時の高インスリン血症(これは、通常、インスリン抵抗性の程度と比例す
る)および空腹時の高血糖(これは、正常なレベルの血中グルコースを維持する
ためのインスリンの有効性が喪失していることを反映するものである)の存在に
よって確認された。エストラジオールおよびEM−652.HClはともに、O
VXによって誘導されるインスリン抵抗性を防止した。
鼠蹊部脂肪組織および後腹膜脂肪組織の質量(量)が増大したことを示している
。この増大は、EM−652.HCl処置によって完全に抑えられた。エストラ
ジオールの場合、その効果はそれほど大きくなかった。同じパターンが、リポタ
ンパク質リパーゼ活性が報告されている図6Bおよび図6Dに示されている。こ
の酵素は、トリグリセリドの筋肉内での加水分解を調節し、それにより脂肪貯蔵
部への脂肪酸の進入を調節している。
は、肩甲骨褐色脂肪細胞において、白色脂肪細胞の場合とは異なるパターンを示
した。褐色脂肪組織の重量は、白色脂肪細胞で観測されたように2倍増大した(
図7A)。しかし、タンパク質含有量(図7b)およびリポタンパク質活性(図
7C)は、OVX後、それぞれ33%および30%低下した。これらの3つのパ
ラメーターに基づき、EM−652.HCl処置により、卵巣摘出の作用は完全
に打ち消された。
想されるように、ひらめ筋の重量は、図8に示されているように、OVXによっ
て増大した(食物摂取量の増大は、脂肪として、そしてタンパク質としての両方
でエネルギー堆積の増大をもたらす)。エストラジオール処置およびEM−65
2.HCl処置はともに筋肉重量の増大を防止した。筋肉におけるリポタンパク
質リパーゼは、多くの場合、インスリン感受性との正の関連性を有している(感
受性が良好なほど、筋肉内のリポタンパク質リパーゼが多くなる)。OVXは、
ひらめ筋におけるリポタンパク質リパーゼ活性を低下させた。これは、筋肉にお
けるインスリン抵抗性の発症を示す間接的な証拠である。エストラジオール処置
およびEM−652.HCl処置はともに筋肉リポタンパク質リパーゼの低下を
防止した。
の処置のときに摂取されたエネルギーの総量である。
たキロジュール量である。
算される)代謝必要量および運動のために消費されたエネルギー量である。これ
は、(OVX動物などのように)非脂肪量が多くなると、大きくなることが予想
される。
率である(摂取された100kJあたりの蓄積したkJ数)。
メチル−2−(4’’−(2’’’−ピペリジノ−エトキシ)フェニル)−2H
−1−ベンゾピラン塩酸塩EM−01538(EM−652.HCl)
チル;窒素下で25℃、16時間、その後、イソプロパノールで結晶化。 工程D、EおよびF: (1)ピペリジン、トルエン、Dean&Stark装置、窒素下で還流; (2)1,8−ジアザビシクロ[5,4,0]ウンデカ−7−エン、DMF、3
時間の還流; (3)CH3MgCl、THF、−20℃〜0℃、その後、室温で24時間; 工程G、H:(1S)−(+)−10−カンファースルホン酸、アセトン、水
、トルエン、室温で48時間。 工程HH:95%エタノール、70℃、その後、室温で3日間。 工程HHR:工程HHの母液および洗浄液の再使用、(S)−(+)−10−
カンファースルホン酸、還流;36時間、その後、室温で16時間。 工程I: (1)DMFaq.、Na2CO3、酢酸エチル; (2)エタノール、希HCl; (3)水。
ヒドロピラニルオキシフェニル)アセトフェノン(4)の合成 2,4−ジヒドロキシ−2’−(4’’−ヒドロキシフェニル)アセトフェノ
ン3(97.6g、0.4mol)(Chemsyn Science Lab
oratories(Lenexa、Kansas)から入手可能)を3,4−
ジヒドロピラン(218ml、3.39mol)および酢酸エチル(520ml
)に懸濁させた懸濁物をp−トルエンスルホン酸−水和物(0.03g、0.1
58mmol)で約25℃で処理した。反応混合物を、窒素下、外部からの加熱
を行うことなく約16時間攪拌した。その後、混合物を、重炭酸ナトリウム(1
g)および塩化ナトリウム(5g)を含む水溶液(100ml)で洗浄した。相
を分離して、有機相をブライン(20ml)で洗浄した。それぞれの洗浄液を5
0mlの酢酸エチルで逆抽出した。すべての有機相を一緒にし、硫酸ナトリウム
に通してろ過した。
250ml)を加えた。さらなる溶媒(約300ml)を大気圧下で蒸留して、
イソプロパノール(250ml)を加えた。さらなる溶媒(約275ml)を大
気圧下で蒸留して、イソプロパノール(250ml)を加えた。溶液を攪拌しな
がら約25℃で冷却した。約12時間後、結晶の固体をろ過し、イソプロパノー
ルで洗浄して、乾燥した(116.5g、70%)。
)−3−(4’’’−テトラヒドロピラニルオキシ)フェニル−7−テトラヒド
ロピラニルオキシクロマン(10)の合成 2−テトラヒドロピラニルオキシ−4−ヒドロキシ−2’−(4’’−テトラ
ヒドロピラニルオキシフェニル)アセトフェノン4(1kg、2.42mol)
、4−[2−(1−ピペリジノ)エトキシ]ベンズアルデヒド5(594g、2
.55mol)(Chemsyn Science Laboratories
(Lenexa、Kansas)から入手可能)およびピペリジン(82.4g
、0.97mol)(Aldrich Chemical Company I
nc.(Milwaukee、 Wis.)から入手可能)をトルエン(8L)
に溶解した溶液を、1当量の水(44ml)が回収されるまで、Dean&St
ark装置を用いて窒素下で還流した。
ホルムアミド(6.5L)および1,8−ジアザビシクロ[5,4,0]ウンデ
カ−7−エン(110.5g、0.726mol)を加えた。溶液を室温で約8
時間攪拌して、カルコン8をクロマノン9に異性化させ、その後、水および氷(
8L)およびトルエン(4L)の混合物に加えた。相を分離し、トルエン層を水
(5L)で洗浄した。水性洗浄液を一緒にして、トルエンで抽出した(3x4L
)。トルエン抽出物を一緒にし、ブライン(3x4L)で最終的に洗浄し、大気
圧下で濃縮して5.5Lにし、その後、−10℃に冷却した。
がら、塩化メチルマグネシウムのTHFにおける3M溶液(2.5L、7.5m
ol)(Aldrich Chemical Company Inc.(Mi
lwaukee、Wis.)から入手可能)を加えた。すべてのグリニャール試
薬を加えた後、外部からの冷却を除き、混合物を室温に暖めた。混合物をこの温
度で約24時間攪拌した。
温度を20℃未満で維持しながら、飽和塩化アンモニウム溶液(200ml)を
ゆっくり加えた。混合物を2時間攪拌し、その後、飽和塩化アンモニウム溶液(
2L)およびトルエン(4L)を加えて、5分間攪拌した。相を分離し、水層を
トルエンで抽出した(2x4L)。トルエン抽出物を一緒にして、溶液が均一に
なるまで希塩酸で洗浄し、次いでブライン(3x4L)で洗浄した。最後に、ト
ルエン溶液を大気圧下で濃縮して2Lにした。この溶液をそのまま次工程で使用
した。
チル−2−(4’’−[2’’’−ピペリジノ]エトキシ)フェニル)−2H−
1−ベンゾピラン(1S)−10−カンファースルホン酸塩(±12)の合成 4−ヒドロキシ−4−メチル−2−(4’−[−2’’ピペリジノ]エトキシ
)フェニル−3−(4’’’−テトラヒドロピラニルオキシ)フェニル−7−テ
トラヒドロピラニルオキシクロマン(10)のトルエン溶液に、アセトン(6L
)、水(0.3L)および(S)−10−カンファースルホン酸(561g、2
.42mol)(Aldrich Chemical Company Inc
.(Milwaukee、Wis.)から入手可能)を加えた。混合物を窒素下
で48時間攪拌し、その後、固体の(2R,S)−7−ヒドロキシ−3−(4’
−ヒドロキシフェニル)−4−メチル−2−(4’’−[2’’’−ピペリジノ
]エトキシ)フェニル)−2H−1−ベンゾピラン(1S)−10−カンファー
スルホン酸塩(12)をろ過し、アセトンで洗浄し、乾燥した(883g)。こ
の物質を、さらに精製することなく次の(HH)工程で使用した。
−2−(4’’−[2’’’−ピペリジノ]エトキシ)フェニル)−2H−1−
ベンゾピラン(1S)−10−カンファースルホン酸塩(13、(+)−EM−
652(1S)−CSA塩)の合成 (2R,S)−7−ヒドロキシ−3−(4’−ヒドロキシフェニル)−4−メ
チル−2−(4’’−[2’’’−ピペリジノ]エトキシ)フェニル)−2H−
1−ベンゾピラン(1S)−10−カンファースルホン酸塩(±12)(759
g)を95%エタノールに懸濁させた懸濁物を、固体が溶解するまで攪拌しなが
ら約70℃に加熱した。溶液を攪拌しながら室温に冷却し、その後、(2R)−
7−ヒドロキシ−3−(4’−ヒドロキシフェニル)−4−メチル−2−(4’
’−[2’’’−ピペリジノ]エトキシ)フェニル)−2H−1−ベンゾピラン
(1S)−10−カンファースルホン酸塩13の数粒の結晶を接種した。溶液を
室温において合計で約3日間攪拌した。結晶をろ過し、95%エタノールで洗浄
し、乾燥した(291g、76%)。生成物のdeは94.2%であり、純度は
98.8%であった。
メチル−2−(4’’−[2’’’−ピペリジノ]エトキシ)フェニル)−2H
−1−ベンゾピラン塩酸塩EM−01538(EM−652.HCl)の合成 化合物13(EM−652−(+)−CSA塩、500mg、0.726mo
l)をジメチルホルムアミド(11μL、0.15mmol)に懸濁させた懸濁
物を0.5M炭酸ナトリウム水溶液(7.0mL、3.6mmol)で処理し、
15分間攪拌した。この懸濁物を酢酸エチル(7.0mL)で処理し、4時間攪
拌した。その後、有機相を飽和炭酸ナトリウム水溶液(2x5ml)およびブラ
イン(1x5mL)で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥し、濃縮した。得られた
ピンク色泡状物(EM−652)をエタノール(2mL)に溶解した溶液を2N
塩酸(400μL、0.80mmol)で処理し、1時間攪拌し、蒸留水(5m
L)で処理し、30分間攪拌した。得られた懸濁物をろ過し、蒸留水(5mL)
で洗浄し、空気中、高真空下で乾燥(65℃)して、クリーム状粉末が得られた
(276mg、77%):淡灰色の微粉末;走査熱測定:219℃で始まる融解
ピーク、DH=83J/g;[a]24D=154°(メタノール中、10mg
/ml);1H−NMR(300MHz、CD30D)d(ppm)1.6(b
road、2H、H−4’’’)、1.85(broad、4H、H−3’’’
’および5’’’’)、2.03(s、3H、CH3)、3.0および3.45
(broad、4H、H−2’’’’および6’’’’)、3.47(t、J=
4.9Hz、2H、H−3’’’)、4.26(t、J=4.9Hz、2H、H
−2’’’)、5.82(s、1H、H−2)、6.10(d、J=2.3Hz
、1H、H−8)、6.35(dd、J=8.4Hz、2.43Hz、1H、H
−6)、6.70(d、J=8.6Hz、2H、H−3’およびH−5’)、6
.83(d、J=8.7Hz、2H、H−3’’およびH−5’’)、7.01
(d、J=8.5Hz、2H、H−2’およびH−6’)、7.12(d、J=
8.4Hz、1H、H−5)、7.24(d、J=8.6Hz、2H、H−2’
’およびH−6’’);13C−RMN(CD30D、75MHz)d(ppm
)14,84、22.50、23.99、54.78、57.03、62.97
、81.22、104.38、109.11、115.35、116.01、1
18.68、125.78、126.33、130.26、130.72、13
1.29、131.59、134.26、154.42、157.56、158
.96、159.33。元素組成:C、H、N、Cl:理論値;70.51、6
.53、2.84、7.18%、実測値;70.31、6.75、2.65、6
.89%。
トにおいて、本発明の化合物であるEM−652.HClの単独で、または性ホ
ルモン前駆体であるDHEAとの組合せで防止されることが示されている。6ヶ
月のLHRH−A処置は、無傷の雌性ラットの体脂肪の割合を有意に58%増大
させるが、EM−652.HClまたはDHEAの同時投与により、この増大は
それぞれ35%および19%にすぎなかったことが理解され得る。両方の薬物を
組み合わせた場合、脂肪の増大は、LHRH−A処置の後では認められなかった
。
れている。卵巣摘出は、総体脂肪の割合および後腹膜脂肪組織の重量をそれぞれ
20%および68%増大させる。EM−652.HCl、エストラジオール、D
HEA、EM−652.HClとDHEAとの組合せ、またはEM−652.H
Clとエストラジオールとの組合せを投与することによって、これらの増大は防
止され、そして体脂肪および後腹膜脂肪組織は、体脂肪についてはそれぞれ、4
6%、46%、59%、56%および45%低下し、後腹膜脂肪組織については
それぞれ、59%、78%、75%、69%および68%低下している。類似す
る実験が実施例7において示される。この場合、肥満の防止が34週間続き、そ
の後、体脂肪および後腹膜脂肪組織の割合は卵巣摘出により約60%増大してい
る。この増大は、エチニルエストラジオール、ラロキシフェン(EM−1105
)、EM−652.HCl(EM−1538)、DHEA、またはEM−652
.HClとDHEAとの組合せを投与することによって防止されている。
における本発明の有効性のデータが報告されている。痩身および肥満のZuck
er雄性ラットおよび雌性ラットに、2.5mg/kg/日のEM−652.H
Clが20日間にわたって投与された。防止モデルは痩身ラットによって表され
、一方、肥満の処置モデルは、既に肥満のラットによって表される。体重増加、
白色後腹膜脂肪組織およびひらめ筋におけるリポタンパク質リパーゼ活性、なら
びにインスリン、グルコール、総コレステロールおよびトリグリセリドの血清濃
度に対するデータが、オスの動物については表7に、メスの動物については表8
に報告されている(これらのパラメーターの意味については実施例3を参照のこ
と)。
いては38%、肥満の雄性ラットについては35%と著しく減少させ、一方、白
色後腹膜脂肪組織およびひらめ筋におけるリポタンパク質リパーゼ活性はオスお
よびメスとも変化していない。血漿インスリンは、痩身のオス、肥満のオスおよ
び痩身のメスにおいてそれぞれ、35%、57%および48%低下し、一方、非
常に高レベルのインスリンを示す肥満のメスにおいては、EM−652.HCl
は著しい効果を有していない。肥満群の方が大きい血漿コレステロールもまた、
EM−652.HClの投与により低下している。血清グルコースは、EM−6
52.HClの投与による影響を受けていない。
または卵巣摘出雌性ラットに対するEM−652.HCl、DHEA、または両
方の組合せの効果が、総体重、鼠蹊部および後腹膜の白色脂肪組織の重量および
リポタンパク質リパーゼ活性、褐色脂肪組織の重量およびリポタンパク質リパー
ゼ活性、ひらめ筋および外側広筋(VLM)の重量およびリポタンパク質リパー
ゼ活性について報告されている。血漿中のインスリン、グルコース、総コレステ
ロール、トリグリセリドおよびレプチン、ならびに肝臓のコレステロールおよび
トリグリセリドもまた報告されている。
剤(TSE424、ラソホキシフェン、LY353381およびラロキシフェン
)による処置を行った後のラットにおける体重増加および脂質−リポタンパク質
代謝に対する効果が、EM−652.HCl(本発明の好ましい化合物)による
処置と同様に報告されている。試験化合物は、経口胃管栄養補給によって、0.
4%メチルセルロースにおいて20日間にわたって卵巣摘出雌性ラットに投与さ
れた(各化合物について0.5mg/ラット)。無傷のコントロール、卵巣摘出
(OVX)コントロール、および17−エストラジオール(E2)で処置された
OVXラットを参照として使用した。卵巣摘出により増大する体重および食物消
費は、これらの試験化合物を用いた処置により、無傷のコントロールで認められ
たレベルで著しく低下する。鼠蹊部および後腹膜の白色脂肪組織の重量およびリ
ポタンパク質リパーゼ活性は上記の処置により低下している(ただし、鼠蹊部の
白色脂肪組織に対するTSE424およびLY353381、ならびに鼠蹊部組
織のリポタンパク質リパーゼ活性に対するTSE424およびラソホキシフェン
を除く)。一方、褐色脂肪組織および筋肉は顕著な影響を受けていないようであ
る。試験したすべての化合物はコレステロールおよびトリグリセリドの血漿濃度
を著しく低下させたが、グルコールレベルに対する作用を有していないことが理
解され得る。血漿インスリンは、OVXラットをEM−652.HCl、TSE
424、ラソホキシフェン、LY353381およびラロキシフェンで処置する
ことにより低下した。
の化合物のエストロゲン依存性細胞株におけるインビトロ効力が報告されている
。ヒト子宮内膜腺ガンのIshikawa細胞におけるアルカリホスファターゼ
活性に対する抗エストロゲンの作用が実施例10の表11に示されている。抗エ
ストロゲン様活性が、1nMのE2で刺激されたアルカリホスファターゼの阻害
の、nMで表されるIC50として最後の列に報告されており、同時に、試験化
合物の固有的なエストロゲン様活性が、アルカリホスファターゼ活性の1nMの
E2刺激の割合として、最後から2番目の列に報告されている。最も活性な抗エ
ストロゲンは、EM−652.HCl、LY353381、ラロキシフェン、ラ
ソホキシフェンおよびTSE424であることが理解され得る。それ以外は少な
くとも1/10の活性である。しかし、最も良好な活性化合物の中には、著しい
残留した望ましくないエストロゲン様活性を有しているものがある:LY353
381(16%)、ラソホキシフェン(18%)およびラロキシフェン(13%
)。従って、現在のデータは、EM−652.HClおよびTSE424の化合
物はIshikawa細胞において著しいエストロゲン様活性を示さないことを
示している。実施例12には、ヒト乳ガンMCF−7細胞におけるEM−652
.HCl(本発明者らの好ましい化合物)とTSE424との比較により、EM
−652.HClの利点が示されている。従って、EM−652.HClは、抗
エストロゲンとして、TSE424よりも4倍以上活性である(阻害のIC50
が3.7nMに対して0.8nMである)(表12)。
ルに対するEM−652.HCl、TSE424またはラソホキシフェンによる
20日間の処置の効果が、市販の齧歯類用飼料を与えた卵巣摘出雌性ラットにお
いて評価された。卵巣摘出は総体重および後腹膜脂肪組織重量をそれぞれ17%
および19%増大させたが、0.5mgのEM−652.HCl、TSE424
またはラソホキシフェンの投与は、体重増加をそれぞれ64%、59%および1
27%防止し、そして脂肪組織重量値を、調べたすべての化合物について無傷の
コントロール動物で観測された脂肪組織重量値よりも小さくした。EM−652
.HClおよびTSE424の投与は、OVXコントロール動物と比較した場合
、子宮重量に対する作用を有していなかった。しかし、0.5mgのラソホキシ
フェンの投与は、2.5mgのEM−652.HClを同時に投与することによ
り完全に打ち消される子宮重量の62%の増大(p>0.01)をもたらした。
従って、このことは、ラソホキシフェンのエストロゲン様活性を示唆している。
最後に、総血清コレステロールレベルにおけるOVXにより誘導される増大は、
EM−652.HCl、TSE424およびラソホキシフェンの投与により完全
に防止され、そしてコレステロール値を無傷のコントロール動物で観測されたコ
レステロール値よりも箸しい小さくした。
リポタンパク質代謝に対するEM−652.HClの効果 URMA−r−61−99 この研究の目的は、痩身および肥満のZucker雄性ラットにおけるエネル
ギー収支および脂質−リポタンパク質代謝に対するEM−652.HClの効果
を明らかにすることであった。この目的のために、EM−652.HCl(2.
5mg/kg)が無傷の痩身および肥満のZucker雄性ラットに14日間に
わたって1日に1回経口(胃管栄養補給)投与された。
ール製ケージに1匹ずつ入れられた。 b)温度:ラット室の温度は1日1回記録された。目標温度は22±3℃であ
った。 c)明暗周期:光周期は10時間の照明および14時間の消灯であった。照明
は07:00につけられ、17h00に消された。 d)餌:順応期間中、ラットには、市販の齧歯類用餌(Purina、#50
75)および飲み水が自由に与えられる。研究期間中、ラットには、下記の餌(
餌#3)が与えられる:デンプン(31.2);デキストロース(31.2);
カゼイン(20.0);トウモロコシ油(6.4);dl−メチオニン(0.3
);ビタミン混合物(1.0);AIN−76ミネラル混合物(4.9);繊維
(5.0)(g/100g)から構成される餌。 ラットはその解剖日の朝の07h00頃から絶食させた(水だけが与えられた
)。
ために重量測定され、それぞれの群にわりふられた。
を、下記に概略される研究を行うために、8匹のラットからなる4つの群にわり
ふった。
−652.HClを、0.4%メチルセルロースにおける懸濁物として、14日
間にわたって1日に1回、経口胃管栄養補給(0.5ml/胃管栄養補給/ラッ
ト)によって投与した。コントロール群のラットには、ビヒクル単独(0.5m
l/胃管栄養補給/ラット)が同じ期間にわたって投与された。
後、ラットは、投与初日およびその後の2日毎に、そして解剖当日に重量測定さ
れた。体重は1gの精度で記録された。
した。動物をケタミン−キシラジンで麻酔し、血液を心臓穿刺により抜き取った
。
およびグルコースを、Boehringer Mannheim Diagno
stic Hitachi 911 Analyzer(Boehringer
Mannheim Diagnostic Laboratory Syst
ems)を使用して凍結血漿サンプルで測定した。循環しているホルモンおよび
物質(レプチン、インスリン)を、下記のキットを用いて凍結血漿サンプルで測
定した: レプチン:Linco RIAキット インスリン:Linco RIAキット
法)のために液体窒素で凍結した。後腹膜脂肪組織およびひらめ筋を、リポタン
パク質リパーゼ(LPL)活性のさらなる測定のために採取して、液体窒素で凍
結した。前部前立腺、精巣および精嚢を採取した。前立腺、精巣(左右一緒に)
および右側精嚢(流体を含まない)を重量測定した。右側精嚢は廃棄した。
リポタンパク質代謝に対するEM−652.HClの効果 URMA−r−47−99 この研究の目的は、痩身および肥満のZucker雌性ラットにおけるエネル
ギー収支および脂質−リポタンパク質代謝に対するEM−652.HClの効果
を明らかにすることであった。この目的のために、EM−652.HCl(2.
5mg/kg)が無傷の痩身および肥満のZucker雌性ラットに14日間に
わたって1日に1回経口(胃管栄養補給)投与された。
ジに1匹ずつ入れられた。 b)温度: ラット室の温度は1日1回記録された。目標温度は22?3?Cであった。 c)明暗周期: 光周期は10時間の照明および14時間の消灯であった。照明は07:00に
つけられ、17h00に消された。 d)餌: 順応期間中、ラットには、市販の齧歯類用餌(Purina、#5075)お
よび飲み水が自由に与えられる。研究期間中、ラットには、下記の餌(餌#3)
が与えられる:デンプン(31.2);デキストロース(31.2);カゼイン
(20.0);トウモロコシ油(6.4);dl−メチオニン(0.3);ビタ
ミン混合物(1.0);AIN−76ミネラル混合物(4.9);繊維(5.0
)(g/100g)から構成される餌。ラットはその解剖日の朝の07h00頃
から絶食させた(水だけが与えられた)。
測定され、それぞれの群にわりふられた。
に概略される研究を行うために、8匹のラットからなる4つの群にわりふった。
−652.HClを、0.4%メチルセルロースにおける懸濁物として、14日
間にわたって1日に1回、経口胃管栄養補給(0.5ml/胃管栄養補給/ラッ
ト)によって投与した。コントロール群のラットには、ビヒクル単独(0.5m
l/胃管栄養補給/ラット)が同じ期間にわたって投与された。
その後、ラットは、投与初日およびその後の2日毎に、そして解剖当日に重量測
定された。体重は1gの精度で記録された。
した。動物をケタミン−キシラジンで麻酔し、血液を心臓穿刺により抜き取った
。
およびグルコースを、Boehringer Mannheim Diagno
stic Hitachi 911 Analyzer(Boehringer
Mannheim Diagnostic Laboratory Syst
ems)を使用して凍結血漿サンプルで測定した。循環しているホルモンおよび
物質(レプチン、インスリン、コルチコステロン)を、下記のキットを用いて凍
結血漿サンプルで測定した: レプチン:Linco RIAキット インスリン:Linco RIAキット
有量のさらなる測定(Folch法)のために液体窒素で凍結した。副腎を採取
し、(左右一緒に)重量測定して、廃棄した。子宮および卵巣を採取して、重量
測定し、そしてさらなる組織学的検査のために10%緩衝化ホルマリン中に保存
した。左側および右側の卵巣(卵管を含まない)を一緒に重量測定した。
または組合せで投与されたEM−652.HClおよびDHEAの効果 URMA−r−03−99 この研究の目的は、ラットにおけるエネルギー収支および脂質−リポタンパク
質代謝に対する、単独または組合せで投与されたEM−652.HClおよびD
HEAの効果を明らかにすることであった。処置の効果が、高スクロース−高脂
肪餌を与えた無傷(INT)雌性ラットおよび卵巣摘出(OVX)雌性ラットに
EM−652.HCl(0.5mg/ラット、約2.5mg/kg、経口)およ
びDHEA(20mg/ラット、約100mg/kg、局所適用)を単独または
組合せで投与する20日間の処置を行った後において多くのパラメーターについ
て評価された。比較のために、1つの無傷コントロール群および1つの卵巣摘出
コントロール群には強化飼料が与えられ、一方、他のコントロール動物(無傷お
よびOVX)には市販の齧歯類用飼料が与えられる。
)BR VAF/PlusTM) 性別:メス 体重:投与開始時において、体重は約190g〜220gであった。
ジに1匹ずつ入れられた。 b)温度: ラット室の温度は1日1回記録された。目標温度は22±3℃であった。 c)明暗周期: 光周期は10時間の照明および14時間の消灯であった。照明は06:00に
つけられ、16h00に消された。 d)餌: 順応期間中、ラットには、市販の齧歯類用餌(Purina、#5075)お
よび飲み水が自由に与えられる。研究期間中、群1&群2には市販飼料が引き続
き与えられ、一方、群3〜群10には、スクロース(45);トウモロコシ油(
10);ラード(10);カゼイン(22.5);dl−メチオニン(0.3)
;ビタミン混合物(1.2);AIN−76ミネラル混合物(5.5);繊維(
5.5)(g/100g)から構成される高スクロース−高脂肪飼料が与えられ
る。 ラットはその解剖日前夜の22h00頃から絶食させた(水だけが与えられた
)。
に重量測定され、それぞれの群にわりふられた。
る10群にわりふった。
)卵巣摘出した。無傷なラットには偽手術を行った。
験化合物EM−652.HClは、0.4%メチルセルロースにおける懸濁物と
して、20日間にわたって1日に1回、経口胃管栄養補給(0.5ml/胃管栄
養補給/ラット)によって投与され、一方、DHEAは、同じ期間にわたって1
日に1回、背側皮膚に局所適用された(0.5ml/適用/ラット)。コントロ
ール群のラットには、ビヒクル単独が(経口的および局所的に)投与された。ラ
ットは、最後の投与を行った約24時間後の研究の21日目に屠殺された。
量測定された。体重は1.0gの精度で記録された。
後に屠殺した。動物をケタミン−キシラジンで麻酔し、血液を心臓穿刺により抜
き取った。
er Mannheim Diagnostic Hitachi 911 A
nalyzer(Boehringer Mannheim Diagnost
ic Laboratory Systems)を使用して凍結血清サンプルで
測定した。循環しているホルモンおよび物質(インスリン、レプチン、グルコー
ス)を、下記のように血清サンプルで測定した: インスリン:Linco RIAキット グルコース:Beckmann自動グルコース分析計 レプチン:Linco RIAキット
組織。脳もまた採取される。 肝臓片を、TGおよびCHOL含有量のその後の測定(Folchis法)の
ために凍結した。それ以外の組織は、LPL活性を測定するために処理された。
子宮(および無傷群における卵巣)を取り出し、残存する脂肪を取り除き、重量
測定して、10%緩衝化ホルマリン中に保存した。
対する、EM−652.HCl、TSE424、ラソホキシフェン、LY353
381およびラロキシフェンの効果 URMA−r−45−00 この研究の目的は、文献に記載されている種々の選択的エストロゲン受容体調
節剤による処置を行った後のラットにおけるエネルギー収支および脂質−リポタ
ンパク質代謝に対する効果を明らかにすること、および得られた結果をEM−6
52.HClの結果と比較することであった。この目的のために、試験化合物が
、卵巣摘出雌性ラットに、0.4%メチルセルロースにおいて20日間にわたっ
て経口胃管栄養補給によって投与された(それぞれの化合物について0.5mg
/ラット;0.5ml/ラット)。無傷のコントロール、卵巣摘出(OVX)コ
ントロール、および17−エストラジオール(E2)で処置されたOVXラット
を参照として使用した。
)BR VAF/PlusTM) 性別:メス 体重:投与開始時において、体重は約200g〜225gであった。
ジに1匹ずつ入れられた。 b)温度 ラット室の環境条件(温度、湿度)は、コンピューター処理された自動化シス
テムを使用して連続的に記録された。目標条件は22±3℃および50±20%
の相対湿度であった。 c)明暗周期: 光周期は10時間の照明および14時間の消灯であった。照明は07:15に
つけられ、17h15に消された。 d)餌: 順応期間中、ラットには、証明書付きの齧歯類用飼料(Lab Diet #
5002、ペレット)および飲み水が自由に与えられたが、研究期間中は、高炭
水化物飼料(飼料#3)および飲み水が自由に与えられた。飼料は、トウモロコ
シデンプン(31.2);デキストロース(31.2);カゼイン(20.0)
;トウモロコシ油(6.4);dl−メチオニン(0.3);ビタミン混合物(
1.0);AIN−76ミネラル混合物(4.9);繊維(5.0)(g/10
0g)から構成された。ラットはその解剖日の朝の07h00頃から絶食させた
(水だけが与えられた)。
れた。
トからなる8群にわりふった。
り)卵巣摘出した。群1のラットには偽手術を行った。
に重量測定された。
ーX線吸収測定法(DEXA;QDR4500A、Hologic、Walth
am、MA)を使用して研究の17日目に測定した。
物をケタミン−キシラジン麻酔のもとで腹部大動脈において失血死させた。
Boehringer Mannheim Diagnostic Hitac
hi 911 Analyzer(Boehringer Mannheim
Diagnostic Laboratory Systems)を使用して凍
結血清サンプルで測定した。循環しているホルモンおよび物質(インスリンおよ
びレプチン)を、下記のキットを使用して血清サンプルで測定した: インスリン:Linco RIAキット レプチン:Linco RIAキット
)、褐色脂肪組織、心臓、肝臓、子宮および膣。
ch法)のために液体窒素で凍結した。すべての組織の約0.1g片(子宮およ
び膣を除く)を、リポタンパク質リパーゼ(LPL)活性を測定するために液体
窒素で凍結して、−80℃で保存した。子宮および膣は、さらなる組織学的検査
のために10%緩衝化ホルマリン中に保存された。動物の屠体は金属ボックスに
入れられ、エネルギー収支を測定するまで−20℃で保存された。
性に対する、本発明の化合物ならびに先行技術の化合物の効果 材料 保存用細胞培養物の維持 十分に分化した子宮内膜腺ガンに由来するヒトIshikawa細胞株はEr
lio Gurpide博士(The Mount Sinai Medica
l Center、New York、NY)により快く分与された。Ishi
kawa細胞は、5%(vol/vol)FBSを含有し、かつ100U/ml
ペニシリン、100μg/mlストレプトマイシン、0.1mM非必須アミノ酸
溶液が補充されたイーグル最少必須培地(MEM)において日常的に維持された
。細胞は、37℃で、Falcon T75フラスコに1.5x106細胞の密
度で置床された。
培地を、フェノールレッド非含有ハムF−12培地およびダルベッコ改変イーグ
ル培地(DMEM)の1:1(v:v)混合物からなり、100U/mLペニシ
リン、100μg/mLストレプトマイシン、2mMグルタミン、および内在性
ステロイドを除くためにデキストランコーティング活性炭で2回処理された5%
FBSが補充された新しいエストロゲン非含有基本培地(EFBM)で取り換え
た。その後、細胞を、0.1%パンクレアチン(Sigma)および0.25m
MのHEPESによって集めて、EFBMに再懸濁し、そして100μlの容量
でFalcon 96ウエルの平底マイクロタイタープレートに2.2x104
細胞/ウエルの密度で置床して、プレート表面への接着を24時間行わせた。そ
の後、培地を、200μlの最終容量で、示された濃度の化合物を含有する新し
いEFBMで取り換えた。48時間後に培地交換して、細胞を5日間インキュベ
ーションした。
り返して、増殖培地を捨てた。プレートを200μLのPBS(0.15M N
aCl、10mMリン酸ナトリウム、pH7.4)でウエル毎に洗浄した。その
後、注意して少量のPBSを残留させながらPBSをプレートから除いた。この
洗浄手順をもう一度繰り返した。その後、緩衝化生理食塩水を捨て、逆さにした
プレートをペーパータオルの上で静かにふき取った。カバーを置いた後、プレー
トを−80℃に15分間置き、その後、室温で10分間解凍した。次いで、プレ
ートを氷上に置き、5mMのp−ニトロフェニルホスフェート、0.24mMの
MgCl2および1Mジエタノールアミン(pH9.8)を含有する氷冷した溶
液の50μLを加えた。その後、プレートを室温に加温して、p−ニトロフェニ
ルが産生することに由来する黄色を発色させた(8分)。プレートを酵素結合免
疫吸着アッセイプレート読み取り装置(BIO−RAD、モデル2550 EI
A Reader)において405nmでモニターした。
した。
424の効果 方法 保存用細胞培養物の維持 MCF−7ヒト乳ガン細胞をAmerican Type Culture
Collection #HTB 22から継代数147で得た。細胞は、フェ
ノールレッド非含有ダルベッコ改変イーグル−ハムF12培地、上記に述べられ
た補充物および5%FBSにおいて日常的に生育させた。MCF−7ヒト乳腺ガ
ン細胞株は、69歳の白人女性患者の胸膜滲出液に由来した。MCF−7細胞は
、継代数が148〜165の間で使用され、毎週継代培養された。
用いて集めて、50ng/mlのウシインスリンと、内在性ステロイドを除くた
めにデキストランコーティング活性炭で2回処理されたFBSの5%(v/v)
とを含有する適切な培地で再懸濁した。細胞を、示された密度で24ウエルのF
alconプラスチック培養プレート(2cm2/ウエル)に置床して、プレー
ト表面への接着を72時間行わせた。その後、培地を、99%再蒸留エタノール
における1000x保存用溶液から希釈された指示濃度の化合物を含有するE2
存在またはE2非存在の新しい培地で取り換えた。コントロール細胞は、エタノ
ール性ビヒクル(0.1%EtOH、v/v)のみが与えられた。細胞を、2日
または3日の間隔で培地交換しながら指定された時間間隔でインキュベーション
した。細胞数を、DNA含有量を測定することによって求めた。
計算した。すべての結果は平均±SEMとして表される。
与されたEM−652.HCl、TSE424およびラソホキシフェンの子宮重
量、脂肪および脂質に対する効果の比較 URMA−r−44−00 この研究の目的は、卵巣摘出雌性ラットに、単独で、またはEM−652.H
Clと組み合わせて投与されたEM−652.HCl、TSE424およびラソ
ホキシフェンによる処置を行った後における子宮および膣の組織学に対する効果
を比較することである。この目的のために、それぞれの化合物が、卵巣摘出雌性
ラットに20日間にわたって経口投与され、そして処置期間が終了したとき、子
宮および脂肪を採取して、重量測定した。
)BR VAF/PlusTM) 性別:メス 体重:投与開始時において、体重は約225g〜250gであった。
ジに1匹ずつ入れられた。 b)温度および湿度: ラット室の環境条件(温度、湿度)は、コンピューター処理された自動化シス
テムを使用して連続的に記録された。目標条件は22±3℃および50±20%
の相対湿度であった。 c)明暗周期: 光周期は12時間の照明および12時間の消灯であった。これらのパラメータ
ーは、確認されたコンピューター処理の自動化システムを使用して連続的に記録
された。照明は07:15から19:15まで点灯された。 d)餌: 証明書付きの齧歯類用飼料(Lab Diet #5002、ペレット)およ
び飲み水が自由に与えられた。
からなる7群に分けられた。
出された。
て経口胃管栄養補給(0.5ml/胃管栄養補給/ラット)によって研究の2日
目から21日目まで投与した。
。
酔のもとで腹部大動脈において失血死させた。
利用されるか、あるいは好ましい活性な性ステロイド前駆体のDHEA、アンド
ロスト−5−エン−3b,17b−ジオール3−アセタートまたはアンドロスト
−5−エン−3b,17b−ジオールジヘミスクシナートのいずれかと組み合わ
せて利用されるいくつかの薬学的組成物が、限定としてではなく、例として下記
に示される。本発明の他の化合物またはその組合せは、EM−800またはEM
−652.HCl、DHEA、アンドロスト−5−エン−3b,17b−ジオー
ル3−アセタートまたはアンドロスト−5−エン−3b,17b−ジオールジヘ
ミスクシナートの代わりに使用することができる(あるいはそれらに加えて使用
することができる)。有効成分の濃度は、本明細書中で議論されているように広
い範囲にわたって変化させることができる。含まれ得る他の成分の量およびタイ
プはこの分野で十分に知られている。
しい活性な性ステロイド前駆体のDHEA、アンドロスト−5−エン−3b,1
7b−ジオール3−アセタートまたはアンドロスト−5−エン−3b,17b−
ジオールジヘミスクシナートとを利用するいくつかのキットが、限定としてでは
なく、例として下記に示される。
HCl、DHEA、アンドロスト−5−エン−3b,17b−ジオール3−アセ
タートまたはアンドロスト−5−エン−3b,17b−ジオールジヘミスクシナ
ートの代わりに使用することができる(あるいはそれらに加えて使用することが
できる)。有効成分の濃度は、本明細書中で議論されているように広い範囲にわ
たって変化させることができる。含まれ得る他の成分の量およびタイプはこの分
野で十分に知られている。
lの代わりに使用することができ、同様に他の性ステロイド阻害剤を、DHEA
、アンドロスト−5−エン−3b,17b−ジオール3−アセタートまたはアン
ドロスト−5−エン−3b,17b−ジオールジヘミスクシナートの代わりに使
用することができる。2つ以上のSERMまたは2つ以上の前駆体を含めること
ができる。その場合、組み合わせた重量パーセントは、好ましくは、上記の例に
示されている1個の前駆体または1個のSERMに対する重量パーセントである
。
らによって限定されない。当業者は、添付された請求項のみによって限定される
本発明のより広い適用性および範囲を容易に認識する。
、ラロキシフェン、タモキシフェンおよび不活性なエナンチオマーのEM−77
6(EM−800のエナンチオマー)を増大させた用量(0.01mg/kg、
0.03mg/kg、0.1mg/kg、0.3mg/kg、1mg/kg、経
口、1日に1回)による35週間の処置の結果を示す。データは、平均±SEM
として表されている。**:p<0.01、実験群対それぞれのコントロール。
Clまたはエストラジオールで処置された卵巣摘出ラットにおける、体重増加(
A)、タンパク質増加(B)および脂肪増加(C)に対する20日間の処置の結
果を示す。データは、平均±SEMとしてグラム(g)で表されている。*p<
0.05(対無傷群);†p<0.05(対OVX+E2群、EM−652.H
Cl群のみについて)。
エストラジオールで処置された卵巣摘出ラットにおける累積食物摂取量に対する
20日間の処置の結果を示す。データは、グラム(g)で表されている。
エストラジオールで処置された卵巣摘出ラットにおける、タンパク質としての体
エネルギー(A)および脂肪としての体エネルギー(B)に対する20日間の処
置の結果を示す。データは、平均±SEMとしてキロジュール(kJ)で表され
ている。*p<0.05(対無傷群);†p<0.05(対OVX+E2群、E
M−652.HCl群のみについて)。
エストラジオールで処置された卵巣摘出ラットにおける血清インスリンレベルお
よび血清グルコースレベルに対する20日間の処置の結果を示す。データは、平
均±SEMとしてnmol/Lで表されている。*p<0.05(対無傷群)。
エストラジオールで処置された卵巣摘出ラットにおける白色脂肪組織パラメータ
ーに対する20日間の処置の結果を示す:鼠蹊部(A)および後腹膜(C)の脂
肪組織重量(データは平均±SEMとしてグラム(g)で表されている)、鼠蹊
部(B)および後腹膜(D)の白色脂肪組織リポタンパク質リパーゼ活性(デー
タは平均±SEMとして?U/gタンパク質で表されている;*p<0.05(
対無傷群);†p<0.05(対OVX+E2群、EM−652.HCl群のみ
について))。
す:(A)褐色脂肪組織重量(データは平均±SEMとしてグラム(g)で表さ
れている、*p<0.05(対無傷群);†p<0.05(対OVX+E2群、
EM−652.HCl群のみについて));(B)タンパク質含有量(データは
平均±SEMとして組織重量の%で表されている、*p<0.05(対無傷群)
;†p<0.05(対OVX+E2群、EM−652.HCl群のみについて)
)、(C)リポタンパク質リパーゼ活性(データは?U/gタンパク質で表され
る)。
M−652.HClで処置された卵巣摘出ラットにおけるひらめ筋の重量(デー
タは平均±SEMとしてグラム(g)で表されている)およびリポタンパク質リ
パーゼ(データは平均±SEMとして?U/gタンパク質で表されている;*p
<0.05(対無傷群))に対する20日間の処置の結果を示す。
Claims (8)
- 【請求項1】 薬学的に受容可能な希釈剤またはキャリア、 治療的に受容可能な量の選択的エストロゲン受容体調節剤で、下記の一般式 【化1】 (式中、R1およびR2は独立して、水素、ヒドロキシル、−OM(Mは、直鎖
状または分枝状のC1〜C4アルキル、直鎖状または分枝状のC3〜C4アルケ
ニル、直鎖状または分枝状のC3〜C4アルキニルからなる群から選択される)
、および生体内でヒドロキシルに変換され得る基からなる群から選択され; Gは−Hまたは−CH3であり; R3は、ピロリジニル、ピペリジノ、モルホリノおよびNRaRb(Raおよ
びRbは独立して、水素、直鎖状または分枝状のC1〜C6アルキル、直鎖状ま
たは分枝状のC3〜C6アルケニル、および直鎖状または分枝状のC3〜C6ア
ルキニルである)からなる群から選択される化学種である) を有する選択的エストロゲン受容体調節剤、および 任意のエストロゲン を含む薬学的組成物であって、 R1またはR2はピバロイルオキシ基ではなく、 前記化合物または塩は実質的に(2R)エナンチオマーを有しない 薬学的組成物。 - 【請求項2】 薬学的に受容可能な賦形剤、希釈剤またはキャリア、 治療的に受容可能な量の選択的エストロゲン受容体調節剤で、 EM−652.HCl: 【化2】 からなる群から選択される選択的エストロゲン受容体調節剤、および 任意のエストロゲン を含む薬学的組成物。
- 【請求項3】 薬学的に受容可能な賦形剤、希釈剤またはキャリア、 治療的に有効で受容可能な量の選択的エストロゲン受容体調節剤で、 EM−01732: 【化3】 EM−01872−B: 【化4】 EM−01900−B: 【化5】 EM−01903−C: 【化6】 からなる群から選択される選択的エストロゲン受容体調節剤、ならびに エストラジオールおよびプレマリンまたは性ステロイド前駆体(性ステロイド
前駆体は、デヒドロエピアンドロステロン、硫酸デヒドロエピアンドロステロン
、アンドロスト−5−エン−3b,17b−ジオール、および生体内でいずれか
に変換される化合物からなる群から選択される)からなる群から選択されるエス
トロゲン を含む薬学的組成物。 - 【請求項4】 インスリン抵抗性を発症する危険性を処置するか、または低
下させる方法であって、そのような処置または低下を必要とする対象体に、治療
有効量の選択的エストロゲン受容体調節剤で、下記の一般式: 【化7】 (式中、R1およびR2は独立して、水素、ヒドロキシル、−OM(Mは、直鎖
状または分枝状のC1〜C4アルキル、直鎖状または分枝状のC3〜C4アルケ
ニル、直鎖状または分枝状のC3〜C4アルキニルからなる群から選択される)
、および生体内でヒドロキシルに変換され得る基からなる群から選択され; Gは−CH3であり;そして R3は、ピロリジニル、ピペリジノ、モルホリノおよびNRaRb(Raおよ
びRbは独立して、水素、直鎖状または分枝状のC1〜C6アルキル、直鎖状ま
たは分枝状のC3〜C6アルケニル、および直鎖状または分枝状のC3〜C6ア
ルキニルである)からなる群から選択される化学種である) を有する選択的エストロゲン受容体調節剤を投与することを含む方法。 - 【請求項5】 エストラジオールおよびプレマリンまたは性ステロイド前駆
体(性ステロイド前駆体は、デヒドロエピアンドロステロン、硫酸デヒドロエピ
アンドロステロン、アンドロスト−5−エン−3b,17b−ジオール、および
生体内でいずれかに変換される化合物からなる群から選択される)からなる群か
ら選択されるエストロゲンの治療有効量を投与することをさらに含む、請求項4
に記載の方法。 - 【請求項6】 前記選択的エストロゲン受容体はEM−652.HCl 【化8】 である、請求項4に記載の方法。
- 【請求項7】 下記の分子構造を有する化合物: EM−652.HCl 【化9】
- 【請求項8】 薬学的な賦形剤、希釈剤またはキャリアと、治療有効量の EM−652.HCl 【化10】 とを含む薬学的組成物。
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