JP2001169787A - ローソニア・イントラセルラリスタンパク質、および関連の方法および材料 - Google Patents
ローソニア・イントラセルラリスタンパク質、および関連の方法および材料Info
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Abstract
質、および関連の方法および材料を提供すること。 【解決手段】 単離されたポリペプチド分子は、L.イ
ントラセルラリスのHtrA、PonA、HypC、L
ysS、YcfW、ABC1またはOmp100タンパ
ク質をコードしているヌクレオチド配列、その配列の実
質的な部分または相同配列を含む。関連ポリペプチド、
免疫原性組成物および検定法を記載する。
Description
トラセルラリス(Lawsonia intracellularis)に由来す
るタンパク質に関し、関連のタンパク質、核酸および免
疫原性組成物を包含する。それら免疫原性組成物は、ブ
タなどの感受性動物のL.イントラセルラリス感染の予
防において特に有用である。それらタンパク質、フラグ
メントおよび核酸も、診断薬として用いることができ
る。
殖性腸症(PPE)と集合的に称される広範囲の腸疾患
または症候群に感受性である。これら疾患には、腸腺腫
症複合症(Barker I.K. ら,1985, “Pathology of Dom
estic Animals,”第3版,2巻,1-237頁中,K.V.F.Jub
b ら監修(Academic Press: オーランド))、ブタ腸腺
腫症(PIA)、壊死性腸炎(Rowland A.C. ら,1976,
Veterinary Record 97:178-180)、繁殖性出血性腸症
(Love,R.J. ら,1977, Veterinary Record 100:47
3)、限局性回腸炎(Jonsson,L. ら,1976, Acta Veter
inaria Scandinavica 17:223-232)、出血性腸症候群
(O'Neil,I.P.A., 1970, Veterinary Record 87:742-74
7)、ブタ繁殖性腸炎およびカンピロバクター(Campylo
bacter)種によって起こる腸炎(Straw,B.E., 1990, Jo
urnal of American Veterinary Medical Association 1
97:355-357)が含まれる。
り、ブタ腸腺腫症(PIA)によって現れる。この型の
PPEは、しばしば、成長遅滞および軽い下痢を引き起
こす。もう一つ重要な種類のPPEは、出血性である。
それは、致死的であることが多く、繁殖性出血性腸症
(PHE)によって現れ、その場合、遠位小腸内腔は、
充血した状態になる。
が、PPEは、ハムスター(Stills,H.F., 1991, Infec
tion and Immunology 59:3227-3236)、フェレット(Fo
x ら,1989, Veterinary Pathology 26:515-517)、モ
ルモット(Elwell ら,1981,Veterinary Pathology 18:
136-139)、ウサギ(Schodeb ら,1990, VeterinaryPat
hology 27:73-80)および若干の鳥類(Mason ら,199
8)の飼育においても問題である。
クター様細菌“L.イントラセルラリス”である(McOr
ist S ら,1995, International Journal Of Systemati
c Bacteriology 45:820-825)。この微生物は、回腸共
生生物イントラセルラリスとしても知られている(Stil
ls, 1991, 上記)。ブタのPPE様疾患は、カンピロバ
クターの他の種によって引き起こされることもありうる
(Gebhart ら,1983,American Journal of Veterinary
Research 44:361-367)。
の絨毛の細胞質中および腸陰窩細胞中で認められ、そこ
で、構造的不規則および腸細胞増殖を引き起こす。絨毛
および腸陰窩のような膿瘍形態は、分岐した状態になり
且つ炎症性細胞で満たされる。
抗細菌化合物の使用に頼っている。しかしながら、L.
イントラセルラリス感染を制御するそれに代わる手段が
要求される。
67号には、ワクチンとして有用であるL.イントラセ
ルラリスのポリペプチドおよび免疫原性組成物が記載さ
れている。しかしながら、L.イントラセルラリス感染
への抵抗性を与える更に別の組成物が要求される。
リヌクレオチド分子であって、 (a)L.イントラセルラリスのHtrA、PonA、
HypC、LysS、YcfW、ABC1またはOmp
100タンパク質をコードしているヌクレオチド配列; (b)そのL.イントラセルラリスHtrA、Pon
A、HypC、LysS、YcfW、ABC1またはO
mp100タンパク質をコードしているヌクレオチド配
列の実質的な部分であるヌクレオチド配列;および (c)(a)または(b)のヌクレオチド配列に相同で
あるヌクレオチド配列から成る群より選択されるヌクレ
オチド配列を含む上記単離されたポリヌクレオチド分子
に関する。
らポリヌクレオチド分子を含む組換え体ベクターに関
し、その組換え体ベクターの発現が、上記のヌクレオチ
ド配列によってコードされるタンパク質またはポリペプ
チドに融合した担体または融合パートナーを含む融合タ
ンパク質を生じるような担体または融合パートナーをコ
ードしているものが含まれる。本発明は、これら組換え
体ベクターを含む形質転換された宿主細胞およびこのよ
うな形質転換された宿主細胞によって生産されるポリペ
プチドも包含する。
されたポリペプチドであって、 (a)L.イントラセルラリスのHtrA、PonA、
HypC、LysS、YcfW、ABC1またはOmp
100タンパク質; (b)そのL.イントラセルラリスのHtrA、Pon
A、HypC、LysS、YcfW、ABC1またはO
mp100タンパク質のアミノ酸配列と相同のアミノ酸
配列を有するポリペプチド; (c)そのL.イントラセルラリスのHtrA、Pon
A、HypC、LysS、YcfW、ABC1またはO
mp100タンパク質の実質的な部分、またはそのL.
イントラセルラリスのHtrA、PonA、HypC、
LysS、YcfW、ABC1またはOmp100タン
パク質のアミノ酸配列と相同のアミノ酸配列を有するポ
リペプチドの実質的な部分から成るポリペプチド; (d)別のタンパク質またはポリペプチドに融合した
(a)、(b)または(c)のタンパク質またはポリペ
プチドを含む融合タンパク質;および (e)(a)、(b)、(c)または(d)のタンパク
質またはポリペプチドの類似体または誘導体から成る群
より選択される上記単離されたポリペプチドに関する。
る且つ約nt2691〜約nt2890の配列番号:2
内で見出される20ヌクレオチドを越えるヌクレオチド
配列を含むポリヌクレオチド分子を提供する。
ずれかを製造する方法であって、組換え体発現ベクター
を用いて形質転換された宿主細胞を培養し、その細胞培
養から発現されたポリペプチドを回収することを含む上
記方法に関する。そのベクターは、ポリペプチドのいず
れかをコードしているヌクレオチド配列を含むポリヌク
レオチド分子を含み、そのヌクレオチド配列は、一つま
たはそれ以上の調節因子と機能的に結合している。培養
は、ポリペプチドの発現を導きうる条件下で行われる。
上記のL.イントラセルラリスのHtrA、PonA、
HypC、LysS、YcfW、ABC1またはOmp
100タンパク質またはポリペプチドのいずれかと特異
的に反応する単離された抗体に関する。
ペプチド、抗体またはポリヌクレオチドの免疫学的有効
量を薬学的に許容しうる担体との組合せで含む免疫感作
用組成物に関する。本発明は、L.イントラセルラリス
感染に対してPPE感受性動物を免疫感作する方法であ
って、その動物に免疫感作用組成物を投与することを含
む上記方法を包含する。
よって引き起こされるまたは悪化する疾患状態に対して
PPE感受性動物を免疫感作するためのキットであっ
て、上記のタンパク質、ポリペプチド、抗体またはポリ
ヌクレオチドの内1種類の免疫学的有効量が中に入って
いる容器を含む上記キットに関する。本発明はまた、
L.イントラセルラリス、L.イントラセルラリス特異
的アミノ酸またはヌクレオチド配列、または抗L.イン
トラセルラリス抗体の存在を検出するためのキットであ
って、本発明のタンパク質、ポリペプチド、ポリヌクレ
オチドまたは抗体が中に入っている容器を含む上記キッ
トに関する。
て、本明細書中にそのまま援用される。
アのいずれの種または菌株にも由来するヌクレオチド配
列を有することができるが、好ましくは、イントラセル
ラリス種に由来する。本発明を実施するのに用いるため
の病原性ローソニア菌株または種は、下記の単離技術を
用いて、感染した動物の器官、組織または体液から単離
することができる。
クレオチド分子”、“ポリヌクレオチド配列”、“コー
ディング配列” 、“読み取り枠(ORF)”等の用語
は、DNAおよびRNA分子双方を示すためのものであ
り、それは一本鎖かまたは二本鎖でありうるし、しか
も、1種類またはそれ以上の原核性配列、cDNA配
列、エクソンおよびイントロンを含めたゲノムDNA配
列、および化学合成されたDNAおよびRNA配列、並
びにセンス鎖および対応するアンチセンス鎖双方を含む
ことがありうる。本明細書中で用いられるように、“O
RF”という用語は、終止コドンを全く介在させること
なく、ローソニアHtrA、PonA、HypC、Ly
sS、YcfW、ABC1またはOmp100タンパク
質をコードするのに必要な最小限のヌクレオチド配列を
意味する。
分子およびオリゴヌクレオチド分子の製造および操作
は、当該技術の範囲内であり、特に、Maniatis ら,198
9, Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Cold Sp
ring Harbor Laboratory Press, コールド・スプリング
・ハーバー,NY;Ausubel ら,1989, Current Protoc
ols In Molecular Biology, Greene Publishing Associ
ates & Wiley Interscience, NY;Sambrook ら,198
9, Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 第2
版,Cold Spring Harbor Laboratory Press, コールド
・スリング・ハーバー,NY;Innis ら(監修),199
5, PCR Strategies, Academic Press,Inc., サン・ディ
エゴ;および Erlich(監修),1992, PCR Technology,
Oxford University Press, ニューヨーク並びにこれら
文献の全改訂版に記載の組換え技術によって行うことが
できる。
チド配列並びにそれらの実施的な部分の本明細書中での
意味は、Central Research, イースタン・ポイント・ロ
ード,グロートン,CTの Pfizer Inc. によって、Ame
rican Type Culture Collection, 12301 パーク
ローン・ドライブ,ロックビル,MD,20852に寄
託された大腸菌(E.coli)Top10細胞中に含有され
る次のプラスミド中に存在するような該当するヌクレオ
チド配列およびそれらの実質的な部分をそれぞれ示すた
めのものでもある。
番号PTA−635として1999年9月9日に寄託さ
れたpER432;htrA遺伝子を含有する、ATC
C受託番号PTA−636として1999年9月9日に
寄託されたpER434;hypC遺伝子を含有する、
ATCC受託番号PTA−637として1999年9月
9日に寄託されたpER436;ycfWおよびabc
1遺伝子を含有する、ATCC受託番号PTA−638
として1999年9月9日に寄託されたpER438;
Omp100遺伝子を含有する、ATCC受託番号PT
A−639として1999年9月9日に寄託されたpE
R440;およびlysSおよびycfW遺伝子を含有
する、ATCC受託番号PTA−2232として200
0年7月14日に寄託されたpT068。
102に示されるアミノ酸配列並びにそれらの実施的な
部分およびペプチドフラグメントの本明細書中での意味
は、特に断らない限り、上に挙げたプラスミド中に存在
するヌクレオチド配列をコードしている該当するタンパ
ク質によってコードされている該当するアミノ酸配列並
びにそれらの実施的な部分およびペプチドフラグメント
をそれぞれ示すためのものでもある。
パク質をコードしているヌクレオチド配列を含む単離さ
れたポリヌクレオチド分子を提供する。好ましい実施態
様において、そのHtrAタンパク質は、配列番号:7
のアミノ酸配列を有する。更に好ましい実施態様におい
て、本発明のHtrAをコードしている単離されたポリ
ヌクレオチド分子は、htrA遺伝子の読み取り枠(O
RF)のヌクレオチド配列である約nt2891〜約n
t4315の配列番号:2のヌクレオチド配列、および
プラスミドpER434(ATCC受託番号PTA−6
36)のHtrAをコードしているORFのヌクレオチ
ド配列から成る群より選択されるヌクレオチド配列を含
む。
ドしているポリヌクレオチド分子のヌクレオチド配列に
相同であるヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌ
クレオチド分子を提供する。HtrA関連ポリヌクレオ
チド分子を論及するのに用いられる場合の“相同”とい
う用語は、(a)本発明の前述のHtrAをコードして
いるポリヌクレオチド分子の一つと同様のタンパク質を
コードしている;または(b)L.イントラセルラリス
HtrAタンパク質のアミノ酸配列をコードしているヌ
クレオチド配列を有するポリヌクレオチド分子の補体
に、少なくとも中程度のストリンジェントな条件下にお
いて、すなわち、0.5M NaHPO4、7%ドデシ
ル硫酸ナトリウム(SDS)、1mM EDTA中にお
いて65℃でフィルターに結合したDNAへのハイブリ
ダイゼーションおよび0.2xSSC/0.1%SDS
中において42℃で洗浄すること(Ausubel ら(監
修),1989, Current Protocols In Molecular Biolog
y, 1巻,Green Publishing Associates,Inc., and Joh
n Wiley & Sons,Inc. ニューヨーク,2.10.3頁を参照さ
れたい)においてハイブリッド形成する、しかも本発明
の実施において有用であるヌクレオチド配列を有するポ
リヌクレオチド分子を意味する。好ましい実施態様にお
いて、その相同ポリヌクレオチド分子は、L.イントラ
セルラリスHtrAタンパク質のアミノ酸配列をコード
しているヌクレオチド配列を有するポリヌクレオチド分
子の補体に、高ストリンジェントな条件下において、す
なわち、0.5M NaHPO4、7%SDS、1mM
EDTA中において65℃でフィルターに結合したD
NAへのハイブリダイゼーションおよび0.1xSSC
/0.1%SDS中において68℃で洗浄すること(Au
subel ら,1989, 上記)においてハイブリッド形成し、
しかも本発明の実施において有用である。より好ましい
実施態様において、その相同ポリヌクレオチド分子は、
高ストリンジェントな条件下において、約nt2891
〜約nt4315である配列番号:2のHtrAをコー
ドしているORFから成る群より選択されるヌクレオチ
ド配列から成るポリヌクレオチド分子の補体にハイブリ
ッド形成する。上記のように、本明細書中の相同ポリヌ
クレオチド分子の意味は、このような分子の補体を示す
ためのものでもある。
レオチド分子は、そのポリヌクレオチド分子を、ポリメ
ラーゼ連鎖反応のような標準的な増幅技術を用いてロー
ソニア特異的ポリヌクレオチド分子を増幅させるのに用
いることができる、またはローソニアに感染した動物由
来の体液若しくは組織試料中のローソニア特異的ポリヌ
クレオチドの存在を検出する診断薬として用いることが
できる場合、またはそのポリヌクレオチド分子が、下記
のように本発明の実施において有用であるポリペプチド
をコードしている場合、“本発明の実施において有用”
である。
クレオチド分子のヌクレオチド配列に相同であるヌクレ
オチド配列を有する本発明のポリヌクレオチド分子に
は、大腸菌、ネズミチフス菌(S.typhimurium)、C.
ジジュニ(jejuni)、インフルエンザ菌(H.influenza
e)、マルタ熱菌(B.melitensis)、ウシ流産菌(B.abo
rtus)、トラコーマクラミジア(C.trachomatis)、エ
ルジニア・エンテロコリティカ(Y.enterocolitia)、
リケッチア属(Rickettsia)、B.ブルグドルフェリ
(burgdorferi)および枯草菌(B.subtilis)などの細
菌から記載されてきたポリヌクレオチド分子が含まれな
い。配列番号:2によってコードされるL.イントラセ
ルラリスHtrAタンパク質は、B.アボルタスHtr
Aタンパク質と39.6%のアミノ酸配列同一性を有す
る。そのL.イントラセルラリスタンパク質は474残
基長さであるが、B.アボルタスタンパク質は513残
基長さである。L.イントラセルラリスタンパク質は、
インフルエンザ菌のそれと35.4%一致する。
好ましくは、約nt2891〜約nt4315である配
列番号:2の分子との50%を越える、より好ましく
は、約90%を越える、なおより好ましくは、約95%
を越える、そして最も好ましくは、約99%を越える配
列同一性を有する配列を含み、その配列同一性は、BL
ASTNアルゴリズム(GenBank, National Center for
Biotechnology Information)の使用によって決定され
る。
オチドは、L.イントラセルラリスHtrAタンパク質
をコードしているヌクレオチド配列の長さの約50%を
越える相同配列を有する。もう一つの実施態様におい
て、その配列は、L.イントラセルラリスタンパク質を
コードしているヌクレオチド配列の長さの70%を越
え、もう一つの実施態様において、その配列は90%を
越え、そしてもう一つの実施態様においては、約98%
を越える。なおもう一つの実施態様において、相同配列
を有する単離されたポリヌクレオチドは、L.イントラ
セルラリスHtrAタンパク質をコードしている配列と
長さが等しい。
ントラセルラリスHtrAタンパク質をコードしている
配列と相同であるヌクレオチド配列は、約nt2891
〜約nt4315である配列番号:2の配列に関して、
挿入された、欠失したまたは置換された1〜50個、よ
り好ましくは、1〜25個、そして最も好ましくは、1
〜5個のヌクレオチドを有する。
HtrAタンパク質と相同であるポリペプチドをコード
しているヌクレオチド配列を含む単離されたポリヌクレ
オチド分子を提供する。L.イントラセルラリスHtr
Aタンパク質と相同であるポリペプチドを論及するのに
本明細書中で用いられるように、“相同”という用語
は、他の点ではL.イントラセルラリスHtrAタンパ
ク質のアミノ酸配列を有するポリペプチドであるが、得
られたポリペプチドが本発明の実施において有用である
限りにおいて、その1個またはそれ以上のアミノ酸残基
が別のアミノ酸残基で置換されているポリペプチドを意
味する。保存的アミノ酸置換は、当該技術分野において
周知である。このような置換を行う規則には、特に、Da
yhof,M.D.,1978, Nat.Biomed.Res.Found., ワシント
ン,D.C.,5巻,補遺3によって記載されたものが
含まれる。より具体的には、保存的アミノ酸置換は、側
鎖の酸性度、極性または嵩高性に関するアミノ酸ファミ
リー内で一般的に起こるものである。遺伝子にコードさ
れるアミノ酸は、概して、(1)酸性=アスパラギン
酸、グルタミン酸;(2)塩基性=リシン、アルギニ
ン、ヒスチジン;(3)非極性=アラニン、バリン、ロ
イシン、イソロイシン、プロリン、フェニルアラニン、
メチオニン、トリプトファン;および(4)非荷電極性
=グリシン、アスパラギン、グルタミン、システイン、
セリン、トレオニンおよびチロシンの4群に分けられ
る。フェニルアラニン、トリプトファンおよびチロシン
は一緒に、芳香族アミノ酸としても分類される。いずれ
か特定の基内の1個またはそれ以上の置換、例えば、ロ
イシンをイソロイシンまたはバリンで、またはアスパラ
ギン酸をグルタミン酸で、またはトレオニンをセリン
で、または任意の他のアミノ酸残基を構造的に関連した
アミノ酸残基、例えば、側鎖の同様の酸性度、極性、嵩
高性またはそれらのいくつかの組合せの類似性を有する
アミノ酸残基での置換は、概して、そのポリペプチドの
機能または免疫原性に有意の作用を有するであろう。好
ましい実施態様において、相同ポリペプチドは、配列番
号:7と少なくとも約50%、より好ましくは、少なく
とも約70%、そしてなおより好ましくは、少なくとも
約90%の配列同一性、そして最も好ましくは、少なく
とも95%の配列同一性を有する。
オチドは、挿入された、欠失したまたは置換された、そ
れらの組合せを含めた1〜10個、より好ましくは、1
〜5個のアミノ酸を有するL.イントラセルラリスHt
rAタンパク質から成る単離されたポリペプチドをコー
ドしている。この実施態様のより具体的な例において、
そのポリヌクレオチドは、配列番号:7のHtrA配列
の代わりに保存的に置換された1〜5個のアミノ酸を有
する単離されたポリペプチドをコードしている。
チドは、ローソニアに免疫応答を示した動物からの血
液、血清または他の体液試料中のローソニア特異的抗体
の存在を検出する診断試薬としてそのポリペプチドを用
いることができる場合、“本発明の実施において有用”
である。そのポリペプチドはまた、それを用いてロー
ソニアに対する動物の免疫応答を引き起こすことができ
るならば有用である。
アHtrA関連ポリヌクレオチド分子のいずれかの実質
的な部分から成るポリヌクレオチド分子を提供する。本
明細書中で用いられるように、HtrA関連ポリヌクレ
オチド分子の“実質的な部分”とは、HtrA関連ポリ
ヌクレオチド分子の完全なヌクレオチド配列より少ない
ものから成るが、HtrA関連ポリヌクレオチド分子の
少なくとも5%、より好ましくは、少なくとも約10
%、そしてなおより好ましくは、少なくとも約20%、
そして最も好ましくは、少なくとも約50%のヌクレオ
チド配列を含むポリヌクレオチド分子を意味し、それは
本発明の実施において有用である。このようなポリヌク
レオチド分子には、例えば、HtrAタンパクのペプチ
ドフラグメントをコードしているポリヌクレオチド分子
が含まれる。
のいずれかのヌクレオチド配列に加えて、本発明のポリ
ヌクレオチド分子は、自然にHtrA ORFに隣接す
るものまたはL.イントラセルラリスのその場(in
situ)の遺伝子より選択されるヌクレオチド配列を
更に含むことができる、或いは、から成ることができ、
約nt2691〜約nt2890および約nt4316
〜約nt4580の配列番号:2に示されるヌクレオチ
ド配列またはそれらの実質的な部分を含む。
パク質をコードしているヌクレオチド配列を含む単離さ
れたポリヌクレオチド分子を提供する。好ましい実施態
様において、そのPonAタンパク質は、配列番号:6
のアミノ酸配列を有する。更に好ましい実施態様におい
て、本発明のPonAをコードしている単離されたポリ
ヌクレオチド分子は、約nt252〜約nt2690の
配列番号:2のヌクレオチド配列(PonA遺伝子の読
み取り枠(ORF)のヌクレオチド配列)、およびプラ
スミドpER432(ATCC受託番号PTA−63
5)のPonAをコードしているORFのヌクレオチド
配列から成る群より選択されるヌクレオチド配列を含
む。
ポリヌクレオチド分子に関して上に相応して定義されて
いるように、本発明のPonAをコードしているポリヌ
クレオチド分子のヌクレオチド配列に“相同”であるヌ
クレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド分
子を更に提供する。好ましい実施態様において、その相
同ポリヌクレオチド分子は、L.イントラセルラリスP
onAタンパク質のアミノ酸配列をコードしているヌク
レオチド配列を有するポリヌクレオチド分子の補体に、
高ストリンジェントな条件下においてハイブリッド形成
する。より好ましい実施態様において、その相同ポリヌ
クレオチド分子は、高ストリンジェントな条件下におい
て、約nt252〜約nt2690の配列番号:2のヌ
クレオチド配列から成るポリヌクレオチド分子の補体に
ハイブリッド形成する。
クレオチド分子のヌクレオチド配列に相同であるヌクレ
オチド配列を有する本発明のポリヌクレオチド分子に
は、ナイセリア・フラベセンス(Neisseria flavescen
s)、淋菌(N.gonorrhoeae)および髄膜炎菌(N.mening
itidis)のPonAタンパク質をコードしている既知の
ポリヌクレオチド分子が含まれない。
好ましくは、約nt252〜約nt2690である配列
番号:2の分子との50%を越える、より好ましくは、
約90%を越える、なおより好ましくは、約95%を越
える、そして最も好ましくは、約99%を越える配列同
一性を有する配列を含み、その配列同一性は、BLAS
TNアルゴリズム(GenBank, National Center for Bio
technology Information)の使用によって決定される。
オチドは、L.イントラセルラリスPonAタンパク質
をコードしているヌクレオチド配列の長さの約50%を
越える相同配列を有する。もう一つの実施態様におい
て、その配列は、L.イントラセルラリスタンパク質を
コードしているヌクレオチド配列の長さの90%を越
え、もう一つの実施態様においては約98%を越える。
なおもう一つの実施態様において、相同配列を有する単
離されたポリヌクレオチドは、L.イントラセルラリス
PonAタンパク質をコードしている配列と長さが等し
い。
ントラセルラリスPonAタンパク質をコードしている
配列と相同であるヌクレオチド配列は、配列番号:2の
配列に関して、挿入された、欠失したまたは置換された
1〜50個、より好ましくは、1〜25個、そして最も
好ましくは、1〜5個のヌクレオチドを有する。
Aタンパクに関して上に相応して記載されているよう
に、L.イントラセルラリスPonAタンパク質と“相
同”であるポリペプチドをコードしているヌクレオチド
配列を含む単離されたポリヌクレオチド分子を提供す
る。好ましい実施態様において、相同ポリペプチドは、
配列番号:6と少なくとも約50%、より好ましくは、
少なくとも約70%、そしてなおより好ましくは、少な
くとも約90%の配列同一性、そして最も好ましくは、
少なくとも95%の配列同一性を有する。
オチドは、挿入された、欠失したまたは置換された、そ
れらの組合せを含めた1〜10個、より好ましくは、1
〜5個のアミノ酸を有するL.イントラセルラリスPo
nAタンパク質から成る単離されたポリペプチドをコー
ドしている。この実施態様のより具体的な例において、
そのポリヌクレオチドは、配列番号:6のPonA配列
の代わりに保存的に置換された1〜5個のアミノ酸を有
する単離されたポリペプチドをコードしている。
がHtrAタンパクに関して上に相応して記載されてい
るように、本発明の前述のローソニアPonA関連ポリ
ヌクレオチド分子のいずれかの“実質的な部分” から
成るポリヌクレオチド分子を提供する。
のいずれかのヌクレオチド配列に加えて、本発明のポリ
ヌクレオチド分子は、自然にponA ORFに隣接す
るものまたはL.イントラセルラリスのその場(in
situ)の遺伝子より選択されるヌクレオチド配列を
更に含むことができる、或いは、から成ることができ、
約nt126〜約nt251および約nt2691〜約
nt2890の配列番号:2に示されるヌクレオチド配
列またはそれらの実質的な部分を含む。
パク質をコードしているヌクレオチド配列を含む単離さ
れたポリヌクレオチド分子を提供する。好ましい実施態
様において、そのHypCタンパク質は、配列番号:8
のアミノ酸配列を有する。更に好ましい実施態様におい
て、本発明のHypCをコードしている単離されたポリ
ヌクレオチド分子は、約nt4581〜約nt4829
の配列番号:2のヌクレオチド配列、およびプラスミド
pER436(ATCC受託番号PTA−637)のH
ypCをコードしているORFのヌクレオチド配列から
成る群より選択されるヌクレオチド配列を含む。
ポリヌクレオチド分子に関して上に相応して定義されて
いるように、本発明のHypCをコードしているポリヌ
クレオチド分子のヌクレオチド配列に“相同”であるヌ
クレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド分
子を更に提供する。好ましい実施態様において、その相
同ポリヌクレオチド分子は、L.イントラセルラリスH
ypCタンパク質のアミノ酸配列をコードしているヌク
レオチド配列を有するポリヌクレオチド分子の補体に、
高ストリンジェントな条件下においてハイブリッド形成
する。より好ましい実施態様において、その相同ポリヌ
クレオチド分子は、高ストリンジェントな条件下におい
て、約nt4581〜約nt4829の配列番号:2の
ORFから成る群より選択されるヌクレオチド配列から
成るポリヌクレオチド分子の補体にハイブリッド形成す
る。
クレオチド分子のヌクレオチド配列に相同であるヌクレ
オチド配列を有する本発明のポリヌクレオチド分子に
は、デスルフォビブリオ・ギガス(Desulfovibrio giga
s)およびリゾビウム・レグミノサルム(Rizobium legu
minosarum)のHypCまたはHypDタンパク質をコ
ードしているポリヌクレオチド分子が含まれない。
好ましくは、約nt4581〜約nt4829である配
列番号:2の分子との50%を越える、より好ましく
は、約90%を越える、なおより好ましくは、約95%
を越える、そして最も好ましくは、約99%を越える配
列同一性を有する配列を含み、その配列同一性は、BL
ASTNアルゴリズム(GenBank, National Center for
Biotechnology Information)の使用によって決定され
る。
オチドは、L.イントラセルラリスHypCタンパク質
をコードしているヌクレオチド配列の長さの約50%を
越える相同配列を有する。もう一つの実施態様におい
て、その配列は、L.イントラセルラリスHypCタン
パク質をコードしているヌクレオチド配列の長さの90
%を越え、もう一つの実施態様においては約98%を越
える。なおもう一つの実施態様において、相同配列を有
する単離されたポリヌクレオチドは、L.イントラセル
ラリスHypCタンパク質をコードしている配列と長さ
が等しい。
ントラセルラリスHypCタンパク質をコードしている
配列と相同であるヌクレオチド配列は、配列番号:2の
配列に関して、挿入された、欠失したまたは置換された
1〜50個、より好ましくは、1〜25個、そして最も
好ましくは、1〜5個のヌクレオチドを有する。
Aタンパクに関して上に相応して記載されているよう
に、L.イントラセルラリスHypCタンパク質と“相
同”であるポリペプチドをコードしているヌクレオチド
配列を含む単離されたポリヌクレオチド分子を提供す
る。好ましい実施態様において、相同ポリペプチドは、
配列番号:8と少なくとも約50%、より好ましくは、
少なくとも約70%、そしてなおより好ましくは、少な
くとも約90%の配列同一性、そして最も好ましくは、
少なくとも95%の配列同一性を有する。
オチドは、挿入された、欠失したまたは置換された、そ
れらの組合せを含めた1〜10個、より好ましくは、1
〜5個のアミノ酸を有するL.イントラセルラリスHy
pCタンパク質から成る単離されたポリペプチドをコー
ドしている。この実施態様のより具体的な例において、
そのポリヌクレオチドは、配列番号:8のHypC配列
の代わりに保存的に置換された1〜5個のアミノ酸を有
する単離されたポリペプチドをコードしている。
がHtrAタンパクに関して上に相応して記載されてい
るように、本発明の前述のローソニアHypC関連ポリ
ヌクレオチド分子のいずれかの“実質的な部分” から
成るポリヌクレオチド分子を提供する。
のいずれかのヌクレオチド配列に加えて、本発明のポリ
ヌクレオチド分子は、自然にhypC ORFに隣接す
るものまたはL.イントラセルラリスのその場(in
situ)の遺伝子より選択されるヌクレオチド配列を
更に含むことができる、或いは、から成ることができ、
約nt4316〜約nt4580および約nt4380
〜約nt4911の配列番号:2に示されるヌクレオチ
ド配列またはそれらの実質的な部分を含む。
パク質をコードしているヌクレオチド配列を含む単離さ
れたポリヌクレオチド分子を提供する。好ましい実施態
様において、そのLysSタンパク質は、配列番号:1
02のアミノ酸配列を有する。更に好ましい実施態様に
おいて、本発明のLysSをコードしている単離された
ポリヌクレオチド分子は、lysS遺伝子のヌクレオチ
ド配列の約nt165〜約nt1745の配列番号:1
のヌクレオチド配列、およびプラスミドpT068(A
TCC受託番号PTA−2232)のLysSをコード
しているORFのヌクレオチド配列から成る群より選択
されるヌクレオチド配列を含む。
ポリヌクレオチド分子に関して上に相応して定義されて
いるように、本発明のLysSをコードしているポリヌ
クレオチド分子のヌクレオチド配列に“相同”であるヌ
クレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド分
子を更に提供する。好ましい実施態様において、その相
同ポリヌクレオチド分子は、L.イントラセルラリスL
ysSタンパク質のアミノ酸配列をコードしているヌク
レオチド配列を有するポリヌクレオチド分子の補体に、
高ストリンジェントな条件下においてハイブリッド形成
する。より好ましい実施態様において、その相同ポリヌ
クレオチド分子は、高ストリンジェントな条件下におい
て、約nt165〜約nt1745の配列番号:1のヌ
クレオチド配列から成るポリヌクレオチド分子の補体に
ハイブリッド形成する。
好ましくは、約nt165〜約nt1745の配列番
号:1の分子との50%を越える、より好ましくは、約
90%を越える、なおより好ましくは、約95%を越え
る、そして最も好ましくは、約99%を越える配列同一
性を有する配列を含み、その配列同一性は、BLAST
Nアルゴリズム(GenBank, National Center for Biote
chnology Information)の使用によって決定される。
オチドは、L.イントラセルラリスLysSタンパク質
をコードしているヌクレオチド配列の長さの約50%を
越える相同配列を有する。もう一つの実施態様におい
て、その配列は、L.イントラセルラリスLysSタン
パク質をコードしているヌクレオチド配列の長さの90
%を越え、もう一つの実施態様においては約98%を越
える。なおもう一つの実施態様において、相同配列を有
する単離されたポリヌクレオチドは、L.イントラセル
ラリスLysSタンパク質をコードしている配列と長さ
が等しい。
ントラセルラリスLysSタンパク質をコードしている
配列と相同であるヌクレオチド配列は、配列番号:1の
配列に関して、挿入された、欠失したまたは置換された
1〜50個、より好ましくは、1〜25個、そして最も
好ましくは、1〜5個のヌクレオチドを有する。
Aタンパクに関して上に相応して記載されているよう
に、L.イントラセルラリスLysSタンパク質と“相
同”であるポリペプチドをコードしているヌクレオチド
配列を含む単離されたポリヌクレオチド分子を提供す
る。好ましい実施態様において、相同ポリペプチドは、
配列番号:102と少なくとも約50%、より好ましく
は、少なくとも約70%、そしてなおより好ましくは、
少なくとも約90%の配列同一性、そして最も好ましく
は、少なくとも95%の配列同一性を有する。
オチドは、挿入された、欠失したまたは置換された、そ
れらの組合せを含めた1〜10個、より好ましくは、1
〜5個のアミノ酸を有するL.イントラセルラリスLy
sSタンパク質から成る単離されたポリペプチドをコー
ドしている。この実施態様のより具体的な例において、
そのポリヌクレオチドは、配列番号:102のLysS
配列の代わりに保存的に置換された1〜5個のアミノ酸
を有する単離されたポリペプチドをコードしている。
がHtrAタンパクに関して上に相応して記載されてい
るように、本発明の前述のローソニアlysS関連ポリ
ヌクレオチド分子のいずれかの“実質的な部分” から
成るポリヌクレオチド分子を提供する。
のいずれかのヌクレオチド配列に加えて、本発明のポリ
ヌクレオチド分子は、自然にlysS ORFに隣接す
るものまたはL.イントラセルラリスの現場の遺伝子よ
り選択されるヌクレオチド配列を更に含むことができ
る、或いは、から成ることができる。
パク質をコードしているヌクレオチド配列を含む単離さ
れたポリヌクレオチド分子を提供する。好ましい実施態
様において、そのYcfWタンパク質は、配列番号:3
のアミノ酸配列を有する。更に好ましい実施態様におい
て、本発明のYcfWをコードしている単離されたポリ
ヌクレオチド分子は、YcfW遺伝子のヌクレオチド配
列の約nt1745〜約nt3028の配列番号:1の
ヌクレオチド配列、およびプラスミドpER438(A
TCC受託番号PTA−638)とpT068(ATC
C受託番号PTA−2232)のYcfWをコードして
いるORFのヌクレオチド配列から成る群より選択され
るヌクレオチド配列を含む。
ポリヌクレオチド分子に関して上に相応して定義されて
いるように、本発明のYcfWをコードしているポリヌ
クレオチド分子のヌクレオチド配列に“相同”であるヌ
クレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド分
子を更に提供する。好ましい実施態様において、その相
同ポリヌクレオチド分子は、L.イントラセルラリスY
cfWタンパク質のアミノ酸配列をコードしているヌク
レオチド配列を有するポリヌクレオチド分子の補体に、
高ストリンジェントな条件下においてハイブリッド形成
する。より好ましい実施態様において、その相同ポリヌ
クレオチド分子は、高ストリンジェントな条件下におい
て、約nt1745〜約nt3028の配列番号:1の
ヌクレオチド配列から成るポリヌクレオチド分子の補体
にハイブリッド形成する。
好ましくは、約nt1745〜約nt3028の配列番
号:1の分子との50%を越える、より好ましくは、約
90%を越える、なおより好ましくは、約95%を越え
る、そして最も好ましくは、約99%を越える配列同一
性を有する配列を含み、その配列同一性は、BLAST
Nアルゴリズム(GenBank, National Center for Biote
chnology Information)の使用によって決定される。
オチドは、L.イントラセルラリスYcfWタンパク質
をコードしているヌクレオチド配列の長さの約50%を
越える相同配列を有する。もう一つの実施態様におい
て、その配列は、L.イントラセルラリスYcfWタン
パク質をコードしているヌクレオチド配列の長さの90
%を越え、もう一つの実施態様においては約98%を越
える。なおもう一つの実施態様において、相同配列を有
する単離されたポリヌクレオチドは、L.イントラセル
ラリスYcfWタンパク質をコードしている配列と長さ
が等しい。
ントラセルラリスYcfWタンパク質をコードしている
配列と相同であるヌクレオチド配列は、配列番号:1の
配列に関して、挿入された、欠失したまたは置換された
1〜50個、より好ましくは、1〜25個、そして最も
好ましくは、1〜5個のヌクレオチドを有する。
Aタンパクに関して上に相応して記載されているよう
に、L.イントラセルラリスYcfWタンパク質と“相
同”であるポリペプチドをコードしているヌクレオチド
配列を含む単離されたポリヌクレオチド分子を提供す
る。好ましい実施態様において、相同ポリペプチドは、
配列番号:3と少なくとも約50%、より好ましくは、
少なくとも約70%、そしてなおより好ましくは、少な
くとも約90%の配列同一性、そして最も好ましくは、
少なくとも95%の配列同一性を有する。
オチドは、挿入された、欠失したまたは置換された、そ
れらの組合せを含めた1〜10個、より好ましくは、1
〜5個のアミノ酸を有するL.イントラセルラリスYc
fWタンパク質から成る単離されたポリペプチドをコー
ドしている。この実施態様のより具体的な例において、
そのポリヌクレオチドは、配列番号:3のYcfW配列
の代わりに保存的に置換された1〜5個のアミノ酸を有
する単離されたポリペプチドをコードしている。
がHtrAタンパクに関して上に相応して記載されてい
るように、本発明の前述のローソニアYcfW関連ポリ
ヌクレオチド分子のいずれかの“実質的な部分” から
成るポリヌクレオチド分子を提供する。
のいずれかのヌクレオチド配列に加えて、本発明のポリ
ヌクレオチド分子は、自然にycfW ORFに隣接す
るものまたはL.イントラセルラリスのその場(in
situ)の遺伝子より選択されるヌクレオチド配列を
更に含むことができる、或いは、から成ることができ
る。
パク質をコードしているヌクレオチド配列を含む単離さ
れたポリヌクレオチド分子を提供する。好ましい実施態
様において、そのABC1タンパク質は、配列番号:4
のアミノ酸配列を有する。更に好ましい実施態様におい
て、本発明のABC1をコードしている単離されたポリ
ヌクレオチド分子は、約nt3031〜約nt3738
の配列番号:1のヌクレオチド配列(ABC1遺伝子の
読み取り枠(ORF)のヌクレオチド配列)、およびプ
ラスミドpER438(ATCC受託番号PTA−63
8)のABC1をコードしているORFのヌクレオチド
配列から成る群より選択されるヌクレオチド配列を含
む。
ポリヌクレオチド分子に関して上に相応して定義されて
いるように、本発明のABC1をコードしているポリヌ
クレオチド分子のヌクレオチド配列に“相同”であるヌ
クレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド分
子を更に提供する。好ましい実施態様において、その相
同ポリヌクレオチド分子は、L.イントラセルラリスA
BC1タンパク質のアミノ酸配列をコードしているヌク
レオチド配列を有するポリヌクレオチド分子の補体に、
高ストリンジェントな条件下においてハイブリッド形成
する。より好ましい実施態様において、その相同ポリヌ
クレオチド分子は、高ストリンジェントな条件下におい
て、約nt3031〜約nt3738である配列番号:
1のORFから成る群より選択されるヌクレオチド配列
から成るポリヌクレオチド分子の補体にハイブリッド形
成する。
クレオチド分子のヌクレオチド配列に相同であるヌクレ
オチド配列を有する本発明のポリヌクレオチド分子に
は、ナイセリア・フラベセンス、淋菌および髄膜炎菌の
ABC1タンパク質をコードしているポリヌクレオチド
分子が含まれない。
しくは、約nt3031〜約nt3738の配列番号:
1の分子との50%を越える、より好ましくは、約90
%を越える、なおより好ましくは、約95%を越える、
そして最も好ましくは、約99%を越える配列同一性を
有する配列を含み、その配列同一性は、BLASTNア
ルゴリズム(GenBank, National Center for Biotechno
logy Information)の使用によって決定される。
オチドは、L.イントラセルラリスABC1タンパク質
をコードしているヌクレオチド配列の長さの約50%を
越える相同配列を有する。もう一つの実施態様におい
て、その配列は、L.イントラセルラリスABC1タン
パク質をコードしているヌクレオチド配列の長さの90
%を越え、もう一つの実施態様においては約98%を越
える。なおもう一つの実施態様において、相同配列を有
する単離されたポリヌクレオチドは、L.イントラセル
ラリスABC1タンパク質をコードしている配列と長さ
が等しい。
ントラセルラリスABC1タンパク質をコードしている
配列と相同であるヌクレオチド配列は、配列番号:1の
配列に関して、挿入された、欠失したまたは置換された
1〜50個、より好ましくは、1〜25個、そして最も
好ましくは、1〜5個のヌクレオチドを有する。
Aタンパクに関して上に相応して記載されているよう
に、L.イントラセルラリスABC1タンパク質と“相
同”であるポリペプチドをコードしているヌクレオチド
配列を含む単離されたポリヌクレオチド分子を提供す
る。好ましい実施態様において、相同ポリペプチドは、
配列番号:1と少なくとも約50%、より好ましくは、
少なくとも約70%、そしてなおより好ましくは、少な
くとも約90%の配列同一性、そして最も好ましくは、
少なくとも95%の配列同一性を有する。
オチドは、挿入された、欠失したまたは置換された、そ
れらの組合せを含めた1〜10個、より好ましくは、1
〜5個のアミノ酸を有するL.イントラセルラリスAB
C1タンパク質から成る単離されたポリペプチドをコー
ドしている。この実施態様のより具体的な例において、
そのポリヌクレオチドは、配列番号:4のABC1配列
の代わりに保存的に置換された1〜5個のアミノ酸を有
する単離されたポリペプチドをコードしている。
がHtrAタンパクに関して上に相応して記載されてい
るように、本発明の前述のローソニアABC1関連ポリ
ヌクレオチド分子のいずれかの“実質的な部分” から
成るポリヌクレオチド分子を提供する。
のいずれかのヌクレオチド配列に加えて、本発明のポリ
ヌクレオチド分子は、自然にabc1 ORFに隣接す
るものまたはL.イントラセルラリスのその場(in
situ)の遺伝子より選択されるヌクレオチド配列を
更に含むことができる、或いは、から成ることができ、
配列番号:1に示される隣接するヌクレオチド配列を含
む。
タンパク質をコードしているヌクレオチド配列を含む単
離されたポリヌクレオチド分子を提供する。好ましい実
施態様において、そのOmp100タンパク質は、配列
番号:5のアミノ酸配列を有する。更に好ましい実施態
様において、本発明のOmp100をコードしている単
離されたポリヌクレオチド分子は、約nt3695〜約
nt6385の配列番号:1のヌクレオチド配列(Om
p100遺伝子の読み取り枠(ORF)のヌクレオチド
配列)、およびプラスミドpER440(ATCC受託
番号PTA−639)のOmp100をコードしている
ORFのヌクレオチド配列から成る群より選択されるヌ
クレオチド配列を含む。
ポリヌクレオチド分子に関して上に相応して定義されて
いるように、本発明のOmp100をコードしているポ
リヌクレオチド分子のヌクレオチド配列に“相同”であ
るヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチ
ド分子を更に提供する。好ましい実施態様において、そ
の相同ポリヌクレオチド分子は、L.イントラセルラリ
スOmp100タンパク質のアミノ酸配列をコードして
いるヌクレオチド配列を有するポリヌクレオチド分子の
補体に、高ストリンジェントな条件下においてハイブリ
ッド形成する。より好ましい実施態様において、その相
同ポリヌクレオチド分子は、高ストリンジェントな条件
下において、約nt3695〜約nt6385である配
列番号:1のORFから成る群より選択されるヌクレオ
チド配列から成るポリヌクレオチド分子の補体にハイブ
リッド形成する。
リヌクレオチド分子のヌクレオチド配列に相同であるヌ
クレオチド配列を有する本発明のポリヌクレオチド分子
には、GenBank データベースに挙げられる次のタンパク
質、大腸菌のYaeT(Accn.U70214または
AE000127);フレクスナー赤痢菌(Shigellafl
exneri)のOma90(Accn.AF12092
7);髄膜炎菌のOmp85(Accn.AF0212
45);インフルエンザ菌(D15)のD15(Acc
n.U60834);パスツレラ・マルトシダ(Pasteu
rella multocida)のOma87(Accn.U604
39)のいずれかをコードしているポリヌクレオチド分
子が含まれない。
しくは、約nt3695〜約nt6385の配列番号:
1の分子との50%を越える、より好ましくは、約90
%を越える、なおより好ましくは、約95%を越える、
そして最も好ましくは、約99%を越える配列同一性を
有する相同配列を含み、その配列同一性は、BLAST
Nアルゴリズム(GenBank, National Center for Biote
chnology Information)の使用によって決定される。
オチドは、L.イントラセルラリスOmp100タンパ
ク質をコードしているヌクレオチド配列の長さの約50
%を越える相同配列を有する。もう一つの実施態様にお
いて、その配列は、L.イントラセルラリスOmp10
0タンパク質をコードしているヌクレオチド配列の長さ
の90%を越え、もう一つの実施態様においては約98
%を越える。なおもう一つの実施態様において、相同配
列を有する単離されたポリヌクレオチドは、L.イント
ラセルラリスOmp100タンパク質をコードしている
配列と長さが等しい。
ントラセルラリスOmp100タンパク質をコードして
いる配列と相同であるヌクレオチド配列は、配列番号:
5の配列に関して、挿入された、欠失したまたは置換さ
れた1〜50個、より好ましくは、1〜25個、そして
最も好ましくは、1〜5個のヌクレオチドを有する。
Aタンパクに関して上に相応して記載されているよう
に、L.イントラセルラリスOmp100タンパク質と
“相同”であるポリペプチドをコードしているヌクレオ
チド配列を含む単離されたポリヌクレオチド分子を提供
する。好ましい実施態様において、相同ポリペプチド
は、配列番号:5と少なくとも約50%、より好ましく
は、少なくとも約70%、そしてなおより好ましくは、
少なくとも約90%の配列同一性、そして最も好ましく
は、少なくとも95%の配列同一性を有する。
オチドは、挿入された、欠失したまたは置換された、そ
れらの組合せを含めた1〜10個、より好ましくは、1
〜5個のアミノ酸を有するL.イントラセルラリスOm
p100タンパク質から成る単離されたポリペプチドを
コードしている。この実施態様のより具体的な例におい
て、そのポリヌクレオチドは、配列番号:5のOmp1
00配列の代わりに保存的に置換された1〜5個のアミ
ノ酸を有する単離されたポリペプチドをコードしてい
る。
がHtrAタンパクに関して上に相応して記載されてい
るように、本発明の前述のローソニアOmp100関連
ポリヌクレオチド分子のいずれかの“実質的な部分”
から成るポリヌクレオチド分子を提供する。
分子のいずれかのヌクレオチド配列に加えて、本発明の
ポリヌクレオチド分子は、自然にomp100 ORF
に隣接するものまたはL.イントラセルラリスの現場の
遺伝子より選択されるヌクレオチド配列を更に含むこと
ができる、或いは、から成ることができ、配列番号:1
に示される隣接するヌクレオチド配列を含む。
1〜約nt2890の配列番号:2内で見出される20
ヌクレオチドを越えるヌクレオチド配列を含むポリヌク
レオチド分子またはその補体にも関する。下記の実施例
で更に論じられるように、ローソニア配列のこの領域
は、htrA遺伝子の温度反応性プロモーターを含有す
ることが確認されている。好ましい実施態様において、
そのポリヌクレオチドは、約nt2797〜nt282
9の配列を含む。
0の配列番号:2内で見出される20ヌクレオチドを越
えるヌクレオチド配列の補体に、中程度のストリンジェ
ントな条件下および、より好ましくは、高ストリンジェ
ントな条件下においてハイブリッド形成する、プロモー
ター活性を有するオリゴヌクレオチドにも関する。好ま
しくは、プロモーター活性を有するそのオリゴヌクレオ
チドは、中程度のストリンジェントな条件下または高ス
トリンジェントな条件下において、約nt2797〜n
t2829の配列を含むポリヌクレオチドの補体にハイ
ブリッド形成する。もう一つの実施態様において、本発
明は、約nt2691〜約nt2890である配列番
号:2の配列に関して、挿入された、欠失したまたは置
換された1〜25個、最も好ましくは、1〜5個のヌク
レオチドを有する、プロモーター活性を有するオリゴヌ
クレオチドを包含する。
配列は、L.イントラセルラリスの宿主細胞中若しくは
任意の他のローソニア種の宿主細胞中におけるまたは任
意の他の適当な宿主細胞中における本発明の遺伝子のい
ずれかまたは他の遺伝子若しくはコーディング配列の組
換え体発現の制御を含めた種々の目的に有用である。こ
のような他の遺伝子またはコーディング配列は、天然で
ありうるかまたは組換え体宿主細胞に異種でありうる。
そのプロモーター配列は、当該技術分野において知られ
ているような標準的な組換え技術を用いて特定の遺伝子
またはコーディング配列に融合させることができるの
で、そのプロモーター配列は、“機能的結合”が下記に
定義されているように、それらと機能的に結合してい
る。プロモーターを用いることにより、組換え体発現系
は、例えば、ローソニアまたは他の細菌の遺伝子の発現
を調節することができる化合物および転写因子について
スクリーニングするように構築し且つ用いることができ
る。更に、このようなプロモーター構築物は、ローソニ
ア、大腸菌または他の適当な宿主細胞において異種ポリ
ペプチドを発現させるのに用いることができる。
のいずれか一つにハイブリッド形成する、または本発明
の前述のポリヌクレオチド分子のいずれか一つの補体で
あるヌクレオチド配列を有するポリヌクレオチド分子に
ハイブリッド形成するオリゴヌクレオチド分子を提供す
る。このようなオリゴヌクレオチド分子は、好ましく
は、少なくとも約10ヌクレオチド長さ、より好ましく
は、約15〜約30ヌクレオチド長さであり、そして高
ストリンジェントな条件下において、すなわち、6xS
SC/0.5%ピロリン酸ナトリウム中において、約1
4塩基オリゴについては約37℃で、約17塩基オリゴ
については約48℃で、約20塩基オリゴについては約
55℃で、そして約23塩基オリゴについては約60℃
で洗浄することにおいて前述のポリヌクレオチド分子の
一つまたはそれ以上にハイブリッド形成する。本発明の
より長いオリゴヌクレオチド分子のための他のハイブリ
ダイゼーション条件は、標準的な技法を用いて当業者が
決定することができる。好ましい実施態様において、本
発明のオリゴヌクレオチド分子は、本発明の前述のポリ
ヌクレオチド分子の少なくとも一つの一部分に相補的で
ある。
ば、鑑別疾病診断において用いるためのローソニア特異
的ポリヌクレオチド分子の増幅におけるプライマーとし
て、または遺伝子調節において有用なアンチセンス分子
として作用させることを含めた種々の目的に有用であ
る。適当に設計されたプライマーは、脳組織、肺組織、
腸組織、胎盤組織、血液、脳脊髄液、糞便、粘液、尿、
羊水等を含めた動物の組織または体液の試料中のローソ
ニア特異的ポリヌクレオチド分子の存在を検出するのに
用いることもできる。オリゴヌクレオチド分子は、ロー
ソニア微生物と特異的に反応するが、これは、概して、
充分な長さの配列を用いることによって達成される。特
異的増幅産物の生産は、ローソニア感染の診断を支持し
うるが、増幅産物の欠如は、感染していないことを示す
ことができる。ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)のよう
な増幅を行う方法は、特に、Innis ら(監修),1995,
上記;および Erlich(監修),1992,上記に記載され
ている。当該技術分野において知られている他の増幅技
術、例えば、リガーゼ連鎖反応は、代わりに用いること
ができる。本明細書中に開示されているポリヌクレオチ
ド分子の配列は、ローソニアの他の種若しくは菌株また
は他の細菌細胞から相同遺伝子を単離する場合に用いる
ためのプライマーを設計するのに用いることもできる。
有用なオリゴヌクレオチド分子の非制限実施態様には、
配列番号:10〜101から成る群より選択されるオリ
ゴヌクレオチド分子およびそれらの補体が含まれる。
ー、それらベクターのいずれかを含む形質転換された宿
主細胞、および新規菌株またはそれらに由来する細胞系
を含めた、本発明のポリヌクレオチド分子のいずれかを
クローニングするおよび発現させる方法および組成物を
包含する。好ましい実施態様において、本発明は、L.
イントラセルラリスのHtrA、PonA、HypC、
LysS、YcfW、ABC1またはOmp100タン
パク質をコードしているヌクレオチド配列を有するポリ
ヌクレオチド分子を含む組換え体ベクターを提供する。
具体的な実施態様において、本発明は、ponA遺伝子
を含有するプラスミドpER432(ATCC受託番号
PTA−635)、htrA遺伝子を含有するプラスミ
ドpER434(ATCC受託番号PTA−636)、
hypC遺伝子を含有するプラスミドpER436(A
TCC受託番号PTA−637)、lysSおよびyc
fW遺伝子を含有するプラスミドpT068(ATCC
受託番号PTA−2232)、ycfWおよびabc1
遺伝子を含有するプラスミドpER438(ATCC受
託番号PTA−638)、およびOmp100遺伝子を
含有するプラスミドpER440(ATCC受託番号P
TA−639)を提供する。本発明は、本発明のポリペ
プチドを得るのに用いられる組換え体ベクターおよび形
質転換された細胞も包含する。
クターは、好ましくは、本発明のポリヌクレオチド分子
のコーディング配列が、ポリペプチドを生産するための
そのコーディング配列の転写および翻訳に必要な一つま
たはそれ以上の調節因子と機能的に結合しているように
構築される。本明細書中で用いられるように、“調節因
子”という用語には、誘導性および非誘導性プロモータ
ー、エンハンサー、オペレーター、リボソーム結合部
位、およびポリヌクレオチドコーディング配列の発現を
誘導するおよび/または調節するのに役立つ当該技術分
野において知られている他の因子をコードするヌクレオ
チド配列が含まれるが、それらに制限されるわけではな
い。更に、本明細書中で用いられるように、そのコーデ
ィング配列は、一つまたはそれ以上の調節因子と“機能
的に結合”していて、その場合、それら調節因子は、コ
ーディング配列の転写またはそのmRNAの翻訳を効果
的に調節し且つ可能にする。
定のコーディング配列を含有する組換え体ベクターを構
築する方法は当該技術分野において周知であり、これら
を用いて本発明を実施することができる。これら方法に
は、in vitro 組換え技術、合成技術および in vivo 遺
伝子組換えが含まれる。例えば、Maniatis ら,1989,
上記;Ausubel ら,1989, 上記;Sambrook ら,1989,
上記;Innis ら,1995,上記;および Erlich,1992, 上
記に記載された技術を参照されたい。
体バクテリオファージDNA、プラスミドDNAおよび
コスミドDNA発現ベクターを含めた、本発明のHtr
A、PonA、HypC、LysS、YcfW、ABC
1またはOmp100コーディング配列を発現するのに
用いることができる種々の発現ベクターは、当該技術分
野において知られている。本発明のポリヌクレオチド分
子を含有するように遺伝子操作することができる典型的
な原核性発現ベクタープラスミドには、特に、pUC
8、pUC9、pBR322およびpBR329(Bior
ad Laboratories,リッチモンド,CA)、pPLおよび
pKK223(Pharmacia, ピスカタウェイ,NJ)、
pQE50(Qiagen, チャツワース,CA)、およびp
GEM−TEASY(Promega, マディソン,WI)が
含まれる。本発明のポリヌクレオチド分子を含有するよ
うに遺伝子操作することができる典型的な真核性発現ベ
クターには、特に、エクジソン誘導性哺乳動物発現系
(Invitrogen, カールズバット,CA)、サイトメガロ
ウイルスプロモーター−エンハンサーに基づく系(Prom
ega, マディソン,WI;Stratagene, ラ・ホヤ,C
A;Invitrogen)およびバキュロウイルスに基づく発現
系(Promega)が含まれる。
強度および特異性が異なることがありうる。用いられる
宿主/ベクター系に依存して、多数の適当な転写因子お
よび翻訳因子のいずれかを用いることができる。例え
ば、哺乳動物細胞系においてクローニングする場合、哺
乳動物細胞のゲノムから単離されるプロモーター、例え
ば、マウスメタロチオネインプロモーター、またはこれ
ら細胞中で成長するウイルスからの、例えば、ワクシニ
アウイルス7.5Kプロモーターまたはモロニーマウス
肉腫ウイルス長末端反復配列を用いることができる。組
換えDNA技術または合成技術によって得られるプロモ
ーターは、挿入される配列を転写させるのに用いること
もできる。更に、ある種のプロモーターからの発現は、
メタロチオネインプロモーターの特定の誘導物質、例え
ば、亜鉛イオンおよびカドミウムイオンの存在下におい
て増加することがありうる。転写調節領域すなわちプロ
モーターの非制限例には、特に、細菌については、β−
galプロモーター、T7プロモーター、TACプロモ
ーター、λ左右プロモーター、trpおよびlacプロ
モーター、trp−lac融合プロモーター等;酵母に
ついては、ADH−Iおよび−IIプロモーター、GPK
プロモーター、PGIプロモーター、TRPプロモータ
ー等のような解糖酵素プロモーター;そして哺乳動物細
胞については、SV40初期および後期プロモーター、
アデノウイルス主要後期プロモーターが含まれる。本発
明は、更に、ローソニア、大腸菌または他の適当な宿主
において本発明のコーディング配列のいずれかを発現さ
せるのに用いることができる、L.イントラセルラリス
のhtrA遺伝子のプロモーターのヌクレオチド配列を
含むポリヌクレオチド分子を提供する。
ィング配列の充分な翻訳にも必要である。これらシグナ
ルには、典型的に、ATG開始コドンおよび隣接した配
列が含まれる。それ自体の開始コドンおよび隣接した配
列を含めた本発明のポリヌクレオチド分子を適当な発現
ベクター中に挿入する場合、追加の翻訳調節シグナルは
必要でないことがありうる。しかしながら、コーディン
グ配列の一部分だけを挿入する場合、ATG開始コドン
を含めた外因性翻訳調節シグナルを必要とすることがあ
りうる。これら外因性翻訳調節シグナルおよび開始コド
ンは、天然および合成両方の様々な源から入手すること
ができる。更に、開始コドンは、インサート全体のイン
フレーム翻訳を確実にするために、コーディング領域の
読み枠と同相でなければならない。
含む融合タンパク質を発現するであろう発現ベクターも
構築することができる。このような融合タンパク質は、
例えば、ローソニアタンパク質に対する抗血清を生じさ
せるために、ローソニアタンパク質の生化学的性状を研
究するために、異なった免疫学的または機能的性状を示
すローソニアタンパク質を遺伝子操作するために、また
は組換えによって発現されるローソニアタンパク質の識
別若しくは精製を助けるためにまたは安定性を向上させ
ために用いることができる。可能な融合タンパク質発現
ベクターには、β−ガラクトシダーゼおよびtrpE融
合、マルトース結合タンパク質融合(pMal系列;Ne
w England Biolabs)、グルタチオン−S−トランスフ
ェラーゼ融合(pGEX系列;Pharmacia)、ポリヒス
チジン融合(pET系列;NovagenInc., マディソン,
WI)、およびチオレドキシン融合(pTrxFus;
Invitrogen, カールズバット,CA)をコードする配列
を包含するベクターが含まれるが、それらに制限される
わけではない。これらおよび他の融合タンパク質をコー
ドしている発現ベクターを構築する方法は、当該技術分
野において周知である。
の精製を助けるのに有用でありうる。非制限実施態様に
おいて、例えば、HtrA、PonA、HypC、Ly
sS、YcfW、ABC1またはOmp100−マルト
ース結合融合タンパク質は、アミロース樹脂を用いて精
製することができ;HtrA、PonA、HypC、L
ysS、YcfW、ABC1またはOmp100−グル
タチオン−S−トランスフェラーゼ融合タンパク質は、
グルタチオン−アガロースビーズを用いて精製すること
ができ;そしてHtrA、PonA、HypC、Lys
S、YcfW、ABC1またはOmp100−ポリヒス
チジン融合タンパク質は、二価のニッケル樹脂を用いて
精製することができる。或いは、担体タンパク質または
ペプチドに対する抗体を、融合タンパク質のアフィニテ
ィークロマトグラフィー精製に用いることができる。例
えば、単クローン性抗体の標的エピトープをコードする
ヌクレオチド配列は、発現されるエピトープが本発明の
ローソニアタンパク質に融合されるように、調節因子と
機能的に結合している発現ベクター中に遺伝子操作し且
つ配置することができる。非制限実施態様において、親
水性マーカーペプチドであるFLAGTMエピトープ標識
(International Biotechnologies Inc.)をコードする
ヌクレオチド配列は、HtrA、PonA、HypC、
LysS、YcfW、ABC1またはOmp100タン
パク質のアミノ末端またはカルボキシル末端に相当する
地点の発現ベクター中に、標準的な技法によって挿入す
ることができる。次に、発現されるHtrA、Pon
A、HypC、LysS、YcfW、ABC1またはO
mp100タンパク質−FLAGTMエピトープ融合産物
を、商業的に入手可能な抗FLAGTM抗体を用いて検出
し且つアフィニティー精製することができる。
部位をコードするポリリンカー配列を含有するように遺
伝子操作することもできるので、発現されるローソニア
タンパク質は、特異的プロテアーゼを用いた処理によっ
て担体領域または融合パートナーから解放されうる。例
えば、融合タンパク質ベクターは、特に、トロンビンす
なわちXa因子切断部位をコードしているヌクレオチド
配列を含むことができる。
から上流のおよび中のシグナル配列は、発現されるタン
パク質の輸送および分泌を支配するように、既知の方法
によって発現ベクター中に遺伝子操作することができ
る。シグナル配列の非制限例には、特に、α因子、免疫
グロブリン、外膜タンパク質、ペニシリナーゼおよびT
細胞受容体からのものが含まれる。
換されるまたはトランスフェクションされる宿主細胞の
選択を助けるために、そのベクターは、受容体遺伝子産
物または他の選択可能マーカーのコーディング配列を更
に含むように遺伝子操作することができる。このような
コーディング配列は、好ましくは、上記のように調節因
子と機能的に結合している。本発明を実施する場合に有
用である受容体遺伝子は、当該技術分野において周知で
あり、特に、クロラムフェニコールアセチルトランスフ
ェラーゼ(CAT)、グリーン蛍光タンパク質、ホタル
ルシフェラーゼおよびヒト成長ホルモンをコードしてい
るものを含む。選択可能マーカーをコードしているヌク
レオチド配列は、当該技術分野において周知であり、抗
生物質または抗代謝産物への耐性を与える遺伝子産物を
コードするもの、または栄養要求性を与えるものが含ま
れる。このような配列の例には、特に、チミジンキナー
ゼ活性、またはメトトレキセート、アンピシリン、カナ
マイシン、クロラムフェニコール、ゼオシン(zeoci
n)、ピリメタミン、アミノグリコシドまたはハイグロ
マイシンへの耐性をコードするものが含まれる。
組換え体ベクターを含む形質転換された宿主細胞、およ
びそれらに由来する細胞株を提供する。本発明の実施に
おいて有用な宿主細胞は、真核性細胞または原核性細胞
でありうる。このような形質転換された宿主細胞には、
特に、組換え体バクテリオファージDNA、プラスミド
DNAまたはコスミドDNAベクターを用いて形質転換
された細菌、または組換え体ベクターを用いて形質転換
された酵母のような微生物、または組換え体ウイルスベ
クター、例えば、バキュロウイルスに感染した昆虫細胞
のような動物細胞、または組換え体ウイルスベクター、
例えば、アデノウイルスまたはワクシニアウイルスに感
染した哺乳動物細胞が含まれるが、それらに制限される
わけではない。例えば、大腸菌の菌株、例えば、ATC
C,ロックビル,MD,米国から(受託番号3134
3)またはGIBCO BRL,ゲイサーズバーグ,M
Dから入手可能なDH5α菌株などを用いることができ
る。真核性宿主細胞には、酵母細胞が含まれるが、哺乳
動物、例えば、特に、マウス、ハムスター、乳牛、サル
またはヒトの細胞株からの細胞も有効に用いることがで
きる。本発明の組換え体タンパク質を発現させるのに用
いることができる真核性宿主細胞の例には、チャイニー
ズハムスター卵巣(CHO)細胞(例えば、ATCC受
託番号CCL−61)、NIHスイスマウス胚細胞NI
H/3T3(例えば、ATCC受託番号CRL−165
8)および Madin-Darby ウシ腎(MDBK)細胞(A
TCC受託番号CCL−22)が含まれる。トランスフ
ェクションされた細胞は、染色体組込みによってまたは
エピソームによって本発明のポリヌクレオチドを発現す
ることができる。
は、細胞の実質的に均一な培養の1種類またはそれ以上
の宿主細胞中に形質転換されるまたはトランスフェクシ
ョンされる。そのベクターは、概して、既知の技法によ
って、例えば、特に、プロトプラスト形質転換、リン酸
カルシウム沈降、塩化カルシウム処理、マイクロインジ
ェクション、エレクトロポレーション、組換えられたウ
イルスとの接触によるトランスフェクション、リポソー
ムに媒介されるトランスフェクション、DEAE−デキ
ストラントランスフェクション、形質導入、接合または
微量発射衝撃(microprojectile bombardment)などに
よって宿主細胞中に導入される。形質転換細胞の選択
は、組換え体発現ベクターと結合した選択可能マーカ
ー、例えば、抗生物質耐性を発現する細胞について選択
することによるなどの標準法によって行うことができ
る。
ら、宿主細胞ゲノム中かまたはエピソームによる本発明
のポリヌクレオチド分子の組込みおよび保持は、標準的
な技法によって、例えば、サザンハイブリダイゼーショ
ン分析、制限酵素分析、逆転写酵素PCR(rt−PC
R)を含めたPCR分析、または予想されるタンパク質
産物を検出する免疫学的検定によって確認することがで
きる。本発明のポリヌクレオチド分子を含有するおよび
/または発現する宿主細胞は、(i)DNA−DNA、
DNA−RNAまたはRNA−アンチセンスRNAハイ
ブリダイゼーション;(ii)“マーカー”遺伝子機能の
存在を検出すること;(iii)宿主細胞中の特異的mR
NA転写物の発現によって測定される転写レベルを評価
すること;または(iv)当該技術分野において知られて
いるように、例えば、免疫検定によって成熟ポリペプチ
ド産物の存在を検出することを含めた当該技術分野にお
いて周知である少なくとも四つの一般的なアプローチの
いずれかによって識別することができる。
定して導入されたら、その形質転換された宿主細胞をク
ローン増殖させ、そして得られた細胞を、コードされて
いるポリペプチドの最大生産をもたらす条件下で成長さ
せる。このような条件には、典型的に、形質転換された
細胞を高密度まで成長させることが含まれる。発現ベク
ターが誘導性プロモーターを含む場合、適当な誘導条
件、例えば、温度シフト、栄養素の消耗、無償性誘導物
質(例えば、イソプロピル−β−D−チオガラクトピラ
ノシド(IPTG)などの炭水化物の類似体)の添加、
過剰の代謝副産物の蓄積等のような条件を必要に応じて
用いて発現を誘導する。
る場合、それら細胞を採取し、溶解させ、そしてその産
物を、タンパク質分解を最小限にする当該技術分野にお
いて知られている抽出条件下において、例えば、4℃で
またはプロテアーゼインヒビターの存在下でまたはその
両方などにおいてその溶解物から実質的に精製するまた
は単離する。ポリペプチドが宿主細胞から分泌される場
合、消耗した栄養培地を簡単に集め、そこからポリペプ
チドを実質的に精製するまたは単離することができる。
ら、必要に応じて次の方法、すなわち、硫酸アンモニウ
ム沈降、サイズ分画、イオン交換クロマトグラフィー、
HPLC、密度遠心分離およびアフィニティークロマト
グラフィーの一つまたはそれ以上が含まれるがそれらに
制限されるわけではない標準法を用いて実質的に精製す
るまたは単離することができる。そのポリペプチドが生
物学的活性を欠いている場合、それは、例えば、サイ
ズ、またはポリペプチド特異的抗体との反応性に基づい
て、または融合標識の存在によって検出することができ
る。本発明の実施において用いるためには、そのポリペ
プチドは、培養液中に分泌されているようにまたは細胞
溶解物中に存在するように未精製の状態でありうるが、
好ましくは、そこから実質的に精製されまたは単離され
る。本明細書中で用いられるように、ポリペプチドは、
そのポリペプチドが特定の標品中の少なくとも約20w
t%のタンパク質を構成している場合、“実質的に精
製”されている。更に、本明細書中で用いられるよう
に、ポリペプチドは、そのポリペプチドが特定の標品中
の少なくとも約80wt%のタンパク質を構成している
場合、“単離”されている。本発明のもう一つの実施態
様において、そのタンパク質は、その天然の対応物が
L.イントラセルラリス細胞溶解物の標品中で通常見出
されるよりも少なくとも約1000x高い濃度で標品中
に存在する。
ってコードされる実質的に精製されたまたは単離された
ポリペプチドを包含する。非制限実施態様において、そ
のポリペプチドは、HtrA、PonA、HypC、L
ysS、YcfW、ABC1またはOmp100のL.
イントラセルラリスタンパク質である。好ましい実施態
様において、L.イントラセルラリスHtrA、Pon
A、HypC、LysS、YcfW、ABC1またはO
mp100タンパク質は、配列番号:3〜8または配列
番号:102のアミノ酸配列を有する。もう一つの実施
態様において、それらポリペプチドは、他のローソニア
タンパク質を実質的に含まない。
リペプチドに関して上に定義されているように、前述の
L.イントラセルラリスタンパク質のいずれかに相同で
あるポリペプチドを提供する。本発明のタンパク質に相
同である本発明のポリペプチドには、本明細書中に記載
の非ローソニアタンパク質のアミノ酸配列を有するポリ
ペプチドが含まれない。本発明のポリペプチドは、一つ
の実施態様において、ローソニアタンパク質との70%
を越える、より好ましくは、約90%を越える、そして
最も好ましくは、約95%を越えるアミノ酸配列同一性
を有し、その配列同一性は、BLASTPアルゴリズム
(GenBank, NCBI)の使用によって決定される。
プチドは、挿入された、欠失したまたは置換された、そ
れらの組合せを含めた1〜10個、より好ましくは、1
〜5個のアミノ酸を有するL.イントラセルラリスHt
rA、PonA、HypC、LysS、YcfW、AB
C1またはOmp100タンパク質から成る。この実施
態様のより具体的な例において、単離されたポリペプチ
ドは、HtrA、PonA、HypC、LysS、Yc
fW、ABC1またはOmp100タンパク質のアミノ
酸配列中に保存的に置換された1〜5個のアミノ酸を有
する。
チドのいずれか一つの実質的な部分から成るポリペプチ
ドを提供する。本明細書中で用いられるように、本発明
のポリペプチドの“実質的な部分”または“ペプチドフ
ラグメント”とは、対応する完全長さポリペプチドの完
全なアミノ酸配列より少ないアミノ酸配列から成るが、
そのアミノ酸配列の少なくとも約5%、より好ましく
は、少なくとも約20%、なおより好ましくは、少なく
とも約50%、そして最も好ましくは、少なくとも約9
5%を含むポリペプチドを意味し、それは本発明の実施
において有用である。特に好ましいのは、免疫原性であ
る、すなわち、対応する完全長のローソニアポリペプチ
ドに対して特異的に反応する抗体の生産をもたらす免疫
応答を引き起こすことができるペプチドフラグメントで
ある。
リペプチドは、抗ローソニア抗体と特異的に反応性であ
るHtrA、PonA、HypC、LysS、Ycf
W、ABC1またはOmp100タンパク質のエピトー
プを含む。そのエピトープは、好ましくは、そのタンパ
ク配列の8個を越える、より好ましくは、12個を越え
る、そして最も好ましくは、20個を越えるアミノ酸で
ある。
られている担体または融合パートナーに融合した本発明
のポリペプチドのいずれかを含む融合タンパク質を提供
する。
ずれかを製造する方法であって、組換え体発現ベクター
を用いて形質転換された宿主細胞を培養し、その組換え
体発現ベクターは、特定のポリペプチドをコードしてい
るヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチド分子を含
み、そのポリヌクレオチド分子は、ポリペプチドの発現
をもたらす条件下において一つまたはそれ以上の調節因
子と機能的に結合していて、そして発現されたポリペプ
チドを細胞培養物から回収することを含む上記方法を提
供する。
S−PAGE、サイズ排除クロマトグラフィー、アミノ
酸配列分析、免疫学的活性、生物学的活性等を含めた標
準法によってそれを特性決定することができる。そのポ
リペプチドを、親水性分析(例えば、Hopp および Wood
s, 1981, Proc.Natl.Acad.Sci.USA 78:3824 を参照され
たい)または類似のソフトウェアアルゴリズムを用いて
更に特性決定して、疎水性および親水性領域を決定する
ことができる。構造分析は、特異的二次構造をとるポリ
ペプチドの領域を決定するように行うことができる。X
線結晶学(Engstrom, 1974, Biochem.Exp.Biol. 11:7-1
3)、計算機モデル化(Fletterick および Zoller(監
修),1986,Current Communications in MolecularBio
logy, Cold Spring Harbor Laboratory, コールド・ス
プリング・ハーバー,NY中)および核磁気共鳴(NM
R)などの生物物理学的方法は、ポリペプチドと他の推
定上の相互作用性タンパク質/受容体/分子との可能な
相互作用部位を地図に示し且つ研究するのに用いること
ができる。これら研究から得られる情報を用いて、欠失
突然変異体およびワクチン組成物を設計することができ
るし、そしてそのポリペプチドの生物学的機能を in vi
vo で特異的に阻止しうる治療的または薬理学的化合物
を設計するまたは選択することができる。
物をPPEから保護するワクチン組成物の成分として;
または例えば、ELISA検定などの標準的な技法を用
いて、動物からの血液または血清試料中のローソニア特
異的抗体についてスクリーニングするための診断用試薬
として;または例えば、ウェスタンブロット検定のよう
な標準的な技法を用いて、動物からの細胞、組織または
体液試料中のローソニア特異的タンパク質についてスク
リーニングするための診断用試薬として有用である多ク
ローン性または単クローン性抗体を下記のように生じさ
せる抗原としてを含めた種々目的に有用である。
特性を向上させるようにまたは他の点では変化させるよ
うにタンパク質レベルで修飾することができる。ポリペ
プチドの一つまたはそれ以上の化学修飾は、次のいずれ
か、すなわち、ポリペプチドの1個またはそれ以上のア
ミノ酸を、例えば、カルバゼートまたは第三中心を生じ
るように、該当するD−アミノ酸、アミノ酸類似体また
はアミノ酸模擬体で置換すること;または、例えば、ト
リプシン、キモトリプシン、パパインまたはV8プロテ
アーゼを用いたタンパク質分解切断、またはNaBH4
または臭化シアンを用いた処理、またはアセチル化、ホ
ルミル化、酸化または還元等のような特異的化学修飾が
含まれるがそれらに制限されるわけではない既知の技法
を用いて行って、そこから類似体を製造することができ
る。或いは、または更に、本発明のポリペプチドは、遺
伝子組換え技術によって修飾することができる。
黄橋架け基、グリコシル基、脂質およびリン酸塩が含ま
れるがそれらに制限されるわけではない1個またはそれ
以上の化学基のそれへの結合によって、および/または
本発明の別のポリペプチド、または別のタンパク質、例
えば、血清アルブミン、スカシガイのヘモシアニンまた
は商業的に活性化されたBSAなど、またはポリアミノ
酸(例えば、ポリリシン)、または多糖(例えば、セフ
ァロース、アガロース、または修飾または非修飾セルロ
ース)への結合によって誘導体化することができる。こ
のような結合は、好ましくは、そのポリペプチドのアミ
ノ酸側鎖および/またはN末端若しくはC末端における
共有結合による。このような結合反応を行う方法は、当
該タンパク質化学分野において周知である。
有用な誘導体には、例えば、ポリエチレングリコールの
ような水溶性ポリマーが本発明のポリペプチドまたはそ
の類似体若しくは誘導体に結合することによって、その
ポリペプチドの免疫原性を少なくとも一部分は維持しな
がら、追加の望ましい性状を与えているものも含まれ
る。これら追加の望ましい性状には、例えば、水溶液中
での増加した溶解性、増加した貯蔵安定性、タンパク質
分解脱水への増加した耐性および増加した in vivo 半
減期が含まれる。本発明のポリペプチドへの結合に適し
た水溶性ポリマーには、ポリエチレングリコールホモポ
リマー、ポリプロピレングリコールホモポリマー、エチ
レングリコールとプロピレングリコールとのコポリマー
が含まれるがそれらに制限されるわけではなく、ここに
おいて、それらホモポリマーおよびコポリマーは、非置
換であるかまたは、アルキル基、ポリオキシエチル化ポ
リオール、ポリビニルアルコール、多糖、ポリビニルエ
チルエーテルおよびα,β−ポリ[2−ヒドロキシエチ
ル]−DL−アスパルトアミドで一方の末端に置換され
ている。ポリエチレングリコールが特に好ましい。ポリ
ペプチドの水溶性ポリマー結合体を製造する方法は、当
該技術分野において周知であり、特に、米国特許第3,
788,948号;米国特許第3,960,830号;
米国特許第4,002,531号;米国特許第4,05
5,635号;米国特許第4,179,337号;米国
特許第4,261,973号;米国特許第4,412,
989号;米国特許第4,414,147号;米国特許
第4,415,665号;米国特許第4,609,54
6号;米国特許第4,732,863号;米国特許第
4,745,180号;欧州特許(EP)第152,8
47号;EP98,110号;および日本国特許第5,
792,435号に記載されており、それら特許は本明
細書中に援用される。
れる単離された抗体を提供する。好ましい実施態様にお
いて、抗体は、既知の方法を用いて、L.イントラセル
ラリスからのHtrA、PonA、HypC、Lys
S、YcfW、ABC1またはOmp100タンパク質
に対して生じさせることができる。ブタ、乳牛、ウマ、
ウサギ、ヤギ、ヒツジまたはマウスより選択される種々
の宿主動物は、部分的に若しくは実質的に精製されたま
たは単離されたL.イントラセルラリスタンパク質を用
いて、または上に記載されているようなその同族体、融
合タンパク質、実質的な部分、類似体または誘導体を用
いて免疫感作することができる。下記のようなアジュバ
ントは、抗体産生を促進するのに用いることができる。
の血清から得られ且つ単離され、抗原に対する特異性に
ついて標準的な技法を用いて調べることができる。或い
は、単クローン性抗体は、培養中の連続的継代細胞系に
よって抗体分子を産生させる任意の技法を用いて製造し
且つ単離することができる。これらには、Kohler およ
び Milstein(Nature, 1975,256:495-497)によって最
初に記載されたハイブリドーマ技術;ヒトB細胞ハイブ
リドーマ技術(Kosbor ら,1983, ImmunologyToday 4:7
2;Cote ら,1983, Proc.Natl.Acad.Sci.USA 80:2026-2
030);およびEBV−ハイブリドーマ技術(Cole ら,
1985, Monoclonal Antibodies and Cancer Therapy, Al
an R.Liss,Inc., 77-96頁)が含まれるがそれらに制限
されるわけではない。或いは、単鎖抗体の産生について
記載された技法(例えば、米国特許第4,946,77
8号を参照されたい)を、L.イントラセルラリス抗原
特異的単鎖抗体を生じるように適応することができる。
これら公報は、本明細書中に援用される。
を含有する抗体フラグメントは、本発明の範囲内にも包
含され、既知の技法によって生じさせることができる。
このようなフラグメントには、自然のままの抗体分子の
ペプシン消化によって生じることができるF(ab’)
2フラグメント、およびそのF(ab’)2フラグメント
のジスルフィド架橋を還元することによって生じること
ができるFabフラグメントが含まれるがそれらに制限
されるわけではない。或いは、Fab発現ライブラリー
を構築して(Huse ら,1989, Science 246:1275-128
1)、L.イントラセルラリスタンパク質への所望の特
異性を有するFabフラグメントの迅速な識別を可能に
することができる。
の産生および単離の技術は、当該技術分野において周知
であり、特に、Harlow および Lane, 1988, Antibodie
s: ALaboratory Manual, Cold Spring Harbor Laborato
ry に、および J.W.Goding,1986, Monoclonal Antibodi
es: Principles and Practice, Academic Press, ロン
ドンに更に記載されており、それらは本明細書中に援用
される。
ソニアhtrA、ponA、lysS、ycfW、hy
pC、abc1またはomp100遺伝子(その遺伝子
を、以下、“ローソニア遺伝子”と称する)を無能力に
するまたはそれ以外の場合は突然変異させる場合に用い
るための遺伝子構築物を製造することができる。そのロ
ーソニア遺伝子は、適当に設計される遺伝子構築物を用
いて突然変異させることができる。例えば、ローソニア
遺伝子は、(a)ローソニア遺伝子のコーディング配列
または調節配列の全部または一部分を欠失する;または
(b)ローソニア遺伝子のコーディング配列または調節
配列の全部または一部分を別のヌクレオチド配列で置き
換える;または(c)ローソニア遺伝子のコーディング
配列または調節配列中に、ローソニアからのまたは異種
源からのヌクレオチド配列を含むことができる1個また
はそれ以上のヌクレオチド、またはオリゴヌクレオチド
分子、またはポリヌクレオチド分子を挿入する;または
(d)(a)、(b)および(c)のいくつかの組合せ
を行うように機能する本発明の遺伝子構築物を用いて突
然変異させることができる。或いは、構築物を用いて、
ローソニア遺伝子の発現またはそのコードされているタ
ンパク質の安定性を変化させることができる。
ソニア細胞は、例えば、その遺伝子の突然変異が、突然
変異した遺伝子を有するローソニア細胞の病原性を、そ
のように遺伝子が突然変異していない同じローソニア菌
株の細胞と比較して減少させる場合、および無能力にさ
れた遺伝子を有するこのようなローソニア細胞をワクチ
ン組成物中で、特に、修飾生ワクチン中で用いて、PP
Eに対する動物の防御応答を誘導するまたはその誘導に
寄与することができる場合、本発明の実施において有用
である。好ましい実施態様において、その突然変異は、
ローソニア遺伝子を部分的にまたは完全に無能力にす
る、またはローソニア遺伝子によってコードされるタン
パク質を部分的にまたは完全に無能力にするのに役立
つ。この場合、ローソニア遺伝子またはタンパク質は、
タンパク質産物が生産されていない(例えば、遺伝子が
欠失している)かまたは、その通常の生物学的機能をも
はや有することができない若しくはその通常の細胞の場
所にもはや輸送され得ないタンパク質産物が生産され
る、またはその通常の生物学的機能は有するが、有意に
低下した速度で生産物が生産される場合、部分的にまた
は完全に無能力にされていると考えられる。ローソニア
遺伝子が突然変異しているローソニア細胞は、その遺伝
子の発現またはそのコードされるタンパク質の安定性を
増加させるのにも有用である。病原性ローソニア菌株の
細胞の病原性を検出可能に減少させる突然変異は、特に
有用である。本発明は、本発明のタンパク質およびポリ
ペプチドを発現する細胞が構成的突然変異体である場
合、このような細胞も包含する。
構築物は、野生型遺伝子のコーディング配列またはその
プロモーター若しくは他の調節領域、またはその一部分
を、例えば、突然変異したコーディング配列若しくは突
然変異した調節領域またはその一部分のような別のヌク
レオチド配列で置き換えることによって、野生型ローソ
ニア遺伝子を突然変異させるのに用いられる。このよう
な遺伝子構築物中で用いるための突然変異したローソニ
ア遺伝子配列は、誤りがちの(error-prone)PCRの
使用またはカセット突然変異誘発を含めた種々の既知の
方法のいずれかによって生じることができる。例えば、
オリゴヌクレオチドに支配された突然変異誘発は、野生
型ローソニア遺伝子のコーディング配列またはプロモー
ター配列を一定方法で変化させるのに、例えば、その配
列内の特定の地点にフレームシフトまたは終止コドンを
導入するのに用いることができる。或いは、または更
に、本発明の遺伝子構築物中で用いるための突然変異し
たヌクレオチド配列は、そのコーディング配列またはプ
ロモーター配列の1個またはそれ以上のヌクレオチド、
オリゴヌクレオチド分子またはポリヌクレオチド分子の
挿入または欠失によって、またはそのコーディング配列
またはプロモーター配列の一部分の、1個またはそれ以
上の別のヌクレオチド、オリゴヌクレオチド分子または
ポリヌクレオチド分子を用いた置換によって製造するこ
とができる。このようなオリゴヌクレオチド分子または
ポリヌクレオチド分子は、任意の天然に存在する源から
得ることができるしまたは合成でありうる。挿入される
または欠失する配列は、ローソニア遺伝子の読み枠を簡
単に破壊するのに役立ちうるし、または選択可能マーカ
ーのような異種遺伝子産物を更にコードすることができ
る。
発を用いて、本発明の遺伝子構築物中で用いるための突
然変異したローソニア遺伝子配列を生じることができ
る。ランダム突然変異誘発は、任意の適当な技法によっ
て、例えば、ローソニア遺伝子を有する細胞を紫外線ま
たはx線に、またはN−メチル−N’−ニトロソグアニ
ジン、スルホン酸エチルメタン、亜硝酸またはナイトロ
ジェンマスタードのような化学的突然変異誘発物質に暴
露した後、特定の遺伝子に突然変異を有する細胞につい
て選択することなどによって行うことができる。突然変
異誘発技術の概説については、例えば、Ausubel, 1989,
上記を参照されたい。
たローソニア細胞を生じる突然変異は、ORF中、プロ
モーター配列または他の調節領域中、または遺伝子若し
くはORFを天然に含むまたは遺伝子の発現若しくはそ
のコードされるタンパク質の安定性を変化させる任意の
他の配列中を含めたローソニア遺伝子中のどこでも起こ
りうる。このようなローソニア細胞には、ローソニア遺
伝子によって通常コードされるタンパク質の修飾型が生
産される、またはローソニア遺伝子によって通常コード
されるタンパク質が生産されない突然変異体が含まれ、
ヌル(null)、条件的、構成的または漏出性の突然
変異体でありうる。
ニア遺伝子またはORFにその場(in situ)で
自然に隣接するヌクレオチド配列を含むことができ、遺
伝子それ自体のコーディング領域からのヌクレオチド配
列を一部分だけ含むまたは全く含まない。このような遺
伝子構築物は、例えば、ローソニア遺伝子全体またはO
RFを欠失するのに有用であると考えられる。
構築物は、ローソニア遺伝子を無能力にするのに用いる
ことができるポリヌクレオチド分子であって、(a)
L.イントラセルラリスからのHtrA、PonA、H
ypC、LysS、YcfW、ABC1またはOmp1
00タンパク質をコードしているヌクレオチド配列と他
の点では同様であるヌクレオチド配列を有するが、その
ヌクレオチド配列が、一つまたはそれ以上の無能力にす
る突然変異を更に含むポリヌクレオチド分子;または
(b)ローソニア遺伝子のORFに現場で自然に隣接す
るヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチド分子を含む
ものを含む。ローソニア菌株の細胞中にいったん形質転
換されたら、その遺伝子構築物のポリヌクレオチド分子
は、相同的組換えによって特定のローソニア遺伝子に特
異的に集中し、それによって、その遺伝子若しくはその
一部分を置換するかまたはその遺伝子中に挿入される。
この組換え現象の結果として、その特定のローソニア菌
株にとって他の点では本来のローソニア遺伝子が無能力
にされる。
物は、例えば、HtrA、PonA、HypC、Lys
S、YcfW、ABC1またはOmp100タンパク質
を構成的に発現することまたは過発現することによって
発現を変化させる突然変異に用いられる。このような突
然変異は、例えば、宿主細胞を衰弱させるのに有用であ
りうる。その構築物は、タンパク質の安定性を増加させ
る突然変異を用いて、例えば、宿主細胞を弱毒化するこ
ともできる。
関して、その遺伝子構築物は、好ましくは、上記のよう
な突然変異したヌクレオチド配列を含む環状かまたは線
状のプラスミドである。非制限実施態様において、突然
変異した配列の少なくとも約200ヌクレオチドを用い
て、相同的組換えのための特定の標的ローソニア遺伝子
に本発明の遺伝子構築物を特異的に向けるが、より短い
ヌクレオチド長さも有効でありうる。更に、そのプラス
ミドは、好ましくは、破壊される天然のローソニア遺伝
子の調節因子配列と機能的に結合しているローソニアゲ
ノム中に挿入されるように構築される、リポーター遺伝
子産物または他の選択可能マーカーをコードしている追
加のヌクレオチド配列を含む。本発明の実施において用
いることができるリポーター遺伝子は、当該技術分野に
おいて周知であり、特に、CAT、グリーン蛍光タンパ
ク質およびβ−ガラクトシダーゼをコードしているもの
が含まれる。選択可能マーカーをコードしているヌクレ
オチド配列も、当該技術分野において周知であり、抗生
物質または抗代謝産物への耐性を与える遺伝子産物をコ
ードするもの、または栄養要求性を与えるものが含まれ
る。このような配列の例には、ピリメタミン耐性、また
はネオマイシンホスホトランスフェラーゼ(アミノグリ
コシドへの耐性を与える)、またはハイグロマイシンホ
スホトランスフェラーゼ(ハイグロマイシンへの耐性を
与える)をコードするものが含まれる。
ことができる方法は、当該技術分野において周知であ
り、特に、Maniatis ら,1989, 上記;Ausubel ら,198
9, 上記;Sambrook ら,1989, 上記;Innis ら,1995,
上記;および Erlich,1992,上記に記載のような、in v
itro 組換え技術、合成技術および in vivo 遺伝子組換
えが含まれる。
て、例えば、エレクトロポレーションなどによって本発
明の遺伝子構築物を用いて形質転換することができるし
またはトランスフェクションすることができる。形質転
換細胞の選択は、その構築物と結合した選択可能マーカ
ーを発現する細胞について選択することなどによる標準
的な技法を用いて行うことができる。満足すべき組換え
現象が起こっているおよび特定の標的遺伝子が変更され
ている形質転換細胞の識別は、サザンブロット分析、ま
たは特定のタンパク質をコードしているmRNA転写物
が無いことを検出するノーザンブロット分析などによる
遺伝分析によって、または例えば、免疫学的分析、減少
した病原性のような新規表現型の出現、PCR検定また
はそれらのいくつかの組合せで確認されるような特定の
タンパク質を欠いている細胞によって行うことができ
る。
の遺伝子構築物は、ローソニアからのまたは動物に感染
する別の病原体からの別の遺伝子またはコーディング領
域を更に含むことができ、その遺伝子またはコーディン
グ領域は、本発明の修飾されたローソニア生細胞を用い
たワクチン接種によって動物において別々の且つ異なっ
た防御免疫応答を誘導するまたはその誘導に寄与するの
に有用な抗原をコードしている。この追加の遺伝子また
はコーディング領域は、修飾されたローソニア生細胞か
らのコードされる抗原の分泌をもたらし、それによっ
て、ワクチン接種された動物の免疫系に抗原を提示させ
るシグナル配列を含有するように更に遺伝子操作するこ
とができる。
A、hypC、lysS、ycfW、abc1またはo
mp100遺伝子が突然変異している修飾されたローソ
ニア生細胞を提供する。更に、本発明は、修飾されたロ
ーソニア生細胞を製造する方法であって、(a)本発明
の遺伝子構築物を用いてローソニア細胞を形質転換し;
(b)その遺伝子構築物によってhtrA、ponA、
hypC、lysS、ycfW、abc1またはomp
100遺伝子が突然変異している形質転換された細胞を
選択し;そして(c)工程(b)の細胞の中から、PP
E感受性動物をPPEから防御するワクチン中で用いる
ことができる細胞を選択することを含む上記方法を提供
する。本発明は、このような修飾されたローソニア細胞
から製造される死滅細胞組成物も包含する。
ば、Joens ら,1997, Am.J.Vet.Res. 58:1125-1131; La
wson ら,1993, Journal of Clinical Microbiology 3
1:1136-1142; および McOrist ら,1995, 上記に記載の
方法を用いて、invitro で培養し且つ維持することがで
きる。
ドの免疫学的有効量および薬学的に許容しうる担体を含
む、PPEに対するワクチンを提供する。好ましい実施
態様において、そのワクチンは、HtrA、PonA、
HypC、LysS、YcfW、ABC1またはOmp
100のL.イントラセルラリスタンパク質を含む。
れ以上のポリヌクレオチド分子の免疫学的有効量および
薬学的に許容しうる担体を含む、PPEに対するワクチ
ンを提供する。好ましい実施態様において、そのワクチ
ンは、L.イントラセルラリスHtrA、PonA、H
ypC、LysS、YcfW、ABC1またはOmp1
00をコードしているヌクレオチド配列を有するポリヌ
クレオチド分子を含む。
ソニア細菌の免疫学的有効量および薬学的に許容しうる
担体を含む、PPEに対するワクチンを提供する。一つ
の実施態様において、本発明のワクチン中で用いるため
の修飾されたローソニア細胞は、HtrA-、Pon
A-、HypC-、LysS-、YcfW-、ABC1-ま
たはOmp100-表現型を発現するL.イントラセル
ラリス生細菌である。或いは、本発明のワクチンは、失
活している本発明のこのような修飾されたローソニア細
胞のいずれかを含むことができる。修飾されたローソニ
ア細胞の失活は、二元エチレンイミン(BEI)または
β−プロピオラクトンまたはホルムアルデヒドなどを用
いた化学的処理による、凍結融解または熱処理による、
または細胞のホモジナイゼーションによる、或いはこれ
ら種類の技法の組合せによることを含めた当該技術分野
において知られているいずれの技法を用いても行うこと
ができる。均一化され修飾されたローソニア細胞から製
造されるワクチンは、未分画の細胞ホモジネートそのま
まかまたはその免疫学的に有効な部分画分から成りう
る。
的有効量”という用語は、PPE感受性動物種のメンバ
ーに投与された場合、1回投与後かまたは多数投与後
に、PPEに対する防御応答を誘導することができる抗
原、例えば、タンパク質、ポリペプチド、ポリヌクレオ
チド分子または修飾された細胞の量を意味する。
う句は、ワクチン接種された動物をPPEから防御する
のに役立つ抗体かまたは細胞または両方に媒介される免
疫応答を含めたワクチン接種に応答した動物の任意の免
疫に基づく応答の誘導または促進を含むように本明細書
中において広義に用いられる。本明細書中で用いられる
“防御応答”および “防御する”という用語は、PP
Eの完全な予防またはローソニアによる感染の完全な予
防のみならず、このような病原体による感染度または率
の任意の検出可能な減少、または例えば、ワクチン接種
された動物において同種のワクチン接種されていない感
染動物と比較される、1種類またはそれ以上の組織で形
成される病変の形成速度若しくは絶対数または他の動物
への伝染の任意の検出可能な減少を含めた、その病原体
による感染によって生じる疾患または任意の症状若しく
は状態の重症度の任意の検出可能な減少も意味する。
ワクチンは、PPE感受性動物をPPEおよび場合によ
り、その動物を苦しめることがありうる1種類またはそ
れ以上の他の疾患または病理学的状態から防御する組合
せワクチンであり、その組合せワクチンは、本発明のポ
リペプチド、ポリヌクレオチド分子または修飾されたロ
ーソニア細胞を含む第一成分の免疫学的有効量;その第
一成分とは異なり、しかもPPE感受性動物を苦しめる
ことがありうる疾患または病理学的状態に対する防御応
答を誘導することができるまたはその誘導に寄与するこ
とができる第二成分の免疫学的有効量;および薬学的に
許容しうる担体を含む。
野において知られているように、PPEかまたは適切な
種のメンバーを苦しめることがありうる疾患または病理
学的状態に対する防御応答を誘導するまたはその誘導に
寄与する能力に基づいて選択される。特定の種における
ワクチン組成物中で有用である抗原性成分は、組合せワ
クチンの第二成分として用いることができる。このよう
な抗原性成分には、レプトスピラ属(Leptospira)種、
カンピロバクター属(Campylobacter)種、黄色ブドウ
球菌(Staphylococcus aureus)、ストレプトコッカス
・アガラクティエ(Streptococcus agalactiae)、スト
レプトコッカス・スイス(Streptococcus suis)、マイ
コプラズマ属(Mycoplasma)種、クレブシエラ属(Kleb
siella)種、サルモネラ属(Salmonella)種、ロタウイ
ルス、コロナウイルス、狂犬病、パスツレラ・ヘモリテ
ィカ(Pasteurella hemolytica)、パスツレラ・マルト
シダ(Pasteurella multocida)、クロストリジウム属
(Clostridia)種、破傷風トキソイド、大腸菌、クリプ
トスポリジウム属(Cryptosporidium)種、アイメリア
属(Eimeria)種、トリコモナス属(Trichomonas)種、
セルプリナ(ブラキスピラ)・ヒオディセンテリエ(Se
rpulina (Brachyspira) hyodysenteriae)、アクチノバ
チルス・プレウロニューモニエ(Actinobacillus pleur
opneumoniae)、アクチノバチルス・スイス(Actinobac
illus suis)、ブタコレラ菌(Salmonella cholerasui
s)、ブタ丹毒菌(Erysipelothrix rhusiopathiae)、
レプトスピラ属(Leptospira)種、スタフィロコッカス
・ヒイクス(Staphylococcus hyicus)、ヘモフィルス
・パラスイス(Haemophilus parasuis)、気管支敗血症
菌(Bordetella bronchiseptica)、マイコプラズマ・
ヒオニューモニエ(Mycoplasma hyopneumoniae)、ブタ
の生殖および呼吸症候群ウイルス、ブタインフルエンザ
ウイルス、ブタ免疫欠損ウイルス、伝染性胃腸炎ウイル
ス、ブタのパルボウイルス、脳心筋炎ウイルス、コロナ
ウイルス、仮性狂犬病ウイルス、シルコウイルスおよび
他の真核性寄生生物から成る群より選択される病原体に
対する防御を与えるものが含まれるがそれらに制限され
るわけではない。
ワクチンは、本発明のタンパク質またはポリペプチドの
免疫学的有効量、本発明のポリヌクレオチド分子の免疫
学的有効量、および本発明の修飾されたローソニア細胞
の免疫学的有効量から成る群より選択される2種類また
はそれ以上の成分の組合せを含む。
なアジュバントまたはサイトカインを含めた1種類また
はそれ以上の追加の免疫調節性成分を更に含むことがで
きる。
を製造する方法であって、免疫学的有効量の本発明の
L.イントラセルラリスタンパク質またはポリペプチ
ド、またはポリヌクレオチド分子、または修飾されたロ
ーソニア細胞を、PPE感受性動物への投与に適した形
で薬学的に許容しうる担体と組み合わせることを含む上
記方法を提供する。好ましい実施態様において、そのタ
ンパク質は、L.イントラセルラリスのHtrA、Po
nA、HypC、LysS、YcfW、ABC1または
Omp100であり、ポリヌクレオチド分子は、好まし
くは、L.イントラセルラリスのHtrA、PonA、
HypC、LysS、YcfW、ABC1またはOmp
100タンパク質をコードしているヌクレオチド配列を
含み、そして修飾されたローソニア細胞は、Htr
A-、PonA-、HypC-、LysS-、YcfW-、
ABC1-またはOmp100-表現型を有する。
むワクチンは、そのローソニア細胞を培地中に遊離した
状態かまたは哺乳動物宿主細胞中に残した状態で含有す
る培養液のアリコートを用いて製造することができる
し、PPE感受性動物に直接的にまたは濃縮した形で投
与することができる。或いは、修飾されたローソニア生
細胞は、当該技術分野において知られているものより選
択される且つ選択された投与経路に適当な免疫調節性物
質を用いてまたは用いることなく、薬学的に許容しうる
担体と組み合わせることができ、好ましくは、そこで、
ワクチン組成物中の修飾されたローソニア生細胞の少な
くともある程度の生存度が維持される。
剤、安定化剤、希釈剤、保存剤および/または可溶化剤
のような薬学的に許容しうる担体を含むように承認され
た慣例にしたがって製剤化することができるし、徐放を
容易にするように製剤することもできる。希釈剤には、
水、生理食塩水、デキストロース、エタノール、グリセ
ロール等が含まれる。等張性のための添加剤には、特
に、塩化ナトリウム、デキストロース、マンニトール、
ソルビトールおよびラクトースが含まれる。安定化剤に
は、特に、アルブミンが含まれる。調整生ワクチンを製
剤する場合に特に有用であるものを含めた適当な他のワ
クチン用ビヒクルおよび添加剤は、知られているしまた
は当業者に明らかであろう。例えば、本明細書中に援用
される Remington's Pharmaceutical Science, 第18
巻,1990, Mack Publishing を参照されたい。
アジュバントまたはサイトカインのような1種類または
それ以上の追加の免疫調節性成分を含むことができる。
本発明のワクチン中で用いることができるアジュバント
の非制限例には、RIBIアジュバント系(Ribi Inc.,
ハミルトン,MT)、ミョウバン、水酸化アルミニウ
ムゲルのようなミネラルゲル、水中油エマルジョン、油
中水エマルジョン、例えば、フロイントの完全および不
完全アジュバントなど、Block コポリマー(CytRx,ア
トランタ,GA)、QS−21(Cambridge Biotech In
c., ケンブリッジ,MA)、SAF−M(Chiron, エメ
リービル,CA)、AMPHIGEN(登録商標)アジ
ュバント、サポニン、Quil Aまたは他のサポニン画
分、モノホスホリルリピドA、Avridine リピド−アミ
ンアジュバント、およびコレラ菌(Vibrio cholera)毒
素および大腸菌不安定毒素などのタンパク質アジュバン
トが含まれる。本発明のワクチン中で有用な水中油エマ
ルジョンの具体的な非制限例には、修飾されたSEAM
62およびSEAM1/2製剤が含まれる。修飾SEA
M62は、5%(v/v)スクアレン(Sigma)、1%
(v/v)SPAN(登録商標)85デタージェント
(ICI Surfactants)、0.7%(v/v)TWEE
N(登録商標)80デタージェント(ICI Surfactan
ts)、2.5%(v/v)エタノール、200μg/m
l Quil A、100μg/mlコレステロールおよび
0.5%(v/v)レシチンを含有する水中油である。
修飾SEAM1/2は、5%(v/v)スクアレン、1
%(v/v)SPAN(登録商標)85デタージェン
ト、0.7%(v/v)TWEEN80デタージェン
ト、2.5%(v/v)エタノール、100μg/ml
Quil Aおよび50μg/mlコレステロールを含む
水中油である。ワクチン中に含まれうる他の免疫調節性
物質には、例えば、1種類またはそれ以上のインターロ
イキン、インターフェロンまたは他の既知のサイトカイ
ンが含まれる。ワクチンが修飾されたローソニア生細胞
を含む場合、アジュバントは、好ましくは、得られたワ
クチン製剤がその修飾されたローソニア生細胞の生存率
を少なくともある程度維持するその能力に基づいて選択
される。
含む場合、そのポリヌクレオチド分子は、DNAかまた
はRNAでありうるが、DNAが好適であり、そして好
ましくは、当該技術分野において知られているように、
組換え体プラスミドまたはウイルスベクターのような発
現ベクター構築物中で、PPEから防御されるPPE感
受性動物に投与される。組換え体ウイルスベクターの例
には、組換え体アデノウイルスベクターおよび組換え体
レトロウイルスベクターが含まれる。ワクチン製剤は、
DNAプラスミドに基づくベクターのような非ウイルス
DNAベクターも含むことができる。ポリヌクレオチド
分子は、脂質と結合して、例えば、リポソームまたはコ
クレイト(cochleates)のようなDNA−脂質複合体を
形成してよい。例えば、国際特許公開WO93/246
40号を参照されたい。
用な発現ベクターは、好ましくは、当該技術分野におい
て知られているように、例えば、プロモーター配列など
の真核性細胞中でのローソニアコーディング配列の発現
に必要な一つまたはそれ以上の転写調節因子と機能的に
結合している1種類またはそれ以上の抗原性ローソニア
タンパク質をコードしているヌクレオチド配列、または
そのようなヌクレオチド配列の実質的な部分を含む。好
ましい実施態様において、その調節因子は、例えば、R
SVまたはCMVからのウイルスプロモーターのような
強力なウイルスプロモーターである。このような発現ベ
クターには、好ましくは、クローニングのための細菌の
複製起点および原核性選択可能マーカー遺伝子、および
発現されるmRNAの適切な終結を確実にするポリアデ
ニル化配列も含まれる。発現されるタンパク質の細胞分
泌を支配するように、シグナル配列も含まれうる。
用な発現ベクターの必要条件は、特に、米国特許第5,
703,055号、米国特許第5,580,859号、
米国特許第5,589,466号、国際特許公開WO9
8/35562号、および Ramsay ら,1997, Immunol.
Cell Biol. 75:360-363; Davis, 1997, Cur.OpinionBio
tech. 8:635-640; Maniackan ら,1997, Critical Rev.
Immunol. 17:139-154; Robinson, 1997, Vaccine 15
(8):785-787; Lai および Bennett, 1998, Critical Re
v.Immunol. 18:449-484; および Vogel および Sarver,
1995, Clin.Microbiol.Rev. 8(3):406-410 を含めた種
々の科学公報に更に記載されている。
細胞を含む場合、そのワクチンは、冷却して、凍結させ
てまたは凍結乾燥させて貯蔵することができる。ワクチ
ン組成物が、本発明のタンパク質、ポリペプチド、ポリ
ヌクレオチド分子または失活した修飾されたローソニア
細胞を代わりに含む場合、そのワクチンは、適当な希釈
剤を用いて投与前に再水和される冷却した、凍結したま
たは凍結乾燥した状態で貯蔵することができる。
徐放のために製剤化することができる。このような徐放
性製剤の例には、例えば、ポリ(乳酸)、ポリ(乳酸−
コグリコール酸)、メチルセルロース、ヒアルロン酸、
コラーゲン等のような生体適合性ポリマーの組成物との
組合せの抗原が含まれる。薬物デリバリービヒクル中の
分解性ポリマーの構造、選択および使用は、本明細書中
に援用される A.Dombら,1992, Polymers for Advanced
Technologies 3:279-292 を含めたいくつかの公報に概
説されてきた。医薬製剤中のポリマーを選択し且つ使用
する場合の更に別の指針は、本明細書中にも援用される
M.Chasin および R.Langer(監修),1990, “Biodegt
adable Polymers as Drug Delivery Systems”,Drugs
and the Pharmaceutical Science, 45巻,M.Dekker, N
Yの本文中で見出されうる。或いは、または更に、その
抗原は、投与および効力を改善するようにマイクロカプ
セルに封入することができる。抗原をマイクロカプセル
に封入する方法は、当該技術分野において周知であり、
例えば、いずれも本明細書中に援用される米国特許第
3,137,631号;米国特許第3,959,457
号;米国特許第4,205,060号;米国特許第4,
606,940号;米国特許第4,744,933号;
米国特許第5,132,117号;および国際特許公開
WO95/28227号に記載された技法が含まれる。
ることができる。リポソーム製剤を製造するおよび使用
する方法に関する詳細は、特に、いずれも本明細書中に
援用される米国特許第4,016,100号;米国特許
第4,452,747号;米国特許第4,921,70
6号;米国特許第4,927,637号;米国特許第
4,944,948号;米国特許第5,008,050
号;および米国特許第5,009,956号で見出され
うる。
受性動物にワクチン接種する方法であって、本発明のワ
クチンの免疫学的有効量を動物に投与することを含む上
記方法を提供する。好ましくは、そのワクチンは、例え
ば、皮下かまたは筋肉内注射によって非経口投与され
る。しかしながら、ワクチンはまた、腹腔内または静脈
内注射によって、または例えば、経口、鼻腔内、直腸、
膣内、眼内を含めた他の経路によってまたは経路の組合
せによっても、そして当該技術分野において知られてい
る遅延放出装置によっても投与することができる。当業
者は、最適のワクチン投与経路を決定し、その選択され
た投与経路にしたがってワクチン組成物に許容しうる製
剤を確認することができる。
した後、その作用を監視しながら用量を増加させる慣用
的な手段によって決定することができる。動物当たりの
最適用量を決定する場合、多数の因子が考慮されうる。
これらの内の主なものは、動物の種、体格、齢および全
身状態、その動物における他の薬物の存在、動物がワク
チン接種される特定のローソニア菌株のビルレンス等で
ある。実際用量は、好ましくは、他の動物の研究による
結果の考察後に選択される。
またはポリペプチドの投与量は、好ましくは、約1μg
〜約10mg、より好ましくは、約50μg〜約1m
g、そして最も好ましくは、約100μg〜約0.5m
gである。本発明のワクチン中の本発明のローソニアポ
リヌクレオチド分子の投与量は、好ましくは、約50μ
g〜約1mgである。本発明のワクチン中の本発明の修
飾されたローソニア細胞の投与量は、好ましくは、細胞
約1x103〜約1x108個/ml、より好ましくは、
細胞約1x105〜約1x107個/mlである。適当な
用量寸法は、約0.1ml〜約10ml、より好ましく
は、約1ml〜約5mlである。これら抗原の投与量
は、本発明の組合せワクチンにも当てはまる。組合せワ
クチンの第二成分が、本発明のローソニアタンパク質、
ポリペプチド、ポリヌクレオチドまたは修飾された細胞
以外の抗原である場合、組合せワクチン中で用いるため
の第二成分の投与量は、当該技術分野において知られて
いるように、その第二成分の前のワクチン使用から決定
することができる。
PPEから防御するのに有用である。そのワクチンは、
ハムスター、フェレット、モルモット、シカおよびウ
シ、ウマおよび鳥類の種が含まれるがそれらに制限され
るわけではないいずれか適当な動物に投与することがで
きる。本発明のワクチンは、例えば、特にPPEの発生
のタイミング等を含めたいくつかの因子に依って、特定
の動物の生存中のいずれかの時期に投与することができ
る。ワクチンは、離乳期の若しくはより若い動物に、ま
たはより成熟した動物に投与することができる。有効な
タンパク質は、一次ワクチン接種だけを必要とすること
がありうるし、または1回またはそれ以上のブースター
ワクチン接種も必要であることがありうる。適切な免疫
防御が得らているかどうかを検出する一つの方法は、ワ
クチン接種後の動物における血清交換および抗体力価を
確認することである。ワクチン接種のタイミングおよび
ブースターを行うとすればその回数は、好ましくは、全
ての適切な因子の分析に基づいて獣医によって決定さ
れ、そのいくつかは上に記載されている。
ク質またはポリペプチド、例えば、HtrA、Pon
A、HypC、LysS、YcfW、ABC1またはO
mp100のL.イントラセルラリスタンパク質、また
はそれらの組合せは、1mlの緩衝溶液中に100μg
のポリペプチド、およびアジュバントとして25μgの
大腸菌不安定毒素を含有する製剤中で投与される。その
製剤は、例えば、ブタの筋肉内に、5〜7日齢で投与さ
れ、14日後に再投与される。
受性動物にワクチン接種するためのキットであって、本
発明のポリペプチド、ポリヌクレオチド分子または修飾
されたローソニア細胞、またはそれらの組合せの免疫学
的有効量を有する容器を含む上記キットを提供する。そ
のキットは、場合により、薬学的に許容しうる担体また
は希釈剤を有する第二容器を含むことができる。好まし
い実施態様において、そのポリペプチドは、HtrA、
PonA、HypC、LysS、YcfW、ABC1ま
たはOmp100のL.イントラセルラリスタンパク質
であり;ポリヌクレオチド分子は、好ましくは、Htr
A、PonA、HypC、LysS、YcfW、ABC
1またはOmp100のL.イントラセルラリスタンパ
ク質をコードするヌクレオチド配列を有し、そして修飾
されたローソニア細胞は、好ましくは、HtrA-、P
onA-、HypC-、LysS-、YcfW-、ABC1
-またはOmp100-表現型を発現する生細胞または不
活化細胞である。
イントラセルラリス特異的アミノ酸またはヌクレオチド
配列、または抗L.イントラセルラリス抗体の存在を検
出するキットであって、本発明のタンパク質、ポリペプ
チド、ポリヌクレオチドまたは抗体を含有するキットに
も関する。そのキットは、例えば、本発明のタンパク
質、ポリペプチド、ポリヌクレオチドまたは抗体に結合
した、またはそのタンパク質、ポリペプチド、ポリヌク
レオチドまたは抗体に結合する残基に結合した酵素、蛍
光または放射性標識を含めた本発明のタンパク質、ポリ
ペプチド、ポリヌクレオチドまたは抗体を検出する手段
も含有しうる。
るものであり、発明の範囲を制限するものではない。
域Aの分子クローニング DNAの単離およびDNAライブラリーの構築 鋳型DNAを、実験的にL.イントラセルラリスに感染
したブタの回腸から単離されたブタ腸粘膜から精製し
た。均一化された腸粘膜からのDNA精製は、(1)No
llau らの方法(Nollau ら,1996, Bio Techniques 20:
784-788)または(2)DNAのフェノール抽出および
酢酸ナトリウム−エタノール沈降によって行われた。
L.イントラセルラリス遺伝子配列のクローニングを容
易にするために、いくつかのゲノムライブラリーを構築
した。これらライブラリーを、制限DNAフラグメント
の5’および3’末端への既知の配列(Vectorette II
TM,Genosys Biotechnologies,Inc., ザ・ウッドラン
ズ,TX)の連結によって特異的に修飾した。Vectoret
teTMライブラリーは、L.イントラセルラリスに感染し
たブタ粘膜DNA抽出物のアリコートを、制限エンドヌ
クレアーゼHindIII、EcoRI、DraIまたは
HpaIを用いて37℃で一晩別々に消化することによ
って構築された。次に、その反応を、追加の新しい制限
酵素を用いて止め、2mM ATP、2mM DTTの
最終濃度に調整した。VectoretteTMテーリング(tailin
g)を、3ピコモルの適当な適合した VectoretteTMリン
カー(HindIII VectoretteTM:HindIIIで消化
されたDNA;EcoRI;EcoRIで消化されたD
NA;Blunt:DraI、HpaIで消化されたD
NA)を加えたT4DNAリガーゼ(400U)の添加
によって行った。その混合物を20℃、60分間;およ
び37℃、30分間で3サイクルインキュベートして、
テーリング反応を完了させた後、水を用いて200μl
に調整し、−20℃で貯蔵した。
p100タンパク質をコードしているゲノム領域Aの分
子クローニング ゲノム領域A(図1に示される)の識別は、ゲノムウォ
ーキングおよびファージライブラリースクリーニング処
理によって行われた。HindIII、EcoRI、Dr
aIおよびHpaIの VectoretteTMライブラリーのス
クリーニングは、細胞壁自己消化に関与する細菌N−ア
セチルムラモイル−L−アラニンアミダーゼと相同の
L.イントラセルラリスからの遺伝子(amiB)に隣
接して位置するDNAフラグメントを得るように行われ
た。オリゴヌクレオチドプライマーER159(配列番
号:37)、ER161(配列番号:38)およびER
162(配列番号:39)は、amiBのヌクレオチド
配列に基づいて設計された。3種類全部のプライマー
を、この領域内の(−)鎖を結合するように設計して、
AmiBをコードしている遺伝子の上流に位置するDN
Aの増幅を可能にした。
メラーゼ連鎖増幅には、オリゴヌクレオチドER159
(配列番号:37)、ER161(配列番号:38)お
よびER162(配列番号:39)を、VectoretteTM特
異的プライマー(ER70)(配列番号:33)と組み
合わせて、1xPCR Buffer II(Perkin Elmer)、
1.5mM MgCl2、各200μMのデオキシNT
P、各50ピコモルのプライマーおよび2.5U Ampl
iTaqTM Gold(Perkin Elmer)熱安定性ポリメラーゼを
含有する50μlの反応中において用いた。多数の単純
反応を、DNA鋳型として4μlの VectoretteTMライ
ブラリーを用いて行った。増幅は、次のように、すなわ
ち、変性(95゜9分間);40サイクルの変性(95
゜30秒間)、アニーリング(65゜30秒間)および
重合(72゜2.5分間);続いて72゜で7分間の最
終伸長で行った。
ル(Sigma)上での分離によって可視化した。ER15
9かまたはER162を VectoretteTM特異的プライマ
ーER70と組み合わせて用いた場合、約2.5kbの
産物が、HpaI VectoretteTMライブラリーの増幅に
よって生じた。このフラグメントは、AmiBをコード
しているL.イントラセルラリス遺伝子の直ぐ上流の
1.9kb領域であった。そのPCR生産物を、JET
sorbTMキット(GENOMED,Inc., ResearchTriang
le Park, NC)を用いるアガロースゲル電気泳動にし
たがって精製し、そしてpCR2.1 Topo(Invitroge
n, カールズバット,CA)中にクローン化してプラス
ミドpER393を生じた。そのインサートを、ベクタ
ー特異的プライマーを用いて部分的に配列決定した。得
られた配列は、BLASTxアルゴリズム(Altschul
ら,1990, J.Mol.Biol. 215:403-10)によって分析さ
れ、GenBank データベース中の約85kDaタンパク質
に類似したタンパク質を部分的にコードすることが示さ
れた。髄膜炎菌、インフルエンザ菌およびパスツレラ・
マルトシダからの報告されたタンパク質は、それぞれ、
Omp85、防御表面抗原D15およびOma87であ
った。
された配列(Omp100タンパクのC末端の2/3を
ほぼコードしている)に基づいて、特異的プライマーE
R174(配列番号:46)およびER175(配列番
号:47)を、PCR増幅による VectoretteTMライブ
ラリーの2回目のスクリーニングによって追加の5’フ
ランキング配列を得るように設計した。オリゴヌクレオ
チドER174(配列番号:46)およびER175
(配列番号:47)を、プライマーER70(配列番
号:33)と組み合わせて、1xPCR Buffer II(Pe
rkin Elmer)、1.5mM MgCl2、各200μM
のデオキシNTP、各50ピコモルのプライマーおよび
2.5U AmpliTaqTM Gold(Perkin Elmer)熱安定性
ポリメラーゼを含有する50μlの反応中において用い
た。多数の単純反応を、DNA鋳型として2μlの Vec
toretteTMEcoRIおよびDraIライブラリーを用
いて行った。増幅は、次のように、すなわち、変性(9
5゜9分間);35サイクルの変性(95゜30秒
間)、アニーリング(62゜30秒間)および重合(7
2゜2.5分間);続いて72゜で7分間の最終伸長で
行った。
VectoretteTMライブラリーのスクリーニング(ER1
74かまたはER175をER70と組み合わせて用い
る)は、EcoRI VectoretteTMライブラリーからの
約1.4kbフラグメントの満足すべき増幅を生じた。
そのPCR産物を、JETsorbTMキットを用いるアガロ
ースゲル電気泳動にしたがって精製し、そしてpCR
2.1 Topo 中にクローン化してプラスミドpER39
4を生じた。ER175およびベクター特異的プライマ
ーを用いるpER394内のインサート両末端の配列分
析は、このフラグメントが、pER394内のフラグメ
ントインサートと隣接していた(例えば、オーバーラッ
プしていた)ことを確証し、omp100遺伝子の5’
末端の決定を可能にした。この分析は、輸送体タンパク
質のATP結合カセット(ABC)スーパーファミリー
と相同の追加の部分ORFの存在も示した。したがっ
て、コードされる部分タンパク質をABC1と称した。
された配列(ABC1タンパクのC末端の1/2をほぼ
コードしている)に基づいて、特異的プライマーER1
88(配列番号:55)を、PCR増幅による Vectore
tteTMライブラリーの3回目のスクリーニングによって
追加の5’フランキング配列を得るように設計した。オ
リゴヌクレオチドER188(配列番号:55)を、プ
ライマーER70(配列番号:33)と組み合わせて、
1xPCR Buffer II、1.5mM MgCl 2、各2
00μMのデオキシNTP、各50ピコモルのプライマ
ーおよび2.5U AmpliTaqTM Gold 熱安定性ポリメラ
ーゼを含有する50μlの反応中において用いた。多数
の単純反応を、DNA鋳型として4μlの Vectorette
TMHindIII、DraIおよびHpaIライブラリー
を用いて行った。増幅は、次のように、すなわち、変性
(95゜9分間);30サイクルの変性(95゜30秒
間)、アニーリング(60゜30秒間)および重合(7
2゜2.5分間);続いて72゜で7分間の最終伸長で
行った。
びHpaIの VectoretteTMライブラリーのスクリーニ
ング(ER188をER70と組み合わせて用いる)
は、HindIII VectoretteTMライブラリーからの約
0.8kbフラグメントの満足すべき増幅を生じた。そ
のPCR産物を、JETsorbTMキットを用いるアガロー
スゲル電気泳動にしたがって精製し、そしてpCR2.
1 Topo 中にクローン化してプラスミドpER395を
生じた。ER188およびベクター特異的プライマーを
用いるpER395内のインサート両末端の配列分析
は、このフラグメントが、pER394内のフラグメン
トインサートと隣接していた(例えば、オーバーラップ
していた)ことを確証し、abc1遺伝子の5’末端の
決定を可能にした。追加の部分ORFは、そのabc1
遺伝子の上流で確認された。そのコードされるタンパク
質を、多数の細菌で見出される保存タンパク質であるY
cfWとの相同性に基づいて、YcfWと称した。
ている領域は、L.イントラセルラリスゲノムDNAの
部分Tsp5091消化によって生じた Lambda ZAP
ExpressTMファージライブラリーをスクリーニングする
ことによって得られた。そのファージライブラリーを、
10mM MgSO4、IPTGおよびX−Galの存
在下においてXL1−Blue MRF’大腸菌細胞上にプ
レーティングした。透明なプラークを採取し、ファージ
インサートを、Expand Long Template PCRSystemTM
を供給者(Boehringer Mannheim, インディアナポリ
ス,IN)によって提示のように用いて増幅させた。T
3およびT7ファージ特異的プライマーを、変性(94
゜2分間);25サイクルの変性(94゜10秒間)、
アニーリング(50゜30秒間)および重合(68゜6
分間);続いて68゜で7分間の最終伸長から成るPC
R条件で用いた。得られたPCR産物を、T3およびT
7プライマーを用いて最終配列決定し、BLASTx分
析によって GenBank データベース中の遺伝子と比較し
た。クローンA21と称される一つのファージは、前に
識別されたycfW、ABC1およびomp100 D
NA配列にオーバーラップした2.8kbを包含する約
6.1kbインサートを含有した。したがって、このク
ローンは、YcfWタンパクのN末端をコードしている
DNA配列を決定するのに用いられた。追加のORF
は、ycfW遺伝子の上流で確認された。この遺伝子
は、いくつかのリシル−tRNAシンテターゼとの相同
性を有し且つlysSと称されるタンパクをコードして
いた。
100の予備のヌクレオチド配列は、pER393およ
びpER394内のインサートを配列決定することによ
って得られた。YcfWのC末端の141アミノ酸部分
およびABC1のアミノ末端部分をコードしている予備
ヌクレオチド配列は、pER395内のインサートを配
列決定することによって得られた。ycfW遺伝子のN
末端およびlysSをコードしている予備ヌクレオチド
配列は、ファージクローンA21中に含有されたインサ
ートであるPCR産物を配列決定することによって得ら
れた。予備配列決定に用いられたプライマーには、pE
R393に関するER159(配列番号:37)、ER
169(配列番号:41)、ER170(配列番号:4
2)、ER176(配列番号:48)およびER177
(配列番号:49);pER394に関するER175
(配列番号:47)、ER185(配列番号:52)、
ER186(配列番号:53)およびER187(配列
番号:54);pER395に関するER188(配列
番号:55);およびファージクローンA21に関する
ER246(配列番号:97)、ER254(配列番
号:98)、ER255(配列番号:99)、ER25
6(配列番号:100)およびER257(配列番号:
101)の他に、ベクター特異的前進M13、逆M1
3、ファージT3およびT7のプライマーが含まれた。
サブゲノムDNAフラグメントの特異的PCR増幅 プラスミドpER393、pER394、pER395
およびファージクローンA21中に含有されるゲノムフ
ラグメントからのクローニングおよび予備配列決定の結
果を用いて、オーバーラップサブゲノムフラグメントの
特異的増幅のためのオリゴヌクレオチドプライマーを、
L.イントラセルラリスに感染したブタ粘膜DNA抽出
物から直接的に設計した。DNA抽出は、上記の方法に
したがって行った。このアプローチは、大腸菌中での遺
伝子フラグメントのクローニング中に起こる可能性があ
る突然変異のために、配列決定用人工産物の導入を省略
する要求に基づいて好適である。lysSと、ycfW
のN末端の3/4に隣接するオリゴヌクレオチドER2
46(配列番号:97)およびER254(配列番号:
98);abc1遺伝子に隣接するオリゴヌクレオチド
ER229(配列番号:73)およびER206(配列
番号:66);およびomp100遺伝子に隣接するE
R231(配列番号:75)およびER232(配列番
号:76)を用いて、この領域を粘膜DNA抽出物から
特異的に増幅させた。lysS遺伝子は、50μlの最
終試料容量中に鋳型としての2μlの粘膜DNA抽出
物、1xPC2緩衝液(Ab Peptide,Inc.)、各200
μMのdNTP、各50ピコモルのプライマー、7.5
U Klen Taq1および0.15Uクローン化Pfu熱安
定性ポリメラーゼを含有するPCR反応中で増幅した。
増幅条件は、94゜で5分間の変性後、30サイクルの
変性(94゜1分間)、アニーリング(55゜30秒
間)および重合(72゜3分間)から成った。72゜で
7分間の最終伸長は、標的の2.6kb領域の増幅を完
全にした。abc1遺伝子は、50μlの最終試料容量
中に鋳型としての1μlの粘膜DNA抽出物、1xPC
2緩衝液、各200μMのdNTP、各50ピコモルの
プライマー、7.5U Klen Taq1および0.15Uク
ローン化Pfu熱安定性ポリメラーゼを含有する3重P
CR反応中で増幅した。増幅条件は、95゜で5分間の
変性後、33サイクルの変性(94゜1分間)、アニー
リング(58゜30秒間)および重合(72゜80秒
間)から成った。72゜で10分間の最終伸長は、標的
遺伝子領域の増幅を完全にした。omp100遺伝子
は、50μlの最終試料容量中に鋳型としての2μlの
粘膜DNA抽出物、1xPC2緩衝液、各200μMの
dNTP、各50ピコモルのプライマー、7.5U Kl
en Taq1および0.15Uクローン化Pfu熱安定性ポ
リメラーゼを含有する4重PCR反応中で増幅した。増
幅条件は、94゜で5分間の変性後、35サイクルの変
性(94゜30秒間)、アニーリング(60゜30秒
間)および重合(72゜3分間)から成った。72゜で
7分間の最終伸長は、標的遺伝子領域の増幅を完全にし
た。増幅後、適宜、試料をそれぞれプールし、特定の産
物をアガロースゲル電気泳動によって精製後、ABI自
動DNAシークエンサー(Lark Technologies,Inc., ヒ
ューストン,TX)において DyeDeoxyTM終結反応を用
いる直接配列分析を行った。
て、L.イントラセルラリスからの増幅産物の両DNA
鎖を配列決定した。配列分析に用いられるプライマーに
は、AP58.1(配列番号:26)、AP58.2
(配列番号:27)、AP59.1(配列番号:2
8)、AP59.2(配列番号:29)、AP59.3
(配列番号:30)、AP59.4(配列番号:3
1)、AP59.5(配列番号:32)、ER159
(配列番号:37)、ER169(配列番号:41)、
ER170(配列番号:42)、ER175(配列番
号:47)、ER176(配列番号:48)、ER17
7(配列番号:49)、ER185(配列番号:5
2)、ER186(配列番号:53)、ER187(配
列番号:54)、ER188(配列番号:55)、ER
205(配列番号:65)、ER206(配列番号:6
6)、ER217(配列番号:71)、ER229(配
列番号:73)、ER230(配列番号:74)、RA
138(配列番号:79)、RA139(配列番号:8
0)、RA140(配列番号:81)、AP182.1
(配列番号:83)、AP182.2(配列番号:8
4)、AP182.3(配列番号:85)、AP18
2.4(配列番号:86)、AP182.5(配列番
号:87)、AP182.6(配列番号:88)、AP
182.7(配列番号:89)、AP182.8(配列
番号:90)、AP182.9(配列番号:91)、A
P182.10(配列番号:92)、AP182.11
(配列番号:93)、AP182.12(配列番号:9
4)、AP182.13(配列番号:95)、AP18
2.14(配列番号:96)、ER246(配列番号:
97)、ER254(配列番号:98)、ER255
(配列番号:99)、ER256(配列番号:100)
およびER257(配列番号:101)が含まれた。
クレオチド配列を配列番号:1に挙げる。この領域内に
コードされるLysS、YcfW、ABC1およびOm
p100タンパク質の推定上のアミノ酸配列を、それぞ
れ配列番号:102、配列番号:3、配列番号:4およ
び配列番号:5に示す。
ルラリス遺伝子および遺伝子産物の分子分析 amiB遺伝子の上流で確認されたL.イントラセルラ
リス染色体領域Aは、LysS、YcfW、ABC1お
よびOmp100と称されるタンパク質をコードしてい
る(図1)。これら遺伝子は、同じDNA鎖によってコ
ードされ、極めて接近して配列している。この体制は、
これら遺伝子がオペロンの一部分でありうるし、Lys
S/YcfWおよびABC1/Omp100の場合に翻
訳共役していると考えられることを示唆している。ly
sS ORFは、非定型TTG開始コドンから開始する
と考えられ、配列番号:1のヌクレオチド165〜17
45から伸長すると考えられる。この遺伝子は、約6
0,628ダルトンの理論分子量を有するLysS(配
列番号:102)と称される推定上の526アミノ酸タ
ンパク質をコードしている。ycfW ORFは、報告
された配列(配列番号:1)のヌクレオチド1745〜
3028から伸長する。この遺伝子は、約46,957
ダルトンの理論分子量を有するYcfW(配列番号:
3)と称される推定上の427アミノ酸タンパク質をコ
ードしている。abc1 ORFは、配列番号:1のヌ
クレオチド3031〜3738から伸長し、約25,6
18ダルトンの理論分子量を有する推定上の235アミ
ノ酸タンパク質ABC1(配列番号:4)をコードして
いる。更に下流であるが44ヌクレオチドによってこの
ORFにオーバーラップしているのは、更に別の大きい
読み取り枠である。このORFはomp100と称され
たが、配列番号:1のヌクレオチド3695〜6388
から伸長する。そのomp100遺伝子は、Omp10
0(配列番号:5)と称された推定上の896アミノ酸
タンパク質をコードしている。Omp100タンパク質
は、約101,178ダルトンの理論分子量を有する。
質のリシル−tRNAシンテターゼとの類似性 LysSタンパク質の推定上のアミノ酸配列(配列番
号:102)を、BLASTpアルゴリズム(Altschu
l,S.F. ら,1997, Nucleic Acids Res. 25:3389-3402)
によって GenBank に報告された他のタンパク質と比較
し、CLUSTALWアルゴリズム(Thompson,J.D.
ら,1994, Nucleic Acids Res. 22:4673-4680)によっ
て整列させた。図9に示されるように、この分析は、L
ysSが、細胞質リシル−tRNAシンテターゼファミ
リーのメンバーとの類似性を有するということを示し
た。L.イントラセルラリスLysSタンパク質は、バ
チルス・ステアロサーモフィルス(Bacillus stearothe
rmophilus)からのリシル−tRNAシンテターゼタン
パク質(Accn.AB012100)と47%の同一
性を有する。その細胞質の場所と一致して、このタンパ
ク質の予想されるN末端付近には、分泌シグナル配列が
確認されなかった。
BC1タンパク質の他の仮定のタンパク質との類似性 YcfWタンパク質は、約40〜45kDaの寸法の保
存される仮定のタンパク質のファミリーと一定の相同性
を有する。このファミリーのメンバーは、膜貫通タンパ
ク質または膜内在性タンパク質であることが報告されて
いる。このファミリーからの典型的なタンパク質の構造
予想比較は、TMPred(EMBnet−European M
olecular Biology Network; http://www.ch.embnet.org
/index.html)を用いて行われた。そのTMPredプ
ログラムは、膜に広がる領域およびそれらの配向の予測
を行う。そのアルゴリズムは、天然に存在する膜貫通タ
ンパク質のデータベースであるTMbaseの統計分析
に基づく。(Hofmann & Stoffel, 1993, Biol.Chem. Ho
ppe-Seyler 347:166)。この分析は、このタンパク質フ
ァミリー内の相同性が、そのタンパク質のC末端付近に
集まった三つの強力な膜貫通ドメインを有することを示
している。本発明者は、このファミリーを代表するもの
の極めてカルボキシル末端にある4個のアミノ酸(LR
YE)のところに極めて充分に保存されたドメインに注
目してきた。そのC末端領域は多数の膜貫通ドメインを
含有するが、先端のC末端は高度に保存されるという知
見は、相同タンパク質のYcfWファミリーのこの領域
に関係した普遍の機能的必要条件を示唆している。配列
番号:3に示されるL.イントラセルラリスYcfWタ
ンパク質は、先端のC末端アミノ酸(LRYE)の他
に、3個のC末端膜貫通ドメインも含有する。上の3個
のカルボキシルドメインの他に、TMPred分析は、
YcfWタンパク質の残基19〜44が、膜貫通領域を
形成していると考えられることを示している。YcfW
のアミノ末端は、既知の分泌シグナル配列上で操作され
る(trained)ネットワークを用いるPSORT(6.
4バージョン)計算機アルゴリズムによっても調べられ
る。この分析は、残基29〜45が、切断できないシグ
ナル配列(D.J.McGeoch, Virus Research, 3:271,1985
およびG.von Heijne, Nucl.Acids Res., 14:4683,198
6)として作用すると考えられる膜貫通領域(P.Klein
ら,1985, Biochim.Biophys.Acta, 815:468)を形成す
ると考えられることを示している。図2に示されるよう
に、その427アミノ酸のL.イントラセルラリスYc
fWタンパク質は、発疹チフスリケッチア(Rickettsia
prowazekii)からの415残基の仮定のタンパク質
(Accn.AJ235272)と32%の同一性を有
する。
列(配列番号:4)を、BLASTpアルゴリズムによ
って GenBank に報告された他の既知のタンパク質と比
較した。特に充分に保存される領域(GASGSGK
S)は、ABC1のアミノ末端付近で確認された。この
領域は、ABC型輸送体中に存在するヌクレオチド結合
モチーフA(Pループ)に相当する。それらABC型タ
ンパク質は、広範囲の細胞機能を有するタンパク質の極
めて大きいスーパーファミリーから成る。これらタンパ
ク質の大部分は、ヌクレオチド結合モチーフ内の局所相
同性に基づいてABC型タンパク質として分類され、概
して、細胞輸送機能に関与していると考えられる。図3
は、約45%同一のアミノ酸残基を有する大腸菌からの
YcfV(Accn.AE000212)の列と一緒に
ABC1の列を示す。大腸菌YcfVタンパク質は、有
望なABC型輸送体タンパク質である。
パク質の85kDaタンパク質との類似性 Omp100のアミノ末端の検討は、アミノ酸1〜25
が疎水性であり且つ正に荷電していることを示し、それ
はシグナル配列の特徴を示している(von Heijm, 1985,
J.Mol.Biol. 184:99-105)。既知のシグナル配列上で
操作されるネットワークを用いるSignalP(1.
1バージョン)計算機アルゴリズム(Nielsen,H. ら,1
997, Prot.Engineering, 10:1-6; http://www.cbs.dtv.
dk/services/signalP/)は、アミノ酸25と26との間
の最も可能性のある切断部位を予測した。したがって、
アミノ酸1〜25は、外膜局在化過程中にOmp100
から除去されると考えられる。Omp100のC末端ア
ミノ酸は、外膜タンパク質の正しい局在と一致する特徴
であるフェニルアラニン残基であると考えられる(Stru
yve,M., 1991, J.Mol.Biol. 218:141-148)。
酸配列(配列番号:5)を、BLASTpアルゴリズム
(Altschul,S.F. ら,1997, Nucleic Acids Res. 25:33
89-3402)によって GenBank に報告された他の既知のタ
ンパク質と比較し、CLUSTAL Wアルゴリズム
(Thompson,J.D. ら,1994, Nucleic Acids Res. 22:46
73-4680)によって整列させた。図4に示されるよう
に、この分析は、Omp100が、GenBank データベー
ス中の約85kDaタンパク質(U70214と称され
る)と一定の類似性を有することを示した。大腸菌から
のOmp100およびこの仮定のタンパク質(Yae
T,Accn.U70214またはAE000127)
のC末端の列は、これらタンパク質が約23%同一の残
基を有することを示している。他の報告されたタンパク
質には、特に、フレクスナー赤痢菌(Omp90)、髄
膜炎菌(Omp85)、インフルエンザ菌(D15)お
よびパスツレラ・マルトシダ(Omp87)から識別さ
れたものが含まれる。アミノ酸1〜139を含めたNH
2末端部分は、いずれの既知のタンパク質とも並列しな
い。コードされるOmp100タンパク質のアミノ酸1
〜200を包含する領域だけを用いるBLASTpアル
ゴリズムを用いた GenBank の追加の検索では、いずれ
の既知のOmp85様タンパク質も検出できなかった。
このデータは、Omp100のアミノ末端部分がL.イ
ントラセルラリスに全く特有であることを示している。
領域Bの分子クローニング PonA、HtrA、HypCおよびORF1タンパク
質をコードしているゲノム領域Bの分子クローニング ゲノム領域B(図1に示される)の識別は、ゲノムA領
域の識別について記載されたのと同様のゲノムウォーキ
ング処理によって行われた。HindIII、EcoR
I、DraIおよびHpaIの VectoretteTMライブラ
リーのスクリーニングは、他の細菌の鞭毛フックタンパ
ク質と相同のタンパク質をコードするL.イントラセル
ラリスからの遺伝子flgEに隣接して位置するDNA
フラグメントを得るように行われた。オリゴヌクレオチ
ドプライマーER142(配列番号:34)、ER15
3(配列番号:35)およびER158(配列番号:3
6)は、flgEの3’の既知のヌクレオチド配列に基
づいて設計された。3種類全部のプライマーを、この領
域内の(+)鎖を結合するように設計して、FlgEを
コードしている遺伝子の下流に位置するDNAの増幅を
可能にした。
ーゼ連鎖増幅には、オリゴヌクレオチドER142(配
列番号:34)、ER153(配列番号:35)および
ER158(配列番号:36)を、VectoretteTM特異的
プライマー(ER70)(配列番号:33)と組み合わ
せて、1xPCR Buffer II、1.5mM MgC
l 2、各200μMのデオキシNTP、各50ピコモル
のプライマーおよび2.5U AmpliTaqTM Gold 熱安定
性ポリメラーゼを含有する50μlの反応中において用
いた。多数の単純反応を、DNA鋳型として4μlの V
ectoretteTMライブラリーを用いて行った。増幅アニー
リング温度、伸長時間およびサイクル数は、実験間で異
なり、次の範囲にわたって行われた。変性(95゜9分
間);35〜40サイクルの変性(95゜30秒間)、
アニーリング(50〜60゜30秒間)および重合(7
2゜2.5〜3分間);続いて72゜で7分間の最終伸
長。
ル上での分離によって可視化した。ER158(配列番
号:36)を VectoretteTM特異的プライマーER70
と組み合わせて用いた場合、約1.2kbの産物が、D
raI VectoretteTMライブラリーの増幅によって生じ
た。この産物の特異的増幅をもたらす条件には、変性
(95゜9分間);40サイクルの変性(95゜30秒
間)、アニーリング(60゜30秒間)および重合(7
2゜2.5分間);続いて72゜で7分間の最終伸長が
含まれた。このフラグメントは、FlgEをコードして
いるL.イントラセルラリス遺伝子の直ぐ下流の1.4
kb領域であった。そのPCR生産物を、JETsorbTM
キットを用いるアガロースゲル電気泳動にしたがって精
製し、そしてpCR2.1 Topo 中にクローン化してプ
ラスミドpER390を生じた。そのインサートを、E
R70およびER158プライマーを用いて部分的に配
列決定した。得られた配列は、BLASTxアルゴリズ
ム(Altschul,S.F. ら,1990)によって分析され、GenB
ank データベース中のペニシリン結合タンパク質のアミ
ノ末端半分に類似したポリペプチドをコードすることが
示された。
基づいて、プライマーER163(配列番号:40)
を、VectoretteTMライブラリーの2回目のスクリーニン
グによって追加の3’フランキング配列を得るように設
計した。オリゴヌクレオチドER163(配列番号:4
0)を、プライマーER70(配列番号:33)と組み
合わせて、1xPCR Buffer II、1.5mM MgC
l2、各200μMのデオキシNTP、各50ピコモル
のプライマーおよび2.5U AmpliTaqTM Gold熱安定
性ポリメラーゼを含有する50μlの反応中において用
いた。多数の単純反応を、DNA鋳型として2μlの V
ectoretteTMHindIII、EcoRIおよびHpaIラ
イブラリーを用いて行った。増幅は、次のように、すな
わち、変性(95゜9分間);30サイクルの変性(9
5゜30秒間)、アニーリング(62゜30秒間)およ
び重合(72゜1.5分間);続いて72゜で7分間の
最終伸長で行った。
から2.7kbフラグメントを増幅させた。そのPCR
産物を、JETsorbTMキットを用いるアガロースゲル電
気泳動にしたがって精製し、そしてpCR2.1 Topo
中にクローン化してプラスミドpER392を生じた。
ベクター特異的プライマーを用いるクローン化されたイ
ンサート両末端の配列分析は、このフラグメントが、p
ER390内のフラグメントインサートと隣接していた
ことを確証した。この分析は、セリンプロテアーゼのH
trAタンパク質ファミリーのNH2末端の400残基
にほぼ相当する追加の部分ORFの存在も示した。した
がって、コードされる部分タンパク質をHtrAと称し
た。
trA ORF内の更に別の配列を決定した。特異的プ
ライマーER173(配列番号:45)を、pER39
2内のインサートの3’末端付近の既知の配列に基づい
て設計した。オリゴヌクレオチドER173(配列番
号:45)を、プライマーER70(配列番号:33)
と組み合わせて、上記のような50μlの反応中におい
て用いた。多数の単純反応を、DNA鋳型として2μl
の VectoretteTMDraIおよびHpaIライブラリー
を用いて行った。増幅(変性(95゜9分間);35サ
イクルの変性(95゜30秒間)、アニーリング(62
゜30秒間)および重合(72゜2.5分間);続いて
72゜で7分間の最終伸長)は、DraIライブラリー
から0.3kbフラグメントを生じた。そのPCR産物
を、JETsorbTMキットを用いるアガロースゲル電気泳
動にしたがって精製し、pCR2.1 Topo 中にクロー
ン化し、そしてそのインサートの両末端について、ベク
ター特異的プライマーを用いて配列決定した。配列およ
びBLASTxの分析は、htrA ORFがそのクロ
ーン化されたフラグメントの3’末端によってオープン
の状態のままであることおよび追加の10アミノ酸が、
コードされるHtrAタンパク質の末端の前に残ってい
ると考えられることを示した。
trA ORFおよび3’フランキング領域の残り部分
を決定した。特異的プライマーER189(配列番号:
56)を、htrA ORFの3’末端付近の既知の配
列に基づいて設計した。オリゴヌクレオチドER189
(配列番号:56)を、プライマーER70(配列番
号:33)と組み合わせて、上記のような50μlの反
応中において用いた。多数の単純反応を、DNA鋳型と
して4μlの VectoretteTMHindIII、EcoRIお
よびHpaIライブラリーを用いて行った。増幅は、次
のように、すなわち、変性(95゜9分間);30サイ
クルの変性(95゜30秒間)、アニーリング(60゜
30秒間)および重合(72゜2.5分間);続いて7
2゜で7分間の最終伸長で行った。増幅は、EcoRI
ライブラリーから約1kbフラグメントを生じた。その
PCR産物を、JETsorbTMキットを用いるアガロース
ゲル電気泳動にしたがって精製し、pCR2.1 Topo
中にクローン化してpER396を生じた。ベクター特
異的プライマーを用いるpER396内のインサート両
末端の配列分析は、htrA遺伝子の3’末端の決定を
可能にした。追加の小さいORFは、htrA遺伝子の
下流で確認された。コードされるタンパク質は、他の細
菌で見出されるHypCタンパク質との相同性に基づい
て、HypCと称された。hypCから更に下流は、o
rf1と称される更に別の部分ORFであり、それは反
対のDNA鎖によってコードされる。この切断された1
77アミノ酸ポリペプチドをORF1と称した。
よびorf1遺伝子のC末端部分の予備ヌクレオチド配
列は、pER390、pER392およびpER396
内のインサートを配列決定することによって得られた。
予備配列決定に用いられたプライマーには、pER39
0に関するER193(配列番号:59)およびER1
94(配列番号:60);pER392に関するER1
71(配列番号:43)、ER172(配列番号:4
4)、ER178(配列番号:50)、ER179(配
列番号:51)、ER190(配列番号:57)および
ER191(配列番号:58);およびpER396に
関するER195(配列番号:61)およびER196
(配列番号:62)の他に、ベクター特異的前進M13
および逆M13プライマーが含まれた。
サブゲノムDNAフラグメントの特異的PCR増幅 プラスミドpER390、pER392およびpER3
96中に含有されるゲノムフラグメントからのクローニ
ングおよび予備配列決定の結果を用いて、オーバーラッ
プサブゲノムフラグメントの特異的増幅のためのオリゴ
ヌクレオチドプライマーを、L.イントラセルラリスに
感染したブタ粘膜DNA抽出物から直接的に設計した
(DNA抽出については、上記の方法を用いた)。この
アプローチは、大腸菌中での遺伝子フラグメントのクロ
ーニング中に起こる可能性がある突然変異のために、配
列決定用人工産物の導入を省略する要求に基づいて好適
である。ponA遺伝子に隣接するオリゴヌクレオチド
ER228(配列番号:72)およびER190(配列
番号:57);htrA遺伝子に隣接するオリゴヌクレ
オチドER207(配列番号:67)およびRA134
(配列番号:78);およびhypC遺伝子に隣接する
オリゴヌクレオチドER189(配列番号:56)およ
びER196(配列番号:62)を用いて、この領域を
粘膜DNA抽出物から特異的に増幅させた。これらフラ
グメントの端点はオーバーラップし、それによって、隣
接しているサブゲノムDNAフラグメントの特異的増幅
後、独特のオーバーラップDNAフラグメントそれぞれ
に存在する末端ヌクレオチド配列を比較することによる
引き続きの確認を可能にした。したがって、最終配列
は、完全なL.イントラセルラリスゲノム領域Bであ
る。
よびhypC遺伝子領域を、50μlの最終試料容量中
に鋳型としての1μlの粘膜DNA抽出物、1xPC2
緩衝液(Ab Peptide,Inc.)、各200μMのdNT
P、各50ピコモルのプライマー、7.5U Klen Taq
1および0.15Uクローン化Pfu熱安定性ポリメラ
ーゼをそれぞれ含有する3重PCR反応中で増幅した。
ponAの増幅条件は、95゜で5分間の変性後、33
サイクルの変性(95゜30秒間)、アニーリング(6
2゜30秒間)および重合(72゜3分間)から成っ
た。htrAの増幅条件は、94゜で5分間の変性後、
33サイクルの変性(95゜30秒間)、アニーリング
(58゜30秒間)および重合(72゜3分間)から成
った。hypCの増幅条件は、94゜で5分間の変性
後、33サイクルの変性(95゜30秒間)、アニーリ
ング(62゜30秒間)および重合(72゜80秒間)
から成った。72゜で7分間の最終伸長は、標的の遺伝
子領域それぞれの増幅を完全にした。増幅後、試料をそ
れぞれ別々にプールし、特定の産物をアガロースゲル電
気泳動によって精製後、ABI自動DNAシークエンサ
ー(Lark Technologies,Inc., ヒューストン,TX)に
おいて DyeDeoxyTM終結反応を用いる直接配列分析を行
った。
て、L.イントラセルラリスからの増幅産物の両DNA
鎖を配列決定した。配列分析に用いられるプライマーに
は、AP55.1(配列番号:10)、AP55.2
(配列番号:11)、AP55.3(配列番号:1
2)、AP55.4(配列番号:13)、AP55.5
(配列番号:14)、AP55.6(配列番号:1
5)、AP55.7(配列番号:16)、AP55.8
(配列番号:17)、AP55.9(配列番号:1
8)、AP55.10(配列番号:19)、AP55.
11(配列番号:20)、AP56.1(配列番号:2
1)、AP56.2(配列番号:22)、AP56.3
(配列番号:23)、AP57.1(配列番号:2
4)、AP57.2(配列番号:25)、ER158
(配列番号:36)、ER163(配列番号:40)、
ER171(配列番号:43)、ER172(配列番
号:44)、ER173(配列番号:45)、ER17
8(配列番号:50)、ER179(配列番号:5
1)、ER189(配列番号:56)、ER190(配
列番号:57)、ER191(配列番号:58)、ER
193(配列番号:59)、ER194(配列番号:6
0)、ER195(配列番号:61)、ER196(配
列番号:62)、ER203(配列番号:63)、ER
204(配列番号:64)、ER207(配列番号:6
7)、ER208(配列番号:68)、ER213(配
列番号:69)、ER228(配列番号:72)、RA
133(配列番号:77)、RA134(配列番号:7
8)およびRA171(配列番号:82)が含まれた。
クレオチド配列を配列番号:2に挙げる。この領域内に
コードされるPonA、HtrA、HypCおよびOR
F1タンパク質の推定上のアミノ酸配列を、それぞれ配
列番号:6、配列番号:7、配列番号:8および配列番
号:9に示す。
ルラリス遺伝子および遺伝子産物の分子分析 flgE遺伝子の下流で確認されたL.イントラセルラ
リス染色体領域Bは、PonA、HtrA、HypC、
および部分“ORF1”タンパク質と称されるタンパク
質をコードしている(図1)。flgE ORFの一部
分は、ここで与えられ、ヌクレオチド1〜125から伸
長する(配列番号:2)。ponA ORFは、配列番
号:2のヌクレオチド252〜2690から伸長し、約
90,263ダルトンの理論分子量を有する推定上の8
12アミノ酸タンパク質PonA(配列番号:6)をコ
ードしている。別のインフレーム翻訳開始コドンは、ヌ
クレオチド276に存在し、それは、用いられる場合、
約89,313ダルトンの理論分子量を有する僅かに小
さい804アミノ酸タンパク質をコードすると考えられ
る。htrA ORFは、配列番号:2のヌクレオチド
2981〜4315から伸長し、約50,478ダルト
ンの理論分子量を有する推定上の474アミノ酸タンパ
ク質HtrA(配列番号:7)をコードしている。小さ
いhypCORFは、配列番号:2のヌクレオチド45
81〜4829から伸長し、約8,888ダルトンの理
論分子量を有する推定上の82アミノ酸タンパク質Hy
pC(配列番号:8)をコードしている。更に下流で且
つ反対の配向で転写されるのは、更に別の読み取り枠で
ある。このORFは“orf1”と称されたが、配列番
号:2の3’末端のヌクレオチド4912〜5445か
ら伸長する。このORFは、配列番号:2の3’末端に
よってオープンの状態のままであり、したがって、約2
0,345ダルトンの理論分子量を有する切断されたタ
ンパク質のC末端の177アミノ酸をコードしている。
図8に示されるように、コードされるORF1タンパク
質(配列番号:9)は、メタノコッカス・ヤナシイ(Me
thanococcus jannaschii)ゲノムからの遺伝子“MJ1
123”(Accn.U67555)によってコードさ
れる205アミノ酸の仮定のタンパク質と一定の相同性
を有する。
質のヒドロゲナーゼ成熟タンパク質との類似性 HypCタンパク質は、ヒドロゲナーゼ成熟タンパク質
のhyp/hupファミリーとの相同性を有する。ヒド
ロゲナーゼは、分子水素の可逆酸化を触媒し、水素が酸
化されるまたは生じる多数の適切な嫌気性過程に関与し
ている(Adams,M.W.W., ら,1990, Biochem.Biophys.Ac
ta 594:105-176)。HypCタンパク質は、大腸菌にお
ける触媒活性なヒドロゲナーゼイソ酵素の成熟に必要で
ある。この過程におけるHypCの正確な役割はまだ知
られていないが、ヒドロゲナーゼ成熟は、ニッケル挿
入、タンパク質折りたたみ、C末端タンパク質分解プロ
セシング、膜組込みおよび還元的活性化を伴う(Lutz,
S., ら,1991, Mol.Microbiol. 5:123-135; Przybyla,
A.E., ら,1992, FEMS Microbiol.Rev. 88:109-136)。
HypCタンパク質は、デスルフォビブリオ・ギガス8
2アミノ酸HynDタンパク質(Accn.AJ223
669,図7に示される)に41%一致し、リゾビウム
・レグミノサルムからの75アミノ酸HypCタンパク
質に39%一致する。
質のペニシリン結合タンパク質との類似性 ponA ORFは、約90,263ダルトンの理論分
子量を有する推定上の812アミノ酸タンパク質をコー
ドしている。別のインフレームメチオニンコドンが存在
し、それは、約89,313ダルトンの理論分子量を有
する僅かに小さい804アミノ酸タンパク質をコードし
ている。類似のインフレームメチオニンコドンは、他の
特性決定されたponA ORF中で確認されている。
例えば、ナイセリア・フラベセンス(Accn.AF0
87677)、淋菌(Accn.U72876)および
髄膜炎菌(Accn.U80933)からのPonA同
族体は、それぞれ8個、6個および6個のコドンによっ
て隔てられたアミノ末端インフレームメチオニンコドン
を含有する。L.イントラセルラリスと同様、ナイセリ
ア類のponA遺伝子は、認識できないリボソーム結合
部位が先行するので、真の開始メチオニンの予測は更に
複雑である。淋菌FA19 PonAタンパク質のN末
端配列決定は、次のメチオニンが、この菌株における好
ましい出発部位であることを示した(Ropp ら,1997,
J.Bacteriol. 179:2783-2787)。上流のメチオニンコド
ンは、L.イントラセルラリスからのコードされるPo
nAタンパク質の推定上の開始部位として用いられた。
redを用いて行われた。そのTMPredプログラム
は、膜に広がる領域およびそれらの配向の予測を行う
(K.Hofmann & W.Stoffel, 1993. TMbase- A database
of membrane spanning proteins segments. Biol.Chem.
Hoppe-Seyler 347:166)。この分析は、PonAが、
そのタンパク質のNH2末端に強力な膜貫通ドメインを
有することを示す。PonAのアミノ末端は、既知のシ
グナル配列上で操作されるネットワークを用いるPSO
RT(6.4バージョン)計算機アルゴリズムによって
も調べられた。この分析は、残基16〜32が、切断で
きないシグナル配列(D.J.McGeoch, VirusResearch, 3:
271,1985 および G.von Heijne, Nucl.Acids Res., 14:
4683,1986)として作用すると考えられる膜貫通領域
(P.Klein ら,1985, Biochim.Biophys.Acta, 815:46
8)を形成すると考えられることを示している。したが
って、PonAのアミノ末端は、細菌の内膜にタンパク
質を固定すると考えられ、それは、他のペニシリン結合
タンパク質の局在化の方法と似ている。
れるクラスA高分子質量ペニシリン結合タンパク質(P
BP)との相同性を有する。ペニシリン結合タンパク質
は、ペプチドグリカン合成の最終段階に関与する細菌の
細胞質膜タンパク質である。それらクラスAタンパク質
は、概して、グリカン鎖を重合するグリコシルトランス
フェラーゼおよびこれら鎖をそれらのペプチド側鎖によ
って架橋するトランスペプチダーゼの2種類の酵素活性
を示す。これらの反応は、細胞質膜の外表面でかまたは
更に外側で触媒されるので、ペプチドグリカン合成に関
与するタンパク質の主要部分は、ペリプラズム中に局在
している。PonAタンパク質の推定上のアミノ酸配列
(配列番号:6)を、BLASTpアルゴリズム(Alts
chul,S.F. ら,1997, 上記)によって GenBank に報告
された他のタンパク質と比較し、CLUSTAL Wア
ルゴリズム(Thompson ら,1994, 上記)によって整列
させた。図5に示されるように、この分析は、PonA
が、ナイセリア・フラベセンス(Accn.AF087
677)からのペニシリン結合タンパク質に最も似てい
ることを示した。PonAは、クラスA高分子質量PB
Pに特有の特徴を有する。アミノ酸124〜134(R
QGGSTITQQV)を含めた配列は、全てのクラス
A高分子質量PBP中で見出されるQGASTボックス
(Popham ら,1994, J.Bacteriol. 176:7197-7205)と
して知られる高度に保存される共通アミノ酸配列に相当
する。PonAのC末端側の半分内に、ペニシロイルセ
リントランスフェラーゼスーパーファミリーの全メンバ
ー中に高度に保存される三つの領域が見出されうる。こ
れら領域には、残基507〜510の活性部位セリンを
含有するSXXK四分子(SAFK)、残基565〜5
67のSXN三分子(SRN)および残基688〜69
1のKT(S)G四分子(KTG)が含まれる。これら
モチーフは、折りたたまれたタンパク質中で互いに近づ
けられて、β−ラクタム抗生物質と相互作用するトラン
スペプチダーゼドメイン活性部位ポケットを形成すると
考えられる。
質のペリプラズムセリンプロテアーゼタンパク質との類
似性 HtrAのアミノ末端の検討は、アミノ酸1〜26が疎
水性であり且つ正に荷電していることを示し、それはシ
グナル配列の特徴を示している(von Heijm, 1985, J.M
ol.Biol. 184:99-105)。既知のシグナル配列上で操作
されるネットワークを用いるPSORT計算機アルゴリ
ズム(Nakai,K., 1991, PROTEINS: Structure,Functio
n,and Genetics 11:95-110)は、残基1〜26が典型的
なシグナル配列として機能すると考えられることを示
し、アミノ酸26と27との間の最も可能性のある切断
部位を予測する。したがって、アミノ酸1〜26は、成
熟過程中にHtrAから除去されると考えられる。
列(配列番号:7)を、BLASTpアルゴリズム(Al
tschul,S.F. ら,1997, 上記)によって GenBank に報
告された他の既知のタンパク質と比較し、CLUSTA
L Wアルゴリズム(Thompson,J.D. ら,1994, 上記)
によって整列させた。この分析は、ペリプラズムセリン
プロテアーゼの大きいHrtA/DegPファミリーに
属するHtrAを示した。報告されるタンパク質には、
特に、大腸菌、ネズミチフス菌、カンピロバクター・ジ
ジュニ(Camplylbacter jejuni)、インフルエンザ菌、
マルタ熱菌(Brucella melitensis)、ウシ流産菌(Bru
cella abortus)、トラコーマクラミジア(Chlamydia t
rachomatis)、エルジニア・エンテロコリティカ(Yers
inia enterocolitia)、ボレリア・ブルグドルフェリ
(Borrelia burgdorferi)および枯草菌(Bacillus sub
tilis)から識別されるものが含まれる。ある場合に
は、HtrA同族体は、熱ショックタンパク質と称さ
れ、高温での細菌の生存または細胞内病原体の生存に必
要であることが欠失分析によって示されてきた。他の場
合には、HtrA同族体は温度によって生じないが、他
の生理学的ストレスに応答して発現される。いくつかの
HtrA同族体は、セリンプロテアーゼ活性を有するこ
とが示されており、多くの場合、細菌ビルレンスおよび
/または細胞内生存に、例えば、高温、過酸化水素、酸
化および浸透圧ストレスへの耐性に重要である。
質と緑膿菌(Pseudomonas aeruginosa)(Accn.#
U32853)からの最も類似した相対物との整列は、
それら二つのタンパク質が、40%一致するアミノ酸残
基を有することを示す(図6に示される)。L.イント
ラセルラリスHtrAタンパク質と他のセリンプロテア
ーゼとの整列に基づき、ヒスチジン−109、アスパラ
ギン酸−143および活性部位セリン−217を含めた
特に充分に保存される残基は、細菌および哺乳動物のセ
リンプロテアーゼ中に高度に保存される残基の触媒性三
分子を形成すると考えられる。多数のHtrA同族体
は、カルボキシル末端RGDモチーフを含有するが、他
はRGNモチーフを含有することが示されている。L.
イントラセルラリスHtrAタンパク質は、残基458
〜460に類似のモチーフを含有する(RNG)。RG
Dモチーフは、哺乳動物接着性タンパク質の細胞結合部
位として識別されている(Ruoslahti,E. ら,1986, Cel
l 44:517-518)。セリンプロテアーゼのHtrA/De
gPファミリーは、一定範囲のストレス応答中におよび
L.イントラセルラリスによる感染中に生じ、HtrA
の表面発現は、ストレス応答機序の一部分として起こり
うる。他の細胞内熱ショックタンパク質は、生理学的ス
トレス条件下で表面に発現された状態になることが示さ
れており、接着性因子として関係している(Ensgraber,
M. ら,1992, Infect.Immun. 60:3072-3078 および Har
tmann,E. ら,Infect.Immun. 65:1729-1733)。
度に応じた誘導 L.イントラセルラリス領域Aおよび領域Bの遺伝子配
置は、それらのコードされるタンパク質の間の遺伝子間
スペーシングの程度に関して異なる。領域Aとは異な
り、領域B内のORFは、より遠く離れている。例え
ば、flgE、ponA、htrAおよびhypC遺伝
子は、それぞれの読み取り枠の間が約125、200お
よび265ヌクレオチドによって隔てられている。ht
rAの直ぐ上流の200bp領域は、特に、いくつかの
HtrAタンパク質同族体が、温度、酸化および浸透圧
ストレスを含めた多数の異なった環境シグナルに応じて
生じることが分かって以来、プロモーター領域を見つけ
るためにより詳細に検討された。htrAの上流の配列
番号:2のヌクレオチド配列の検討は、ヌクレオチド2
797〜2802(TTGATA;−35領域)および
ヌクレオチド2824〜2829(TATAAT;−1
0領域)にほぼ位置するプロモーターを示した。これら
二つの六量体は、21ヌクレオチドスペースによって隔
てられ、共通のσ70型プロモーターにほぼ完全な相同
性を有する。他のプロモーター因子はこの領域中に存在
することができ、種々の環境シグナルに応じてhtrA
発現を調節する。プラスミドpER434は、htrA
ORFおよびhtrAプロモーター領域を含有し、3
0℃かまたは37℃で成長する大腸菌宿主細胞に温度依
存性表現型を与える。したがって、htrAの上流の領
域は、温度に応じた可能性のある機能的プロモーターと
して認識されうる。したがって、htrAプロモーター
を用いて、温度に応じて大腸菌および他の微生物におけ
る異種タンパクの発現を機能的に調節することは可能な
はずである。他の環境因子に応じて発現を調節する他の
プロモーター因子の存在は、それら他のシグナルを用い
て発現を調節することを可能にすると考えられる。
料 L.イントラセルラリス領域Aを包含するDNAフラグ
メント含有プラスミドlysS、ycfW、abc1お
よびomp100遺伝子を示すL.イントラセルラリス
ゲノム領域を含有するプラスミドを製造した。lysS
遺伝子とycfW遺伝子の一部分とを包含する2.6k
bフラグメントを、プライマーER246(配列番号:
97)およびER254(配列番号:98)を用いて増
幅させ、ycfW遺伝子の一部分および完全なabc1
遺伝子フラグメントを包含する0.87kbフラグメン
トを、プライマーER229(配列番号:73)および
ER206(配列番号:66)を用いて増幅させた。こ
れらフラグメントは、実施例1に記載のように、“L.
イントラセルラリス領域Aを包含するサブゲノムDNA
フラグメントの特異的PCR増幅”の下で増幅した。そ
れら2.6kbおよび0.87kb DNAフラグメン
トを、スピンクロマトグラフィー(QIAquic
kTM)を用いた抽出によって単離し、pCR2.1 Top
o のTAクローニング部位中に挿入した。ベクター特異
的配列決定用プライマーを用いた単純配列伸長反応は、
クローン化されたフラグメントの端点を確認し、そして
プラスミドpT068中のLysSおよびYcfW並び
にプラスミドpER438中のYcfWおよびABC1
をコードしている遺伝子が、ラクトースプロモーターに
相対して反対の配向にあることを示した。
b DNAフラグメントを、PCRによって特異的5’
および3’プライマーER187(配列番号:54)お
よびER170(配列番号:42)を用いて増幅させ
た。PCR反応は、三重に行われ、50μlの最終試料
容量中に鋳型としての1μl DNA抽出物、1xPC
R Buffer II、1.5mM MgCl2、各200μM
のデオキシNTP、各50ピコモルのプライマーおよび
2.5U AmpliTaq Gold 熱安定性ポリメラーゼを含有
した。増幅条件は、95゜で9分間の変性後、33サイ
クルの変性(95゜30秒間)、アニーリング(62゜
30秒間)および重合(72゜3分間)から成った。7
2゜で7分間の最終伸長は、標的遺伝子領域の増幅を完
全にした。増幅後、三重の試料をそれぞれプールし、そ
の特定の生産物を、スピンクロマトグラフィー(QIA
quickTM)を用いた抽出によって単離し、pCR
2.1Topo のTAクローニング部位中に、ラクトース
プロモーターに相対して反対の配向で挿入した。このプ
ラスミド構築物をpER440と称した。
0を、大腸菌TOP10細胞(Invitrogen, カールズバ
ット,CA)中に導入した。得られたPz438および
Pz440と称される菌株を、1999年9月9日にA
TCC(10801 University Blvd, マナッサス,
VA,20110,米国)に寄託し、受託番号PTA−
638およびPTA−640をそれぞれ付与された。プ
ラスミドpT068を大腸菌TOP10細胞中に導入
し、得られた菌株を2000年7月14日にATCCに
寄託し、受託番号PTA−2232を付与された。
DNAフラグメント含有プラスミドponA、htrA
およびhypC遺伝子を示すL.イントラセルラリスゲ
ノム領域を含有するプラスミドを製造した。それらpo
nA、htrAおよびhypC遺伝子フラグメントを、
上の実施例2の“L.イントラセルラリス領域Bを包含
するサブゲノムDNAフラグメントの特異的PCR増
幅”と題する項目に記載のように、ponA遺伝子に隣
接するプライマーER228(配列番号:72)および
ER190(配列番号:57);htrA遺伝子に隣接
するプライマーER207(配列番号:67)およびR
A134(配列番号:78);およびhypC遺伝子に
隣接するプライマーER189(配列番号:56)およ
びER196(配列番号:62)を用いて増幅させた。
得られたponA含有2.98kbフラグメントを、J
ETsorbTMキットを用いるアガロースゲル電気泳動にし
たがって精製し、そしてpCR2.1 Topo 中にクロー
ン化してプラスミドpER432を生じた。得られたh
trA含有1.72kbフラグメントを、スピンクロマ
トグラフィー(QIAquickTM)を用いた抽出によ
って単離し、pCR2.1 Topo のTAクローニング部
位中に挿入してプラスミドpER434を生じた。hy
pCと、ORF1のC末端の94アミノ酸をコードして
いる追加の隣接するヌクレオチドを含有する得られた
0.98kbフラグメントを、スピンクロマトグラフィ
ー(QIAquickTM)を用いた抽出によって単離
し、pCR2.1 Topo のTAクローニング部位中に挿
入してプラスミドpER436を生じた。ベクター特異
的配列決定用プライマーを用いた単純配列伸長反応は、
クローン化されたフラグメントの端点を確認し、そして
PonAおよびHypCをコードしている遺伝子が、ラ
クトースプロモーターに相対して反対の配向にあること
を示した。HtrA遺伝子を、ラクトースプロモーター
に相対して同じ配向でクローン化したが、このようなプ
ラスミドを含有する細胞は、37℃で不安定な表現型を
示し、それは、30℃で成長を維持した場合に軽減され
た。
よびpER436を、大腸菌TOP10細胞(Invitrog
en, カールズバット,CA)中に導入した。得られたP
z432、Pz434およびPz436と称される菌株
を、1999年9月9日にATCC(10801 Univ
ersity Blvd, マナッサス,VA,20110,米国)
に寄託し、受託番号PTA−635、PTA−636お
よびPTA−637をそれぞれ付与された。
100タンパク質の大腸菌での発現 プラスミド発現ベクター 組換え体HtrAおよびOmp100の製造に用いられ
る発現ベクターは、pET−28b(+)(Novagen,In
c., マディソン,WI)であった。HtrAおよびOm
p100タンパク質のコーディング配列を、L.イント
ラセルラリスに感染したブタ粘膜DNA抽出物から増幅
させた。それらPCR産物を、JETsorbTMキットを用
いるアガロースゲル電気泳動にしたがって精製し、そし
てpCR2.1 Topo 中にクローン化して、プラスミド
pRL001(HtrA)およびpER415(Omp
100)を生じた。HtrA ORFを増幅させるのに
用いられた特異的PCRプライマーには、ER208
(配列番号:68)およびRA133(配列番号:7
7)が含まれた。プライマーER208は、NdeI部
位(CATATG)を導入するように設計されたが、H
trAシグナル配列を欠失していた。pRL001中に
存在するHtrAインサートを、NdeIおよびEco
RIを用いた消化後、pET−28b(+)中にサブク
ローン化した。得られたpER405と称される発現プ
ラスミドを、挿入されるフラグメントの5’および3’
両末端において配列決定し、ベクターにコードされる6
xHisリーダーとのインフレーム融合をコードするこ
とを確認した。したがって、コードされるタンパク質の
推定のアミノ末端配列は、ベクターによってコードされ
る配列MGSSHHHHHHSSGLVPRGSHM、
その直後の、HtrA読み取り枠のアラニン−27で開
始する配列ALPNFVPから成った。
いられた特異的PCRプライマーには、ER216(配
列番号:70)およびRA138(配列番号:79)が
含まれた。プライマーER216は、NcoI部位(C
CATGG)を導入するように設計されたが、Omp1
00シグナル配列を欠失していた。更に、ER216
は、本明細書中に援用される Sung ら,1986, Proc.Nat
ll.Acad.Sci. USA 83:561-565; Sung ら,1987, Meth.E
nzymol. 153:385-389; および米国特許第5,460,
954号からの情報に基づいて、組換え体タンパク質を
タンパク質分解から保護する“保護ペプチド”と称され
るリーダーペプチドを規定した。アミノ酸配列MGTT
TTTTSLから成る保護ペプチドは、ER216の
5’近位ヌクレオチド配列によってコードされた。pE
R415中に存在するOmp100インサートを、Nc
oIおよびEcoRIを用いた消化後、pET−28b
(+)中にサブクローン化した。得られたpRL029
と称される発現プラスミドを、挿入されるフラグメント
の5’および3’両末端において配列決定し、保護ペプ
チドリーダーとのインフレーム融合をコードすることを
確認した。したがって、コードされるタンパク質の推定
のアミノ末端配列は、ER216の5’近位ヌクレオチ
ド配列によって規定される配列MGTTTTTTSL、
その直後の、Omp100読み取り枠のアラニン−26
で開始する配列ASKDDPSIVから成った。
している、pET−28b(+)に基づく発現ベクター
pER405およびpRL029を、発現宿主大腸菌B
L21(DE3)中に導入した。この発現宿主は、IP
TG誘導ファージT7プロモーターによって推進される
クローン化遺伝子の高レベル転写を可能にする遺伝子型
F-,ompT hsdSB(rB -mB -)gal dcm
(DE3)(Novagen,Inc.)を有する。それら大腸菌の
形質転換細胞を、5L BioFlowT M3000発酵槽(New
Brunswick Scientific, エディソン,NJ)中の50
μg/ml硫酸カナマイシンを含有するSB#2培地
(2.4%酵母エキス,1.2%トリプトン,0.5%
K2HPO4,0.25% KH2PO4,0.14%M
gSO4)中において30〜37℃で、A625が2.5〜
30.1になるまで増殖させた。組換え体タンパク質発
現は、1mM IPTGを用いた1〜4.5時間の誘導
後に得られた。
細胞を、10,000psi(2工程)でのホモジナイ
ゼーションによって溶解させた後、遠心分離した。その
ペレットはHtrAを含有し、それを、5:4比である
2xRIPA/TETを用いて洗浄した。2xRIPA
は、20mMトリス(pH7.4)、0.3M NaC
l、2.0%デオキシコール酸ナトリウムおよび2%
(v/v)Igepal CA−630TM(Sigma)である。T
ETは、0.1Mトリス(pH8.0)、50mM E
DTAおよび2%(v/v)トリトンX−100であ
る。次に、洗浄したペレットを、8M尿素、10mMト
リス、0.1M NaH2PO4、pH7.0中に溶解さ
せた。溶解したタンパク質を、8M尿素、10mMトリ
ス、0.1M NaH2PO4、pH7.0中で2倍に希
釈し、Ni NTAカラム(QIAGEN,サンタ・ク
ラリタ,CA)上に加えた。所望のタンパク質を、この
カラムから、8M尿素、10mMトリス、0.1M N
aH2PO4、pH4.5へのpHの減少によって溶出さ
せた。最後にプールされた画分を、4MグアニジンHC
l、50mMトリス、pH6.5に対して透析し、次の
工程では、2MグアニジンHCl、25mMトリス、p
H6.5に透析した。最終生成物を、0.22μM濾過
によって濾過した。タンパク質濃度は、SDS−PAG
Eによる70%の推定目視純度で0.56mg/mlで
あった。
湿潤細胞を、DNA分解を容易にするために、リゾチー
ム、および BenzonaseTM(BenzonaseTM(EM Industri
es,Inc., ホーソーン,ニューヨーク))の存在下の音
波処理を用いて溶解させた後、遠心分離した。そのペレ
ットはOmp100を含有し、それを、2M尿素、50
mMトリス、10mM EDTA、25mM DTT、
1% Zwittergent 3−14を用いて2回洗浄した。そ
のペレットを、6M尿素、50mMトリス(pH8.
0)を用いて再懸濁させた後、遠心分離した。そのペレ
ットを、5:4比である2xRIPA/TETを用いて
洗浄し、次に、その洗浄されたペレットを、8M尿素、
50mMトリス(pH8.0)中に溶解させた。25m
M DTTをその溶解したタンパク質に加え、8M尿
素、25mM DTT、50mMトリス(pH8.0)
を用いて2:1に更に希釈した。希釈された溶解タンパ
ク質を、8M尿素、25mM DTT、50mMトリス
(pH8.0)を用いて平衡されたQ−セファロースカ
ラム上に加えた。組換え体Omp100は、8M尿素、
25mM DTT、50mMトリス(pH8.0)中の
0〜1M NaClの直線勾配で溶離した。プールされ
た画分を、6MグアニジンHCl、10mM DTT、
50mMトリス(pH8.0)に対して透析し、次の工
程では、4MグアニジンHCl、6.7mM DTT、
33.3mMトリス(pH8.0)に透析した。最終生
成物を、0.22μM濾過によって濾過し、−70℃で
凍結させた。次に、精製されたOmp100タンパク質
を融解させ、遠心分離し(16,000rpm,60分
間)、そしてその上澄みに再度0.22μM濾過を施し
て、不溶性粒子および凝集物を除去した。タンパク質濃
度は、SDS−PAGEによる80%の推定目視純度で
1.08mg/mlであった。
Omp100タンパク質をコードしている遺伝子を含有
する遺伝子クラスターAの配列、およびPonA、Ht
rAおよびHypCタンパク質をコードしている遺伝子
クラスターBの配列を示す。
k データベースの検索で見出される最も類似した配列と
一緒に示す。
k データベースの検索で見出される最も類似した配列と
一緒に示す。
nBank データベースの検索で見出される最も類似した配
列と一緒に示す。
k データベースの検索で見出される最も類似した配列と
一緒に示す。
k データベースの検索で見出される最も類似した配列と
一緒に示す。
k データベースの検索で見出される最も類似した配列と
一緒に示す。
k データベースの検索で見出される最も類似した配列と
一緒に示す。
k データベースの検索で見出される最も類似した配列と
一緒に示す。
Claims (20)
- 【請求項1】 単離されたポリヌクレオチド分子であっ
て、 (a)L.イントラセルラリスのHtrA、PonA、
HypC、LysS、YcfW、ABC1またはOmp
100タンパク質をコードしているヌクレオチド配列; (b)該L.イントラセルラリスのHtrA、Pon
A、HypC、LysS、YcfW、ABC1またはO
mp100タンパク質をコードしている該ヌクレオチド
配列の実質的な部分であるヌクレオチド配列;および
(c)(a)または(b)のヌクレオチド配列に相同で
あるヌクレオチド配列から成る群より選択されるヌクレ
オチド配列を含む上記単離されたポリヌクレオチド分
子。 - 【請求項2】 前記L.イントラセルラリスのHtr
A、PonA、HypC、LysS、YcfW、ABC
1またはOmp100タンパク質をコードしている前記
ヌクレオチド配列を含む請求項1に記載の単離されたポ
リヌクレオチド分子。 - 【請求項3】 約nt165〜約nt1745の配列番
号:1の読み取り枠、約nt3031〜約nt3738
の配列番号:1の読み取り枠、約nt3695〜約nt
6385の配列番号:1の読み取り枠、約nt252〜
約nt2690の配列番号:2の読み取り枠、約nt2
891〜約nt4315の配列番号:2の読み取り枠、
および約nt4581〜約nt4829の配列番号:2
の読み取り枠から成る群より選択される読み取り枠から
成るヌクレオチド配列を含む請求項1に記載の単離され
たポリヌクレオチド分子。 - 【請求項4】 プロモーター活性を有する且つ約nt2
691〜約nt2890の配列番号:2内で見出される
20ヌクレオチドを越えるヌクレオチド配列を含むポリ
ヌクレオチド分子またはその補体。 - 【請求項5】 請求項1に記載のポリヌクレオチド分子
を含む組換え体ベクター。 - 【請求項6】 ponA遺伝子を含有するプラスミドp
ER432(ATCC受託番号PTA−635)、ht
rA遺伝子を含有するプラスミドpER434(ATC
C受託番号PTA−636)、hypC遺伝子を含有す
るプラスミドpER436(ATCC受託番号PTA−
637)、lysSおよびycfW遺伝子を含有するプ
ラスミドpT068(ATCC受託番号PTA−223
2)、ycfWおよびabc1遺伝子を含有するプラス
ミドpER438(ATCC受託番号PTA−63
8)、およびOmp100遺伝子を含有するプラスミド
pER440(ATCC受託番号PTA−639)から
成る群より選択されるプラスミドから成る請求項5に記
載の組換え体ベクター。 - 【請求項7】 請求項5に記載の組換え体ベクターを含
む形質転換された宿主細胞。 - 【請求項8】 請求項7に記載の形質転換された宿主細
胞によって生産されるポリペプチド。 - 【請求項9】 ローソニア遺伝子を変化させるのに用い
ることができるポリヌクレオチド分子を含む遺伝子構築
物であって、(a)htrA、ponA、hypC、l
ysS、ycfW、abc1またはomp100遺伝子
のヌクレオチド配列と他の点では同様である、またはそ
れに相同のヌクレオチド配列と他の点では同様であるヌ
クレオチド配列、または該ヌクレオチド配列の実質的な
部分を含むが、そのヌクレオチド配列が、該htrA、
ponA、hypC、lysS、ycfW、abc1ま
たはomp100遺伝子を変化させうる一つまたはそれ
以上の突然変異を更に含むポリヌクレオチド分子;また
は(b)該htrA、ponA、hypC、lysS、
ycfW、abc1またはomp100遺伝子のORF
にその場(in situ)で自然に隣接しているヌク
レオチド配列、または該隣接する配列に相同のヌクレオ
チド配列を含むポリヌクレオチド分子を含み;(a)ま
たは(b)の遺伝子構築物を用いたローソニア細胞の形
質転換が、該htrA、ponA、hypC、lys
S、ycfW、abc1またはomp100遺伝子を変
化させるようにある上記遺伝子構築物。 - 【請求項10】 請求項9に記載の遺伝子構築物を含む
形質転換された細胞。 - 【請求項11】 単離されたポリペプチドであって、 (a)L.イントラセルラリスのHtrA、PonA、
HypC、YcfW、ABC1またはOmp100タン
パク質; (b)該L.イントラセルラリスのHtrA、Pon
A、HypC、YcfW、ABC1またはOmp100
タンパク質のアミノ酸配列と相同のアミノ酸配列を有す
るポリペプチド; (c)該L.イントラセルラリスのHtrA、Pon
A、HypC、YcfW、ABC1またはOmp100
タンパク質の実質的な部分、または該L.イントラセル
ラリスのHtrA、PonA、HypC、YcfW、A
BC1またはOmp100タンパク質のアミノ酸配列と
相同のアミノ酸配列を有する該ポリペプチドの実質的な
部分から成るポリペプチド; (d)別のタンパク質またはポリペプチドに融合した
(a)、(b)または(c)のタンパク質またはポリペ
プチドを含む融合タンパク質;および(e)(a)、
(b)、(c)または(d)のタンパク質またはポリペ
プチドの類似体または誘導体から成る群より選択される
該ポリペプチド。 - 【請求項12】 前記L.イントラセルラリスタンパク
質が、配列番号:3、配列番号:4、配列番号:5、配
列番号:6、配列番号:7、配列番号:8および配列番
号:102から成る群より選択されるアミノ酸配列を含
むアミノ酸配列を有する請求項11に記載の単離された
ポリペプチド。 - 【請求項13】 挿入された、欠失したまたは置換され
た1〜10個のアミノ酸を有する、それらの組合せを含
めた前記L.イントラセルラリスのHtrA、Pon
A、HypC、LysS、YcfW、ABC1またはO
mp100タンパク質から成るポリペプチドを含む請求
項11に記載の単離されたポリペプチド。 - 【請求項14】 抗ローソニア抗体と特異的に反応性で
あるHtrA、PonA、HypC、LysS、Ycf
W、ABC1またはOmp100タンパク質のエピトー
プを含む実質的に純粋なポリペプチド。 - 【請求項15】 請求項1に記載のポリヌクレオチド分
子によってコードされるアミノ酸配列を含む単離された
ポリペプチド。 - 【請求項16】 L.イントラセルラリスのHtrA、
PonA、HypC、LysS、YcfW、ABC1ま
たはOmp100タンパク質と特異的に反応する単離さ
れた抗体。 - 【請求項17】 請求項10に記載の形質転換された細
胞を含む弱毒化生ワクチン。 - 【請求項18】 請求項10に記載の形質転換された細
胞を死滅した形で含む死菌ワクチン。 - 【請求項19】 請求項11に記載のポリペプチドの免
疫学的有効量を薬学的に許容しうる担体との組合せで含
む免疫原性組成物。 - 【請求項20】 請求項11に記載のポリペプチドをコ
ードしているヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチド
分子の免疫学的有効量を薬学的に許容しうる担体との組
合せで含む免疫原性組成物。
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