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JP2000206115A - Immunoagglutination reaction reagent using antibody fragment - Google Patents

Immunoagglutination reaction reagent using antibody fragment

Info

Publication number
JP2000206115A
JP2000206115A JP11004154A JP415499A JP2000206115A JP 2000206115 A JP2000206115 A JP 2000206115A JP 11004154 A JP11004154 A JP 11004154A JP 415499 A JP415499 A JP 415499A JP 2000206115 A JP2000206115 A JP 2000206115A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
antibody
reagent
carrier
fragmented
fragment
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP11004154A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Kayoko Sato
佳代子 佐藤
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Eiken Chemical Co Ltd
Original Assignee
Eiken Chemical Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Eiken Chemical Co Ltd filed Critical Eiken Chemical Co Ltd
Priority to JP11004154A priority Critical patent/JP2000206115A/en
Publication of JP2000206115A publication Critical patent/JP2000206115A/en
Pending legal-status Critical Current

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  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To obtain a reagent of a high sensitivity and a good accuracy by processing a monochlonal antibody or polychlonal antibody with a reducing agent, fragmenting the antibody and letting the fragment carried by an insoluble carrier through physical adsorption or chemical bond. SOLUTION: Not only a monoclonal antibody, but a polychlonal antibody are processed with a reducing agent, for example, 2-mercaptoethanol or the like, thereby fragmenting immunoglobulin. The antibody fragment is carried by an insoluble carrier. The reagent is generated in this manner. The carrier used can be any of that can carry the antibody, flocculates when the carrier after holding the antibody generates an antigen-antibody reaction, and enables a labelling substance to measure an activity in any method, for example, fine particles of organic polymer substances, functional group-introduced inorganic particles, organism-originated particles or the like. The reagent improves a reactivity and a linearity both in a low concentration region and a high concentration region.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、抗原抗体反応を利
用して免疫学的に被検液中の成分を測定する試薬におい
て、該試薬に用いる抗体を断片化することにより、幅広
い測定範囲を有する試薬、及び製造方法に関するもので
ある。
[0001] The present invention relates to a reagent for immunologically measuring a component in a test solution utilizing an antigen-antibody reaction, and by fragmenting an antibody used in the reagent, a wide measurement range can be obtained. The present invention relates to a reagent having the same and a production method.

【0002】[0002]

【従来の技術】被検液中の特定成分を測定する方法とし
て、抗原抗体反応を利用した免疫学的測定試薬が数多く
あり、より高感度に、より精度良く幅広い範囲で測定す
るために各種の改良が試みられてきた。免疫学的測定試
薬の製造には、測定したい特定成分に対する抗体を不溶
性担体に担持させる際に、未処理の抗体を材料とするの
が一般的である。非特異反応の影響を避けるためにFac
b断片を使用する方法(特公昭63−41426、特公
昭63−63863)や、F(ab')2やFab断片を使用す
る方法もある。
2. Description of the Related Art As a method for measuring a specific component in a test solution, there are a number of immunological measurement reagents utilizing an antigen-antibody reaction. Improvements have been attempted. In producing an immunoassay reagent, an untreated antibody is generally used as a material when an antibody against a specific component to be measured is carried on an insoluble carrier. To avoid the effects of non-specific reactions, Fac
There are also methods using b-fragment (JP-B-63-41426, JP-B-63-63863) and methods using F (ab ') 2 and Fab fragments.

【0003】しかしながら、FabやF(ab')2断片にはF
c部分が欠落しているため、未処理の抗体に比べて不溶
性担体に担持させにくいという問題点があった。また、
動物種によってはFacb断片に処理出来ないものや抗体
のクラスによっては酵素処理に耐えられないものも存在
する。
[0003] However, Fab and F (ab ') 2 fragments contain F
Since the c-part is missing, there is a problem that it is harder to carry on an insoluble carrier than an untreated antibody. Also,
Some animal species cannot be processed into Facb fragments, and some cannot withstand enzyme treatment depending on the class of antibody.

【0004】[0004]

【発明が解決しようとする課題】本発明は、従来と同等
以上の反応性を有する免疫凝集反応試薬、即ち高感度か
つ精度の良好な免疫凝集反応試薬とその調製方法、並び
に、その測定方法を提供することを目的とする。
SUMMARY OF THE INVENTION The present invention relates to an immunoagglutination reagent having a reactivity equal to or higher than the conventional one, that is, a highly sensitive and accurate immunoagglutination reagent, a method for preparing the same, and a method for measuring the same. The purpose is to provide.

【0005】[0005]

【課題を解決するための手段】本発明は、上記課題を解
決するために、モノクローナル抗体だけでなく、ポリク
ローナル抗体も含めた免疫グロブリンを断片化し、不溶
性担体に担持させることによってなる発明である。ま
た、本発明は、モノクローナル抗体又はポリクローナル
抗体を還元剤で処理することにより断片化したものを用
いて、物理的又は化学的に、不溶性担体に該抗体を担持
させることを特徴とする免疫学的測定試薬の調製方法の
発明である。
Means for Solving the Problems In order to solve the above-mentioned problems, the present invention is an invention comprising fragmenting immunoglobulins including not only monoclonal antibodies but also polyclonal antibodies and supporting the fragments on an insoluble carrier. The present invention also provides an immunological method comprising physically or chemically using a monoclonal antibody or a polyclonal antibody fragmented by treating it with a reducing agent, and carrying the antibody on an insoluble carrier. This is an invention of a method for preparing a measurement reagent.

【0006】更に、本発明は、モノクローナル抗体又は
ポリクローナル抗体を還元剤で処理することにより断片
化したものを用いて、物理的又は化学的に該抗体を担持
させた免疫学的測定試薬を用いることを特徴とする免疫
学的測定方法の発明である。すなわち、本発明者らは、
免疫グロブリンを不溶性担体に担持させるに際して、単
に抗体を担持させるだけでは、抗体によっては反応性が
出にくいものがあることから、これらを何らかの手段を
用いてより反応性を増加する方法を見いだすべく、鋭意
研究を重ねてきた。その結果、モノクローナル抗体だけ
ではなく、ポリクローナル抗体を還元剤にて処理するこ
とにより免疫グロブリンを断片化し、不溶性担体に担持
させるという方法により、従来の抗体を不溶性担体に担
持させる方法と比較して、より良い反応性を維持できる
ことを見出し、本発明を完成するに至った。
Further, the present invention relates to the use of a monoclonal or polyclonal antibody fragmented by treating it with a reducing agent, and using an immunological assay reagent physically or chemically carrying the antibody. An invention of an immunological measurement method characterized by the following. That is, the present inventors,
When carrying immunoglobulin on an insoluble carrier, merely carrying an antibody is difficult for some antibodies to exhibit reactivity. I have been working hard. As a result, in addition to the monoclonal antibody, the method of fragmenting the immunoglobulin by treating the polyclonal antibody with a reducing agent and supporting it on an insoluble carrier, as compared with the conventional method of supporting an antibody on an insoluble carrier, They have found that better reactivity can be maintained, and have completed the present invention.

【0007】本発明では、上記手段によって測定範囲が
広く、抗体の使用量が少ない免疫学的測定試薬の製造が
可能となる。その理由は以下のように推測される。抗体
を還元処理することにより、ヒンジ部およびFc部位で
2つのH鎖をつないでいるS−S結合がはずれ、2つの
抗原認識部位を持つ1分子の抗体から1つの抗原認識部
位を持つ2分子の半抗体が生成される。2分子になるこ
とにより、立体障害などが低減し、実際の抗原抗体反応
に関わる抗原認識部位が増加すると考えられる。また、
この還元剤によるフラグメント化は、Facb断片からも
製造することができる。
In the present invention, the above-mentioned means makes it possible to produce an immunoassay reagent having a wide measurement range and a small amount of antibody used. The reason is presumed as follows. By reducing the antibody, the SS bond connecting the two H chains at the hinge portion and the Fc site is released, and two molecules having one antigen recognition site are converted from one antibody having two antigen recognition sites Of half antibodies are produced. It is considered that steric hindrance and the like are reduced by using two molecules, and the number of antigen recognition sites involved in an actual antigen-antibody reaction is increased. Also,
Fragmentation with this reducing agent can also be produced from Facb fragments.

【0008】また、本発明において使用される抗体は、
動物種を限定するのではなく、例えば、マウス、ラッ
ト、ウサギ、ヤギ、羊、ヒト、などに由来する、モノク
ローナル抗体、もしくはポリクローナル抗体以外にも、
キメラ抗体などのように修飾を加えた抗体を使用するこ
とも可能であり、特に抗体の種類を限定するものではな
い。これら免疫グロブリンは、市販のものを用いてもよ
いし、動物血清からや細胞の培養上清から公知の方法で
取得されるものを用いてもよい。
[0008] The antibody used in the present invention comprises:
Without limiting the animal species, for example, derived from mice, rats, rabbits, goats, sheep, humans, etc., besides monoclonal antibodies or polyclonal antibodies,
It is also possible to use a modified antibody such as a chimeric antibody, and the type of the antibody is not particularly limited. Commercially available immunoglobulins may be used, or those obtained from animal serum or cell culture supernatant by a known method may be used.

【0009】本発明で使用される担体は、抗体を担持で
き、担持後の担体が抗原抗体反応を起こした場合に凝集
するものであれば、公知の担体が特に制限されずに使用
できる。目的の担持不溶性担体を調製する際の担持抗体
量は特に制限されるものではなく、理論上担持可能な量
よりも少なくてもよいし、大過剰でもよい。
As the carrier used in the present invention, a known carrier can be used without any particular limitation as long as the carrier can carry an antibody and aggregates when the carrier after carrying out an antigen-antibody reaction. The amount of the supported antibody in preparing the intended supported insoluble carrier is not particularly limited, and may be smaller than the theoretically supportable amount or may be a large excess.

【0010】また、本発明で使用される担体は、抗体を
担持でき、担持後の担体が抗原抗体反応を起こした場合
に標識物がいかなる方法であってもその活性を測定可能
であれば、公知の担体が特に制限されずに使用できる。
Further, the carrier used in the present invention can carry an antibody, and when the carrier after carrying the antigen-antibody reaction can measure the activity of the labeled substance by any method, Known carriers can be used without particular limitation.

【0011】免疫凝集反応に好適に使用できる担体は、
通常の免疫学的測定法で用いられる不溶性担体であれば
いずれも使用可能であるが、例示すれば、ポリスチレ
ン、スチレン−メタクリル酸共重合体、スチレン−グリ
シジル(メタ)アクリレート共重合体、スチレン−スチ
レンスルホン酸塩共重合体、メタクリル酸重合体、アク
リル酸重合体、アクリロニトリルブタジエンスチレン共
重合体、塩化ビニル−アクリル酸エステル共重合体、ポ
リ酢酸ビニルアクリレートなどのラテックス等の有機高
分子物質の微粒子、あるいはシリカ、シリカーアルミ
ナ、アルミナの様な無機酸化物又は該無機酸化物等にシ
ランカップリング処理等を施し、官能基を導入した無機
粒子、ヒトO型血球、ヒツジ赤血球等の生物由来の粒子
等が挙げられるが、これらに限定するものではない。な
かでもラテックス粒子は人工担体であり、目的に応じて
担体表面を化学的処理しやすいこと、また非特異反応が
起こりにくいことなどの点から特に好ましく用いられ
る。そのなかで、種々の変性ラテックスや磁性ラテック
ス等も必要に応じて使用できることは言うまでもない。
[0011] Carriers that can be suitably used for the immunoagglutination reaction include:
Any insoluble carrier can be used as long as it is an insoluble carrier used in a usual immunoassay. For example, polystyrene, styrene-methacrylic acid copolymer, styrene-glycidyl (meth) acrylate copolymer, styrene- Fine particles of organic polymer substances such as latex such as styrene sulfonate copolymer, methacrylic acid polymer, acrylic acid polymer, acrylonitrile butadiene styrene copolymer, vinyl chloride-acrylate copolymer, and polyvinyl acetate acrylate Or, silica, silica-alumina, inorganic oxides such as alumina or an inorganic oxide or the like subjected to a silane coupling treatment or the like to introduce functional groups into inorganic particles, human O-type blood cells, sheep erythrocytes, or other biological sources. Examples include, but are not limited to, particles. Among them, latex particles are artificial carriers, and are particularly preferably used in view of the fact that the surface of the carrier is easily subjected to a chemical treatment and the non-specific reaction hardly occurs depending on the purpose. Of these, it goes without saying that various modified latexes, magnetic latexes, and the like can be used as needed.

【0012】上記担体の粒径も特に限定されるものでは
ないが、抗原抗体反応後の凝集の起こり易さや凝集の判
別のし易さ等の観点から平均粒径が0.05〜10μm
の担体を使用するのが好適である。また、担体の使用量
は、抗体や抗原の種類によって適宜決定すればよいが、
担持効率や操作性の観点から、測定時の溶液中の濃度が
0.001〜15wt%となるように用いるのが好適で
あり、懸濁液の形で使用されるのが一般的である。
Although the particle size of the carrier is not particularly limited, the average particle size is 0.05 to 10 μm from the viewpoint of the easiness of aggregation after the antigen-antibody reaction and the easiness of discrimination of the aggregation.
It is preferable to use a carrier. The amount of the carrier may be appropriately determined depending on the type of the antibody or the antigen,
From the viewpoints of loading efficiency and operability, it is preferable to use the solution in a concentration of 0.001 to 15 wt% during measurement, and it is generally used in the form of a suspension.

【0013】本発明で担体に担持される抗体は、それぞ
れ検査対象となる抗原と抗原抗体反応を起こすものであ
ればよい。本発明で好適に使用される抗体を例示すれ
ば、抗α1-m抗体、抗ペプシノーゲン抗体、抗前立腺特
異抗原(PSA)抗体、抗β2-m抗体、抗フィブリノー
ゲン抗体、抗線維素分解産物(FDP)抗体、抗アルブ
ミン抗体、抗ヒトIgG抗体、抗C反応性蛋白(CR
P)抗体、抗フェリチン抗体、抗α−フェトプロテイン
(AFP)抗体、抗インシュリン抗体等が挙げられる。
The antibody carried on the carrier in the present invention may be any antibody that causes an antigen-antibody reaction with the antigen to be tested. Antibodies preferably used in the present invention include, for example, anti-α1-m antibody, anti-pepsinogen antibody, anti-prostate specific antigen (PSA) antibody, anti-β2-m antibody, anti-fibrinogen antibody, anti-fibrin degradation product (FDP) ) Antibodies, anti-albumin antibodies, anti-human IgG antibodies, anti-C-reactive protein (CR
P) antibodies, anti-ferritin antibodies, anti-α-fetoprotein (AFP) antibodies, anti-insulin antibodies and the like.

【0014】抗体を担体に担持させる方法としては、既
知の方法が特に限定されず使用できる。基本的な担持方
法としては物理的吸着法と化学的結合法があり、担持操
作の簡便性という点で物理的吸着法が好適に使用され
る。
As a method of supporting the antibody on a carrier, known methods can be used without particular limitation. Basic loading methods include a physical adsorption method and a chemical bonding method, and the physical adsorption method is suitably used in terms of the simplicity of the loading operation.

【0015】本発明の免疫学的測定試薬は、抗体を担体
に担持し、検体中の抗原と接触させておこる免疫反応に
伴う現象を利用した試薬である。ラテックス凝集法を利
用した定性試薬としては、ラテックス凝集試薬、マイク
ロタイター試薬が、定量試薬としては、凝集の度合を光
学的に測定するラテックス定量試薬が例示できる。
The immunological assay reagent of the present invention is a reagent that utilizes a phenomenon associated with an immune reaction that occurs when an antibody is carried on a carrier and brought into contact with an antigen in a sample. Examples of the qualitative reagent using the latex agglutination method include a latex agglutination reagent and a microtiter reagent, and examples of the quantitative reagent include a latex quantitative reagent that optically measures the degree of aggregation.

【0016】免疫グロブリン断片を含有させる溶液とし
ては、特に限定するものではないが、該免疫グロブリン
断片が不溶性担体上に吸着あるいは結合するのを妨げる
性質を有しないものが良い。例えば精製水、又はpH
5.0〜10.0、より好ましくはpH6.5〜8.5
の中性付近に緩衝作用を有するリン酸緩衝液、トリス緩
衝液、グッド緩衝液、グリシン緩衝液、ホウ酸緩衝液等
が例示される。また、これら緩衝液の濃度は、通常10
〜500mM、好ましくは10〜200mMの範囲から適宜
選択される。また、この溶液中には、該免疫グロブリン
断片が不溶性担体に吸着あるいは結合するのを妨げない
量であれば、例えば糖類、塩化ナトリウム等の塩類、界
面活性剤、防腐剤、タンパク質等が含まれていても良
い。
The solution containing the immunoglobulin fragment is not particularly limited, but is preferably a solution that does not prevent the immunoglobulin fragment from adsorbing or binding to an insoluble carrier. For example, purified water, or pH
5.0 to 10.0, more preferably pH 6.5 to 8.5.
Phosphate buffer, Tris buffer, Good buffer, glycine buffer, borate buffer and the like having a buffering action near neutrality are exemplified. The concentration of these buffers is usually 10
The concentration is appropriately selected from the range of -500 mM, preferably 10-200 mM. Further, in this solution, for example, sugars, salts such as sodium chloride, surfactants, preservatives, proteins, and the like are contained as long as the amount does not prevent the immunoglobulin fragments from adsorbing or binding to the insoluble carrier. May be.

【0017】本発明に使用する還元剤は、特に特定する
ものではなく、還元作用を有するものであれば良い。例
えば2−メルカプトエタノール、2−メルカプトエチル
アミン塩酸塩、ジチオスレイトール(DTT)などが挙
げられる。また、これらの濃度としては、免疫グロブリ
ンを半分子に還元できる濃度であれば良く、抗体の性質
により適宜選択される。また、より還元作用を有効にす
るために、その反応液中に尿素、ドデシル硫酸ナトリウ
ム(SDS)、TritonX等の変性剤を用いてもよ
く、その濃度は抗体の性質により適宜選択される。
The reducing agent used in the present invention is not particularly specified, but may be any as long as it has a reducing action. For example, 2-mercaptoethanol, 2-mercaptoethylamine hydrochloride, dithiothreitol (DTT) and the like can be mentioned. The concentration may be any concentration that can reduce immunoglobulins to half molecules, and is appropriately selected depending on the properties of the antibody. Further, in order to make the reducing action more effective, a denaturant such as urea, sodium dodecyl sulfate (SDS), Triton X or the like may be used in the reaction solution, and the concentration thereof is appropriately selected depending on the properties of the antibody.

【0018】本発明に用いる上記免疫グロブリン断片
は、ドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリルアミドゲル
電気泳動(SDS−PAGE)法で分析することによっ
て判別できる。電気泳動像は、還元剤未処理免疫グロブ
リンをサンプルとした場合、分子量約150,000で
あるが、断片化したサンプルは、分子量約70,000
前後に確認できる。また、免疫グロブリン断片を不溶性
担体に物理的に担持させた後、界面活性剤等で単離した
場合においても、ドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリ
ルアミドゲル電気泳動(SDS−PAGE)法で分析す
ることによって判別できる。
The immunoglobulin fragment used in the present invention can be determined by analyzing it by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). The electrophoresis image shows a molecular weight of about 150,000 when immunoglobulin not treated with a reducing agent was used as a sample, but a fragmented sample had a molecular weight of about 70,000.
You can check before and after. In addition, when the immunoglobulin fragment is physically supported on an insoluble carrier and then isolated with a surfactant or the like, the immunoglobulin fragment is identified by analysis by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). it can.

【0019】次に本発明の免疫凝集反応試薬の例として
ラテックス定量試薬の試薬形態を示すが、例示における
各物質の濃度は、試薬として使いやすい範囲を例示する
ものであって、本発明を限定するものではない。
Next, a reagent form of a latex quantitative reagent will be described as an example of the immunoagglutination reagent of the present invention. It does not do.

【0020】下記(1)、(2)及び(3)を基本成分
とする混合液 (1)緩衝液 20〜1000mM、pH4〜12 (2)免疫グロブリン断片を担持した担体0.01〜
0.5%(w/v) (3)塩化ナトリウム 50〜300mM 緩衝液としては、トリス緩衝液、リン酸緩衝液、グリシ
ン緩衝液、ホウ酸緩衝液又はグッド緩衝液等が例示でき
る。
A mixed solution containing the following components (1), (2) and (3) as basic components: (1) Buffer solution: 20 to 1000 mM, pH 4 to 12 (2) Carrier supporting immunoglobulin fragment 0.01 to
0.5% (w / v) (3) Examples of the 50 to 300 mM sodium chloride buffer include Tris buffer, phosphate buffer, glycine buffer, borate buffer and Good buffer.

【0021】上記試薬の製造方法の例としては次の方法
が例示できる。まずラテックス粒子を0.5〜10%
(w/v)懸濁した緩衝液に、免疫グロブリン断片を
0.05〜100mg/ml含む緩衝液を混合した後、
30分〜48時間、4〜60℃の条件で振とうする。そ
の後に遠心分離等により担体と溶液を分離し未結合の免
疫グロブリン断片を除去する。得られたラテックス粒子
を上記の緩衝液で洗浄することにより、目的の免疫グロ
ブリン断片担持ラテックス粒子が得られる。なお、ここ
でブロッキング処理、すなわち反応に関わらないタンパ
ク質、例えば、ウシ血清アルブミン(以下BSAと略
す)、乳タンパク質、卵白アルブミンおよびその変性物
などを含有する溶液中に浸漬する処理を行い、測定時の
非特異反応を防ぐことが望ましい。次に測定に必要なだ
けの分散性保持するための分散媒を添加し、担体を緩衝
液に分散させ上記試薬とする。
As an example of the method for producing the above reagent, the following method can be exemplified. First, 0.5 to 10% latex particles
(W / v) After mixing a buffer containing 0.05 to 100 mg / ml of the immunoglobulin fragment with the suspended buffer,
Shake for 30 minutes to 48 hours at 4 to 60 ° C. Thereafter, the carrier and the solution are separated by centrifugation or the like to remove unbound immunoglobulin fragments. By washing the obtained latex particles with the above buffer solution, the desired immunoglobulin fragment-carrying latex particles can be obtained. Here, a blocking treatment, that is, a treatment of immersing in a solution containing proteins not involved in the reaction, for example, bovine serum albumin (hereinafter abbreviated as BSA), milk protein, ovalbumin, and denatured products thereof, is performed. It is desirable to prevent non-specific reactions. Next, a dispersion medium for maintaining the dispersibility required for the measurement is added, and the carrier is dispersed in a buffer solution to obtain the above reagent.

【0022】次に本発明の免疫グロブリン断片の製造方
法を以下に例示する。まず、免疫グロブリン0.05〜
100mg/mlを含む上記緩衝液を脱酸素状態、例え
ば減圧状態で脱気する。還元剤、例えば2−メルカプト
エタノールを1〜20μl、抗体の性質等に合わせて適
宜選択する、を添加した後30分〜48時間、4〜60
℃、好ましくは20〜37℃の条件でインキュベートす
る。その後、フリーのSH基をブロックするもの例え
ば、N−エチルマレイミド等を適宜添加してSH基の再
会合を防止する。EDTAを添加した緩衝液を用いて、
分子量分画用のカラム等を使用することにより、目的と
する免疫グロブリン断片を分取する。
Next, a method for producing the immunoglobulin fragment of the present invention will be described below. First, immunoglobulin 0.05 ~
The buffer containing 100 mg / ml is degassed in a deoxygenated state, for example, under reduced pressure. 30 minutes to 48 hours after adding a reducing agent, for example, 1 to 20 μl of 2-mercaptoethanol, which is appropriately selected according to the properties of the antibody, 4 to 60
C., preferably at 20 to 37.degree. Thereafter, a substance that blocks a free SH group, for example, N-ethylmaleimide or the like is appropriately added to prevent re-association of the SH group. Using a buffer containing EDTA,
The target immunoglobulin fragment is collected by using a column for molecular weight fractionation or the like.

【0023】[0023]

【実施例】以下、実施例を上げて本発明を詳細に説明す
るが、本発明はこれらの実施例に記載の範囲に限定され
るものではない。
EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be described in detail with reference to examples, but the present invention is not limited to the scope described in these examples.

【0024】実施例1 (1)抗ヒト前立腺特異抗原抗体(抗ヒトPSA抗体)
の還元処理。 抗ヒトPSAモノクローナル抗体A、B、C、Dをそれ
ぞれ10mg/mlの濃度になるようpH7.2の0.
01Mリン酸緩衝液(以下PBSと略す)にて調製し、
1mlに対し1.5μlの2−メルカプトエタノール
(和光純薬工業)を添加する。37℃で90分インキュ
ベートした後、N−エチルマレイミド(Sigma)を
0.01mg添加する。37℃で10分インキュベート
した後、Superdex200(ファルマシア)カラ
ムを用いて、20mMのEDTA、0.1Mリン酸緩衝
液でゲル濾過する事により目的の分画を得ることができ
る。この免疫グロブリン断片を以下の調製に使用した。
Example 1 (1) Anti-human prostate specific antigen antibody (anti-human PSA antibody)
Reduction process. The anti-human PSA monoclonal antibodies A, B, C, and D were each adjusted to a concentration of 10 mg / ml at a pH of 0.2.
Prepared in 01M phosphate buffer (hereinafter abbreviated as PBS),
1.5 μl of 2-mercaptoethanol (Wako Pure Chemical Industries) is added to 1 ml. After incubating at 37 ° C. for 90 minutes, 0.01 mg of N-ethylmaleimide (Sigma) is added. After incubation at 37 ° C. for 10 minutes, the desired fraction can be obtained by gel filtration using a Superdex 200 (Pharmacia) column with 20 mM EDTA and 0.1 M phosphate buffer. This immunoglobulin fragment was used for the following preparation.

【0025】(2)還元処理による断片化抗PSA抗体
担持ラテックス懸濁液の調製。 平均粒径0.3μmのポリスチレン粒子をpH7.2の
PBSで希釈してラテックス濃度が5%(w/v)の懸
濁液を2ml調製した。次いで上記の断片化した抗PS
Aのモノクローナル抗体をPBSで希釈した溶液(10
mg/ml)を1ml加え混合した。37℃で4時間振
とうした後、未反応の抗体を遠心分離により除去し、B
SA5%を含む水溶液1mlを添加した。次いで99m
lの0.1M塩化ナトリウムと0.1%アジ化ナトリウ
ムを含むpH8.0の0.1MのHEPES緩衝液(以
下この混合液をHEPES−Sと略す)を加えて懸濁し
て調製した。
(2) Preparation of a fragmented anti-PSA antibody-carrying latex suspension by reduction treatment. Polystyrene particles having an average particle diameter of 0.3 μm were diluted with PBS having a pH of 7.2 to prepare 2 ml of a suspension having a latex concentration of 5% (w / v). Then the above fragmented anti-PS
A solution obtained by diluting the monoclonal antibody of A with PBS (10
(mg / ml) was added and mixed. After shaking at 37 ° C. for 4 hours, unreacted antibodies were removed by centrifugation.
1 ml of an aqueous solution containing 5% of SA was added. Then 99m
1 M of a 0.1 M HEPES buffer solution containing 0.1 M sodium chloride and 0.1% sodium azide at pH 8.0 (hereinafter, this mixed solution is abbreviated as HEPES-S) was added to prepare a suspension.

【0026】(3)PSA被検液の調製。 0.1MのHEPES−S、PSA抗原溶液を0.1M
のHEPES−Sで希釈して、0,0. 21,0.8
6,2.59,7.77,23.3,70,210ng
/mlに調製して被検液とした。
(3) Preparation of PSA test solution. 0.1 M HEPES-S, PSA antigen solution was added to 0.1 M
And diluted with HEPES-S to a concentration of 0.0,0. 21,0.8
6,2.59,7.77,23.3,70,210ng
/ Ml and used as a test solution.

【0027】(4)測定法。 上記懸濁液300μlに被検液20μlをプラスチック
セル内で添加攪拌した後、37℃で約10分間の波長5
46nmにおける吸光度変化量を測定した。以上の操作
には、自動分析装置日立7070を使用した。
(4) Measurement method. After adding 20 μl of the test solution to 300 μl of the above suspension in a plastic cell and stirring, the wavelength 5 at 37 ° C. for about 10 minutes was added.
The amount of change in absorbance at 46 nm was measured. The automatic analyzer Hitachi 7070 was used for the above operations.

【0028】(5)吸光度変化量との関係。 上記PSA被検液を上記調製試薬、還元処理により断片
化した抗PSA抗体担持ラテックス懸濁液で測定し、結
果を表1に示した。
(5) Relationship with the change in absorbance. The PSA test solution was measured with the above-prepared reagent and the anti-PSA antibody-carrying latex suspension fragmented by the reduction treatment, and the results are shown in Table 1.

【0029】比較例1 (1)抗PSA抗体担持ラテックス懸濁液の調製。 平均粒径0.3μmのポリスチレン粒子をPBSで希釈
してラテックス濃度が5%(w/v)の懸濁液を2ml
調製した。次いで抗PSAのモノクローナル抗体をPB
Sで希釈した溶液(10mg/ml)を1ml加え混合
した。37℃で4時間振とうした後、未反応の抗体を遠
心分離により除去し、BSA5%を含む水溶液1mlを
添加した。次いで99mlの0.1M塩化ナトリウムと
0.1%アジ化ナトリウムを含むpH8.0の0.1M
のHEPES−Sを加えて懸濁して調製した。
Comparative Example 1 (1) Preparation of anti-PSA antibody-carrying latex suspension. A polystyrene particle having an average particle diameter of 0.3 μm is diluted with PBS to give a suspension having a latex concentration of 5% (w / v) in 2 ml.
Prepared. Then, the anti-PSA monoclonal antibody was
1 ml of a solution (10 mg / ml) diluted with S was added and mixed. After shaking at 37 ° C. for 4 hours, unreacted antibodies were removed by centrifugation, and 1 ml of an aqueous solution containing 5% BSA was added. Then, 0.1 ml of pH 8.0 containing 99 ml of 0.1 M sodium chloride and 0.1% sodium azide.
Was prepared by adding and suspending HEPES-S.

【0030】(2)PSA被検液の調製及び測定。 調製及び測定は、断片化PSA抗体担持ラテックスと同
様に行った。結果を表1に示す。
(2) Preparation and measurement of PSA test solution. Preparation and measurement were performed in the same manner as for the fragmented PSA antibody-carrying latex. Table 1 shows the results.

【0031】[0031]

【表1】 [Table 1]

【0032】実施例2 (1)抗ヒトアルブミン抗体(抗ヒトAlb抗体)の還
元処理。 抗ヒトAlbモノクローナル抗体Aを10mg/mlの
濃度になるよう0.01Mリン酸緩衝液(pH7.2)
にて調製し、1mlに対し1.5μlの2−メルカプト
エタノール(和光純薬工業)を添加する。37℃で90
分インキュベートした後、N−エチルマレイミド(Si
gma)を0.01mg添加する。37℃で10分イン
キュベートした後、Superdex200(ファルマ
シア)カラムを用いて、20mMのEDTA、0.1M
リン酸緩衝液でゲル濾過することにより目的の分画を得
ることができる。この免疫グロブリン断片を以下の調製
に使用した。
Example 2 (1) Reduction treatment of anti-human albumin antibody (anti-human Alb antibody). Anti-human Alb monoclonal antibody A was adjusted to a concentration of 10 mg / ml in a 0.01 M phosphate buffer (pH 7.2).
And 1.5 μl of 2-mercaptoethanol (Wako Pure Chemical Industries) is added to 1 ml. 90 at 37 ° C
After incubating for N minutes, N-ethylmaleimide (Si
gma) is added at 0.01 mg. After incubating at 37 ° C. for 10 minutes, 20 mM EDTA, 0.1 M was prepared using a Superdex200 (Pharmacia) column.
The desired fraction can be obtained by gel filtration with a phosphate buffer. This immunoglobulin fragment was used for the following preparation.

【0033】(2)抗ヒトAlb抗体Facbフラグメ
ントの還元処理。 抗ヒトAlbモノクローナル抗体Aを10mg/mlの
濃度になるようPBSにて調製し、塩酸でpHを2.5
に調製する。30℃で60分間インキュベートした後、
水酸化ナトリウムでpHを7.0に戻し、37℃で90
分間インキュベートすることで、Facbフラグメント
を得る。このフラグメント溶液1mlに対し1.5μl
の2−メルカプトエタノール(和光純薬工業)を添加す
る。37℃で90分インキュベートした後、N−エチル
マレイミド(Sigma)を0.01mg添加する。3
7℃で10分インキュベートした後、Superdex
200(ファルマシア)カラムを用いて、20mMのE
DTA、0.1Mリン酸緩衝液でゲル濾過する事により
目的の分画を得ることができる。この免疫グロブリン断
片を以下の調製に使用した。
(2) Reduction treatment of anti-human Alb antibody Facb fragment. Anti-human Alb monoclonal antibody A was prepared in PBS to a concentration of 10 mg / ml, and the pH was adjusted to 2.5 with hydrochloric acid.
To be prepared. After incubating at 30 ° C for 60 minutes,
The pH is returned to 7.0 with sodium hydroxide and
Incubate for minutes to obtain the Facb fragment. 1.5 μl per 1 ml of this fragment solution
Of 2-mercaptoethanol (Wako Pure Chemical Industries) is added. After incubating at 37 ° C. for 90 minutes, 0.01 mg of N-ethylmaleimide (Sigma) is added. 3
After incubation at 7 ° C for 10 minutes, Superdex
20 mM E using a 200 (Pharmacia) column
The desired fraction can be obtained by gel filtration with DTA and 0.1 M phosphate buffer. This immunoglobulin fragment was used for the following preparation.

【0034】(3)還元処理による断片化抗Alb抗体
担持ラテックス懸濁液の調製。 平均粒径0.12μmのポリスチレン粒子をPBSで希
釈してラテックス濃度が5%(w/v)の懸濁液を2m
l調製した。次いで(1)で断片化した抗Albのモノ
クローナル抗体をPBSで希釈した溶液(10mg/m
l)を1ml加え混合した。37℃で4時間振とうした
後、未反応の抗体を遠心分離により除去し、BSA5%
を含む水溶液1mlを添加した。次いで99mlの0.
1M塩化ナトリウムと0.1%アジ化ナトリウムを含む
pH8.0の0.1MのHEPESを加えて懸濁して調
製した。
(3) Preparation of a latex suspension carrying a fragmented anti-Alb antibody by reduction treatment. Polystyrene particles having an average particle size of 0.12 μm are diluted with PBS to give a suspension having a latex concentration of 5% (w / v) in 2 m.
1 was prepared. Next, a solution (10 mg / m2) of the anti-Alb monoclonal antibody fragmented in (1) diluted with PBS
l) was added and mixed. After shaking at 37 ° C. for 4 hours, unreacted antibodies were removed by centrifugation, and BSA 5%
1 ml of an aqueous solution containing Then 99 ml of 0.
It was prepared by adding and suspending 0.1 M HEPES (pH 8.0) containing 1 M sodium chloride and 0.1% sodium azide.

【0035】(4)Facbフラグメントの還元処理によ
る断片化抗Alb抗体担持ラテックス懸濁液の調製。 平均粒径0.12μmのポリスチレン粒子をPBSで希
釈してラテックス濃度が5%(w/v)の懸濁液を2m
l調製した。次いで上記(2)で断片化した抗Albの
モノクローナル抗体をPBSで希釈した溶液(10mg
/ml)を1ml加え混合した。37℃で4時間振とう
した後、未反応の抗体を遠心分離により除去し、BSA
5%を含む水溶液1mlを添加した。次いで99mlの
0.1M塩化ナトリウムと0.1%アジ化ナトリウムを
含むpH8.0の0.1MのHEPESを加えて懸濁し
て調製した。
(4) Preparation of a latex suspension carrying a fragmented anti-Alb antibody by reducing the Facb fragment. Polystyrene particles having an average particle size of 0.12 μm are diluted with PBS to give a suspension having a latex concentration of 5% (w / v) in 2 m.
1 was prepared. Next, a solution (10 mg) of the anti-Alb monoclonal antibody fragmented in the above (2) diluted with PBS was used.
/ Ml) was added and mixed. After shaking at 37 ° C for 4 hours, unreacted antibodies were removed by centrifugation, and BSA was removed.
1 ml of an aqueous solution containing 5% was added. Next, 99 ml of 0.1 M sodium chloride and 0.1% sodium azide containing 0.1 M HEPES at pH 8.0 were added to prepare a suspension.

【0036】(5)Alb被検液の調製。 0.1MのHEPES−S、Alb抗原溶液を0.1M
のHEPES−Sで希釈して、0.2,0.4,0.
8,3.1,6.3,25,50μg/mlに調製して
被検液とした。
(5) Preparation of Alb test solution. 0.1 M HEPES-S, Alb antigen solution
Diluted with HEPES-S at 0.2, 0.4, 0.
8, 3.1, 6.3, 25, and 50 μg / ml were prepared as test liquids.

【0037】(6)測定法。 上記懸濁液300μlに被検液5μlをプラスチックセ
ル内で添加攪拌した後、37℃で約5分間の波長660
nmにおける吸光度変化量を測定した。以上の操作に
は、自動分析装置日立7070を用いた。
(6) Measurement method. 5 μl of the test solution was added to 300 μl of the above suspension in a plastic cell, and the mixture was stirred.
The change in absorbance at nm was measured. For the above operation, an automatic analyzer Hitachi 7070 was used.

【0038】(7)吸光度変化量との関係。 上記Alb被検液を上記調製試薬で測定した結果を表2
及び図1に示した。
(7) Relationship with change in absorbance. Table 2 shows the results of the measurement of the Alb test solution with the prepared reagent.
And FIG.

【0039】比較例2 (1)抗ヒトAlb抗体担持ラテックス懸濁液の調製。 平均粒径0.12μmのポリスチレン粒子を以下PBS
で希釈してラテックス濃度が5%(w/v)の懸濁液を
2ml調製した。次いで抗Albのモノクローナル抗体
A、BをPBSで希釈した溶液(10mg/ml)を1
ml加え混合した。37℃で4時間振とうした後、未反
応の抗体を遠心分離により除去し、BSA5%を含む水
溶液1mlを添加した。次いで99mlの0.1M塩化
ナトリウムと0.1%アジ化ナトリウムを含むpH8.
0の0.1MのHEPES−Sを加えて懸濁して調製し
た。
Comparative Example 2 (1) Preparation of latex suspension carrying anti-human Alb antibody. Polystyrene particles having an average particle size of 0.12 μm
To prepare a 2 ml suspension having a latex concentration of 5% (w / v). Then, a solution (10 mg / ml) of monoclonal antibodies A and B of anti-Alb diluted with PBS was added to 1
ml was added and mixed. After shaking at 37 ° C. for 4 hours, unreacted antibodies were removed by centrifugation, and 1 ml of an aqueous solution containing 5% BSA was added. Then pH 8, containing 99 ml of 0.1 M sodium chloride and 0.1% sodium azide.
The suspension was prepared by adding 0.1M HEPES-S to the suspension.

【0040】(2)Alb被検液の調製及び測定。 Alb被検液の調製並びに上記抗ヒトAlb抗体担持ラ
テックス懸濁液による測定は、実施例2と同様に行い、
結果を表2及び図1に示した。
(2) Preparation and measurement of Alb test solution. Preparation of the Alb test solution and measurement using the anti-human Alb antibody-carrying latex suspension were performed in the same manner as in Example 2.
The results are shown in Table 2 and FIG.

【0041】[0041]

【表2】 [Table 2]

【0042】実施例3 (1)抗ヒトペプシノーゲンII抗体(抗ヒトPGII
抗体)の還元処理。 抗ヒトPGIIモノクローナル抗体Aを10mg/ml
の濃度になるようPBSにて調製し、1mlに対し1.
5μlの2−メルカプトエタノール(和光純薬工業)を
添加する。37℃で90分インキュベートした後、N−
エチルマレイミド(Sigma)を0.01mg添加す
る。37℃で10分インキュベートした後、Super
dex200(ファルマシア)カラムを用いて、20m
MのEDTA、0.1Mリン酸緩衝液でゲル濾過する事
により目的の分画を得ることができる。この免疫グロブ
リン断片を以下の調製に使用した。
Example 3 (1) Anti-human pepsinogen II antibody (anti-human PGII
Antibody). 10 mg / ml anti-human PGII monoclonal antibody A
Prepared in PBS to a concentration of 1.
Add 5 μl of 2-mercaptoethanol (Wako Pure Chemical Industries). After 90 minutes incubation at 37 ° C, N-
Add 0.01 mg of ethylmaleimide (Sigma). After incubation at 37 ° C. for 10 minutes, Super
20 m using a dex200 (Pharmacia) column
The desired fraction can be obtained by gel filtration with M EDTA and 0.1 M phosphate buffer. This immunoglobulin fragment was used for the following preparation.

【0043】(2)還元処理による断片化抗ヒトPGI
I抗体担持ラテックス懸濁液の調製。 平均粒径0.3μmのポリスチレン粒子をPBSで希釈
してラテックス濃度が5%(w/v)の懸濁液を2ml
調製した。次いで前記(1)で断片化した抗ヒトPGI
Iモノクローナル抗体をPBSで希釈した溶液(10m
g/ml)を1ml加え混合した。37℃で4時間振と
うした後、未反応の抗体を遠心分離により除去し、BS
A5%を含む水溶液1mlを添加した。次いで99ml
の0.1M塩化ナトリウムと0.1%アジ化ナトリウム
を含むpH8.0の0.1MのHEPESを加えて懸濁
して調製した。
(2) Anti-human PGI fragmented by reduction treatment
Preparation of I antibody-loaded latex suspension. A polystyrene particle having an average particle diameter of 0.3 μm is diluted with PBS to give a suspension having a latex concentration of 5% (w / v) in 2 ml.
Prepared. Next, the anti-human PGI fragmented in the above (1)
I monoclonal antibody diluted with PBS (10m
g / ml) was added and mixed. After shaking at 37 ° C. for 4 hours, unreacted antibodies were removed by centrifugation, and BS
1 ml of an aqueous solution containing 5% of A was added. Then 99ml
And 0.1 M HEPES at pH 8.0 containing 0.1 M sodium chloride and 0.1% sodium azide.

【0044】(3)PGII被検液の調製。 0.1MのPBS、PGII抗原溶液を0.1MPBS
で希釈して、0,1,3,10,30,100ng/m
lに調製して被検液とした。
(3) Preparation of PGII test solution 0.1 M PBS and PGII antigen solution in 0.1 M PBS
0,1,3,10,30,100ng / m
1 and used as a test solution.

【0045】(4)測定法。 試薬量:300μl、検体量:10μl、測定波長54
6nmの条件で、実施例1と同様に自動分析装置日立7
070を用いて吸光度変化量を測定した。
(4) Measurement method. Reagent volume: 300 μl, sample volume: 10 μl, measurement wavelength 54
Under the condition of 6 nm, the automatic analyzer Hitachi 7 was used in the same manner as in Example 1.
070 was used to measure the change in absorbance.

【0046】(5)吸光度変化量との関係。 上記PGII被検液を上記調製試薬で測定した。(5) Relationship with change in absorbance The PGII test solution was measured using the prepared reagent.

【0047】比較例3 未処理の抗PGIIのモノクローナル抗体AおよびBを
用いて実施例3と同様にラテックス懸濁液を調製した。
この懸濁液を使用し、実施例3と同じ条件でPGII被
検液を測定した。この結果を実施例3の結果と共に表3
及び図2に示す。
Comparative Example 3 A latex suspension was prepared in the same manner as in Example 3 using untreated monoclonal antibodies A and B of anti-PGII.
Using this suspension, a PGII test solution was measured under the same conditions as in Example 3. Table 3 shows the results together with the results of Example 3.
And FIG.

【0048】[0048]

【表3】 [Table 3]

【0049】実施例4 (1) ポリクローナル抗体である抗アルファフェトプ
ロテイン抗体(抗AFP抗体)を実施例2と同一条件で
処理し、断片化抗体(Facb)を得た。この抗体断片
及び未処理の抗AFP抗体を用いて、それぞれ実施例2
と同じ工程でラテックス懸濁液を調製し、抗AFP抗体
Facb抗体担持ラテックス懸濁液及び抗AFP抗体担
持ラテックス懸濁液を得た。
Example 4 (1) An anti-alpha fetoprotein antibody (anti-AFP antibody) as a polyclonal antibody was treated under the same conditions as in Example 2 to obtain a fragmented antibody (Facb). Using this antibody fragment and an untreated anti-AFP antibody,
A latex suspension was prepared in the same process as in Example 1 to obtain a latex suspension carrying an anti-AFP antibody Facb antibody and a latex suspension carrying an anti-AFP antibody.

【0050】(2)AFP被検液の調製。 0.1MのPBS、AFP抗原溶液を0.1MPBSで
希釈して、0,1,3,10,30,100,300,
1000ng/mlに調製して被検液とした。
(2) Preparation of AFP test solution. 0.1 M PBS, AFP antigen solution is diluted with 0.1 M PBS, and 0, 1, 3, 10, 30, 100, 300,
The test solution was prepared at 1000 ng / ml.

【0051】(4)測定法。 検体量を20μlとする以外の測定条件は、全て実施例
1と同様にして、上記AFP被検液の吸光度変化量を測
定した。結果は表4及び図3に示した。
(4) Measurement method. Except for setting the sample volume to 20 μl, the absorbance change of the AFP test solution was measured in the same manner as in Example 1. The results are shown in Table 4 and FIG.

【0052】[0052]

【表4】 [Table 4]

【0053】表1から4に示したとおり、いずれの場合
においても断片化処理することにより、反応性の良化
が、低濃度域で認められた。また高濃度域においても、
十分な反応性を有している。なお、血清を測定した時の
非特異凝集は、実施例1〜4及び比較例1〜4のいずれ
の試薬でも起こらなかった。
As shown in Tables 1 to 4, in all cases, the fragmentation treatment showed that the reactivity was improved in a low concentration range. Also, even in the high concentration range,
Has sufficient reactivity. In addition, nonspecific agglutination when measuring serum did not occur in any of the reagents of Examples 1 to 4 and Comparative Examples 1 to 4.

【0054】実施例5 (1) 断片化した抗体の分子量。 抗PSA断片化抗体を担持したラテックスを遠心分離に
より集めたものを、界面活性剤(Triton−Xな
ど)に接触させることにより担持させた抗体を剥離す
る。この溶液を試料としてPhast−system
(ファルマシア社)のSDS−PAGEにより分子量確
認を行った。
Example 5 (1) Molecular weight of fragmented antibody The latex supporting the anti-PSA fragmented antibody, collected by centrifugation, is brought into contact with a surfactant (Triton-X or the like) to release the supported antibody. This solution was used as a sample for the Phast-system
The molecular weight was confirmed by SDS-PAGE (Pharmacia).

【0055】SDS−PAGEの結果、アルブミンより
も若干下、分子量6万付近に単一のバンドを確認した。
なお、IgGの分子量である、分子量15万付近にはバ
ンドは確認できなかった。
As a result of SDS-PAGE, a single band was confirmed at a molecular weight of about 60,000 slightly below albumin.
In addition, no band could be confirmed around 150,000, which is the molecular weight of IgG.

【0056】[0056]

【発明の効果】還元処理による抗体断片を不溶性担体に
担持させることにより、低濃度域及び高濃度域の両方で
反応性が良化し、直線性の向上した免疫凝集反応試薬が
得られた。
As described above, by carrying an antibody fragment by a reduction treatment on an insoluble carrier, the reactivity was improved in both the low concentration range and the high concentration range, and an immunoagglutination reagent with improved linearity was obtained.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】断片化ALB抗体担持試薬の検量線FIG. 1. Calibration curve of fragmented ALB antibody-carrying reagent

【図2】半分子抗PGII抗体担持試薬の検量線FIG. 2: Calibration curve of half molecule anti-PGII antibody-carrying reagent

【図3】断片化抗AFP抗体担持試薬の検量線FIG. 3 Calibration curve of fragmented anti-AFP antibody-carrying reagent

Claims (7)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 還元剤で断片化した抗体分子あるいは還
元剤処理で得られた抗体断片を担持していることを特徴
とする免疫学的凝集反応試薬。
1. An immunological agglutination reagent comprising an antibody molecule fragmented with a reducing agent or an antibody fragment obtained by treatment with a reducing agent.
【請求項2】 免疫学的凝集が、ラテックス凝集である
請求項1記載の免疫学的凝集反応試薬。
2. The immunological agglutination reagent according to claim 1, wherein the immunological agglutination is latex agglutination.
【請求項3】 以下の工程からなる請求項1に記載の免
疫学的凝集反応試薬の製造方法 1)抗体を還元剤で処理して抗体断片とする。 2)1)の抗体を不溶性担体に担持させる。
3. The method for producing an immunological agglutination reagent according to claim 1, comprising the following steps: 1) treating an antibody with a reducing agent to obtain an antibody fragment; 2) The antibody of 1) is carried on an insoluble carrier.
【請求項4】 断片化した抗体分子あるいは抗体断片
が、半分子抗体、半分子抗体をFacb化したもの、又
はFacbを半分子化したものである請求項1記載の免
疫学的凝集反応試薬。
4. The immunological agglutination reagent according to claim 1, wherein the fragmented antibody molecule or antibody fragment is a half-molecule antibody, Facb-converted half-molecule antibody, or Facb-half-molecule.
【請求項5】 断片化した抗体分子あるいは抗体断片
が、2−メルカプトエタノール、2−メルカプトエチル
アミン塩酸塩、ジチオスレイトールのいずれかよって還
元されたものである請求項1記載の免疫学的凝集反応試
薬。
5. The immunological agglutination reaction according to claim 1, wherein the fragmented antibody molecule or antibody fragment is reduced by any of 2-mercaptoethanol, 2-mercaptoethylamine hydrochloride, and dithiothreitol. reagent.
【請求項6】 断片化した抗体分子あるいは抗体断片を
担体に担持する方法が、物理的吸着又は化学的結合であ
る請求項1に記載の免疫学的凝集反応試薬
6. The immunological agglutination reagent according to claim 1, wherein the method for supporting the fragmented antibody molecule or antibody fragment on a carrier is physical adsorption or chemical bonding.
【請求項7】 請求項1に記載の免疫学的凝集反応試薬
を用いる免疫学的測定方法。
7. An immunological measurement method using the immunological agglutination reagent according to claim 1.
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