[go: up one dir, main page]
More Web Proxy on the site http://driver.im/

FI116068B - Uusi selektiojärjestelmä, siinä käyttökelpoinen vektori, bakteerisolukantoja sekä menetelmä solujen valikoimiseksi - Google Patents

Uusi selektiojärjestelmä, siinä käyttökelpoinen vektori, bakteerisolukantoja sekä menetelmä solujen valikoimiseksi Download PDF

Info

Publication number
FI116068B
FI116068B FI20031319A FI20031319A FI116068B FI 116068 B FI116068 B FI 116068B FI 20031319 A FI20031319 A FI 20031319A FI 20031319 A FI20031319 A FI 20031319A FI 116068 B FI116068 B FI 116068B
Authority
FI
Finland
Prior art keywords
vector
gene
arad
seq
plasmid
Prior art date
Application number
FI20031319A
Other languages
English (en)
Swedish (sv)
Other versions
FI20031319A0 (fi
FI20031319L (fi
Inventor
Mart Ustav
Urve Toots
Andres Maennik
Tanel Tenson
Silja Laht
Maarja Adojaan
Original Assignee
Fit Biotech Oyj Plc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Fit Biotech Oyj Plc filed Critical Fit Biotech Oyj Plc
Publication of FI20031319A0 publication Critical patent/FI20031319A0/fi
Priority to FI20031319A priority Critical patent/FI116068B/fi
Priority to HK06107273.7A priority patent/HK1084975B/en
Priority to SI200432219T priority patent/SI1664305T1/sl
Priority to PL04767054T priority patent/PL1664305T3/pl
Priority to EP04767054.2A priority patent/EP1664305B1/en
Priority to US10/531,870 priority patent/US7521182B2/en
Priority to PCT/FI2004/000540 priority patent/WO2005026364A1/en
Priority to AU2004272776A priority patent/AU2004272776B2/en
Priority to CA2538863A priority patent/CA2538863C/en
Priority to PT47670542T priority patent/PT1664305E/pt
Priority to BRPI0414392-2A priority patent/BRPI0414392A/pt
Priority to EA200600585A priority patent/EA011823B1/ru
Priority to ES04767054.2T priority patent/ES2529346T3/es
Priority to NZ545937A priority patent/NZ545937A/xx
Priority to EP14191756.7A priority patent/EP2949753A1/en
Priority to DK04767054.2T priority patent/DK1664305T3/en
Priority to MXPA06002559A priority patent/MXPA06002559A/es
Priority to JP2006526650A priority patent/JP4732348B2/ja
Priority to AP2006003577A priority patent/AP1993A/xx
Priority to CN2004800336943A priority patent/CN1882692B/zh
Publication of FI20031319L publication Critical patent/FI20031319L/fi
Application granted granted Critical
Publication of FI116068B publication Critical patent/FI116068B/fi
Priority to IL173923A priority patent/IL173923A0/en
Priority to ZA200602153A priority patent/ZA200602153B/en
Priority to KR1020067005158A priority patent/KR101215245B1/ko
Priority to HK16105149.1A priority patent/HK1217111A1/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/70Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/90Isomerases (5.)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/53DNA (RNA) vaccination

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

, 116068
Uusi selektiojärjestelmä, siinä käyttökelpoinen vektori, baktee-risolukantoja sekä menetelmä solujen valikoimiseksi
Keksinnön ala
Esillä oleva keksintö koskee uutta selektiojärjestelmää, joka perus-5 tuu araD-geenin, sen komplementaarisen sekvenssin tai sen katalyyttisesti aktiivisen fragmentin käyttöön selektiomerkkinä, ja bakteerisolun, josta puuttuu araD-geeni, käyttöön. Esillä oleva keksintö koskee lisäksi uusia vektoreita, jotka sisältävät araD-geenin, sen komplementaarisen sekvenssin tai sen katalyyttisesti aktiivisen fragmentin, ja uusia bakteerikantoja, joista puuttuu araD-10 geeni. Esillä oleva keksintö koskee lisäksi menetelmää plasmidilla transformoitujen solujen valitsemiseksi, joka plasmidi sisältää mielenkiinnon kohteena olevan geenin.
Keksinnön tausta
Oleellinen edellytys bakteerien ja muiden soluviljelmissä lisättävien 15 solujen tehokkaalle geneettiselle manipuloinnille on kyky valikoida solut, joilla on spesifinen genotyypin muutos. Yleisin valintastrategia yhdistelmä-DNA- tekniikassa on sisällyttää selektiomerkki kloonausvektoriin tai -plasmidiin. Se- lektiomerkki voi olla kloonattu geeni tai DNA-sekvenssi, joka sallii selektiomer- kin sisältävien isäntäsolujen erottamisen soluista, jotka eivät sitä sisällä. Selek- 20 tiomerkki yhdessä sopivan valintaväliaineen kanssa pitää kloonausvektorin so- '·' * luissa. Muuten, koska plasmidien replikaatio on energiaa kuluttava taakka bak- ‘ : teeri-isännälle, kasvavassa viljelmässä bakteereilla, jotka ovat menettäneet • · » : V plasmidin, olisi kasvuetu plasmidin sisältäviin soluihin nähden.
Useimmissa tarkoituksissa antibioottiresistenssigeeni on yleisesti 25 käytetty selektiomerkki. Kuitenkin rekombinanttilääkkeiden valmistuksessa, jol-loin päämääränä on saada aikaan korkealla saannolla tuotetta, kuten DNA-rokotetta, annettavaksi potilaille, antibioottiresistenssigeenien käyttö aiheuttaa on-: gelmia: antibiooteille resistenttien patogeenien leviäminen on vakava maailman- ’···[ laajuinen ongelma [Levy, S. B., J. Antimicrob. Chemother. 49 (2002) 25 - 30].
• I
30 Tämän vuoksi antibioottiresistenssigeenejä ei voida laajasti käyttää farmaseut-: '· tisessa teollisuudessa, ja esimerkiksi Yhdysvaltojen terveysviraston sääntöjen mukaan antibioottiresistenssigeenit eivät ole sallittuja kokeellisissa DNA-rokotteissa, jotka menevät kolmanteen faasiin.
.···, Vaihtoehtoisesti on ehdotettu antibioottia sisältämättömiä selek- 35 tiojärjestelmiä. Tällaisia antibioottia sisältämättömiä selektiojärjestelmiä ovat 116068 2 esimerkiksi bakteeritoksiini-antitoksiinijärjestelmät [Engelberg-Kulka, H. ja Glaser, G., Annu Rev Microbiol 53 (1999) 43 - 70], geenit, jotka ovat vastuussa resistenssistä raskasmetalleja, kuten telluuria, vastaan [Silver, S. ja Phung, L. T, Annu Rev Microbiol 50 (1996) 753 - 789], ja järjestelmät, joissa 5 plasmidi koodaa geeniä, joka täydentää isännän auksotrofiaa [Wang, M.D., et ai., J. Bacteriol. 169(1987) 5610-5614], US-patenttihakemuksessa 2000/0014476 A1 esitetään yleisesti mm. ei-antibioottisen selektiomerkin käyttö, joka merkki voi olla geeni, jonka tuote on tarpeellinen solun metabolialle tietyissä viljelyolosuhteissa, kuten katabo-10 liageeni, joka mahdollistaa sen, että solu voi assimiloida tiettyä viljelyväliai-neessa läsnä olevaa ainetta (spesifinen hiili- tai typpilähde) jne. Tällaisista sopivista geeneistä ei anneta spesifisiä esimerkkejä. Tämä lähestymistapa ei välttämättä ole sovellettavissa kaupalliseen tuotantoon, sillä oleellisen komponentin, kuten aminohapon tai hiililähteen, pois jättäminen kasvatusväliai-15 neesta vähentää saantoa, mikä ei ole toivottavaa. Lisäksi kasvatusväliaineen manipulointi siten, että jätetään pois oleellinen ravintoaine, voi merkittävästi lisätä kasvatusväliaineen kustannuksia, koska kaupallisesti saatavissa olevat ravintoaineseokset on korvattava yksittäisillä ravintoaineilla.
Kaupallisissa terapeuttisissa tarkoituksissa olisi edullista käyttää 20 geeniä, joka ei ole oleellinen isännän kasvulle mutta jonka manipulointi silti vaikuttaa kasvuun valituissa olosuhteissa. Lisäksi, kun otetaan huomioon tera-peuttinen käyttö, olisi edullista käyttää geeniä, jonka poistaminen johtaa sel-laisten yhdisteiden kerääntymiseen, jotka ovat toksisia isäntäsolulle, mutta jotka eivät ole toksisia nisäkkäille ihmiset mukaan lukien. Olisi myös edullista 25 käyttää pienempiä geenejä, jotka puolestaan sallisivat pienempien plasmidien •«· rakentamisen, jolloin replikaatioon tarvittava energian kulutus on pienempi ja • · siten bakteeriviljelmän kasvunopeus ja plasmidisaanto paranevat.
Keksinnön lyhyt kuvaus • Esillä olevan keksinnön tarkoitus on antaa käyttöön uusi antibioottia ; ’ ”: 30 sisältämätön selektiojärjestelmä, jonka avulla vältetään aikaisemmin kuvattujen ,,· selektiojärjestelmien ongelmat, käytettäväksi rekombinanttien terapeuttisten : t ’ ’ tuotteiden valmistuksessa.
Keksinnön toinen tarkoitus on antaa käyttöön uusi antibioottia sisäl-tämätön selektiojärjestelmä, jota voidaan käyttää ympäristön ja potilasturvalli-.··. 35 suuden kannalta turvallisesti rekombinanttien terapeuttisten tuotteiden valmis tuksessa.
116068 3
Vielä eräs keksinnön tarkoitus on antaa käyttöön uusi antibioottia sisältämätön selektiojärjestelmä, jota voidaan käyttää kustannustehokkaasti re-kombinanttien terapeuttisten tuotteiden valmistuksessa tavanomaisia kasva-tusväliaineita käyttäen.
5 Vielä eräs keksinnön tarkoitus on antaa käyttöön uusi antibioottia si sältämätön selektiojärjestelmä, jolla saadaan aikaan lisääntynyt kasvunopeus ja parantunut saanto.
Vielä toinen esillä olevan keksinnön tarkoitus on antaa käyttöön uusi vektori, joka sisältää selektiomerkin, joka ei ole toksinen ympäristölle eikä ih-10 misille ja joka kykenee pitkäaikaiseen ylläpitoon isännässä.
Vielä toinen esillä olevan keksinnön tarkoitus on antaa käyttöön uusi isäntäsolu, joka sisältää geenivirheen, joka ei ole vahingollinen ympäristölle.
Vielä toinen esillä olevan keksinnön tarkoitus on antaa käyttöön menetelmä mielenkiinnon kohteena olevan geenin sisältävien solujen valitse-15 miseksi rekombinanttien terapeuttisten tuotteiden valmistuksessa.
Havaittiin yllättäen, että esillä olevan keksinnön tarkoitukset saavutetaan käyttämällä araD-geeniä, sen komplementaarista sekvenssiä tai sen ka-talyyttisesti aktiivista fragmenttia selektiomerkkinä ja käyttämällä spesifistä bakteeri-isäntää, josta puuttuu araD-geeni.
20 Siten esillä oleva keksintö antaa käyttöön uuden selektiojärjestel- män, joka käsittää vektorin, joka kantaa araD-geeniä eli L-ribuloosi-5-fosfaatti-4-epimeraasia (EC 5.1.3.4.) koodaavaa geeniä, sen komplementaarista sek-:· · venssiä tai sen katalyyttisesti aktiivista fragmenttia selektiomerkkinä, ja baktee- • ri-isännän, erityisesti Escherichia co//-kannan, josta puuttuu araD-geeni.
• · 25 Esillä oleva keksintö antaa lisäksi käyttöön uusia vektoreita, jotka sisältävät araD-geenin, sen komplementaarisen sekvenssin tai sen katalyytti-sesti aktiivisen fragmentin selektiomerkkinä.
*** Esillä oleva keksintö antaa lisäksi käyttöön uusia bakteerikantoja, joista puuttuu araD-geeni.
: 30 Esillä oleva keksintö antaa lisäksi käyttöön menetelmän plasmidilla ···' transformoitujen solujen valitsemiseksi, joka plasmidi sisältää 1) araD-geenin, sen komplementaarisen sekvenssin tai sen katalyyttisesti aktiivisen fragmentin selektiomerkkinä, ja 2) mielenkiinnon kohteena olevan geenin, jolloin menetelmässä insertoidaan mainittu plasmidi isäntäsoluun, josta puuttuu araD, ja : ‘‘ 35 kasvatetaan soluja kasvatusväliaineessa, joka sisältää arabinoosia.
116068 4
Piirustukset
Kuvio 1 esittää arabinoosin käytön E. coli -solujen hiililähteenä (Lin, 1987).
Kuvio 2 esittää S6wtd1EGFP:n kartan. d1EGFP:n, E2:n ja kanamy-5 siiniresistenssimerkin aminoglykosidi-3’-0-fosfotranseraasi (kana) koodaavat sekvenssit on merkitty nuolilla. Lisäpiirteet on osoitettu täytetyillä laatikoilla: 10E2BS - 10 korkean affiniteetin BPV-E2-sitoutumiskohtaa; CMV-tk - ihmisen sytomegaloviruksen välitön varhainen promoottori ja HSV-Th-geenin johtose-kvenssi; introni - kanin beetaglobiinigeenin introni, jossa on optimoidut SD- ja 10 SA-kohdat; tkpa - HSV-Tk-geenin polyadenylaatiosignaali; RSV LTR - Rousin sarkoomaviruksen pitkä terminaalinen toisto; bgh pA - naudan kasvuhormoni-geenin polyadenylaatiosignaali; pUCori - pUC18-plasmidista peräisin oleva bakteeriperäinen replikaation aloituskohta.
Kuvio 3 esittää S6wtd1EGFP/cana/araD1:n kartan. d1EGFP:n, E2:n, 15 kanamysiiniresistenssimerkin aminoglykosidi-3'-0-fosfotransferaasi (kana) ja L-ribuloosi-5-fosfaatti-4-epimeraasin (araD) koodaavat sekvenssit on merkitty nuolilla. Lisäpiirteet on osoitettu täytetyillä laatikoilla: 10E2BS - kymmenen korkean affiniteetin BPV-E2-sitoutumiskohtaa; CMV-tk - ihmisen sytomegaloviruksen välitön varhainen promoottori ja HSV-Th-geenin johtosekvenssi; 20 introni - kanin beetaglobiinigeenin introni, jossa on optimoidut SD- ja SA-kohdat; tkpa - HSV-Tk-geenin polyadenylaatiosignaali; RSV LTR - Rousin v : sarkoomaviruksen pitkä terminaalinen toisto; bgh pA - naudan kasvuhor- monigeenin polyadenylaatiosignaali; pUCori - pUC18-plasmidista peräisin ole-j va bakteeriperäinen replikaation aloituskohta.
·:*: 25 Kuvio 4 esittää S6wtd1 EGFP/cana/araD2:n kartan. d1EGFP:n, E2:n, kanamysiiniresistenssimerkin aminoglykosidi-3'-0-fosfotransferaasi (kana) ja "·. L-ribuloosi-5-fosfaatti-4-epimeraasin (araD) koodaavat sekvenssit on merkitty
I * I
nuolilla. Lisäpiirteet on osoitettu täytetyillä laatikoilla: 10E2BS - kymmenen • korkean affiniteetin BPV-E2-sitoutumiskohtaa; CMV-tk - ihmisen sytomega-30 loviruksen välitön varhainen promoottori ja HSV-Th-geenin johtosekvenssi; *; introni - kanin beetaglobiinigeenin introni, jossa on optimoidut SD- ja • ’·· SA-kohdat; tkpa - HSV-Tk-geenin polyadenylaatiosignaali; RSV LTR - Rousin sarkoomaviruksen pitkä terminaalinen toisto; bgh pA - naudan kasvuhor-monigeenin polyadenylaatiosignaali; pUCori - pUC18-plasmidista peräisin ole-35 va bakteeriperäinen replikaation aloituskohta.
116068 5
Kuvio 5 esittää S6wtd1 EGFP/araD1 :n kartan. d1EGFP:n, E2:n ja L-ribuloosi-5-fosfaatti-4-epimeraasin (araD) koodaavat sekvenssit on merkitty nuolilla. Lisäpiirteet on osoitettu täytetyillä laatikoilla: 10E2BS - kymmenen korkean affiniteetin BPV-E2-sitoutumiskohtaa; CMV-tk - ihmisen sytomega-5 loviruksen välitön varhainen promoottori ja HSV-Th-geenin johtosekvenssi; introni - kanin beetaglobiinigeenin introni, jossa on optimoidut SD- ja SA-kohdat; tkpa - HSV-Tk-geenin polyadenylaatiosignaali; RSV LTR - Rousin sarkoomaviruksen pitkä terminaalinen toisto; bgh pA - naudan kasvuhormoni-geenin polyadenylaatiosignaali; pUCori - pUC18-plasmidista peräisin oleva 10 bakteeriperäinen replikaation aloituskohta.
Kuvio 6 esittää S6wtd1EGFP/araD2:n kartan. d1EGFP:n, E2:n ja L-ribuloosi-5-fosfaatti-4-epimeraasin (araD) koodaavat sekvenssit on merkitty nuolilla. Lisäpiirteet on osoitettu täytetyillä laatikoilla: 10E2BS - kymmenen korkean affiniteetin BPV-E2 -sitoutumiskohtaa; CMV-tk - ihmisen sytomegalo-15 viruksen välitön varhainen promoottori ja HSV-Th-geenin johtosekvenssi; introni - kanin beetaglobiinigeenin introni, jossa on optimoidut SD- ja SA-kohdat; tkpa - HSV-Tk-geenin polyadenylaatiosignaali; RSV LTR - Rousin sarkoomaviruksen pitkä terminaalinen toisto; bgh pA - naudan kasvuhor-monigeenin polyadenylaatiosignaali; pUCori - pUC18-plasmidista peräisin ole-20 va bakteeriperäinen replikaation aloituskohta.
Kuvio 7A ja 7B esittävät S6wtd1EGFP/araD1:n (7A) ja v ' S6wtd1EGFP/araD2:n (7B) plasmidi-DNA:n, joka on uutettu E. coli -kannasta ':·*! AG1 delta araD ja kasvatettu eri väliaineissa, elektroforeettisen analyysin.
Kuvio 8 esittää S6wtd1EGFP/araD1:n ja S6wtd1EGFP/araD2:n
• I
25 plasmidi-DNA:n, joka on uutettu E. coli -kannasta AG1 delta araD, restriktio-mallianalyysin.
Kuvio 9 esittää S6wtd1EGFP/araD2:n elektroforeettisen analyysin I » stabiiliusmäärityksessä.
, , Kuvio 10A ja 10B esittävät S6wtd1EGFP/araD2:n restriktiomalliana- : 30 lyysin stabiiliusmäärityksessä.
' ' Kuvio 11 esittää AGIAaraD S6wtd1 EGFP/araD2:n syöttöpanosfer- mentaation kasvuparametrit, jotka mitattiin ja rekisteröitiin fermentaation aika--. na. Lyhenteet ovat seuraavat: sPump = syöttönopeus; p02 = hapen konsent- raatio; Temp = kasvulämpötila; mys = haluttu kasvunopeus; OD = absorbanssi * 35 aallonpituudella 600nm.
116068 6
Kuvio 12 esittää AGIAaraD S6wtd1EGFP/araD2:n hajotus- ja puh-distuskaavion.
Keksinnön yksityiskohtainen kuvaus
Esillä oleva keksintö perustuu pyrkimykseen löytää vaihtoehtoinen 5 antibioottia sisältämätön selektiojärjestelmä, jota voitaisiin käyttää sellaisten rekombinanttien terapeuttisten tuotteiden tuotannossa, jotka on tarkoitettu annettaviksi in vivo, erityisesti DNA-rokotteiden tuotannossa. Yllättäen havaittiin, että araD-geeniä, joka on mukana pentoosifosfaattireitissä sekä prokaryootti-sissa että eukaryoottisissa organismeissa, kuten nisäkkäissä ihmiset mukaan 10 lukien, voidaan käyttää menestyksekkäästi selektiomerkkinä auksotrofisessa isäntäsolussa plasmidille. Auksotrofian käytöllä on se etu, ettei siinä käytetä eikä siinä muodostu toksisia aineita, jotka myöhemmin voisivat kontaminoida plasmidivalmisteen.
Tehokas selektiojärjestelmä, joka perustuu araD/araC-geeneihin, on 15 rakennettu [Ariza, R. R., et ai., Carcinogenesis 14 (1993) 303-305]. Tätä selek-tiojärjestelmää on kuitenkin käytetty tutkittaessa mutageneesin mekanismeja, mutta sitä ei ole aikaisemmin käytetty selektiomerkkinä plasmidin ylläpidosta. Ariza et ai. käyttivät kantaa, jossa araC-geeni sisältää terminaatiokodonin ja araD-geeni on inaktivoitu. supF-geenin tuote, joka koodaa suppressori-20 tRNA:ta, vietiin plasmidiin. Aktiivisen suppressori-tRNA:n läsnä ollessa muo-’ ‘ dostui entsymaattisesti aktiivinen tuote araC:stä, mikä aiheutti solujen kasvun pysähtymisen (koska araD oli inaktiivinen). Tämä järjestelmä sallii mutaatioi- I » * : V den suppression tutkimisen supF-tRNA:n avulla: kun supf inaktivoidaan mu- taatiolla, solut voivat kasvaa arabinoosilla. Siten tämä selektiojärjestelmä pe-25 rustuu araC-geeniin eikä araD-geeniin. araD:tä ei viety plasmidiin, eikä järjes-telmää kuvattu eikä karakterisoitu plasmidien tuotantotarkoituksiin.
* · » araD-geeni koodaa entsyymiä, joka on vastuussa ribuloosi-5-: fosfaatin epimerisaatiosta ksyluloosi-5-fosfaatiksi (kuvio 1), ja siten sallii ara- binoosin käytön pentoosifosfaattireitissä [Engelsberg, E., et ai., J. Bacteriol. 84: T 30 (1962) 137-146]. Jos araD inaktivoidaan, ribuloosi-5-fosfaattia kerääntyy bak- : teerisoluun, mikä johtaa kasvun pysähtymiseen.
, , Jos araD:n kromosomaalinen kopio inaktivoidaan isäntäsolussa ja : \ koskematon kopio araD-geenistä, sen komplementaarisesta sekvenssistä tai sen katalyyttisestä aktiivisesta fragmentista insertoidaan plasmidiin, saavute-“ 35 taan plasmidia sisältävien solujen kasvuetu väliaineessa, joka sisältää L-arabinoosi, tuloksena kahdesta vaikutuksesta. Ensiksi, plasmidia sisältävät 116068 7 solut voivat käyttää arabinoosia hiililähteenä, ja toiseksi, toksista ribuloosi-5-fosfaattia ei keräänny. Tämä sallii arabinoosilla täydennetyn rikkaan kasvatus-väliaineen käytön. Rikkaissa väliaineissa E. coli -solut kasvavat nopeasti ja plasmidisaanto on korkea. Hinnaltaan edullisia bakteerien kasvatusväliainei-5 den standardikomponentteja, kuten hiivauutetta, voidaan käyttää aminohappo-lähteenä. Ribuloosi-5-fosfaattijäämät, jotka teoreettisesti voisivat kontaminoida plasmidivalmisteen, eivät ole ongelma, kun valmiste annetaan in vivo, sillä ih-missolut voivat tehokkaasti metaboloida ribuloosi-5-fosfaattia, eikä se ole toksinen.
10 Keksintö koskee selektiojärjestelmää, joka käsittää vektorin, jossa on araD-geeni eli L-ribuloosi-5-fosfaatti-4-epimeraasin (EC 5.1.3.4.) geeni, jolla on sekvenssillä tunnusnumero 1 annettu sekvenssi, sen komplementaarinen sekvenssi tai sen katalyyttisesti aktiivinen fragmentti selektiomerkkinä, ja bakteerisolun, josta puuttuu araD-geeni. Kun spesifistä isäntää, josta puuttuu 15 araD-geeni, viljellään arabinoosin läsnä ollessa, ainoat henkiin jäävät solut ovat soluja, jotka sisältävät vektorin, joka sisältää araD-geenin, sen komplementaarisen sekvenssin tai sen katalyyttisesti aktiivisen fragmentin.
Keksinnön mukaisessa selektiojärjestelmässä voidaan käyttää mitä tahansa ekspressiovektoria, jota tavallisesti käytetään terapeuttisten tuotteiden 20 valmistuksessa, jolloin araD-geeni, sen komplementaarinen sekvenssi tai sen katalyyttisesti aktiivinen fragmentti insertoidaan vektoriin käyttäen alalla ylei-: sesti tunnettuja menetelmiä. Tässä yhteydessä araD-geeni käsittää sekvens- ·:··: sin, jota identifioi sekvenssi tunnusnumero 1, sen komplementaarinen sek- j··*,. venssi tai siihen hybridisoituva sekvenssi. Tässä yhteydessä termillä "sek- 25 venssin tunnusnumero 1 komplementaarinen sekvenssi" on sen tavanomainen merkitys ja termi "araD-geenin katalyyttisesti aktiivinen fragmentti" on mikä ta-hansa geenifragmentti, joka koodaa polypeptidiä tai proteiinia, joka kykenee epimerisoimaan L-ribuloosi-5-fosfaatin D-ksyluloosi-5-fosfaatiksi. Keksinnön erityisessä suoritusmuodossa araD-geeni, sen komplementaarinen sekvenssi • ” ’ 30 tai sen katalyyttisesti aktiivinen fragmentti insertoidaan vektoriin, joka kykenee pitkäaikaiseen ylläpitoon ja siten kykenee saamaan aikaan halutun antigeenin tai haluttujen antigeenien pysyvän ekspression.
.*·*. Siten keksintö koskee myös vektoria, joka käsittää araD-geenin, jolla on sekvenssillä tunnusnumero 1 annettu sekvenssi, sen komplementaarisen : *' 35 sekvenssin tai sen katalyyttisesti aktiivisen fragmentin selektiomerkkinä.
8 1 16068
Erityisen edullisessa keksinnön suoritusmuodossa käytetty vektori on ekspressiovektori, joka käsittää: (a) DNA-sekvenssin, joka koodaa tumaan ankkuroivaa proteiinia, joka on operatiivisesti kytketty heterologiseen promoottoriin, jolloin mainittu 5 tumaan ankkuroiva proteiini käsittää (i) DNA:ta sitovan domeenin, joka sitoutuu spesifiseen DNA-sekvenssiin, ja (ii) funktionaalisen domeenin, joka sitoutuu tuman komponenttiin, tai sen funktionaalisen ekvivalentin, ja (b) multimeroidun DNA-sekvenssin, joka muodostaa sitoutumiskohdan tumaan ankkuroivalle proteiinille, jolloin mainitusta vektorista puuttuu pa- 10 pilloomaviruksen replikaation aloituskohta, ja (c) araD-geenin, sen komplementaarisen sekvenssin tai sen kata-lyyttisesti aktiivisen fragmentin.
Tällaisia vektoreita on kuvattu yksityiskohtaisesti kansainvälisessä patenttihakemuksessa W002/090558, joka sisällytetään tähän viitteenä.
15 Edullisin esillä olevan keksinnön mukaisessa valintamenetelmässä käytetty vektori on ekspressiovektori, joka käsittää: (a) naudan papilloomaviruksen tyypin 1 (BPV) E2-proteiinin ja (b) lukuisia BPV-E2-proteiinin sitoutumispaikkoja inkorporoituna vektoriin kimppuna, jolloin paikat voivat olla päästä-häntään-rakenteita tai ne 20 voidaan sisällyttää vektoriin erillään oleviin paikkoihin, jolloin mainitusta vektorista puuttuu papilloomaviruksen replikaation aloituskohta, ja :T: (c) araD-geenin, sen komplementaarisen sekvenssin tai sen kata- ·:··· lyyttisesti aktiivisen fragmentin.
!'·*; Keksinnön mukaisessa selektiojärjestelmässä voidaan periaatteessa 25 käyttää mitä tahansa tunnettua isäntää, josta puuttuu araD-geeni ja joka on sopi- va käytettäväksi terapeuttisten tuotteiden tuotannossa. Tässä yhteydessä termi "josta puuttuu" tarkoittaa isäntää, josta araD-geeni on kokonaan poistettu tai se on inaktivoitu millä tahansa tunnetulla menetelmällä.
, . Keksinnön edullisessa suoritusmuodossa käytetään Escherichia * · « :;j : 30 co//-kantaa, edullisesti kaupallisesti saatavissa olevia E. coli -kantoja AG1 ja *··· JM109, joista araD-geeni on poistettu yleisesti tunnetuilla menetelmillä, kuten jäljempänä esimerkeissä kuvatuilla menetelmillä. Vaihtoehtoisesti voidaan käyttää kaupallisesti saatavissa olevia E. coli -kantoja AG1 ja JM 109, joissa araD-geeni on inaktivoitu millä tahansa tunnetulla menetelmällä.
• · * »· •» » 116068 9
Keksintö koskee erityisesti muunnettua E. coli -kantaa AG1 ja muunnettua E. coli -kantaa JM 109, joista puuttuu araD-geeni, jolla on sekvenssillä tunnusnumero 1 annettu sekvenssi.
Keksintö koskee lisäksi menetelmää sellaisten solujen valikoimisek-5 si, jotka on transformoitu plasmidilla, joka sisältää araD-geenin, jolla on sekvenssillä tunnusnumero 1 annettu sekvenssi, sen komplementaarisen sekvenssin tai sen katalyyttisesti aktiivisen fragmentin selektiomerkkinä ja mielenkiinnon kohteena olevan geenin, jolloin menetelmälle on tunnusomaista, että insertoidaan plasmidi isäntäsoluun, josta puuttuu araD, jolla on sekvenssillä 10 tunnusnumero 1 annettu sekvenssi, ja viljellään soluja kasvatusväliaineessa, joka sisältää arabinoosia. Menetelmässä sellaisten solujen valikoimiseksi, jotka sisältävät mielenkiinnon kohteena olevan geenin, rekombinanttien terapeuttisten tuotteiden tuottamiseksi, mielenkiinnon kohteena oleva geeni insertoidaan isäntäsoluun, josta puuttuu araD, käyttäen alalla hyvin tunnettuja menetelmiä 15 ja soluja viljellään kasvatusväliaineessa, joka sisältää arabinoosia, viljelyväliai-neessa ja olosuhteissa, jotka sopivat kyseiselle isännälle.
Mitä tahansa kasvatusväliainetta, joka sopii E. coli -solujen viljelyyn, voidaan käyttää. Kaupallisessa tuotannossa kasvatusväliaine luonnollisesti optimoidaan saannon suhteen. Esimerkkejä sopivista kasvatusväliaineista ovat 20 kaupallisesti saatavissa olevat kasvatusväliaineet, kuten M9 ja LB (joita on saatavissa useilta valmistajilta, kuten yhtiöstä Fermentas, Liettua). Kasvatus-:T: väliaineeseen lisättävän arabinoosin määrä ei ole kriittinen, mutta luonnollisesti ·:··· arabinoosia tulisi olla läsnä määrä, joka riittää koko viljelyajanjakson ajan.
Niinkin alhaisen määrän kuin 0,1 % on havaittu olevan riittävä selektiolle. Tyy- > » 25 pillisesti arabinoosia lisätään väliaineeseen määrä, joka on noin 0,1 - 2,0 %, ·.*. edullisesti määrä, joka on noin 0,2 -1,0 %, edullisemmin 0,2 -% 0,5 %. Kuiten- kin L-arabinoosin vaikutus havaitaan niinkin matalissa pitoisuuksissa kuin 0,01 %, ja L-arabinoosia voidaan lisätä kasvatusväliaineeseen jopa 5 %:iin asti. Erityisessä suoritusmuodossa, jossa L-arabinoosia käytetään sekä valikoivana ai-: 30 neena että rajoitettuna hiililähteenä, 0,2% L-arabinoosia on sopiva määrä lisät- *·. ‘ täväksi kasvatusväliaineeseen.
Keksinnön mukainen selektiojärjestelmä sopii käytettäväksi missä tahansa ekspressiojärjestelmässä. Se sopii erityisen hyvin käytettäväksi in vivo -käyttöön tarkoitettujen rekombinanttien terapeuttisten tuotteiden, kuten DNA- * « : ' 35 rokotteiden, ekspressiossa, koska vältetään ongelmat, jotka liittyvät antibiootti- • · 116068 10 resistenssigeenien käyttöön. Samoin keksinnön mukainen selektiojärjestelmä sopii käytettäväksi rekombinanttiproteiinien tuotannossa.
Mahdollisella valmistusmenetelmästä johtuvalla arabinoosikontami-naatiolla lopputuotteessa ei ole merkitystä, koska arabinoosi on syötäväksi 5 kelpaava sokeri, jota on luonnostaan ja lisäaineena ruoka-aineissa ja siten se ei ole toksinen nisäkkäille ihminen mukaan lukien.
Lisäksi araD-geeni on kooltaan pienempi kuin tavallisesti käytetyt antibioottiresistenssigeenit esim. ampisilliniä ja tetrasykliiniä vastaan ja samankokoinen kuin kanamysiini- ja kloramfenikoliresistenssigeenit. Tämä antaa 10 lisäedun, sillä se sallii pienempien plasmidien rakentamisen, joiden plasmidien replikaatioon käyttämä energiankulutus on pienempi kuin isoilla plasmideilla. Tällöin sekä bakteeriviljelmän kasvunopeus että plasmidisaanto kasvavat.
Esillä oleva keksintö voidaan ymmärtää paremmin seuraavien ei-rajoittavien, esimerkkeinä keksinnöstä annettujen esimerkkien perusteella.
15 Seuraavat esimerkit annetaan keksinnön edullisten suoritusmuotojen valaisemiseksi täydellisemmin. Niitä ei kuitenkaan tule pitää mitenkään keksinnön laajaa suoja-alaa rajoittavina.
Esimerkki 1 araD-selektioplasmidien kloonaus 20 araD-selektiokonstruktien kloonaamiseksi käytettiin plasmidia « · · S6wtd1EGFP (kuvio 2). Siinä on pMB1- replikaation aloituskohta ja kanamysii- • · .. . niresistenssimerkki funktionaalisina elementteinä plasmidirungossa. Kanamy- ' siiniresistenssin näissä plasmideissa tuottaa geeni, joka on peräisin E.coli - - ·»«· transposonista Tn903.
• » • ‘ 25 araD-geeni monistettiin käyttäen polymeraasiketjureaktiota (PCR) E. coli DH5a:n kromosomista standardimenetelmän mukaisesti. PCR-tuote kloonattiin valittuihin plasmideihin kahdessa eri orientaatiossa alu-·,; j kepareilla s6araDL1 + s6araDR1 tai s6araDL1 + s6araDR1, jota saivat aikaan tuotteet, jotka nimettiin araD1:ksi ja vastaavasti araD2:ksi: 30 s6araDL1:
;..! ’ CGCCAT GGTT CT CAT GTTT GACAGCTTAT CAT CGAT AAGCTTT A
* ·; · * ATGCGGTAGl I IAGCACGAAGGAGTCAACATG (sekvenssi tunnusnumero 2); i ' . s6araDR1:
:;;;: CGCCATGGACTAGTAAAAAAAAGCCCGCTCATTAGGCGGGCT
35 GTCATTACTGCCCGTAATATGC (sekvenssi tunnusnumero 3); 116068 11 s6araDL2: CGCCAT GG ACTAGTT CT CAT GTTT G ACAGCTT AT CAT CG AT MG CTTT AAT G CG GTAGTTT AGCACG AAG G AGT CAACAT G (sekvenssi tunnusnumero 4); 5 s6araDR2: CGCCATGGAAAAAAAAGCCCGCTCATTAGGCGGGCTGTCAT-TACTGCCCG (sekvenssi tunnusnumero 5);
Alukkeet suunniteltiin siten, että P2-promoottori plasmidista pBR322 (jota käytettiin tetrasykliiniresistenssigeenin ajamiseksi pBR322:een) ja termi-10 naatiosekvenssi E. colin trp-operonista lisättiin PCR:n aikana ylävirtaan ja vastaavasti alavirtaan araD:ta koodaavasta sekvenssistä.
814 ja 815 emäsparin PCR-tuotteet kloonattiin pUC18-vektoriin, joka oli linearisoitu Hindi:lla (Fermentas, Liettua) ja oikeat sekvenssit varmistettiin sekvensoimalla käyttäen universaaleja sekvensointialukkeita 15 M13F22: GCCAGGGTTTTCCCAGTCACGA (sekvenssi tunnusnumero 6) ja M13R24: GAGCGGATAACAATTTCACACAGG (sekvenssi tunnusnumero 7) ja araD-spesifisiä alukkeita 20 araDF311: CCAACTCACCGGCTGCTCTATC (sekvenssi tunnusnumero 8), araD F614: ·:·· AATGCCGAAGATGCGGTGCATAAC (sekvenssi tunnusnumero 9), araD R700: • · 25 TAACTGCGGCGCTAACTGAC (sekvenssi tunnusnumero), ja » * ;v< araDR421: GGTTGCTGGAATCGACTGAC (sekvenssi tunnusnumero 11).
’···’ Mutaatiot monistetuissa sekvensseissä korjattiin eri kloonien re- kombinaatiolla.
i 30 araD:n kloonaamiseksi S6wtd1EGFP:hen, vektori linearisoitiin osit- •* » täisellä digeroinnilla restriktioentsyymillä Pagl (asema 4761) (Fermentas, Liet- \‘.it tua) ja DNA-5'-päät defosforyloitiin vasikan suolen alkalisella fosfataasilla ,···. (CIAP; Fermentas, Liettua). araD1- ja araD2-fragmentit leikattiin pUC18:sta
• I
_]·’ Ncoklla (Fermentas, Liettua) ja ligatoitiin S6wtd1 EGFP/Pagl:een.
i ’ ' 35 Molemmat ligaatioseokset transformoitiin E. coli DH5a -kompe- tentteihin soluihin ja levitettiin maljoille, jotka sisälsivät LB-väliainetta, jossa oli 116068 12 50 pg/ml kanamysiiniä, ja inkuboitiin 37 °C:ssa yön yli. Pesäkkeet analysoitiin ensin pesäke-PCR:llä ja sen jälkeen DNA eristettiin ja digeroitiin eri restriktio-entsyymeillä.
Kloonaus johti plasmideihin S6wtd1EGFP/cana/araD1, 5 S6wtd1 EGFP/cana/araD2, jotka on esitetty kuvioissa 3 ja 4.
Kanamysiiniresistenssimerkkigeenin poistamiseksi plasmideista S6wtd1EGFP/cana/araD1 ja S6wtd1EGFP/cana/araD2 digeroitiin restriktioen-donukleaasilla Bcul (Fermentas, Liettua) ja 6473 emäsparin vektorifragmentti ligatoitui itsestään.
10 Ligaatioseokset transformoitiin E. coli AG1 AaraD -kantaan (katso esimerkki 2) ja levitettiin maljoille, jotka sisälsivät M9-väliainetta, jota oli täydennetty 2 %:lla L-arabinoosia, ja inkuboitiin 37 °C:ssa 36 tuntia. Pesäkkeet analysoitiin ensin pesäke-PCR:llä ja sen jälkeen DNA eristettiin ja digeroitiin eri restriktioentsyymeillä. Kloonaus johti plasmideihin S6wtd1EGFP/araD1 ja vas-15 taavasti S6wtd1 EGFP/araD2, jotka esitetään kuvioissa 5 ja 6.
Bakteeripesäkkeitä, jotka sisälsivät S6wtd1EGFP/araD1:tä ja S6wtd1EGFP/araD2:ta, kasvatettiin kahdessa eri väliaineessa: LB:ssä, jota oli täydennetty 2,5 %:lla L-arabinoosia, ja M9:ssa, jota oli täydennetty 0,2 %:lla L-arabinoosia, 37 °C:ssa voimakkaasti ravistellen. Solut otettiin talteen ja plasmi-20 di-DNA uutettiin soluista käyttäen QIAprep Spin Miniprep Kit -kittiä (QIAGEN) ja analysoitiin agaroosigeelielektroforeesilla (kuviot 7A ja vastaavasti 7B).
:T: Plasmidi-DNA-näytteet viljelmistä LB-ja M9-väliaineissa analy- ·:··· soitiin agaroosigeelielektroforeesilla ennen ja jälkeen digestion restriktio- endonukleaasilla Pagl (Fermentas, Liettua) (kuvio 8). Pagl-digestiossa 25 saatujen fragmenttien ennustetut koot olivat 3954 ja 2519 emäsparia • · S6wtd1EGFP/araD1:lle ja 4315 ja 2157 emäsparia S6wtd1EGFP/araD2:lle. \.!t lambda-DNA:ta, joka oli digeroitu Eco91l:llä (M15 kuviossa 8C), ja lambda- DNA:ta, joka oli digeroitu EcoRI/Hindl11:ila (Fermentas, Liettua) (M3 kuviossa 8C), käytettiin molekyylipainomerkkeinä. Kaikki analysoidut kloonit olivat * 30 oikein restriktioentsyymianalyysissä, mutta DNA-saanto oli hyvin matala, kun plasmideja kasvatettiin LB-väliaineessa. Kahdella neljästä analysoidusta S6wtd1 EGFP/araD2-kloonista (nro 13 ja nro 14 kuviossa 8B) oli korkeampi .···. kopioluku, kun niitä kasvatettiin M9-väliaineessa, jota oli täydennetty 0,2 %:lla ,.· L-arabinoosia (kuviot 7 ja 8).
• < I
I I
116068 13
Esimerkki 2
Arabinoosiherkkien ΔaraD Escherichia coli -kantojen muodostaminen.
Kahta E. coli -kantaa, AG1 ja JM 109, käytettiin AaraD-mutanttien muodostamiseen. araD-geeni E. coli -genomissa tuhottiin menetelmällä, jonka 5 ovat kuvanneet Datsenko ja Wanner [PNAS 97 (2000) 6640 - 6645]. Tässä menetelmässä käytetään hyväksi faagi λ Red -rekombinaatiosysteemiä. Lyhyesti kuvattuna tämän systeemin strategia on korvata kromosomaalinen sekvenssi valikoitavissa olevalla antibioottiresistenssigeenillä, joka muodostetaan PCR:llä käyttäen alukkeita, joissa on homologisia pidennyksiä. Tämä saadaan 10 aikaan Red-välitteisellä rekombinaatiolla näissä reunustavissa homologeissa.
pKD46:n [Datsenko ja Wanner, PNAS 97 (12) (2000)], joka koodaa faagi A rekombinaatiosysteemiä, transformoimiseksi E. coli -kantoihin AG1 ja JM109, nämä solut tehtiin kemiallisesti kompetenteiksi käyttäen RF1- ja RF2-liuoksia: 15 RF1 100ml__
RbCI______IJ^g_
MnCI2 4H2Q ___0,99 g_ 1 M KAc pH 7,5__3ml_
CaCI2 2H2Q__0,15 g_ v : Glyseroli__15 g l pH 5,8 (lisää CH3COOH:ta) • · · ·:·: RF2100ml _ 0,5 M MOPS__2_ml_ j"’: RbCI__0,12 g_
CaCI2 2H2Q__1J_g_ : Glyseroli__15 g_ ,···.’ pH 6,8 (lisää NaOH) • » * · ·* '· 20 Soluja kasvatettiin 2 ml.ssa LB-väliainetta tiheyteen OD600 0,2 - 0,5.
Viljelmä sentrifugoitiin ja pelletti suspendoitiin uudelleen 1 ml:aan RF1:tä.
t Seosta pidettiin jäiden päällä 10 min ja sentrifugoitiin. Pelletti suspendoitiin !··-. 100 //l:aan RF2:ta ja suspensiota pidettiin jäiden päällä 30 - 45 minuuttia.
• »
Noin 50 ng pKD43:a lisättiin ja soluja pidettiin jäiden päällä vielä 30 minuuttia, 116068 14 minkä jälkeen annettiin 5 minuutin lämpösokki 37 °C:ssa. Kymmenen minuutin jäiden päällä inkuboinnin jälkeen 900 μΙ SOB-väliainetta lisättiin transformoituihin soluihin ja seosta inkuboitiin 37 °C:ssa yksi tunti. Solut levitettiin LB-väli-aineelle, joka sisälsi ampisilliiniä (100 /vg/ml). Pesäkkeet poimittiin transfor-5 maatiolevyiltä ja niitä kasvatettiin 2 ml:ssa samaa väliainetta tiheyteen OD6oo noin 1 ja glyserolikantavalmisteet valmistettiin (2 ml viljelmää + 0,6 ml 50-%:ista glyserolia). Kantavalmisteita varastoitiin -80 °C:ssa.
araD-geenin tuhoamiseksi muodostettiin lineaarinen PCR-tuote, joka sisältää kanamysiiniresistenssigeenin. Plasmidia pKD13 (Datsenko ja Wan-10 ner, PNAS voi. 97, nro 12, kesäkuu 2000) käytettiin PCR-templaattina. Käytetyt alukkeet olivat ara(pr1) ja ara(pr4): ara( pr1) 5'-CTCAAACGCCCAGGTATTAGAAGCCAACCTGGCGCTGCC-AAAACACGTGTAGGCTGGAGCTGCTTC 3' (sekvenssi tunnusnumero 12) 15 ara(pr4) 5'-GGTTT GAT CACAAAGACGCCGCGCT CGCGAT CAACGG-CGCATTCCGGGGATCCGTCGACC 3' (sekvenssi tunnusnumero 13) Näissä alukkeissa on PCR:ssä hybridisaatioon pKD13:n kanssa ja araD-geenin kanssa homologiseen rekombinaatioon tarvittavat komplementit 20 sekvenssit.
PCR-reaktioseos oli seuraava: PFU- natiivi puskuri (5 μ\), 10 mM dNTP (5 μΙ), aluke ara(pr1) 10 μΜ (1 μΙ), aluke ara(pr4) 10 μΜ (1 μΙ), *:'*· pKD13 100 ng (2μΙ), DMSO (4μΙ), PFU 2,5 U (1 μΙ) ja mQ-vesi δΟμΙ^θη asti.
PCR-menetelmä oli seuraava: denaturaatio 45 s, 96 Ό, hybridi- • * 25 saatio 45 s, 50 °C, synteesi 2 min 30 s, 72 °C, 25 sykliä. Saatu PCR-tuote oli 1,4 kiloemästä.
i · ,*··, Viisi reaktiota suoritettiin samanaikaisesti, DNA puhdistettiin 2-%:isesta agaroosigeelistä käyttäen Ultrapure Puhdistus Kit -kittiä (MoBio La-. , botratories Inc.) ja eluoitiin 60 μΙ-.lla vettä. DNA konsentroitiin etanolisaostuk- » I t / 30 sella ja liuotettiin δμΙ^η vettä. Loppupitoisuus oli 0,6 μg/μl. Yhteen elektropo- “·;·* raatioon käytettiin 1,5μΙ:η määrä.
, PCR-tuote vietiin elektroporaatiolla AG1 pKD46- (Datsenko ja :** ; Wanner, supra) ja JM109 pKD46 E. coli -soluihin. Ensin 200 ml YENB-väli- ainetta, joka sisälsi 10 mM L-arabinoosia rekombinaatiosysteemin indusoimi- * * ·., ’ 35 seksi ja 100 μg/ml ampisilliiniä, siirrostettiin yön yli -viljelmään AG1 pKD46:ta ' ja JM 109 pKD46:ta. Viljelmiä kasvatettiin 30 °C:ssa tiheyteen Οϋθοο 116068 15 0,8 (JM109) ja 0,6 (AG1). Bakteerit otettiin talteen sentrifugoimalla kierrosno-peudella 4 000 g 10 minuuttia 4 °C:ssa, pestiin kahdesti 20 ml.lla steriiliä vettä ja kerran 20 ml:lla steriiliä vettä, joka sisälsi 10 % glyserolia. Solut suspendoi-tiin 300 //haan vettä, joka sisälsi 10 % glyserolia. 40 μΙ kompetentteja soluja 5 käytettiin yhteen elektroporaatioon.
Elektroporaatio suoritettiin BioRad E. coli Pulser -laitteella käyttäen 0,2 cm:n kyvettejä ja 2,5 kV:n jännitettä. Puhdistettu PCR-tuote (1,5 μΙ) lisättiin kompetentteihin soluihin, niitä pidettiin jäiden päällä 1 minuutti ja välittömästi elektroporaation jälkeen 2 ml lämmintä SOB-väliainetta lisättiin soluihin ja seo-10 sta inkuboitiin 37 °C:ssa 1 tunti. Solut levitettiin LB-väliaineelle, joka sisälsi ka-namysiiniä (25 μg/ml). 100 pg suurta kanamysiinille resistenttiä plasmidia (GTU-MultiHIV C-clade) käytettiin positiivisena kontrollina, negatiiviseen kontrolliin ei lisätty plasmidia. Transformaatiotehokkuus oli 106 AG1:lle ja 107 JM 109:lle positiivisen kontrollin suhteen. Negatiivisella kontrollilevyllä ei oils lut pesäkkeitä, 215 pesäkettä saatiin JM109+PCR-tuotelevyllä ja 70 pesäkettä AG 1 +PCR-tuotelevyllä.
Esimerkki 3 E. coli AGIAaraD-ja JM109AaraD-kantojen testaus
Pesäkkeet, jotka oli saatu elektroporaatiosta esimerkissä 2 kuvatulla 20 tavalla, testattiin kanamysiiniresistenssigeenin läsnä olon suhteen pesäke-PCR:llä käyttäen alukkeita araVIisF (5' CGGCACGAAGGAGTCAACAT 3’; • * ;Vi sekvenssi tunnusnumero 14) ja araVIisR (5’ TGATAGAGCAGCCGGTGAGT 3’; • t • sekvenssi tunnusnumero 15), jotka sisältävät hybridisaatiokohdat araD- / geenissä lähellä insertiokohtaa. Odotettiin saatavan 272 emäsparin PCR-tuote I · i 25 E. coli AG1- ja JM109-kannoista, joissa ei ollut insertiota araD:ssä, ja 1545 emäsparin tuote, jos PCR-tuote oli insertoitu araD-geeniin. Yhdeksän pesäkettä AG1AaraD:tä ja 14 pesäkettä JM109AaraD:tä 15 pesäkkeestä tarkistettiin ja
• I
;,· · ne antoivat 1545 emäsparin tuotteen. Siten pääteltiin, että nämä kannat sisäl- sivät kanamysiiniresistenssigeeni-insertion.
30 Kanamysiinigeenin insertion varmistamiseksi suoritettiin toinen pe- "... säke-PCR käyttäen alukkeita kanaSF (5TCAGATCCTTGGCGGCAAGA3'; sekvenssi tunnusnumero 16) ja araVR (5TGTAATCGACGCCGGAAGGT3'; • · i ’·· sekvenssi tunnusnumero 17). Nämä alukkeet tuottavat 435 emäsparin tuot- teen, jos kanamysiiniresistenssigeeni on insertoitu araD-geeniin. Kuusi pesä-35 kettä molemmista kannoista testattiin ja kaikki antoivat oikean tuotteen.
116068 16
Kuusi AGIAaraD-pesäkettä ja kuusi JM109AaraD-pesäkettä levitettiin LB-väliaineelle, joka sisälsi 25 /vg/ml kanamysiiniä, ja inkuboitiin 37 °C:ssa yön yli pKD46-plasmidin eliminoimiseksi, jossa plasmidissa on lämpötilaherkkä replikaation aloituskohta. Solut testattiin ampisilliiniherkkyyden suhteen replica 5 plating -menetelmällä LB-väliaineella ja LB-väliaineella, joka sisälsi ampisillii-niä. Yksikään ei kasvanut väliaineella, joka sisälsi ampisilliiniä, ja pääteltiin, että bakteerit eivät enää sisällä pKD46-plasmidia.
Tuotettujen AGIAaraD- ja JM109AaraD-kantojen arabinoosiherk-kyys testattiin. Yksi pesäke AG1AaraD:tä ja yksi pesäke JM109AaraD:tä siir-10 rostettiin kukin 2 ml:aan LB:tä. Viljelmiä kasvatettiin 8 tuntia, ne laimennettiin 1:100 M9-väliaineeseen, joka sisälsi 0,2 % glyserolia, 25 /yg/ml kanamysiinia ja 0,01 % tiamiinia (0,05% proliinia JM109AaraD:lle), ja eri pitoisuudet L-arabi-noosia lisättiin kasvatusväliaineeseen. Viljelmiä kasvatettiin yön yli 37 °C:ssa ravistusinkubaattorissa ja OD60o mitattiin (taulukko 1).
15
Taulukko 1. Arabinoosiherkkyyden testaus L-arabinoosi-% AGIAaraD OD6oo JM109AaraD OD6oo 0 3,2 1,9 0,1 0,03 0,03 0,2 0,030 0,026 ·:··: 0,5 0,030 0,020 1 0024 0,025 ' 2 0,017 0,021 ,! Kuten taulukosta 1 nähdään, niin alhainen määrä kuin 0,1 % L-arabi- 20 noosia riittää inhiboimaan keksinnön mukaisten AaraD-kantojen kasvun.
Lisäksi testattiin AaraD-kantojen plasmidi-DNA-saanto.
I t
Plasmidi S6wtd1EGFParaD2, joka oli valmistettu esimerkissä 1 ku- vatulla tavalla, transformoitiin AGIAaraD- ja JM109AaraD-kantoihin. Kompe- ·’·„ tentit solut valmistettiin RF1- ja RF2-liuoksia käyttäen esimerkissä 2 kuvatulla .··· 25 tavalla.
•»·
Transformaatiolevyiltä saadut pesäkkeet siirrostettiin 2 ml:aan • · : " M9-väliainetta, joka sisälsi 0,5 % hiivauutetta ja 25 /;g/ml kanamysiiniä + 0,01 % :: tiamiinia + L-arabinoosia (2 % ja 0,2 %).
17 1 1 6068
Viljelmiä inkuboitiin 37 °C:ssa 17 tuntia. Sitten ODöoo mitattiin soluti-heyden kvantitoimiseksi ja plasmidi-DNA uutettiin Qiagen Miniprep Kit -kitillä. Kerrointa 2,8 (OD6oo/ml) käytettiin miniprep-erityksessä verrannollisten tulosten saamiseksi. Tulokset esitetään taulukossa 2.
5 DNA-konsentraatio mitattiin spektrofotometrillä absorbanssina aal lonpituudella 260 nm. Mikroskooppista analyysiä varten tippa bakteeriviljelmää levitettiin lasisille objektilaseille ja peitettiin peitinlasilla. Viljelmää tarkasteltiin 10Ox-objektiivilla öljyimersiota käyttäen.
10 Taulukko 2. AaraD-kantojen plasmidi-DNA-saanto
Plasmidi-DNA
L-arabinoosi Plasmidi-DNA Näkymä
Kanta OD6oo saanto (jug per ml (%) pit. (jjg/μI) mikroskoopissa viljelmää) AGIAaraD 2 7,6 0,039 5,3 Ei filamentteja AGIAaraD 0,2 5,8 0,057 5,9 Ei filamentteja
Vain muutamia JM109AaraD 2 4,9 0,043 3,8 filamentteja Vain muutamia JM109AaraD 0,2 4,3 0,038 2,9 filamentteja ' . Näiden tulosten mukaan 0,2 % L-arabinoosia on riittävä saman tasoisen plasmidikopiolukumäärän saamiseksi kuin 2 % arabinoosilla.
15 Tässä plasmidiAGIAaraD näyttää olevan parempi, sillä sekä plas- midisaanto että myös solutiheydet ovat hieman korkeampia.
Esimerkki 4 , , S6wtd1EGFP/araD2:n stabiilius * · *
Rokotusvektorin tärkeä piirre on stabiilius bakteerisoluissa lisäänty- • · **;·' 20 misen aikana. S6wtd1EGFP/araD2:n stabiiliuden testaamiseksi bakteereissa : plasmidi transformoitiin E. coli AGIAaraD- ja JM109AaraD-kantoihin, jotka oli valmistettu esimerkissä 2 ja vektorin koskemattomuutta seurattiin plasmidi-./ DNA-analyysillä neljän sukupolven aikana.
Plasmidi S6wtd1EGFP/araD2 sekoitettiin kompetenttien E. coli 25 AGIAaraD- ja JM109AaraD-solujen kanssa ja inkuboitiin jäiden päällä 30 mi- 116068 18 nuuttia. Tämän jälkeen solususpensio altistettiin lämpösokille 3 minuutin ajaksi 37 °C:ssa, mitä seurasi nopea jäähdyttäminen jäiden päällä. Yksi millilitra LB-väliainetta lisättiin näytteeseen ja seosta inkuboitiin 45 minuuttia 37 °C:ssa voimakkaasti ravistaen. Lopuksi osa soluista levitettiin maljoille, joilla oli 5 M9-väliainetta, joka sisälsi 0,5 % hiivauutetta, 2 % L-arabinoosia ja 25 //g/ml kanamysiiniä. Seuraavana päivänä yhden pesäkkeen solut siirrettiin uudelle maljalle, joka sisälsi samaa väliainetta. Tämä menettely toistettiin, kunnes neljä bakteerisukupolvea oli kasvanut. Kaksi pesäkettä molempien bakteerikantojen kustakin sukupolvesta käytettiin siirrostamaan 2 ml M9-väliainetta, joka sisälsi 10 0,5 % hiivauutetta, 2 % L-arabinoosia ja 25 //g/ml kanamysiiniä, ja inkuboitiin yön yli 37 °C:ssa voimakkaasti sekoittaen. Solut otettiin talteen ja plasmi-di-DNA uutettiin bakteereista käyttäen QIAprep Spin Miniprep Kit -kittiä (QIAGEN). Plasmidi-DNA-näytteet ennen (kuvio 9) ja jälkeen digestion restrik-tioendonukleaasilla Hindlll (Fermentas, Liettua) (kuvio 10) analysoitiin aga-15 roosigeelielektroforeesilla verrattuna alkuperäiseen transformaatioon käytettyyn S6wtd1EGFP/araD2-DNA:han (kontrolli kuvioissa 9 ja 10). lambda-DNA:ta, joka oli digeroitu EcoRI/Hindlll:llä (Fermentas, Liettua), käytettiin molekyylipaino-merkkinä (M3 kuviossa 10).
Näytteet digeroitiin Hindlll.lla. Kuten kuviossa 10A esitetään E.coli 20 AGIAaraD-kannalle ja kuviossa 10B JM109AaraD-kannalle, havaittiin mallit, jotka olivat identtiset alkuperäisen S6wtd1EGFP/araD2-plasmidi-DNA:n kans-v : sa. Hindlll-digestiosta saatujen fragmenttien ennustetut koot ovat 3274, 1688 ja 1510 emäsparia. Voidaan vetää se johtopäätös, että rokotevektori S6wtd1EGFP/araD2 on stabiili, kun sitä lisätään E. coli AGIAaraD- ja « :··: 25 JM109AaraD-kannoissa.
;* Esimerkki 5 AGIAaraD S6wtd1EGFP/araD2:n syöttöpanosfermentaatio i.j j araD-geenipohjainen selektiojärjestelmä testattiin myös syöttö- L..: panosfermentaatiossa tarkoituksena tuottaa plasmidia sisältäviä bakteereita.
:·’ 30 Yksi pesäke poimittiin AGIAaraD S6wtd1EGFP/araD2-levyltä ja siirrostettiin 250 ml:aan M9-väliainetta, joka sisälsi 0,5 % hiivauutetta, 0,2 % L-arabinoosia ja 25 A/g/ml kanamysiiniä, ja inkuboitiin yön yli 37 °C voimakkaasti sekoittaen.
• ’·· 18 tunnin kuluttua ympin OD6oo oli 6,4. 160 ml ymppiä lisättiin fermentoriin, jossa oli 5 I fermentoinnin aloitusväliainetta (8 g/l KF^PO^a, 10 g/l NaCI:a; 35 5 g/l NFUCLa; 5 g/l hiivauutetta; 2 g/l L-arabinoosia; 2 g/l MgS04:a, 25 mg/l 116068 19 kanamysiiniä ja 0,1 g/l tiamiinia; pH 6,7 NH40H:lla). Kun oli kasvatettu 5,5 tuntia automaattinen syöttö aloitettiin annetulla kasvunopeudella 0,15 h'1 (sallii hii-lilähteen rajoittaman kasvun) fermentaation syöttöväliainetta (300 g/l L-arabi-noosia; 150 g/l hiivauutetta; 50 mg/l kanamysiiniä; 0,2 g/l tiamiinia). Syöttöno-5 peutta kontrolloitiin tietokoneella kaavan F(t)=myS*Sj,r/Sf mukaan, jolloin myS on haluttu kasvunopeus, Sjn on ajankohtana lisätty hiililähteen määrä ja Sf hiili-lähteen pitoisuus syöttöväliaineessa. Kasvua seurattiin mittaamalla absor-banssia OD6oo ja plasmidi-DNA-näytteet otettiin. Fementaation aikana rekisteröidyt tiedot esitetään kuviossa 11. Fermentaation lopetettiin, kun 1 I syöttövä-10 liainetta oli kulutettu. Lopullinen Οϋβοο oli 45. Bakteerimassa otettiin talteen sentrifugoimalla ja pestiin kerran 2 l:lla STE-puskuria. Bakteerien biomassa-saanto oli 410 g märkäpainoa. Tulokset plasmidi-DNA-sisällöstä esitetään taulukossa 3.
Taulukko 3.
15 Plasmidi-DNA-saanto AGIAaraD S6wtd1 EGFP/araD2-fermentaation aikana
Aika ODeoo Plasmidi-DNA-pit. Plasmidi-DNA-saanto (//g///l) (/vg per ml viljelmää)
Ymppi 6,4 0,04 4,6 4 h 3,1 0,02 1,1 21 h 28 0,1 50 24 h 37 0,13 87 • · » 1 ; \ 29 h 45 0,14 113 • » *’ Taulukon 3 tulokset osoittavat, että L-arabinoosi-selektiojärjestelmä toimii erittäin hyvin korkeilla solutiheyksillä. Tämä johtuu todennäköisesti siitä, 20 että enemmän plasmidikopioita bakteerisoluissa antaa edun olosuhteissa, jois- * · ·.: f sa L-arabinoosia on rajoitettu, jolloin bakteerin voi käyttää sokeria nopeammin.
’·’ Esimerkki 6 « · • · AGIAaraD S6wtd1EGFP/araD2:n puhdistus AGIAaraD S6wtd1EGFP/araD2:n puhdistus suoritettiin seuraavasti !···. 25 (kuvio 12): a) Syöttövalmiste 20 1 1 6068
Kirkas lysaatti valmistettiin Qiagen’s Plasmid Purification Handbook -käsikirjan mukaan paitsi, ettei RNaasia käytetty.
200 g E. coli -solutahnaa suspendoitiin uudelleen 2000 ml:aan uu-delleensuspendointipuskuria ja myöhemmin käytettiin yhtä suuret tilavuudet 5 P2:ta ja P3:a lyysiin ja neutralointiin. Solujätteet poistettiin sentrifugoimalla kierrosnopeudella 6000 g 30 minuuttia 4 °C:ssa. Kirkas lysaatti kaadettiin pa-peripyyhkeen läpi, 1/10 10-%:ista Triton X-114:ää (Sigma) lisättiin ja liuos jätettiin jäiden päälle yhdeksi tunniksi. (Triton X-114:n on osoitettu vähentävän tehokkaasti endotoksiinien pitoisuutta proteiinissa, Liu et ai., Clinical Biochemistry, 10 1997). Tunnin kuluttua nukleiinihapot saostettiin 0,6 tilavuudella kylmää isopro panolia. Supernatantti kaadettiin pois ja sakkaa säilytettiin yön yli -20 °C:ssa.
b) Plasmidi-DNA:n puhdistus
Plasmidi-DNA:n puhdistus suoritettiin Amersham Pharmacian kolmivaiheisen superkiertyneen plasmidin puhdistusmenetelmän mukaan, johon oli 15 tehty joitakin modifikaatioita.
Vaihe 1. Sakka liuotettiin uudelleen 1500 ml:aan TE:tä (10 mM TrisCI, 1 mM EDTA; pH 8,0) ja ladattiin RNA.n poistamiseksi ja puskurin vaihtamiseksi Sepharose 6 FF -pylvääseen (Amersham Pharmacia), joka oli aikaisemmin tasapainotettu puskurilla A - 2 M (NH^SO/f, 100 mM TrisCI, 10 mM 20 EDTA, pH 7,5.
Vaihe 2. Pylvään tilavuus vietiin PlasmidSelect (Amersham v : Pharmacia) -pylvääseen (joka oli tasapainotettu puskurilla A)ja kun oli pestyjä :·'· eluoitu puskurilla B2 (1,6 M NaCI, 2 M (NH4)2S04,100 mM TrisCI, 10 mM EDTA, pH 7,5), superkiertynyt plasmidi-DNA otettiin talteen.
25 Vaihe 3. Eluoitu plasmidi laimennettiin viidellä tilavuudella tislattua, deionisoitua vettä ja ladattiin SOURCE 30Q -pylvääseen (Amersham Pharma-cia), joka oli tasapainotettu puskurilla C1 (0,4 M NaCI, 100 mM TrisCI, 10 mM EDTA, pH 7,5). Pesun jälkeen puhdistettu plasmidi eluoitiin puskurilla C2 (1 M , . NaCI, 100 mM TrisCI, 10 mM EDTA, pH 7,5) ja eluutiohuippu otettiin talteen.
30 Fraktion koko oli 150 ml ja se sisälsi 100 mg endotoksiinia sisältämätöntä (<10 EU/mg) S6wtd1EGFP/araD2-plasmidia.
• · • >

Claims (9)

116068
1. Selektiojärjestelmä, tunnettu siitä, että se käsittää vektorin, jossa on araD-geeni eli L-ribuloosi-5-fosfaatti-4-epimeraasin (EC 5.1.3.4.) geeni, jolla on sekvenssillä tunnusnumero 1 annettu sekvenssi, sen komplemen- 5 taannen sekvenssi tai sen katalyyttisesti aktiivinen fragmentti selektiomerkkinä, ja bakteerisolun, josta puuttuu araD-geeni.
2. Patenttivaatimuksen 1 mukainen selektiojärjestelmä, tunnet-t u siitä, että bakteerisolu on Escherichia coli -solu.
3. Patenttivaatimuksen 2 mukainen selektiojärjestelmä, tunnet-10 t u siitä, että E. coli on E. coli -kanta JM 109.
4. Vektori, tunnettu siitä, että se käsittää araD-geenin, jolla on sekvenssillä tunnusnumero 1 annettu sekvenssi, sen komplementaarisen sekvenssin tai sen katalyyttisesti aktiivisen fragmentin selektiomerkkinä.
5. Patenttivaatimuksen 4 mukainen vektori, tunnettu siitä, että 15 vektori on ekspressiovektori, joka käsittää: (a) DNA-sekvenssin, joka koodaa tumaan ankkuroivaa proteiinia, joka on operatiivisesti kytketty heterologiseen promoottoriin, jolloin mainittu tumaan ankkuroiva proteiini käsittää (i) DNA:ta sitovan domeenin, joka sitoutuu spesifiseen DNA-sekvenssiin, ja (ii) funktionaalisen domeenin, joka sitoutuu 20 tuman komponenttiin, tai sen funktionaalisen ekvivalentin, ja (b) multimeroidun DNA-sekvenssin, joka muodostaa sitoutumiskoh-dan tumaan ankkuroivalle proteiinille, jolloin mainitusta vektorista puuttuu pa- .. . pilloomaviruksen replikaation aloituskohta, ja ' (c) araD-geenin, jolla on sekvenssillä tunnusnumero 1 annettu sek- 25 venssi, sen komplementaarisen sekvenssin tai sen katalyyttisesti aktiivisen ’ ·' fragmentin.
6. Patenttivaatimuksen 5 mukainen vektori, tunnettu siitä, että vektori on ekspressiovektori, joka käsittää: ; (a) DNA-sekvenssin, joka koodaa tumaan ankkuroivaa proteiinia, 30 joka on operatiivisesti kytketty heterologiseen promoottoriin, jolloin mainittu * »· tumaan ankkuroiva proteiini on naudan papilloomaviruksen tyypin 1 (BPV) E2-proteiini, ja '·;·1 (b) multimeroitu DNA-sekvenssi, joka muodostaa sitoutumiskohdan tumaan ankkuroivalle proteiinille, on lukuisia BPV-E2-proteiinin sitoutumispaik-35 koja inkorporoituna vektoriin kimppuna, jolloin paikat voivat olla päästä-häntään-rakenteita tai ne voidaan sisällyttää vektoriin erillään oleviin paikkoi- 116068 hin, jolloin mainitusta vektorista puuttuu papilloomaviruksen replikaation aloituskohta, ja (c) araD-geenin, jolla on sekvenssillä tunnusnumero 1 annettu sekvenssi, sen komplementaarisen sekvenssin tai sen katalyyttisesti aktiivisen 5 fragmentin.
7. Muunnettu £. co//-kanta AG1, tunnettu siitä, että siitä puuttuu araD-geeni, jolla on sekvenssillä tunnusnumero 1 annettu sekvenssi.
8. Muunnettu E. coli -kanta JM109, tunnettu siitä, että siitä puuttuu araD-geeni, jolla on sekvenssillä tunnusnumero 1 annettu sekvenssi.
9. Menetelmä sellaisten solujen valikoimiseksi, jotka on transformoi tu plasmidilla, joka sisältää araD-geenin, jolla on sekvenssillä tunnusnumero 1 annettu sekvenssi, sen komplementaarisen sekvenssin tai sen katalyyttisesti aktiivisen fragmentin selektiomerkkinä ja mielenkiinnon kohteena olevan geenin, tunnettu siitä, että insertoidaan plasmidi isäntäsoluun, josta puuttuu 15 araD, jolla on sekvenssillä tunnusnumero 1 annettu sekvenssi, ja viljellään soluja kasvatusväliaineessa, joka sisältää arabinoosia. • · · • « 1 · * ♦ 116068
FI20031319A 2003-09-15 2003-09-15 Uusi selektiojärjestelmä, siinä käyttökelpoinen vektori, bakteerisolukantoja sekä menetelmä solujen valikoimiseksi FI116068B (fi)

Priority Applications (24)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FI20031319A FI116068B (fi) 2003-09-15 2003-09-15 Uusi selektiojärjestelmä, siinä käyttökelpoinen vektori, bakteerisolukantoja sekä menetelmä solujen valikoimiseksi
ES04767054.2T ES2529346T3 (es) 2003-09-15 2004-09-15 Sistema de selección que contiene un marcador de selección que no es de resistencia a antibióticos
EP14191756.7A EP2949753A1 (en) 2003-09-15 2004-09-15 Selection system containing non-antibiotic resistance selection marker
PL04767054T PL1664305T3 (pl) 2003-09-15 2004-09-15 Układ selekcyjny zawierający marker selekcyjny nie oparty na oporności na antybiotyk
EP04767054.2A EP1664305B1 (en) 2003-09-15 2004-09-15 Selection system containing non-antibiotic resistance selection marker
US10/531,870 US7521182B2 (en) 2003-09-15 2004-09-15 Selection system containing non-antibiotic resistance selection marker
PCT/FI2004/000540 WO2005026364A1 (en) 2003-09-15 2004-09-15 Selection system containing non-antibiotic resistance selection marker
AU2004272776A AU2004272776B2 (en) 2003-09-15 2004-09-15 Selection system containing non-antibiotic resistance selection marker
CA2538863A CA2538863C (en) 2003-09-15 2004-09-15 Selection system containing non-antibiotic resistance selection marker
PT47670542T PT1664305E (pt) 2003-09-15 2004-09-15 Sistema de seleção contendo um marcador de seleção não antibiótico
BRPI0414392-2A BRPI0414392A (pt) 2003-09-15 2004-09-15 sistema de seleção contendo um marcador de seleção não antibiótico de resistência
EA200600585A EA011823B1 (ru) 2003-09-15 2004-09-15 Бактериальная система селекции и ее применение
HK06107273.7A HK1084975B (en) 2003-09-15 2004-09-15 Selection system containing non-antibiotic resistance selection marker
NZ545937A NZ545937A (en) 2003-09-15 2004-09-15 Selection system containing non-antibiotic resistance selection marker
SI200432219T SI1664305T1 (sl) 2003-09-15 2004-09-15 Selekcijski sistem, ki vsebuje selekcijski marker ne-rezistenten na antibiotike
DK04767054.2T DK1664305T3 (en) 2003-09-15 2004-09-15 SELECTION SYSTEM CONTAINING NON-ANTIBIOTIC RESISTANCE SELECTION MARKER
MXPA06002559A MXPA06002559A (es) 2003-09-15 2004-09-15 Sistema de seleccion que contiene marcador de seleccion sin resistencia a antibioticos.
JP2006526650A JP4732348B2 (ja) 2003-09-15 2004-09-15 非抗生物質耐性選択マーカー含有選択システム
AP2006003577A AP1993A (en) 2003-09-15 2004-09-15 Selection system containing non-antibiotic resistance selection marker
CN2004800336943A CN1882692B (zh) 2003-09-15 2004-09-15 包含非抗生素抗性选择标志物的选择系统
IL173923A IL173923A0 (en) 2003-09-15 2006-02-23 Selection system containing non-antibiotic resistance selection marker
ZA200602153A ZA200602153B (en) 2003-09-15 2006-03-14 Selection system containing non-antibiotic resistance selection marker
KR1020067005158A KR101215245B1 (ko) 2003-09-15 2006-03-14 비-항생제 내성 선별 마커를 포함하는 선별 시스템
HK16105149.1A HK1217111A1 (en) 2003-09-15 2016-05-05 Selection system containing non-antibiotic resistance selection markers

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FI20031319A FI116068B (fi) 2003-09-15 2003-09-15 Uusi selektiojärjestelmä, siinä käyttökelpoinen vektori, bakteerisolukantoja sekä menetelmä solujen valikoimiseksi
FI20031319 2003-09-15

Publications (3)

Publication Number Publication Date
FI20031319A0 FI20031319A0 (fi) 2003-09-15
FI20031319L FI20031319L (fi) 2005-03-16
FI116068B true FI116068B (fi) 2005-09-15

Family

ID=27838984

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FI20031319A FI116068B (fi) 2003-09-15 2003-09-15 Uusi selektiojärjestelmä, siinä käyttökelpoinen vektori, bakteerisolukantoja sekä menetelmä solujen valikoimiseksi

Country Status (22)

Country Link
US (1) US7521182B2 (fi)
EP (2) EP2949753A1 (fi)
JP (1) JP4732348B2 (fi)
KR (1) KR101215245B1 (fi)
CN (1) CN1882692B (fi)
AP (1) AP1993A (fi)
AU (1) AU2004272776B2 (fi)
BR (1) BRPI0414392A (fi)
CA (1) CA2538863C (fi)
DK (1) DK1664305T3 (fi)
EA (1) EA011823B1 (fi)
ES (1) ES2529346T3 (fi)
FI (1) FI116068B (fi)
HK (1) HK1217111A1 (fi)
IL (1) IL173923A0 (fi)
MX (1) MXPA06002559A (fi)
NZ (1) NZ545937A (fi)
PL (1) PL1664305T3 (fi)
PT (1) PT1664305E (fi)
SI (1) SI1664305T1 (fi)
WO (1) WO2005026364A1 (fi)
ZA (1) ZA200602153B (fi)

Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20060135457A1 (en) * 2004-08-13 2006-06-22 Yvonne Paterson Methods for constructing antibiotic resistance free vaccines
DK1789559T3 (en) 2004-08-13 2015-08-24 Univ Pennsylvania Methods to construct vaccines with no antibiotic resistance
EP2802646B1 (en) * 2011-12-21 2017-05-10 Bionet-Asia Co. Ltd Modified bordetella pertussis strains
WO2014018602A1 (en) * 2012-07-26 2014-01-30 Glycos Biotechnologies, Inc. Strains and methods for plasmid maintenance
EP2950816B1 (en) 2013-02-04 2019-07-31 Schweitzer Biotech Company Ltd. The use of dna sequences encoding an interferon as vaccine adjuvants
WO2015148680A1 (en) 2014-03-25 2015-10-01 Ginkgo Bioworks, Inc. Methods and genetic systems for cell engineering
EP3569710A1 (en) * 2018-05-16 2019-11-20 BioVersys AG Bacterial vectors for genetic manipulation of bacteria
CN109136247B (zh) * 2018-08-09 2022-03-29 天津大学 一种用于铅结合蛋白定向进化的双向筛选系统构建方法

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5843760A (en) * 1994-04-15 1998-12-01 Midwest Research Institute Single zymomonas mobilis strain for xylose and arabinose fermentation
ATE215986T1 (de) * 1994-12-09 2002-04-15 Microscience Ltd Virulenzgene in der vgc2-region von salmonella
US5824485A (en) * 1995-04-24 1998-10-20 Chromaxome Corporation Methods for generating and screening novel metabolic pathways
FR2738842B1 (fr) 1995-09-15 1997-10-31 Rhone Poulenc Rorer Sa Molecule d'adn circulaire a origine de replication conditionnelle, leur procede de preparation et leur utilisation en therapie genique
US6479279B2 (en) * 1995-12-29 2002-11-12 Estonian Biocentre Episomal vectors and uses thereof
US6162433A (en) * 1996-04-19 2000-12-19 Medeva Europe Limited Non antibiotic selectable markers for live vaccines
ES2157084T3 (es) 1996-08-16 2001-08-01 Medical Res Council Vectores de expresion episomicos autorreplicantes que confieren expresion genica histoespecifica.
WO1998011231A1 (en) * 1996-09-10 1998-03-19 The Rockefeller University Highly regulable promoter for heterologous gene expression
KR100230578B1 (ko) * 1997-07-25 1999-12-01 허영섭 포스포리불로키나제를 융합파트너로 이용하는 재조합 인간 부갑상선호르몬의 발현벡터
US6291245B1 (en) * 1998-07-15 2001-09-18 Roche Diagnostics Gmbh Host-vector system
US6368793B1 (en) * 1998-10-14 2002-04-09 Microgenomics, Inc. Metabolic selection methods
DK1268823T3 (da) * 2000-03-24 2008-03-10 Xoma Technology Ltd Fremgangsmåder og celler til ekspression af rekombinante proteinprodukter
HU227667B1 (en) * 2001-05-03 2011-11-28 Fit Biotech Oyj Plc Novel expression vectors and uses thereof

Also Published As

Publication number Publication date
PL1664305T3 (pl) 2015-04-30
FI20031319A0 (fi) 2003-09-15
EA011823B1 (ru) 2009-06-30
CN1882692A (zh) 2006-12-20
KR101215245B1 (ko) 2012-12-24
AP2006003577A0 (en) 2006-04-30
SI1664305T1 (sl) 2015-04-30
NZ545937A (en) 2008-08-29
AU2004272776A1 (en) 2005-03-24
ZA200602153B (en) 2007-07-25
ES2529346T3 (es) 2015-02-19
DK1664305T3 (en) 2015-02-09
CA2538863C (en) 2012-05-29
CN1882692B (zh) 2012-09-05
PT1664305E (pt) 2015-02-10
WO2005026364B1 (en) 2005-05-12
CA2538863A1 (en) 2005-03-24
JP2007505616A (ja) 2007-03-15
US7521182B2 (en) 2009-04-21
IL173923A0 (en) 2006-07-05
WO2005026364A1 (en) 2005-03-24
EP1664305B1 (en) 2014-11-05
EP2949753A1 (en) 2015-12-02
KR20060080194A (ko) 2006-07-07
HK1084975A1 (en) 2006-08-11
US20070036822A1 (en) 2007-02-15
MXPA06002559A (es) 2006-06-20
FI20031319L (fi) 2005-03-16
EP1664305A1 (en) 2006-06-07
BRPI0414392A (pt) 2006-11-21
EA200600585A1 (ru) 2006-08-25
JP4732348B2 (ja) 2011-07-27
AU2004272776B2 (en) 2008-11-06
HK1217111A1 (en) 2016-12-23
AP1993A (en) 2009-04-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Dardel et al. Molecular cloning and primary structure of the Escherichia coli methionyl-tRNA synthetase gene
US5656488A (en) Recombinant avirulent salmonella antifertility vaccines
Nichols et al. Cloning and sequencing of Escherichia coli ubiC and purification of chorismate lyase
HK1217111A1 (en) Selection system containing non-antibiotic resistance selection markers
KR20120136349A (ko) 고가의 화학적 생성물의 미생물 생산, 및 관련 조성물, 방법 및 시스템
WO1999047657A2 (en) Lactobacilli harboring aggregation and mucin binding genes as vaccine delivery vehicles
JP3878207B2 (ja) osmB プロモータで制御される発現プラスミド
KR20140015136A (ko) 3-히드록시프로피온산 및 다른 생성물의 제조 방법
Tolmasky et al. A single amino acid change in AngR, a protein encoded by pJM1-like virulence plasmids, results in hyperproduction of anguibactin
Fleming et al. Physical and genetic characterization of cloned enterobactin genomic sequences from Escherichia coli K-12
US5434253A (en) DNA encoding Helicobacter pylori recombinase
PT1575610E (pt) Vacina viva atenuada contra pleuropneumonia porcina
Rule et al. Overproduction and nucleotide sequence of the respiratory D-lactate dehydrogenase of Escherichia coli
US6783764B1 (en) Actinobacillus pleuropneumoniae subunit vaccine
FI104429B (fi) Ilmentämisplasmidit, jotka sisältävät deo-promoottorin, ja bakteeri-isännät, jotka sisältävät näitä plasmideja
Kawakami et al. Isolation and characterization of herC, a mutation of Escherichia coli affecting maintenance of ColE1
Heinzen et al. Characterization of the succinate dehydrogenase-encoding gene cluster (sdh) from the rickettsia Coxiella burnetii
Maas et al. D-Serine deaminase is a stringent selective marker in genetic crosses
Somarny et al. Cloning and expression of Vibrio cholerae virulence gene, accessory cholera enterotoxin(ACE)
JP2009514506A (ja) E.コリ株dsm6601のプラスミド不含のクローン
HK1084975B (en) Selection system containing non-antibiotic resistance selection marker
Wachira Regulation of the Pseudomonas aeruginosa amidase operon by transcription antitermination
CN101497889A (zh) 人Kappa阿片受体1的制备方法
MXPA98002798A (en) Live attenuated bacteria of the species actinobacillus pleuropneumon

Legal Events

Date Code Title Description
FG Patent granted

Ref document number: 116068

Country of ref document: FI

MM Patent lapsed