ES2533493T3 - Anticuerpos dirigidos contra la proteína 1 quimioatrayente de monocitos (MCP-1 N1pE) de piroglutamato - Google Patents
Anticuerpos dirigidos contra la proteína 1 quimioatrayente de monocitos (MCP-1 N1pE) de piroglutamato Download PDFInfo
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Abstract
Un anticuerpo que se une selectivamente al extremo amino que lleva piroglutamato de MCP-1 (MCP-1N1pE), en el que unión selectiva significa que no muestra ninguna reactividad cruzada con epítopos fuera del extremo amino que lleva piroglutamato de MCP-1N1pE.
Description
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Como se usa en el presente documento, las expresiones “célula”, “línea celular” y “cultivo celular” se usan indistintamente y todas aquellas designaciones incluyen progenie. Así, las palabras “transformantes” y “células transformadas” incluyen la célula objeto primaria y el cultivo derivado de la misma sin considerar el número de transferencias. También se entiende que toda la progenie puede no ser precisamente idéntica en contenido de ADN, debido a mutaciones deliberadas o involuntarias. Está incluida la progenie mutante que tiene la misma función o actividad biológica que la cribada en la célula originalmente transformada. Si se prevén designaciones distintas, esto será evidente del contexto.
Los términos “polipéptido”, “péptido” y “proteína”, como se usan en el presente documento, son intercambiables y se define que significan una biomolécula compuesta de aminoácidos ligados por un enlace peptídico.
La “homología” entre dos secuencias se determina por la identidad de secuencias. Si dos secuencias que van a compararse entre sí se diferencian en la longitud, la identidad de secuencias se refiere preferentemente al porcentaje de residuos de nucleótidos de la secuencia más corta que son idénticos con los residuos de nucleótidos de la secuencia más larga. La identidad de secuencias puede determinarse convencionalmente con el uso de programas informáticos tales como el programa Bestfit (Wisconsin Sequence Analysis Package, versión 8 para Unix, Genetics Computer Group, University Research Park, 575 Science Drive Madison, WI 53711). Bestfit utiliza el algoritmo de homología local de Smith y Waterman, Advances in Applied Mathematics 2 (1981), 482-489, con el fin de encontrar el segmento que tiene la mayor identidad de secuencias entre dos secuencias. Si se usa Bestfit u otro programa de alineamiento de secuencias para determinar si una secuencia particular tiene, por ejemplo, el 95 % de identidad con una secuencia de referencia de la presente invención, los parámetros se ajustan preferentemente de manera que el porcentaje de identidad se calcule con respecto a la longitud entera de la secuencia de referencia y se permiten huecos de homología de hasta el 5 % del número total de los nucleótidos en la secuencia de referencia. Si se usa Bestfit, los llamados parámetros opcionales se dejan preferentemente en sus valores prefijados (“por defecto”). Las desviaciones que aparecen en la comparación entre una secuencia dada y las secuencias anteriormente descritas de la invención pueden producirse, por ejemplo, mediante adición, deleción, sustitución, inserción o recombinación. Una comparación de secuencias puede también llevarse a cabo preferentemente con el programa “fasta20u66” (versión 2.0u66, septiembre de 1998 por William R. Pearson y la Universidad de Virginia; véase también W.R. Pearson (1990), Methods in Enzymology 183, 63-98, ejemplos adjuntos y http://workbench.sdsc.edu/). Para este fin, pueden usarse los ajustes de parámetros “por defecto”.
Como se usa en el presente documento, un “cambio conservativo” se refiere a alteraciones que son de forma sustancial conformacionalmente o antigénicamente neutras, que producen cambios mínimos en la estructura terciaria de los polipéptidos mutantes, o que producen cambios mínimos en los determinantes antigénicos de los polipéptidos mutantes, respectivamente, en comparación con la proteína nativa. Cuando se refiere a los anticuerpos y fragmentos de anticuerpos de la invención, un cambio conservativo significa una sustitución de aminoácidos que no convierte el anticuerpo en incapaz de unirse al receptor objeto. Un experto habitual en la materia podrá predecir qué sustituciones de aminoácidos pueden hacerse mientras que se mantiene una alta probabilidad de ser conformacionalmente y antigénicamente neutras. Tal orientación se proporciona, por ejemplo, en Berzofsky, (1985) Science 229:932-940 y Bowie y col. (1990) Science 247: 1306-1310. Factores que van a considerarse que afectan la probabilidad de mantener neutralidad conformacional y antigénica incluyen, pero no se limitan a: (a) es menos probable que la sustitución de aminoácidos hidrófobos afecte la antigenicidad debido a que es más probable que los residuos hidrófobos se localicen en un interior de la proteína; (b) es menos probable que la sustitución de aminoácidos fisioquímicamente similares afecte la conformación debido a que el aminoácido sustituido imita estructuralmente el aminoácido nativo; y (c) es probable que la alteración de secuencias evolutivamente conservadas afecte la conformación, ya que tal conservación sugiere que las secuencias de aminoácidos pueden tener importancia funcional. Un experto habitual en la materia podrá evaluar alteraciones en la conformación de proteínas usando ensayos bien conocidos, tales como, pero no se limitan a, métodos de fijación de microcomplementos (véase, por ejemplo Wasserman y col. (1961) J. Immunol. 87:290-295; Levine y col. (1967) Meth. Enzymol. 11 :928-936) y mediante estudios de unión usando anticuerpos monoclonales dependientes de la conformación (véase, por ejemplo, Lewis y col. (1983) Biochem. 22:948-954).
Los términos “un”, “una”, “el” y “la” como se usan en el presente documento se define que significan “uno o más” e incluyen el plural, a menos que el contexto sea inapropiado.
La invención se explica más abajo en más detalle con la ayuda de ejemplos de aplicación y ejemplos de implementación, además de las siguientes figuras que muestran:
Figura 1A: Características de unión del anticuerpo monoclonal 332-4B8 a MCP-1 N1pE-38 humano determinadas con análisis de SPR (Biacore 3000). La medición se realizó usando HBS-EP como tampón de electroforesis. La asociación tuvo lugar durante 180 s, seguido de una fase de disociación de 180 s y 5 s de regeneración con HCl 0,1 M.
Figura 1B: Características de unión del anticuerpo monoclonal 332-4F8 a MCP-1 N1pE-38 humano determinadas con análisis de SPR (Biacore 3000). La medición se realizó usando HBS-EP como tampón de electroforesis. La asociación tuvo lugar durante 180 s, seguido de una fase de disociación de 180 s y 5 s de regeneración con HCl 0,1 M.
Figura 1C: Características de unión del anticuerpo monoclonal 348-2C9 a MCP-1 N1pE-38 humano determinadas con
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Más preferentemente, la presente invención se refiere al uso de un anticuerpo, particularmente un anticuerpo monoclonal según la invención, pero particularmente un anticuerpo quimérico o un fragmento del mismo, o un anticuerpo humanizado
o un fragmento del mismo según la invención y como se describe en el presente documento antes y/o una parte funcional del mismo y/o una composición farmacéutica, o una mezcla que comprende dicho anticuerpo, para la preparación de un medicamento para tratar o aliviar los efectos de una enfermedad inflamatoria seleccionada de
- a.
- enfermedades neurodegenerativas, por ejemplo, deterioro cognitivo leve (DCL), enfermedad de Alzheimer, neurodegeneración en síndrome de Down, demencia familiar británica, demencia familiar danesa, esclerosis múltiple,
- b.
- inflamaciones crónicas y agudas, por ejemplo, artritis reumatoide, aterosclerosis, reestenosis, pancreatitis,
- c.
- fibrosis, por ejemplo, fibrosis pulmonar, fibrosis hepática, fibrosis renal,
- d.
- cáncer, por ejemplo, proliferación de cáncer/hemangioendotelioma, carcinomas gástricos,
- e.
- enfermedades metabólicas, por ejemplo, hipertensión, y
- f.
- otras enfermedades inflamatorias, por ejemplo, dolor neuropático, rechazo del injerto/fallo del injerto/vasculopatía del injerto, infecciones por VIH/SIDA, gestosis, esclerosis tuberosa.
También comprende la presente invención un método para la preparación de un anticuerpo, particularmente un anticuerpo monoclonal según la invención, pero particularmente un anticuerpo quimérico o un fragmento del mismo, o un anticuerpo humanizado o un fragmento del mismo según la invención y como se describe en el presente documento antes y/o una parte funcional del mismo y/o una composición farmacéutica, o una mezcla que comprende dicho anticuerpo y/o una parte funcional del mismo, particularmente en una cantidad terapéuticamente eficaz, para su uso en un método para prevenir, tratar o aliviar los efectos de un grupo de enfermedades y trastornos asociados a MCP-1 como se han definido anteriormente que comprende formular un anticuerpo, particularmente un anticuerpo monoclonal según la invención, pero particularmente un anticuerpo quimérico o un fragmento del mismo, o un anticuerpo humanizado o un fragmento del mismo según la invención en una forma farmacéuticamente aceptable.
Adicionalmente, la presente invención comprende un método para prevenir, tratar o aliviar los efectos de un grupo de enfermedades y trastornos asociados a MCP-1 como se ha definido anteriormente administrando un anticuerpo y/o una parte funcional del mismo, pero particularmente un anticuerpo humanizado y/o una parte funcional del mismo, o una composición o mezcla que comprende un anticuerpo tal y/o una parte funcional del mismo, a un animal o un ser humano afectado por un trastorno tal que comprende administrar el anticuerpo en una cantidad terapéuticamente eficaz.
Administración y dosificación
El anticuerpo se administra preferentemente a un mamífero en un vehículo; preferentemente un vehículo farmacéuticamente aceptable. Vehículos adecuados y sus formulaciones se describen en Remington's Pharmaceutical Sciences, 18ª edición, A. Gennaro, ed., Mack Publishing Co., Easton, PA, 1990; y Remington, The Science and Practice of Pharmacy 20ª ed. Mack Publishing, 2000. Normalmente, una cantidad apropiada de una sal farmacéuticamente aceptable se usa en la formulación para convertir la formulación en isotónica. Ejemplos del vehículo incluyen solución salina, disolución de Ringer y disolución de dextrosa. El pH de la disolución es preferentemente de aproximadamente 5 a aproximadamente 8, y más preferentemente de aproximadamente 7 a aproximadamente 7,5. Vehículos adicionales incluyen preparaciones de liberación sostenida tales como matrices semipermeables de polímeros hidrófobos sólidos que contienen el anticuerpo, matrices que están en forma de artículos moldeados, por ejemplo, películas, liposomas o micropartículas. Será evidente para aquellos expertos en la materia que ciertos vehículos pueden ser más preferibles dependiendo de, por ejemplo, la vía de administración y concentración del anticuerpo que se administra.
El anticuerpo puede administrarse al mamífero mediante inyección (por ejemplo, sistémica, intravenosa, intraperitoneal, subcutánea, intramuscular, intraportal, intracerebral, intracerebroventricular e intranasal), o por otros métodos, tales como infusión, que garantizan su administración a la circulación sanguínea de una forma eficaz. El anticuerpo también puede administrarse por técnicas de perfusión aislada, tales como perfusión de tejido aislado, para ejercer efectos terapéuticos locales. Se prefiere inyección intravenosa.
Dosificaciones eficaces y programas para administrar el anticuerpo pueden determinarse empíricamente, y el hacer tales determinaciones está dentro de la experiencia en la materia. Aquellos expertos en la materia entenderán que la dosificación de anticuerpo que debe administrarse variará dependiendo de, por ejemplo, el mamífero que recibirá el anticuerpo, la vía de administración, el tipo particular de anticuerpo usado y otros fármacos que se administran al mamífero. La orientación en la selección de dosis apropiadas de anticuerpo se encuentra en la bibliografía sobre usos terapéuticos de anticuerpos, por ejemplo, Handbook of Monoclonal Antibodies, Ferrone y col., eds., Noges Publications, Park Ridge, N. J., 1985, Cap. 22 y pág. 303-357; Smith y col., Antibodies in Human Diagnosis and Therapy, Haber y col., eds., Raven Press, New York, 1977, pág. 365-389. Una dosificación diaria típica del anticuerpo usado solo podría oscilar de aproximadamente 1 µg/kg a hasta 100 mg/kg de peso corporal o más por día, dependiendo de los factores
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mencionados anteriormente. Generalmente, puede usarse cualquiera de las siguientes dosis: se administra una dosis de al menos aproximadamente 50 mg/kg de peso corporal; al menos aproximadamente 10 mg/kg de peso corporal; al menos aproximadamente 3 mg/kg de peso corporal; al menos aproximadamente 1 mg/kg de peso corporal; al menos aproximadamente 750 µg/kg de peso corporal; al menos aproximadamente 500 µg/kg de peso corporal; al menos aproximadamente 250 µg/kg de peso corporal; al menos aproximadamente 100 µg /kg de peso corporal; al menos aproximadamente 50 µg /kg de peso corporal; al menos aproximadamente 10 µg /kg de peso corporal; al menos aproximadamente 1 µg/kg de peso corporal, o más. Pueden administrarse anticuerpos a dosis menores o menos frecuentes al principio del tratamiento para prevenir el posible efecto secundario.
En algunas realizaciones, más de un anticuerpo puede estar presente. Tales composiciones pueden contener al menos uno, al menos dos, al menos tres, al menos cuatro, al menos cinco anticuerpos diferentes (incluyendo polipéptidos) de la invención.
El anticuerpo también puede administrarse al mamífero en combinación con cantidades eficaces de uno o varios de otros agentes terapéuticos. El anticuerpo puede administrarse secuencialmente o simultáneamente con el uno o varios de otros agentes terapéuticos. Las cantidades de anticuerpo y agente terapéutico dependen, por ejemplo, de qué tipo de fármacos se usan, la afección patológica que está tratándose y el programa y vías de administración, pero generalmente serían inferiores a si cada uno se usara individualmente.
Tras la administración del anticuerpo al mamífero, la condición fisiológica del mamífero puede monitorizarse de diversas formas muy conocidas para el médico habitual. Los principios de administración anteriores y la dosificación pueden adaptarse para los polipéptidos descritos en el presente documento.
Un polinucleótido que codifica un anticuerpo o un polipéptido descrito en el presente documento también puede usarse para la administración y expresión del anticuerpo o el polipéptido en una célula deseada. Es evidente que puede usarse un vector de expresión para dirigir la expresión del anticuerpo. El vector de expresión puede administrarse sistémicamente, intraperitonealmente, intravenosamente, intramuscularmente, subcutáneamente, intratecalmente, intraventricularmente, por vía oral, enteralmente, parenteralmente, intranasalmente, dérmicamente, o por inhalación. Por ejemplo, la administración de vectores de expresión incluye administración local o sistémica, que incluye inyección, administración por vía oral, administración por pistola de partículas o cateterizada, y administración tópica. Un experto en la materia está familiarizado con la administración de vectores de expresión para obtener expresión de una proteína exógena in vivo. Véanse, por ejemplo, las patentes de EE.UU. nº 6.436.908; 6.413.942; y 6.376.471.
También puede usarse la administración elegida como diana de composiciones terapéuticas que comprende un polinucleótido que codifica un anticuerpo de la invención. Se describen técnicas de administración de ADN mediada por receptor en, por ejemplo, Findeis y col., Trends Biotechnol. (1993) 11 :202; Chiou y col., Gene Therapeutics: Methods and Applications of Direct Gene Transfer (J.A. Wolff, ed.) (1994); Wu y col., J. Biol. Chem. (1988) 263:621; Wu y col., J. Biol Chem. (1994) 269:542; Zenke y col., Proc. Natl. Acad. Sci. (USA) (1990) 87:3655; Wu y col., J. Biol. Chem. (1991)
266:338. Las composiciones terapéuticas que contienen un polinucleótido se administran en un intervalo de aproximadamente 100 ng a aproximadamente 200 mg de ADN para la administración local en un protocolo de terapia génica. También pueden usarse intervalos de concentración de aproximadamente 500 ng a aproximadamente 50 mg, aproximadamente 1 µg a aproximadamente 2 mg, aproximadamente 5 µg a aproximadamente 500 µg y aproximadamente 20 µg a aproximadamente 100 µg de ADN durante un protocolo de terapia génica. Los polinucleótidos y polipéptidos terapéuticos de la presente invención pueden administrarse usando vehículos de administración génica. El vehículo de administración génica puede ser de origen vírico o no vírico (véanse, generalmente, Jolly, Cancer Gene Therapy (1994) 1 :51; Kirnura, Human Gene Therapy (1994) 5:845; Connelly, Human Gene Therapy (1995) 1:185; y Kaplitt, Nature Genetics (1994) 6:148). La expresión de tales secuencias codificantes puede inducirse usando promotores endógenos de mamífero o heterólogos. La expresión de la secuencia codificante puede ser tanto constitutiva como regulada.
Los vectores basados en virus para la administración de un polinucleótido deseado y expresión en una célula deseada son muy conocidos en la técnica. Vehículos basados en virus a modo de ejemplo incluyen, pero no se limitan a, retrovirus recombinantes (véanse, por ejemplo, las publicaciones PCT nº WO 90/07936; WO 94/03622; WO 93/25698; WO 93/25234; WO 93/11230; WO 93/10218; WO 91/02805; las patentes de EE.UU. nº 5.219.740; 4.777.127; patente de GB nº 2.200.651; y documento EP 0 345 242), vectores basados en alfavirus (por ejemplo, vectores del virus de Sindbis, virus del bosque de Semliki (ATCC VR-67; ATCC VR-1247), virus del río Ross (ATCC VR-373; ATCC VR-1246) y virus de la encefalitis equina venezolana (ATCC VR-923; ATCC VR-1250; ATCC VR 1249; ATCC VR-532)) y vectores de virus adeno-asociados (AAV) (véase, por ejemplo, las publicaciones PCT nº WO 94/12649, WO 93/03769; WO 93/19191; WO 94/28938; WO 95/11984 y WO 95/00655). También puede emplearse la administración de ADN ligada a adenovirus muertos como se describe en Curiel, Hum. Gene Ther. (1992) 3:147.
También pueden emplearse vehículos y métodos de administración no víricos que incluyen, pero no se limitan a, ADN policondensado policatiónico ligado a o sin ligar a adenovirus muerto solo (véase, por ejemplo, Curiel, Hum. Gene Ther.
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(1992) 3:147); ADN ligado a ligando (véase, por ejemplo, Wu, J Biol. Chem. (1989) 264: 16985); células vehículo de administración de células eucariotas (véanse, por ejemplo, la patente de EE.UU. nº 5.814.482; publicaciones PCT nº WO 95/07994; WO 96/17072; WO 95/30763; y WO 97/42338) y neutralización o fusión de cargas nucleicas con membranas celulares. También puede emplearse ADN desnudo. Métodos de introducción de ADN desnudo a modo de ejemplo se describen en la publicación PCT nº WO 90/11092 y la patente de EE.UU. nº 5.580.859. Liposomas que pueden actuar de vehículos de administración génica se describen en la patente de EE.UU. nº 5.422.120; publicaciones PCT nº WO 95/13796; WO 94/23697; WO 91/14445; y EP 0 524 968. Enfoques adicionales se describen en Philip, Mol Cell Biol (1994) 14:2411, y en Woffendin, Proc. Natl. Acad. Sci. (1994) 91 :1581.
Ejemplos
Ejemplo 1: Preparación y caracterización de anticuerpos monoclonales que están dirigidos contra MCP-1 N1pE
El objetivo fue la generación de anticuerpos monoclonales reactivos con pE-P-D-A (SEQ ID NO: 3) que contienen la secuencia de aminoácidos en el extremo amino del péptido MCP-1 N1pE-38 (SEQ ID NO: 4) (que es MCP-1 N1pE empezando los primeros 38 aminoácidos en el extremo N), pero no reactivos con el péptido MCP-1 D3-38 (SEQ ID NO: 5) que es la misma molécula que MCP-1 N1pE-38, pero que carece de pE y P en el extremo amino.
Para las inmunizaciones se usó el péptido pE-P-D-A-I-N-A-P-V-C-amida (MCP-1 N1pE-9 humano (SEQ ID NO: 6)). Este antígeno de bajo peso molecular se conjugó con albúmina de suero bovino (BSA de fracción V purificada; Pierce) como proteína transportadora usando sulfo-MBS (Pierce) como reticulador.
Para generar los anticuerpos monoclonales se inmunizaron ratones BALB/c hembra de 8 semanas de edad con el conjugado de péptido-BSA en dos procedimientos de inmunización diferentes como se muestra en la Tabla 1:
Tabla 1: Protocolo de inmunización para la generación de anticuerpos monoclonales MCP-1 N1pE
- Tiempo de inmunización largo (Día)
- Tiempo de inmunización corto (Día) Inyección Dosis (µg/ratón) Adyuvante
- 1
- 1
- Sensibilización (i.p.) 100 Adyuvante TiterMax Gold (Sigma Aldrich, St. Louis, EE.UU.)
- 30
- 14 Refuerzo (i.p.) 100 Adyuvante TiterMax Gold (Sigma)
- 60
- 21 Refuerzo (i.p.) 50 Adyuvante incompleto de Freund (Sigma)
- 90
- 28 Refuerzo (i.p.) 50 Adyuvante incompleto de Freund (Sigma)
- 126
- 35 Refuerzo (i.v.) 50 PBS
- 129
- 38 Fusión
Por ejemplo, 100 µg de péptido se corresponden con 50 µl de conjugado de péptido-BSA disuelto en PBS. El conjugado de péptido-BSA se emulsionó en un volumen igual de adyuvante TiterMax Gold (Sigma) o adyuvante incompleto de Freund y se inyectó como emulsión estable intraperitonealmente (i.p.). Tres días antes se realizó el experimento de fusión, cada ratón recibió una dosis total de 50 µg de péptido (25 µl de conjugado de péptido-BSA) disuelto en 25 µl de PBS administrado como inyección i.v.
La presencia del anticuerpo deseado se detectó en los sueros del receptor antes de la dosis de refuerzo final usando el enzimoinmunoanálisis de adsorción (ELISA) con MCP-1 N1pE-9 humano como antígeno inmovilizado. Los títulos de anticuerpo específico fueron superiores a 1:200000.
Para los procedimientos de fusión, 6 x 107 células del bazo de los ratones inmunizados y 2 x 107 células de la línea de células de mieloma de ratón SP2/0 se incubaron con 1,2 ml de polietilenglicol al 50 % (Sigma) durante 30 segundos a 37 ºC. Después de lavar, las células se sembraron en cuatro placas de cultivo celular de 96 pocillos. Se seleccionaron clones híbridos cultivando en medio HAT [medio de cultivo RPMI 1640 (Biochrom, Berlín, DE) complementado con 20 % de suero bovino fetal (PAN Biotech GmbH, Aigenbach, DE) y suplemento HAT (50x; PAN)].
Los sobrenadantes de cultivo se cribaron principalmente para anticuerpos IgG específicos de antígeno dos semanas después de la fusión. La presencia de un anticuerpo específico de antígeno en los sobrenadantes de cultivo se midió por su unión a los siguientes péptidos:
-MCP-1 1-9 humano,
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extremadamente fuerte de 332-4B8 a su antígeno (Figura 1A).
Por tanto, el anticuerpo monoclonal 332-4F8 mostró una unión muy estable a MCP-1 N1pE-38 humano. Sin embargo, este clon de anticuerpo solo logró aproximadamente 150 UR dentro de 180 segundos de tiempo de asociación. Por otra parte, no se produjo disociación a todas las concentraciones probadas (Figura 1B).
Los clones de anticuerpo monoclonal 348-2C9 y 348-1D4 mostraron características de unión casi iguales. A 20 µg/ml se monitorizó una señal de asociación de aproximadamente 500 UR para ambos clones. La velocidad de asociación disminuyó con concentraciones menores de anticuerpo. Aunque la disociación también fue observable a 1 µg/ml de anticuerpo, las señales medidas permanecieron muy por encima de la línea basal (Figura 1C + Figura 1D).
Tomados conjuntamente, los resultados proporcionan evidencia de que todos los anticuerpos monoclonales probados pueden interaccionar con su antígeno MCP-1 N1pE correspondiente.
Ejemplo 3: Análisis de transferencia puntual de anticuerpos monoclonales generados dirigidos contra MCP-1 N1pE
A continuación se probó si las diferencias en la cinética de unión, como se han determinado por análisis de SPR, también son evidentes en una situación experimental en la que un anticuerpo empleado se deja interaccionar con su antígeno durante un periodo prolongado de tiempo.
Se llevó a cabo un simple protocolo de transferencia puntual para obtener una idea general sobre la sensibilidad de los clones del anticuerpo MCP-1 N1pE hacia el péptido nativo respectivo. Los péptidos MCP-1 N1pE-38 humano y MCP-1 D3-38 humano en concentraciones descendentes (1000 ng – 20 ng) se aplicaron como manchas sobre pequeños trozos de membranas de nitrocelulosa. Para el análisis, las membranas se bloquearon durante dos horas con TBST-M (=TBST (solución salina tamponada con Tris + 0,05 % de Tween-20) + 5 % de leche desnatada) a temperatura ambiente con agitación suave. Las membranas se incubaron durante la noche a 4 ºC sobre una plataforma de balanceo con los clones de anticuerpo para MCP-1 N1pE individuales diluidos a 1 µg/ml en volúmenes iguales de TBST-M. Se usó anticuerpo antiratón secundario conjugado con fosfatasa alcalina para la detección de señales, siguiendo procedimientos convencionales.
Resultados:
Como se observa en la Figura 2A -2D, todos los clones de anticuerpo probados revelaron resultados casi iguales en el análisis de transferencia puntual. Las concentraciones del péptido MCP-1 N1pE-38 de hasta 20 ng fueron claramente detectadas por los anticuerpos monoclonales purificados por proteína G 332-4B8, 332-4F8, 348-1D4 y 348-2C9. Ninguno de los clones de anticuerpo generó reactividad cruzada con MCP-1 D3-38.
Ejemplo 4: Análisis PepSpot de anticuerpos monoclonales generados dirigidos contra MCP-1 N1pE
Para determinar la especificidad y selectividad de los clones de anticuerpo para MCP-1 N1pE en más detalle, se realizó análisis PepSpot.
Se prepararon membranas PepSpot correspondientes por JPT Peptide Technologies GmbH, Berlín (JPT). Sobre estas membranas, se inmovilizaron péptidos con las secuencias de aminoácidos indicadas (véase la Figura 3; Z representa pE) a una concentración de 1 µg / mancha.
Para el análisis, las membranas se bloquearon durante dos horas con TBST-M (=TBST + 5 % de leche desnatada) a temperatura ambiente con agitación suave. Las membranas se incubaron durante la noche a 4 ºC sobre una plataforma de balanceo con los clones de anticuerpo MCP-1 N1pE individuales diluidos a 1 µg/ml en volúmenes iguales de TBST-M. Se usó anticuerpo anti-ratón secundario conjugado con fosfatasa alcalina para la detección de señales, siguiendo procedimientos convencionales.
Resultados:
Como se observa en la Figura 3, los cuatro clones del anticuerpo probados fueron altamente selectivos para péptidos MCP-1 N1pE. Se obtuvieron fuertes señales sobre manchas que contenían los péptidos MCP-1 N1pE a partir de los 4 primeros aminoácidos de MCP-1 N1pE (secuencias subrayadas).
Además, las manchas con péptidos a partir de los tres primeros aminoácidos de MCP-1 N1pE (manchas 10, 13 y 14) fueron claramente reconocidas por los cuatro clones del anticuerpo. Los anticuerpos dejaron de reconocer un péptido a partir de solo dos de los aminoácidos del extremo amino de MCP-1 N1pE (mancha 12). Los anticuerpos también dejaron de reconocer manchas de péptidos a partir de aminoácidos diferentes de pE (Z). En el caso de la mancha 3, no puede excluirse la formación espontánea de pE de Q. Por tanto, las señales obtenidas con este péptido reflejan lo más probablemente la unión del anticuerpo a pE espontáneamente formado.
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