ES2322181T3 - Preparacion in situ de micelas de proteinas de suero de leche. - Google Patents
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Abstract
Un método para la preparación de una bebida caliente o un comestible líquido, el cual método comprende los siguientes pasos: - provisión de un envase de una bebida o un comestible líquido, que contiene proteína de suero de leche nativa, - calentamiento del contenido del envase con el fin de preparar una bebida o comestible líquido caliente, listo para comer, y al mismo tiempo transformación de la proteína de suero de leche nativa, por lo menos parcialmente, en micelas de proteína de suero de leche, en donde el rendimiento de conversión de la proteína de suero de leche nativa en micelas, es por lo menos del 20%.
Description
Preparación in situ de micelas de
proteínas de suero de leche.
La presente invención se refiere a micelas de
proteína de suero de leche, particularmente un método y
composiciones para la formación de las mismas in situ. La
presente invención se refiere también a bebidas instantáneas o
comestibles líquidos que contienen dichas micelas.
La proteína constituye una parte indispensable
de las dietas de muchas personas. No solamente se emplea por su
valor nutritivo sino también porque imparte también una deseable
textura y estabilización a los alimentos. Por ejemplo, en productos
que contienen grasas, la grasa debe permanecer estabilizada durante
toda el tiempo de almacenamiento del producto, de manera que no
tenga lugar una separación de fases.
Para finalizar, se utilizan agentes
emulsionantes que proporcionan una estabilización de la emulsión
una vez formada, basada en su inherente propiedad de que una parte
lipofílica o hidrofóbica es soluble en la fase no acuosa y una
parte polar o hidrofílica es soluble en el agua, de manera que
dichas moléculas facilitan la emulsión de una fase en la otra fase.
Además, los agentes emulsionantes protegen también las gotitas
formadas por agregación y coalescencia. Como agentes emulsionantes
se emplean substancias que se encuentran en la naturaleza, como por
ejemplo, hidrocoloides, fosfolípidos (lecitina) o glicolípidos, y
por otro lado pueden utilizarse también agentes sintéticos como por
ejemplo, el 2-lactilato de estearilo, o los mono-,
diacilglicéridos, etc.
Uno de los mayores inconvenientes de los agentes
reside en que algunas veces se suman substancialmente a los costes
del producto final, y no se suman al valor nutritivo del producto.
Algunas veces esta clase de materiales no muestran propiedades
adecuadas de estabilización a causa de una interfacial competición
con las proteínas.
Por todo ello, de una manera creciente, la
proteína se emplea también como emulsionante y como un parcial
sustituto de la grasa.
La patente US 6767575 B1 describe una
preparación de un producto agregado de proteína de suero de leche,
en donde la proteína de suero de leche está desnaturalizada por
acidificación y calor. Los agregados de proteína así obtenidos se
emplean para aplicar a los alimentos.
La patente GB 1079604 describe
perfeccionamientos en la fabricación del queso, en los cuales las
proteínas del suero de leche se someten a un tratamiento térmico
con un valor óptimo del pH, con el fin de obtener proteínas de
suero de leche insolubles que a continuación se añaden a la leche
cruda.
La patente WO 93/07761 se refiere a la provisión
de un producto seco de proteína en micropartículas, el cual puede
emplearse como substitutivo de la grasa.
La patente US 5750183 describe un procedimiento
para la producción de micropartículas proteínicas que son útiles
como substitutivas de la grasa, y no contienen ninguna grasa.
Un substituto proteínico de la grasa, se
describe también en la patente WO 91/17665, en donde las proteínas
están en forma de una proteína de suero de leche desnaturalizada en
micropartículas dispersables en agua.
Aparte de las aplicaciones en alimentación, las
proteínas están también presentes en muchas composiciones
farmacéuticas y cosméticas.
Uno de los problemas que aparecen en la
producción de productos que contienen proteínas globulares en
general, y proteína de suero de leche en particular es, sin
embargo, su limitada procesabilidad. En efecto, las moléculas de
proteína cuando se calientan, o cuando se someten a un ambiente
ácido o alcalino o en presencia de sales, tienen tendencia a perder
su estructura nativa, y a reagruparse en estructuras varias, como
por ejemplo, los geles.
La preparación de composiciones acuosas
gelificadas de proteínas de suero de leche es el objetivo de la
patente EP 1281322.
Elofsson et al., en International Dairy
Journal ("Revista de Lechería Internacional"), 1997, páginas
601-608, describe la gelificación en frío de
concentrados de proteína de suero de leche.
De manera similar, Kilara et al., en
Journal of Agriculture and Food 20 Chemistry ("Revista de
Agricultura y Alimentos 20 Química"), 1998, páginas
1830-1835, describe el efecto del pH sobre la
agregación de las proteínas de suero de leche y su gelación.
Este efecto gel presenta una limitación, en lo
que se refiere no solamente a la procesabilidad (por ejemplo, la
obturación de las máquinas empleadas en la fabricación de productos
que contienen proteína) sino también en lo que se refiere a la
textura así obtenida, la cual puede no ser deseable para el amplio
espectro de aplicaciones de la proteína.
Una desnaturalización controlada de las
proteínas es por lo tanto deseable, con el fin de ampliar el empleo
de las proteínas.
Erdman en el Journal of American College of
Nutrition ("Revista del Colegio Americano de Nutrición"),
1990, páginas 398-409, describe que la calidad de
la proteína en micropartículas no se ve afectada a pesar de
utilizar un alto cizallamiento, y temperatura.
La patente EP 0603981 describe también una
emulsión aceite-en-agua que
contiene proteínas que es estable al calor.
La patente US 4.309.417 describe bebidas
isotónicas enriquecidas con proteína, que comprenden proteína de
suero de leche como fuente preferida de proteínas.
Una bebida completa, nutritivamente equilibrada,
o una composición alimenticia que comprende una proteína de alta
calidad nutritiva, como por ejemplo la proteína de suero de leche,
y en donde el componente de proteína proporciona el
16-30% de la cantidad calórica, se describe en la
patente US 6.036.984.
La patente US 4.110.476 se refiere a la
preparación de yogures líquidos y congelados, estables, que
comprenden un concentrado desnaturalizado de proteína de suero de
leche.
La patente US 2002/0039617, se refiere a la
formación de partículas de proteína insolubles basadas en proteína
de suero de leche, las cuales pueden añadirse a un alimento o a
bebidas instantáneas, y tiene propiedades organolépticas similares
a las de las grasas y aceites altos en calorías.
Por todo ello, un objetivo de la invención es el
perfeccionamiento de la utilizabilidad y aplicabilidad de las
proteínas en procesos térmicos.
De acuerdo con lo dicho, este objetivo se logra
por medio de las características de las reivindicaciones
independientes. Las reivindicaciones dependientes desarrollan
además la idea central de la presente invención.
Para lograr este objetivo, se proporciona un
método para la preparación de una bebida caliente o un comestible
líquido, comprendiendo dicho método los siguientes pasos: provisión
de una bebida o envase de comestible líquido, que contiene proteína
de suero de leche nativa, calentamiento de dicho envase con el fin
de preparar una bebida caliente o un comestible líquido
listo-para-comer, y al mismo tiempo
transformación de la proteína de suero de leche nativa, por lo
menos parcialmente, en micelas de proteína de suero de leche, en
donde el rendimiento de conversión de proteína de suero de leche
nativa en micelas es por lo menos del 20%.
En un segundo aspecto, la invención se refiere a
la composición alimenticia o a la bebida, así obtenida, en donde
por lo menos un 20% de la proteína de suero de leche son micelas de
proteína de suero de leche.
La invención proporciona también, en un tercer
aspecto, un envase de alimentos instantáneos, que comprende
ingredientes de proteína de suero de leche, y de una bebida o
comestible líquido, en donde al calentar la proteína de suero de
leche nativa, se convierte en micelas de proteína de suero de
leche.
La presente invención se describe además, de
ahora en adelante, con referencia a algunas versiones preferidas
mostradas en las figuras anexas, en las cuales:
La figura 1 muestra el resultado de un estudio
que demuestra el efecto del pH y del tratamiento térmico sobre la
micelación de la \beta-lactoglobulina.
La figura 2 muestra un medio para determinar el
pH de micelación de una preparación comercial (Bipro®, partida JE
032-1-420), empleando mediciones de
la turbidez a 500 nm.
La figura 3 es una micrografía de microscopia
electrónica de transmisión, de micelas de proteína de suero de
leche (2 por ciento en peso, WPI 95, Lactalis) a un pH de 7,4. La
barra de escala es de 200 nm.
La figura 4 muestra el resultado de un estudio
para evaluar el impacto de la fuerza iónica (arginina HCl) en la
formación de micelas de proteína a un pH constante de 7,0.
\newpage
La figura 5 muestra la estabilidad del volumen
(FVS) de la espuma estabilizada mediante el 1% en peso de micelas
de \beta-lactoglobulina (Davisco) a un pH de 7,0
en presencia de 60 mM de arginina HCl, en comparación con la
(\beta-lactoglobulina no micelizada.
La figura 6 muestra el diámetro hidrodinámico
equivalente, basado en la intensidad, de la proteína de suero de
leche obtenida por tratamiento térmico de una dispersión de un 1%
en peso de \beta-lactoglobulina, durante 15
minutos a 85ºC a un pH que oscila de 2 a 8. Las micelas de proteína
de suero de leche se obtienen a pH 4,25 (cargadas positivamente con
un potencial zeta alrededor de +25 mV) y a un pH 6,0 (cargado
negativamente con un potencial zeta alrededor de -30 mV). El
diámetro hidrodinámico promediado por Z, de las micelas, fue de
229,3 nm a un pH de 4,25 y 227,2 nm a un pH de 6,0. Se muestran las
correspondientes micrografías de las micelas, obtenidas mediante
TEM después de un manchado negativo. Las barras de escala son de 1
\mum.
La figura 7 muestra una estructura plenamente
esquemática de una micela de proteína de suero de leche.
La figura 8 muestra una micrografía SEM Scanning
electron microscopy) ("microscopía electrónica de scanning")
de un polvo de micelas de proteína de suero de leche, obtenida
después de un secado por pulverización de una dispersión
conteniendo un 20% de proteína, después de la microfiltración.
La figura 9 es una micrografía TEM con tinción
negativa, de una dispersión de micelas de proteína de suero de
leche, obtenida con un 4% de contenido de proteína.
La figura 10 es una micrografía TEM con tinción
negativa de una dispersión de micelas de proteína de suero de
leche, obtenida con un 20% de contenido de proteína, después de la
microfiltración.
La figura 11 muestra la estabilidad térmica de
una dispersión de micelas de proteína de suero de leche obtenida
con un 10% de contenido de proteína, después de la microfiltración,
a un pH 7,0, en presencia de NaCl, después de calentar a 85ºC
durante 15 minutos.
La figura 12 muestra la estabilidad térmica de
una dispersión de proteína de suero de leche, obtenida con un 14%
de contenido de proteína, a un pH 7,0 en presencia de NaCl, después
de calentar a 85ºC durante 15 minutos.
La figura 13 es una micrografía TEM con tinción
negativa, de una dispersión de micelas de proteína de suero de
leche al 4%, basada en un polvo seco pulverizado de micelas puras
de proteína de suero de leche, después de la dispersión a 50ºC en
agua desionizada.
La figura 14 es una gráfica que muestra la
distribución por tamaños de las micelas obtenidas por el
procedimiento de la invención, empleando un 4% de Prolacta 90, un
aislado de proteína de suero de leche, tratado a un pH de 5,9.
La figura 15 es una micrografía SEM que muestra
la estructura interna después de cortar un gránulo de polvo secado
por pulverización, como aparece en la figura 8.
La figura 16 es una micrografía TEM con tinción
negativa, de una dispersión al 4% de micelas de proteína de suero
de leche, basada en un polvo puro de micelas de proteína de suero
de leche, liofilizado, después a temperatura ambiente en agua
desionizada. La barra de escala es de 0,5 micrómetros.
De acuerdo con la presente invención, se
proporciona un método para la preparación de una bebida caliente o
un comestible líquido, en donde las proteínas de suero de leche
nativa, presentes en un envase antes del calentamiento, se
transforman por lo menos parcialmente en micelas de proteína de
suero de leche, en donde el rendimiento de conversión de la
proteína de suero de leche nativa en micelas, es por lo menos del
20%.
La figura 7 es una representación esquemática de
las micelas obtenidas mediante el método de la presente invención,
en donde las proteínas de suero de leche están dispuestas de tal
forma que las partes hidrofílicas de las proteínas están orientadas
hacia la parte exterior del aglomerado y las partes hidrofóbicas de
las proteínas están orientadas hacia el "núcleo" de la micela.
Esta configuración energéticamente favorable, ofrece una buena
estabilidad a estas estructuras en un ambiente hidrofílico.
La estructura específica de la micela puede
verse a partir de las figuras, en particular, de las figuras 3, 9,
10, 13 y 15, en donde las micelas consisten esencialmente en
aglomerados esféricos de proteína de suero de leche
desnaturali-
zada.
zada.
Debido a su carácter dual (hidrofílico e
hidrofóbico), este estado desnaturalizado de la proteína parece
permitir una interacción con una fase hidrofóbica, por ejemplo una
gotita de grasa o de aire, y una fase hidrofílica. Las micelas de
proteína de suero de leche tienen por lo tanto propiedades para una
perfecta emulsión y formación de espuma.
Además, las micelas producidas mediante el
método de la presente invención tienen una distribución por tamaños
extremadamente aguda (ver figura 14), de forma que más del 80% de
las micelas producidas tendrán un tamaño inferior a 1 micra, de
preferencia, entre 100 nm y 900 nm, con más preferencia entre 100 y
770 nm, con la mayor preferencia, entre 200 y 400 nm.
El diámetro medio de las micelas puede
determinarse empleando la microscopia electrónica de transmisión
(TEM). Para ello, las muestras líquidas de micelas se encapsulan en
tubos de gel de agar. La fijación se logra mediante inmersión en
una solución de 2,5% de glutaraldehído, en tampón de cacodilato 0,1
M, pH 7,4, y post-fijación con 2% de tetróxido de
osmio, en el mismo tampón, conteniendo ambas soluciones un 0,04% de
rojo de rutenio. Después de la deshidratación en series de etanol
graduado (70, 80, 90, 26, 100% de etanol), las muestras se
impregnaron en resina Spurr (Spurr/etanol 1:1, 2:1, 100%). Después
de la polimerización de la resina (70ºC, 48 horas) se cortaron unas
secciones semidelgadas y ultradelgadas, con un
ultra-microtomo Leica ultracut UCT. Las secciones
ultradelgadas, se tintaron con acetato de uranilo acuoso y citrato
de plomo, y a continuación se examinaron mediante microscopia
electrónica de transmisión (Philips CM12, 80 kV).
Sin pretender unirnos a ninguna teoría, se cree
que durante la formación de las micelas de acuerdo con el
procedimiento de la invención, la micela alcanza un tamaño
"máximo", debido a la carga electrostática total de la micela,
que repele cualquier molécula de proteína adicional, de manera que
la micela no puede crecer en tamaño algo más largo. Esto justifica
la estrecha distribución por tamaños observada (véase figura
14).
Las micelas descritas anteriormente pueden estar
formadas in situ de acuerdo con la presente invención y
estar presentes en la composición alimenticia o bebida, que se
obtiene mediante el método de la presente invención, en donde por
lo menos un 20% de la proteína de suero de leche son micelas de
proteína de suero de leche.
El primer paso en el método de la presente
invención es el de proporcionar un envase de bebida o comestible
líquido, que comprende proteína de suero de leche nativa.
Como proteína de suero de leche para ser usada
en el presente método, puede emplearse cualquier aislado o
concentrado de proteína de suero de leche disponible, es decir
proteína de suero de leche obtenida por cualquier procedimiento
para la preparación de proteína de suero de leche conocido en la
especialidad, así como también fracciones de proteína de suero de
leche preparadas a partir de las mismas o proteínas tales como la
\beta-lactoglobulina (BLG),
\alpha-lactalbúmina y albúmina de suero. En
particular, puede emplearse como proteína de suero de leche, el
suero de leche fresco obtenido como producto secundario en la
fabricación del queso, suero de leche ácido obtenido como producto
secundario en la fabricación de caseína ácida, suero de leche
nativo obtenido mediante la microfiltración de la leche o suero de
leche de cuajo obtenido como producto secundario en la fabricación
de caseína de cuajo. La proteína de suero de leche puede proceder
de una fuente única o de mezclas de fuentes cualesquiera.
La presente invención no está restringida a
aislados de suero de leche a partir de origen bovino, sino que se
refiere a aislados de suero de leche a partir de especies de
animales mamíferos, como por ejemplo ovejas, cabras, caballos, y
camellos. También, el procedimiento de acuerdo con la presente
invención se refiere a preparaciones de suero de leche
mineralizadas, desmineralizadas o ligeramente mineralizadas. Con la
expresión "ligeramente mineralizadas" se quiere indicar
cualquier preparación de suero de leche después de la eliminación
de los minerales libres que son dializables o diafiltrables, pero
que mantienen minerales asociados a la misma mediante una
mineralización natural después de la preparación del concentrado o
aislado de proteína de suero de leche, por ejemplo. Estas
preparaciones "ligeramente mineralizadas" de suero de leche,
no han tenido ningún enriquecimiento mineral específico.
Las proteínas de suero de leche son una
excelente fuente de aminoácidos esenciales (AA) (45%). Comparadas
con la caseína (que contiene 0,3 g de cisteína/100 g de proteína)
las proteínas de suero de leche fresco, contienen 7 veces más
cisteína, y el suero de leche ácido, 10 veces más cisteína. La
cisteína es la proporción límite de aminoácidos para la síntesis
del glutatión (GSH), un tripéptido hecho de glutamato, cisteína y
glicina, el cual tiene funciones primarias importantes en la defensa
del cuerpo en caso de estrés. Los requisitos en estos aminoácidos
puede aumentarse en caso de estrés y en personas mayores. Se ha
demostrado también, que un suplemento oral de glutation con
proteína de suero de leche aumenta los niveles de plasma GSH de los
nacientes infectados con HIV (Eur. J. Clin. Invest. 2001; 31,
171-178).
Otros beneficios para la salud proporcionados
por estas proteínas de suero de leche incluyen la potenciación del
desarrollo y construcción muscular, así como también el
mantenimiento muscular en los niños, adultos, o personas mayores,
potenciación de la función inmunológica, mejora de la función
cognitiva, control de la glucosa de la sangre, de manera que es
adecuada para los diabéticos, gestión del peso y de la saciedad,
efectos antiinflamatorios, curación de heridas y reparación de la
piel, disminución de la tensión sanguínea, etc.
Las proteínas del suero de leche tienen un mejor
ratio de eficiencia de la proteína (PER = 118), comparado por
ejemplo con la caseína (PER = 100). El PER es una medida de calidad
de la proteína dictaminada mediante la determinación de la forma en
que dicha proteína soporta el aumento de peso. Puede calcularse
mediante la siguiente fórmula:
Para el procedimiento de la invención las
proteínas del suero de leche nativa, se proporcionan en un envase.
El contenido del envase puede ser en forma de ingredientes secos
para diluir o en una forma líquida.
Cuando se proporciona en forma de ingredientes
secos, el contenido del envase es de preferencia un polvo
esencialmente seco. Este polvo comprende proteína de suero de leche
nativa en una cantidad de por lo menos un 4%, de preferencia no más
del 6%. Adicionalmente, el polvo puede comprender además
ingredientes alimenticios en forma de polvo, como por ejemplo,
productos culinarios deshidratados, sales, gránulos secos de café
soluble, extractos de te, extractos vegetales, azúcares, etc..
Antes de calentar, se diluye el contenido seco
del envase, de forma que, cuando están en solución, las proteínas
de suero de leche están presentes en una cantidad del 0,1% en peso
al 12% en peso, de preferencia en una cantidad del 0,1% en peso al
8% en peso, con más preferencia en una cantidad del 0,2% en peso al
7% en peso, con mayor preferencia en una cantidad del 0,5% en peso
al 6% en peso, con la máxima preferencia en una cantidad del 1% en
peso al 4% en peso, referidos todos al peso total de la
solución.
El polvo se diluye de preferencia con agua.
Cuando el contenido del envase se proporciona en
forma líquida, el líquido comprende la proteína de suero de leche
nativa en una cantidad del 0,1% en peso al 12% en peso, de
preferencia en una cantidad del 0,1% en peso al 8% en peso, con más
preferencia en una cantidad del 0,2% en peso al 7% en peso, con más
preferencia en una cantidad del 0,5% en peso al 6% en peso, con la
máxima preferencia en una cantidad del 1% en peso al 4% en peso,
referidos todos al peso total de la solución.
La solución acuosa de la preparación de proteína
de suero de leche presente antes del paso de calentamiento, puede
comprender también compuestos adicionales, los cuales pueden
proceder de los ingredientes del polvo o de la propia solución.
Dichos compuestos adicionales son por ejemplo productos secundarios
de los respectivos procedimientos de producción del suero de leche,
otras proteínas, gomas o hidratos de carbono.
El envase puede comprender otros ingredientes
comestibles tales como: ingredientes de sopa, ingredientes de
salsa, ingredientes de cacao, ingredientes del te, extractos
vegetales, ingredientes de postres dulces, grasas, sales,
emulsionantes, azúcares, maltodextrinas, polisacáridos tales como
la goma acacia o carrageno, cereales, fibras solubles, etc.. Puede
comprender aromas como por ejemplo la vainilla, caramelo, fruta,
chocolate, café, aroma de canela, etc.. Puede comprender también
otros ingredientes funcionales tales como por ejemplo edulcorantes,
cafeína, vitaminas, minerales, fármacos, ligandos, agentes
bioactivos, etc.
La proteína de suero de leche, así como también
las fracciones y/o las principales proteínas de la misma, puede
emplearse en forma purificada o de manera similar en forma de
producto crudo. De acuerdo con una versión preferida, el contenido
de cationes divalentes en la proteína de suero de leche para la
preparación de la bebida o comestible líquido puede ser inferior al
2,5%, con más preferencia inferior al 2% y todavía con más
preferencia inferior al 0,2%. Lo más preferible es que las
proteínas del suero de leche estén completamente
desmineralizadas.
De acuerdo con el presente descubrimiento, el pH
y la fuerza fónica de la solución acuosa de proteína de suero de
leche nativa, son factores importantes en el presente método. Así
por ejemplo, para muestras ampliamente dializadas de proteínas de
suero de leche nativas, las cuales están virtualmente desprovistas o
reducidas de cationes libres tales como el Ca, K, Na, Mg, se ha
descubierto que cuando se efectúa el tratamiento térmico durante un
periodo de tiempo de 10 segundos hasta 2 horas a un pH por debajo
de 5,0, se obtiene una cuajada, mientras que a un pH que excede de
6,8, se obtiene una proteína de suero de leche soluble (ver figura
1). Así, solamente en esta ventana de pH más bien estrecha se
obtendrán micelas de proteínas de suero de leche con un diámetro
inferior a 1 \mum. Estas micelas tendrán una carga totalmente
negativa. La misma forma de micela puede también obtenerse
simétricamente por debajo del pH isoeléctrico, es decir de 3,5 a
5,0, con más preferencia de 3,8 a 4,5, dando por resultado micelas
que están cargadas positivamente (ver figura 6).
Así, con el fin de obtener micelas cargadas
positivamente, la micelización de las proteínas de suero de leche
puede hacerse en una solución libre de sal a un valor del pH
ajustado entre 3,8 y 4,5, en función del contenido de mineral de la
fuente de proteína.
Las micelas obtenidas por el método de la
presente invención, tienen de preferencia una carga globalmente
negativa. Así, en una versión preferida, el pH de la solución
acuosa antes del calentamiento puede estar en un margen de 5 a
9.
Más específicamente, para obtener micelas
cargadas negativamente, el pH puede estar en el margen de 5,6 a 6,
4, con más preferencia de 5,8 a 6, 0, para un contenido bajo de
cationes divalentes (por ejemplo menos del 0,2% del polvo inicial
de la proteína de suero de leche). El pH se aumenta hasta 8,4 en
función del contenido de mineral de la fuente de proteína de suero
de leche (concentrado o aislado). En particular, el pH puede estar
entre 7,5 a 8,4, de preferencia 7,6 a 8,0, para obtener micelas
cargadas negativamente en presencia de grandes cantidades de
minerales libres y el pH puede estar entre 6,4 y 7,4, de
preferencia entre 6,6 y 7,2, para obtener micelas cargadas
negativamente en presencia de cantidades moderadas de minerales
libres. Como regla general cuanto más alto es el contenido de
calcio y/o magnesio del polvo inicial de proteína de suero de
leche, tanto más alto es el pH de la micelización.
Con el fin de estandarizar las condiciones de
formación de las micelas de proteína de suero de leche, es más
preferible desmineralizadas por cualquiera de las técnicas conocidas
de desmineralización (diálisis, ultrafiltración, ósmosis inversa,
cromatografía de intercambio iónico...), cualquier fuente de
proteínas de suero de leche nativas líquidas, con una concentración
de proteína oscilando desde un suero de leche fresco, un permeato
de microfiltración de leche o suero de leche ácido (0,9% de
contenido en proteína) al de un concentrado con el 30% de contenido
de proteína. La diálisis puede efectuarse frente a agua (destilada,
desionizada, o blanda) pero como dicha diálisis permitirá solamente
la eliminación de los iones débilmente unidos a las proteínas de
suero de leche, es más preferible dializar frente a un ácido a un
pH inferior a 4,0 (orgánico o inorgánico) para controlar mejor la
composición iónica de las proteínas de suero de leche. De esta
forma, el pH de formación de micelas de proteína de suero de leche
está por debajo de un pH 7,0, con más preferencia, comprendido
entre 5,8 y 6,6.
Cuando los contenidos del envase están en forma
líquida, el pH se ajusta generalmente mediante la adición de ácido,
el cual es de preferencia de calidad alimenticia, tal como por
ejemplo, el ácido clorhídrico, ácido fosfórico, ácido acético,
ácido cítrico, ácido glucónico o ácido láctico. Si el contenido de
mineral es alto, el pH se ajusta generalmente mediante la adición
de una solución alcalina, la cual es de preferencia de grado
alimenticio, tal como por ejemplo el hidróxido de sodio, hidróxido
de potasio, o hidróxido de amonio. En cualquier caso, el pH del
líquido está entre 5 y 9, de preferencia entre 5 y 8.
Cuando los contenidos del envase están en forma
seca, los ingredientes secos se seleccionan de forma que cuando se
diluyen con agua, el pH de la solución antes del calentamiento está
entre 5 y 9, de preferencia entre 5 y 8.
Alternativamente, si no se desea ningún paso de
ajuste del pH, es posible ajustar la fuerza iónica de la
preparación de proteína de suero de leche mientras se mantiene el
pH constante. A continuación, la fuerza iónica puede ajustarse
mediante iones orgánicos o inorgánicos de forma que se permita la
micelización a un valor constante del pH, de 7. La figura 4,
muestra que las micelas pueden formarse a un valor constante del
pH, de 7,0, mientras la fuerza fónica se varía mediante la adición
de 70-80 mM de arginina HCl.
Puede añadirse además un tampón a la solución
acuosa de la proteína de suero de leche o al polvo seco, de forma
que se evite un cambio substancial del valor del pH durante el
tratamiento térmico de la proteína de suero de leche. En principio
el tampón puede seleccionarse a partir de cualquier sistema tampón
de calidad alimenticia, como por ejemplo el ácido acético y sus
sales, como por ejemplo el acetato de sodio o el acetato de
potasio, el ácido fosfórico y las sales del mismo, por ejemplo el
NaH_{2}PO_{4}, Na_{2}HPO_{4}, KH_{2}PO_{4},
K_{2}HPO_{4}, ó el ácido cítrico y las sales del mismo,
etc.
Ajustando el pH y/o la fuerza fónica de la
solución acuosa, resulta un procedimiento controlado que
proporciona micelas que tienen un tamaño entre 100 nm y 900 nm, de
preferencia entre 100 y 700 nm, con mayor preferencia entre 200 y
400 nm. De preferencia, la distribución de micelas que tienen unas
dimensiones entre 100 y 700 nm es mayor del 80% cuando se efectúa el
procedimiento de la invención (ver figura 14).
En un segundo paso del procedimiento de la
presente invención, la preparación que comprende la proteína de
suero de leche nativa, se somete a continuación al tratamiento
térmico. Cuando el envase de la presente invención está en forma de
un polvo, se añade generalmente agua antes del paso de
calentamiento. A este respecto, se ha descubierto que para obtener
micelas de proteína de suero de leche, es importante tener la
temperatura en un margen de aproximadamente 80 a aproximadamente
98ºC, de preferencia de aproximadamente 82 a aproximadamente 89ºC,
con más preferencia de aproximadamente 84 a aproximadamente 87ºC,
con la mayor preferencia a aproximadamente 85ºC.
Una vez se ha alcanzado la temperatura deseada,
se mantiene a esta temperatura durante un mínimo de 10 segundos y
un máximo de 2 horas. De preferencia, el período de tiempo durante
el cual la solución de proteína de suero de leche acuosa se
mantiene a la temperatura deseada, oscila de 12 a 25 minutos, con
más preferencia de 12 a 20 minutos, o con la mayor preferencia,
aproximadamente 15 minutos.
El tratamiento térmico, puede lograrse también
en un horno de microondas, o cualquier equipo similar que permita
el calentamiento mediante microondas con una relación
tiempo/cantidad entre 0,8 segundos por ml y 1,2 segundos por ml de
solución. Esto dependerá de la temperatura inicial de la solución
antes del calentamiento y de la potencia del horno de microondas.
Por ejemplo una solución de proteínas al 4% en peso calentada en un
aparato de 1500 W hasta la temperatura de ebullición (98ºC a una
altitud de 833 m), requiere aproximadamente 1 segundo por ml de
solución. Un proceso continuo puede también emplearse mediante la
adición de 8 ó más magnetrones alrededor de un tubo de vidrio
potencialmente prolongado mediante un tubo de apoyo para aumentar
el tiempo de incubación.
El calentamiento del contenido del envase, de
acuerdo con la presente invención, permite la preparación de una
bebida o comestible líquido,
listo-para-comer, mientras que al
mismo tiempo se transforma la proteína de suero de leche nativa,
por lo menos parcialmente, en micelas de proteína de suero de
leche, en donde el rendimiento de la conversión de proteína de
suero de leche nativa en micelas es por lo menos del 20%. De
preferencia, la solución se calienta a una temperatura entre 80ºC y
100ºC.
Como muestra la figura 2, las mediciones de la
turbidez son una indicación de la formación de micelas. De acuerdo
con la presente invención, la turbidez medida por la absorbancia a
500 nm es por lo menos de 3 unidades de absorbancia para la
solución de proteína al 1% pero puede alcanzar 16 unidades de
absorbancia cuando el rendimiento de la micelización es superior al
80% (véase la figura 2). Como resultado de la presente invención,
la solución calentada tendrá una apariencia lechosa debido a la
presencia de las micelas de proteína de suero de leche.
Para ilustrar más el efecto de la formación de
micelas desde un punto de vista físico químico, se ha calentado una
dispersión al 1% en peso, de Bipro®, durante 15 minutos a 85ºC, a
un pH entre 6,0 y 6,8 en agua MilliQ. El diámetro hidrodinámico de
los agregados obtenidos después del tratamiento térmico, se midió
mediante dispersión dinámica de la luz. El peso molecular aparente
de los agregados se determinó mediante dispersión estática de la
luz empleando el llamado "Debye plot". La hidrofobicidad de la
superficie se ensayó empleando la prueba hidrofóbica ANS en los
grupos tiol accesibles libremente, mediante el método DTNB
empleando cisteína como aminoácido estándar. Finalmente, la
morfología de los agregados se estudió mediante la tinción negativa
TEM. Los resultados están presentados en la tabla 1.
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A partir de la tabla 1, es evidente que las
micelas de proteína de suero de leche que se formaron a pH 6,0,
permiten que la proteína disminuya su hidrofobicidad de la
superficie ANS especifica, por un factor de 2, comparado con la
proteína de suero de leche no micelizada, calentada en las mismas
condiciones, pero a pH 6,8. La formación de micelas puede verse
también en el muy alto peso molecular de 27 x 10^{6} g.
mol^{-1} comparado con 0,64 x 10^{6} g.mol^{-1} para proteína
no micelizada, indicando un estado muy condensado de la materia
dentro de la micela (baja cantidad de agua). Es bastante
interesante que el potencial \zeta de las micelas sea aún más
negativo que el de las proteínas no micelizadas incluso si estas
últimas han sido formadas con un pH más básico que las micelas.
Esto es el resultado de una superficie más hidrofílica de las
micelas que han estado expuestas al disolvente. Finalmente, debe
hacerse notar que la reactividad tiol de las micelas es mucho más
baja que la de la proteína no micelizada debido al diferente pH del
tratamiento térmico.
Se ha descubierto que el rendimiento de la
conversión de la proteína de suero de leche nativa en micelas,
disminuye cuando la concentración de proteínas inicial de la
proteína de suero de leche nativa es alta. Por ejemplo cuando se
parte de un aislado Prolacta 90 de proteína de suero de leche (lote
673 de Lactalis), el rendimiento de formación de gotas de micelas
de proteína de suero de leche va de un 85% (partiendo de un 4% de
proteínas) a un 50% (partiendo de un 12% de proteínas). Con el fin
de maximizar la formación de micelas de proteína de suero de leche
(> 85% del contenido inicial de proteínas), es mejor partir de
una solución acuosa de proteínas de suero de leche que tenga una
concentración en proteínas inferior al 12%, de preferencia inferior
al 4%. En función de las aplicaciones finales previstas, la
concentración en proteína se ajusta antes del tratamiento térmico
para gestionar el rendimiento óptimo de micelas de proteína de
suero de leche.
De acuerdo con el presente método, la proteína
de suero de leche nativa se convierte en micelas de proteína de
suero de leche durante el paso térmico. El rendimiento de
conversión de proteína de suero de leche nativa en micelas es por
lo menos del 20%, de preferencia por lo menos del 50%, con más
preferencia por lo menos del 80%, y los agregados solubles
residuales o contenido en proteína soluble es de preferencia
inferior al 20%. Las micelas de proteína de suero de leche
obtenidas de acuerdo con el presente método tienen un diámetro
promedio inferior a 1 \mum, de preferencia de 100 a 900 nm, con
más preferencia de 100 a 700 nm, con la mayor preferencia de 200 a
400 nm.
El tamaño promedio de la micela se caracteriza
por un índice de polidispersión por debajo de 0,200. Como
consecuencia, la suspensión blanca obtenida mediante la presente
invención es estable y tiene un aspecto lechoso en un amplio margen
de pH 2-8. Se ha observado que las micelas de
proteína de suero de leche pueden formar agregados aproximadamente
a un pH de 4,5, aunque sin ningún signo de separación macroscópica
de fases, después por lo menos de 12 horas a 4ºC.
La pureza de las micelas de proteína de suero de
leche producidas de acuerdo con el método de la presente invención,
puede obtenerse mediante la determinación de la cantidad de
proteínas solubles residuales. Las micelas se eliminan mediante
centrifugación a 20ºC y 26900 g durante 15 minutos. El sobrenadante
se emplea para determinar la cantidad de proteína en cubetas de
cuarzo a 280 nm (1 cm de longitud de recorrido de la luz). Los
valores están expresados en tantos por ciento del valor inicial
antes del tratamiento térmico.
Una ventaja del método de la presente invención
es que las micelas de proteína de suero de leche preparadas
adecuadamente, no han sido sometidas a ningún esfuerzo mecánico que
conduzca a la reducción del tamaño de partícula durante su
formación. Este método induce la espontánea micelización de
proteínas del suero de leche durante el tratamiento térmico en
ausencia de cizallamiento.
Las micelas de proteína de suero de leche han
mostrado ser idealmente adecuadas para emplear como un agente
blanqueante, un emulsionante, un sustituto de la grasa, un
sustituto de la caseína micelar o un agente espumante, dado que
permite estabilizar la grasa y/o el aire en un sistema acuoso
durante un período prolongado.
Por ejemplo, se han mostrado como
estabilizadores en matrices de espuma de leche. La estabilidad de
la espuma se muestra en la figura 5, en la cual se compara el
empleo de proteína de suero de leche no micelizada frente a la
proteína de suero de leche micelizada de la presente invención.
Así, las micelas de proteína de suero de leche
pueden emplearse como agente emulsionante, para lo cual el material
es idealmente adecuado, dado que tiene un sabor neutro y no se crea
ningún mal sabor por el uso de dicho material. Pueden emplearse
también como sustitutivo de la caseína micelar.
Además, las micelas de proteína de suero de
leche presentes, pueden servir como un agente blanqueante, de forma
que con un compuesto pueden satisfacerse varias objetivos. Dado
que el suero de leche es un material abundantemente disponible, el
empleo del mismo reduce el coste de un producto que requiera un
agente emulsionante, un agente de carga, un agente blanqueante o un
agente espumante, mientras que al mismo tiempo añade su valor
nutritivo. En efecto, las micelas obtenidas mediante la presente
invención tienen un ratio de eficiencia en proteína de por lo menos
100, de preferencia por lo menos 110, lo cual las convierte en un
importante ingrediente nutritivo.
Un envase de acuerdo con la presente invención,
puede así comprender ingredientes de café y proteína de suero de
leche, de forma que al calentar las micelas de proteína de suero de
leche éstas actúan como un agente blanqueante. Los ingredientes del
café en el envase pueden estar en estado seco soluble.
Debido a su sabor neutro, su poder blanqueante,
y su estabilidad después del tratamiento térmico, las micelas de
proteína de suero de leche presentes, pueden emplearse para
aumentar la blancura de la leche deshidratada y el sabor de
boca.
Así como se aumenta el poder blanqueante de
sistemas lácteos para un mismo contenido total de proteína, el
contenido graso en una matriz alimenticia puede reducirse. Esta
característica representa una particular ventaja de las presentes
micelas de proteína de suero de leche, dado que permite por
ejemplo, añadir una leche más cremosa sin la adición de una grasa
adicional derivada de la leche como tal.
En consecuencia, el método de la presente
invención puede emplearse para la preparación de cualquier clase de
producto listo-para-comer de
bebidas o comestibles líquidos, que necesite la estabilización de
una emulsión o una espuma como por ejemplo bebidas instantáneas de
capuccino, café con nata o también productos lácteos bajos en grasa
o esencialmente exentos de grasa, o también donde las micelas de
proteína de suero de leche encuentran aplicación como sustituto de
la caseína micelar. Con la expresión "comestible líquido" se
indica cualquier producto comestible en forma de líquido o
semilíquido que pueda ser consumido por un ser humano o un
animal.
Así, el envase de la presente invención puede
comprender ingredientes seleccionados del café, ingredientes de
sopa, ingredientes de salsa, ingredientes de cacao, ingredientes de
te, ingredientes de extracto vegetal, ingredientes de postre
dulce, etc..
Ejemplos de productos en donde las presentes
micelas de proteína de suero de leche pueden encontrar aplicación
son por ejemplo productos comestibles tales como sopas, productos
lácteos, leche UHT pasteurizada, leche condensada dulce, frappés,
leches fermentadas, productos fermentados a base de leche, chocolate
con leche, chocolate blanco, chocolate oscuro, chocolate caliente,
salsas, productos de postre, café capuccino, café con nata,
espumas, emulsiones, productos basados en cereales fermentados,
fórmulas infantiles, pienso para animales de compañía, suplementos
orales líquidos, etc..
Además, la presente invención proporciona un
envase de comida instantánea que comprende proteína de suero de
leche nativa y además ingredientes para una bebida o comestible
líquido, en donde después de calentar la proteína de suero de leche
nativa, se convierte en micelas de proteína de suero de leche.
Mediante el calentamiento del contenido del envase, se obtienen las
micelas de proteína de suero de leche in situ, en una sola
etapa. Así, todos los beneficios asociados con las micelas de
proteína de suero de leche (por ejemplo, agente emulsionante,
agente blanqueante, agente estabilizante, agente nutritivo, etc.) se
obtienen sin necesidad de emplear técnicas de elaboración para
formar micelas de proteína de suero de leche. Además, la ventaja en
lo que se refiere al coste, al usar proteína de suero de leche
nativa en lugar de caras emulsionantes, estabilizantes, etc., es
muy importante. Así, el atrayente equilibrio nutritivo de bebidas
calientes o líquidos consumibles, se obtiene fácilmente.
En otro aspecto de la invención, las bebidas o
comestibles líquidos
listos-para-comer, producidos,
pueden enfriarse antes de ser consumidos. Alternativamente pueden
emplearse además como un ingrediente en la fabricación de otros
consumibles, como por ejemplo, productos lácteos, mayonesa, aderezo
para ensalada, leche UHT pasteurizada, leche condensada dulce,
yogur, leche fermentada, productos fermentados a base de leche,
chocolate con leche, chocolate blanco, chocolate oscuro, mousses,
espumas, emulsiones, helados, productos basados en cereales
fermentados, polvos a base de leche, fórmulas infantiles,
reforzantes de la dieta, piensos para animales de compañía,
comprimidos, suspensiones bacterianas líquidas, suplemento oral
seco, suplemento oral líquido, etc..
En efecto, debido a su estabilidad, las micelas
producidas durante el tratamiento térmico, conservarán sus
características y funciones independientemente de cualquier proceso
de enfriamiento u otro.
En las figuras 11 y 12 se compara la estabilidad
térmica de las micelas de proteína de suero de leche con la
proteína de suero de leche nativa, en donde las micelas de proteína
de suero de leche son evidentemente más resistentes al calor.
Además, se ha demostrado que la estructura
básica de las micelas de las proteínas de suero de leche se
conserva, a pesar de otros procesos como la concentración, el
secado por pulverización, el secado por congelación, el secado por
rodillos, etc.. En efecto, los polvos obtenidos a partir del
concentrado de micelas de proteína de suero de leche pueden ser
fácilmente redispersados en agua a temperatura ambiente o a 50ºC.
El tamaño y estructura de las micelas de proteína de suero de leche
se conservan completamente, comparado con el concentrado inicial.
Por ejemplo, en la figura 13 un concentrado de micelas de proteína
de suero de leche que fue secado por pulverización a una
concentración del 20% de proteína, ha sido redispersado en agua
desionizada a 50ºC a una concentración de proteína del 50%. La
estructura de las micelas ha sido ensayada mediante el TEM, y puede
ser comparada con la figura 10. Se obtuvo una forma similar de
micelas. El diámetro de las micelas se encontró que era de 315 nm
mediante difusión dinámica de la luz, con un índice de
polidispersión de 0,2. La figura 15 muestra un grano de polvo de
proteína de suero de leche que ha sido seccionado, y en el que
pueden observarse las micelas individuales de proteína de suero de
leche. En la figura 16, las micelas se observan también después de
la redispersión de un polvo de micelas de proteína de suero de
leche secado por congelación.
Los siguientes ejemplos ilustran la presente
invención sin pretender limitarla.
La invención se define además, por referencia a
los siguientes ejemplos que describen en detalle la preparación de
las micelas de la presente invención. La invención descrita y
reivindicada en los mismos, no es para limitar el ámbito de las
versiones específicas que se describen aquí, dado que estas
versiones se pretende que sean ilustraciones de los varios aspectos
de la invención.
Se obtuvo la
\beta-lactoglobulina (lote
JE002-8-922,
13-12-2000) a partir de Davisco (Le
Sueur, MN, USA). La proteína se purificó a partir del suero de
leche fresco mediante ultrafiltración y cromatografía de
intercambio iónico. La composición del polvo es de 89,7% de
proteína, 8,85% de humedad, 1,36% de cenizas (0,079% de Ca^{2+},
0,013% de Mg^{2+}, 0,097% de K^{+}, 0,576% de Na^{+}, 0,050%
de Cl^{-}). Todos los otros reactivos empleados fueron de calidad
analítica (Merck, Darmstadt, Alemania).
La solución de proteína se preparó a la
concentración del 0,2% por solvatación de la
\beta-lactoglobulina en agua MilliQ® (Millipore),
y agitando a 20ºC durante dos horas. A continuación, se ajustó el
pH de alícuotas a 5,0, 5,2, 5,4, 5,6, 5,8, 6,0, 6,2, 6,4, 6,6, 6,8,
7,0 mediante adición de HCl. Las soluciones se envasaron en viales
de vidrio de 20 ml (Agilent Technologies) y se sellaron con
cápsulas de aluminio con un sellado de silicio/PTFE. Las soluciones
se calentaron a 85ºC durante 15 minutos (tiempo para alcanzar la
temperatura: 2.30 - 3.00 minutos). Después del tratamiento térmico,
las muestras se enfriaron en agua de hielo a 20ºC.
El aspecto visual de los productos (figura 1)
indica que el pH óptimo de micelización es de 5,8.
Se obtuvo el aislado de proteína de suero de
leche (WPI) (Bipro®, partida
JE032-1-420) a partir de Davisco (Le
Sueur, MN, USA). La composición del polvo está indicada en la tabla
2.
La solución de proteína se preparó al 3,4% de
proteína mediante solvatación del polvo de proteína de suero de
leche en agua MilliQ® (Millipore), agitando a 20ºC durante 2
horas. El pH inicial fue de 7,2. A continuación se ajustó el pH de
alícuotas a 5, 6, 5, 8, 6, 0, 6, 2, 6,4 y 6,6 mediante la adición de
HCl 0,1 N.
Las soluciones se envasaron en viales de vidrio
de 20 ml (Agilent Technologies) y se sellaron con cápsulas de
aluminio conteniendo un sellado de silicio/PTFE. Las soluciones se
calentaron a 85ºC durante 15 minutos (tiempo para alcanzar la
temperatura: 2.30 - 2.50 minutos). Después del tratamiento térmico
las muestras se enfriaron en agua de hielo a 20ºC.
La turbidez de las proteínas de suero de leche
en caliente, ha sido determinada a 500 nm y 25ºC, las muestras se
diluyeron para permitir la medición en el margen de
0,1-3 unidades Abs (espectrofotómetro Uvikon 810,
Kontron Instrument). Los valores se calcularon para una
concentración inicial de proteína de 3,4%.
El pH de la micelización se consideró que se
había alcanzado después de la estabilidad (menos del 5% de
variación del valor inicial) de la absorbancia medida a 500 nm en
un intervalo de 10 minutos para la misma muestra ilustrada en la
figura 2. Para este producto el pH óptimo para la micelización fue
de 6,0 a 6,2. Para este pH ajustado antes del tratamiento térmico,
la turbidez estable fue de 21 y la proteína soluble residual
evaluada mediante la absorbancia a 280 nm después de la
centrifugación fue de 1,9%. Podemos deducir que el 45% de las
proteínas iniciales se transformaron en micelas a un pH de 6,0.
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(Tabla pasa a página
siguiente)
La solución de proteínas se preparó al 2% de
proteína mediante solvatación del polvo de proteína de suero de
leche (WPI 90, partida 989/2, Lactalis, Retier, Francia), en agua
MilliQ® (Millipore) agitando a 20ºC durante dos horas. A
continuación se ajustaron los pH de alícuotas empleando HCl 0,1 N ó
NaOH 0,1 N.
Las soluciones se envasaron en viales de vidrio
de 20 ml (Agilent Technologies) y se sellaron con cápsulas de
aluminio que contenían un sellado de silicio/PTFE. Las soluciones
se calentaron a 85ºC durante 15 minutos (tiempo para alcanzar la
temperatura: 2.30 - 2.50 minutos). Después del tratamiento térmico,
las muestras se enfriaron en agua de hielo a 20ºC. Para este
producto el pH óptimo para la micelización fue de 7,4.
Las muestras de micelas líquidas, se
encapsularon en tubos con gel de agar. La fijación se logró
mediante la inmersión en una solución al 2,5% de glutaraldehido en
tampón de cacodilato 0,1 M, pH 7,4, y post-fijación
con 2% de tetróxido de osmio en el mismo tampón, conteniendo ambas
soluciones un 0,04% de rojo de rutenio. Después de la
deshidratación en series graduadas de etanol (70, 80, 90, 96, 100%
de etanol), las muestras fueron impregnadas en resina Spurr
(Spurr/etanol 1:1, 2:1, 100%). Después de la polimerización de la
resina (70ºC,48 horas, se cortaron secciones semidelgadas y
ultradelgadas con un ultramicrotomo Leica ultracut UCT. Las
secciones ultradelgadas se tintaron con acetato de uranilo acuoso y
citrato de plomo, y se examinaron por microscopía electrónica de
transmisión (Philips CM12, 80 kV).
La micrografía TEM, está representada en la
figura 3. Las micelas obtenidas presentan una forma esférica con un
diámetro de 200 nm..
Se midieron las distribuciones por tamaño de las
micelas en base a la intensidad, para aquellas micelas obtenidas por
tratamiento térmico de una dispersión de
\beta-lactoglobulina al 1% en peso, durante 15
minutos a 85ºC a pH 4,25 (cargadas positivamente con un potencial
zeta alrededor de +25 mV) y a un pH de 6,0 (cargadas negativamente
con un potencial zeta alrededor de -30 mV). El diámetro
hidrodinámico promediado en Z, de las micelas fue de 229,3 mm a un
pH de 4,25 y de 227,2 a un pH de 6,0. La \beta-LG
y las agregaciones de proteína de suero de leche fueron seguidas
empleando la difusión dinámica de luz. Se empleó un aparato
nanomedidor ZS (Malvem Instruments, UK) equipado con un láser
emitiendo a 633 nm y con 4,0 mW de potencia. El instrumento se
empleó en la configuración de redifusión, en donde la detección se
efectúa con un ángulo de difusión de 173º. Esto permite una
considerable reducción de las señales múltiples de difusión
encontradas en las muestras turbias. Las muestras se colocaron en
una célula de cuarzo cuadriculada (Hellma, recorrido 1 cm). El
recorrido del haz de luz se ajustó automáticamente por el aparato,
en función de la turbidez de la muestra (atenuación). La función de
autocorrelación se calculó a partir de la fluctuación de la
intensidad difundida). Los resultados están mostrados en la figura
6. Dicho resultados muestran que la partícula promedio se
caracteriza por un índice de polidispersión muy estrecho
(<0,200). En consecuencia, la suspensión blanca obtenida por la
presente invención es estable y tiene un aspecto lechoso en un
amplio margen de pH 3-8.
El método descrito en el ejemplo 1, se repitió
con la condición de emplear una solución acuosa de
\beta-lactoglobulina al 2%. El pH de esta
solución se ha ajustado a 7,0 después de añadir soluciones de
arginina HCl para obtener una concentración final de sal que oscila
de 5 a 200 mM y una concentración final de
\beta-lactoglobulina del 1%. A continuación se
efectuó el tratamiento térmico (80ºC, 10 minutos, alrededor de 2
minutos de calentamiento), para producir micelas.
Los resultados se muestran en la figura 4, e
indican claramente que solamente en el margen de fuerza fónica de
50 a 70 mM, puede observarse una substancial turbidez, que indica
la presencia de micelas de proteína de suero de leche.
Se trataron proteínas de suero de leche nativas
(WPI 95, partida 848, Lactalis; solución acuosa al 8% en peso), de
acuerdo con el ejemplo 2. Se midió la claridad (L) resultante del
producto en la modalidad de transreflectancia, empleando un aparato
MacBeth CE-XTH D65 10º SCE, equipado con una célula
de medición de 2 mm. La claridad resultante fue de L = 74,8, que
podría compararse con el valor de L = 74,5 para la leche con toda
la grasa.
Se mezcló \beta-lactoglobulina
nativa (Biopure, Davisco, lote JE
002-8-922, solución acuosa al 2% en
peso), con solución de arginina HCl 120 mM, de manera que la
concentración final de \beta-lactoglobulina fue de
1% en peso y la de arginina HCl fue de 60 mM. El pH se ajustó a
continuación a 7,0 mediante la adición de HCl 1 N. La mezcla se
calentó y trató a continuación a 80ºC durante 10 minutos de manera
que el 90% de la \beta-lactoglobulina inicial se
convirtió en micelas que tenían un diámetro z promedio de 130 nm.
En este caso, el diámetro de las micelas se determinó empleando un
aparato nanomedidor ZS (Malvern Instruments, UK). La muestra se
vertió en una cubeta de cuarzo y las variaciones de la luz difusa
se registraron automáticamente. La función de autocorrelación
obtenida fue adecuada empleando el método de acumulación de manera
que el coeficiente de difusión de las partículas pudo calcularse y
a continuación el diámetro hidrodinámico promediado z, empleando la
ley de Stokes-Einstein. Para esta medición, se tomó
el índice de refracción del disolvente como 1,33, y el de las
micelas como 1,45. A continuación, un volumen de 50 ml de la
dispersión resultante de micelas de
\beta-lactoglobulina, se espumó mediante burbujeo
de nitrógeno a través de una frita de vidrio, generando burbujas de
12-16 \mum, para producir un volumen de espuma de
180 cm^{3} empleando el aparato Foamscan^{TM} (IT Concept). La
estabilidad del volumen de espuma fue seguida a continuación con el
tiempo, a 26ºC empleando el análisis de la imagen y comparando con
la estabilidad de la espuma obtenida con la
\beta-lactoglobulina tratada en las mismas
condiciones pero sin arginina HCl, con lo cual no se formaron
micelas. La figura 5 muestra que la estabilidad del volumen de
espuma está en gran manera mejorada por la presencia de micelas de
\beta-lactoglobulina.
Se obtuvo un aislado de proteína de suero de
leche (WPI) (Bipro®) a partir de Davisco (Le Sueur, MN, USA)
(concentración de proteína 92,7%).
Permeato de suero de leche secado por
pulverización (Variolac 836): concentración de lactosa: 83% -
minerales: 8%
Ácido láctico 50%
Lactosa comestible (Lactalis)
Agua desionizada.
Se disolvió el polvo de Bipro® en agua
desionizada, con el fin de tener una concentración de proteína de
4,6%, es decir, para 3 litros de solución, 154,5 g de polvo de WPI
y 2845,5 g de agua. El tiempo de hidratación fue de 3 horas.
Después de la hidratación se dividió la solución en muestras de 200
ml para preparar las diferentes pruebas:
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Para cada solución se añadió ácido láctico al
50% para ajustar el pH antes del calentamiento.
Las muestras se calentaron en una doble caldera
hasta 85ºC y se mantuvo a esta temperatura durante 15 minutos.
Después de calentar, se enfriaron las soluciones a 40ºC y se
inocularon con Lactobacillus bulgaricus y Streptococcus
termophilus. Se dejaron las muestras durante 5 h 30 en una
cámara con vapor a 41ºC antes de que fueran colocadas en una cámara
enfriada a 6ºC.
\newpage
Los resultados están resumidos en la tabla
4.
Aislado de proteína de suero de leche (WPI,
Prolacta 90® de Lactalis, Rétiers, Francia) con un contenido de
proteína del 90%
Lactosa comestible
Maltodextrinas DE39
Agua desionizada
Ácido clorhídrico comestible 1 M.
Empleando un depósito de 100 litros, de doble
camisa, se dispersó el polvo de Prolacta90® a 50ºC en agua
desionizada a una concentración de proteína del 10% en peso con una
moderada agitación con el fin de evitar la formación de espuma, es
decir, 11 kg de Prolacta90® fueron dispersados en 89 kilos de agua
desionizada. Después de 1 hora de dispersión, el pH de la
dispersión se ajustó al pH de micelización (alrededor de 6,3 en
este caso) mediante la adición de HCl. La temperatura de la
dispersión se aumentó a 85ºC y se mantuvo durante 15 minutos con el
fin de generar las micelas de proteína de suero de leche. Después
de 15 minutos, la temperatura se disminuyó a 50ºC y la dispersión
de micelas de proteína de suero de leche al 10% en peso se dividió
en dos partidas de 50 kg. En una primera prueba, 20 kg de lactosa
se dispersaron en 50 kg de dispersión de micelas a 50ºC y se agito
durante 30 minutos. De manera similar, se añadieron 20 kg de
maltodextrinas DE39 a los 50 kilos restantes de dispersión de
micelas de proteína de suero de leche.
A continuación, las dos mezclas se secaron por
pulverización en una torre NIRO SD6.3N, con una velocidad de flujo
de 15 litros/hora. La temperatura de entrada de aire fue de 140ºC y
la temperatura de salida de aire fue de 80ºC. El contenido en agua
de los polvos obtenidos fue inferior al 5%.
El tamaño de las micelas de proteína de suero de
leche, se determinó en presencia de lactosa y maltodextrina (DE39)
en agua empleando la difusión dinámica de la luz antes y después
del secado por pulverización. La concentración total de proteína se
ajustó al 0,4% en peso por dilución de la dispersión antes del
secado por pulverización o reconstitución del polvo con el fin de
que estuviera en el régimen de dilución de la viscosidad para las
micelas de proteína de suero de leche. Se empleó un aparato
Nanosizer ZS (Malvern Instruments) y el diámetro de las micelas se
promedió a partir de 20 mediciones.
El diámetro de partícula determinado para las
micelas de proteína de suero de leche en presencia de lactosa y
maltodextrinas (DE39) fue de 310,4 nm, y de 306,6, respectivamente.
Después de la reconstitución de los polvos, se encontró que los
respectivos diámetros eran de 265,3 nm y 268,5 respectivamente.
Estas mediciones confirmaron que las micelas de proteína de suero
de leche eran físicamente estables con respecto al secado por
pulverización. Los resultados fueron corroborados mediante
observaciones de microscopía TEM de dispersiones de micelas de
proteína de suero de leche al 0,1% en peso, en agua, empleando una
tintura negativa en presencia de 1% de ácido fosfotúngstico a pH 7.
Se empleó un microscopio electrónico de transmisión Philips CM 12,
operando a 80 kV. Las micelas de proteína de suero de leche fueron
observadas en solución antes del secado por pulverización y después
de la reconstitución del polvo secado por pulverización. No pudo
ser detectada ninguna diferencia de morfología ni de
estructura.
estructura.
Un aislado de proteína de suero de leche
Prolacta 90, de Lactalis (lote 500648), se reconstituyó a 15ºC en
agua blanda a una concentración de proteína del 4% para alcanzar
un tamaño final de partida de 2500 kg. El pH se ajustó mediante la
adición de ácido clorhídrico 1M de forma que el valor final del pH
fuera de 5,90. La dispersión de proteína de suero de leche se
bombeó a través del intercambiador de calor
plate-plate APV mix, a una velocidad de flujo de 500
litros/hora. El precalentamiento a 60ºC fue seguido por un
tratamiento térmico a 85ºC durante 15 minutos. La formación de
micelas de proteína de suero de leche se confirmó mediante la
medición del tamaño de partícula, empleando la difusión dinámica de
la luz así como también una medición de la turbidez a 500 nm. La
dispersión obtenida de micelas de proteína de suero de leche al 4%,
se caracterizó mediante el radio hidrodinámico de las partículas de
250 nm, un índice de polidispersión de 0,13, y una turbidez de 80.
La dispersión de micelas de proteína de suero de leche se empleó a
continuación para alimentar el evaporador Scheffers a una velocidad
de flujo de 500 litros/hora. La temperatura y el vacío en el
evaporador se adaptaron de manera que se obtuvieron alrededor de 500
kilos de concentrado de micelas de proteína de suero de leche con
una concentración de proteína del 20%, y se enfriaron a 4ºC.
Se reconstituyó un aislado de proteína de suero
de leche Prolacta 90 de Lactalis (lote 500648), a 15ºC en agua
blanda con una concentración de proteína del 4% para alcanzar un
tamaño de partida final de 2500 kg. El pH se ajustó por adición de
ácido clorhídrico 1 M de forma que el valor del pH final fue de
5,90. La dispersión de proteína de suero de leche se bombeó a
través de un intercambiador de calor plateplate
APV-mix, con una velocidad de flujo de 500
litros/hora. Un precalentamiento a 60ºC fue seguido por el
tratamiento térmico a 85ºC durante 15 minutos. La formación de
micelas de proteína de suero de leche se confirmó mediante la
medición del tamaño de partícula empleando la difusión dinámica de
la luz así como también la medición de la turbidez a 500 nm. La
dispersión de micelas de proteína de suero de leche al 4% obtenida,
se caracterizó mediante un radio hidrodinámico de partículas de 260
nm, un índice de polidispersión de 0,07, y una turbidez de 80. La
forma de la micela de la proteína fue también analizada mediante el
TEM, y las estructuras de las micelas con un diámetro promedio de
150-200 nm fueron claramente visibles (figura 9). La
dispersión de micelas de proteína de suero de leche se enfrió a
4ºC y se empleó para alimentar una unidad de filtración equipada
con una membrana Carbosep M14 de 6,8 m^{2}, a una velocidad de
flujo de 180 litros/hora. En este caso, la concentración de las
micelas de proteína de suero de leche, se realizó a 10ºC hasta que
la velocidad de flujo del permeato alcanzó los 70 litros/hora. En
este caso, el concentrado de proteína de suero de leche final,
contenía el 20% de proteínas. La estructura de las micelas en el
concentrado se confirmó mediante la TEM, y claramente no fue
visible ningún cambio significante comparado con la dispersión de
proteína de suero de leche al 4% antes de la microfiltración
(figura 10).
Se inyectaron 200 kg de concentrado de micelas
de proteína de suero de leche, obtenido mediante la
microfiltración al 20% de proteína (ver ejemplo anterior), en una
torre Niro SD6.3N, empleando una tobera de atomización (0 = 0,5 mm,
ángulo de pulverización = 65º, presión = 40 bars) con una velocidad
de flujo del producto de 25 kg/hora. La temperatura de entrada del
producto fue de 150ºC y la temperatura de salida fue de 75ºC. El
flujo de aire en la torre fue de 150 m^{3}/hora. El contenido en
humedad del polvo fue inferior al 4% y el polvo se caracterizó por
una muy alta fluidez. La microscopia electrónica por scanning del
polvo mostró partículas muy esféricas que tenían un aparente
diámetro oscilando de 10 a 100 \mum (figura 8).
20 kg de concentrado de micelas de proteína de
suero de leche, se mezclaron con 1,7 kg de maltodextrinas, con un DE
de 39, de manera que el ratio final de micelas de proteína de
suero de leche a maltodextrina en el polvo, es de 70/30. Esta
mezcla se inyectó en una torre Niro SD6.3N empleando una tobera de
atomización (diámetro = 0,5 mm, ángulo de pulverización = 65º,
presión = 40 bars) a una velocidad de flujo del producto de 25
kg/hora. La temperatura de entrada del producto fue de 150ºC y la
temperatura de salida fue de 75ºC. El flujo de aire en la torre fue
de 150 m^{3}/hora. El contenido de humedad en el polvo fue
inferior al 4% y el polvo se caracterizó por una muy alta
fluidez.
fluidez.
Los polvos de los ejemplos 13 y 14, cuando se
reconstituyeron en agua, contenían esencialmente micelas con la
misma estructura y morfología que el concentrado de micelas de
proteína de suero de leche.
Se mezcla en seco café soluble con polvo WPI
instantáneo, sucrosa y fosfato monosódico monohidrato. Esta mezcla
se almacena a continuación en envases de aluminio sellados para
asegurar un contenido constante en humedad. 10 g de esta mezcla
seca pueden dispersarse en 90 g de agua en una taza y se calienta
en el microondas durante 100 segundos para obtener un café con
leche enriquecido en proteína de suero de leche.
Se dispersa café soluble en agua juntamente con
polvo WPI instantáneo, sucrosa y fosfato monosódico monohidrato.
Esta mezcla líquida se microfiltra a continuación y se almacena a
4ºC en frascos de polipropileno. 100 ml de esta mezcla de café 3 en
1, lista para usar, se vierte en una taza y se calienta en un
microondas durante 100 segundos obteniéndose un café con leche
enriquecido en proteína de suero de leche.
Claims (29)
1. Un método para la preparación de una bebida
caliente o un comestible líquido, el cual método comprende los
siguientes pasos:
- provisión de un envase de una bebida o un
comestible líquido, que contiene proteína de suero de leche
nativa,
- calentamiento del contenido del envase con el
fin de preparar una bebida o comestible líquido caliente,
listo-para-comer, y al mismo tiempo
transformación de la proteína de suero de leche nativa, por lo
menos parcialmente, en micelas de proteína de suero de leche, en
donde el rendimiento de conversión de la proteína de suero de leche
nativa en micelas, es por lo menos del 20%.
2. Método de acuerdo con la reivindicación 1, en
donde el contenido del envase está en forma de un polvo al cual se
añade agua antes del paso de calentamiento.
3. Método de acuerdo con la reivindicación 1, en
donde el contenido del envase está en forma de un líquido.
4. Método de acuerdo con una cualquiera de la
reivindicaciones 2 ó 3, en donde el pH de la solución antes del
calentamiento está entre 5 y 9, de preferencia entre 5 y 8.
5. Método de acuerdo con una cualquiera de la
reivindicaciones 2 a 4, en donde el contenido de proteína de suero
de leche nativa en la solución antes del calentamiento es inferior
al 12%.
6. Método de la reivindicación 5, en donde el
contenido en proteína de suero de leche nativa en la solución antes
del calentamiento es inferior al 4%.
7. El método de acuerdo con una cualquiera de
las reivindicaciones precedentes, en donde el calentamiento se
efectúa durante entre 0,3 y 3 segundos, de preferencia 0,8 y 1,2
segundos por ml de producto.
8. El método de acuerdo con una cualquiera de
las reivindicaciones precedentes, en donde el calentamiento se
efectúa empleando una fuente de radiación de microondas.
9. El método de acuerdo con una cualquiera de
las reivindicaciones precedentes, en donde la solución se calienta
a una temperatura entre 80ºC y 100ºC.
10. El método de acuerdo con una cualquiera de
las reivindicaciones precedentes, en donde el envase comprende
ingredientes de café y micelas de proteína de suero de leche que
actúan como un agente blanqueante.
11. El método de acuerdo con la reivindicación
10, en donde los ingredientes de café están en un estado seco,
soluble.
12. El método de acuerdo con una cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 9, en donde el envase comprende por lo
menos un ingrediente seleccionado de: ingredientes de sopa,
ingredientes de salsa, ingredientes de cacao, ingredientes de te,
ingredientes de extracto vegetal, ingredientes de postre dulce,
grasas, sales, emulsionantes, azúcares, maltodextrinas,
polisacáridos, cereales, fibras solubles o cualquier combinación de
los mismos.
13. El método de acuerdo con una cualquiera de
las reivindicaciones precedentes, en donde durante el paso de
calentamiento, la proteína de suero de leche nativa se
desnaturaliza y se convierte en micelas.
14. Método de la reivindicación 13, en donde el
rendimiento de conversión es por lo menos del 50%.
15. Método de una cualquiera de la
reivindicaciones 13 ó 14, en donde el rendimiento de conversión es
por lo menos del 80%.
16. El método de acuerdo con una cualquiera de
las reivindicaciones precedentes, en donde las micelas tienen un
diámetro promedio de 100 nm a 900 nm.
17. Método de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, en donde las micelas formadas actúan
como un blanqueante.
18. Método de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, en donde la bebida o comestible
líquido listo-para-comer, se enfría
antes de ser consumido.
19. Método de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, en donde la bebida o comestible
líquido listo-para-comer, se emplea
como un ingrediente en la fabricación de otros productos
consumibles.
\newpage
20. Una composición alimenticia o para beber,
que puede obtenerse mediante el procedimiento de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 19, en donde por lo menos un
20% de la proteína de suero de leche son micelas de proteína de
suero de leche.
21. Un envase de un alimento instantáneo, que
comprende proteína de suero de leche nativa e ingredientes para una
bebida o un comestible líquido, en donde después de calentar la
proteína de suero de leche nativa, se convierte en micelas de
proteína de suero de leche.
22. El envase de acuerdo con la reivindicación
21, en donde el contenido del envase es esencialmente un polvo
seco.
23. El envase de acuerdo con la reivindicación
22, en donde el polvo seco es de forma tal, que cuando se hidrata,
las proteínas del suero de leche se dispersan en el líquido que
tiene un valor del pH definido en el margen de 5 a 9, de
preferencia de 5 a 8.
24. El envase de acuerdo con la reivindicación
21, en donde el contenido del envase comprende proteína de suero de
leche nativa en un líquido que tiene un pH entre 5 y 8.
25. El envase de acuerdo con una cualquiera de
las reivindicaciones 21 a 24, en donde el contenido del envase
comprende ingredientes de café y las micelas de proteína de suero
de leche actúan como un agente blanqueante.
26. El envase de acuerdo con la reivindicación
25, en donde los ingredientes de café están en un estado seco,
soluble.
27. El envase de acuerdo con una cualquiera de
las reivindicaciones 21 al 26, en donde el envase comprende por lo
menos un ingrediente seleccionado de: ingredientes de sopa,
ingredientes de salsa, ingredientes de cacao, ingredientes de te,
ingredientes de extracto vegetal, ingredientes de postre dulce,
grasas, sales, emulsionantes, azúcares, maltodextrinas,
polisacáridos, cereales, fibras solubles o cualquier combinación de
dos o más ingredientes de los mismos.
28. El envase de acuerdo con una cualquiera de
las reivindicaciones 21 a 27, en donde el envase comprende un
aroma como por ejemplo, vainilla, caramelo, fruta, chocolate, café,
canela, etc.
29. El envase de acuerdo con una cualquiera de
las reivindicaciones 21 a 28, el cual comprende además por lo
menos un ingrediente funcional seleccionado del grupo de:
edulcorantes, cafeína, vitaminas, minerales, fármacos, ligandos,
agentes bioactivos o cualquier combinación de dos o más
ingredientes de los mismos.
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