ES2255340B2 - Produccion, sistema de aislamiento y purificacion del alergeno ole e 10. - Google Patents
Produccion, sistema de aislamiento y purificacion del alergeno ole e 10. Download PDFInfo
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/415—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from plants
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Abstract
Producción, sistema de aislamiento y purificación del alérgeno Ole e 10. La invención consiste en la producción de la proteína Ole e 10, mediante tecnología recombinante en la levadura Pichia pastoris, que implica el uso de la secuencia nucleotídica caracterizada por SEQ ID NO:1 o de otras secuencias nucleotídicas obtenidas por mutagénesis de la secuencia SEQ ID NO:1. Para ello se ha aislado a partir de polen de Olea europaea, purificado y caracterizado un alergeno principal que es reconocido por más del 60 % de los pacientes alérgicos a esta fuente biológica. Se ha clonado y expresado el DNA recombinante que codifica el alergeno Ole e 10 de polen de olivo (Olea europaea). La proteína recombinante producida en la levadura (Pichia pastoris) se aísla con gran rendimiento, está correctamente plegada y exhibe propiedades inmunológicas equivalentes a las del alergeno natural por lo que tanto ella como las proteínas homólogas, las formas modificadas derivadas de ellas, los fragmentos derivados que contengan al menos un epítopo alergénico, pueden ser empleadas en protocolos de diagnosis e inmunoterapia.
Description
Producción, sistema de aislamiento y
purificación del alergeno Ole e 10.
La presente invención, según se expresa en el
enunciado de esta memoria descriptiva, se refiere a uno de los
alergenos del polen de olivo (Olea europaea), la proteína
Ole e 10, y a epítopos alergénicos presentes en la proteína. La
invención también hace referencia a los DNAs recombinantes que
codifican tanto para la proteína completa como para fragmentos que
incluyen al menos un epítopo de la molécula, así como moléculas
homólogas de Ole e 10 con capacidad alergénica en otras especies
relacionadas y no relacionadas. En concreto el objeto de la
invención consiste en la producción de la proteína Ole e 10,
mediante tecnología recombinante en la levadura Pichia
pastoris, que implica el uso de la secuencia nucleotídica
caracterizada por SEQ ID NO:1 o de otras secuencias nucleotídicas
obtenidas por mutagénesis de la secuencia SEQ ID NO:1.
La invención proporciona también un eficaz
método de aislamiento tanto para el alergeno recombinante como para
el natural obtenido a partir del polen de olivo.
La alergia tipo I es una enfermedad que afecta a
más del 20% de la población de los países industrializados (Kay,
A.B. (1997) Allergy and allergic diseases, Blackwell Science,
Oxford, UK). Esta afección es ocasionada por los alergenos,
presentes tanto en organismos y productos biológicos -alimentos,
ácaros, venenos de insectos, pólenes, hongos, epitelios de
mamíferos-, como en materiales de síntesis. En la mayor parte de
las fuentes biológicas alergénicas, los alergenos son proteínas de
masas moleculares comprendidas entre 5 y 70 kDa. Los síntomas que
se derivan de la alergia, tales como rinitis, conjuntivitis, o
asma, son provocados por la liberación de mediadores celulares,
como la histamina, desde basófilos y mastocitos, células del
sistema inmune. Dicha liberación viene inducida por el
entrecruzamiento de anticuerpos IgEs unidos a los receptores de alta
afinidad Fc\epsilonRI, los cuales se encuentran a su vez anclados
a basófilos y mastocitos. El entrecruzamiento de las IgE es
provocado por la unión del correspondiente alergeno, o un fragmento
suyo, a través de un epítopo IgE (contenido en dicho alergeno, o en
su fragmento). La terapia que actualmente se viene utilizando para
tratar la alergia implica la hiposensibilización del paciente
mediante la administración por vía parental u oral de dosis
adecuadas del propio alergeno, o alergoides relacionados. En la
práctica totalidad de los casos se administra un extracto
alergénico obtenido, mediante una mínima manipulación, de la fuente
biológica natural, lo que implica a una mezcla muy compleja de
proteínas y otras sustancias, en la cual, el alergeno -o alergenos-
puede representar una parte ínfima del producto total
utilizado.
En efecto, en la actualidad, los protocolos
utilizados para la diagnosis de casos de alergia y su posterior
inmunoterapia implican el uso de extractos alergénicos que
frecuentemente no están caracterizados, ni siquiera estandarizados
respecto a los alergenos más importantes que pueden contener. A
menudo, su administración no proporciona una diagnosis completa,
sobre todo cuando la hipersensibilidad del paciente se refiere a
alergenos presentes en baja concentración en dichos extractos
(Valenta, R.; Lidholm, J.; Niederberger, V.; Hayek, B.; Kraft, D.
and Grondlund, H. (1999) Clin. Exp. Allergy 29,
896-904). Por otro lado, la inmunoterapia realizada
con estas preparaciones es frecuentemente ineficaz y origina en
ocasiones efectos secundarios indeseables que pueden llegar a ser
más graves que la propia afección alérgica que se pretende
resolver. Una alternativa a la utilización de estos extractos es la
preparación de mezclas de los alergenos más significativos,
obtenidos por aislamiento de su fuente natural (Rodríguez, R.;
Villalba, M.; Monsalve, R.I. and Batanero, E. (2001) Int. Arch.
Allergy Immunol. 125, 185-195). Sin embargo, esta
vía presenta dos importantes barreras. Por un lado, implica un buen
conocimiento de los componentes alergénicos del material que
provoca la alergia, al menos de todos sus alergenos principales, y
este dato, frecuentemente, no está disponible. Por otro lado, el
proceso de aislamiento de los alergenos conocidos, a partir del
material biológico, es a menudo difícil y no proporciona las
cantidades necesarias o la calidad requerida para un posterior
empleo, debido fundamentalmente a los bajos niveles en los cuales
se encuentra. Todos estos problemas se acentúan cuando el material
alergénico es el polen de una especie vegetal. La gran cantidad de
pigmentos, carbohidratos, lípidos y componentes insolubles hacen
muy difícil su manipulación. Ni que decir tiene que su
disponibilidad es, además, muy reducida y de alto coste económico,
debido a la dificultad de su recolección. Por todo lo expuesto, se
hace necesario el diseño de procedimientos para la producción de
alergenos a utilizar en los protocolos de diagnosis e inmunoterapia
de la alergia. La producción de DNA recombinante se prevé como la
forma más reproducible y eficaz de obtención de polipéptidos
alergénicos bien definidos, no sólo para uso clínico, sino incluso
para investigación.
Producción del alergeno recombinante de Olea
europaea Ole e 10 en la levadura Pichia pastoris, y
sistema de aislamiento y purificación.
La presente invención se refiere al método de
aislamiento utilizado para la purificación del alergeno Ole e 10 -un
alergeno del polen de olivo de creciente importancia clínica sobre
todo en determinadas áreas geográficas, alcanzando una prevalencia
del 55% en los pacientes alérgicos al polen de olivo en algunas
regiones de Andalucía- a partir del polen de olivo (Olea
europaea). Más específicamente comprende la obtención, mediante
clonación, de moléculas de DNA recombinante que codifican
polipéptidos con las mismas o similares propiedades antigénicas que
el alergeno procedente del polen de olivo, o bien polipéptidos que
posean al menos un epítopo del alergeno Ole e 10. La invención
incluye también la secuencia completa del cDNA del alergeno Ole e
10 y la secuencia completa deducida del
alergeno.
alergeno.
El procedimiento objeto de la invención, permite
llevar a cabo la purificación del alergeno Ole e 10 del polen de
olivo a partir de un extracto proteico de polen de olivo mediante
tres etapas cromatográficas, dos cromatografías de penetrabilidad y
una de HPLC, según se describe detalladamente más adelante.
La invención dispone de secuencias
polinucleotídicas de DNA que hibridan, en condiciones restrictivas,
con las descritas antes -lo que implica un nivel de identidad de al
menos un 60% entre sus secuencias de nucleotidos-, o bien son
derivadas de ellas por degeneración del código genético o
mutagénesis.
El procedimiento de clonación del alergeno
recombinante de Olea europaea Ole e 10, incluye vectores de
clonación y células huésped que contienen una secuencia de
nucleótidos como la descrita en SEQ ID NO: 1, codificante de Ole e
10, proteínas homólogas o fragmentos suyos.
De esta manera se obtiene la secuencia
nucleotídica que codifica al alergeno completo y aquellos
fragmentos nucleotídicos que poseen, al menos, una secuencia que
codifica un determinante antigénico del alergeno Ole e 10 de olivo,
así como de alergenos homólogos de Ole e 10 -principalmente en
especies relacionadas con el olivo- que, dada la similitud
estructural, presentan reactividad alergénica cruzada con Ole e 10
o con una parte de él.
Estos polipéptidos pueden contener la secuencia
antigénica unida a otros polipéptidos (por ejemplo como proteínas
de fusión), haber sido sintetizados químicamente o haber sido
obtenidos mediante digestiones proteoliticas y modificados química
o enzimáticamente.
La inserción de dicha secuencia en vectores de
expresión en organismos hospedadores eucarióticos permite disponer
de construcciones recombinantes que pueden utilizarse para la
producción del alergeno recombinante.
Una vez producida la molécula polipeptídica con
actividad antigénica de Ole e 10 en medio de crecimiento mínimo,
ésta es aislada del medio extracelular del cultivo en forma soluble
mediante cromatografía de intercambio aniónico y de
penetrabilidad.
Los productos recombinantes obtenidos mediante
el procedimiento objeto de la invención presentan la capacidad de
unión de anticuerpos IgE del suero de pacientes alérgicos a olivo,
sensibles a Ole e 10.
Finalmente, con el procedimiento objeto de la
invención, se dispone de Ole e 10 inmunológicamente activo, además
de fragmentos antigénicos y alergénicos de este alergeno, y de
proteínas homólogas de él, que sirven para ser incorporados en las
pruebas "in vivo" e "in vitro" a realizar
para la fiel diagnosis de la hipersensibilidad a este polen, y a
otros pólenes relacionados filogenéticamente con él. También podrán
ser empleados en las preparaciones de alergenos que se utilicen
para llevar a cabo la inmunoterapia correspondiente para el
tratamiento de la alergia al polen de olivo.
Para el diagnóstico y la terapia de la alergia
al polen de olivo se utilizan actualmente extractos proteicos
obtenidos a partir del polen. Esto implica una escasa
reproducibilidad y un alto contenido en moléculas contaminantes, de
origen proteico y no proteico, que pueden originar efectos
secundarios adversos en los pacientes tratados. El disponer de
moléculas homogéneas obtenidas por las técnicas del DNA
recombinante, en cantidades ilimitadas, perfectamente
cuantificables y estandarizadas, rebajaría considerablemente todos
los inconvenientes citados. Esta tecnología permite disponer de
esas moléculas y, además, de péptidos o formas modificadas de las
mismas que contienen al menos uno de los epítopos alergénicos.
Figura 1.- Purificación de Ole e 10. (A) y (B)
perfiles de elución de las cromatografías de filtración en gel en
columnas de Sephadex G-75 (35 x 750 mm) y Sephadex
G-50 (15 x 530 mm), respectivamente. El extracto de
polen de olivo obtenido como se describe a continuación fue
aplicado a la primera columna y las fracciones correspondientes a
moléculas de masa molecular inferior a 15 kDa fueron reunidas,
liofilizadas y aplicadas a la segunda columna. (C) Perfil de
elución en una columna C-18 de fase reversa en HPLC
usando un gradiente de acetonitrilo en 0.1% TFA. Las fracciones que
contienen la proteína purificada están sombreados en la figura. (D)
Análisis por PAGE/SDS de las distintas etapas de purificación:
línea p, extracto de polen; líneas a, b y c, proteína obtenida en
la mezcla de las fracciones sombreadas de los perfiles de elución
A), B) y C), respectivamente; línea m, patrones de peso molecular
conocido. Las muestras fueron teñidas con azul de Coomassie o
transferidas a membranas de nitrocelulosa e inmunoteñidas con una
mezcla de sueros de pacientes alérgicos al polen de olivo.
Figura 2.- cDNA que codifica para Ole e 10
(mayúsculas) y secuencia de aminoácidos deducida. La secuencia de
cDNA de las regiones no codificantes 3' y 5' están incluidas en la
figura con letras minúsculas. El sitio de procesamiento está
indicado por una punta de flecha. La secuencia de DNA está
disponible en el GenBank/EMBL bajo el número de acceso de
AY082335.
La presente invención se refiere a un DNA
recombinante que codifica epítopos del alergeno de Olea
europaea Ole e 10, a la producción recombinante, en la levadura
Pichia pastoris, de los polipéptidos codificados por dicho
DNA y al aislamiento del alergeno natural procedente del polen de
olivo. También se refiere a la aplicación de ambas moléculas al
diagnóstico y terapia de este desorden inmunológico.
El procedimiento objeto de esta invención se
realiza mediante las siguientes fases:
Se aisló el RNA total a partir del polen de
olivo siguiendo el protocolo publicado por Ullrich y col. [Science
196, 1313-1318, 1977]. En este aislamiento se
partió de 0.5 g de polen que se homogeneizó en un tampón 0.1 M de
Tris-HCl, pH 7.5 que contenía tiocianato de
guanidinio 4M, laurilsarcosinato sódico al 0.5% y
2-mercaptoetanol 0.14 M, mediante un homogeneizador
Polytron. Se centrifugó esta suspensión a 5000 xg a 20°C en una
centrífuga Sorvall. Posteriormente se sometió al sobrenadante a una
centrifugación en gradiente de CsCl 5.7 M en 0.01 M EDTA a 40.000
rpm en un rotor SW 60 (Beckman) durante 12 horas. El mismo
procedimiento se llevó a cabo para aislar otros RNAs de diferentes
pólenes usados (aligustre, fresno, lila) y con los diferentes
tejidos del olivo empleados (tallo, hojas y frutos). Con estos
últimos se introdujo una etapa inicial adicional en la que fueron
macerados en presencia de nitrógeno líquido hasta obtener un polvo
fino y homogéneo. A partir de 5 \mug de RNA total se llevó a cabo
la síntesis del cDNA utilizando el "kit" SMART II de síntesis
de cDNA (Clontech).
En el procedimiento de clonación del alergeno
recombinante de Olea europaea Ole e 10, se llevó a cabo una
digestión tríptica (relación en peso 1:1000) de la proteína para
obtener secuencias aminoacídicas internas de la proteína debido a
que la obtención de la secuencia N-terminal
mediante Degradación de Edman resultó fallida por estar
bloqueada.
Tras la secuenciación de alguno de los péptidos
obtenidos (AHASYAMNSWYQSK), se utilizó la secuencia
(AMNSWYQ) para diseñar el oligonucleótido degenerado
("antisense"), OLE10B:
5'-YTGRTACCANGARTTCAT
NGC-3' que fue utilizado, junto con el primer inespecífico UPM: 5'-CTAATACGACTCACTATAGGGC-3' y utilizando el cDNA como molde, para amplificar por PCR la secuencia parcial codificante (1-92) y no codificante 5' correspondientes al cDNA de Ole e 10, incluido el péptido señal. Las secuencias obtenidas permitieron posteriormente obtener la secuencia N-terminal, Met Arg Gly Thr Ala Gly Val, que que sirvió de base para el diseño de un oligonucleotido no degenerado, OLE10F: 5'-ATGCGAGGAACCGCAGGTGTG-3'. La amplificación posterior con los oligonucleótidos, OLE10F Y UPM, y su clonación permitieron la obtención de la secuencia de nucleótidos codificante completa y la secuencia 3' no codificante. El molde y los cebadores de las reacciones de PCR fueron disueltos en una mezcla de PCR estándar (250 \muM de dNTPs, tampón estándar y 50 pmoles de los cebadores). Después de una primera etapa de desnaturalización a 95°C durante 5 min, se llevaron a cabo 25 ciclos a temperaturas de hibridación de 45°C en la primera etapa y 68°C en la segunda en presencia de Advantage DNA polimerasa II(Clontech). La reacción se sometió a electroforesis en geles de agarosa al 1.5% y los fragmentos de DNA fueron purificados usando el Magic PCR Prep kit (Promega) e insertados en el plásmido pCR2.1 linearizado y con una T terminal en los extremos 5'. Con esta construcción se transformaron células competentes TOP10 según el protocolo del TOPO TA cloning kit (Invitrogen), a continuación se seleccionaron los recombinantes y se llevó a cabo la secuenciación de algunos de los clones seleccionados, obteniéndose secuencias de este alergeno. En una última etapa de PCR se amplificó la secuencia de DNA que codifica la región correspondiente a la proteína madura (Ser22-Ser123), y utilizándose los oligonucleótidos no degenerados NT10: 5'-cgtctcgagaaaagaTCTTCGTCGCCCGTCCCA-3' para la secuencia N-terminal y CT10: 5'-cgtccgcggTCAAGAGAGGAATGAGCATGA-3' y CT10-2: 5'-cgtccgcggTCAAGAGAGGAAT
GAGCATGACCCCTGACT-3' para la secuencia C-terminal y C-terminal con una Gln en lugar de la Asn116, posible sitio de N-glicosilación de la proteína, respectivamente.
NGC-3' que fue utilizado, junto con el primer inespecífico UPM: 5'-CTAATACGACTCACTATAGGGC-3' y utilizando el cDNA como molde, para amplificar por PCR la secuencia parcial codificante (1-92) y no codificante 5' correspondientes al cDNA de Ole e 10, incluido el péptido señal. Las secuencias obtenidas permitieron posteriormente obtener la secuencia N-terminal, Met Arg Gly Thr Ala Gly Val, que que sirvió de base para el diseño de un oligonucleotido no degenerado, OLE10F: 5'-ATGCGAGGAACCGCAGGTGTG-3'. La amplificación posterior con los oligonucleótidos, OLE10F Y UPM, y su clonación permitieron la obtención de la secuencia de nucleótidos codificante completa y la secuencia 3' no codificante. El molde y los cebadores de las reacciones de PCR fueron disueltos en una mezcla de PCR estándar (250 \muM de dNTPs, tampón estándar y 50 pmoles de los cebadores). Después de una primera etapa de desnaturalización a 95°C durante 5 min, se llevaron a cabo 25 ciclos a temperaturas de hibridación de 45°C en la primera etapa y 68°C en la segunda en presencia de Advantage DNA polimerasa II(Clontech). La reacción se sometió a electroforesis en geles de agarosa al 1.5% y los fragmentos de DNA fueron purificados usando el Magic PCR Prep kit (Promega) e insertados en el plásmido pCR2.1 linearizado y con una T terminal en los extremos 5'. Con esta construcción se transformaron células competentes TOP10 según el protocolo del TOPO TA cloning kit (Invitrogen), a continuación se seleccionaron los recombinantes y se llevó a cabo la secuenciación de algunos de los clones seleccionados, obteniéndose secuencias de este alergeno. En una última etapa de PCR se amplificó la secuencia de DNA que codifica la región correspondiente a la proteína madura (Ser22-Ser123), y utilizándose los oligonucleótidos no degenerados NT10: 5'-cgtctcgagaaaagaTCTTCGTCGCCCGTCCCA-3' para la secuencia N-terminal y CT10: 5'-cgtccgcggTCAAGAGAGGAATGAGCATGA-3' y CT10-2: 5'-cgtccgcggTCAAGAGAGGAAT
GAGCATGACCCCTGACT-3' para la secuencia C-terminal y C-terminal con una Gln en lugar de la Asn116, posible sitio de N-glicosilación de la proteína, respectivamente.
Para la producción de la forma recombinante de
esta proteína, la secuencia codificante de DNA fue ligada al
plásmido de expresión pPICZ\alpha-A (Invitrogen
Corp.). Las células utilizadas fueron de la cepa KM71 de Pichia
pastoris. La inducción se llevó a cabo por metanol al 0.5%
durante cinco días, creciendo las células a 30°C en medio mínimo de
crecimiento de levadura. Las células se sedimentaron centrifugando
a 5000 xg, se recogieron los sobrenadantes y una muestra de los
mismos se aplicó en un gel de poliacrilamida al 15% en presencia de
SDS. Una banda de 10 kDa, única, fue detectada mediante tinción de
los geles con Azul de Coomassie. La proteína es reconocida por
sueros de pacientes alérgicos específicos de Ole e 10 natural
(dilución 1:10). La purificación de las proteínas se llevó a cabo
mediante la liofilización del medio extracelular de la levadura y
la aplicación de dos etapas cromatográficas, una de intercambio
fónico en DEAE-celulosa y una de penetrabilidad en
Sephadex G-50, obteniéndose tras esta última el
alergeno con un grado de pureza del 99%. Se llevaron a cabo con
ellas estudios de caracterización estructural (espectros de
dicroismo en el UV lejano, espectrometría de masas) e inmunológica
(con sueros individuales de pacientes alérgicos) y en todos los
casos las proteínas recombinantes se comportaron de manera
equivalente a la del alergeno natural.
El alergeno Ole e 10 ha sido purificado a partir
de extracto proteico de polen de olivo, obtenido por
homogeneización de 3 g de polen en bicarbonato amónico 50 mM pH 8.0
durante 3 horas a T ambiente. Dicho extracto fue aplicado a una
columna de Sephadex G-75. Las fracciones que
contenían la proteína fueron aplicadas a una columna de
penetrabilidad en Sephadex G-50 y por último a una
de fase reversa C-18 en HPLC con un gradiente de
acetonitrilo (0-60%) en TFA al 0.1%.
La invención cubre el uso de Ole e 10
recombinante en diagnóstico, "in vivo" mediante pruebas
cutáneas o "in vitro" mediante técnicas de
inmunodetección (ELISA, RAST), permitiendo precisar qué alergenos
son los responsables de la sintomatología clínica de un individuo y
reducir así el número de moléculas necesarias para su
inmunoterapia. Se origina, por tanto, una inmunoterapia
personalizada.
<110> Universidad Complutense de
Madrid
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Producción, sistema de aislamiento y
purificación del alérgeno Ole e 10.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Olea europaea
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)...(369)
\vskip0.400000\baselineskip
<300>
\vskip0.400000\baselineskip
<308> AY082335
\vskip0.400000\baselineskip
<309> 2002 03 19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 123
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Olea europaea
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> sig_peptide
\vskip0.400000\baselineskip
<222> FROM 1 TO 21
\vskip0.400000\baselineskip
<300>
\vskip0.400000\baselineskip
<308> AY082335
\vskip0.400000\baselineskip
<309> 2002 03 19
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
Claims (19)
1. Moléculas de DNA recombinante
caracterizadas por SEQ ID NO: 1 que codifican un polipéptido
con actividad alergénica y que poseen, al menos, un epítopo
alergénico común con el alergeno Ole e 10 de Olea
europaea.
2. Moléculas de DNA recombinante, o
modificaciones de las mismas, según reivindicación 1, que codifican
polipéptidos con, al menos, un epítopo de Ole e 10 en su
estructura, unido a un polipéptido adicional, o modificado química
o enzimáticamente.
3. Moléculas de DNA recombinante
caracterizadas por hibridar en condiciones fuertemente
restrictivas con la secuencia descrita en SEQ ID NO: 1.
4. Moléculas de DNA recombinante
caracterizadas por presentar, al menos, un 60% de identidad
con la descrita en SEQ ID NO: 1, conteniendo una secuencia de
nucleotidos que codifica un polipéptido con actividad alergénica
idéntica o reducida (hipoalergénica) con respecto a Ole e 10 de
Olea europea.
5. Polipéptido recombinante correspondiente al
alergeno Ole e 10 de Olea europaea, o fragmentos de dicho
polipéptido, según reivindicaciones 1 y 2, caracterizado por
la secuencia dada en SEQ ID NO: 2 que presentan la antigenicidad
de, al menos, un epítopo de Ole e 10.
6. Polipéptidos recombinantes del alergeno
homólogo de Ole e 10 en otras especies relacionadas y no
relacionadas filogenéticamente, o fragmentos de dichos
polipéptidos, según reivindicaciones 3 y 4 que presentan la
antigenicidad de, al menos, un epítopo de Ole e 10.
7. Polipéptidos que posean una secuencia de
aminoácidos según reivindicaciones 5 y 6, y que presenten una
alergenicidad atenuada.
8. Polipéptidos o fragmentos de dichos
polipéptidos de polen de Chenopodiaceas con, al menos, un
epítopo de Ole e 10, según reivindicaciones anteriores, que se
produzcan recombinantes unidos a un polipéptido adicional.
9. Polipéptidos de polen de Olea
europaea, según reivindicaciones 5,6,7 y 8, que estén
modificados química o enzimáticamente.
10. Un vector de expresión eucariota, y
preferentemente pPICZ\alphaA, que contenga las secuencias
caracterizadas por SEQ ID NO: 1 según reivindicaciones 1,2,3
y 4 cuya expresión dé lugar a la producción de los polipéptidos
caracterizados por SEQ ID NO: 2 según reivindicaciones
5,6,7,8 y 9.
11. Un organismo hospedador eucariota,
preferentemente la levadura Pichia pastoris, transformado
con la construcción formada según reivindicación 10.
12. Un método para producir las formas
recombinantes correspondientes a las secuencias polipeptídicas
descritas en las reivindicaciones 5,6,7,8 y 9, en el sistema
eucariótico de levadura Pichia pastoris, y preferentemente
de la cepa KM71, crecidas en medio rico, caracterizado por
una cromatografía de intercambio iónico en
DEAE-celulosa, una de penetrabilidad en Sephadex
G-50 y una en una columna una de penetrabilidad en
Sephadex G-50 y una en una columna
C-18 de fase reversa de HPLC.
13. Un método para producir las formas
recombinantes correspondientes a las secuencias polipeptídicas
mencionadas en las reivindicaciones 5,6,7,8 y 9, en el sistema
eucariótico de levadura Pichia pastoris y preferentemente de
la cepa KM71 crecidos en medio mínimo, caracterizado por una
cromatografía de intercambio en DEAE-celulosa, una
de penetrabilidad en Sephadex G-50 y una en una
columna C-18 de fase reversa de HPLC.
14. Un método para el aislamiento del alergeno
Ole e 10 a partir del polen de Olea europaea utilizando una
cromatografía de penetrabilidad en Sephadex G-75,
una de penetrabilidad en Sephadex G-50 y una
columna de fase reversa nucleosil C-18 de HPLC.
15. Utilización de los péptidos de las
reivindicaciones 5-9 para la preparación de
compuestos farmacológicos.
16. Utilización de las moléculas según
reivindicaciones 1-9 en el diagnóstico "in
vitro" de la alergia.
17. Aplicación de las moléculas recombinantes de
las reivindicaciones 1-9 para el diseño de vacunas
destinadas a la inmunoterapia de la alergia.
18. Aplicación de las moléculas recombinantes de
las reivindicaciones 1-4 para producir péptidos,
según reivindicaciones 5-9, que contengan al menos
un epítopo T alergénico, capaces de actuar como vacunas.
19. Aplicación de las moléculas recombinantes de
las reivindicaciones 1-4 en la producción de
isoformas recombinantes hipoalergénicas que tengan disminuida o
anulada su unión a IgE para el tratamiento de alergias.
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QUIRALTE, J. et al. "Olive allergen-specific IgE responses in patients with Olea europaea pollinosis". ALLERGY. 2002, Vol. 57, Suppl. 71, páginas 47-52, todo el documento. * |
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