[go: up one dir, main page]
More Web Proxy on the site http://driver.im/

ES2136595T5 - Carbonatos activos de oxidos de polialquileno para la modificacion de polipeptidos. - Google Patents

Carbonatos activos de oxidos de polialquileno para la modificacion de polipeptidos.

Info

Publication number
ES2136595T5
ES2136595T5 ES90906698T ES90906698T ES2136595T5 ES 2136595 T5 ES2136595 T5 ES 2136595T5 ES 90906698 T ES90906698 T ES 90906698T ES 90906698 T ES90906698 T ES 90906698T ES 2136595 T5 ES2136595 T5 ES 2136595T5
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
peg
group
dicarboximide
protein
activated
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
ES90906698T
Other languages
English (en)
Other versions
ES2136595T3 (es
Inventor
Shmuel Zalipsky
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Enzon Pharmaceuticals Inc
Original Assignee
Enzon Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=23335516&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=ES2136595(T5) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Enzon Inc filed Critical Enzon Inc
Application granted granted Critical
Publication of ES2136595T3 publication Critical patent/ES2136595T3/es
Publication of ES2136595T5 publication Critical patent/ES2136595T5/es
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D207/00Heterocyclic compounds containing five-membered rings not condensed with other rings, with one nitrogen atom as the only ring hetero atom
    • C07D207/46Heterocyclic compounds containing five-membered rings not condensed with other rings, with one nitrogen atom as the only ring hetero atom with hetero atoms directly attached to the ring nitrogen atom
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/38Albumins
    • A61K38/385Serum albumin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/43Enzymes; Proenzymes; Derivatives thereof
    • A61K38/46Hydrolases (3)
    • A61K38/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • A61K38/482Serine endopeptidases (3.4.21)
    • A61K38/4826Trypsin (3.4.21.4) Chymotrypsin (3.4.21.1)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/43Enzymes; Proenzymes; Derivatives thereof
    • A61K38/46Hydrolases (3)
    • A61K38/50Hydrolases (3) acting on carbon-nitrogen bonds, other than peptide bonds (3.5), e.g. asparaginase
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/50Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
    • A61K47/51Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent
    • A61K47/56Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule
    • A61K47/59Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes
    • A61K47/60Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes the organic macromolecular compound being a polyoxyalkylene oligomer, polymer or dendrimer, e.g. PEG, PPG, PEO or polyglycerol

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Polyethers (AREA)
  • Polyesters Or Polycarbonates (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Pyrrole Compounds (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Other Resins Obtained By Reactions Not Involving Carbon-To-Carbon Unsaturated Bonds (AREA)

Abstract

SE DESCRIBE EL CARBONATO POLI(ETILENO-GLICOL)-N-SUCINIMIDA Y SU PREPARACION. EL POLIETILENO GLICOL (PEC) SE CONVIERTE EN DERIVADOS DEL CARBONATO N-SUCCINIMIDA. ESTA FORMA DE POLIMERO REACCIONA CON LOS GRUPOS AMINO DE PROTEINAS EN BUFFERS ACUOSOS. LAS PROTEINAS MODIFICADAS TIENEN LAS PEG-CADENAS GRABADAS EN LA BASE DEL POLIPEPTIDO POR MEDIO DE ENLACES URETANO (CARBAMATE) ESTABLES, HIDROLISIS-RESISTENTES.

Description

Carbonatos activos de óxidos de polialquileno para la modificación de polipéptodos.
Estado de la técnica
La presente invención se refiere a una modificación química de polipéptidos mediante el enlace covalente de cadenas de óxido de polialquileno a una molécula de polipéptido como se describe en la solicitud de patente US Nº. 4,179,337, de Davis, et al. En "Enzymes as Drugs" de Abuchowski & Davis, Holcenberg & Roberts, eds. pp. 367-383, Juan Wiley & Sons, N.Y. (1981) se describe que tales preparaciones de polipéptidos presentan una inmunogenicidad y una antigenicidad reducidas y que además tienen una vida más larga en la corriente sanguínea en comparación con los polipéptidos padres. Estas propiedades beneficiosas de los polipéptidos modificados hacen que éstos resulten muy útiles en diversas aplicaciones terapéuticas, como la terapia enzimática.
Los grupos activos que se introducen en óxidos de polialquileno con el objetivo de enlazar posteriormente estos polímeros a proteínas debe cumplir los siguientes requisitos:
1.
Los grupos activos tienen que ser lo suficientemente reactivos como para proveer una reacción rápida con una proteína bajo condiciones normales;
2.
Los residuos liberados de los grupos activos durante el proceso de modificación no tienen que ser tóxicos y/o tienen que poderse separar rápidamente del aducto de proteína-polímero.
Para realizar el enlace covalente de polietilenoglicol (PEG) a una proteína, los grupos hidróxilos finales del polímero deben ser convertidos en primer lugar en grupos reactivos funcionales. Este proceso se denomina con frecuencia "activación" y el producto se denomina "PEG activado". En la mayoría de los casos se emplean derivados de metoxipolietilenoglicol (mPEG), cubiertos en un extremo con un grupo funcional y que reaccionan con, aminas en una molécula de proteína.
La forma más común que se emplea del PEG activado para la preparación de enzimas terapéuticas es el éster de poli(etilenoglicol)succinoil-N-hidroxisuccinimida (SS-PEG) [Abuchowski, et al. Cancer Biochem. Biophys. 7, 175-186 (1984), Esquema 1] El empleo de este polímero activado cumple los dos requisitos mencionados anteriormente. Sin embargo presenta un inconveniente mayor. El enlace del éster entre el polímero y el residuo del ácido succínico presenta una estabilidad limitada en medios acuosos [Patente US Nº. 4,670,417, Iwasaki, et al. (1987); Ulbrich, et al. Makromol. Chem. 187, 1131-1144 (1986)].
Esquema 1 Enlace convencional de PEG a una proteína que emplea SS-PEG como la forma activada del polímero
1
\newpage
Varios polietilenoglicoles que se han hecho funcionales (PEG) han sido empleados de forma efectiva en campos como la modificación de proteínas (Abuchowski & Davis, 1981, supra), en la química de péptidos [Zalipsky, et al., Int. J Peptide Protein Res.,30 740-783 (1987)] y en la preparación de conjugados con materiales biológicamente activos [Zalipsky, et al., Eur. Polym. J 19, 1177-1183 (1983) y Zalipsky y Barany, Polymer Preprints, Am Chem Soc. Div Polym. Chem.27(1),1 -2 (1986)] Los conjugados de proteína con PEG útiles en aplicaciones medicas han demostrado que garantizan, particularmente en lo que respecta a su estabilidad para la digestión proteolítica, una respuesta inmunológica reducida y tiempos de vida media más prolongados en la corriente sanguínea.
Para conseguir esto, la técnica precedente ha activado el grupo hidroxi de PEG con cloruro cianúrico y a continuación ha enlazado el compuesto resultante con proteínas (Abuchowski, et al. (1977) J. Biol Chem. 252, 3578; Abuchowski y Davis, 1981, supra). Sin embargo existen diversas desventajas en el empleo de este método, como la toxicidad del cloruro cianúrico y la reactividad no específica para aquellas proteínas que tienen grupos funcionales que no son aminos, como residuos de cisteínas o tirosinas esenciales libres.
Para poder superar estas y otras desventajas, se han introducido procedimientos alternativos, como derivados de succinimidilo succinato de PEG (SS-PEG) (Abuchowski, et al. 1984, supra, ver Esquema 1, arriba). Éste reacciona rápidamente con proteínas (30 minutos) bajo condiciones normales haciendo activos incluso los conjugados extensamente modificados, pero su uso presenta otra desventaja mayor. El enlace del éster entre el polímero y el residuo del ácido succínico presenta una estabilidad limitada en medios acuosos [U.S. Patente Nº. 4,670,417 a Iwasaki, et al. y Ulbrich, et al. Makromol Chem., 187,1131-1144 (1986)].
La formación de enlaces de uretano entre grupos aminos de una proteína y PEG supera el problema de la pérdida hidrolítica de las cadenas de polímeros [Veronese, et al., Appl. Biochem. Biotechnol. 11, 141-152 (1985)]. De hecho, se ha demostrado sobre derivados de PEG marcados de forma radioactiva que los enlaces de uretano son completamente estables bajo diversas condiciones fisiológicas [Larwood & Szoka J., Labeled Compounds Radiofarm.,21,603-614 (1984)]. El enlace de PEG a una proteína por medio de un derivado de carbamato fue realizado [Beauchamp, et al. Analyt. Biocem. 131, 25-33 (1983)] empleando PEG activado con carbonildiimidazol. Sin embargo, el polímero activado de esta manera no es muy reactivo y en consecuencia se necesitan largos periodos de tiempo de reacción (48 - 72 hrs a pH 8.5) para conseguir suficientes modificaciones. En consecuencia, resulta evidente que el agente activado por carbonildiimidazol no cumple el primer requisito apuntado anteriormente. Una desventaja adicional de este enfoque se encuentra en el coste relativamente elevado del carbonildiimidazol.
Se ha descrito el empleo de derivados de fenilcarbonato de PEG para la preparación de proteínas de PEG enlazadas a uretano [ver Veronese, et al. (1985), supra]. El inconveniente principal de este enfoque reside en la toxicidad de los residuos de fenol hidrófobos (p-nitrofenol o 2, 4, 5-triclorofenol) y su afinidad con las proteínas. Es evidente que este método no cumple el segundo requisito mencionado anteriormente.
La Patente U.S. Nº. 4,248,786 muestra compuestos del éster de hidroxisuccinimida y su empleo para enlazar proteínas activas biológicamente a materiales matrices de soportes líquidos o sólidos.
La Patente U. S. Nº. 4,891,430 muestra entre otras cosas un proceso para preparar carbonatos alfa-halogenados donde un terminal del carbonato es un radical N-succinimidilo, N-ftalimidilo o 1-benzotriazolilo.
La Solicitud de Patente Europea EP-A-0149520 muestra conjugados de lipasas y polialquilenoglicol. Los conjugados pueden formarse empleando uno de los diversos polímeros activados. Los grupos de succinimidilo carbonato y grupos relacionados con oxicarbonil-N-dicarboximida no han sido descritos.
En los Resúmenes de Patentes de Japón 13, Nº. 145 (C-583) [3493] se expone un método para inmovilizar las substancias derivadas de un cuerpo vivo. El método incluye la reacción de grupos aminos primarios de la sustancia derivada del cuerpo vivo con grupos funcionales introducidos en un polímero hidrófilo polifuncional, que se ha enlazado previamente a un soporte como una aminoetilcelulosa.
Cada una de las formas activadas del polímero tiene propiedades que se pueden considerar ventajosas o desventajosas, dependiendo del sistema de uso. A la luz de la multitud de aplicaciones de los polipéptidos de PEG, es deseable ampliar el arsenal de proteínas que modifican los reactivos de PEG y que se han realizado con una finalidad de uso específica.
Resumen de la invención
La presente invención provee un óxido de polialquileno que tiene la estructura
R_{1}--(O--R_{2})_{a}--(O--R_{3})_{b}-(O--R_{4})_{c}--O--
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
--O--R_{5}
\newpage
donde R_{1} es H, CH_{3} o un grupo de carboniloxi-N-dicarboximida; R_{2}, R_{3}, y R_{4} son independientemente seleccionados del grupo consistente en -CH_{2}CH_{2}- , -CH_{2}CH(CH_{3})- y -CH_{2}CH_{2}CH_{2}CH_{2}-; R_{5} es un grupo N-dicarboximida;
a es un número entero entre 1 y 1,000; b y c son cada uno un número entero entre 0 y 1,000; y la suma de a, b, y c se encuentra entre 10 y 1,000.
La presente invención también provee un proceso para preparar el compuesto que comprende la reacción de un compuesto que tiene la estructura
R_{1}--(O--R_{2})_{a}--(O--R_{3})_{b}--(O--R_{4})_{c}--O--
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
--X
donde R_{1} es H, CH_{3} o un grupo de carboniloxi-N-dicarboximida;
R_{2}, R_{3}, y R_{4} son independientemente seleccionados del grupo consistente en -CH_{2}CH_{2}-, -CH_{2} CH(CH_{3})- y - CH_{2}CH_{2}CH_{2}CH_{2}-; X es un halógeno;
a es un número entero entre 1 y 1,000; b y c son cada uno un número entero entre 0 y 1,000; y la suma de a, b, y c se encuentra entre 10 y 1,000;
con una N-hidroxidicarboximida en presencia de una base.
Breve descripción de las figuras
Figura 1. Liberación de mPEG de los conjugados de PEG-BSA. Se incubaron soluciones de ambos tipos de conjugados de PEG-BSA (-61% de modificación) en una concentración de 4 mg/ml (por análisis de Bluret) en el tampón apropiado. A determinados intervalos de tiempo se inyectaron partes alícuotas de estas soluciones en una CLAR equipada con una columna Zorbax GF450 y con un detector de RI para cuantificar mPEG-5000.
Figura 2. Estabilidad de SS-PEG y SC-PEG a 22ºC. Condiciones experimentales: Los PEG activados fueron almacenados en forma de polvo fino en recipientes de polipropileno bien cerrados. A determinados intervalos de tiempo se analizaron muestras de cada uno de los polímeros para determinar el contenido de acilo activo.
Figura 3. Reactividad de PEG activado como función de pH. Condiciones experimentales: A un tampón de trietanolamina-borato (0,3 M, 1 ml) con el pH apropiado, se le añadió una solución controlada de NAL en agua (50 mM, 0,1 ml) seguido de una solución controlada del PEG activado apropiado en CH_{3}CN (50 mM de acilo activo, 0,1 ml). La solución resultante fue removida e incubada a 28ºC durante 1 h. Se empleó una mezcla de los mismos componentes pero dejando fuera SX-PEG como control. Se empleó la versión del análisis TNBS de Snyder, et al. [(1975) Anal. Biochem. 64, 284] para determinar el NAL que no reaccionó.
Descripción de la invención
La presente invención describe óxidos de polialquileno activados que presentan la estructura general:
R_{1}--(O--R_{2})_{a}--(O--R_{3})_{b}--(O_R_{4})_{c}--O--
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
--O--R_{5}
donde R_{1} es H, CH_{3} o un grupo carboniloxi-N-dicarboximida; R_{2}, R_{3}, y R_{4} son independientemente seleccionados de -CH_{2}CH_{2}-, -CH_{2}CH(CH_{3})- y - CH_{2}CH_{2}CH_{2}CH_{2}-; R_{5} es un grupo N-dicarboximida; a es un número entero entre 1 y 1000; b y c son cada uno un número entero entre 0 y 1000; y la suma de a, b, y c se encuentra entre 10 y 1000.
Más específicamente, la invención se refiere a la preparación y uso de un PEG activado nuevo, es decir, poli(etilenoglicol) de succinimidilo carbonato (SC-PEG) y el derivado bifuncional de PEG, es decir, poli(etilenoglicol)-bis-succinimidilo carbonato (BSC-PEG). Además, resultan posibles derivados heterobifuncionales de PEG (Zalipsky y Barany, supra); uno de los grupos finales es succinimidilo carbonato y el otro grupo final (R^{1}, ver Esquema 2, abajo) contiene un grupo reactivo funcional diferente, como un grupo carboxilo libre o una amina. Estos materiales reaccionan rápidamente con grupos aminos de proteínas para proveer un enlace de PEG a través de enlaces de uretano estables (Esquema 2, abajo). La reactividad de los agentes nuevos, SC-PEG y BSC-PEG, es comparable a la del SS-PEG que se emplea habitualmente. Así, se puede alcanzar un alto grado de modificación en condiciones normales (tampones acuosos, pH 5.8-11, preferentemente pH 7.0-9.5) dentro de un margen de cerca de 30-60 minutos y temperaturas moderadas (4-40ºC). Adicionalmente, los agentes son solubles en diversos disolventes orgánicos, resultando útiles e importantes de esta manera para el enlace de peso molecular bajo, péptidos protegidos parcialmente y otros ligantes biológicamente útiles.
El PEG no tiene por que ser de un peso molecular concreto, pero es preferible que el peso molecular se encuentre entre 500 y 40,000; más preferentemente entre 2,000 y 20,000. La elección del peso molecular de PEG se realiza en base a la naturaleza de la proteína concreta que se ha empleado, por ejemplo, el número de grupos aminos disponibles para la modificación.
La N-hidroxisuccinimida liberada durante la modificación de la proteína es un material no tóxico que se emplea a menudo en la química proteínica, especialmente para preparar aductos de proteína biológicamente activos. Como en el caso del PEG activado con carbonildiimidazol mencionado anteriormente y fenilcarbonatos de PEG, el producto de la modificación de la proteína con el empleo de SC-PEG o BSC-PEG tiene cadenas de PEG injertadas sobre la base del polipéptido a través de conexiones de carbamato (uretano). Sin embargo, debido a la elevada reactividad de los agentes nuevos, se puede alcanzar un alto grado de modificación en períodos de tiempo más breves. Una ventaja adicional del PEG activado con succinimida carbonato es que aquellos grupos funcionales activos que no reaccionan con grupos aminos de una proteína sufren una hidrólisis acuosa rápida produciendo N-hidroxisuccinimida, dióxido de carbono y PEG con terminación de hidroxi. Esto resulta particularmente importante en el caso de derivados de PEG bifuncionales (BSC-PEG). Estos materiales pueden servir para un doble objetivo: PEGilación y reticulación al mismo tiempo. El BSC-PEG, como cualquier material homobifuncional puede ser empleado para reticular dos proteínas diferentes. Cuando una molécula de BSC-PEG reacciona con una proteína por medio de sólo un grupo de los extremos, el otro grupo SC del polímero, que no reacciona con la amina, es hidrolizado y en consecuencia no se introduce ningún residuo extraño (potencialmente antígeno) en el conjugado de la proteína con PEG.
Las actividades biológicas de proteínas modificadas con SC-PEG y BSC-PEG se conservan en gran parte como se muestra a través de los ejemplos que aparecen más adelante. Hay una publicación anterior en la que la proteína (activador del plasminogen del tejido) conjugado con PEG de manera covalente por medio de enlaces de uretano presenta una actividad específica más alta que la misma proteína modificada con SS-PEG en aproximadamente la misma extensión [Berger & Pizzo, Blood, 71, 1641-1647 (1988)].
Esquema 2 Empleo de SC-PEG y BSC-PEG para el enlace de PEG en proteínas
2
Naturalmente, la utilidad de derivados de PEG activados con SC se extiende a la preparación de conjugados con PEG de péptidos de peso molecular bajo y otros materiales conteniendo grupos aminos libres.
Se desarrolló un procedimiento de cultivo único para la introducción de grupos SC en PEG (Esquema 3 abajo). Primero, se generó cloroformato de polietilenoglicol in situ mediante el tratamiento del polímero (PEG) con fosgeno. El cloroformato resultante fue hecho reaccionar a continuación con N-hidroxisuccinimida (HOSu) seguido de trietilamina (TEA) para dar los derivados activados de PEG deseados. Las preparaciones activadas del polímero fueron purificadas para eliminar los materiales de peso molecular bajó y determinadas de modo que contuvieran las cantidades teóricas de los grupos activos.
Esquema 3 Síntesis de N-succinimida carbonato derivados del poli(etilenoglicol).
3
Ejemplo 1
Preparación de SC-PEG: Se disolvió metoxipolietilenoglicol con un peso molecular de 5000 (Unión Carbide,60 g,12 mmol) en tolueno/diclorometano (3:1, 200 ml) y se trató con una solución de tolueno de fosgeno (30 ml, 57mmol) durante la noche. La solución fue evaporada hasta que se secó y el resto del fosgeno fue extraído al vacío. Se disolvió el residuo en tolueno/declorometano (2:1, 150 ml) y se trató con N- hidroxisuccinimida sólida (2,1 g, 18 mmol) seguido de trietilamina (1,7 ml, 12 mmol). Después de 3 horas, la solución fue filtrada y evaporada hasta que se secó. Se disolvió el residuo en etilacetato (600 ml) caliente (50ºC), se filtró para eliminar los restos insolubles y se enfrió para facilitar la precipitación del polímero. Se recogió el producto por filtración y a continuación se volvió a recristalizar a partir de etilacetato. El producto se secó al vacío sobre P_{2}O_{5}. El rendimiento fue de 52,5 g (85% de teoría).
Para determinar el contenido de carbonato activo del producto, se reaccionaron muestras del polímero con una cantidad medida de bencilamina en diclorometano y el exceso de amina fue valorado con ácido perclórico en dioxano. Estas valoraciones indicaban que 1 g del producto contenía 1,97 x 10^{-4} mol de carbonato activo (101% del contenido teórico). I.R. (película sobre NaCl, cm^{-1}) bandas características en: 1812 y 1789 (ambos C=O, succinimida); 1742 (C=O, carbonato); 1114 (CH_{2}OCH_{2}) ^{13}C-NMR (CDCl_{3}): \delta 168,5 (CH_{2}C=O); 151,3 (O-CO_{2}); 71,9 (CH_{3}OCH_{2}) 70,2 (PEG); 68,7 (CH_{2}CH_{2}OCO_{2}); 68,0 (CH_{2}CH_{2}OCO_{2}); 58,9 (CH_{3}O); 25,2 CH_{2}C=O) ppm.
Ejemplo 2
Preparación de BSC-PEG: Se convirtió polietilenoglicol de peso molecular 4600 (Carburo de unión, 50g, 21,7 mequiv. OH) en el correspondiente bis-N-hidroxisuccinimida carbonato empleando una solución de tolueno de fosgeno (50 ml, 96,5 mmol) y a continuación N- hidroxisuccinimida (3,8 g, 23 mmol) y trietilamina (3,2 ml, 23 mmol) siguiendo el procedimiento descrito en el Ejemplo 1. Tras purificar el producto se obtuvo como un polvo blanco (51 g, 96%). El contenido de carbonato activo fue de 4,0 x 10-4 mollg (98% de teórico) determinado por valoraciones con ácido perclórico de bencilamina. I.R. (película sobre NaCl, cm-1) bandas características en: 1812 y 1789 (ambos C=O, succinimida); 1742 (C=O, carbonato); 1114 (CH_{2}OCH_{2}) ^{13}C-NMR (CDCl_{3}): \delta 168,5 (CH_{2}C=O); 151,3 (O-CO_{2}); 70,2 (PEG); 68,7 CH_{2}CH_{2}OCO_{2}); 68,0 (CH_{2}CH_{2}OCO_{2}); 25,2 (CH_{2}C=0) ppm. H-NMR (CDCl_{3}): \delta 4,35 (m, 4H, CH_{2}OCO_{2}); 3,55 (s, \sim400H, PEG); 2,74 (s, 8H, CH_{2}C=O) ppm.
Ejemplo 3
Preparación de conjugados de albúmina de suero bovino de polietilenoglicol (PEG-BSA):
A. SC-PEG (1 9) fue añadido a una solución agitada de albúmina de suero bovino (BSA) (100 mg) en 0,1 M fosfato de sodio, pH 7.8 (20 ml). Se empleó hidróxido sódico (0,5 N) para mantener el pH 7.8 durante 30 minutos. Se extrajo el exceso de PEG libre por diafiltración empleando 50 mM de salina tamponada de fosfato. La extensión de modificaciones de BSA fue aproximadamente del 50%, determinada por valoración con trinitrobencenesulfonato (TNBS) de grupos aminos [Habeeb, Analyt. Biochem. 14, 328-336 (1966)].
Se obtuvo el mismo grado de modificación cuando se repitió el experimento bajo condiciones idénticas empleando SS-PEG en lugar de SC-PEG.
B. SC-PEG(1g) fue añadido a una solución agitada de BSA (100mg) en 0,1 M de sodioborato, pH 9.2. Se empleó sodiomidroxida (0,5 N) para mantener el pH 9.2 durante 30 minutos. Se extrajo el exceso de PEG libre por diafiltración y se evaluó el producto para determinar el número de grupos aminos libres. Aproximadamente 68% (41) de los grupos aminos del BSA nativo fueron modificados.
C. BSC-PEG (1 g) fue añadido a una solución agitada de BSA (100 mg) en 0,1 M de borato de sodio, pH 9.2. Se empleó hidróxido sódico (0,5 N) para mantener el pH 9.2 durante 30 minutos. Se extrajo el exceso de PEG libre por diafiltración y se avaluó el producto para determinar el número de grupos aminos libres. Aproximadamente el 80% (48) de los grupos aminos del BSA nativo fueron modificados. El análisis del producto por CLAR (Filtración de gel) indicaba que más del 65% de PEG-BSA se encontraba en forma reticulada intermolecularmente y cerca del 35% del producto tenía el mismo peso molecular que el PEG-BSA del Ejemplo 3B.
Ejemplo 4
Preparación de PEG-glutaminasa: Una solución de Pseudomonas de glutaminasa 7A (200 mg) en 0,1 M de fosfato de sodio, pH 7.8 fue tratada con SC-PEG (4.7) g). Se agitó la solución y se mantuvo el pH 7.8 durante 30 minutos. Se extrajo el exceso de PEG libre por diafiltración empleando 50 mM de PBS.
Ejemplo 5
Preparación de PEG-Tripsina: Una solución de tripsina pancreática bovina (Boeringer-Manneim, 120 mg en 20 ml), que fue dializada durante la noche a 40ºC con 20 mM de CaCl_{2} en 1 mM de HCl, se dejó a 25ºC y se trató con SC-PEG (600 mg) durante 30 minutos. Durante este tiempo se mantuvo el pH 7.8 en el recipiente de reacción por valoración automática con 0,5 N de NaOH. La solución fue acidificada a pH 3 y extensamente diafiltrada para eliminar el exceso de polímero libre empleando 20 mM de CaCl_{2} en 1 mM de HCl como un fluido de sustitución. La tripsina modificada presentaba aproximadamente la mitad de los grupos aminos libres de la enzima madre (7 Cadenas de pEG por molécula de tripsina) determinado por valoración con TNBS de los grupos aminos (Habeeb 1966). El producto de tripsina PEG mantenía un 96% de actividad enzimática de la enzima madre hacia etiléster de Na-benzoil-L-arginina.
Ejemplo 6
Preparación de PEG-Arginasa: Una solución de arginasa de hígado bovino (Sigma, 90 mg) en 0,1 M de NaCl (20 ml) fue tratada con SC-PEG (1,3 g) a 27ºC mientras que se mantuvo el pH 8.0 por valoración automática con 0,5 N de NaOH. Después de 30 minutos se diafiltró la mezcla de reacción empleando 50 mM de PBS como un fluido de sustitución. Aproximadamente un 64% de los grupos aminos de la arginasa nativa fueron modificados (56 Cadenas de pEG por molécula de arginasa). El producto de PEG-arginasa retuvo el 70% de actividad específica de la enzima nativa al evaluarse con 2,3-butanodiona (Reactivo BUN-urea) a pH 9.5.
Ejemplo 7
Otros polipéptidos, entre los que se encuentra la quimiotripsina, asparaginasa, y deaminasa de adenosina, fueron modificados con SC-PEG empleando los procedimientos que se muestran aquí.
Los métodos de empleo de óxidos de polialquileno que se han hecho funcionales SC y/o BSC, como PEG y sus copolímeros se pueden aplicar generalmente para la preparación de otros polipéptidos modificados y otros componentes biológicamente activos que tengan grupos aminos.
Aunque la presente invención ha sido descrita con referencia a derivados de N-hidroxisuccinimida, resultará obvio para los expertos en la técnica que se pueden sustituir otras N-hidroxidicarboximidas. Derivados típicos de este tipo son N-hidroxiftalimida, N-hidroxiglutarimida, N- hidroxitetrahidroftalimida, N-hidroxi-5-nor-borneno-2,3-dicarboximida u otros derivados disubstituídos de hidroxilamina.
Ejemplo 8 Comparación de SC-PEG con SS-PEG
A. Como se ha visto en el Esquema 2, el producto de la modificación con proteína empleando SC-PEG tiene cadenas PEG injertadas sobre la base de polipéptido a través de enlaces de carbamato (uretano). Se esperaba que una mayor estabilidad del enlace de uretano con relación al enlace del éster producido empleando SS-PEG (ver Esquema 1) demostrara una diferencia clave entre los dos PEG activados y el correspondiente conjugado de proteína PEG. Nuestros estudios de hecho confirmaron esta esperanza. La figura 1 muestra los resultados de las medidas GF-PLC de las cantidades de mPEG libre producido como consecuencia de la incubación de conjugados de PEG-BSA derivados de cada uno de los PEG activados. Se aprecia considerablemente una mayor estabilidad del conjugado SC-PEG.
B. Para estimar las reacciones de SC-PEG y SS-PEG, se llevaron a cabo mediciones cinéticas de hidrólisis de los polímeros activados en tampón de fosfato y su aminolisis por N^{\alpha}-acetil-lisina (NAL). Los resultados de estos experimentos se encuentran resumidos en la Tabla 1. A partir de estos datos resulta claro que SS-PEG es un reactivo más reactivo que SC-PEG. La diferencia en los índices de hidrólisis fue mayor que la diferencia en los índices de aminolisis; consecuentemente, SC-PEG mostró ratios de K_{am}/K_{h} más favorables. La hidrólisis más lenta de SC-PEG también se manifestó en una estabilidad de almacenamiento superior del reactivo (Figura 2).
C. La reactividad de los PEG activados como función de pH se determinó empleando NAL como un modelo para el grupo \epsilon-amino de una proteína. Cada uno de los PEG activados fue hecho reaccionar con una cantidad equimolar de NAL con diferentes pH, y se midió el NAL que no reaccionó empleando la valoración TNBS (Figura 3). El pH óptimo para el empleo de SC-PEG se encontró que estaba cerca de 9.3. No resulta aconsejable el empleo de SS-PEG a pH>8.0, debido a la estabilidad limitada del éster de PEG-succinato. Sin embargo se descubrió que incluso a valores de pH menores de 8.0 este PEG activado era muy reactivo.
D. Ambos reactivos mostraron una reactividad elevada frente a la Tripsina que se hace comparable a la que producen los derivados de enzimas modificadas en condiciones normales (pH 7.5 - 8.5) en 30 minutos. Los productos fueron purificados por diafiltración, y los grados de modificaciones determinados por evaluación fluorométrica, según Stocks, et al. (1986) Anal. Biochem. 154, 232.
Todos derivados de tripsina modificados con PEG carecían esencialmente (<1% de nativo) de actividad proteolítica determinada por la prueba de Azocoll [Chavira, et al. (1984) Anal. Biocem.136, 446]. Las actividades específicas de las tripsinas modificadas con SS- y SC-PEG representativas hacia substratos de peso molecular bajo se encuentran resumidas en la Tabla 2. Los modificaciones apenas produjeron cambios en las actividades esterolíticas hacia el etiléster de benzoil-L-arginina, pero si que mejoró las actividades hacia las p-nitroanilidas. Las constantes cinéticas de Micaelis-Menten para diferentes tripsinas modificadas con SC- y SS-PEG fueron medidas empleando ZAPA como substrato. Estos resultados, que se encuentran resumidos en la Tabla 3, indican que, mientras que V_{max}, K_{cat}, y K_{cat} /K_{m} iban aumentando gradualmente a medida que iban decreciendo los valores de las modificaciones K_{m}.
En comparación con SS-PEG, SC-PEG es un reactivo aún menos reactivo y más selectivo. Esto se observa por sus ratios K_{am}/K_{h} más altos y un SC-PEG de mejor estabilidad de almacenamiento es un reactivo suficientemente reactivo como para producir conjugados de proteína PEG bajo condiciones normales en 30 minutos. Se puede emplear SC-PEG en un margen más amplio de pH que SS-PEG, mostrando la máxima reactividad a pH=9.3. Lo conjugados de proteína con PEG obtenidos por el empleo de SC-PEG son químicamente más estables que los conjugados derivados de SS-PEG. Los conjugados de Tripsina con PEG producidos por ambos PEGs activados presentan una propiedades muy similares: No muestran actividad proteolítica, muestran una actividad esterolítica bien preservada y una actividad aumentada espectacularmente hacia substratos de p-nitroanilida. Las constantes de Micaelis-Menten de las enzimas modificadas indican que el enlace de PEG a la tripsina produce un aumento tanto en el índice de renovación de ZAPA como en su afinidad hacia las enzimas modificadas.
TABLA 1 Comparación de las constantes de índice de primer orden para hidrólisis (K_{h}) y aminolisis (K_{am}) de SC-PEG y SS-PEG^{a}.
Temp. Hidrólisis: K_{h} ^{b}(min^{-1}) x 10^{3} Aminolisis: K_{am} ^{c}(min^{-1}) x 10^{3}
pH (ºC) y [t 1/2 (min)] y [K_{am}/K_{h}]
SC-PEG SS-PEG SC-PEG SS-PEG
4 0.87 [793] 1.84 [376] 2.64 [3.0] 3.74 [2.0]
7.0 27 6.05 [115] 10.4 [67] 26.4 [4.4] 41.4 [4.0]
37 14.2 [49] 25.9 [27] 81.7 [5.8] 104 [4.0]
TABLA 1 (continuación)
Temp. Hidrólisis: K_{h} ^{b}(min^{-1}) x 10^{3} Aminolisis: K_{am} ^{c}(min^{-1}) x 10^{3}
pH (ºC) y [t 1/2 (min)] y [K_{am}/K_{h}]
SC-PEG SS-PEG SC-PEG SS-PEG
22 5.37 [129] 10.7 [65] 29.1 [5.4] 42.7 [4.0]
7.4 27 9.0 [77] 16.0 [43] 48.6 [5.4] 73.6 [4.6]
37 19.3 [36] 37.6 [18] 145 [7.5] 193 [5.1]
4 1.37 [505] 2.58 [268] 12.4 [9.1] 15.0 [5.8]
7.8 27 10.3 [67] 21.6 [32] 130 [12.6] 152 [7.0]
37 21. [32] 48.8 [14] 226 [10.6] 267 [5.5]
Todas las mediciones se realizaron siguiendo la apariencia del anión de la N-hidroxisuccinimida -Osu) a 260 nm
( en 0.008 M de fosfato sódico; la concentración del acilo activo de succinimidilo enlazado con PEG en tiempo
cero [SX-PEG] fue 0.1 mM; en los experimentos de aminólisis la concentración de Na etil-lisina en tiempo cero
[NAL]_{\alpha} fue 3 mM.
^{b}K_{h} = Índice_{h}/[SX-PEG]_{0}, donde Índice_{h} = dA_{260}/dt x 1 E_{260} x 1F; \sum_{260} = 8500 M^{-1} cm^{-1} es un coeficiente de extinción de -Osu; y F = [-Osu] / ([HOsu] + [ Osu)] = (1 + 10^{6\cdot0- pH})^{-1}.
^{c}K_{am} = Índice Total / [SX-PEG]_{0} - K_{h}. El indice Total en experimentos de aminólisis fue calculado de la misma manera que el Índice_{h} en los experimentos de hidrólisis.
TABLA 2 Resumen de la modificación, actividad esterolítica y actividad amidolítica datos para tipsina y sus derivados mPEG
Derivados^{a} de Modif^{b} BAEE^{c} % BAPA^{d} % ZAPA^{d} %
Tripsina (%) (u/mg) Nativo (u/mg) Nativo (u/mg) Nativo
Tripsina Nativa 0 92.4 100 1.26 100 7.81 100
SC-PEG_{N}-Tripsina
N = 6 42.3 103 112 2.26 179 15.3 196
N = 7 45.8 87.9 95.1 2.38 188 17.5 224
N = 9 58.8 90.1 97.5 2.67 212 18.9 242
N = 12 77.9 85.1 92.2 3.83 304 25.5 326
SS-PEG_{N}-Tripsina
N = 7 44.8 102 110 3.25 258 18.8 241
N = 12 770 94.3 102 4.34 344 24.7 316
^{a} Para SX-PEG_{h}-Tipsina, N = 15 x (% Modif)/100 y es redondeado al entero más próximo.
^{b} El porcentaje de grupos aminos modificados fue determinado por el análisis de fluorescamina [Stocks, et al.
(1986) Anal. Biochem. 154, 232].
^{c} El análisis de BAEE (éster etílico de Na-benzoil-L-arginina) fue realizado a pH 7.8, 37º con una concentración
del substrato de 0.5 mM. El coeficiente de extinción fue \varepsilon_{253} = 808 M^{-1} cm^{-1} [Kezdy, et al. (1965) Biochemistry
4,99].
^{d} Los análisis amidolíticos the BAPA (N\alpha-benzoil-D, L- arginina-p-nitroanilida) y ZAPA (N\alpha-CBZ-L-arginina-
p-nitroanilida) fueron realizados con una concentración del substrato de 1 mM en 50 mM Tris-HCl pH 8.1, 10
mM CaCl_{2}, a 37ºC. El coeficiente de extinción para la p- nitroanilina, \varepsilon_{410} = 8800 M^{-1} cm^{-1}, fue usado en ambos
análisis.
TABLA 3
Constantes Michaelis-Menten para actividad aminolitica de
tripsina nativa y sus derivados^{a} de mPEG
Derivados de
Tripsina Km (mM) V_{max} (\muM/min) K_{cat} (min^{-1}) K_{cat}/K_{m} (mM^{-1} min^{-1})
Tripsina nativa 1.08 15.7 378 349
SC-PEG_{N-}
Tripsina
N = 7 0.29 19.6 470 1626
N = 9 0.21 20.2 484 2290
N = 12 0.11 22.9 549 4973
SSS-PEG_{N-}
Tripsina
N=7 0.21 18.6 447 2172
N = 12 0.13 22.5 539 4159
^{a} Las mediciones fueron realizadas a 37ºC con una concentración de proteína de Tripsina constante de
1,0 gg/ml (mediante el ensayo de Bluret). Se empleó N^{\alpha}- carbobenzoxi-L-arginina-p-nitroanilida (ZAP)
como substrato en concentraciones que variaban de 0,02 a 1,71 mM en 50 mM de tris-HCl pH 7.8 mM
de cloruro de calcio. Las constantes fueron calculadas a partir de lotes de Lineweaver-Burk de los índi-
ces iniciales de aparición de p-nitroanilina (\varepsilon_{410} =8800 M^{-1} cm^{-1}).

Claims (9)

1. Óxido de polialquileno que presenta la estructura:
R_{1}--(O--R_{2})_{a}--(O--R_{3})_{b}--(O--R_{4})_{c} O--CO-- O--R_{5}
donde
-
R_{1} es H, CH_{3} o un grupo carboniloxi-N-dicarboximida;
-
R_{2}, R_{3} y R_{4} son independientemente seleccionados del grupo consistente en -CH_{2}CH_{2}-, -CH_{2}CH(CH_{3})- y -CH_{2}CH_{2}CH_{2}CH_{2}-;
-
R_{5} es un grupo N-dicarboximida;
-
a es un número entero entre 10 y 1,000;
-
b y c son cada uno un número entero entre 0 y 1,000; y
-
la suma de a, b y c se encuentra entre 10 y 1,000.
2. Óxido de polialquileno según la reivindicación 1, donde R_{1} es un grupo carboniloxi-N-dicarboximida y R_{5} es un grupo N-dicarboximida y las N- dicarboximidas de R_{1} y R_{5} son seleccionadas del grupo consistente en N-succinimida, N-ftalimida, N-glutarimida, N-tetrahidroftalimida y N-norborneno-2,3-dicarboximida.
3. Óxido de polialquileno según la reivindicación 2, donde R_{5} es un grupo N-succinimida.
4. Óxido de polialquileno según la reivindicación 1 que presenta la estructura:
4
donde R_{1} es CH_{3}.
5. Óxido de polialquileno según la reivindicación 1 que presenta la estructura:
5
\newpage
6. Proceso para preparar un óxido de polialquileno que presenta la estructura:
R_{1}--(O--R_{2})_{a}--(O--R_{3})_{b}--(O--R_{4})_{c} O--CO-- O--R_{5}
donde
-
R_{1} es H, CH_{3} o un grupo carboniloxi-N-dicarboximida;
-
R_{2}, R_{3} y R_{4} son independientemente seleccionados del grupo consistente en -CH_{2}CH_{2}-, -CH_{2}CH(CH_{3})- y -CH_{2}CH_{2}CH_{2}CH_{2}-;
-
R_{5} es un grupo N-dicarboximida;
-
a es un número entero entre 10 y 1,000;
-
b y c son cada uno un número entero entre 0 y 1,000; y
-
la suma de a, b y c se encuentra entre 10 y 1,000.
incluyendo la reacción de un compuesto que presenta la estructura:
R_{1}-(O-R_{2})_{a}-(O-R_{3})_{b}-(O-R_{4})_{c} O-CO-X
donde
-
R_{1} es H, CH_{3} o un grupo carboniloxi-N-dicarboximida;
-
R_{2}, R_{3} y R_{4} son independientemente seleccionados del grupo consistente en
-CH_{2}CH_{2}-, -CH_{2}CH(CH_{3})- y -CH_{2}CH_{2}CH_{2}CH_{2}-;
-
X es un halógeno;
-
a es un número entero entre 10 y 1,000;
-
b y c son cada uno un número entero entre 0 y 1,000; y
-
la suma de a, b y c se encuentra entre 10 y 1,000. con una N-hidroxidicarboximida en presencia de una base.
7. Proceso según la reivindicación 6, donde dicha N-hidroxidicarboximida es N-hidroxisuccinimida.
8. Proceso según cualquiera de las reivindicaciones 6-7, donde dicha base es trietilamina.
9. Proceso según cualquiera de las reivindicaciones 6-8, donde R_{1} es un grupo carboniloxi-N-dicarboximida.
ES90906698T 1989-04-19 1990-04-19 Carbonatos activos de oxidos de polialquileno para la modificacion de polipeptidos. Expired - Lifetime ES2136595T5 (es)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US34092889A 1989-04-19 1989-04-19
US340928 1989-04-19

Publications (2)

Publication Number Publication Date
ES2136595T3 ES2136595T3 (es) 1999-12-01
ES2136595T5 true ES2136595T5 (es) 2004-04-01

Family

ID=23335516

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES90906698T Expired - Lifetime ES2136595T5 (es) 1989-04-19 1990-04-19 Carbonatos activos de oxidos de polialquileno para la modificacion de polipeptidos.
ES98203166T Expired - Lifetime ES2247656T3 (es) 1989-04-19 1990-04-19 Un proceso para formar un polipeptido modificado que comprende un polipeptido y un oxido de polialquileno.

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES98203166T Expired - Lifetime ES2247656T3 (es) 1989-04-19 1990-04-19 Un proceso para formar un polipeptido modificado que comprende un polipeptido y un oxido de polialquileno.

Country Status (10)

Country Link
EP (2) EP0893439B1 (es)
JP (1) JP2875884B2 (es)
AT (2) ATE300519T1 (es)
AU (1) AU5526690A (es)
CA (1) CA2053317C (es)
DE (2) DE69033192T3 (es)
DK (2) DK0470128T4 (es)
ES (2) ES2136595T5 (es)
HU (1) HUT64022A (es)
WO (1) WO1990013540A1 (es)

Families Citing this family (141)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5080891A (en) * 1987-08-03 1992-01-14 Ddi Pharmaceuticals, Inc. Conjugates of superoxide dismutase coupled to high molecular weight polyalkylene glycols
US5122614A (en) * 1989-04-19 1992-06-16 Enzon, Inc. Active carbonates of polyalkylene oxides for modification of polypeptides
US5324844A (en) * 1989-04-19 1994-06-28 Enzon, Inc. Active carbonates of polyalkylene oxides for modification of polypeptides
CA2101918A1 (en) * 1991-03-18 1992-09-19 Samuel Zalipsky Hydrazine containing conjugates of polypeptides and glycopolypeptides with polymers
US5595732A (en) * 1991-03-25 1997-01-21 Hoffmann-La Roche Inc. Polyethylene-protein conjugates
GB9116610D0 (en) * 1991-08-01 1991-09-18 Danbiosyst Uk Preparation of microparticles
US5382657A (en) * 1992-08-26 1995-01-17 Hoffmann-La Roche Inc. Peg-interferon conjugates
CA2101361A1 (en) * 1992-08-27 1994-02-28 Robert A. Snow Low diol polyalkylene oxide biologically active proteinaceous substances
US5349001A (en) * 1993-01-19 1994-09-20 Enzon, Inc. Cyclic imide thione activated polyalkylene oxides
US5359030A (en) * 1993-05-10 1994-10-25 Protein Delivery, Inc. Conjugation-stabilized polypeptide compositions, therapeutic delivery and diagnostic formulations comprising same, and method of making and using the same
US5643575A (en) * 1993-10-27 1997-07-01 Enzon, Inc. Non-antigenic branched polymer conjugates
US5919455A (en) 1993-10-27 1999-07-06 Enzon, Inc. Non-antigenic branched polymer conjugates
US5583114A (en) * 1994-07-27 1996-12-10 Minnesota Mining And Manufacturing Company Adhesive sealant composition
WO1996040792A1 (en) * 1995-06-07 1996-12-19 Novo Nordisk A/S Modification of polypeptides
AU5893696A (en) * 1995-06-07 1996-12-30 Novo Nordisk A/S Modification of polypeptides
US6818018B1 (en) 1998-08-14 2004-11-16 Incept Llc In situ polymerizable hydrogels
US6413507B1 (en) 1999-12-23 2002-07-02 Shearwater Corporation Hydrolytically degradable carbamate derivatives of poly (ethylene glycol)
EP2133098A1 (en) 2000-01-10 2009-12-16 Maxygen Holdings Ltd G-CSF conjugates
EP1982732A3 (en) 2000-02-11 2011-06-08 Bayer HealthCare LLC Factor VII or VIIA-like conjugates
AU3838401A (en) 2000-02-17 2001-08-27 3M Innovative Properties Co Delivery systems using preformed biodegradable polymer compositions and methods
US7118737B2 (en) 2000-09-08 2006-10-10 Amylin Pharmaceuticals, Inc. Polymer-modified synthetic proteins
ATE432288T1 (de) 2001-02-27 2009-06-15 Maxygen Aps Neue interferon-beta-ähnliche moleküle
US7795210B2 (en) 2001-10-10 2010-09-14 Novo Nordisk A/S Protein remodeling methods and proteins/peptides produced by the methods
US7214660B2 (en) 2001-10-10 2007-05-08 Neose Technologies, Inc. Erythropoietin: remodeling and glycoconjugation of erythropoietin
ES2411007T3 (es) 2001-10-10 2013-07-04 Novo Nordisk A/S Remodelación y glicoconjugación de péptidos
DK2279755T3 (da) 2001-10-10 2014-05-26 Ratiopharm Gmbh Remodellering og glycokonjugering af fibroblastvækstfaktor (FGF)
US7173003B2 (en) 2001-10-10 2007-02-06 Neose Technologies, Inc. Granulocyte colony stimulating factor: remodeling and glycoconjugation of G-CSF
US7157277B2 (en) 2001-11-28 2007-01-02 Neose Technologies, Inc. Factor VIII remodeling and glycoconjugation of Factor VIII
BR0309576A (pt) 2002-04-30 2005-02-09 Maxygen Holdings Ltd Variante de polipeptìdeo do fator vii (fvii) ou fator viia (fviia), sequência de nucleotìdeo, vetor de expressão, célula hospedeira, composição farmacêutica, uso de uma variante, e, método para tratar um mamìfero que tenha uma doença ou um distúrbio em que a formação de coágulo é desejável
DK1517710T3 (da) 2002-06-21 2011-07-18 Novo Nordisk Healthcare Ag Pegylerede faktor VII-glycoformer
EP1616003A4 (en) 2002-12-30 2007-06-20 Gryphon Therapeutics Inc WATER-SOLUBLE THIOESTER AND SELENOESTER COMPOUNDS AND METHOD FOR THE PRODUCTION AND USE THEREOF
WO2004083258A2 (en) 2003-03-14 2004-09-30 Neose Technologies Inc. Branched water-soluble polymers and their conjugates
US8791070B2 (en) 2003-04-09 2014-07-29 Novo Nordisk A/S Glycopegylated factor IX
WO2006127896A2 (en) 2005-05-25 2006-11-30 Neose Technologies, Inc. Glycopegylated factor ix
EP1615945B1 (en) 2003-04-09 2011-09-28 BioGeneriX AG Glycopegylation methods and proteins/peptides produced by the methods
AU2004240553A1 (en) 2003-05-09 2004-12-02 Neose Technologies, Inc. Compositions and methods for the preparation of human growth hormone glycosylation mutants
GB0314472D0 (en) * 2003-06-20 2003-07-23 Warwick Effect Polymers Ltd Polymer
GB0316294D0 (en) 2003-07-11 2003-08-13 Polytherics Ltd Conjugated biological molecules and their preparation
US9005625B2 (en) 2003-07-25 2015-04-14 Novo Nordisk A/S Antibody toxin conjugates
CN1867581B (zh) 2003-10-10 2012-02-01 诺沃挪第克公司 Il-21衍生物
EP2641611A3 (en) 2003-10-17 2013-12-18 Novo Nordisk A/S Combination therapy
US20080305992A1 (en) 2003-11-24 2008-12-11 Neose Technologies, Inc. Glycopegylated erythropoietin
US8633157B2 (en) 2003-11-24 2014-01-21 Novo Nordisk A/S Glycopegylated erythropoietin
US20060040856A1 (en) 2003-12-03 2006-02-23 Neose Technologies, Inc. Glycopegylated factor IX
US7956032B2 (en) 2003-12-03 2011-06-07 Novo Nordisk A/S Glycopegylated granulocyte colony stimulating factor
WO2005070138A2 (en) 2004-01-08 2005-08-04 Neose Technologies, Inc. O-linked glycosylation of peptides
NZ548255A (en) 2004-02-02 2010-10-29 Ambrx Inc Modified human interferon polypeptides and their uses
AU2005238015A1 (en) * 2004-04-21 2005-11-10 Alza Corporation Polymer conjugate releasable under mild thiolytic conditions
AU2005253979A1 (en) 2004-06-08 2005-12-29 Alza Corporation Preparation of macromolecular conjugates by four-component condensation reaction
CN102532321B (zh) 2004-06-18 2018-10-12 Ambrx公司 新颖抗原结合多肽和其用途
WO2006010143A2 (en) 2004-07-13 2006-01-26 Neose Technologies, Inc. Branched peg remodeling and glycosylation of glucagon-like peptide-1 [glp-1]
US8268967B2 (en) 2004-09-10 2012-09-18 Novo Nordisk A/S Glycopegylated interferon α
JP5948627B2 (ja) 2004-10-29 2016-07-20 レイショファーム ゲーエムベーハー 線維芽細胞成長因子(fgf)のリモデリングと糖質ペグ化
EP2284191A3 (en) 2004-12-22 2011-07-20 Ambrx, Inc. Process for the preparation of hGH
EP1833993A4 (en) 2004-12-22 2009-07-22 Ambrx Inc HUMAN GROWTH HORMONE FORMULATIONS COMPRISING AN AMINO ACID CODED NON-NATURALLY
CN104803865A (zh) 2004-12-22 2015-07-29 Ambrx公司 含有非天然氨基酸和多肽的组合物、涉及非天然氨基酸和多肽的方法以及其用途
SG161210A1 (en) 2004-12-22 2010-05-27 Ambrx Inc Methods for expression and purification of recombinant human growth hormone
ZA200704927B (en) 2004-12-22 2009-09-30 Ambrx Inc Compositions of aminoacyl-tRNA synthetase and uses thereof
WO2006074467A2 (en) 2005-01-10 2006-07-13 Neose Technologies, Inc. Glycopegylated granulocyte colony stimulating factor
US7365127B2 (en) * 2005-02-04 2008-04-29 Enzon Pharmaceuticals, Inc. Process for the preparation of polymer conjugates
EP2314320A2 (en) 2005-04-05 2011-04-27 Istituto di Richerche di Biologia Molecolare P. Angeletti S.p.A. Method for shielding functional sites or epitopes on proteins
WO2006121569A2 (en) 2005-04-08 2006-11-16 Neose Technologies, Inc. Compositions and methods for the preparation of protease resistant human growth hormone glycosylation mutants
EP1888098A2 (en) 2005-05-25 2008-02-20 Neose Technologies, Inc. Glycopegylated erythropoietin formulations
JP2008541769A (ja) 2005-06-03 2008-11-27 アンブレツクス・インコーポレイテツド 改善されたヒトインターフェロン分子及びそれらの使用
JP5335422B2 (ja) 2005-06-17 2013-11-06 ノボ ノルディスク ヘルス ケア アクチェンゲゼルシャフト 少なくとも1つの非天然のシステインを含んでいる操作されたタンパク質の選択的な還元および誘導体化
US20070105755A1 (en) 2005-10-26 2007-05-10 Neose Technologies, Inc. One pot desialylation and glycopegylation of therapeutic peptides
US20090048440A1 (en) 2005-11-03 2009-02-19 Neose Technologies, Inc. Nucleotide Sugar Purification Using Membranes
US20090018029A1 (en) 2005-11-16 2009-01-15 Ambrx, Inc. Methods and Compositions Comprising Non-Natural Amino Acids
EP1797901A1 (en) 2005-12-16 2007-06-20 Diatos Cell penetrating peptide conjugates for delivering nucleic acids into cells
BRPI0708895A2 (pt) 2006-03-13 2011-06-28 Liat Mintz uso de variante de junção de grelina para tratar caquexia e/ou anorexia e/ou anorexia-caquexia e/ou subnutrição e/ou lipodistrofia e/ou atrofia muscular e/ou estimulação do apetite
JP2009537609A (ja) 2006-05-24 2009-10-29 ノボ ノルディスク ヘルス ケア アーゲー 延長されたfixアナログ及び誘導体
ES2516694T3 (es) 2006-07-21 2014-10-31 Ratiopharm Gmbh Glicosilación de péptidos a través de secuencias de glicosilación con unión en O
DK2615108T3 (en) 2006-09-08 2017-01-30 Ambrx Inc Modified human plasma polypeptide or fc scaffolds and their applications
PT2064333E (pt) 2006-09-08 2014-06-09 Ambrx Inc Supressor híbrido arnt para células de vertebrados
JP5399906B2 (ja) 2006-09-08 2014-01-29 アンブルックス,インコーポレイテッド 脊椎動物細胞用のハイブリッドサプレッサーtrna
US7985783B2 (en) 2006-09-21 2011-07-26 The Regents Of The University Of California Aldehyde tags, uses thereof in site-specific protein modification
JP2010505874A (ja) 2006-10-03 2010-02-25 ノヴォ ノルディスク アー/エス ポリペプチドコンジュゲートの精製方法
BRPI0717505B8 (pt) 2006-10-04 2021-05-25 Novo Nordisk As conjugado de peptídeo e formulação farmacêutica
BRPI0809583B1 (pt) 2007-03-30 2022-02-22 Ambrx, Inc Polipeptídeo fgf-21 modificado, composição compreendendo o mesmo, método para produzir o referido polipetídeo fgf-21 e célula compreendendo um polinucleotídeo
ES2406267T3 (es) 2007-04-03 2013-06-06 Biogenerix Ag Métodos de tratamiento usando G-CSF glicopegilado
US8114630B2 (en) 2007-05-02 2012-02-14 Ambrx, Inc. Modified interferon beta polypeptides and their uses
JP5876649B2 (ja) 2007-06-12 2016-03-02 ラツィオファルム ゲーエムベーハーratiopharm GmbH ヌクレオチド糖の改良製造法
US8207112B2 (en) 2007-08-29 2012-06-26 Biogenerix Ag Liquid formulation of G-CSF conjugate
JP5547083B2 (ja) 2007-11-20 2014-07-09 アンブルックス,インコーポレイテッド 修飾されたインスリンポリペプチドおよびそれらの使用
EP2247743B1 (en) 2008-02-08 2016-04-06 Ambrx, Inc. Modified leptin polypeptides and their uses
AU2009219232B2 (en) 2008-02-27 2014-02-27 Novo Nordisk A/S Conjugated Factor VIII molecules
PL2300514T3 (pl) * 2008-07-14 2016-09-30 Sposób syntezowania zasadniczo monodyspersyjnej mieszaniny oligomerów
NZ591235A (en) 2008-07-23 2012-07-27 Ambrx Inc Modified bovine g-csf polypeptides comprising non natural amino acid and their uses treating infections such as mastitis
JP5709754B2 (ja) 2008-09-26 2015-04-30 アンブルックス, インコーポレイテッドAmbrx, Inc. 非天然アミノ酸による複製に依存する微生物およびワクチン
CN102232085A (zh) 2008-09-26 2011-11-02 Ambrx公司 修饰的动物促红细胞生成素多肽和其用途
TWI496582B (zh) 2008-11-24 2015-08-21 必治妥美雅史谷比公司 雙重專一性之egfr/igfir結合分子
WO2010144629A1 (en) 2009-06-09 2010-12-16 Prolong Pharmaceuticals, LLC Hemoglobin compositions
EA201290541A1 (ru) 2009-12-21 2013-05-30 Амбркс, Инк. Модифицированные бычьи соматотропиновые полипептиды и их применение
AU2010341518B2 (en) 2009-12-21 2014-01-09 Ambrx, Inc. Modified porcine somatotropin polypeptides and their uses
EP3815708A1 (en) 2010-03-05 2021-05-05 Omeros Corporation Chimeric inhibitor molecules of complement activation
WO2011143274A1 (en) 2010-05-10 2011-11-17 Perseid Therapeutics Polypeptide inhibitors of vla4
US9567386B2 (en) 2010-08-17 2017-02-14 Ambrx, Inc. Therapeutic uses of modified relaxin polypeptides
NZ607069A (en) 2010-08-17 2014-10-31 Ambrx Inc Modified relaxin polypeptides and their uses
TWI480288B (zh) 2010-09-23 2015-04-11 Lilly Co Eli 牛顆粒細胞群落刺激因子及其變體之調配物
BR112013021661A2 (pt) 2011-03-02 2016-11-22 Novo Nordisk As objetivação de fator de coagulação a tlt-1 sobre plaquetas ativadas
JP6166258B2 (ja) 2011-06-15 2017-07-19 アンスティチュ ナショナル ドゥ ラ サンテ エ ドゥ ラ ルシェルシュ メディカル ブレビバクテリウム・オーランチアカム(Brevibacteriumaurantiacum)から単離されたポリペプチド及び癌の治療を目的とするその使用
AU2012280474A1 (en) 2011-07-01 2014-01-16 Bayer Intellectual Property Gmbh Relaxin fusion polypeptides and uses thereof
CA2840221A1 (en) 2011-07-05 2013-01-10 Bioasis Technologies Inc. P97-antibody conjugates and methods of use
MX363119B (es) 2012-05-01 2019-03-11 Novo Nordisk As Composicion farmaceutica.
ES2718478T3 (es) 2012-06-08 2019-07-02 Sutro Biopharma Inc Anticuerpos que comprenden restos de aminoácidos no naturales de localización específica, métodos para su preparación y métodos para su uso
EP2863955B1 (en) 2012-06-26 2016-11-23 Sutro Biopharma, Inc. Modified fc proteins comprising site-specific non-natural amino acid residues, conjugates of the same, methods of their preparation and methods of their use
CA3140358A1 (en) 2012-07-31 2014-02-06 Bioasis Technologies, Inc. Dephosphorylated lysosomal storage disease proteins and methods of use thereof
EP4074728A1 (en) 2012-08-31 2022-10-19 Sutro Biopharma, Inc. Modified peptides comprising an azido group
CA2890190A1 (en) 2012-11-12 2014-05-15 Redwood Bioscience, Inc. Compounds and methods for producing a conjugate
CN104870423A (zh) 2012-11-16 2015-08-26 加利福尼亚大学董事会 用于蛋白质化学修饰的pictet-spengler连接反应
US9310374B2 (en) 2012-11-16 2016-04-12 Redwood Bioscience, Inc. Hydrazinyl-indole compounds and methods for producing a conjugate
WO2014160438A1 (en) 2013-03-13 2014-10-02 Bioasis Technologies Inc. Fragments of p97 and uses thereof
ES2926773T3 (es) 2013-03-15 2022-10-28 Novo Nordisk As Anticuerpos capaces de unirse específicamente a dos epítopos en el inhibidor de la ruta del factor tisular
ES2658039T3 (es) 2013-07-10 2018-03-08 Sutro Biopharma, Inc. Anticuerpos que comprenden múltiples residuos de aminoácidos no naturales sitio-específicos, métodos para su preparación y métodos de uso
EP3038657A2 (en) 2013-08-28 2016-07-06 Bioasis Technologies Inc. Cns-targeted conjugates having modified fc regions and methods of use thereof
CN105744935B (zh) 2013-11-27 2022-09-30 雷德伍德生物科技股份有限公司 肼基-吡咯并化合物及用于生成缀合物的方法
PT3412302T (pt) 2014-10-24 2021-06-09 Bristol Myers Squibb Co Polipéptidos de fgf-21 modificados e utilizações dos mesmos
WO2017029391A1 (en) 2015-08-20 2017-02-23 INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale) New method for treating cancer
KR20180102065A (ko) 2015-11-09 2018-09-14 알.피.쉐러 테크놀러지즈 엘엘씨 항-cd22 항체-메이탄신 콘쥬게이트 및 그것의 사용 방법
CA3026070A1 (en) * 2016-06-01 2018-01-25 Servier IP UK Limited Formulations of polyalkylene oxide-asparaginase and methods of making and using the same
WO2018077851A1 (en) 2016-10-24 2018-05-03 Novo Nordisk A/S Bioassay for insulin formulations
EP3580232B1 (en) 2017-02-08 2023-09-20 Bristol-Myers Squibb Company Modified relaxin polypeptides comprising a pharmacokinetic enhancer and uses thereof
WO2019038420A1 (en) 2017-08-25 2019-02-28 INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale) PHARMACEUTICAL COMPOSITIONS FOR THE TREATMENT OF OSTEOCLAST DISEASES
CN111094462A (zh) 2017-12-26 2020-05-01 贝克顿·迪金森公司 深紫外线可激发的水溶剂化聚合物染料
US10844228B2 (en) 2018-03-30 2020-11-24 Becton, Dickinson And Company Water-soluble polymeric dyes having pendant chromophores
WO2020023300A1 (en) 2018-07-22 2020-01-30 Bioasis Technologies, Inc. Treatment of lymmphatic metastases
PT3849614T (pt) 2018-09-11 2024-02-28 Ambrx Inc Conjugados de polipeptídeos de interleucina-2 e suas utilizações
WO2020089743A1 (en) 2018-11-02 2020-05-07 Cadila Healthcare Limited Pharmaceutical composition of pegylated l-asparaginase
WO2021048171A1 (en) 2019-09-10 2021-03-18 INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale) Method to improve phagocytosis
AU2021233909A1 (en) 2020-03-11 2022-09-29 Ambrx, Inc. Interleukin-2 polypeptide conjugates and methods of use thereof
US20210355468A1 (en) 2020-05-18 2021-11-18 Bioasis Technologies, Inc. Compositions and methods for treating lewy body dementia
US20210393787A1 (en) 2020-06-17 2021-12-23 Bioasis Technologies, Inc. Compositions and methods for treating frontotemporal dementia
US11739166B2 (en) 2020-07-02 2023-08-29 Davol Inc. Reactive polysaccharide-based hemostatic agent
MX2023007767A (es) 2020-12-28 2023-07-07 Davol Inc Materiales hemostaticos secos en polvo reactivos que comprenden una proteina y un agente de entrelazado a base de polietilenglicol modificado multifuncional.
WO2022152698A1 (en) 2021-01-12 2022-07-21 INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale) Use of npdk-d to evaluate cancer prognosis
WO2022200469A1 (en) 2021-03-24 2022-09-29 INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale) A dominant negative protein of rad51 for treating cancer
EP4155349A1 (en) 2021-09-24 2023-03-29 Becton, Dickinson and Company Water-soluble yellow green absorbing dyes
CN114965761B (zh) * 2022-05-17 2024-07-02 深圳赛保尔生物药业有限公司 聚乙二醇化蛋白药物中n-羟基琥珀酰亚胺的检测方法
WO2024007016A2 (en) 2022-07-01 2024-01-04 Beckman Coulter, Inc. Novel fluorescent dyes and polymers from dihydrophenanthrene derivatives
WO2024044327A1 (en) 2022-08-26 2024-02-29 Beckman Coulter, Inc. Dhnt monomers and polymer dyes with modified photophysical properties
WO2024196805A1 (en) 2023-03-17 2024-09-26 Beckman Coulter, Inc. Benzothienopyrrole cyanine dyes

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2631656C2 (de) * 1976-07-14 1983-02-10 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Verwendung eines Hydroxysuccinimidoester-Derivats zur Bindung von biologisch aktiven Proteinen aneinander und/oder an flüssige oder feste Trägerstoffe
CS204190B1 (en) 1978-02-22 1981-03-31 Jaroslav Drobnik Activation method for hydrxyl groups containing insoluble carriers
YU144584A (en) 1983-08-25 1987-06-30 Akad Wissenschaften Ddr Process for making n-(chlorocarbonyloxi)-s-norbornen-2,3-dicarboximide
DD219490A1 (de) 1983-10-28 1985-03-06 Akad Wissenschaften Ddr Verfahren zur herstellung aktivierter traeger
JPS60156395A (ja) * 1984-01-17 1985-08-16 Mihama Hisaharu 修飾リパーゼ
DE3413904A1 (de) * 1984-04-13 1985-10-24 Hoechst Ag, 6230 Frankfurt Polymerisate auf basis von polyvinylencarbonat und/oder polyhydroxymethylen, verfahren zu ihrer herstellung und ihre anwendung
FR2574075B1 (fr) * 1984-12-04 1987-09-18 Poudres & Explosifs Ste Nale Procede de synthese d'esters actifs d'acides carboxyliques, nouveaux carbonates alpha-halogenes utiles pour cette synthese et leur mode d'obtention
JPH0757760B2 (ja) * 1987-06-05 1995-06-21 宇部興産株式会社 生体由来物質の固定化方法
DD260701A1 (de) 1987-06-30 1988-10-05 Akad Wissenschaften Ddr Verfahren zur umesterung von aktiven unsymmetrischen kohlensaeurediester-gruppen an hydroxylgruppenhaltigen polymeren
DD261791A1 (de) 1987-06-30 1988-11-09 Akad Wissenschaften Ddr Verfahren zur herstellung von carbonaten hydroxylgruppenhaltiger polymere
IE64284B1 (en) 1987-08-03 1995-07-26 Ddi Pharmaceuticals Conjugates of superoxide dismutase
US4847325A (en) 1988-01-20 1989-07-11 Cetus Corporation Conjugation of polymer to colony stimulating factor-1

Also Published As

Publication number Publication date
DE69034200T2 (de) 2006-05-24
DE69033192D1 (de) 1999-08-05
CA2053317C (en) 1996-03-12
EP0893439B1 (en) 2005-07-27
EP0470128A1 (en) 1992-02-12
DE69033192T2 (de) 2000-03-09
EP0470128B2 (en) 2003-08-13
JPH04504872A (ja) 1992-08-27
ATE181732T1 (de) 1999-07-15
DK0470128T4 (da) 2003-12-01
HU903628D0 (en) 1991-12-30
ES2247656T3 (es) 2006-03-01
DE69034200D1 (de) 2005-09-01
ES2136595T3 (es) 1999-12-01
HUT64022A (en) 1993-11-29
AU5526690A (en) 1990-11-29
WO1990013540A1 (en) 1990-11-15
EP0470128B1 (en) 1999-06-30
DK0893439T3 (da) 2005-09-05
CA2053317A1 (en) 1990-10-20
EP0893439A1 (en) 1999-01-27
EP0470128A4 (en) 1992-09-16
DE69033192T3 (de) 2004-05-19
JP2875884B2 (ja) 1999-03-31
DK0470128T3 (da) 2000-01-10
ATE300519T1 (de) 2005-08-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES2136595T5 (es) Carbonatos activos de oxidos de polialquileno para la modificacion de polipeptidos.
US5324844A (en) Active carbonates of polyalkylene oxides for modification of polypeptides
US5808096A (en) Process for preparing active carbonates of polyalkylene oxides for modification of polypeptides
ES2249824T3 (es) Conjugados de polimeros ramificados no antigenicos.
Zalipsky et al. Use of functionalized poly (ethylene glycol) s for modification of polypeptides
ES2649840T3 (es) Uricasa tetramérica aislada
ES2238522T3 (es) Metodo para preparar conjugados del factor viii y un polimero biocompatible.
KR100653153B1 (ko) 수용성 중합체의 입체장애 유도체
ES2390816T3 (es) N,N-bis-(2-hidroxietil) glicina amida como ligador en profármacos conjugados con polímeros
US8465734B2 (en) Methods for increasing protein polyethylene glycol (PEG) conjugation
EP0788515A1 (en) Non-antigenic branched polymer conjugates
KR100508369B1 (ko) 펩타이드 스페이서를 갖는 생체적합성 고분자
EP0632082B1 (en) Preparation of activated carbamates of poly(alkylene glycol) and their use

Legal Events

Date Code Title Description
FG2A Definitive protection

Ref document number: 470128

Country of ref document: ES