CN116879450A - 一种利用超临界流体色谱系统分离纯化芦可替尼前体的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种利用超临界流体色谱系统分离纯化芦可替尼前体的方法,包括以下步骤:将3‑(4‑{7‑[(2‑三甲基硅基)乙氧基]甲基‑7H‑吡咯并[2,3‑d]嘧啶‑4‑基}‑1H‑吡唑‑1‑基)‑3‑环戊基丙腈样品溶解在甲醇中,超声助溶,利用超临界流体色谱系统分离纯化,得到样品的R型异构;所述超临界流体色谱系统的流动相包括超临界二氧化碳和甲醇,固定相包括硅胶;所述硅胶的表面涂覆直链淀粉‑三[3,5‑二甲基氨基甲酸酯]衍生物或纤维素‑三[3,5‑二甲基氨基甲酸酯]衍生物中的一种或几种。本发明能够快速高效的得到R型异构;可用于工业放大生产。
Description
技术领域
本发明涉及一种利用超临界流体色谱系统分离纯化芦可替尼前体的方法,属于色谱领域。
背景技术
3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈的R型异构体是芦可替尼(Ruxolitinib)的前体,芦可替尼的中文化学名为(R)-3-[4-(7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基)-1H-吡唑-1-基]-3-环戊基丙腈,英文化学名称为(R)-3-(4-(7H-pyrrolo[2,3-d]pyrimidin-4-yl)-1H-pyrazol-1-yl)-3-cyclopentylpropanenitrle。
芦可替尼为一种高选择性的激酶抑制剂,由美国因塞特公司研发,是用于治疗骨髓纤维化的孤儿药;2014年经FDA批准用于治疗对羟基脲应答不足或不能耐受的真性红细胞增多症;2019年FDA批准用于治疗12岁以上儿童及成人患者的急性移植物抗宿主病;2021年FDA批准用于12岁以上儿童及成人患者慢性GVHD的二线治疗。
现有3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈的的R型和S型异构体拆分多使用化学拆分法或使用手性色谱柱在高效液相色谱系统中进行拆分。化学拆分存在拆分难度大,样品回收率低等缺点;高效液相色谱使用手性色谱柱拆分能够提高拆分效率,具有时间短,收率高的特点,但存在溶剂使用量大,单位时间内拆分量低等缺点。
发明内容
发明目的:本发明所要解决的技术问题是提供了一种快速高效的利用超临界流体色谱系统分离纯化芦可替尼前体的方法。
技术方案:为解决上述技术问题,本发明提供了一种利用超临界流体色谱系统分离纯化芦可替尼前体的方法,包括以下步骤:将3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈样品溶解在甲醇中,超声助溶,利用超临界流体色谱系统分离纯化,得到芦可替尼前体;所述超临界流体色谱系统的流动相包括超临界二氧化碳和甲醇,固定相包括硅胶;所述硅胶的表面涂覆直链淀粉-三[3,5-二甲基氨基甲酸酯]衍生物或纤维素-三[3,5-二甲基氨基甲酸酯]衍生物中的一种或几种。
其中,所述纤维素-三[3,5-二甲基氨基甲酸酯]衍生物包括纤维素-三[4-甲基苯甲酸酯]。
其中,所述直链淀粉-三[3,5-二甲基氨基甲酸酯]衍生物包括直链淀粉-三[(S)-α-甲基苯基氨基甲酸酯]。
其中,在超临界流体色谱系统洗脱过程中,超临界二氧化碳和甲醇的体积比为100~50:0~50。
其中,所述超临界流体色谱系统的流速为3~10mL/min。
其中,所述超临界色谱柱系统的柱温度为30~45℃。
其中,所述3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈样品在甲醇中的浓度为10~500mg/mL。
其中,所述超临界流体色谱系统的色谱柱为NuciferaAD 10μm 10×250mm、Nucifera OD 5μm 4.6×250mm、NuciferaAS 5μm 4.6×250mm、NuciferaOJ 5μm 4.6×250mm、Nucifera AD 5μm 4.6×250mm。
其中,所述超临界二氧化碳在通过泵时的温度为2~10℃,密度为890~950kg/m3。
其中,所述超临界流体色谱系统的背压为8~12MPa。
其中,所述超临界流体色谱系统的进样体积为100~200μL。
工作原理:使用超临界二氧化碳和有机相体系将样品带入到色谱柱中,通过样品和色谱柱中手性填料的相互作用对R型异构体和S型异构体进行分离,化合物通过与手性填料的手性作用、偶极作用、氢键作用、π-π作用等作用力,并且在三个作用力同时发生作用时,才能够得到R型异构体和S型异构体的分离。
有益效果:与现有技术相比,本发明具有如下显著优点:1、能够快速高效的得到3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈的R型异构;2、可用于工业放大生产。
附图说明
图1为实施例1中利用超临界流体色谱仪分离3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈溶液得到的分离谱图;
图2为实施例2中利用超临界流体色谱分离3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈溶液得到的分离谱图;
图3为实施例3中利用超临界流体色谱仪分离3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈溶液得到的分离谱图;
图4为实施例4中利用超临界流体色谱仪分离3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈溶液得到的分离谱图;
图5为实施例5中利用超临界流体色谱仪分离3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈溶液得到的分离谱图;
图6为实施例5中收集到的3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈的R型异构体和标准溶液的HPLC谱图;
图7为对比例1中利用超临界流体色谱仪分离3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈溶液得到的分离谱图;
图8为对比例2中利用超临界流体色谱仪分离3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈溶液得到的分离谱图;
图9为对比例3中利用超临界流体色谱仪分离3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈溶液得到的分离谱图。
具体实施方式
下面结合附图对本发明的技术方案作进一步说明。
实施例1
本实施例选用的色谱仪为江苏汉邦科技有限公司的超临界流体色谱仪(SFC),型号为SFC-Lab20,色谱柱规格为Nucifera AD 5μm 4.6×250mm,流动相体系的流速为3mL/min,背压设定12MPa,3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈甲醇溶液的浓度为500mg/mL,进样体积为100μL,检测波长为220nm。
表1-1为实施例1使用超临界流体色谱(SFC)分离3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈消旋体的条件。
表1实施例1中SFC分离条件
实施例1对应的具体步骤为:将3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈溶解在甲醇中,超声助溶,配置成500mg/mL的3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈的甲醇溶液,在江苏汉邦科技股份有限公司SFC-Lab20超临界流体色谱仪上,选用NuciferaAD 5μm 4.6×250mm作为色谱柱,固定相为硅胶表面涂覆直链淀粉-三[(S)-α-甲基苯基氨基甲酸酯],按照表1控制流动相中超临界二氧化碳和甲醇的体积比、总流速,背压和色谱柱柱温,同时确保二氧化碳进入泵时的温度为8℃,对3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈消旋体进行分离,其分离效果图如图1所示。从图1可以看出:NuciferaAD 5μm色谱柱可以实现3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈的完全分离。
实施例2
选用的色谱仪为江苏汉邦科技股份有限公司的超临界流体色谱仪,色谱柱规格为NuciferaOD 5μm 4.6×250mm,流动相体系的流速为3mL/min,背压为12MPa,3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈甲醇溶液的浓度为10mg/mL,进样体积为100μL,检测波长为220nm。
表2-1为实施例2使用超临界流体色谱(SFC)分离3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈消旋体的条件。
表2实施例2中SFC分离条件
实施例2对应的具体步骤为:将3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈样品溶解在甲醇中,超声助溶,配置成浓度为500mg/mL的3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈甲醇溶液,在江苏汉邦科技股份有限公司SFC-Lab20超临界流体色谱仪上,选用Nucifera OD 5μm 4.6×250mm作为色谱柱,固定相为硅胶表面涂覆纤维素-三[4-甲基苯甲酸酯],按照表2控制流动相中超临界二氧化碳和甲醇的体积比、总流速,背压和色谱柱柱温,同时确保二氧化碳进入泵时的温度为5℃;对3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈消旋体进行分离,其分离效果图如图2所示。从图2可以看出:Nucifera OD 5μm可以实现3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈的完全分离。
实施例3
选用的色谱仪为江苏汉邦科技股份有限公司的超临界流体色谱仪,色谱柱规格为NuciferaAS 5μm 4.6×250mm,流动相体系的流速为3mL/min,背压设定12MPa,3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈甲醇溶液的浓度为200mg/mL,进样体积为100μL,检测波长为220nm。
表3为实施例3使用超临界流体色谱(SFC)分离3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈消旋体的条件。
表3-1实施例3中SFC分离条件
实施例3对应的具体步骤为:将3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈溶解在甲醇中,超声助溶,配置成浓度为500mg/mL的3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈甲醇溶液,在江苏汉邦科技股份有限公司SFC-Lab20超临界流体色谱仪上,选用Nucifera AS 5μm 4.6×250mm的色谱柱,固定相为硅胶表面涂覆纤维素-三[4-甲基苯甲酸酯],按照表3控制流动相中超临界二氧化碳和甲醇的体积比、总流速,背压和色谱柱柱温,同时确保二氧化碳进入泵时的温度为8℃;对3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈消旋体进行分离,其分离效果图如图3所示。从图3可以看出Nucifera AS 5μm可以实现3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈的完全分离。
实施例4
选用的色谱仪为江苏汉邦科技股份有限公司超临界流体色谱仪,色谱柱规格为NuciferaOJ 5μm 4.6×250mm,流动相体系的流速为3mL/min,背压设定12MPa,3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈甲醇溶液的浓度为100mg/mL,进样体积为100μL,检测波长为220nm。
表4为实施例4的使用超临界流体色谱(SFC)分离3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈消旋体的条件。
表4实施例4中SFC分离条件
实施例4对应的具体步骤为:将3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈样品溶解在甲醇中,超声助溶,配置成浓度为500mg/mL的3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈甲醇溶液,在江苏汉邦科技股份有限公司超临界流体色谱仪上,选用Nucifera OJ 5μm 4.6×250mm的色谱柱,固定相为硅胶表面涂覆直链淀粉-三[(S)-α-甲基苯基氨基甲酸酯],按照表4控制流动相中超临界二氧化碳和甲醇的体积比、总流速,背压和色谱柱柱温,同时确保二氧化碳进入泵时的温度为8℃。对3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈消旋体进行分离,其分离效果图如图4所示。从图4可以看出:Nucifera OJ 5μm可以实现3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈的完全分离。
实施例5
选用的色谱仪为江苏汉邦科技股份有限公司的超临界流体色谱仪,色谱柱规格为NuciferaAD 10μm 10×250mm,流动相体系的流速为10mL/min,背压设定12MPa,3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈甲醇溶液的浓度为500mg/mL,进样体积为300uL,检测波长为220nm。
表5为实施例5使用超临界流体色谱(SFC)分离3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈的条件。
表5实施例5中SFC分离条件
实施例5对应的具体步骤为:将3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈样品溶解在甲醇中,超声助溶,配置成500mg/mL的3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈甲醇溶液,在江苏汉邦科技股份有限公司的SFC-Lab20超临界流体色谱仪上,选用Nucifera AD 10μm 10×250mm的色谱柱,固定相为硅胶表面涂覆直链淀粉-三[(S)-α-甲基苯基氨基甲酸酯]。按照表5控制流动相中超临界二氧化碳和低级醇的体积比、总流速,背压和色谱柱柱温,同时确保二氧化碳进入泵时的温度为8℃。对3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈消旋体进行分离,其分离效果图如图5所示。从图5可以看出:按照小试摸索的工艺,在NuciferaAD 10μm 10×250mm小试放大,放大效果较好,完全成线性关系,为工业生产奠定基础。其中,图6为本实施例收集到的3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈的R型异构体和标准溶液的HPLC谱图。
对比例1
选用的色谱仪为江苏汉邦科技股份有限公司超临界流体色谱仪,色谱柱规格为NuciferaOJ 5μm 4.6×250mm,流动相体系的流速为3mL/min,背压设定12MPa,3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈甲醇溶液的浓度为500mg/mL,进样体积为100μL,检测波长为220nm。
表6为对比例1的使用超临界流体色谱(SFC)分离3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈的条件。
表6对比例1中SFC分离条件
对比例1对应的具体步骤为:将3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈样品溶解在甲醇中,超声助溶,配置成浓度为500mg/mL的3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈甲醇溶液,在江苏汉邦科技股份有限公司超临界流体色谱仪上,选用Nucifera OJ 5μm 4.6×250mm的色谱柱,固定相为硅胶表面涂覆直链淀粉-三[(S)-α-甲基苯基氨基甲酸酯],按照表6控制流动相中超临界二氧化碳和乙醇的体积比、总流速,背压和色谱柱柱温,同时确保二氧化碳进入泵时的温度为8℃。对3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈消旋体进行分离,其分离效果图如图7所示。从图7可以看出:Nucifera OJ 5μm在使用乙醇作为夹带剂时峰展宽较大分离效果较差。
对比例2
选用的色谱仪为江苏汉邦科技股份有限公司超临界流体色谱仪,色谱柱规格为NuciferaOJ 5μm 4.6×250mm,流动相体系的流速为3mL/min,背压设定12MPa,3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈甲醇溶液的浓度为500mg/mL,进样体积为100uL,检测波长为220nm。
表7为对比例2的使用超临界流体色谱(SFC)分离3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈的条件。
表7对比例2中SFC分离条件
对比例2对应的具体步骤为:将3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈样品溶解在甲醇中,超声助溶,配置成浓度为500mg/mL的3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈甲醇溶液,在江苏汉邦科技股份有限公司超临界流体色谱仪上,选用Nucifera OJ 5μm 4.6×250mm的色谱柱,固定相为硅胶表面涂覆直链淀粉-三[(S)-α-甲基苯基氨基甲酸酯],按照表7控制流动相中超临界二氧化碳和乙醇的体积比、总流速,背压和色谱柱柱温,同时确保二氧化碳进入泵时的温度为8℃。对3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈进行分离,其分离效果图如图8所示。从图8可以看出:Nucifera OJ 5μm在使用乙醇作为夹带剂时柱温45℃是出峰时间延迟,峰展宽较大分离效果较差。
对比例3
选用的色谱仪为江苏汉邦科技股份有限公司超临界流体色谱仪,色谱柱规格为NuciferaOJ 5μm 4.6×250mm,流动相体系的流速为3mL/min,背压设定12MPa,3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈甲醇溶液的浓度为500mg/mL,进样体积为100μL,检测波长为220nm。
表8为对比例3的使用超临界流体色谱(SFC)分离3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈的条件。
表8对比例3中SFC分离条件
对比例3对应的具体步骤为:将3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈样品溶解在甲醇中,超声助溶,配置成浓度为500mg/mL的3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈甲醇溶液,在江苏汉邦科技股份有限公司超临界流体色谱仪上,选用Nucifera OJ 5μm 4.6×250mm的色谱柱,固定相为硅胶表面涂覆直链淀粉-三[(S)-α-甲基苯基氨基甲酸酯],按照表8控制流动相中超临界二氧化碳和异丙醇的体积比、总流速,背压和色谱柱柱温,同时确保二氧化碳进入泵时的温度为8℃。对3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈消旋体进行分离,其分离效果图如图9所示。从图9可以看出:Nucifera OJ 5μm在使用异丙醇作为夹带剂时峰拖尾较大峰位置重排分离效果较差不利于分离制备。
Claims (9)
1.一种利用超临界流体色谱系统分离纯化芦可替尼前体的方法,其特征在于,包括以下步骤:将3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈样品溶解在甲醇中,超声助溶,利用超临界流体色谱系统分离纯化,得到芦可替尼前体;所述超临界流体色谱系统的流动相包括超临界二氧化碳和甲醇,固定相包括硅胶;所述硅胶的表面涂覆直链淀粉-三[3,5-二甲基氨基甲酸酯]衍生物或纤维素-三[3,5-二甲基氨基甲酸酯]衍生物中的一种或几种。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,在超临界流体色谱系统洗脱过程中,超临界二氧化碳和甲醇的体积比为100~50:0~50。
3.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述超临界流体色谱系统的流速为3~10mL/min。
4.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述超临界色谱柱系统的柱温度为30~45℃。
5.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述3-(4-{7-[(2-三甲基硅基)乙氧基]甲基-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基}-1H-吡唑-1-基)-3-环戊基丙腈样品在甲醇中的浓度为10~500mg/mL。
6.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述超临界流体色谱系统的色谱柱为NuciferaAD 10μm 10×250mm、Nucifera OD 5μm 4.6×250mm、NuciferaAS 5μm 4.6×250mm、NuciferaOJ 5μm 4.6×250mm、Nucifera AD 5μm 4.6×250mm。
7.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述超临界二氧化碳在通过泵时的温度为2~10℃,密度为890~950kg/m3。
8.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述超临界流体色谱系统的背压为8~12MPa。
9.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述超临界流体色谱系统的进样体积为100~200μL。
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