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CN107496348A - 一种用于组织损伤修复的水凝胶及制备方法 - Google Patents

一种用于组织损伤修复的水凝胶及制备方法 Download PDF

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CN107496348A
CN107496348A CN201710752030.1A CN201710752030A CN107496348A CN 107496348 A CN107496348 A CN 107496348A CN 201710752030 A CN201710752030 A CN 201710752030A CN 107496348 A CN107496348 A CN 107496348A
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China
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pge2
hydrogel
hydrogels
damage
tissue damage
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CN201710752030.1A
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李宗金
张帅强
韩之波
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TIANJIN AMCELLGENE ENGINEERING Co Ltd
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TIANJIN AMCELLGENE ENGINEERING Co Ltd
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Abstract

本发明公开了一种用于组织损伤修复的水凝胶及制备方法,其制备方法包括如下步骤:使用无菌蒸馏水溶解水凝胶材料,溶胀,获得水凝胶;将PGE2粉末溶于磷酸盐缓冲液中制成PGE2溶液,将PGE2溶液滴加到水凝胶中,在2‑8℃条件下,搅拌3‑5小时;保存或冻存,所述PGE2为前列腺素E2的简写。本发明的水凝胶能够一定程度的延长PGE2的释放时间,直接用于组织损伤的治疗,可以促进损伤皮肤组织学和功能学的恢复。可以诱导损伤位点巨噬细胞向M2型极化抑制炎症反应,加速了损伤的愈合,并在早期促进了损伤部位的血管新生。此外,本发明的水凝胶无细胞毒性,可直接涂抹于创伤表面,使用方便,价格低廉,并具有有效的治疗作用。

Description

一种用于组织损伤修复的水凝胶及制备方法
技术领域
本发明涉及一种用于组织损伤修复的水凝胶及制备方法。
背景技术
皮肤损伤(Skin Wound)已经成为一种严重的健康问题。创伤、烧伤、慢性溃疡等造成大面积皮肤缺损,常形成难以愈合的创面,不仅给患者造成痛苦,而且降低了生活质量。当前被证明有效的治疗方法(包括干细胞治疗和皮肤移植)存在医疗成本高等缺陷,其使用受到限制。前列腺素E2(Prostaglandin E2,PGE2)是一种重要的细胞生长和调节因子,其作用为扩张血管,增加器官血流量,同时具有免疫抑制和抗炎作用。并且有报道称间充质干细胞(Mesenchymal stem cells,MSCs)可以通过调控局部炎症反应而发挥促进皮肤愈合的作用。其中的作用机制可能是,MSCs分泌的PGE2诱导了巨噬细胞向M2型极化,促进了IL-10的分泌,进而发挥抗纤维化和减少胶原蛋白沉积的作用。因此,这使我们想确定在外源性PGE2的刺激下是否能使巨噬细胞发生M2型的极化。然而,单纯的PGE2半衰期短,与细胞的接触时间比较短,这一特性大大降低了PGE2的单独使用价值。
壳聚糖、胶原、纤维蛋白和透明质酸作为一类天然大分子化合物,具有较好的组织相容性、生物可降解性及丰富的生物学活性。以这些天然大分子化合物为基础的多种类型支架材料已经在再生医学领域显示出重要的应用价值,因此,利用这类生物材料具有网状结构的特征,将其形成的水凝胶包被上特定的生物活性分子,从而制成生物活性水凝胶,这种水凝胶能够缓慢释放特定生长因子,释放的生长因子与组织细胞相互作用可以改善局部微环境,增强细胞的生物学作用,并加快组织的修复和再生。目前,尚未有将含有PGE2水凝胶的报道。
发明内容
本发明的目的是克服现有技术的不足,提供一种用于组织损伤修复的水凝胶。
本发明的第二个目的是提供一种用于组织损伤修复的水凝胶的制备方法。
本发明的第三个目的是提供一种用于组织损伤修复的水凝胶的在制备皮肤损伤修复制剂中的应用。
本发明的技术方案概述如下:
一种用于组织损伤修复的水凝胶的制备方法,包括如下步骤:
(1)使用无菌蒸馏水溶解水凝胶材料,2-8℃溶胀12-24小时,获得水凝胶;
(2)将PGE2粉末溶于磷酸盐缓冲液中制成浓度为0.1mg/ml-5mg/ml的PGE2溶液,按质量比为1:1-4的比例,将所述PGE2溶液滴加到步骤(1)获得的水凝胶中,在2-8℃条件下,搅拌3-5小时;2-8℃保存或在-18--22℃冻存,所述PGE2为前列腺素E2的简写。
所述水凝胶材料优选为壳聚糖、胶原、透明质酸和纤维蛋白中至少一种。
所述水凝胶中水凝胶材料的质量含量为0.01%-5%。
上述方法制备的用于组织损伤修复的水凝胶。
上述用于组织损伤修复的水凝胶在制备皮肤损伤修复制剂中的应用。
本发明的优点:
本发明的用于组织损伤修复的水凝胶能够一定程度的延长PGE2的释放时间。直接用于组织损伤的治疗,可以促进损伤皮肤组织学和功能学的恢复。可以诱导损伤位点巨噬细胞向M2型极化抑制炎症反应,加速了损伤的愈合,并在早期促进了损伤部位的血管新生。此外,本发明的水凝胶无细胞毒性,可直接涂抹于创伤表面,使用方便,价格低廉,并具有有效的治疗作用。
本发明的水凝胶,涂抹于皮肤损伤部位可以实现PGE2的缓慢释放,延长PGE2与损伤部位组织细胞的作用时间,改善损伤部位的微环境,从而为皮肤损伤的修复治疗提供新的视角。
本发明以壳聚糖、胶原、纤维蛋白和透明质酸包被的PGE2水凝胶,这类水凝胶具有缓慢释放PGE2和促进巨噬细胞向M2型极化的特性,还涉及这类PGE2水凝胶在以皮肤损伤为特征的疾病的局部涂抹治疗中,能够抑制了损伤部位炎症,增强损伤部位血管新生因子表达,改善损伤皮肤血管新生,促进皮肤损伤修复的作用。
附图说明
图1表示用于组织损伤修复的水凝胶的温度稳定性。
图2用PGE2、PGE2水凝胶处理细胞检查不同时间点培养液PGE2水平。其中A用PGE2处理细胞检查不同时间点培养液PGE2水平,B用PGE2水凝胶处理细胞检查不同时间点培养液PGE2水平
图3评估适宜的用于组织损伤修复的水凝胶浓度。
图4表示用于皮肤损伤修复的水凝胶在体外能够诱导巨噬细胞向M2型极化;(A)将巨噬细胞与PBS、壳聚糖水凝胶(CS水凝胶)、PGE2、PGE2水凝胶、LPS和IL-4共培养48小时后,细胞免疫荧光检测CD206和CD68的表达。(B)对A图的定量分析数据。PGE2水凝胶能明显提高CD206的表达。IL-4作为提高CD206表达的阳性对照。
图5为PGE2水凝胶对巨噬细胞炎症因子表达的影响;(A)用PBS、CS水凝胶、PGE2和PGE2水凝胶(是CS+PGE2)处理巨噬细胞48小时后,M2型巨噬细胞相关基因IL-10和M1型巨噬细胞相关基因IL-6的Western检测。(B)IL-10蛋白表达的定量数据。PGE2水凝胶对巨噬细胞炎症因子IL-10表达具有明显的促进。(C)IL-6蛋白表达的定量数据。
图6为PGE2水凝胶对皮肤损伤的治疗作用,(A)用PGE2水凝胶、PGE2、CS水凝胶和PBS治疗切除性皮肤损伤动物模型。每3天测量动物模型的损伤部位面积。(B)定量分析各组伤口愈合的速度,显示PGE2水凝胶能明显促进伤口愈合;(C)取治疗后第7天和第14天皮肤组织进行HE染色。
图7表示用于皮肤损伤修复的水凝胶增强了皮肤损伤位点抗炎能力,分子影像示踪PGE2水凝胶对皮肤损伤部位活性氧的影响。(A)BLI检测PGE2水凝胶、PGE2、CS水凝胶和PBS治疗后不同时间点损伤位点的ROS。(B)BLI信号的定量分析不同组ROS活性的高低。
图8表示体内用于皮肤损伤修复的水凝胶诱导巨噬细胞向M2型极化,定量分析各组治疗后的第1、4、7天损伤位点CD206阳性细胞的数量。
图9分子影像示踪PGE2水凝胶对皮肤损伤部位VEGF表达水平的影响,(A)在各组治疗后的第0、4、7、10和14天,用生物发光检测Vegfr2的表达。(B)生物发光信号的定量分析。
图10PGE2水凝胶治疗后皮肤血管新生的评价。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明做进一步详细说明。。
实施例1
一种用于组织损伤修复的水凝胶的制备方法,包括如下步骤:
(1)使用无菌蒸馏水溶解壳聚糖,6℃溶胀18小时,获得壳聚糖质量含量为1%的水凝胶;
(2)将PGE2粉末溶于中性磷酸盐缓冲液中制成浓度为1mg/ml的PGE2溶液,按质量比为1:2的比例,将所述PGE2溶液滴加到步骤(1)获得的水凝胶中,在6℃条件下,搅拌4小时;6℃保存,所述PGE2为前列腺素E2的简写。
本实施例也可以采用2℃保存或8℃保存。
实施例2
一种用于组织损伤修复的水凝胶的制备方法,包括如下步骤:
(1)使用无菌蒸馏水溶解水凝胶材料(质量比为1:1的胶原和透明质酸),2℃溶胀24小时,获得水凝胶材料质量含量为0.01%的水凝胶;
(2)将PGE2粉末溶于中性磷酸盐缓冲液中制成浓度为0.1mg/ml的PGE2溶液,按质量比为1:1的比例,将所述PGE2溶液滴加到步骤(1)获得的水凝胶中,在2℃条件下,搅拌5小时;-18℃冻存,所述PGE2为前列腺素E2的简写。
实施例3
一种用于组织损伤修复的水凝胶的制备方法,包括如下步骤:
(1)使用无菌蒸馏水溶解纤维蛋白,8℃溶胀12小时,获得纤维蛋白质量含量为5%的水凝胶;
(2)将PGE2粉末溶于中性磷酸盐缓冲液中制成浓度为5mg/ml的PGE2溶液,按质量比为1:4的比例,将所述PGE2溶液滴加到步骤(1)获得的水凝胶中,在8℃条件下,搅拌3小时;-22℃冻存,所述PGE2为前列腺素E2的简写。
以下内容中,用于组织损伤修复的水凝胶简称PGE2水凝胶。
实验1:
PGE2水凝胶(实验例1制备)的特性
PGE2水凝胶的温度稳定性
为了评价温度对PGE2水凝胶稳定性的影响,将不同温度(-80℃、-20℃、0℃、4℃和37℃)条件下存放的PGE2水凝胶(实施例1制备)加入96孔板培养巨噬细胞,24h后进行CCK-8染色。细胞均按照3×104/孔的浓度铺盘(4孔/组)(图1)。
具体染色方法如下:
(1)配制CCK-8染色液(按照CCK-8原液:完全培养基=1:9进行稀释);
(2)吸出培养基;
(3)每孔加入100μl染色液,将孔板放入温箱(37℃)孵育4h;
(4)吸出上清(100μl)并转移到新的孔板中;
(5)使用酶标仪检测(吸光度)OD450值;
酶联免疫吸附试验检测PGE2释放(见图2)
时间设为0.5h至48h。分别用PGE2、PGE2水凝胶与细胞培养一定时间后收集各组细胞培养上清液。按照PGE2酶联免疫试剂盒说明书进行操作,酶标仪检测在波长412nm处的吸光度值。PGE2的定量结果用质量浓度表示。结果显示:(图2A)PGE2在培养液的浓度直线下降。(图2B)以PGE2水凝胶处理细胞,培养液中的PGE2浓度在第10小时达到峰值,然后缓慢下降,有效浓度的维持明显优于直接使用PGE2。
用于组织损伤修复的水凝胶延长了PGE2的释放时间。
PGE2水凝胶(实验例1制备)浓度的选择
(1)将不同浓度的PGE2水凝胶加入细胞培养液与巨噬细胞共同孵育;
(2)选择浓度分别为0,0.35,0.70,1.00,2.00和5.00μmol/L的PGE2水凝胶;
结果表明,将腹腔巨噬细胞暴露于不同浓度的PGE2中24小时。VEGF基因表达以浓度依赖性方式增加,在1μM达到峰值。最适的PGE2水凝胶浓度为1μmol/L(图3)。
实验2:
PGE2水凝胶(实验例1制备)体外诱导巨噬细胞向M2型极化
细胞爬片的免疫荧光染色
(1)提取小鼠腹水的巨噬细胞经筛选后计数,以1×104接种于事先玻璃片的48孔板。
(2)待细胞贴壁后,以不同的条件(LPS,IL-4,PBS,单独水凝胶,单独PGE2溶液和PGE2水凝胶)预处理巨噬细胞。
(3)将细胞置于培养箱中进行培养,48小时后弃上清,在培养板中将已爬好细胞的玻璃片用PBS浸洗3次。
(4)用4%的多聚甲醛固定爬片15min,PBS浸洗玻璃片3次。
(5)0.5%Triton X-100(PBS配制)室温通透15-20min(细胞膜上表达的抗原省略此步骤)。
(6)PBS浸洗玻璃片3次,每次3min,吸水纸吸干PBS,在玻璃片上滴加正常山羊血清,室温封闭30min。
(7)吸水纸吸掉封闭液,不洗,每张玻璃片上滴加足够量的稀释好的一抗并放入湿盒,4℃孵育过夜。
(8)加荧光二抗:PBS浸洗爬片3次,每次3-5min,吸水纸吸干爬片上多余液体后滴加稀释好的荧光二抗,湿盒中20-37℃避光孵育2h,PBS浸洗爬片3次,每次3min。
(9)复染核:滴加DAPI避光孵育5min,对标本进行染核,PBS洗3次洗去多余的DAPI。
(10)用吸水纸吸干爬片上的液体,用含抗荧光淬灭剂的封片液封片,然后在荧光显微镜下观察采集图像。
加入的LPS和IL-4作为阳性对照,应用的PGE2水凝胶浓度为1μmol/L。研究结果显示,PGE2水凝胶能够明显诱导巨噬细胞向M2型极化(图4):(A)将巨噬细胞与PBS、CS水凝胶、PGE2、PGE2水凝胶、LPS和IL-4共培养48小时后,细胞免疫荧光检测CD206和CD68的表达。(B)对A图的定量分析数据。PGE2水凝胶能明显提高CD206的表达。IL-4作为提高CD206表达的阳性对照。
此外,使用实时定量RT-PCR检测不同条件预处理(LPS,IL-4,PBS,单独水凝胶,单独PGE2溶液和PGE2水凝胶)的巨噬细胞M1/M2相关基因的表达水平,结果显示:LPS刺激后,巨噬细胞细胞中M1型标记基因(TNF-α、IL-6,iNOs,IL-1β)的表达升高最为明显;IL-4体外刺激后,M2型标记基因(CD206,IL-10,IL-1ra,Arg-1)的表达水平最高;PBS刺激的巨噬细胞表达M1/M2相关标记基因水平接近于LPS处理的巨噬细胞,经单独PGE2刺激后的巨噬细胞相关基因表达水平趋近IL-4处理的巨噬细胞,而经PGE2水凝胶处理的巨噬细胞相关基因表达更接近M2型巨噬细胞。且用Western Blot针对IL-10(M2型巨噬细胞高表达)和IL-6(M1型巨噬细胞高表达)两种蛋白进行检测,结果两种蛋白的表达水平变化趋势与免疫荧光染色和RT-PCR结果一致(图5):(A)用PBS、CS水凝胶、PGE2和PGE2水凝胶处理巨噬细胞48小时后,M2型巨噬细胞相关基因IL-10和M1型巨噬细胞相关基因IL-6的Western检测。(B)IL-10蛋白表达的定量数据。PGE2水凝胶对巨噬细胞炎症因子IL-10表达具有明显的促进。(C)IL-6蛋白表达的定量数据。PGE2水凝胶对巨噬细胞炎症因子IL-6表达具有明显的抑制。
实验3:
PGE2水凝胶(实验例1制备)能够加速皮肤损伤的愈合
对8-10周龄FVB雄性小鼠进行皮肤切除损伤。根据动物接受治疗类型进行分组(每组3只):PBS组(经受皮肤损伤+损伤位点涂抹20微升PBS);单独水凝胶组(经受皮肤损伤+损伤位点涂抹20微升水凝胶);单独PGE2组(经受皮肤损伤+损伤位点涂抹20微升PGE2溶液);PGE2水凝胶组(经受皮肤损伤+损伤位点涂抹20微升PGE2水凝胶)。
切除性皮肤损伤模型
(1)高压消毒手术器械(剪刀、尖镊、微型血管夹、持针器),使用医用酒精消毒手术台区域;
(2)经腹腔注射水合氯醛(4%,350mg/kg)麻醉小鼠,将小鼠以俯卧位固定于手术加热垫上,使用剃毛器去除背部毛发,碘伏消毒术区皮肤;
(3)用无菌眼科剪在其背部形成一直径约1cm皮肤全层损伤创面,深及筋膜,无菌纱布止血;
(4)将3毫米厚度的环状有机硅胶片用尼龙缝线缝合在伤口上放,以防止伤口收缩;
(5)将小鼠置于加热垫上复温,待苏醒后放回饲养笼。
创面愈合率测定
术后0、1、4、7、10、13d数码相机记录各组创面愈合情况,Image-Pro Plus 6.0图像分析软件测量创面面积,计算创面愈合率。
创面愈合率=[(原始创面面积-当前时间点测量面积)/原始创面面积]×100%
HE染色和创面愈合率测定结果均表明:在切除性皮肤损伤模型中,PGE2水凝胶能够加速创面的愈合(图6):(A)用PGE2水凝胶、PGE2、CS水凝胶和PBS治疗切除性皮肤损伤动物模型。每3天测量动物模型的损伤部位面积。(B)定量分析各组伤口愈合的速度,显示PGE2水凝胶能明显促进伤口愈合。
HE染色
分别于术后7天和14天每组选取10只小鼠,麻醉后取创面新生皮肤组织及周围少许正常皮肤,用4%多聚甲醛固定1d,梯度脱水,石蜡包埋,5μm连续切片,常规苏木精-伊红染色,中性树胶封片,光学显微镜下观察新生皮肤病理学改变(图6C):(C)取治疗后第7天和第14天皮肤组织进行HE染色,观察伤口的闭合情况。PGE2水凝胶能更好的促进皮肤功能的恢复。
实验4:
PGE2水凝胶(实验例1制备)增强了皮肤损伤位点抗炎能力
评价损伤位点ROS的含量
为了评价PGE2水凝胶能否增强损伤位点的抗炎能力,我们在小鼠皮肤切除性损伤后不同时间点,使用生物发光成像技术评价损伤位点ROS的含量(图7):分子影像示踪PGE2水凝胶对皮肤损伤部位活性氧的影响。(A)BLI检测PGE2水凝胶、PGE2、CS水凝胶和PBS治疗后不同时间点损伤位点的ROS。(B)BLI信号的定量分析不同组ROS活性的高低。PGE2水凝胶能明显降低损伤部位的活性氧水平。
小动物活体生物发光成像
(1)经腹腔注射水合氯醛(4%,350毫克/千克)麻醉小鼠。
(2)向小鼠经腹腔注射萤火虫荧光素酶底物Lumino(100毫克/千克)。
(3)底物注射5分钟后,将小鼠放入小动物活体成像系统暗箱内,摆放好体位(俯卧位),将其头部对准暗箱内出气孔。
(4)根据荧光信号强度调整曝光时间,一般为0.5-2分钟,连续采集图像直到信号强度开始下降。
(5)数据分析:使用Living Image软件测定每只小鼠的荧光信号强度,进行统计学分析。
实验5:
PGE2水凝胶(实验例1制备)诱导了损伤位点巨噬细胞向M2型极化
我们对治疗后小鼠皮肤冰冻切片进行免疫荧光染色,定量分析各组治疗后的第1、4、7天损伤位点CD206阳性细胞的数量(图8)。发现随着时间的变化,在1、4、7天表达M2型巨噬细胞表面分子标志CD206的巨噬细胞比例上升,且PGE2水凝胶治疗组明显高于其他组。
皮肤组织冰冻切片免疫染色
(1)将切片从-20℃冰箱中取出,室温放置30min;
(2)将切片放入(-20℃预冷30min的)丙酮原液中固定10min;
(3)将切片置于空气中干燥30min;
(4)使用PBS洗涤切片(5min,2次);
(5)破膜:0.1%Triton X-100,室温,10min;PBS洗涤,5min,2次;
(6)血清封闭,4℃,45min;
(7)加一抗,4℃,过夜;
(8)次晨复温,1h;PBS洗涤,5min,4次;
(9)加二抗(避光),室温,2h;PBS洗涤,5min,5次;
(10)DAPI封片,荧光显微镜下观察,拍照。
实验6:
PGE2水凝胶(实验例1制备)促进损伤部位血管新生作用
VEGF-R2转基因小鼠评价血管新生
为了评价PGE2水凝胶能否促进损伤部位血管新生作用,我们对VEGF-R2转基因小鼠进行皮肤切除性损伤处理(方法如前所述)。分组(每组3只):PBS组(经受皮肤损伤+损伤位点涂抹20微升PBS);单独水凝胶组(经受皮肤损伤+损伤位点涂抹20微升水凝胶);单独PGE2组(经受皮肤损伤+损伤位点涂抹20微升PGE2溶液);PGE2水凝胶组(经受皮肤损伤+损伤位点涂抹20微升PGE2水凝胶)。在损伤后不同时间点,使用BLI技术(方法如前所述)评价VEGF-R2基因的表达。
免疫荧光染色方法见实验6
为了阐明PGE2水凝胶促进损伤位点血管新生的机制,对表达VEGF-R2-Fluc转基因小鼠进行皮肤切除性损伤,并根据治疗方式分组。损伤后不同时间点,使用BLI技术实时监测血管生成,比较各治疗方式促进VEGF-R2基因表达的情况(图9)。结果显示,接受PGE2水凝胶治疗的小鼠,在损伤位点VEGF-R2基因的表达显著高于接受其他治疗的动物(p<0.05)。损伤治疗后1,4,7天,利用CD31染色评价皮肤损伤位点血管新生情况,发现PGE2水凝胶治疗组血管新生数量显著高于其他组(p<0.05)(图10)。
实验证明,实施例2和实施例3制备的PGE2水凝胶性质和效果与实施例1制备的PGE2水凝胶相似。

Claims (5)

1.一种用于组织损伤修复的水凝胶的制备方法,其特征是包括如下步骤:
(1)使用无菌蒸馏水溶解水凝胶材料,2-8℃溶胀12-24小时,获得水凝胶;
(2)将PGE2粉末溶于磷酸盐缓冲液中制成浓度为0.1mg/ml-5mg/ml的PGE2溶液,按质量比为1:1-4的比例,将所述PGE2溶液滴加到步骤(1)获得的水凝胶中,在2-8℃条件下,搅拌3-5小时;2-8℃保存或在-18--22℃冻存,所述PGE2为前列腺素E2的简写。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征是所述水凝胶材料为壳聚糖、胶原、透明质酸和纤维蛋白中至少一种。
3.根据权利要求1或2所述的方法,其特征是所述水凝胶中水凝胶材料的质量含量为0.01%-5%。
4.权利要求1-3之一所述的方法制备的用于组织损伤修复的水凝胶。
5.权利要求4的用于组织损伤修复的水凝胶在制备皮肤损伤修复制剂中的应用。
CN201710752030.1A 2017-08-28 2017-08-28 一种用于组织损伤修复的水凝胶及制备方法 Pending CN107496348A (zh)

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Cited By (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2019041799A1 (zh) * 2017-08-28 2019-03-07 天津昂赛细胞基因工程有限公司 一种用于组织损伤修复的水凝胶及制备方法
CN110624112A (zh) * 2019-07-15 2019-12-31 天津昂赛细胞基因工程有限公司 一种连接前列腺素e2的水凝胶及其制备方法和应用
CN110713727A (zh) * 2018-06-27 2020-01-21 中国科学院过程工程研究所 一种低温制备的胶原蛋白水凝胶、其制备方法及应用
CN112155553A (zh) * 2020-09-27 2021-01-01 甘肃省人民医院 一种基于结构光3d测量的创面评估系统及方法
CN113599574A (zh) * 2021-07-28 2021-11-05 苏州大学 一种用于肌肉修复的再生材料及其制备方法
CN114288464A (zh) * 2021-11-24 2022-04-08 中国科学院理化技术研究所 一种抗菌促愈合水凝胶敷料及其制备方法和应用
CN114948861A (zh) * 2022-05-26 2022-08-30 中国人民解放军西部战区总医院 一种促进放射性皮肤损伤愈合的多功能水凝胶及其制备方法和应用
CN115054569A (zh) * 2022-05-16 2022-09-16 四川大学华西医院 治疗牙槽骨损伤的dna水凝胶及其制备方法和用途

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0089768B1 (en) * 1982-03-22 1990-09-26 Upjohn Limited Compositions containing prostaglandins

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE69840908D1 (de) * 1997-03-14 2009-07-30 Toray Industries Zusammensetzung von prostaglandin-i-derivaten mit verzoegerter abgabe
US20120093914A1 (en) * 2008-11-24 2012-04-19 Moma Therapeutics Implantable liposome embedded matrix composition, uses thereof, and polycaprolactone particles as scaffolds for tissue regeneration
CN105209074A (zh) * 2012-10-20 2015-12-30 得克萨斯大学体系董事会 癌细胞陷阱
CN107496348A (zh) * 2017-08-28 2017-12-22 天津昂赛细胞基因工程有限公司 一种用于组织损伤修复的水凝胶及制备方法

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0089768B1 (en) * 1982-03-22 1990-09-26 Upjohn Limited Compositions containing prostaglandins

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
傅月荷等: ""生物来源水凝胶在组织工程中的应用与进展"", 《中国修复重建外科杂志》 *
夏泉: ""新辅料卡波姆在凝胶制剂中的应用实例"", 《中国药师》 *

Cited By (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2019041799A1 (zh) * 2017-08-28 2019-03-07 天津昂赛细胞基因工程有限公司 一种用于组织损伤修复的水凝胶及制备方法
CN110713727A (zh) * 2018-06-27 2020-01-21 中国科学院过程工程研究所 一种低温制备的胶原蛋白水凝胶、其制备方法及应用
CN110624112A (zh) * 2019-07-15 2019-12-31 天津昂赛细胞基因工程有限公司 一种连接前列腺素e2的水凝胶及其制备方法和应用
CN112155553A (zh) * 2020-09-27 2021-01-01 甘肃省人民医院 一种基于结构光3d测量的创面评估系统及方法
CN112155553B (zh) * 2020-09-27 2023-05-23 甘肃省人民医院 一种基于结构光3d测量的创面评估系统及方法
CN113599574A (zh) * 2021-07-28 2021-11-05 苏州大学 一种用于肌肉修复的再生材料及其制备方法
CN114288464A (zh) * 2021-11-24 2022-04-08 中国科学院理化技术研究所 一种抗菌促愈合水凝胶敷料及其制备方法和应用
CN114288464B (zh) * 2021-11-24 2023-07-07 中国科学院理化技术研究所 一种抗菌促愈合水凝胶敷料及其制备方法和应用
CN115054569A (zh) * 2022-05-16 2022-09-16 四川大学华西医院 治疗牙槽骨损伤的dna水凝胶及其制备方法和用途
CN115054569B (zh) * 2022-05-16 2024-03-19 四川大学华西医院 治疗牙槽骨损伤的dna水凝胶及其制备方法和用途
CN114948861A (zh) * 2022-05-26 2022-08-30 中国人民解放军西部战区总医院 一种促进放射性皮肤损伤愈合的多功能水凝胶及其制备方法和应用
CN114948861B (zh) * 2022-05-26 2023-08-25 中国人民解放军西部战区总医院 一种促进放射性皮肤损伤愈合的多功能水凝胶及其制备方法和应用

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