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CN104597528A - 显示减少的蛋白质摄取量的硅树脂水凝胶隐形镜片 - Google Patents

显示减少的蛋白质摄取量的硅树脂水凝胶隐形镜片 Download PDF

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CN104597528A
CN104597528A CN201510043697.5A CN201510043697A CN104597528A CN 104597528 A CN104597528 A CN 104597528A CN 201510043697 A CN201510043697 A CN 201510043697A CN 104597528 A CN104597528 A CN 104597528A
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protein
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compound
eyeglass
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Application number
CN201510043697.5A
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J.B.平斯利
J.P.亚当斯
A.哈诺诺尔卡
D.赞妮妮
Z.法利
M.R.克拉克
D.C.特纳
J.D.福德
T.L.马吉奥
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Johnson and Johnson Vision Care Inc
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Johnson and Johnson Vision Care Inc
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Abstract

本发明涉及显示减少的蛋白质摄取量的硅树脂水凝胶隐形镜片。本发明涉及由活性混合物形成的硅树脂水凝胶隐形镜片，所述活性混合物包含至少一种含硅树脂化合物和减少蛋白质摄取量的至少一种减少蛋白质摄取化合物。

Description

显示减少的蛋白质摄取量的硅树脂水凝胶隐形镜片
本申请是申请日为2009年6月1日，申请号为200980121186.3(国际申请号为PCT/US2009/045869)，发明名称为“显示减少的蛋白质摄取量的硅树脂水凝胶隐形镜片”的发明专利申请的分案申请。
技术领域
本发明涉及具有减少的蛋白质摄取量的硅树脂水凝胶隐形镜片以及此类隐形镜片的制备方法。
背景技术
众所周知，隐形镜片可用来改善视力。水凝胶隐形镜片目前非常流行，并且往往比硬质材料制成的隐形镜片更加舒适。
已经公开了由硅树脂水凝胶制成的隐形镜片。然而，一些硅树脂水凝胶镜片比常规镜片摄取更多蛋白质。当尝试水提取法时，未涂布的硅树脂水凝胶镜片的蛋白质摄取量也会增加。
一些早期公开的方法仅使用水。然而，这些较早的方法用非常长的水浸时间和/或高温来提取不可取的组分。未对这些镜片的蛋白质摄取量进行测量。
已经公开了通过使用醇浸出的步骤从硅树脂水凝胶镜片中移除不可取的杂质的方法。相比水相提取的镜片，用醇提取硅树脂水凝胶隐形镜片通常会减少蛋白质摄取量。醇会刺激眼睛，因此必须从隐形镜片中彻底移除。必须采取专门的处理步骤来处置醇，这使得该制造方法的成本更高。此外，使用有机溶液可能存在缺点，包括(例如)：安全危害；生产线停机风险增大；释放溶液成本高；以及与有机溶剂相关的健康危害。
因此，需要除醇提取法以外的减少硅树脂水凝胶镜片的蛋白质摄取的方法。
发明内容
本发明涉及由活性混合物形成的硅树脂水凝胶隐形镜片，该混合物包含至少一种含硅树脂化合物和减少蛋白质摄取量(protein uptake reducingamount)的至少一种减少蛋白质摄取化合物(protein uptake reducingcompound)。本发明还涉及用于减少隐形镜片蛋白质沉积的方法，该方法包括固化包含减少蛋白质摄取量的至少一种减少蛋白质摄取化合物的硅树脂水凝胶反应混合物。
具体实施方式
人们已经惊奇地发现，通过在制备隐形镜片所用反应混合物中加入至少一种减少蛋白质摄取化合物可以减少硅树脂水凝胶隐形镜片的蛋白质摄取量。以前已经通过涂覆隐形镜片或通过用溶剂(例如醇)提取隐形镜片来减少隐形镜片上的蛋白质沉积。然而，涂层很难均匀施加，并且需要额外的制造步骤和设备。单独的提取步骤也需要额外的设备和使用昂贵的溶剂，并且可能需要进行专门的处理。本发明提供了一种显著减少蛋白质沉积的简单方法。
减少蛋白质摄取化合物是指这样的化合物：当加入或接触反应混合物时，该化合物会降低反应混合物中至少一种组分的反应速率，并且在一些实施例中，会降低“快速反应”组分的反应速率，从而让组分的反应更加均匀。减少蛋白质摄取化合物的类型包括抑制剂(或自由基清除剂)、链转移剂、自由基清除剂、受控自由基引发剂、以及它们的组合等。
自由基抑制剂是指与增长自由基快速反应产生端接链的稳定基种类的化合物。抑制剂的类型包括醌、取代酚、仲芳胺、内酯和硝基化合物。抑制剂的具体实例包括BHT、MEHQ、羟胺、苯并呋喃酮衍生物、分子氧、维生素E、一氧化氮/二氧化氮混合物(就地形成硝基氧)以及它们的组合等。在本发明的一个实施例中，减少蛋白质摄取化合物包含至少一种抑制剂。
链转移剂的类型的实例包括烷基硫醇、二硫代羧酸酯、以及它们的混合物等。受控自由基引发剂的实例包括氮氧调控聚合(NMP)(包括TheChemistry of Radical Polymerization，2nd ed.Moad and Solomon，pgs 472-479(《自由基聚合化学(第2版)》，Moad and Solomon，第472-479页)中公开的那些)、原子转移自由基聚合(ATRP)(包括低分子量活性有机卤化物(包括《自由基聚合化学(第2版)》，Moad and Solomon，第488-489和492-497页公开的那些))和可逆加成断裂链转移(RAFT)聚合(包括二硫酯剂(例如在《自由基聚合化学(第2版)》，Moad and Solomon，第508-514页公开的那些))。当使用受控自由基引发剂时，其用作引发剂体系的全部或一部分。
本文所用蛋白质包括眼睛(包括泪膜)中常见的蛋白质。这些蛋白质包括活性蛋白质和变性蛋白质。常见于泪膜中的蛋白质的实例包括溶菌酶、乳铁蛋白、脂质运载蛋白、糖蛋白类、白蛋白、IgHC、IgLC、以及它们的组合等。在一些实施例中，变性蛋白质的摄取量减少。一些蛋白质(例如溶菌酶和乳铁蛋白(具有活性形式))被认为对隐形镜片磨损有中性或正面影响。在一些实施例中，除乳铁蛋白和溶菌酶之外的蛋白质摄取量减少，在一些实施例中，减少约5μg/镜片。“减少蛋白质摄取有效量”是指相比具有小于所述有效量的镜片，足以将隐形镜片从泪样流体中摄取的至少一种蛋白质减少至少约10％的减少蛋白质摄取化合物的数量。在其他实施例中，相比未有意加入减少蛋白质化合物的镜片，除乳铁蛋白和溶菌酶之外的蛋白质摄取量减少至少约10％，在一些实施例中减少至少约20％。在其他实施例中，相比未有意加入减少蛋白质化合物的镜片，所有蛋白质的摄取量减少至少约10％，在一些实施例中减少至少约20％。
所含减少蛋白质摄取化合物的数量足以为镜片提供小于约15μg/镜片的总蛋白质摄取量，在一些实施例中，小于约10μg/镜片。所使用或包含的减少蛋白质摄取化合物的数量取决于多个因素，其中包括减少蛋白质摄取化合物的效率、减少蛋白质摄取化合物的眼部相容性和其他减少蛋白质摄取化合物的浓度。减少蛋白质摄取化合物的效率可以影响本发明的低浓度和高浓度。例如，当丁基化羟基甲苯(BHT)是所使用的唯一的减少蛋白质摄取化合物时，小于约600ppm的BHT浓度几乎不能减少蛋白质摄取量。然而，当减少蛋白质摄取化合物摩尔浓度大于引发剂摩尔浓度时，可以防止发生所需水平的固化。因此，减少蛋白质摄取化合物应以高于约600ppm的浓度掺入反应混合物中，但其浓度应低于一定水平，以免聚合物完全固化，或者导致最终镜片在置于隐形镜片佩戴者眼部时引起眼部不适。
同样以BHT为例，已经知道，BHT在以高于约2000ppm的浸出浓度加入隐形镜片时会引起眼部不适。眼部不适包括在插入隐形镜片时有灼热感或刺痛感，并且可能持续几秒至几分钟。由某种组分引起的眼部不适程度会根据该组分的化学结构和在最终镜片中的浸出浓度而变化。当使用BHT作为本发明的减少蛋白质摄取化合物时，该物质在最终镜片中的浓度应小于约3000ppm，在一些实施例中为约2000ppm或以下，并且在一些实施例中小于约1000ppm。
减少蛋白质摄取化合物在最终镜片中的含量取决于减少蛋白质摄取化合物在所用组分中的浓度、加入反应混合物中的减少蛋白质摄取化合物的数量以及所采用的提取条件。当使用BHT作为本发明的减少蛋白质摄取化合物，并采用醇提取法时，BHT在反应混合物中的含量为反应混合物和稀释剂的最多约2重量％，在一些实施例中为最多约1重量％，在其他实施例中为最多约0.5重量％。然而，当采用水提取法时，BHT在反应混合物中的浓度低于约5000ppm，在一些实施例中为约3000ppm或以下，并且在一些实施例中小于约1500ppm。
也可以使用氧气作为减少蛋白质摄取化合物的一部分。氧气在反应混合物中的含量可使用氧分析仪(例如Jenco 9250氧分析仪)测量。氧气的合适含量包括足以减少蛋白质摄取量、但又不足以对镜片质量或性质产生负面影响的含量。溶解氧在反应混合物中的合适含量包括约1与约6ppm之间的含量。在将活性化合物加入镜片模具之前，可以通过将模具暴露于氧气中来加入氧气。可以将模具暴露于含量最多约20％的O2中，在一些实施例中，在一分钟的暴露时间内，O2含量为从约10至约20％，在一些实施例中，暴露时间为从约1分钟至约10分钟，在其他实施例中为从约1分钟至约5分钟。根据所选造模材料的不同，合适的暴露时间可以与本文所公开的有所不同。因此，对于比Zeonor氧气渗透性更好的造模材料，少于5分钟的时间是可取的。
本发明的反应混合物包含用于形成本发明的隐形镜片的所有组分(反应性和非反应性)。本发明的反应混合物包含至少一种含硅树脂组分，并且可以包含其他已知组分，包括亲水组分、润湿剂、光引发剂、交联剂、UV阻断剂、着色剂、光致变色化合物、药品与营养药化合物、抗微生物与抗真菌化合物、调色剂、脱模助剂、稀释剂等。
术语“组分”包括单体、大分子单体和预聚物。“单体”是指可聚合为较高分子量的化合物、聚合物、大分子单体或预聚物的低分子量化合物。本文所用术语“大分子单体”是指高分子量可聚合化合物。预聚物为部分聚合单体或能够进一步聚合的单体。
“含硅树脂组分”是指在单体、大分子单体或预聚物中包含至少一个[-Si-O-]单元的组分。在一个实施例中，Si和所连接的O在含硅树脂组分中的总含量大于约20重量％，在另一个实施例中，含量大于含硅树脂组分总分子量的30重量％。可用的含有机硅组分包含可聚合的官能团，例如丙烯酸酯、甲基丙烯酸酯、丙烯酰胺、甲基丙烯酰胺、乙烯基、N-乙烯基内酰胺、N-乙烯基酰胺和苯乙烯基官能团。可用于本发明的含硅树脂组分的例子可见于美国专利No.3,808,178、4,120,570、4,136,250、4,153,641、4,740,533、5,034,461和5,070,215以及EP080539。这些参考文献公开了烯属含硅树脂组分的多个例子。
虽然可以包含几乎任何含硅树脂组分，但在可取弹性模量小于约120psi的本发明的一个实施例中，镜片制剂中所用硅树脂组分的质量分数的大部分应只包含一个可聚合官能团(“一官能含硅树脂组分”)。在该实施例中，为了确保氧透过率与弹性模量达到所需平衡，优选的是，所有具有不止一个可聚合官能团的组分(“多官能组分”)不超过10mmol/100g活性组分，优选地不超过7mmol/100g活性组分。
合适的含硅树脂包括式I的化合物。
其中R1独立地选自：一价活性基团、一价烷基、或一价芳基，上述基团中任何一种都可以进一步包含选自下列的官能团：羟基、胺基、氧杂、羧基、烷基羧基、烷氧基、酰胺基、氨基甲酸根、碳酸根、卤素或它们的组合；以及包含1至100个Si-O重复单元的一价硅氧烷链，其还可以进一步包含选自下列的官能团：烷基、羟基、胺基、氧杂、羧基、烷基羧基、烷氧基、酰胺基、氨基甲酸根、卤素或它们的组合；
其中b＝0至500，其中应当理解当b不为0时，b为众数(mode)等于设定值的分布；
其中至少一个R1包含一价反应性基团，在一些实施例中，1至3个R1包含一价反应性基团。
如本文所用，“活性基团”为可经历自由基和/或阳离子聚合反应的基团。自由基反应性基团的非限制性例子包括(甲基)丙烯酸酯、苯乙烯基、乙烯基、乙烯基醚、C1-6烷基(甲基)丙烯酸酯、(甲基)丙烯酰胺、C1-6烷基(甲基)丙烯酰胺、N-乙烯基内酰胺、N-乙烯基酰胺、C2-12烯基、C2-12烯基苯基、C2-12烯基萘基、C2-6烯基苯基、C1-6烷基、O-乙烯基氨基甲酸酯以及O-乙烯基碳酸酯。阳离子反应性基团的非限制性例子包括乙烯基醚或环氧基以及它们的混合物。在一个实施例中，自由基活性基团包括(甲基)丙烯酸酯、丙烯酰氧基、(甲基)丙烯酰胺以及它们的混合物。
合适的一价烷基和芳基包括未取代的一价C1至C16烷基、C6-C14芳基，例如取代的和未取代的甲基、乙基、丙基、丁基、2-羟丙基、丙氧基丙基、聚氧乙烯丙基(polyethyleneoxypropyl)、它们的组合等。
在一个实施例中，b为0，一个R1为一价反应性基团，至少3个R1选自具有1至16个碳原子的一价烷基，在另一个实施例中，选自具有1至6个碳原子的一价烷基。在本实施例中，有机硅组分的非限制性例子包括2-甲基2-羟基-3-[3-[1，3，3，3-四甲基-1-[(三甲基甲硅烷基)氧基]二硅氧烷基]丙氧基]丙酯(“SiGMA”)、2-羟基-3-甲基丙烯酰氧基丙氧基丙基-三(三甲基甲硅烷氧基)硅烷、3-甲基丙烯酰氧基丙基三(三甲基甲硅烷氧基)硅烷(“TRIS”)、3-甲基丙烯酰氧基丙基双(三甲基甲硅烷氧基)甲基硅烷以及3-甲基丙烯酰氧基丙基五甲基二硅氧烷。
在另一个实施例中，b为2至20、3至15，或在一些实施例中，为3至10；至少一个末端的R1包含一价反应性基团，其余的R1选自具有1至16个碳原子的一价烷基，在另一个实施例中，选自具有1至6个碳原子的一价烷基。在另一个实施例中，b为3至15，一个末端的R1包含一价反应性基团，其还可被至少一个亲水基团(例如羟基、醚或它们的组合)取代，另一个末端的R1包含具有1至6个碳原子的一价烷基，其余的R1包含具有1至3个碳原子的一价烷基。该实施例中硅树脂组分的非限制性例子包括(一-(2-羟基-3-甲基丙烯酰氧基丙基)-丙基醚封端的聚二甲基硅氧烷(分子量为400-1000)(“HO-mPDMS”)、一甲基丙烯酰氧基丙基封端的单-正-丁基封端的聚二甲基硅氧烷(分子量为800-1000)(“mPDMS”)。
在另一个实施例中，b为5至400或10至300，两个末端的R1均包含一价反应性基团，其余的R1独立地选自具有1至18个碳原子的一价烷基，所述一价烷基在碳原子之间可以具有醚键并且还可以包含卤素。
在另一个实施例中，一至四个R1包含由下式表示的乙烯基碳酸酯或氨基甲酸酯：
式II
其中：Y代表O-、S-或NH-；
R代表氢或甲基；q为1、2、3或4；b为1至50。
含有机硅的碳酸乙烯酯或乙烯基氨基甲酸酯单体具体包括：1，3-双[4-(乙烯氧基羰基氧基)丁-1-基]四甲基-二硅氧烷、3-(乙烯氧基羰基硫基)丙基-[三(三甲基甲硅烷氧基)硅烷]、3-[三(三甲基甲硅烷氧基)甲硅烷基]丙基烯丙基氨基甲酸酯、3-[三(三甲基甲硅烷氧基)甲硅烷基]丙基乙烯基氨基甲酸酯、碳酸三甲基甲硅烷基乙基酯乙烯酯、碳酸三甲基甲硅烷基甲基酯乙烯酯，并且
在期望生物医学装置的模量在约200以下的情况中，只有一个R1应包含一价反应性基团，其余的R1基团中不超过两个将包含一价硅氧烷基团。
在一个需要硅水凝胶镜片的实施例中，本发明的镜片将由活性混合物制成，其中按由聚合物制成的反应性单体组分的总重量计，活性混合物包含至少约20重量％的含硅树脂组分，在一些实施例中在约20重量％至70重量％之间。
另一类含有机硅的组分包含如以下各式所示的聚氨酯大分子单体：
式IV-VI
(*D*A*D*G)a*D*D*E1、
E(*D*G*D*A)a*D*G*D*E1或
E(*D*A*D*G)a*D*A*D*E1
其中：
D代表具有6至30个碳原子的烷基双基、烷基环烷基双基、环烷基双基、芳基双基或烷基芳基双基，
G代表具有1至40个碳原子并且主链中可以包含醚键、硫代键或胺键的烷基双基、环烷基双基、烷基环烷基双基、芳基双基或烷基芳基双基；
*代表氨基甲酸酯或脲基键；
a为至少1；
A代表如下式所示的二价聚合基：
式VII
R11独立地代表具有1至10个碳原子的烷基或氟代烷基，其可包含位于碳原子之间的醚键；y为至少1；p提供了400至10,000的部分重量；E和E1中每一个都独立地代表用下式表示的可聚合不饱和有机基：
式VIII
其中：R12为氢或甲基；R13为氢、具有1至6个碳原子的烷基或-CO-Y-R15基，其中Y为-O-、Y-S-或-NH-；R14为具有1至12个碳原子的二价基团；X代表-CO-或-OCO-；Z代表-O-或-NH；Ar代表具有6至30个碳原子的芳族基团；w为0至6；x为0或1；y为0或1；z为0或1。
在一个实施例中，含硅树脂组分包含由下式表示的聚氨酯大分子单体：
式IX
其中R16为移除异氰酸酯基团后的二异氰酸酯的双基，例如异佛尔酮二异氰酸酯的双基。其他合适的含有机硅的大分子单体为由氟醚、羟基封端的聚二甲基硅氧烷、异佛尔酮二异氰酸酯和甲基丙烯酸异氰基乙酯反应形成的化学式为X的化合物(其中x+y为10至30的范围内的数值)。
式X
其他适用于本发明的含硅树脂组分包括WO 96/31792中所述的那些，例如包含聚硅氧烷、聚亚烷基醚、二异氰酸酯、聚氟代烃、聚氟醚和多糖基团的大分子单体。另一类合适的含硅树脂组分包括通过GTP制备的含硅树脂大分子单体，如美国专利No.5,314,960、5,331,067、5,244,981、5,371,147和6,367,929中所公开的那些。美国专利No.5,321,108、5,387,662和5,539,016描述了具有极性氟化接枝或侧基的聚硅氧烷，其中极性氟化接枝或侧基具有连接到末端二氟代碳原子上的氢原子。US 2002/0016383描述了含醚键和硅氧烷键的亲水性硅氧烷基甲基丙烯酸酯以及含聚醚和聚硅氧烷基团的可交联单体。上述任何聚硅氧烷还可用作本发明中的含硅树脂组分。
活性混合物也可包含至少一种亲水组分。亲水单体可为已知可用于制备水凝胶的任何亲水单体。
一类合适的亲水单体包括含丙烯酸基单体或含乙烯基单体。这类亲水单体本身可用作交联剂，然而当使用具有不止一个可聚合官能团的亲水单体时，其浓度应限制在上文所述水平，以提供具有所需弹性模量的隐形镜片。术语“乙烯类”或“含乙烯基”单体是指包含乙烯基(-CH＝CH2)的单体，其通常具有高活性。已知这类亲水含乙烯基单体可以相对容易地聚合。
“丙烯酸类”或“含丙烯酸基”单体是指包含丙烯酸基(CH2＝CRCOX)的单体(其中R为H或CH3，X为O或N)，例如N，N-二甲基丙烯酰胺(DMA)、2-甲基丙烯酸羟乙酯(HEMA)、甘油甲基丙烯酸酯、2-羟基乙基异丙烯酰胺、聚乙二醇单甲基丙烯酸聚乙二醇酯、甲基丙烯酸和丙烯酸，已知这些单体也很容易聚合。
可加入本发明的硅树脂水凝胶中的亲水含乙烯基单体包括(例如)下列单体：N-乙烯基酰胺、N-乙烯基内酰胺(如NVP)、N-乙烯基-N-甲基乙酰胺、N-乙烯基-N-乙基乙酰胺、N-乙烯基-N-乙基甲酰胺、N-乙烯基甲酰胺，优选NVP。
可用于本发明的其他亲水单体包括一个或多个末端羟基由包含可聚合双键的官能团取代的聚氧乙烯多元醇。实例包括聚乙二醇、乙氧基化的烷基葡糖苷和乙氧基化的双酚A，其与一或更多摩尔当量的封端基团(如甲基丙烯酸异氰酸基乙酯(“IEM”)、甲基丙烯酸酸酐、甲基丙烯酰氯、乙烯基苯甲酰氯等)反应，生成聚乙烯多元醇，其具有一个或多个通过连接基团(如氨基甲酸根或酯基)键合到聚乙烯多元醇上的可聚合的末端烯属基团。
其他实例为美国专利No.5,070,215中有所公开的亲水碳酸乙烯酯或氨基甲酸乙烯酯单体，以及美国专利No.4,910,277中有所公开的亲水唑酮单体。其他合适的亲水单体对于本领域的技术人员将显而易见。
在一个实施例中，亲水单体包含至少一个亲水单体，例如DMA、HEMA、甘油甲基丙烯酸酯、2-羟基乙基异丙烯酰胺、NVP、N-乙烯基-N-甲基丙烯酰胺、聚乙二醇单甲基丙烯酸聚乙二醇酯、甲基丙烯酸和丙烯酸，其中最优选DMA。
亲水基团可以各种含量存在，具体取决于所需性质的具体平衡。按照可接受的所有活性组分的重量计，亲水单体的含量最多为约50重量％，优选地在约5重量％和约50重量％之间。例如，在一个实施例中，本发明的镜片的含水量为至少约25％，在另一个实施例中，在约30和约70％之间。对于这些实施例，亲水单体的含量在约20重量％和约50重量％之间。
反应混合物中能够存在的用于形成本发明的隐形镜片的其他组分包括润湿剂(例如，US 6,367,929、WO03/22321、WO03/22322中所公开的那些)、相容组分(例如，US2003/162,862和US2003/2003/125,498中所公开的那些)、紫外线吸收化合物、药剂、抗微生物化合物、可共聚和非聚合染料、脱模剂、活性调色剂、颜料、以及它们的组合等。
反应混合物中可以包含聚合反应催化剂。聚合反应引发剂包括例如在适度的高温下生成自由基的月桂基过氧化物、过氧化苯甲酰、过碳酸异丙酯、偶氮二异丁腈等化合物，以及光引发剂体系，如芳族α-羟基酮、烷氧基氧代苯偶姻、苯乙酮、酰基氧化膦、二酰基氧化膦以及叔胺加二酮、它们的混合物等。光引发剂的示例性实例为1-羟基环己基苯基酮、2-羟基-2-曱基-1-苯基-1-丙酮、二(2，6-二甲氧基苯甲酰基)-2，4，4-三曱基戊基氧化膦(DMBAPO)、二(2，4，6-三甲基苯甲酰基)-苯基氧化膦(Irgacure 819)、2，4，6-三甲基苄基二苯基氧化膦和2，4，6-三甲基苯甲酰基二苯基氧化膦、苯偶姻甲基酯以及樟脑醌与4-(N，N-二甲基氨基)苯甲酸乙酯的组合物。可商购获得的可见光引发剂体系包括Irgacure 819、Irgacure 1700、Irgacure 1800、Irgacure819、Irgacure 1850(均得自Ciba Specialty Chemicals)以及Lucirin TPO引发剂(得自BASF)。可商购获得的UV光引发剂包括Darocur 1173和Darocur 2959(Ciba Specialty Chemicals)。可使用的这些和其他光引发剂在Voclume III，Photoinitiators for Free Radical Cationic&AnionicPhotopolymerization，2nd Edition by J.V.Crivello&K.Dietliker；edited by G.Bradley；John Wiley and Sons；New York；1998(J.V.Crivello和K.Dietliker所著《自由基阳离子与阴离子聚合反应(第2版)第III卷，编者：G.Bradley，John Wiley and Sons，New York，1998)中有所公开。在反应混合物中可以按照引发反应混合物光聚合的有效量使用引发剂，例如每100重量份的反应性单体约0.1至约2重量份的引发剂。可以根据所用的聚合反应引发剂，使用适当选择的热或可见光或紫外光或其他方法引发反应混合物的聚合反应。作为另外一种选择，可以在没有光引发剂的情况下用(例如)电子束引发反应。然而，当使用光引发剂时，优选的引发剂为二酰基氧化膦，例如，双(2，4，6-三曱基苯甲酰基)-苯基氧化膦(Irgacure)或1-羟基环己基苯基酮和双(2，6-二甲氧基苯甲酰基)--2，4，4-三曱基戊基氧化膦(DMBAPO)，在另一个实施例中，聚合反应通过可见光活化来引发。优选的引发剂为双(2，4，6-三曱基苯甲酰基)-苯基氧化膦(Irgacure)。
活性组分(含硅树脂组分、亲水单体、润湿剂、以及反应形成镜片的其他组分)在含有或不含稀释剂的情况下混合在一起，以形成反应混合物。
在一个实施例中，使用的稀释剂具有足够低的极性，以在反应条件下溶于活性混合物的非极性组分。表征本发明稀释剂的极性的一种方式是通过Hansen溶解度参数δp。在某些实施例中，δp小于约10，优选小于约6。合适的稀释剂在US Ser.No 60/452898和US 6,020,445中进一步有所公开。
合适的稀释剂的类型包括(但不限于)具有2至20个碳原子的醇、具有10至20个碳原子的衍生自伯胺的酰胺、醚、聚醚、具有3至10个碳原子的酮、以及具有8至20个碳原子的羧酸。对于所有溶剂，随着碳原子数量的增加，极性部分的数量也会增加，以提供所需级别的混溶性。在一些实施例中，优选伯醇和叔醇。优选类型包括具有4至20个碳原子的醇和具有10至20个碳原子的羧酸。
在一个实施例中，稀释剂选自具有一定水中溶解度的稀释剂。在一些实施例中，至少约3％的稀释剂为可混溶的水。水溶性稀释剂的实例包括1-辛醇、1-戊醇、1-己醇、2-己醇、2-辛醇、3-甲基-3-戊醇、2-戊醇、叔-戊基醇、叔-丁醇、2-丁醇、1-丁醇、2-甲基-2-戊醇、2-乙基-1-丁醇、乙醇、3，3-二甲基-2-丁醇、癸酸、辛酸、十二烷酸、1-乙氧基-2-丙醇、1-三级丁氧基-2-丙醇、EH-5(可从Ethox Chemicals商购获得)、2，3，6，7-四羟基-2，3，6，7-四甲基辛烷、9-(1-甲基乙基)-2，5，8，10，13，16-六氧杂十七烷、3，5，7，9，11，13-六甲氧基-1-十四醇、它们的混合物等。
本发明的活性混合物可通过用于在制备隐形镜片时模铸反应混合物的任何已知方法固化，包括旋模成型和静模铸造。旋模成型法在美国专利No.3,408,429和3,660,545中有所公开，静模铸造法在美国专利No.4,113,224和4,197,266中有所公开。在一个实施例中，本发明的隐形镜片通过直接模铸硅树脂水凝胶形成，该方法既经济，又允许精确控制水合镜片的最终形状。对于该方法，将反应混合物放入具有最终所需硅树脂水凝胶(即水-溶胀聚合物)的形状的模具，然后将反应混合物置于使单体聚合的条件下，从而产生形状近似于最终所需产品的聚合物。
固化之后，对镜片进行提取，以移除未反应的组分并使镜片脱离镜片模具。提取可采用常规提取液(例如醇之类的有机溶剂)进行，或者可以使用水溶液提取。
水溶液为包含水的溶液。在一个实施例中，本发明的水溶液包含至少约30％的水，在一些实施例中为至少约50％的水，在一些实施例中为至少约70％的水，在其他实施例中为至少约90重量％的水。水溶液也可包含附加的水溶性组分，例如脱模剂、润湿剂、增滑剂、药剂和营养药组分、它们的组合等。脱模剂是这样的化合物或化合物的混合物：当与水混合时，相比使用不含脱模剂的水溶液将隐形镜片脱离模具所需时间，脱模剂会缩短将隐形镜片脱离模具所需的时间。在一个实施例中，水溶液包含小于约10重量％的有机溶剂(例如异丙醇)，在其他实施例中小于约5重量％，在另一个实施例中不含有机溶剂。在这些实施例中，水溶液不需要专门处理，例如纯化、回收利用或特殊的处置工序。
在许多实施例中，可通过(例如)将镜片浸入水溶液或暴露于流动的水溶液中来实现提取。在许多实施例中，提取也可包括(例如)以下一个或多个步骤：加热水溶液；搅拌水溶液；将水溶液中的脱模助剂的浓度增加至足以使镜片脱模的水平；机械或超声搅拌镜片；以及将浓度足以有利于充分移除镜片中的未反应组分的至少一种浸出助剂加入水溶液。
提取可通过多种实施方式进行，例如但不限于批量方法(该方法将镜片浸没在固定箱罐内容纳的溶液中一定时间)或垂直方法(该方法将镜片暴露于连续流动的水溶液中)。
在一些实施例中，可以用热交换器或其他加热设备加热水溶液，以进一步促进镜片的浸出以及镜片从模具部件脱离。例如，加热可以包括使水溶液的温度升至沸点，同时水凝胶镜片和粘附着镜片的模具部件浸没在被加热的水溶液中。其他实施例可包括水溶液温度的受控循环。
一些实施例还可包括施加物理搅拌，以促进浸出和脱模。例如，可以在水溶液中振动或前后移动粘附着镜片的镜片模具部件。其他实施例可以包括通过水溶液的超声波。
这些和其他类似的方法可以提供可接受的镜片脱模方法。
如本文所用，“从模具脱离”是指镜片或与模具完全分离，或只松散连接以使得可通过轻轻晃动移除或用药签推离。在本发明的方法中，所用条件包括在低于99℃的温度下保持小于约1小时。
已经惊奇地发现，加入至少一种减少蛋白质化合物(protein reducingcompound)还可以改善镜片在使用水溶液时的脱模能力。由包含至少一种减少蛋白质化合物的反应混合物形成的镜片可以更容易地从前曲面模具中脱离，并且显示具有更少的边缘相关缺陷，例如边缘撕裂或碎裂。在一些实施例中，可以实现将边缘相关缺陷减少至少约20％。在一些实施例中，为了减少边缘相关缺陷，在反应混合物中加入至少一种减少蛋白质化合物，同时在将后曲面置于含反应混合物的前曲面上之前将镜片模具暴露于氧气中。减少蛋白质化合物的类型和含量如上所述。合适的暴露时间也如上文所公开的那样。
本发明的镜片几乎不需要后处理。后处理是处理的可选部分，并且包括溶液交换和提取，但不包括消毒、储存和平衡化。在需要后处理的实施例中，后处理采用水溶液进行，并且时间小于约6小时，在一些实施例中小于约4小时、小于约2小时，有时小于约1小时。
可通过已知方法(例如但不限于高压釜处理)对处理过的镜片消毒。
应当理解，本文规定的所有测试都具有一定程度的固有测试误差。因此，本文所提供的结果不应视为绝对数，而应是基于具体测试的精度的数值范围。
为了阐述本发明，包括了以下实例。这些实例并不限制本发明。它们只是为了提出实践本发明的一种方法。具有丰富隐形镜片知识的人和其他专家可能会找到其他实践本发明的方法。但是，应将这些方法视作本发明范围内的方法。
实例
以下缩写在下列实例中使用：
SiGMA       2-丙烯酸-2-甲基-2-羟基-3-[3-[1，3，3，3-四甲基-1-[(三甲基甲硅基)氧基]二硅氧烷基]丙氧基]丙基酯
DMA         N，N-二甲基丙烯酰胺
HEMA        甲基丙烯酸2-羟乙酯
mPDMS       分子量800-1000的(Mn)一曱基丙烯酰氧基丙基封端的单-正丁基封端的聚二甲基硅氧烷
Norbloc     2-(2’-羟基-5-甲基丙烯酰氧基乙基苯基)-2H-苯并三唑
CGI 1850    1-羟基环己基苯基酮和双(2，6-二甲氧基苯甲酰基)--2，4，4-三曱基戊基氧化膦的1∶1(重量比)共混物
PBS         磷酸盐缓冲的盐水溶液
PVP         聚乙烯吡咯烷酮(注明K值)
Blue HEMA   美国专利No.5,944,853实例4中所述的编号为4的活性蓝与HEMA的反应产物
IPA         异丙醇
D3O         3，7-二甲基-3-辛
HO-mPDMS    单-(3-甲基丙烯酰氧基-2-羟基丙氧基)丙基封端的单-丁基封端的聚二甲基硅氧烷
EGDMA       乙烯乙二醇二甲基丙烯酸酯
TEGDMA      四聚乙烯乙二醇二甲基丙烯酸酯
TPME        三丙二醇甲基醚
TLF         按照下文中方法制备的泪样流体
CGI 819     双(2，4，6-三曱基苯甲酰基)-苯基氧化磷
BHT         丁基化羟基甲苯
MEHQ        对苯二酚一甲基醚
白蛋白储备溶液：将1mg/ml白蛋白溶液在PBS中按1/20稀释形成50μg/ml白蛋白储备溶液。
泪样流体(TLF)缓冲液：
通过将0.137g碳酸氢钠(Sigma，S8875)和0.01g D-葡萄糖(Sigma，G5400)加入含钙和镁的PBS(Sigma，D8662)中制备泪样流体缓冲溶液(TLF缓冲液)。在室温下搅拌TLF缓冲液，直到组分完全溶解(约5min)。
通过将以下脂质在TLF缓冲液中混合，在约60℃下充分搅拌约1小时直至澄清制备脂质储备溶液：
将脂质储备溶液(0.1mL)与0.015g粘蛋白(来自牛颌下腺的粘蛋白(Sigma，M3895，1-S型))混合。将三个1mL部分的TLF缓冲液加入脂质粘蛋白混合物中。搅拌溶液，直到所有组分都溶于溶液中(约1小时)。将TLF缓冲液加入适量至100mL并充分搅拌。
以所列顺序将以下组分加入上面制备的100mL脂质-粘蛋白混合物中，每次加入一种组分。总添加时间为约1小时。
将所得的溶液在4℃下静置过夜。用1N HCl将pH值调至7.4。过滤溶液，在使用之前于-20℃下储存。
在所有实例中，使用IL 1400A辐射计和XRL 140A传感器测量强度。
比较例1
将表1所列反应组分和稀释剂(叔戊醇)混合在一起，并在约23℃下搅拌和旋转至少约3小时，直到所有组分溶解。所提供的活性组分数值为所有活性组分的重量百分比，稀释剂为最终反应混合物的重量百分比。随后对所用mPDMS进行BHT分析，结果发现其包含约10,000ppm BHT。随后对所用DMA和SiGMA进行MeHQ分析，结果发现其分别包含约400ppm和100ppm MeHQ。将反应混合物在氮气环境下置于热塑性隐形镜片模具(前曲面和后曲面由得自Zeon，Corp.的1060R制成)中，并使用TLDK30W/03灯在下列条件下进行照射：在约60℃下，以3mW/cm2的固化强度照射约30秒(O2小于3％)；在约70℃下以约5mW/cm2的固化强度照射约4分钟(O2小于3％)。将模具暴露3秒钟，以使用配有将热量聚焦到后曲面的喷嘴的红外加热器(型号RC-052，得自Surfaceigniter，LLC)进行加热，温度设为800℃，使用指状撬棒打开。按下列规定对镜片进行脱模、提取和水合：在环境温度下的100％去离子水中放置约15分钟，在25℃的70∶30的IPA：去离子水中放置约15分钟，在环境温度下的100％去离子水中放置15分钟。
将镜片放入玻璃瓶内的硼酸缓冲盐溶液中，并在121℃下消毒20分钟。
比较例2
将表1所列反应组分和稀释剂(叔戊醇)混合在一起，并在约23℃下搅拌和旋转至少约3小时，直到所有组分溶解。所提供的活性组分数值为所有活性组分的重量百分比，稀释剂为最终反应混合物的重量百分比。随后对所用mPDMS进行BHT分析，结果发现其包含约10,000ppm BHT。随后对所用DMA和SiGMA进行MeHQ分析，结果发现其分别包含约400ppm和100ppm MeHQ。将反应混合物在氮气环境下置于热塑性隐形镜片模具(前曲面由得自Zeon，Corp.的1060R制成，后曲面由55∶451060R：聚丙烯共混物制成)中，并使用TLDK 30W/03灯在下列条件下进行照射：在约50℃下，以1.5mW/cm2的固化强度照射约30秒(O2小于1％)；在约70℃下以约5mW/cm2的固化强度照射约4.5分钟(O2小于3％)。将模具暴露3秒钟，以使用配有将热量聚焦到后曲面的喷嘴的红外加热器(型号RC-052，得自Surfaceigniter，LLC)进行加热，温度设为800℃，使用指状撬棒打开。在下列条件下，将镜片在去离子水中脱模、提取和水合：10℃下约6分钟，90℃下约6分钟，45℃下约6分钟。
将镜片放入玻璃瓶内的硼酸缓冲盐溶液中，并在121℃下消毒20分钟。
表1
组分： 重量％
Sigma 30
mPDMS 1000 22
DMA 31
HEMA 85
EGDMA 0.75
Norbloc 15
Blue HEMA 002
PVP K90 6
CGI 819 0.23
总单体 60％
PVP K12 11
叔戊醇 29
总稀释剂 40％
使用方法1对比较例1至2中制备的镜片进行蛋白质摄取评估。
方法1：每日温育法
将镜片(每种测试镜片的6个复制品)吸干，以除去润湿溶液，然后用无菌镊子将其无菌转移到24孔细胞培养板(每孔一个镜片)中。每孔含0.3ml TLF。
将镜片在35℃的TLF中进行温育，每天旋转搅拌5小时。在TLF中的每个温育期结束之后，将镜片取出24孔细胞培养板，并在全能水润配方多功能保养液(Complete Moisture Plus Multipurpose Solution)中隔夜浸泡。按照实例中列出的时间间隔每天重复上述程序。温育期结束时，将测试镜片放入含磷酸盐缓冲液的三个单独的小瓶中漂洗三次，然后测量蛋白质摄取。
按照制造商提供的说明通过bicinchroninic酸法(QQP-BCA试剂盒，Sigma)进行蛋白质摄取测量。用QP-BCA试剂盒提供的白蛋白溶液绘制标准曲线。
在24孔板上贴上标签，通过将白蛋白储备溶液加入PBS中制备白蛋白标准品，如下表2中所示：
表2
通过将25份QA试剂与25份QB试剂和1份QC试剂(硫酸铜(II))混合现制QP-BCA试剂，如Sigma QP-BCA试剂盒说明书中所述。制备足以供所有对照和测试镜片样品以及标准样品使用的试剂，样品/标准品中每体积的PBS都需要等体积的QP-BCA试剂。
将等体积的QP-BCA试剂加入每个样品中(放入1ml PBS中的镜片各1ml)。
将标准品、镜片和溶液样品在60℃下温育1小时，让样品冷却5至10分钟。用分光光度计测量溶液在562nm处的吸光度。
方法2：连续温育法
将镜片(每种测试镜片的6个复制品)吸干，以除去润湿溶液，然后用无菌镊子将其无菌转移到24孔细胞培养板(每孔一个镜片)中。每孔含1ml TLF。
将镜片在35℃的1ml TLF中进行温育，并按照实例中的时间间隔进行旋转搅拌。每24小时更换一次TLF溶液。温育期结束时，将测试镜片放入含磷酸盐缓冲液的三个单独的小瓶中漂洗三次，然后测量蛋白质摄取。使用二喹啉甲酸法按上文所述相同程序进行蛋白质摄取测量。
实例1至16
将表1所列反应组分和稀释剂(叔戊醇)以及BHT和MEHQ(表4所列总浓度)混合在一起，并在约23℃下搅拌和旋转至少约3小时，直到所有组分溶解。所提供的活性组分数值为所有活性组分的重量百分比，稀释剂为最终反应混合物的重量百分比。加入反应混合物中之前，从mPDMS中汽提BHT(BHT浓度达到约13ppm)。所示BHT和MeHQ的浓度为总浓度，包括其他组分(例如mPDMS、SiGMA和DMA)中所包含的任何抑制剂以及所加入的BHT和MeHQ。
在充满之前，将模具暴露于开放的空气环境中，时间如表4所示。在开放环境(空气)中，将反应混合物置于热塑性隐形镜片模具中，该模具具有表4所示基曲线组合物(其中％为Zeonor：聚丙烯共混物中的％1060R)，后曲面由55∶451060R：聚丙烯共混物制成)。使用TLDK 30W/03灯在下列条件下照射填充的模具：在约60℃下以2mW/cm2的固化强度照射约25秒钟，在约80℃下以约4mW/cm2的固化强度照射约5分钟(O2小于3％)。将模具暴露3秒钟，以使用红外加热器(型号RC-052，得自Surfaceigniter，LLC)进行加热，温度设为800℃，使用指状撬棒打开。在下列条件下，将镜片在去离子水中脱模、提取和水合：5℃下约6分钟，90℃下约6分钟，45℃下约6分钟。
将镜片放入玻璃瓶内的硼酸缓冲盐溶液中，并在121℃下消毒20分钟。
使用比较例1中所述方法1在第3、6、10天测量蛋白质摄取，结果如表4所示。
表4
由表4可知，增大暴露于氧气中的BHT、MeHQ或模具中任何一个的浓度都会减小蛋白质摄取量。抑制剂总浓度最高的实例(实例16和13)显示具有最低的蛋白质沉积。表4还示出，模具的组合物(基曲线中的BC％-％Zeonor)和反应混合物固化前在模具中的保压时间(秒)不影响蛋白质摄取量。
实例17至25
重复比较例1，并进行如下改变：在加入反应混合物之前将mPDMS汽提至BHT浓度约100ppm，在反应混合物内加入附加的抑制剂，将模具暴露于氧气中240秒或20秒O2(如下表5所列)，在下列条件下将镜片在去离子水中水合：在约22℃下约7分钟，在约90℃下约7分钟，在28℃下约7分钟。所示BHT和MeHQ的浓度为总浓度，包括其他组分(例如mPDMS、SiGMA和DMA)中所包含的任何抑制剂以及直接加入反应混合物的BHT和MeHQ。
在每日温育(方法1)8天后以及连续温育(方法2)5天后，对镜片进行蛋白质摄取评估。同时也按上文所述方式对镜片进行蛋白质摄取评估。结果示于下表5中。
表5
在8天(整夜清洗)和5天连续温育中获取的蛋白质摄取数据没有统计学意义上的差别。具有增加的MeHQ浓度和BHT浓度的镜片显示具有减少的总蛋白质摄取量。对于较低级浓度的MeHQ(600ppm)，增加BHT对减少蛋白质摄取量比对于高浓度的MeHQ(1600ppm)有更大影响。将总抑制剂浓度增加至～1700ppm以上不会显著影响总蛋白质摄取量。
实例26至29
将表1所列反应组分和稀释剂(叔戊醇)以及附加的MEHQ(如表6所列含量)混合在一起，并在约23℃下搅拌或旋转至少约3小时，直到所有组分溶解，只不过在这些实例中，加入反应混合物之前，将下列组分汽提至各自的抑制剂浓度：
将mPDMS汽提至[BHT]为约100ppm；
将SiGMA汽提至[MeHQ]为约100ppm。所用DMA具有400ppm的[MeHQ]。因此，制剂中抑制剂的基线水平为500ppm。所提供的活性组分数值为所有活性组分的重量百分比，稀释剂为最终反应混合物的重量百分比。填充之前，将模具在环境温度和表6所示％O2下暴露于氧气中3分钟。在N2环境下，将反应混合物置于热塑性隐形镜片模具(1060R前曲面和由55∶451060R：聚丙烯共混物制成的后曲面)。使用TLDK30W/03灯在下列条件下照射填充的模具：在约50℃下和小于约0.5％的O2中以1.5mW/cm2的固化强度照射约30秒钟，在约70℃下以约5mW/cm2的固化强度照射约4.5分钟(O2小于3％)。将模具暴露3秒钟，以使用红外加热器(型号RC-052，得自Surfaceigniter，LLC)进行加热，温度设为800℃，使用指状撬棒打开。在下列条件下，将镜片在去离子水中脱模、提取和水合：25℃下约7分钟，90℃下约7分钟，20℃下约7分钟。
将镜片放入玻璃瓶内的硼酸缓冲盐溶液中，并在121℃下消毒20分钟。
使用比较例1中所述方法1在6天后测量蛋白质摄取，结果如表6所示。
表6
PU＝蛋白质摄取量
*SD＝标准差，蛋白质摄取量(μg/镜片)
表6中的结果清楚表明，增加模具填充前所暴露于其中的氧气百分比会减少所得镜片的蛋白质摄取量(实例26比实例27减少5μg/镜片，实例28比实例29减少4μg/镜片)。通过比较实例26与实例28、实例27与实例29可知，将MeHQ浓度从150ppm增加至350ppm，可以减少40％以上。
实例30至33
重复实例26至29，不同的是第二区域中的固化强度减少至0.5mW/cm2。结果示于下表7中。
实例34至35
重复实例30和32，不同的是水合条件如下：在100％去离子水中30分钟，在70％IPA中30分钟，在100％去离子水中30分钟，如表7所示，全部在环境温度下进行。结果示于下表7中。
表7
PU＝蛋白质摄取量
*SD＝标准差，蛋白质摄取量(μg/镜片)
实例36至39
按比较例2所示方式制备隐形镜片，不同的是在加入反应混合物之前将mPDMS汽提至BHT浓度为约13ppm，并且对SiGMA和DMA进行汽提，使得二者中的MeHQ总浓度为16ppm。在实例38至39中，加入另外的BHT和MeHQ，以达到表8所示BHT和MeHQ总浓度。在填充之前将模具暴露于5％的O2中180秒，并固化、脱模和用去离子水提取镜片，脱模方式如实例2所公开的那样。脱模之后检查镜片，合格镜片(无磨损和边缘碎裂)产率如表8所示。
表8
实例40至44
按比较例2所述方式制备隐形镜片(使用未汽提单体，抑制剂由制造商提供)，不同的是
-将模具暴露于下表9所列浓度百分比的氧气中3分钟；
-在暴露于红外加热器之前，使用具有Aeroflex套筒泡沫保温层的涡流管喷嘴(由ExAir制造)提供的压缩空气(＜10℃)(焦耳-汤姆森效应)进行冷却；并且
在下列条件下对镜片进行提取：在环境温度下的100％去离子水中约30分钟，在环境温度下的70∶30 IPA：去离子水中约30分钟，在环境温度下具有约50ppm甲基纤维素的润湿溶液中120分钟。脱模后在10X荧光笔上在润湿溶液/MC 50ppm溶液中人工检查镜片，合格镜片(无磨损和边缘碎裂)的产率如表9所示。
表9
实例45至53
将表10所列反应组分(55重量％)和稀释剂(45重量％，按稀释剂和最终反应混合物的重量％计)混合在一起，在约23℃下搅拌或旋转至少约3小时，直到所有组分溶解。所提供的活性组分数据为所有活性组分的百分比。实例45、48和51示出了不添加任何附加抑制剂的情况下单体混合物中的MeHQ和BHT含量。在实例46至47、49至50和52至53中加入另外的BHT和MeHQ，以达到表10所示BHT和MeHQ总浓度。在氮气环境中，将反应混合物置于热塑性隐形镜片模具(由得自Zeon，Corp.的1060R制成的前曲面和后曲面)中，该模具已在表11所列浓度的O2中暴露一整夜，并使用TLDK 30W/03灯在下列条件下照射：在约65℃下，以1.8mW/cm2的固化强度照射约25分钟，氧气浓度在表11中列出。
用手对镜片脱模，并在约90℃下在100％的去离子水中释放约20至30分钟。将镜片转移至润湿溶液广口瓶中，并在环境温度下置于翻瓶器上。30分钟后，将润湿溶液换出来，并将广口瓶放回翻瓶器上进行另外的30分钟。将镜片转移至含有润湿溶液的小瓶内，并在121℃下消毒20分钟。
使用比较例1中所述方法在7天后测量蛋白质摄取，结果如表11所示。
表10
                     实例45至  实例51至
  元件             50(％)        53(％)
表11

Claims (18)

1.一种用于减少硅树脂水凝胶隐形镜片的蛋白质摄取量的方法，所述方法包括将减少蛋白质摄取有效量的至少一种减少蛋白质摄取化合物加入反应混合物；在模具中固化所述反应混合物，以形成所述隐形镜片，以及用至少一种水溶液从所述模具中释放所述镜片，其中所述减少蛋白质摄取化合物是氧。
2.根据权利要求1所述的方法，其中所述隐形镜片未涂布。
3.根据权利要求1所述的方法，其中所述镜片中存在的所述至少一种减少蛋白质化合物的量小于引起眼部不适的量。
4.根据权利要求1所述的方法，其中所述反应混合物中存在的所述至少一种减少蛋白质化合物的量按所述反应混合物计在约600ppm和约2重量％之间。
5.根据权利要求1所述的方法，其中所述反应混合物中存在的所述至少一种减少蛋白质化合物的量按所述反应混合物计在约800ppm和约1重量％之间。
6.根据权利要求1所述的方法，其中所述反应混合物中存在的所述至少一种减少蛋白质化合物的量按所述反应混合物计在约1500ppm和约5000ppm之间。
7.根据权利要求1所述的方法，其中所述方法还包括在将所述反应混合物加入所述模具之前将所述模具暴露于氧气中。
8.根据权利要求7所述的方法，其中所述模具暴露于含量最多约20％O2的氧气中，暴露时间为至少约1分钟。
9.根据权利要求1所述的方法，其中所述水溶液包含至少约50重量％的水。
10.根据权利要求1所述的方法，其中所述水溶液包含至少约70重量％的水。
11.根据权利要求1所述的方法，其中与具有小于所述有效量的至少一种减少蛋白质摄取化合物的镜片相比，所述硅树脂水凝胶隐形镜片显示从泪样流体中减少至少一种蛋白质的至少约10％的摄取量。
12.根据权利要求11所述的方法，其中所述至少一种蛋白质包含至少一种变性蛋白质。
13.根据权利要求11所述的方法，其中所述至少一种蛋白质包含除乳铁蛋白和溶菌酶之外的至少一种蛋白质。
14.根据权利要求11所述的方法，其中所述减少蛋白质摄取量为至少约20％。
15.根据权利要求11所述的方法，其中所有蛋白质的摄取量减少至少约10％。
16.根据权利要求1所述的方法，其中所述隐形镜片显示具有小于约15μg/镜片的总蛋白质摄取量。
17.根据权利要求1所述的方法，其中所述隐形镜片显示小于约10μg/镜片的总蛋白质摄取量。
18.一种方法，包括：
固化硅树脂水凝胶反应混合物，所述硅树脂水凝胶反应混合物包含按形成隐形镜片的所述反应混合物的所有组分计约600ppm至约20,000ppm的至少一种减少蛋白质摄取化合物，
使所述隐形镜片接触基本上不含挥发性有机溶剂的水溶液，以将所述隐形镜片中的杂质浓度减少至低于引起眼部不适的水平，
其中所述减少蛋白质摄取化合物是氧。
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